JP2014531455A - ワクチン療法 - Google Patents
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Abstract
Description
a.頭部基にホスファチジルグリセロール、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、L-α-ホスファチジルイノシトール-4-リン酸、またはホスファチジン酸を有するジアシル-リン脂質;
b.頭部基にホスファチジルグリセロール、ホスファチジルセリン、またはホスファチジン酸を有するリゾ-リン脂質;および
c.カルジオリピン、ジリゾ-カルジオリピン、モノリゾ-カルジオリピン。
a.頭部基に3-トリメチルアンモニウム-プロパン、3-ジメチルアンモニウム-プロパン、3-エチルホスホコリン、または3-ホスファチジルエタノールアミンを有するジアシル-リン脂質;および
b.D-エリスロ-スフィンゴシン、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド、N-[1-(2,3-ジミリスチルオキシ)プロピル]-N,N-ジメチル-N-(2-ヒドロキシエチル)アンモニウムブロミド、N,N,N-トリメチル-2-ビス[(1-オキソ-9-オクタデセニル)オキシ]-(Z,Z)-1-プロパナミニウムメチルサルフェートまたは3β-[N-(N',N'-ジメチルアミノエタン)-カルバモイル]コレステロール塩酸塩。
a.飽和または不飽和でありえ、
b.(CH2)nの長さが異なり、ここでnは3〜24であり、かつ対称的または非対称的に置換されうる。
a.頭部基にホスファチジルグリセロール、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、L-α-ホスファチジルイノシトール-4-リン酸、またはホスファチジン酸を有するジアシル-リン脂質;
b.頭部基にホスファチジルグリセロール、ホスファチジルセリン、またはホスファチジン酸を有するリゾ-リン脂質;および
c.カルジオリピン、ジリゾ-カルジオリピン、モノリゾ-カルジオリピン。
a.頭部基に3-トリメチルアンモニウム-プロパン、3-ジメチルアンモニウム-プロパン、3-エチルホスホコリン、または3-ホスファチジル-エタノールアミンを有するジアシル-リン脂質;
b.D-エリスロ-スフィンゴシン、ジメチルジオクタデシルアンモニウムブロミド、N-[1-(2,3-ジミリスチルオキシ)プロピル]-N,N-ジメチル-N-(2-ヒドロキシエチル)アンモニウムブロミド、N,N,N-トリメチル-2-ビス[(1-オキソ-9-オクタデセニル)オキシ]-(Z,Z)-1-プロパナミニウムメチルサルフェートまたは3β-[N-(N',N'-ジメチルアミノエタン)-カルバモイル]コレステロール塩酸塩。
a.飽和または不飽和でありえ、
b.(CH2)nの長さが異なり、ここでnは3〜24であり、かつ対称的または非対称的に置換されうる。
1.1 動物
DSマウスモデルとして知られるTs65Dnマウス(Davisson et al., 1993)(n=30)および同齢の対照2Nマウス(n=40)を用いた。開始日では、用いたマウスは5ヶ月齢であった。試験(免疫および行動学試験)終了時、マウスは9ヶ月齢であった。それゆえ、屠殺時に採取した試料は全て9ヶ月齢のマウスから得られたものである。
a ペプチド配列は3文字コードで表す;Palは、パルミトイル化残基を示す;
b ヒトとマウスAβ1-15配列のアミノ酸3個の相違に下線を引き、図1に示す。
全てのマウスに、ACI-DS-01(51.2μg/用量のPal 1〜15、テトラパルミトイル化Aβペプチド1〜15)または空リポソームワクチン200 μlによる皮下(s.c.)免疫を行った。全体で6回の注射を1、14、28、42、56、70および110日目に行った。注射と同じ日に、尾静脈からの採血を、-1日目は初回ワクチン注射の直前(試験前採血)、56日目(4回目の注射後14日目)、および屠殺時の110日目(6回目の注射後40日目)に行った。マウスを、9ヶ月齢での試験終了時に屠殺して、脳を採取した。
Aβ1〜42特異的IgG応答をELISAによって決定した。簡単に説明すると、プレートを10 μg/mlマウスAβ1〜42(Bachem H5966、ロット:1013710、1028321、または1033165)またはマウスAβ1〜40(Bachem H5638、ロット:1013645)によって4℃で終夜コーティングした。PBS-0.05%Tween 20で洗浄して、1%BSAでブロックした後、血漿の連続希釈液をプレートに添加して37℃で2時間インキュベートした。抗体である抗Aβ4G8(Covance SIG-39220、ロット:08EC00905、1 mg/ml、4000倍希釈)、および同じACI-DS-01バッチの3回注射によって免疫したC57BL/6JOlaHsd(Harlan)の血清を、陽性対照として用いた。洗浄後、プレートをアルカリホスファターゼ(AP)コンジュゲート抗マウスIgG抗体(Jackson Immunoresearch West Grove, PA, USA、カタログ番号 115-055-164、ロット87821、バイアルを1/4000倍希釈)と共に37℃で2時間インキュベートした。最後の洗浄後、プレートをAP基質(pNPP)と共に2時間半インキュベートして、ELISAプレートリーダーを用いて405 nmで読み取った。結果を吸光度(O.D.)として表記する。
マウスを全て、約8ヶ月齢で始まる同じシリーズの行動学試験に供した。各マウスを、試験の前7日間と試験毎の合間に3日間、1日2回10分間扱った。表記の日(最後の免疫に従う)に試験を以下の順で行った:運動活動(11日目に開始)、24時間後の新規物体認知作業(18日目に開始)、T迷路(25日目に開始)、および文脈的恐怖条件付け試験(34日目に開始)。行動学試験は全て、午前7時から午後7時までの昼光サイクル時に室温(22℃)で行った。試験日には、マウスをケージごと昼光相の期間中同じ実験室に2時間入れて慣れさせた。各試験の際の不安の指標として、糞便の個数および尿滴数も同様に記録した。先の試行による嗅覚の手がかりを最小限にするために、各動物の滞在後、各装置を10%エタノールによって徹底的に清浄した。動物の扱いおよび行動学試験は全て、盲検的に行われ、マウスを扱う試験者に遺伝子型および処置は明かされなかった。
