JP4696079B2 - Aβ免疫原性ペプチド担体結合物およびそれの製造方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2003年12月17日出願の米国仮出願第60/530,481号明細書(全部の目的上そっくりそのまま引用することにより本明細書に組込まれる)のU.S.C.第35条§119(e)の下での利益を主張する。
HarlowとLane、1988a、b、c Maleら、1987 Goebelら(1939)J.Exp.Med.69:53 Schneersonら(1984)Infect.Immun.45:582−591 Andersonら(1985)J.Pediatr.107:346 Inselら(1986)J.Exp.Med.158:294
本発明は、AβペプチドまたはAβ若しくはそのアナログのフラグメントを含んでなるペプチド免疫原のタンパク質/ポリペプチド担体との免疫原性結合物の製造方法に向けられ、ここで、AβペプチドまたはAβ若しくはそのアナログのフラグメントは、リシン残基のような担体のアミノ酸残基の誘導体化された官能基を介して担体に結合され、また、ここで、アミノ酸残基のいかなる結合されない誘導体化された官能基も、それらがタンパク質/ポリペプチドを包含する他の分子と反応することを阻害するためのキャッピングを介して不活性化して、それにより、担体を伴わずに別の方法で生じないとみられるペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発するその能力をそれが保持するような担体の官能性を保存する。さらに、本発明は上の方法により製造される結合物、およびこうした結合物を含有する免疫原性組成物にもまた関する。
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xはタンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化可能な官能基であり、および、式中、mは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数である
を有するタンパク質/ポリペプチド担体との、AβペプチドまたはAβ若しくはそのアナログAβ若しくはそのアナログのフラグメントを含んでなるペプチド免疫原の第二の結合方法に向けられ、該方法は:(a)タンパク質/ポリペプチド担体、若しくは場合によっては結合されたリンカー分子の官能基の1個若しくはそれ以上を誘導体化して、反応部位を伴う誘導体化された分子を生成させる段階;(b)段階(a)の誘導体化されたタンパク質/ポリペプチド担体をペプチド免疫原の1アミノ酸残基の反応性基と反応させて、共有結合されたペプチド免疫原−タンパク質/ポリペプチド担体結合物を形成させる段階;および(c)前記結合物をキャッピング試薬とさらに反応させて、キャッピングされた基がタンパク質/ポリペプチドを包含する他の分子と自由に反応しないような、活性化されたタンパク質/ポリペプチド担体上の遊離の反応性の官能基を不活性化して、それにより、式:
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xdは、タンパク質/ポリペプチド担体のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基であり、ならびに、式中、
Pは、タンパク質担体上のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基に共有結合されたペプチド免疫原分子であり、Rは、タンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基に共有結合されたキャッピング分子であり、nは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数であり、およびpは0より大きいがしかし85未満の整数である、
を有するキャッピングされたペプチド免疫原−タンパク質/ポリペプチド担体結合物を生成するように、担体を伴わずに別の方法で生じないとみられるペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発するその能力をそれが保持するような担体の官能性を保存する段階を含んでなる。
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xはタンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化可能な官能基であり、および、式中、mは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数である]を有し、かつ、キャッピングされたペプチド免疫原−タンパク質/ポリペプチド担体結合物が、式:
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xdは、タンパク質/ポリペプチド担体のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基であり、ならびに、式中、Pは、タンパク質担体のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基に共有結合されたペプチド免疫原分子であり、Rは、タンパク質/ポリペプチド担体のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基に共有結合されて、それにより担体を伴わずに別の方法で生じないとみられるペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発するその能力をそれが保持するような担体の官能性を保存するキャッピング分子であり、nは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数であり、およびpは0より大きいがしかし85未満の整数である、
を有する、AβペプチドまたはAβ若しくはそのアナログのフラグメントを含んでなるペプチド免疫原/ポリペプチド担体結合物に向けられる。
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xdは、タンパク質/ポリペプチド担体のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基であり、ならびに、式中、Pは、タンパク質担体のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基に共有結合されたペプチド免疫原分子であり、Rは、タンパク質/ポリペプチド担体のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカーのアミノ酸残基の誘導体化された官能基に共有結合されて、それにより担体を伴わずに別の方法で生じないとみられるペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発するその能力をそれが保持するような担体の官能性を保存するキャッピング分子であり、nは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数であり、およびpは0より大きいがしかし85未満の整数である、
