[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

ES2334773T3 - Uso de inhibidores de il-18 para el tratamiento o prevencion de la sepsis. - Google Patents

Uso de inhibidores de il-18 para el tratamiento o prevencion de la sepsis. Download PDF

Info

Publication number
ES2334773T3
ES2334773T3 ES02736912T ES02736912T ES2334773T3 ES 2334773 T3 ES2334773 T3 ES 2334773T3 ES 02736912 T ES02736912 T ES 02736912T ES 02736912 T ES02736912 T ES 02736912T ES 2334773 T3 ES2334773 T3 ES 2334773T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
18bpa
sepsis
inhibitor
antibodies
cytokine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES02736912T
Other languages
English (en)
Inventor
Charles A. Dinarello
Giamila Fantuzzi
Soo-Hyun Kim
Leonid Reznikov
Menachem Rubinstein
Daniela Novick
Boris Schwartsburd
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Yeda Research and Development Co Ltd
Original Assignee
Yeda Research and Development Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Yeda Research and Development Co Ltd filed Critical Yeda Research and Development Co Ltd
Application granted granted Critical
Publication of ES2334773T3 publication Critical patent/ES2334773T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/21Interferons [IFN]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/24Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against cytokines, lymphokines or interferons
    • C07K16/244Interleukins [IL]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/177Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants
    • A61K38/1793Receptors; Cell surface antigens; Cell surface determinants for cytokines; for lymphokines; for interferons
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/20Interleukins [IL]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/21Interferons [IFN]
    • A61K38/212IFN-alpha
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/19Cytokines; Lymphokines; Interferons
    • A61K38/21Interferons [IFN]
    • A61K38/215IFN-beta
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/395Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum
    • A61K39/39533Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum against materials from animals
    • A61K39/3955Antibodies; Immunoglobulins; Immune serum, e.g. antilymphocytic serum against materials from animals against proteinaceous materials, e.g. enzymes, hormones, lymphokines
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P7/00Drugs for disorders of the blood or the extracellular fluid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/04Inotropic agents, i.e. stimulants of cardiac contraction; Drugs for heart failure
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
    • C07K16/28Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/2866Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants against receptors for cytokines, lymphokines, interferons
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/505Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising antibodies

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Hospice & Palliative Care (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

El uso de un inhibidor de IL-18 en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de disfunción cardíaca relacionada con sepsis, en donde el inhibidor se selecciona a partir de anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión a IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc.

Description

Uso de inhibidores de IL-18 para el tratamiento o prevención de la sepsis.
Campo de la invención
La siguiente solicitud reivindica los beneficios de la Solicitud Provisional de los EE.UU. Nº 60/291.463 presentada el 16 de mayo de 2001.
La presente invención se refiere al uso de inhibidores de IL-18 para el tratamiento y/o la prevención de la disfunción cardíaca relacionada con sepsis.
Antecedentes de la invención
En 1989 se detectó un factor inducido en el suero procedente de ratones infectados con mycobacterium bovis y expuestos a LPS. Este factor fue capaz de inducir interferón \gamma (IFN-\gamma) en cultivos de células de bazo de ratones normales en presencia de interleuquina-2 (IL-2) (Nakamura y col., 1989). Este factor no funcionó como un inductor directo de IFN-\gamma sino más bien como un co-estimulante junto con IL-2, anti-CD3 o mitógenos. Un intento por identificar mejor esta actividad de suero de ratón tratado con post-endotoxina reveló una proteína de 50-55 kDa aparentemente homogénea, asociada a la anterior actividad (Nakamura y col., 1993). Puesto que otras citoquinas pueden actuar como co-estimulantes para la producción de IFN-\gamma, el fallo de los anticuerpos neutralizantes de IL-1, IL-4, IL-5, IL-6 ó TNF en el bloqueo de la actividad en suero sugería que se trataba de un factor distinto. Los mismos autores documentaron que el co-estimulante inducido por endotoxina para la producción de IFN-\gamma estaba presente en extractos de hígado de ratones preacondicionados con P. acnes (Okamura y col., 1995). De acuerdo con este modelo experimental, la población de macrófagos hepáticos (células Kupffer) se expande, y por tanto una dosis baja de lipopolisacáridos bacterianos (LPS) se vuelve letal. Un tratamiento similar no es letal para ratones no preacondicionados. El factor, denominado factor inductor de IFN-\gamma (IGIF) y posteriormente designado como interleuquina-18 (IL-18), fue purificado hasta homogeneidad a partir de hígados de ratón tratados con P. acnes y se obtuvo una secuencia parcial de aminoácidos. Se usaron oligonucleótidos degenerados derivados de secuencias de aminoácidos de IL-18 purificada para clonar un ADNc de IL-18
murino (Okamura y col., 1995). La secuencia de ADNc humano para la IL-18 se publicó en 1996 (Ushio y col., 1996).