自発的運動活動を、Plexiglas活動チャンバー(モデルMED-OFA-MS;Med Associates)(27.9×27.9×20 cm)および活動モニターソフトウェア(Activity Monitor、バージョン4.3.6)を用いてモニターした。Belichenko et al.,(Belichenko et al., 2009;Belichenko et al., 2007)において記述されたように、マウスを明るい室内光の条件下でチャンバーの中央に置いて、3回の異なる試行において活動を10分間モニターした。総距離、速度、総活動時間、総活動カウント、および垂直方向の活動に関して平均値を決定した。
本発明者らは、Bevins and Besheerのプロトコール(Bevins and Besheer, 2006;O'Doherty et al., 2005)を用いた。これは、学習と24時間後の記憶を試験するために、1つの環境で2つの試料物体に関する認知記憶を試験するための1回試行の非見本合わせ学習作業である。試験前に、マウスをほの暗い室内光の条件で黒色のPlexiglasチャンバー(31×24×20 cm)の中で2日間連続して10分間慣れさせた。物体認知作業の際の8ヶ月齢のマウスの活動をビデオカメラによって記録した。最初に、既に記述されたように(Bevins and Besheer, 2006;O'Doherty et al., 2005)2つの同一の物体をチャンバーに置いた。試料物体とは反対側の壁までの中心地点にマウスを置いた。物体を10分間探索させた後、マウスをコロニーに24時間戻した。物体認知を試験するために、1つの既知物体と1つの新規物体とをチャンバーに置いて、マウスを再度チャンバーに3分間戻して物体を探索させた。物体認知を1回の試行で測定した。ビデオ記録による直接観察を用いてデータを決定した。結果は:1)新規および既知の両方の試料物体の総探索時間の平均値、および2)識別比(新規物体に費やした時間/両方の物体に費やした総時間)であった。
8ヶ月齢のマウスを用いた。本発明者らは、海馬の機能を評価するために、改変Deacon and Rawlinsプロトコール(Deacon and Rawlins, 2006)およびT迷路における連続的交替作業を用いた。記述のように(Deacon and Rawlins, 2006)、迷路は、開始アームの入口に追加のスライドドアがある不透明なアクリルガラス(Plexiglas)製であった。試験の際には、開始アームの入口に、閉じたスライドドアに背中を向けてマウスを置いた。全てのドアを開くと、マウスは開始アームの中に走り出し、左右いずれかのゴールアームを選択した。マウスの4つ全ての脚が1つのゴールアームに入った後、もう1つのゴールアームに向かうスライドドアを5秒間閉じ、その後全てのスライドドアを再度開いて、マウスを開始アームに戻した。マウスが10回の交替を終了するまでT迷路活動をモニターした。この技法を3連続日繰り返して、全体で30回の試行を行った。自発的交替スコアを左右および右左交替数として定義して、試行の際の起こりうる交替総数の百分率として表記した。交替スコアおよび費やした時間の両方に関する結果の平均値を得た。
恐怖依存的学習および想起を評価するために、文脈および手がかりのある恐怖条件付けを行った。Coulbourn機器(Whitehall, PA, USA)のチャンバーを用いて試験を行った。最初の日に、ベースラインを記録するために動物をチャンバー(文脈A)に3分間入れた後、5回の音とショックの組み合わせを行った。各条件付け/非条件付け刺激の組み合わせにおいて、音(70 dB、2 kHz、20秒間)の後にショック(0.5 mA、2秒間)を与えた。2日目に、新規チャンバー(文脈B;新しい部屋、新しい嗅覚環境、新しい床の感触、壁の青色のプラスチックインサート、追加の青色の光源、および視覚的手がかり)を手がかり試験のために用いた。音刺激前に3分間の期間をおいた後、ショックを行わない3回の音刺激を、3分間の試験期間のあいだ動物に与えた。実験の最後の日に、いかなる条件付けまたは非条件付け刺激も行わずに(Saxe et al., 2006)文脈Aの中にマウスを5分間入れた。FreezeFrameソフトウェア(Actimetrics, Evanston, IL)によって測定した場合に、少なくとも0.75秒間動きが完全にないこと、としてすくみを定義した。各期間におけるすくみの百分率を記録した。
全ての行動学試験後、マウスをペントバルビタールナトリウム(200 mg/kg、i.p.)(Abbott Laboratories)で深く麻酔して、体重を測定し、0.9%塩化ナトリウム(10 ml)によって1分間心臓を還流した後、4%パラホルムアルデヒドのpH 7.4の0.1 M PBS(100 ml)溶液で10分間還流した。還流後、脳を直ちに摘出した。脳(嗅球、皮質、海馬、小脳、脳幹、およびC1〜C2の頚部脊髄を含む)の重量を記録した。その後、脳をさらに使用するまで固定液の中に入れた。