を有する、AβペプチドまたはAβ若しくはそのアナログのフラグメントを含んでなるペプチド免疫原/ポリペプチド担体結合物に向けられる。
[発明の詳細な記述]
本発明は、活性化の間に生成される担体上の未反応の活性の官能基が、それらがさらに反応することを予防するためにN−アセチルシステアミンのようなキャッピング試薬を使用することにより不活性化される、ペプチド免疫原−担体結合物の生成方法に向けられる。本発明はまた、それらの方法により生成されるキャッピングされた担体−ペプチド免疫原結合物、および前記結合物を含んでなる免疫原性組成物にも向けられる。
[式中、
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xはタンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化可能な官能基であり、および、式中、mは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数である]がペプチド免疫原に共有結合され、かつ、該ペプチド免疫原−タンパク質/ポリペプチド担体結合物が以下の式を有し、以下の式:
Cはタンパク質/ポリペプチド担体であり、かつ、Xdは、タンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によっては該タンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基であり、Pは、タンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基に共有結合されたペプチド免疫原であり、Rは、タンパク質/ポリペプチド担体上のアミノ酸残基若しくは場合によってはタンパク質/ポリペプチド担体に共有結合されたペプチドリンカー上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基に共有結合されて、それにより担体を伴わずに別の方法で生じないとみられるペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発するその能力をそれが保持するような担体の官能性を保持するキャッピング分子であり、nは0より大きいがしかし85未満若しくはそれに等しい整数であり、およびpは0より大きいがしかし85未満の整数である]により表される、本発明の方法を使用して生成される。
担体の選択
数種のペプチド免疫原は免疫応答を誘導するのに適切なエピトープを含有するが、しかし免疫原性であるには小さすぎる。この状況で、ペプチド免疫原を適する担体に連結して免疫応答を誘発するのを助ける。本発明の方法により生成されるペプチド免疫原−担体結合物の上の図解において、Cは、担体それら自身上のアミノ酸残基上の誘導体化された官能基を介して直接、若しくは担体に共有結合されたペプチドリンカー上の誘導体化された官能基を介して間接的にペプチド免疫原が結合されているタンパク質/ポリペプチド担体である。適するタンパク質/ポリペプチド担体は、限定でされるものでないが、アルブミン(ヒト血清アルブミンを包含する)、キーホールリンペットヘモシアニン、免疫グロブリン分子、チログロブリン、卵アルブミン、MSCRAMMS、破傷風トキソイド、またはジフテリア、大腸菌(E.coli)、コレラ若しくはH.ピロリ(H.pylori)のような変異体を包含する低下した毒性を有する他の病原性細菌からのトキソイド、あるいは弱毒化トキシン誘導体を挙げることができる。1種のこうした担体は、ジフテリアトキシンと交差反応性であるCRM197タンパク質(配列番号40)である。
インフルエンザヘマグルチニン: PKYVKQNTLKLAT
HA307−319 (配列番号11)
PAN−DPペプチド(PADREペプチド) AKXVAAWTLKAAA
(配列番号12)
マラリアCS:T3エピトープ EKKIAKMEKASSVFNV
(配列番号13)
B型肝炎表面抗原: FELLTRILTI
HBsAg19−28 (配列番号14)
熱ショックタンパク質65: QSIGDLIAEAMDKVGNEG
hsp65153−171 (配列番号15)
カルメット−ゲラン桿菌(BCG) QVHFQPLPPAVVKL
(配列番号16)
破傷風トキソイド:TT830−844 QYIKANSKFIGITEL
(配列番号17)
破傷風トキソイド:TT947−967 NNFTVSFWLRVPKVSASH
LE(配列番号18)
HIV gp120 T1: KQIINMWQEVGKAMY
(配列番号19)
CRM197 配列の簡単な説明を参照されたい
(配列番号40)
アルブミンフラグメント ISQAVHAAHAEINEAGR
(配列番号41)
を包含する。
免疫原性ペプチド
本明細書で使用されるところの「ペプチド免疫原」若しくは「ハプテン」という用語は、哺乳動物への投与に際して免疫応答を導き出し得るか、助長し得るか、若しくはそれを生じさせるように誘導され得る、いかなるタンパク質若しくはそれら由来のサブユニット構造/フラグメント/アナログでもある。とりわけ、該用語は、本明細書に開示される方法を使用して担体に結合しうるいずれの供給源(細菌、ウイルス若しくは真核生物)からのポリペプチド抗原決定子を指すのにも使用される。こうしたポリペプチド免疫原/抗原決定子は、ウイルス、細菌若しくは真核生物起源のものでありうる。
直鎖状の配置のAβ 1−7/破傷風トキソイド830−844+947−967
DAEFRHD−QYIKANSKFIGITELFNNFTVSFWLRVPKVSASHLE
(配列番号24)
を包含する。
PADRE/Aβ 1−7:
AKXVAAWTLKAAA−DAEFRHD(配列番号26)
Aβ1−7×3/PADRE:
DAEFRHD−DAEFRHD−DAEFRHD−AKXVAAWTLKAAA(配列番号27)
PADRE/Aβ1−7×3:
AKXVAAWTLKAAA−DAEFRHD−DAEFRHD−DAEFRHD(配列番号28)
Aβ1−7/PADRE:
DAEFRHD−AKXVAAWTLKAAA(配列番号29)
Aβ1−7/アルブミンフラグメント:
DAEFRHD−ISQAVHAAHAEINEAGR(配列番号30)
Aβ4−10/アルブミンフラグメント:
FRHDSGY−ISQAVHAAHAEINEAGR(配列番号31)
Aβ3−9/アルブミンフラグメント:
EFRHDSG−ISQAVHAAHAEINEAGR(配列番号32)
HA307−319/Aβ1−7×3:
PKYVKQNTLKLAT−DAEFRHD−DAEFRHD−DAEFRHD(配列番号33)
Aβ1−7/HA307−319/Aβ1−7:
DAEFRHD−PKYVKQNTLKLAT−DAEFRHD(配列番号34)
Aβ1−7×3/HA307−319:
DAEFRHD−DAEFRHD−DAEFRHD−PKYVKQNTLKLAT(配列番号35)
Aβ1−7×2/HA307−319:
DAEFRHD−DAEFRHD−PKYVKQNTLKLAT(配列番号36)
Aβ1−7/HA307−319/マラリアCS/TT830−844/TT947−967/Aβ1−7
DAEFRHD−PKYVKQNTLKLAT−EKKIAKMEKASSVFNV−QYIKANSKFIGITEL−FNNFTVSFWLRVPKVSASHLE−DAEFRHD(配列番号37)
Aβ1−7×3/TT830−844/C/TT947−967