La interleuquina IL-18 (Tsutsui y col., 1996, Nakamura y col., 1993, Okamura y col., 1995, Ushio y col., 1996), comparte características estructurales con la familia de proteínas IL-1 (Bazan y col., 1996), que tiene un estructura de lámina de pliegue \beta diferente a la de la mayoría de las citoquinas, que exhiben una estructura de haz de cuatro hélices. De forma similar a la IL-1\beta, la IL-18 se sintetiza como un precursor biológicamente inactivo (proIL-18) y carece de péptido señal (Ushio y col., 1996). Los precursores de IL-1\beta e IL-18 son atacados por caspasa 1 (enzima convertidora de IL-1\beta, o ICE), que ataca a los precursores justo detrás de un residuo de ácido aspártico en la posición P1. Las citoquinas maduras resultantes son liberadas de la célula (Ghayur y col., 1997, y Gu y col., 1997), a pesar de la falta de péptido señal.
Se sabe que la IL-18 actúa como co-estimulante en la producción de citoquinas (IFN-\gamma, IL-2 y factor estimulante de colonia de granulocito-macrófagos) mediante células T colaboradoras tipo 1 (Th1) (Kohnoet y col., 1997) y también como co-estimulante para la citotoxicidad mediada por ligando mediante clones de células asesinas naturales murinas (Tsutsui y col., 1996).
La interleuquina-12 (IL-12) es una citoquinas inmunorreguladora producida mediante monocito/macrófagos y otras células presentadoras de antígenos. Es básica en la orquestación de inmunorrespuestas mediadas por células tanto innatas como adquiridas (Trinchieri, 1998). Consiste en un heterodímero compuesto de los productos ligados covalentemente de dos genes separados: una cadena pesada (p40) y una cadena ligera (p35). La producción de IL-12 se estimula en respuesta a determinadas bacterias, productos bacterianos, parásitos intracelulares y virus. Las siguientes funciones se han atribuido a IL-12: 1) es un potente inductor de IFN-\gamma a partir de células T y células asesinas naturales (NK), 2) es co-mitogénica para dichas células, 3) es crítica para el desarrollo de respuesta Th1 en la mayoría de los sistemas (conduciendo de este modo y de forma secundaria a aumentos en la producción de IFN-\gamma y TNF, a la activación de macrófagos, etc.), 4) potencia los linfocitos T citotóxicos y la citotoxicidad de células NK, y 5) es necesaria para respuestas de hipersensibilidad de tipo retardado. Se demostró que la producción de IL-12 en leucocitos esplénicos murinos aislados tratados con la cepa Cowan 1 de Staphylococcus aureus se veía suprimida por IFN-\alpha ó IFN-\beta (Karp y col., 2000).