脳切片を、0.3%Triton X-100を有する5%脱脂乳の0.1 M PBS溶液と共にプレインキュベートした。次に切片を、1:500倍希釈したウサギ抗ウシグリア線維酸性タンパク質(GFAP)抗体(DAKO, Glostrup, Denmark)と共に、または1:5000倍希釈したポリクローナルラット抗CD45(Pharmingen)と共に4℃で終夜インキュベートした。以下のインキュベーション(各1時間、室温で)を行った:ビオチニル化ロバ抗ウサギ二次抗体(1:200倍希釈;Jackson ImmunoResearch Labs, West Grove, PA, USA)、およびフルオレセインイソチオシアネート(FITC)-コンジュゲートストレプトアビジン(1:500倍希釈、Jackson ImmunoResearch Labs)。上記のインキュベーションのあいだにPBSによるすすぎ(3回、各20分間)を行った。切片を顕微鏡のスライドガラスに載せて、90%グリセロールのpH 7.4の0.1 Mリン酸緩衝液溶液を用いてカバーガラスを載せた。抗体染色の特異性の対照とするために、選択した切片を、一次抗体を含まない同じプロトコールに供した。免疫蛍光は対照切片では観察されなかった。Nikon Eclipse E800蛍光顕微鏡に取り付けたRadiance 2000(Bio-Rad, Hertfordshire, UK)共焦点顕微鏡で、切片を走査、試験した。レーザーはアルゴン/クリプトン混合ガスレーザーであり、FITCの励起波長は488nm(λ)であった。LaserSharpソフトウェア(Bio-Rad)を用いて、画像を獲得するための最適な条件を確立した。GFAP-免疫反応性(IR)またはCD45-IRの共焦点イメージングのための最適な条件は、以下のとおりであった:レンズは20倍の対物レンズ(Nikon;Plan Apo 20×/0.75)であった;レーザー出力は10%または20%であった;ゲインは34.7であった;オフセットは0.0であった;ズーム倍率は3であった;走査速度は500ライン/秒であった;各光学切片を3回走査して、Kalmanフィルタリングを用いてノイズを低減させた;画像サイズは512×512ピクセルであり、ピクセルサイズは0.48×0.48μmであった。
データを、平均値±平均値の標準偏差(SD)または標準誤差(SEM)として示す。統計分析は、両側の対応のないt検定によって行った。p<0.05の確率は有意であると見なされた。
SupraAntigen(商標)方法論(WO 2005/081872、WO 2007/068411)に従って、モノホスホリルリピッドA(MPLA)と共にリポソームの中に埋め込まれたテトラパルミトイル化マウスAβ1〜15ペプチド(Palm1〜15):
を用いて、リポソームワクチンACI-DS-01を調製した(図1)。ACI-DS-01の6回用量をTs65Dn雄性マウスおよび同齢の対照マウス(2N)の皮下に2週間に1回投与した。4回目の投与後に採取した血漿の分析により、Ts65Dn群および2N群の両方の免疫マウスにおいて、マウスAβ40またはAβ42に対する強いIgG力価が示された(図2Aおよび2B)。ワクチン誘導抗体は、最後の免疫後40日目でも上昇したままであった。抗原を有しない空リポソームで免疫したマウスでは力価は検出されなかった(図2Aおよび2B)。このように、ACI-DS-01は、DSマウスモデルにおいてAβ自己寛容を破綻させることができた。
Ts65Dnマウスは、記憶障害および異常活動などのDS認知異常の多くの特徴を示す。ACI-DS-01ワクチンの効能を調べるために、一組の行動学試験を最後の免疫後2週間目に行った。マウスは以下の順で試験を行った;オープンフィールド、物体認知、T迷路、および恐怖条件付け。
Aβレベルに及ぼすACI-DS-01誘導抗体の効果に関する疑問に対処するために、海馬、皮質、および小脳のタンパク質抽出物を用いてELISAを行った。これらの領域はいずれも、ACI-DS-01による処置後に、Aβ40に関してもAβ42に関してもAβレベルに有意差を示さなかった(図4A)。皮質および小脳におけるAβ-40/42比が、より高い認知指数(RI)と有意に相関したことは注目に値する(図4Bおよび4C、皮質;Pearson r相関係数=-0.3248、P=0.003、小脳;Pearson r相関係数=-0.4127、P=0.009)。これらの結果は、Aβ-40/42が認知欠損の原因でありうることを示唆している。さらなる分析から、血漿中のAβ42が検出不能であることが示された。対照的に、血漿中のAβ40レベルの増加は、ACI-DS-01処置Ts65Dnマウスの群において測定された抗AβIgGのより高い値に関連するように思われた(図4D;Pearson r相関係数=0.51、P=0.09)。その上、RIは、抗AβIgG力価と相関した(図4E;Pearson r相関係数=0.3154、P=0.007)。
前脳基底核(BFCN)におけるコリン作動性ニューロンの大きさ、数、および吸光度を分析した。BFCNレベルの2つの切片をChAT抗体(Millipore、カタログ番号AB144P、ロット番号2010060)によって染色した。内側中隔(MS)領域を、定量的評価のために、共焦点顕微鏡において走査した。以下のパラメータを計算した:1)MSにおけるChAT+細胞密度;2)ChAT+の個々のニューロンの面積、および3)個々のニューロンにおけるChATの吸光度の平均値。内側中隔におけるコリン作動性ニューロンの画像を得て、ImageJソフトウェアを用いてニューロン数を計数し、染色の吸光度および細胞体領域の輪郭を明らかにした。
結果:内側中隔におけるChAT+細胞数および吸光度は、空のワクチンで処置した2NおよびTs65Dnマウスにおいて類似していた(図9Aおよび9B)。
ACI-DS-01による免疫が安全性の懸念を誘導しうるか否かを決定するために、マウスの体重、全般的観察、および炎症マーカーを記録した。処置前、Ts65Dnマウスは2Nマウスより有意に低い体重を有した(ANOVA、Tukey事後検定;p=0.001)。免疫によって体重は有意に変化しなかった(図5A)。脳の重量は、4つ全ての群のマウスにおいて類似していた(図5A)。免疫組織化学の結果は、グリア線維酸性タンパク質(GFAP)陽性大グリア細胞またはCD45陽性ミクログリア細胞の数に差がないことを示した。得られた結果は、皮質および海馬において類似していた(図5)。これらの結果は、ACI-DS-01ワクチン接種が炎症反応を誘導しなかったことを示している。
7.1 ACI-DS-02およびACI-DS-03ワクチンによる免疫