DAEFRHD−DAEFRHD−DAEFRHD−QYIKANSKFIGITEL−C−FNNFTVSFWLRVPKVSASHLE(配列番号38)
Aβ1−7/TT830−844/C/TT947−967
DAEFRHD−QYIKANSKFIGITELCFNNFTVSFWLRVPKVSASHLE(配列番号39)
Aβ1−7/TT830−844/C/TT947−967/Aβ1−7
DAEFRHD−QYIKANSKFIGITEL−C−FNNFTVSFWLRVPKVSASHLE−DAEFRHD(配列番号20)
数種の免疫原性異種ペプチドは、式2x(式中xは1〜5からの整数である)により表される免疫原性ペプチドの多量体を含んでなる。好ましくは、xは1、2若しくは3であり、2が最も好ましい。xが2である場合、こうした多量体はMAP4(米国特許第5,229,490号明細書を参照されたい)と称される好ましい配置で連結された4個の免疫原性ペプチドを有する。こうした免疫原性ペプチドをその後、本発明の方法を使用して担体に連結して結合物を形成する。
MAP4配置のAβ 1−7/破傷風トキソイド830−844:
DAEFRHD−QYIKANSKFIGITEL(配列番号22)
MAP4配置のAβ 1−7/破傷風トキソイド947−967:
DAEFRHD−FNNFTVSFWLRVPKVSASHLE(配列番号23)
MAP4配置のAβ 3−9/破傷風トキソイド830−844:
EFRHDSG−QYIKANSKFIGITEL(配列番号25)
2分枝の樹脂上のDAEFRHD−QYIKANSKFIGITEL
免疫原性ペプチドの誘導体化およびタンパク質担体への結合
ペプチド免疫原のタンパク質/ポリペプチド担体への結合部位、およびペプチド免疫原を担体に結合するのに使用される架橋剤の性質は、双方とも、それに対し生成される結果として生じる抗体の特異性に重要である。適正な認識のため、ペプチド免疫原を適切な向きで担体に結合しなければならない。抗体が担体を伴わない遊離のペプチド免疫原をその後認識するためには、ペプチド免疫原−タンパク質/ポリペプチド担体結合物は露出されかつ接近可能な形態でペプチド免疫原を提示しなければならない。最適の向きはしばしば、ペプチド免疫原上の特定の部位に対する架橋反応を指図することにより達成される。ペプチド免疫原でこれを達成するための一方法は、ペプチド合成の間に末端システイン残基を結合することによる。これは、担体への結合のためにペプチドの一端にスルフヒドリル基を提供する。この基による架橋は、一端のみでのペプチド免疫原の結合を提供して、それにより一貫した向きを確実にする。
1.アルデヒド−アミノ−>二級アミン
2.マレイミド−スルフヒドリル(チオエーテル
3.スクシンイミド−アミノ(アミド
4.イミデートエステル−アミノ(−アミド
5.フェニルアジド−アミノ(フェニルアミン
6.アシルハロゲン化物−スルフヒドリル(チオエーテル
7.ピリジルジスルフィド−スルフヒドリル(ジスルフィド
8.イソチオシアネート−アミノ(イソチオ尿素
である。
キャッピング
担体および/若しくはハプテン分子上の反応性アミノ酸分子の側鎖に反応部位を導入するカップリング試薬の使用に対する一欠点は、反応部位が中和されない場合はin vitro若しくはin vivoのいずれでもいかなる不要な分子とも自由に反応することである。本発明の方法において、未反応の官能基のキャッピングは、ペンダント反応性基を不活性化/キャッピングする試薬との該反応性基をもつ結合物の反応により達成される。本発明の結合方法での使用のための例示的不活性化/キャッピング試薬はシステアミン、N−アセチルシステアミンおよびエタノールアミンを包含する。あるいは、キャッピングは、アンモニア若しくは重炭酸アンモニウム(そのいずれもハロアセチル基をアミノアセチル基に転化する)との反応により達成される。キャッピングはまた、ハロアセチル基をヒドロキシアセチル基に転化する水酸化ナトリウム若しくは炭酸ナトリウムを使用してアルカリ性のpH(9.0〜9.8)でも達成される。ハロアセチル基をアミノアセチル若しくはヒドロキシアセチル基に転化することの潜在的な一利点は、システアミン誘導体、エタノールアミンなどとの反応と対照的に、アンモニア若しくは水酸化物/炭酸塩との反応による比較的より小さい大きさの化学的官能性の導入である。生じるキャッピングされた官能基、例えばアミノアセチル若しくはヒドロキシアセチルは、結合物の担体タンパク質部分中に比較的より小さい変動(perturbance)を提供する。キャッピングされたペプチド免疫原−担体タンパク質は、クロマトグラフィー(ゲル濾過、イオン交換、疎水性相互作用若しくはアフィニティー)、透析、限外濾過−ダイアフィルトレーション、硫酸アンモニウム若しくはアルコールを使用する選択的沈殿などのような既知の方法を使用して必要なように精製する。
免疫原性結合物および組成物
キャッピングされたペプチド免疫原−担体タンパク質結合物は、予防および/若しくは治療の目的上、哺乳動物、とりわけヒトに免疫原性組成物で投与される。本発明の結合物は、免疫原に対する免疫応答を導き出しかつ/若しくは高めるのに使用される。例えば、CTL−担体結合物はウイルス感染、アミロイド原性疾患、癌などを処置かつ/若しくは予防するのに使用される。あるいは、抗体応答を誘導するポリペプチド免疫原−担体結合物もまた使用される。
[実施例]
ハプテン/抗原性ペプチドの結合は、39個のリシン残基を有する活性化された担体CRM197を、下述される方法(図1)を使用してペンダントチオール基を有するハプテン/抗原性ペプチドに反応させることにより実施した。全部のAβペプチドは、システイニルスルフヒドリル基による担体タンパク質へのこれらのペプチドの結合を助長するために、カルボキシ末端に1個のシステイン残基を含有した。これらのペプチドは固相合成により製造した。
I.活性化
CRM197の遊離アミノ基を、過剰のブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミドエステル(Sigma Chemical Co.、ミズーリ州セントルイス)との反応によりブロモアセチル化した(BernatowiczとMatsueda、1986)。CRM197(約15mg)の氷冷溶液に10%(v/v)の1.0M NaHCO3(pH8.4)を添加した。使用したCRM197の重量に重量が等しいブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミドエステルを200μLのジメチルホルムアミド(DMF)に溶解し、CRM197にゆっくりと添加し、そして室温で暗所で1時間穏やかに混合した。生じるブロモアセチル化された(活性化された)タンパク質を、溶離液としてPBS/1mM EDTA(pH7.0)を使用する脱塩(P6−DG)カラムを通る通過により精製した。精製後、活性化されたCRM197に対応する画分を合わせ、そしてタンパク質濃度をBCAタンパク質アッセイにより推定した。ブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミドエステルでの処理の前および後双方のタンパク質のアミノ基を2,4,6−トリニトロベンゼンスルホン酸(TNBSA)と反応させ、これはブロモアセチル化の指標としてはたらいた(Meansら、1972)。
II.結合