Recientemente se ha publicado que la IL-12 está implicada en la patogénesis de enfermedades inflamatorias autoinmunes específicas de órgano tales como la esclerosis múltiple (MS) (Karp y col., 2000) y la enfermedad inflamatoria del intestino (IBD) (Blumberg y Strober, 2001, y Fiocchi, 1999), y por tanto es considerada como una diana potencial para fármacos en el tratamiento de estas afecciones.
La IL-18 y la IL-12 exhiben un marcado sinergismo en la inducción de IFN-\gamma en células T (Okamura y col., 1998). La investigaciones sobre el mecanismo de este sinergismo han revelado que la IL-12 regula al alza la expresión de ambas cadenas del receptor de IL-18 en células productoras de IFN-\gamma (Kim y col., 2001). Aunque la IL-12 y la IL-18 activan la inmunidad tanto innata como inducida, una producción excesiva mediante macrófagos activados puede inducir múltiples trastornos en órganos, incluyendo la malfunción del sistema inmune (Seki y col., 2000).
Las proteínas de unión de citoquina (receptores de citoquina solubles) normalmente son los dominios de unión de ligando extracelular de sus respectivos receptores de citoquina de superficie celular. Se producen mediante división alternativa o mediante ruptura proteolítica del receptor de superficie celular. Estos receptores solubles se han descrito en el pasado: por ejemplo, los receptores solubles para IL-6 e IFN-\gamma (Novick y col., 1989), TNF (Engelmann y col., 1989, y Engelmann y col., 1990), IL-1 e IL-4 (Maliszewski y col., 1990) e IFN-\alpha/\beta (Novick y col., 1994, Novick y col., 1992). Una proteína de unión de citoquina, denominada osteoprotegerina (OPG, también conocida como factor inhibidor de osteoclasto, OCIF), un miembro de la familia TNFR/Fas, parece ser el primer ejemplo de un receptor soluble que existe sólo como proteína secretada (Anderson y col., 1997, Simonet y col., 1997, Yasuda y col., 1998).
Se purificó mediante afinidad una proteína de unión de interleuquina-18 (IL-18BP) en una columna de IL-18, a partir de orina (Novick y col., 1999). La IL-18BP elimina la inducción de IL-18 de IFN-\gamma, y la activación de IL-18 de NF-kB in vitro. Además, la IL-18BP inhibe la inducción de IFN-\gamma en ratones inyectados con LPS. El gen de IL-18BP se localizó en el cromosoma humano 11, y no se pudo descubrir ningún exón que codifique para un dominio transmembrana en la secuencia genómica de 8,3 kb que comprende el gen de IL-18BP. Hasta la fecha se han descubierto cuatro isoformas de IL-18BP generada mediante división alternativa de ARNm en humanos. Se designaron como IL-18BP a, b, c y d, compartiendo todas ellas el mismo extremo N y diferenciándose en el extremo C (Novick y col., 1999). Estas isoformas varían en su capacidad para unirse a IL-18 (Kim y col., 2000). De las cuatro isoformas de IL-18BP humanas (hIL-18BP), se sabe que la a y la c tienen una capacidad de neutralización de IL-18. La isoforma de IL-18BP más abundante, la variante de división isoforma a, exhibe una elevada afinidad por la IL-18 con un rápido inicio y un lento decaimiento, y una constante de disociación (Kd) de aproximadamente 0,4 nM (Kim y col., 2000). La IL-18BP se expresa de forma constitutiva en el bazo, y pertenece a la superfamilia de las inmunoglobulinas. Los residuos implicados en la interacción de IL-18 con IL-18BP han sido descritos mediante el uso de modelización computerizada (Kim y col., 2000) y en base a la interacción entre la proteína similar IL-1\beta y la IL-1R de tipo I (Vigers y col., 1997). De acuerdo con el modelo de la IL-18 que se une a la IL-18BP, el residuo Glu de la posición 42 y el residuo Lys de la posición 89 de la IL-18 han sido propuestos como uniones con el Lys-130 y el Glu-114 de la IL-18BP, respectivamente (Kim y col., 2000).