試験開始時4±0.3月齢である雄性のTs65Dnマウス(Jax laboratory B6EiC3Sn.BLiA-Ts(1716)65Dn/DnJ)に、ACI-DS-02(ジパルミトイル化Aβペプチド22-39の用量あたり18.6 μg)200μl(n=6 Ts65Dnマウス)、またはPBS(n=4 Ts65Dnマウス)による皮下免疫を行った。1日目、14日目、28日目および42日目に全体で4回の注射を行った。尾静脈からの採血を各免疫の1週間後、すなわち7日目、21日目、35日目、および49日目に行った。
Aβ1-42特異的IgG応答をELISAによって決定した。簡単に説明すると、プレートを10 μg/mLヒトAβ1-42(Bachem H1368、ロット:1000255)によって4℃で終夜コーティングした。PBS-0.05%ツイーン20で洗浄し、1%BSAでブロックした後、血漿の連続希釈液をプレートに加えて、37℃で2時間インキュベートした。抗体である抗Aβ6E10(Covance SIG-39320の6E10、ロット:09GC01254バイアルa、1 mg/ml 1000倍希釈)を陽性対照として用いた。洗浄後、プレートを、アルカリホスファターゼ(AP)コンジュゲート抗マウスIgG抗体(Jackson Immunoresearch West Grove, PA, USA, Cat. N°115-055-164、ロット87821、バイアルを1/4000倍希釈)と共に37℃で2時間インキュベートした。最後の洗浄後、プレートをAP基質(pNPP)と共に2時間半インキュベートして、ELISAプレートリーダーを用いて405 nmで読み取った。結果を吸光度(O.D.)として表記する。
マウスを全て、約6±0.3月齢で始まる同じシリーズの行動学試験に供した。行動学試験は全て、午前7:00から午後7:00までの昼光サイクル時に、室温(22℃)で行った。
試験前に、マウスを灰色のポリプロピレンチャンバー(直径40 cm、高さ32.4 cm)の中で、物体を入れずに薄暗い室内光条件で10分間慣れさせた。翌日、学習試行の際に、2つの同一の物体(レゴキューブまたは黒色のガラスボトル)を迷路の片側に提示した(10分間)。学習後3時間目に記憶保持試験を行って、同一の物体の1つを迷路の反対側に移動させて、10分間提示した。試行期間は全て、ビデオ追跡ソフトウェアEthovision XT 8.0によって記録した。測定したパラメータは、新規および周知の両方の試料物体の平均総探索時間、および識別比(新規物体に費やした時間/両方の物体に費やした総時間)を含んだ。
水迷路は、長期記憶を分析するために行った。馴化試験として、最初の日に、目に見える手がかりとなるプラットフォーム(直径11 cm、高さ37 cm)を有する水迷路(直径165 cm、高さ64 cm)にマウスを供した。この試験は、試行間の間隔を30分あけて各120秒間の5回の試行からなった。最後の6回目の試行は、目に見える手がかりとなるプラットフォームなしで行った。翌日、マウスを、プラットフォームを隠して4日間の訓練に供した。各日、マウスに試行間の間隔を30分あけて各120秒間の試行を6回行った。試行の開始時、マウスを、4つの開始点(北東、南東、南西、および北西)のうち1つに、タンクの端部に対面させて水の中に入れた。開始点は試行ごとに変化させるが、逃避プラットフォーム(西の四分位)は実験を通して固定する。マウスがプラットフォームを120秒以内に発見すれば、プラットフォームに15秒間留まらせる。120秒以内にプラットフォームを発見することができなければ、試行を中止して、マウスをプラットフォームに優しく誘導して、15秒間放置する。測定したパラメータは、迷路の異なる部分で費やした逃避潜時、迷路の各四分位に入った回数、迷路の各四分位へと移動した距離(cm)、標的領域までの距離(cm)、各四分位での滞在時間の割合(%)、探索試行の際に標的プラットフォームより広い輪の中での滞在時間の割合(%)、探索試行の際に標的プラットフォームより広い輪を通過する回数、および速度(cm/秒)を含んだ。
恐怖依存的学習および想起を評価するために、文脈および手がかりのある恐怖条件付けを行った。試験は、Med Associates Instrumentsのチャンバーを用いて行った。最初の日に、ベースライン記録のためにマウスをチャンバー(文脈A)に2分間入れた後、4回の音とショックの組み合わせ(条件刺激、CS)を行った。ショックである30秒間の音刺激(5000 Hz、80 dB)は、各条件/非条件刺激の組み合わせにおいて2秒間の足ショック(0.7 mA)と同時に終了した。2日目に、マウスを、いかなる条件刺激または非条件刺激も行わずに文脈Aの中に5分間入れた。実験の最後の日に、新規チャンバー(文脈B;新しい部屋、新しい嗅覚環境、新しい床の構造、壁に青色のプラスチックインサート、外部青色光源、および目に見える手がかり)を手がかり試験のために用いた。2分間の音刺激前の期間の後、ショックを与えない3回の音刺激を8分間の試験期間のあいだに動物に提示した。すくみ反応は、少なくとも0.75秒間動きが完全にないこと、として定義された。各期間におけるすくみ反応の割合を報告した。
DSのヒトの脳切片を、ACI-DS-02ワクチンで免疫したマウスから得られた血清中のワクチン由来抗Aβ抗体によって染色した。ACI-DS-02ワクチンで免疫したC57BL/6マウス5匹の血清プールを、免疫染色技法のために100倍希釈で用いた。簡単に説明すると、年齢59歳のDSのヒトの10μm凍結切片を4%パラホルムアルデヒド(Sigma-Aldrich, 252549)中で20分間インキュベートした。70%ギ酸(Merck, 1.00264.1000)および10%Triton X-100(Sigma, 234729)と共に各15分間インキュベートした後、切片をPBST(PBSプラス0.5%Triton X-100)中で10%正常ヤギ血清(NGS, Invitrogen, 6210072)で2時間ブロックした。10%NGSを有するPBST中で一次抗体(免疫したマウスの血清)とのインキュベーションを終夜行った。