結合前に、ペプチドを5,5’−ジチオ−ビス(2−ニトロ安息香酸)[Ellman試薬]と反応させて遊離SH基の含量を確認した(62〜88%の間が還元型)。最初の4種のAβペプチド(リンカーを伴わないアミノ酸1−7、GAGA(配列番号10)リンカーを伴うアミノ酸1−12、GAGA(配列番号10)リンカーを伴うアミノ酸1−9、およびGAGA(配列番号10)リンカーを伴うアミノ酸1−7)について、およそ8.0〜10.0mgのペプチドを、20mg/mlの近似濃度まで滅菌蒸留水に溶解した。ペプチドを、1:1の比(w/w)で冷活性化CRM197にゆっくりと添加し、そして、20〜36μlの1N NaOHの添加でpHをおよそ7.0〜7.2に調節した。生じる物質を4℃で暗所にて一夜穏やかに混合し、次いでPBS、pH7.2の2回の1L交換に対し暗所で透析した。次の4種のAβペプチド(リンカーを伴わないアミノ酸1−5、リンカーを伴わないアミノ酸1−9、リンカーを伴わないアミノ酸1−12、およびリンカーを伴うアミノ酸1−5)について、Ellman試薬との反応を使用して遊離SH基を確認した。CRM197は、前述されたとおり、ブロモアセチル化し、精製しかつTNBSAと反応させた。各ペプチドのpHを、溶解されたペプチドの容量の2.2倍の0.1M NaPO4(pH8.5)の添加で7.0に調節した。ペプチドを、1:1の比で冷活性化CRM197にゆっくりと添加し、そして4℃で暗所にて一夜反応させた。生じる物質を透析した。最終対照ペプチド(逆向きの1−12mer)を、以下の改変を伴い、上述されたとおりCRM197に結合した。ペプチドのpHを7.0に調節するよりはむしろ、活性化されたCRM197のpHを20%(v/v)の0.5M NaPO4(pH8.0)の添加でおよそ7.5に調節した。各結合物を透析後に滅菌15mLポリプロピレンチューブに移し、アルミニウム箔で包みそして4℃で保存した。担体上の反応性アミノ残基の活性化を、それから、質量分析を使用してその後確認した。
A□1−5−C−CRM197 DAEFR−C(配列番号1)
A□1−7−C−CRM197 DAEFRHD−C(配列番号2)
Aβ1−9−C−CRM197 DAEFRHDSG−C(配列番号3)
Aβ1−12−C−CRM197 DAEFRHDSGYEV−C(配列番号4)
Aβ1−5−L−C−CRM197 DAEFR−GAGA−C(配列番号5)
Aβ1−7−L−C−CRM197 DAEFRHD−GAGA−C(配列番号6)
Aβ1−9−L−C−CRM197 DAEFRHDSG−GAGA−C(配列
番号7)
Aβ1−12−L−C−CRM197 DAEFRHDSGYEV−GAGA−C
(配列番号8)
Aβ12−1−C−CRM197 VEYGSDHRFEAD−C(配列番号9)
(−VE対照)
L=リンカー(GAGA)(配列番号10)
CRM197のブロモアセチル化
0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液、0.9%NaCl、pH7.0中のCRM197(100mg)を、アルゴン雰囲気下、1:1の重量比でブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミドエステル(DMSO中20mg/mLまで溶解した)と反応させた。反応を、pHを7.0に維持するのに必要とされるように滴定した。混合物を暗所にて室温で1.5時間攪拌した。反応混合物を、UF/DF装置(Millipore Labscale TFF、マサチューセッツ州ビレリカ)の保持液リザーバ中に1.2μm濾過した。精製は、10K若しくは30K UFメンブレンを使用して、0.01Mリン酸ナトリウム緩衝液/0.9%NaCl、pH7.0に対するダイアフィルトレーション(30倍)により行った。ブロモアセチル化されたCRM197を、0.2μmフィルターを通過させることにより濾過した。ブロモアセチル化の程度を、活性化されたCRM197をシステインと反応させること、次いでアミノ酸分析および生じるカルボキシメチルシステイン(CMC)の定量により測定した。
Aβペプチドおよびブロモアセチル化CRM197の結合ならびにN−アセチルシステアミンでのキャッピング
ブロモアセチル化されたCRM197(50mg)を反応容器に移した。2〜8℃で維持した攪拌した溶液に1M炭酸/重炭酸ナトリウムを添加した。アルゴン雰囲気下で滴定を実施して9.0の標的pHを達成した。別個に50mgのAβペプチドを秤量し、そして注射用水(WFI)に20mg/mLまで溶解した。この溶液に、pH9.0が達成されるまで1M炭酸/重炭酸ナトリウムを添加した。ペプチド溶液をブロモアセチル化CRM197溶液に添加し、そして混合物を2〜8℃で14〜18時間攪拌した。残存するブロモアセチル基を、20倍モル過剰のN−アセチルシステアミンで2〜8℃で3〜6時間キャッピングした。
実施例2で上述されたとおり製造したブロモアセチル化されたCRM197(50mg)を反応容器に移した。2〜8℃で維持した攪拌した溶液に1M炭酸/重炭酸ナトリウムを添加した。アルゴン雰囲気下で滴定を実施して9.0の標的pHを達成した。別個に50mgのAβペプチドを秤量し、そしてWFIに20mg/mLまで溶解した。この溶液に、pH9.0が達成されるまで1M炭酸/重炭酸ナトリウムを添加した。ペプチド溶液をブロモアセチル化CRM197溶液に添加し、そして混合物を2〜8℃で14〜18時間攪拌した。残存するブロモアセチル基を、8%重炭酸アンモニウム溶液を使用して2〜8℃で4時間キャッピングした。
ブロモアセチル活性化の化学を使用して生成されるタンパク質−ペプチド結合物の酸加水分解は、結合された部位のシステインからの酸安定性のS−カルボキシメチルシステイン(CMC)、およびキャッピングされた部位のシステアミンからの酸安定性のS−カルボキシメチルシステアミン(CMCA)の形成をもたらした(図2)。結合されたおよびキャッピングされたリシンの全部をリシンに戻し転化し、そしてそれ自体を検出した。全部の他のアミノ酸は、該加水分解条件により破壊されたトリプトファンおよびシステインを除き、遊離アミノ酸に戻し加水分解された。アスパラギンおよびグルタミンはそれぞれアスパラギン酸およびグルタミン酸に転化された。
結合を確認するため、全部のペプチド−CRM197結合物を、アミノ酸分析およびマトリックス支援レーザー脱離イオン化飛行時間(MALDI−TOF)質量分析により分析した。各結合物について、各モルのCRM197に結合されたペプチドのモルを、アミノ酸分析(S−カルボキシメチルシステイン残基の数)およびMALDI−TOF質量分析により測定した。各方法により決定された値は全般として一致した。
I.サイズ排除クロマトグラフィー
バッチ濃縮物サンプルを貯蔵庫から取り出し、そして室温に温まらせた。Aβペプチド結合物サンプルは均一な調製物を保証するため穏やかに混合した。Aβペプチド結合物サンプルをエッペンドルフ微小遠心機で回転していかなる微粒子も除去した。上清をTosoHaas TKSゲル G3000SWクロマトグラフィー(TosoHaas、ドイツ・シュトゥットガルト)のため引き出した。TosoHaas TSKゲル G3000SWカラムをHPLC装置に接続し、そして圧力限界を1.4MPaに設定した。カラムを最低30mLのPBS(10mMリン酸ナトリウム、150mM NaCl、pH7.2±0.1)で、0.75mL/分の流速で平衡化した。Aβペプチド結合物サンプルを、以下のパラメータ、すなわち
Aβペプチド結合物サンプルの濃度:1.5±1.0mg/mL