La IL-18BP está presente constitutivamente en muchas células (Puren y col., 1999) y circula en humanos saludables (Urushihara y col., 2000), representando un fenómeno único en la biología de las citoquinas. Debido a la alta afinidad de la IL-18BP por la IL-18 (Kd = 0,4 nM) así como a la alta concentración de IL-18BP encontrada en circulación (un exceso molar de 20 sobre la IL-18), se ha especulado que la mayoría de las moléculas de IL-18, si no la totalidad, en circulación se unen a IL-18BP. Por tanto, la IL-18BP en circulación, que compite con los receptores de superficie celular por la IL-18, puede actuar como un antiinflamatorio natural y como una molécula inmunosupresora.
Como se ha mencionado, la IL-18 induce IFN-\gamma que a su vez, según se ha publicado recientemente, induce la generación de ARNm de IL-18BPa in vitro (Muhl y col., 2000). Por lo tanto, la IL-18BPa podría servir como señal de "apagado", finalizando la respuesta inflamatoria.
La IL-18BP es significativamente homóloga a una familia de proteínas codificada por varios virus de la Viruela (Novick y col., 1999, Xiang y Moss, 1999). La inhibición de IL-18 por dicha IL-18BP vírica putativa puede atenuar la respuesta inflamatoria antiviral de Th1.
El término síndrome de respuesta inflamatoria sistémica (SIRS) describe el síndrome clínico familiar de la sepsis, independiente de su causa. El SIRS puede ser el resultado de un trauma, pancreatitis, reacciones a fármacos, enfermedad autoinmune, y otros trastornos: cuando surge como respuesta a una infección, se dice que la sepsis está presente (Nathens y Marshall, 1996).
El choque séptico es la causa más común de muerte en las unidades de cuidados intensivos médicas y quirúrgicas (Astiz y Rackow, 1998). Los términos sepsis, sepsis severa y choque séptico se usan para identificar el continuo de la respuesta clínica frente a la infección. Los pacientes con sepsis presentan evidencias de infección y manifestaciones clínicas de inflamación. Los pacientes con sepsis severa desarrollan hipoperfusión con disfunción de órganos. El choque séptico se manifiesta mediante hipoperfusión e hipotensión persistente. La mortalidad oscila entre el 16% en pacientes con sepsis y el 40-60% en pacientes con choque séptico. La infección bacteriana es la causa más común de choque séptico. Las zonas más frecuentes de infección son los pulmones, el abdomen y el tracto urinario. Las terapias anti-inflamatorias generales tales como el uso de corticosteroides no han mostrado mejoría en la supervivencia de sepsis y choque séptico. Se han evaluado tres anticuerpos monoclonales específicos de endotoxina en ensayos clínicos y no han mejorado las tasas de supervivencia. Las terapias con antagonistas de factor de necrosis tumoral, interleuquina 1, bradiquinina, ibuprofeno y factor de activación de plaquetas, no mostraron mejoras en la supervivencia al choque séptico (Astiz y Rackow, 1998).
La sepsis está provocada, entre otras, por bacterias Gram-positivas, por ejemplo Staphylococcus epidermis. Se cree que los ácidos lipoteicoicos y los péptidoglicanos, que son los principales componentes de la pared celular de la especie Staphylococcus, son los inductores de la liberación de citoquinas en esta afección (Grupta y col., 1996, y Cleveland y col., 1996). Sin embargo, también se consideran otros componentes Gram-positivos como estimulantes de la síntesis de citoquinas (Henderson y col., 1996). Se cree que la producción de IL-1, TNF-\alpha e IFN-\gamma es el principal contribuyente a la patogénesis del choque séptico (Dinarello, 1996, y Okusawa y col., 1988). Además, se demostró que la quemoquina IL-18 es inducida por neutrófilos en respuesta a S. epidermidis (Hachicha y col., 1998). Los factores importantes en la regulación de la inducción de IL-1, TNF-\alpha e IFN-\gamma por S. epidermidis son la IL-18, la IL-12, la IL-1\beta y el TNF-\alpha. La IL-1\beta y el TNF-\alpha pueden considerarse como coestímulos para la producción de IFN-\gamma mediante linfocitos T de un modo similar a la IL-18. Estas dos citoquinas tienen una actividad coestimulante sobre la producción de IFN-\gamma en el contexto de la IL-12 o de estimulación bacteriana (Skeen y col., 1995, y Tripp y col., 1993).