翌日、PBSAですすいだ後、切片をAlexa Fluor 488コンジュゲートAffiniPureヤギ抗マウスIgG(Jackson ImmunoResearch, 115-545-146)と共にインキュベートした。切片をProLong Gold(Invitrogen, P36931)上に載せた。陽性対照として、一次抗体である抗Aβ6E10(Covance, SIG-39320、AβのN-末端に対する抗Aβ、10000倍希釈を用いる)を用いた。PBSで免疫したC57BL/6マウスの血清を陰性対照として用いた。ACI-24で免疫したC57BL/6マウスの血清を対照として用いた。ACI-24ワクチンは、ACI-DS-01ワクチンに対応するが、ACI-24において用いられた抗原がヒトAβ1-15配列であるのに対し、ACI-DS-01ワクチンはマウスAβ1-15配列を抗原として含む点が異なる(それらの2つの抗原におけるアミノ酸3個の相違に関しては図1を参照されたい)。
データは、平均値±標準偏差(SD)または平均値の標準誤差(SEM)として示す。統計分析を、prism pad graphバージョン5を用いて対応のないt-検定、両側またはANOVAによって行った。確率p<0.05は有意であると見なされた。
ACI-DS-02の4回用量をTs65Dn雄性マウスおよび同齢の対照マウス2Nに2週間に1回皮下投与した。各投与後7日目に収集した血漿の分析から、Ts65Dnおよび2N群の両方の免疫マウスにおいてヒトAβ42に対するIgG力価が示された(データは示していない)。ACI-DS-02で免疫したTs65DnマウスのIgG力価は、PBSで免疫したマウスとは21日目および35日目に有意に差があった(一元配置ANOVA、Tukeyの事後検定、それぞれ、P=0.01および0.05)。このように、ACI-DS-02は、DSマウスモデルにおいてAβ自己寛容を破綻することができた。
免疫染色実験から、ACI-DS-02由来抗体がDSのヒトの脳試料におけるアミロイドプラークに結合することが示された(図6)。染色は、市販の抗アミロイドβ抗体である6E10およびACI-24由来抗体と類似していた。ACI-24ワクチンは、ACI-DS-01ワクチンに対応するが、ACI-24において用いられる抗原がヒトAβ1-15配列であるのに対し、ACI-DS-01ワクチンは抗原としてマウスAβ1-15を含む点が異なる(それらの2つの抗原におけるアミノ酸3個の相違に関しては図1を参照されたい)。PBSで免疫したマウスの血清と共に切片をインキュベートした場合には、染色は観察されなかった。この結果は、ACI-DS-02ワクチンによる免疫が、DSのヒトの脳におけるアミロイドプラークを認識する抗体を誘導することを示している。
条件付け試験において、ACI-DS-02ワクチンで免疫したTs65Dnマウスは、各条件刺激を与えた後にすくみ反応のレベルがより高い傾向を示した(図7A)。すくみ反応の増強は、3回目の条件刺激(CS3)に限ってPBS免疫Ts65Dn群とは有意に異なった(二元配置ANOVA、時間、P<0.0001、ワクチンに関する傾向(P=0.09)、Bonferroni事後検定はCS3でP=0.05を示した)。
ACI-DS-03の4回用量を、Ts65Dn雄性マウスおよび同齢の対照マウス2Nに2週間に1回皮下投与した。各投与後7日目に収集した血漿の分析により、Ts65Dnおよび2N群の両方の免疫マウスにおいてヒトAβ42に対するIgG力価が示された(データは示していない)。ACI-DS-03で免疫したTs65DnマウスのIgG力価は、PBSで免疫したマウスとは21日目に有意差があった(一元配置ANOVA、Tukey事後検定、P=0.05)。このように、ACI-DS-03は、DSマウスモデルにおいてAβ自己寛容を破綻することができた。
免疫染色実験から、ACI-DS-03由来抗体が、DSのヒトの脳におけるアミロイドプラークに結合することが示された(図8)。染色は、市販の抗アミロイドβ抗体である6E10およびACI-24由来抗体について得られた染色と類似していた。ACI-24ワクチンは、ACI-DS-01ワクチンに対応するが、ACI-24において用いられる抗原がヒトAβ1-15配列であるのに対し、ACI-DS-01ワクチンは抗原としてマウスAβ1-15を含む点が異なる(それらの2つの抗原におけるアミノ酸3個の相違に関しては図1を参照されたい)。PBSで免疫したマウスの血清と共に切片をインキュベートした場合には、染色は観察されなかった。この結果は、ACI-DS-03ワクチンによる免疫が、DSのヒトの脳におけるアミロイドプラークを認識する抗体を誘導することを示している。
リポソーム試料を、ZnSe結晶上で乾燥させた15μlからのD2O水和薄膜として分析した。液体窒素冷却水銀-カドミウム-テルライド検出器を備え、BioATR-II装置に連結されたBRUKER TENSOR 27 FTIR分光計によって、スペクトルを得た。各スペクトルに関して、バックグラウンドとしてきれいなATR結晶を用いて2 cm-1の解像度で2000回のスキャンを収集し、平均してFT処理した。周波数折り返しの上限および下限は4000 cm-1および900 cm-1であった。試料室には絶えず乾燥空気を送り、測定は全て25℃で行った。次に、獲得したスペクトルをアミドI領域で切って、ベースラインで補正して標識した。広いアミドIバンドの重なり合う成分を明らかにするために、ナローイング技術[二次微分およびフーリエセルフデコンボリューション(FSD)]を適用した。主要な二次コンフォメーションの定性的割付を、D2O中で以下の周波数範囲を用いて主な検出バンドから行った:β-シート1613-1637 cm-1、ランダムコイル1637-1646 cm-1、α-ヘリックス/ループ1646-1662 cm-1、β-ターン1662-1682 cm-1、逆平行β-シート1682-1698 cm-1。個々の成分に関する最初の値として二次微分およびFSDスペクトルにおいて同定されたバンドを用い、OPUSソフトウェアにおける対応するアプリケーションによる曲線適合によって、定量的分析を行った。成分のピークは、ガウス-ローレンツ混合関数形状であると推定した。周波数を固定して、ピーク幅、強度、および形状を変化させることによって、反復プロセスを行い、次に第二の反復プロセスに関して、周波数もまた変化させた。異なる成分の吸収能が等モルであると仮定して、各二次構造バンドの総アミドI領域の%面積を計算することによって二次構造推定を行った。