流速:0.75mL/分
サンプル容量:0.1mL
分析時間:30分
を使用して、TosoHaas TSKゲル G3000SWカラムに負荷した。
II.PAGE(ポリアクリルアミドゲル電気泳動):
活性化された(ブロモアセチル化された)CRM197およびAβペプチド−CRM197結合物を、中性のpH、プレキャストポリアクリルアミドミニゲル装置、およびNuPAGE MES SDS泳動緩衝液とともにNuPAGEビス−トリス電気泳動(Novex、ドイツ・フランクフルト)を使用してSDSゲルにより検査した。各活性化CRM若しくは結合物の8μgのアリコートを還元サンプル緩衝液と混合しかつ100℃で5分間加熱した。結合物および分子量(MW)標準(Invitrogen、カリフォルニア州カールズバッド)をビス−トリス−HCl緩衝系に基づく10%(w/v、アクリルアミド)NuPageゲル(Novex)に負荷し、そしてMES SDS泳動緩衝液−PAGE(Laemmli)で泳動した。SDS−PAGE後に、ゲルをPierceゲルコードブルー(Gel Code Blue)(Pierce、イリノイ州ロックフォード)で染色した。Aβペプチド−CRM197結合物は、少量の多量体のバンドと一緒に、天然のCRMのバンドの上の66kDa付近の主バンド、および120kDa付近の二量体バンドにより表された(データは示されない)。
III.ペプチド−CRM197結合物のMALDI−TOF質量スペクトル分析:
質量分析を結合の程度の即座の近似に使用した。活性化されたCRM197および結合物サンプルの適切なアリコートを、マトリックスとして3,5−ジメトキシ−4−ヒドロキシ−ケイヒ酸(シナピン酸)を使用するMALDI−TOF質量分析により分析した。MALDI−TOF質量分析(Finnigan MAT Lasermat 2000質量分析計、ニューヨーク州リンゴーズ)により測定された活性化されたCRM197の分子量は60.5kDa付近に集中していることが見出され、また、結合物については結合の程度に依存して65kDaから74kDaまで変動した(データは示されない)。CRM197中のリシンの22個まで(約50%)が1:1の比で修飾されたことが見出された。
IV.最適化実験:
活性化および結合の程度は、試薬:タンパク質比、反応温度、および反応緩衝液のpHの関数である。結合反応の再現可能なプロセス制御パラメータを有するために、最適なpH条件を同定するために実施した最適結合条件を具体的に説明するいくつかの実施例を下に示す。結果(図3)は、Aβ 5mer(DAEFRC)(配列番号1)ならびにAβ 7mer(DAEFRHDC)(配列番号2)への結合反応がpH依存性であり、かつ、反応条件のpHが増大される場合により高い程度の修飾/結合を生じることを示した。5merおよび7merペプチドのTFA塩を使用して、結合の程度を、変動する量のペプチド負荷でpH9.0で評価した(図4)。CRM1分子あたりの定義された数のペプチドコピーとのペプチド結合物を、結合過程の間にペプチド/活性化CRM比を変動させることにより生成させ得ることが、これらの結果から明らかである。類似の実験を、Aβ 7merペプチドの酢酸塩を使用して行った。
それぞれCRM197に結合された、AβのN末端残基1−5、1−7、1−9および1−12にわたるペプチド(リンカー配列GAGACを伴うおよび伴わない)、ならびにアミノ酸12からアミノ酸1までの逆配列のAβのN末端に対応するペプチド(逆配列の1−12mer)を、STIMULONTM QS−21を含む製剤中の結合されていないAβ 1−12merペプチドと一緒にマウスを免疫するのに使用した。各群のマウスは、20μgのアジュバントSTIMULONTM QS−21とともに処方した30μg若しくは5μgいずれかの用量のサンプルの1種で、試験の開始時(第0週)ならびにその後第3および6週に皮下で免疫した。試験プロトコルを表3に具体的に説明する。
Greiner 96ウェルプレート(#650011)を、滅菌炭酸/重炭酸緩衝液、pH9.6中5.0μg/mL(100μl/ウェル)のCRM197で37℃で90分間被覆した。プレートを空にし、そして、1×TBS、0.1%Brij−35洗浄緩衝液を含有するプレート洗浄液で洗浄した。全部の一次抗血清は0.3%Tween 20/EDTAを含有する1×PBSで連続希釈し、そして100μLの各希釈をその後、適切なプレートのウェルに移しかつ37℃で1時間インキュベートした。プレートをその後、上述されたとおり空にした/洗浄した。Southern Biotechからのアルカリホスファターゼ結合ヤギ抗マウスIgG二次抗体を、0.05%Tween 20/0.02%アジドを含有する1×PBSで1000倍希釈し、そして100μLを各ウェルに添加しかつ37℃で1時間インキュベートした。プレートをその後、上述されたとおり空にし/洗浄し、そして最後に、100μL/ウェルのジエタノールアミン/MgCl2、pH9.8中で調製したリン酸p−ニトロフェニル基質の1mg/mL溶液とともに室温で1時間インキュベートした。発色を50μL/ウェルの3N NaOHの添加で停止した。プレートを690nMの参照を伴い405nMで読み取った。終点力価を0.1AUのO.D.で計算した。
a.Tukey−Kramerを使用する1−5C、1−7Cおよび1−9Cからの第6週の力価の統計学的解析は、1−5C対1−7C間のみで統計学的差違を示す一方、StudentのT検定を使用する解析は、1−5C対1−7Cおよび1−5C対1−9Cの間で統計学的差違を示す。
b.1−5C、1−7Cおよび1−9Cからの第8週の力価の統計学的解析は、3群間で統計学的差違を示さない。しかしながら、1−5C対1−7C間の差違を示しうる傾向があるようである。
PDAPPマウス脳組織染色
PDAPP脳組織染色アッセイは、Aβペプチド結合物および/若しくはAβ 1−42抗血清の機能性の指標を提供する。個々のマウス群からの血清サンプルを、アミロイドペプチドを含有するPDAPPマウス脳組織斑を認識するそれらの能力について個別に分析した。結果を表7Aおよび7Bに示す。Aβ 5mer結合物抗血清を除き、斑の認識において用量に関係した応答が存在した。リンカーに独立に、30μgの結合物で誘導した抗血清は5μgの結合物の抗血清の反応性パターンに比較してより良好な反応性パターンを有した。しかしながら、Aβ 5mer結合物抗血清では、5μg群に対する同様の若しくはより良好な反応性が存在すると思われる。全部のこれらの結果を比較して、Aβ 1−5merからAβ 1−9merから作成した結合物は、マウスにおいて斑を認識する免疫応答を誘発するのに十分であり、かつ、リンカーの存在は不可欠でないと結論づけられる。以下の結論をこの試験から引き出し得る。すなわち、(a)ペプチド結合物の全部が、結合されていないCRM197対照(示されない)に比較して、担体タンパク質CRM197に対する高力価の(high titered)抗血清ないし同等若しくはわずかにより高いレベルを誘導した。(b)GAGACリンカーを伴う結合物は、リンカーを伴わない結合物に比較して免疫原性若しくは機能性を高めなかった。(c)免疫原性データおよびPDAPP脳組織染色(機能的抗体の初期の指標)は、Aβ 1−5merおよびAβ 1−7mer結合物がさらなる開発のための好ましい免疫原であるようであったことを示す。