Recientemente se ha publicado (Nakamura y col, 2000) que la administración concomitante de IL-18 e IL-12 a ratones da como resultado una elevada toxicidad similar a la encontrada en el choque séptico inducido por endotoxinas.
Se ha demostrado que los niveles de IL-18 son elevados en sueros procedentes de pacientes con sepsis (Endo y col., 2000), pero este aumento se correlacionó con los niveles de creatinina lo que sugiere que los niveles elevados de IL-18 pueden deberse a un fallo renal. En otro estudio (Grobmyer y col., 2000), los niveles de IL-18 en 9 sujetos con sepsis durante las primeras 96 horas después del ingreso hospitalario fueron elevados y no se correlacionaron con los niveles de creatinina.
Como es evidente a partir de lo anterior, la IL-18 es una interleuquina pleiotrópica que tiene funciones tanto potenciadores como atenuadoras de la inflamación. Por un lado potencia la producción de citoquinas proinflamatorias como el TNF-\alpha, promoviendo de este modo la inflamación. Por otro lado, induce la producción de óxido nítrico (NO), un inhibidor de caspasa-1, bloqueando así la maduración de la IL-1\beta, y posiblemente atenuando la inflamación. Este doble papel de la IL-18 cuestiona seriamente la eficacia de los inhibidores de IL-18 en el tratamiento de enfermedades inflamatorias. Además, debido a la implicación de una amplia variedad de diferentes citoquinas y quemoquinas en la regulación de la inflamación, no siempre se puede esperar obtener un efecto beneficioso bloqueando sólo uno de los mecanismos en un entramado de interacciones tan complicado.
Netea y col. (2000) publicaron que la administración de anticuerpos policlonales anti-IL-18 protegió a los ratones contra los efectos nocivos de LPS derivada de las especies de E. coli o de S. typhimurium probadas, lo que apoya el concepto de que la IL-18 tiene una función patogénica importante en la endotoxemia letal. Sin embargo, la incertidumbre respecto a la eficacia de una formulación potencial para el tratamiento basado en la administración de inhibidores de IL-18, se manifiesta en que los ratones afectados por IL-18 no son menos susceptibles a la sepsis que los animales no tratados (Sakao y col., 1999), y en que informes recientes sugieren que la actividad proinflamatoria de la IL-18 es esencial para albergar defensas contra infecciones graves (Nakanishi y col., 2001, y Foss y col., 2001).
Por tanto, existe una necesidad para proporcionar medios para tratar y/o prevenir la sepsis a pesar de las consideraciones anteriores en relación al uso de inhibidores de IL-18.
Resumen de la invención
La invención se refiere al uso de un inhibidor de IL-18 en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de sepsis relacionada con la disfunción cardíaca, en el que el inhibidor se selecciona a partir de anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión a IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc.
La proteína de unión a IL-18 usada de acuerdo con la invención es una IL-18BPa o una IL-18BPc, una proteína fusionada (por ejemplo, fusionada a Ig), un derivado funcional (por ejemplo, conjugada con PEG), una fracción activa o un derivado de la misma.
Los anticuerpos usados de acuerdo con la invención pueden ser anticuerpos específicos anti-IL-18 seleccionados entre anticuerpos quiméricos, humanizados y humanos.