Claims (69)
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常の処置および/または軽減および/または予防において用いるための、アミロイドタンパク質またはアミロイド様タンパク質に由来する抗原性ペプチド断片。
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常の予防において用いるための請求項1記載の抗原性ペプチド断片。
- 記憶および/または認知の障害が、脳の海馬および/または前頭前皮質および/または嗅内皮質を起源とする、請求項1および2記載の抗原性ペプチド断片。
- 記憶および/または認知の障害が、
認知記憶障害、ならびに/または
文脈連想記憶障害、ならびに/または
連合学習障害、ならびに/または
事実および事象の宣言的記憶障害、ならびに/または
エピソード記憶障害、ならびに/または
失語症などの言語機能障害、ならびに/または
物品の誤配置、見知らぬ地形および見慣れた地形の案内困難などの視覚空間障害、ならびに/または
感情鈍麻、抑制解除、社会的隔離、判断力低下、計画困難および/または抽象的推論不良などの実行機能の減少、ならびに/または
人格の変化、ならびに/または
感情鈍麻、激越、および精神障害などの感情の変化、ならびに/または
失行、ならびに/または
学習した運動課題の実行障害、ならびに/または
錐体路および錐体外路の所見を含む他の神経学的徴候ならびにミオクローヌスまたは痙攣である、請求項1から3に記載の抗原性ペプチド断片。 - アミロイドタンパク質またはアミロイド様タンパク質が、アミロイドβタンパク質に由来する抗原性ペプチド断片である、請求項1から4に記載の抗原性ペプチド断片。
- ダウン症候群を有する対象の脳において、アミロイドタンパク質またはアミロイド様タンパク質に関連するプラークがまだ発生していない、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド断片。
- 対象の脳において、Aβ関連プラークが発生している、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- プラークがAβ関連プラークである、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常が、AD様の記憶および/または認知の障害または異常である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド断片。
- ダウン症候群を有する対象が若年から中年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象が中年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象が若年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象が小児の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 対象が、年齢65歳未満、特に60歳未満、特に55歳未満、特に50歳未満、特に45歳未満、特に40歳未満、特に35歳未満、特に30歳未満、特に25歳未満、特に20歳未満、特に15歳未満、特に10歳未満、特に5歳未満、特に3歳未満である、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 処置した対象において、処置による
a. 記憶の改善および/または回復がもたらされる;および/または
b. 認知能の保持の増加または完全な回復がもたらされる
前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。 - 処置が、髄膜脳炎および微小出血などの望ましくない副作用を誘発しない、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 脳におけるAβ関連プラークの発生を予防するのに用いるための前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 脳におけるAβ関連プラークの量を減少させるのに用いるための前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 海馬および/または前頭前皮質および/または嗅内皮質におけるAβ関連プラークの量を減少させるのに用いるための請求項16または17に記載の抗原性ペプチド。
- アミロイドタンパク質またはアミロイド様タンパク質が、プリオンタンパク質、タウタンパク質、α-シヌクレイン、ハンチンチン、およびアミロイドβからなる群より選択される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβ抗原性ペプチド断片が、AβペプチドのN-末端部分、特にN-末端Aβ1-15断片に対応する、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβ抗原性ペプチド断片が、Aβペプチドの中央部分、特にAβ14-29断片に対応する、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβ抗原性ペプチド断片が、AβペプチドのC-末端部分、特にC-末端Aβ22-35断片に対応する、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβペプチド抗原がリポソームで再構成されて提示される