6匹のサルの群が、STIMULONTM QS−21、ミョウバン若しくはRC529 SE製剤のいずれかでアジュバント添加した(adjuvanted)30μgの7mer結合物(全結合物)を第0、29および58日に受領した。包含された追加の群は、ミョウバン(Al(OH)3)若しくはRC529 SEのいずれかを伴う30μgの5mer結合物、および陽性対照としてSTIMULONTM QS−21を伴う300μgのAβであった。陽性対照は2週間ごとに免疫した。第36および64日に抗Aβ抗体力価を測定した(図7〜9)。第36日に、STIMULONTM QS−21、ミョウバンおよびRC529 SEを伴う7mer/CRM結合物が、それぞれ10110、13330および17090のGMT力価を導き出した(図7)。対照的に、Aβ 1−42およびSTIMULONTM QS−21は、75および300μgの用量レベルでそれぞれ223および1734のGMTを導き出した。Aβ 5mer結合物は、ミョウバンとともに2134およびRC529 SEとともに15980の力価を導き出した。第64日、すなわちSTIMULONTM QS−21若しくはRC−529 SEいずれかを伴う結合物の3用量の後に、第二の投与後よりも実質的により高い力価を誘導した(GMT 7mer/RC−529 SEについて69910;Aβ 5mer/RC−529 SEについて21640、およびAβ 7mer/STIMULONTM QS−21について30310)(図8)。ミョウバンを伴う結合物は、第三の免疫化後に第二の免疫化後に比較して低下した力価を導き出した。Aβ 7mer結合物はAβ 5mer結合物に比較してより良好な応答を導き出したようである。サルにおいて、RC−529 SE若しくはSTIMULONTM QS−21でAβ 7mer結合物にアジュバント添加することは最高の応答を導き出した(図9)。ミョウバンを伴うAβ 7mer結合物に対する応答は中程度であり、そしてSTIMULONTM QS−21を伴う300μgのAβ 1−42のものに同様であった。
数種の方法が担体上で複数の抗原部位を生成させるのに利用可能である。前の実施例においては、各抗原部位が、規定される結合およびキャッピング化学により担体に個別に結合される。本実施例では、Aβ1−7merのタンデム反復の固相合成により複数の抗原部位を構築する。あるいは、これらのタンデム反復を、別の場所に記述されるとおりリシン核による連結を伴い若しくは伴わずにT細胞エピトープと結合し得る。これらの多価抗原ペプチドを、担体タンパク質への結合のための付加的なシステイニル残基を伴い合成した。カルボキシル端に1個の付加的なシステイニル残基をもつ1個の反復単位(1−7)、3個の反復単位(1−7)3および5個の反復単位(1−7)5を含有するペプチドを合成した。これらのペプチドを、それらのC末端システイン残基により、ブロモアセチル化したCRMに一夜共有結合した。該反応は、表8に概説されるとおり添加したペプチド:CRM比を伴い、pH9.0〜9.2で実施した。ペプチドと反応しなかったブロモアセチル基をN−アセチルシステアミンでキャッピングした。これらのロットは、それぞれ、CRMに結合された1個の単一コピー、3個のタンデムコピーおよび5個のタンデムコピーのAβ1−7ペプチドを含有する結合物を表す。表8はサンプルの特性を簡潔に概説する。
本実施例は、6種の異なる担体タンパク質を使用した結合物の免疫原性を比較する。Aβ1−7の酢酸塩を、ブロモアセチル化した担体にpH9で1:1の重量比で添加した。Aβ1−7/rC5apを除く全結合物をN−アセチルシステアミンでキャッピングした。代替担体の全部は、CRM(ジフテリアトキソイド)、組換えC5aペプチダーゼ(rC5ap;B群連鎖球菌(Streptococcus agalactiae)からクローン化された、D130AおよびS512突然変異を包含する)、ORF 1224、1264、2452(全部化膿性連鎖球菌(Streptococcus pyogenes)からクローン化された)、ならびにT367、T858(それぞれクラミジア肺炎病原体(Chlamydia pneumoniae)からクローン化された)を包含する組換え細菌タンパク質である。使用される担体の概要は表12に見出される。これらの担体への各Aβ 1−7結合物の結合およびキャッピングの程度を表13に提示する。
免疫化の結果
本試験の各群の力価の幾何平均を表14に列挙する。第3週で、アジュバントの存在に関係なく、Aβ1−7/rC5apは、化膿性連鎖球菌(Streptococcus pyogenes)ORF 1224、1664、2452、若しくはクラミジア肺炎病原体(Chlamydia pneumoniae)ORF T367およびT858を伴い製造した対応する結合物よりも有意により高い抗Aβ力価を誘導した。アジュバントの非存在下の第3週で、Aβ1−7/rC5apはまた、Aβ1−7/T858を除く全部の他の結合物よりも免疫原性でもあった。Al(OH)3を伴わないT858結合物は、アジュバントを伴わないORF1224、ORF1664、ORF2452およびCRM結合物よりも高力価を誘導した。Aβ1−7/CRMより有意により少なく免疫原性であった唯一の結合物はAβ1−7/T367であった(p<0.00002)。T367担体は第3および6週の双方でアジュバントを伴い若しくは伴わずに乏しく機能した。第6週で、水酸化アルミニウムを伴うrC5ap結合物は、Aβ1−7/ORF2452を除く全部の他の結合物よりも免疫原性であった(p<0.04)。アジュバントの非存在下で、Aβ1−7/rC5apおよびAβ1−7/T858の双方が、ORF1224、ORF1664若しくはT367結合物よりも有意により高い力価を誘導した。水酸化アルミニウムを伴わないAβ1−7/CRMは、Aβ1−7/ORF1664若しくはAβ1−7/T367いずれよりも高力価を誘導した。
I.活性化
融解したCRM197(8mL、7.48mg/mLで59.84mg)を、5mg/mLまでの濃度にするように0.1Mホウ酸緩衝液(pH9、3.968mL)に溶解した。該溶液を氷浴中で0〜5℃に冷却した。ブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミド(59.9mg)(Aldrich−Sigma)をDMF(100μL)(Aldrich−Sigma)に溶解し、そしてCRM197の溶液に一滴ずつ添加した。ブロモ酢酸N−ヒドロキシスクシンイミドの添加に際して沈殿物が観察された。pHを確認した場合、それはpH6に低下した。反応混合物のpHを、より多くの0.1Mホウ酸緩衝液を添加することによりpH9に戻した。反応混合物をその後、穏やかに旋回させながら4℃で1時間攪拌した。混合物を、YM−10セントリプレップ遠心濃縮を使用して精製かつ濃縮し、そしてSephadex G−25上で溶離液として10mMホウ酸を使用して再精製した。ブラッドフォード試薬に対し陽性の画分を合わせ、そしてセントリプレップYM−10を使用して濃縮した。ブロモアセチル化の程度をブラッドフォードアッセイ(直線的)により測定した。濃度は5.36mg/mLであることが見出された(30mgを生じた)。最終濃度をその後5mg/mLになるように調節し、そして5%ショ糖中でさらなる使用まで冷凍庫中で保存した。
II.結合