Adicionalmente, la invención se refiere al uso de un inhibidor en la fabricación de un medicamento que comprende además un inhibidor de factor de necrosis tumoral \alpha, preferiblemente TNFRI o TNFRII solubles, y/o un inhibidor de IL-1\beta, preferiblemente antagonista de receptor de IL-I para administración simultánea, secuencial o separada.
En un aspecto, la invención proporciona el uso de un vector de expresión que comprende la secuencia codificadora de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre anticuerpos contra IL-18 y proteínas de unión de IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc, en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de la sepsis relacionada con la disfunción cardíaca, mediante por ejemplo terapia génica.
En otro aspecto, la invención proporciona el uso de un vector para inducir y/o potenciar la producción endógena de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre las proteínas de unión de IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc, en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de la sepsis relacionada con la disfunción cardíaca.
Breve descripción de las figuras
Figura 1: muestra la distribución de IL-18BPa en suero en individuos saludables. Se evalúan los sueros de individuos masculinos y femeninos saludables, con edades entre 20 y 60 años, para determinar la presencia de IL-18BPa mediante un ensayo específico ELISA (n=107).
Figura 2 A: muestra los niveles medios de IL-18 e IL-18BPa en pacientes con sepsis y en sujetos saludables. Se determinó la IL-18 y la IL-18BPa en suero en individuos saludables (véase la Figura 1) y en 198 muestras de 42 pacientes con sepsis inmediatamente tras el ingreso hospitalario y durante la hospitalización.
Figura 2 B: muestra la distribución de los niveles individuales de IL-18 e IL-18BPa de los sujetos saludables y de los pacientes descritos en la Figura 2 A. Los niveles medios en suero de IL-18 y de IL-18BPa en sujetos saludables se indican mediante una línea discontinua vertical y horizontal, respectivamente.
Figura 3: muestra una comparación entre la IL-18 total y libre en pacientes individuales con sepsis tras el ingreso hospitalario. El nivel de IL-18 libre (círculos rellenos) en suero se calculó en base a la concentración de IL-18 total (círculos huecos) e IL-18BPa, teniendo en cuenta una estequiometría de 1:1 entre la IL-18 y la IL-18BPa en un complejo, y una Kd calculada de 400 pM. Cada línea vertical une IL-18 total y libre en una muestra de suero individual.
Figura 4: muestra el efecto de IL-18BP sobre la producción de IFN-\gamma inducida por S. epidermidis en sangre entera. La sangre entera se estimuló sólo con S. epidermidis o con S. epidermidis e IL-18BP recombinante en las concentraciones indicadas. Después de 48 horas de incubación, el cultivo de sangre fue lisado y se midió el IFN-\gamma. Los resultados se expresan como porcentaje de inducción de IFN-\gamma por S. epidermidis. P < 0,01 vs. S. epidermidis sólo. Los datos representan la media \pm error estándar de la media (SEM) de seis experimentos. SEM representa la amplitud de la media de la muestra. SEM da una idea de la precisión de la media. SEM = SD/(raíz cuadrada del tamaño de la muestra). Los datos fueron analizados mediante el ensayo de Student pareado.
Figura 5: muestra el efecto inhibidor ejercido por la doble actividad de IL-18BPa y anticuerpos monoclonales anti-IL-12 sobre la producción de IFN-\gamma mediante sangre entera tratada con S. epidermidis. Se estimuló sangre entera con S. epidermidis en presencia o en ausencia de IL-18BPa (125 ng/mL), IL-12 Mab (2,5 \mug/mL), y ambos. Después de 48 horas de incubación, el cultivo sanguíneo se lisó y se midió el IFN-\gamma. Los datos se expresan como porcentaje de inducción de IFN-\gamma. P < 0,01 vs. S. epidermidis sólo. Los datos representan la media \pm error estándar de la media (SEM) de seis experimentos. SEM representa la amplitud de la media de la muestra. SEM da una idea de la precisión de la media. SEM = SD/(raíz cuadrada del tamaño de la muestra). Los datos fueron analizados mediante el ensayo de Student pareado.