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβペプチド抗原が、リポソーム担体/アジュバントの脂質二重層への挿入を容易にする親油性または疎水性部分によって修飾される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβペプチド抗原が、ペプチド分子のN-および/またはC-末端に結合するパルミチン酸によって修飾される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβペプチド抗原が、ペプチド分子のN-および/またはC-末端に結合する4つのパルミチン酸によって修飾される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- Aβペプチド抗原が、ペプチド分子のN-および/またはC-末端に結合する2つのパルミチン酸によって修飾される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- リポソームの表面上に反復するアレイとして提示される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 担体またはリポソーム表面上の高度に反復するアレイが、担体分子あたり少なくとも10個の反復する抗原性単位を含む、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 再構成された抗原性ペプチドの少なくとも75%、特に少なくとも80%、特に少なくとも90%、しかし特に100%が、その疎水性部分を介して脂質二重層に挿入されてリポソーム表面上に提示される、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常の処置および/または軽減および/または予防において用いるための、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドの治療的有効量を、薬学的に許容される担体および/または賦形剤と共に含む組成物。
- アジュバントを含む、前記請求項のいずれか一項記載の組成物。
- ダウン症候群を有する対象における障害または異常を増強または回復するのに用いるための、前記請求項のいずれか一項記載の組成物。
- AβペプチドのN-末端部分に由来する、特にアミノ酸残基Aβ1-15、Aβ1-16、Aβ1-17、Aβ1-18、Aβ1-19、Aβ1-20、Aβ1-22、またはAβ1-23の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- AβペプチドのN-末端部分に由来する、特にアミノ酸残基の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 残基Aβ1-15からなる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- AβペプチドのC-末端部分に由来する、特にアミノ酸残基Aβ20-36、Aβ20-40、Aβ20-42、Aβ21-36、Aβ21-40、Aβ21-42、Aβ22-36、Aβ22-40、またはAβ22-42の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- 残基Aβ22-35からなる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド。
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常を処置および/または軽減および/または予防する方法であって、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物を該対象に投与する段階を含む、方法。
- 障害または異常が、脳の海馬および/または前頭前皮質および/または嗅内皮質を起源とする、請求項40記載の方法。
- 障害または異常が、
認知記憶、ならびに/または
文脈連想記憶障害、ならびに/または
連合学習障害、ならびに/または
事実および事象の宣言的記憶障害、ならびに/または
エピソード記憶障害、ならびに/または
失語症などの言語機能障害、ならびに/または
物品の誤配置、見知らぬ地形および見慣れた地形の案内困難などの視覚空間障害、ならびに/または
感情鈍麻、抑制解除、社会的隔離、判断力低下、計画困難および/または抽象的推論不良などの実行機能の減少、ならびに/または
人格の変化、ならびに/または
感情鈍麻、激越、および精神障害などの感情の変化、ならびに/または
失行、ならびに/または
学習した運動課題の実行障害、ならびに/または
錐体路および錐体外路の所見を含む他の神経学的徴候ならびにミオクローヌスまたは痙攣に関連する、請求項40および41に記載の方法。 - ダウン症候群を有する対象における認知記憶を増強または回復する方法において用いるための抗原性ペプチドが、AβペプチドのN-末端部分に由来する、特に該ペプチドがアミノ酸残基Aβ1-15、Aβ1-16、Aβ1-17、Aβ1-18、Aβ1-19、Aβ1-20、Aβ1-22、またはAβ1-23の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれかに記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における認知記憶を増強または回復する方法において用いるための抗原性ペプチドが、AβペプチドのN-末端部分に由来する、特に該ペプチドがアミノ酸残基の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- 