各結合物について、融解したブロモアセチル化したCRM197を使用した。ペプチドをホウ酸緩衝液に溶解した(125mlの0.1Mホウ酸緩衝液中2.5mg)。わずかな不溶性が、AβペプチドKLVFFAEDC(配列番号45)、CLVFFAEDV(配列番号47)、CKLVFFAED(配列番号48)およびLVFFAEDC(配列番号50)で観察された。ブロモアセチル化されたCRM197(5mg/mL)をペプチド溶液/懸濁液で処理した。混合物中のペプチドおよびタンパク質の比は1:2であった。濁りが、ペプチドKLVFFAEDC(配列番号45)、CLVFFAEDV(配列番号47)、CKLVFFAED(配列番号48)およびKLVFFAEDC(配列番号45)を含む結合物の混合物中で観察された。該混合物をその後pHについて確認し(pH9)、そしてゆっくり旋回させながら4℃で一夜インキュベートした。混合物の最終濃度をインキュベーション前に3mg/mLにした。ペプチドCLVFFAEDV(配列番号47)およびLVFFAEDC(配列番号50)を含む結合物の混合物の濁りはインキュベーション後に消失した。しかしながら、KLVFFAEDC(配列番号45)およびCKLVFFAED(配列番号48)はなおわずかに濁っていた。可溶性の擬似タンパク質結合物もまた、システアミンで1:1(w/w)の比で調製した。合成したペプチドは約95%純度を伴いBIOSOURCEから得た。
オクタマー:
LVFFAEDVC(配列番号44)
KLVFFAEDC(配列番号45)
VFFAEDVGC(配列番号43)
CLVFFAEDV(配列番号47)
CKLVFFAED(配列番号48)
CVFFAEDVG(配列番号46)
ヘプタマー:
VFFAEDVC(配列番号49)
LVFFAEDC(配列番号50)
III.タンパク質上の未反応のリシン基のキャッピング:
未反応のリシンを、N−アセチルシステアミン(CMCA;Aldrich−Sigma)で1/1(w/w)の比で暗所で旋回させながら4℃で4時間キャッピングした。未反応のペプチドおよびキャッピング試薬を、PBS緩衝液(2L)に対するSlide−A−Lyzerカセット(MWカットオフ10,000)(Pierce)を使用する一夜(13時間)の透析により結合物から除去した。緩衝液交換および透析を2回行った(2×14時間)。わずかな不溶性がペプチドKLVFFAEDC(配列番号45)およびCKLVFFAED(配列番号48)を含む結合物中で観察された。全部の結合物をその後、保存剤中4℃で冷蔵庫中で保存した。
IV.タンパク質担体の特徴付け:
MALDI−TOF MSを使用して、ブロモアセチル化されたCRM197の質量および擬似結合物N−アセチルシステアミン−CRM197の質量を測定した。
(59941.46−58590.29)/122=11
式中;CRM197のMwは58624.29である
ブロモアセチル化CRM197のMwは59941.46である
ブロモ酢酸のMwは122である。
(61143−59941)/119=10
式中;ブロモアセチル化CRM197のMwは59941.46である
擬似結合物のMwは61143である
N−アセチルシステアミンのMwは119である
(10/11)×100=90
V.トリス−トリシンプレキャストゲルを用いるSDS−PAGEウエスタンブロット分析によるペプチド−タンパク質結合物の特徴付け:
タンパク質−ペプチド結合物をウエスタンブロットにより分析した。レーンは:マーカー(レーン1);L−28375 24/01(レーン2);L−28375 24/02(レーン3);L−28375 24/03(レーン4);L−28375 24/04(レーン5);L−28375 24/05(レーン6);L−28375 24/06(レーン7)L−28375 24/07(レーン8);L−28375 24/08(レーン9);L−28375 24/09(擬似)(レーン10);およびBrAcCRM197(レーン11)である。マウスからのペプチド特異的モノクローナル抗体(248−6H9−806 Aβ 17−28)を一次抗体(抗血清)として使用した(3000倍希釈が最良であることが見出された)。ヤギ抗マウスIgG(H+L)−HRPが二次抗体(1000倍希釈)であった。全部の結合物が、擬似結合物および活性化されたCRM197を除き、一次抗体により認識されたことが観察された。(図10を参照されたい。)
タンパク質濃度
結合物サンプルのタンパク質濃度をPierce BCAアッセイにより測定した。(表15を参照されたい。)
アミノ酸分析
アミノ酸分析を実施して結合の程度を決定した。結合のT程度は、結合物中で見出されるCMCA(カルボキシメチルシステアミン)残基に基づき計算した。CMCAは、ペプチドとの結合後に未反応の活性化された部位をキャッピングするのに使用した。(表15を参照されたい。)
非近交系Swiss Websterマウスを、それぞれCRM197に若しくはAβ1−7CRM197と結合させたVFFAEDVG−C(配列番号43)、LVFFAEDV−C(配列番号44)、KLVFFAED−C(配列番号45)、C−VFFAEDVG(配列番号46)、C−LVFFAEDV(配列番号47)、C−KLVFFAED(配列番号48)、VFFAEDV−C(配列番号49)、LVFFAED−C(配列番号50)(全部アジュバントRC 529 SEとともに処方した)で免疫した。1群あたり10動物の9群を、試験の開始時(第0週)およびその後第4週にAβペプチド結合物の1種で皮下に免疫した。血清を、免疫化の前しかし同一日に収集した。
近交系Balb/cマウスにおけるAβペプチド結合物の免疫原性試験
近交系Balb/cマウスを先行する段落でのとおり免疫したが、しかし第12週に結合物およびアジュバントで追加免疫もまたした。
結果
双方の試験から血清を、Aβ13−28ペプチド特異的IgG抗体力価の分析のため収集している。Balb/cマウスからの血清もまた、分析のため、第12週の追加免疫の1日前およびその1週後に収集する。実施例11で使用した動物からの脾細胞を、Aβ1−42にわたるペプチド、完全長のAβ1−42、CRM197若しくはポリクローナル活性化物質の重なり合うプールでの刺激に対しin vitroで応答するそれらの潜在能力について評価する。分析はインターロイキン4および5ならびにインターフェロン−γについてのElispotの読み出しから構成される。完了時に、Aβペプチド結合物を上述されたとおりかつ実施例6に記述されたとおり評価する。
PSAPPマウスを、VFFAEDVG−C(配列番号43)、LVFFAEDV−C(配列番号44)、KLVFFAED−C(配列番号45)、C−VFFAEDVG(配列番号46)、C−LVFFAEDV(配列番号47)、C−KLVFFAED(配列番号48)、VFFAEDV−C(配列番号49)、LVFFAED−C(配列番号50)で免疫する。PSAPPマウス(変異体APPおよびPS1導入遺伝子を過剰発現する二重トランスジェニックマウス(PSAPP))はHolcombら(1998)Nature Medicine 4:97−11に記述されている。
PDAPPマウスにおけるAβペプチド結合物の免疫原性試験
PDAPPマウスを、VFFAEDVG−C(配列番号43)、LVFFAEDV−C(配列番号44)、KLVFFAED−C(配列番号45)、C−VFFAEDVG(配列番号46)、C−LVFFAEDV(配列番号47)、C−KLVFFAED(配列番号48)、VFFAEDV−C(配列番号49)、LVFFAED−C(配列番号50)で免疫する。PDAPPマウスは変異体のヒトAPP(APPV71F)を発現し、そして若齢でアルツハイマー病を発症する(Bardら(2000)Nature Medicine 6:916−919;Masliah Eら(1996)J Neurosci.15;16(18):5795−811)。
結果
双方の試験からの血清を、Aβ13−28ペプチド特異的IgG抗体力価の分析のため収集する。完了時に、Aβペプチド結合物を、上述されたとおりかつ実施例6および11に記述されたとおり、ならびに状況恐怖条件付け(contextual fear conditioning)(CFC)アッセイで評価することができる。
Claims (29)
- 担体タンパク質に共有結合されたペプチド免疫原を含んでなる免疫原性結合物であって、式:
Xdは、担体タンパク質のアミノ酸残基の誘導体化された官能基であり、
Pは、担体タンパク質のアミノ酸残基の誘導体化官能基にペプチド免疫原のアミノ酸残基の反応性基を介して共有結合されたAβフラグメントを含むペプチド免疫原であり、
Rは、担体タンパク質のアミノ酸残基の誘導体化官能基に共有結合されるキャッピング分子であり、それにより担体を用いない別の方法で生じないペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発する能力を保持するように担体タンパク質の官能性が保たれており、
nは0より大きく38以下の整数であり、および
pは0より大きく38以下の整数である、
を有する、上記の免疫原性結合物。 - 担体タンパク質がCRM197である、請求項1に記載の免疫原性結合物。
- Aβフラグメントが、Aβ(配列番号:21)の残基1−3、1−4、1−5、1−6、1−7、1−9、1−10、1−11、1−12、1−16、1−28、3−6、3−7、13−28、15−24、16−22、16−23、17−23、17−24、18−24、18−25、17−28、25−35、33−42、35−40および35−42よりなる群から選択される、請求項1に記載の免疫原性結合物。
- ペプチド免疫原がさらに末端システイン残基を含み、ペプチド免疫原が担体のアミノ残基の誘導体化官能基に末端システイン残基を介して共有結合される、請求項1に記載の免疫原性結合物。
- 末端システイン残基がAβフラグメントのカルボキシ末端に位置する、請求項4に記載の免疫原性結合物。
- 末端システイン残基がAβフラグメントのアミノ末端に位置する、請求項4に記載の免疫原性結合物。
- AβフラグメントがAβ(配列番号:21)の残基1−7である、請求項5に記載の免疫原性結合物。
- AβフラグメントがAβ(配列番号:21)の残基16−23である、請求項5に記載の免疫原性結合物。
- キャッピング分子がアミノ基、ヒドロキシル基、システアミノ基、N−アセチルシステアミノ基およびエタノールアミノ基からなる群より選択される、請求項1に記載の免疫原性結合物。
- キャッピング分子がN−アセチルシステアミノ基である、請求項9に記載の免疫原性結合物。
- nが5以上であり25以下の整数である、請求項1に記載の免疫原性結合物。
- nが12以上であり20以下の整数である、請求項11に記載の免疫原性結合物。
- 担体タンパク質がCRM 197 であり、nが12以上であり15以下の整数である、請求項7に記載の免疫原性結合物。
- キャッピング分子がN−アセチルシステアミノ基である、請求項13に記載の免疫原性結合物。
- 担体タンパク質がCRM 197 であり、nが12以上であり15以下の整数である、請求項8に記載の免疫原性結合物。
- キャッピング分子がN−アセチルシステアミノ基である、請求項15に記載の免疫原性結合物。
- 式:
式中、CはCRM 197 であり
X d は、CRM 197 の誘導体化されたリシン残基であり、
Pは、Aβ(配列番号:21)の残基1−7及びC末端システイン残基を含むペプチド免疫原であって、C末端システイン残基を介して誘導体化リシン残基にペプチド免疫原が共有結合されており、
Rは、CRM 197 の誘導体化リシン残基に共有結合されN−アセチルシステアミノ基を含むキャッピング分子であり、それにより担体を用いない別の方法では生じないペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発する能力を保持するように担体タンパク質の官能性が保たれており、
nは0より大きく38以下の整数であり、および
pは0より大きく38以下の整数である、
免疫原性結合物。 - nが5以上であり25以下の整数である、請求項17に記載の免疫原性結合物。
- nが12以上であり15以下の整数である、請求項18に記載の免疫原性結合物。
- nが12である、請求項19に記載の免疫原性結合物。
- nが14である、請求項19に記載の免疫原性結合物。
- 前記ペプチド免疫原がDAEFRHD−C(配列番号:2)である、請求項19に記載の免疫原性結合物。
- 式:
式中、CはCRM 197 であり
X d は、CRM 197 の誘導体化されたリシン残基であり、
Pは、Aβ(配列番号:21)の残基16−23及びC末端システイン残基を含むペプチド免疫原であって、C末端システイン残基を介して誘導体化リシン残基にペプチド免疫原が共有結合されており、
Rは、CRM 197 の誘導体化リシン残基に共有結合されN−アセチルシステアミノ基を含むキャッピング分子であり、それにより担体を用いない別の方法では生じないペプチド免疫原に対する所望の免疫応答を誘発する能力を保持するように担体タンパク質の官能性が保たれており、
nは0より大きく38以下の整数であり、および
pは0より大きく38以下の整数である、
免疫原性結合物。 - nが5以上であり25以下の整数である、請求項23に記載の免疫原性結合物。
- nが12以上であり15以下の整数である、請求項24に記載の免疫原性結合物。
- 前記ペプチド免疫原がKLVFFAED−C(配列番号:45)である、請求項25に記載の免疫原性結合物。
- 1種若しくはそれ以上の製薬学的に許容できる賦形剤、希釈剤および/若しくはアジュバントと一緒に、請求項1〜26のいずれか1項に記載の免疫原性結合物を含んでなる、免疫原性組成物。
- 1種若しくはそれ以上のアジュバントが、GM−CSF、529 SE、IL−12、リン酸アルミニウム、水酸化アルミニウム、結核菌(Mycobacterium tuberculosis)、百日咳菌(Bordetella pertussis)、細菌リポ多糖、リン酸アミノアルキルグルコサミン化合物、MPLTM(3−O−脱アシル化モノホスホリルリピドA)、ポリペプチド、Quil A、STIMULONTM QS−21、百日咳トキシン(PT)、大腸菌(E.coli)熱不安定性トキシン(LT)、IL−1α、IL−1β、IL−2、IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、IL−8、IL−10、IL−13、IL−14、IL−15、IL−16、IL−17、IL−18、インターフェロン−α、インターフェロン−β、インターフェロン−γ、G−CSF、TNF−αおよびTNF−βよりなる群から選択される、請求項27に記載の免疫原性組成物。
- 担体タンパク質が該担体タンパク質に共有結合されたペプチドリンカーをさらに含み、かつ、官能基が該ペプチドリンカーの置換基を含む請求項1に記載の免疫原性結合物。
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