抗原性ペプチドがアミノ酸残基Aβ1-15からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における文脈連想記憶を増強または回復する方法において用いるための抗原性ペプチドが、AβペプチドのN-末端部分に由来する、特に該ペプチドがアミノ酸残基Aβ1-15、Aβ1-16、Aβ1-17、Aβ1-18、Aβ1-19、Aβ1-20、Aβ1-22、またはAβ1-23の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における連合学習を増強または回復する方法において用いるための抗原性ペプチドが、AβペプチドのN-末端部分に由来する、特に該ペプチドがアミノ酸残基Aβ1-15、Aβ1-16、Aβ1-17、Aβ1-18、Aβ1-19、Aβ1-20、Aβ1-22、またはAβ1-23の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における連合学習を増強または回復する方法において用いるための抗原性ペプチドが、AβペプチドのC-末端部分に由来する、特に該ペプチドがアミノ酸残基Aβ20-36、Aβ20-40、Aβ20-42、Aβ21-36、Aβ21-40、Aβ21-42、Aβ22-36、Aβ22-40、またはAβ22-42の全てまたは一部からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- 抗原性ペプチドがアミノ酸残基Aβ22-35からなる、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における認知能の保持を増加させるか、または認知能を完全に回復させるための、前記請求項のいずれか一項記載の方法であって、前記請求項のいずれかに記載の抗原性ペプチドまたは組成物を該対象に投与する段階を含む、方法。
- 対象の脳においてAβ関連プラークがまだ発生していない、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- 対象の脳においてAβ関連プラークが発生している、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象が若年から中年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象が中年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象が若年の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象が小児の対象である、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- 対象が、年齢65歳未満、特に60歳未満、特に55歳未満、特に50歳未満、特に45歳未満、特に40歳未満、特に35歳未満、特に30歳未満、特に25歳未満、特に20歳未満、特に15歳未満、特に10歳未満、特に5歳未満、特に3歳未満である、前記請求項のいずれか一項記載の方法。
- ダウン症候群を有する対象における記憶および/または認知の障害または異常を予防する方法であって、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物を該対象に投与する段階を含む、方法。
- ダウン症候群を有する対象における記憶の障害または異常を予防する方法であって、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物を該対象に投与する段階を含む、方法。
- ダウン症候群を有する対象の脳におけるプラークを減少させる方法であって、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物を該対象に投与する段階を含む、方法。
- 前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物が、脳の海馬および/または前頭前皮質および/または嗅内皮質におけるプラークを減少させる、請求項60記載の方法。
- プラークの減少により、
認知記憶に関する障害または異常、ならびに/または
文脈連想記憶障害、ならびに/または
連合学習障害、ならびに/または
事実および事象の宣言的記憶障害、ならびに/または
エピソード記憶障害、ならびに/または
失語症などの言語機能障害、ならびに/または
物品の誤配置、見知らぬ地形および見慣れた地形の案内困難などの視覚空間障害、ならびに/または
感情鈍麻、抑制解除、社会的隔離、判断力低下、計画困難および/または抽象的推論不良などの実行機能の減少、ならびに/または
人格の変化、ならびに/または
感情鈍麻、激越、および精神障害などの感情の変化、ならびに/または
失行、ならびに/または
学習した運動課題の実行障害、ならびに/または
錐体路および錐体外路の所見を含む他の神経学的徴候ならびにミオクローヌスまたは痙攣の、軽減および/または予防がもたらされる、請求項60および61に記載の方法。 - 神経変性を予防するために用いられる、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチド、組成物、および/または方法。
- ダウン症候群を有する対象におけるアミロイドタンパク質またはアミロイド様タンパク質に対する免疫応答を誘導する方法。
- 薬理学的に許容される担体または賦形剤および/またはアジュバントと共に、前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドまたは組成物を調合する段階を含む、ワクチンを産生する方法。
- 請求項65記載の方法によって得られるワクチンで免疫した動物から得ることができる抗体または抗体混合物。
- 前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドで免疫した動物から得ることができる抗体または抗体混合物。
- 前記請求項のいずれか一項記載の抗原性ペプチドで対象を免疫することによって産生される抗体。
- 前記請求項のいずれか一項記載の組成物で対象を免疫することによって産生される抗体。
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