Figura 6: muestra la cuantificación de IL-18BPa tal como refleja una curva ELISA estándar. Se diluyó en serie IL-18BPa humana recombinante y se sometió a ELISA tal como se describe en el ejemplo 3. Los datos muestran la absorbancia media \pm SE (desviación estándar) de 10 experimentos.
Figura 7: muestra el efecto inhibidor de IL-18 sobre la cuantificación de IL-18BPa a través del ensayo ELISA. Se muestra el porcentaje de inhibición de la señal.
Figura 8: muestra la reactividad cruzada inmunológica de las isoformas de IL-18BP. El ensayo ELISA de IL-18BP se llevó a cabo con todas las isoformas (a-d) de la IL-18BP. Se diluyeron en serie disoluciones (3,2 \mug/mL) de las isoformas de IL-18BP y se evaluaron en ELISA de IL-18BPa.
Figura 9: muestra el contenido de IL-18 en tejido de miocardio después de la administración de LPS. Los ratones fueron inyectados con LPS de E. coli (0,5 mg/Kg, intraperitonealmente). Se homogeneizaron los corazones a los tiempos indicados en el eje de las x. Se llevó a cabo ELISA para determinar el contenido miocardial de IL-18 (n=4-5 por grupo).
Figura 10: muestra el efecto de anticuerpos anti-IL-18 sobre la disfunción miocardial inducida por LPS. Los ratones fueron inyectados con vehículo (disolución salina inyectada intraperitonealmente n=8) o con LPS de E. coli (0,5 mg/Kg inyectados intraperitonealmente, n=8) y se determinó la presión desarrollada en el ventrículo izquierdo (LVDP) a las 6 horas mediante perfusión cardíaca aislada. En experimentos separados los ratones fueron pretratados con suero de conejo normal (NRS, n=5) o con anticuerpo anti-IL-18 (Anti-IL-18, n=8) 30 minutos antes del LPS.
Descripción detallada de la invención
La presente invención se refiere a la administración de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión de IL-18 IL-18BPa e IL-18BPc para prevenir o tratar la disfunción cardíaca relacionada con la sepsis, y que se basa en los descubrimientos descritos en los ejemplos. Se descubrió de acuerdo con la presente invención que los niveles de IL-18 efectiva (libre) en circulación son significativamente elevados en el suero de pacientes con sepsis en comparación con los individuos saludables, y que la inhibición de IL-18 causa una disminución en la inducción de IFN-\gamma por la bacteria Gram-positiva Staphylococcus epidermidis.
Además, el tratamiento de prevención de la disfunción cardíaca relacionada con la sepsis puede abordarse mediante la administración de un inhibidor de IL-18 en combinación de otros inhibidores de citoquina potencialmente capaces de aumentar su efecto.
La sepsis de acuerdo con la presente invención comprende SIRS, sepsis severa, choque séptico, choque endotóxico, etc., y puede estar provocada por bacterias Gram-positivas o Gram-negativas.
Los inhibidores de la acción de IL-18 pueden ser antagonistas de IL-18, por ejemplo IL-18BPa e IL-18BPc. Los antagonistas pueden ligarse a o secuestrar la propia molécula de IL-18 con una afinidad y una especificidad suficientes para neutralizar parcial o sustancialmente la IL-18 o el(los) centro(s) activo(s) de la IL-18 responsables de la unión de IL-18 a sus ligandos (por ejemplo, a sus receptores).
Los inhibidores de la acción de IL-18 también pueden ser anticuerpos de IL-18 tales como anticuerpos monoclonales.
La expresión "proteínas de unión de IL-18" se usa en la presente memoria como sinónimo de "IL-18BP". Comprende las proteínas IL-18BPa e IL-18BPc, de unión de IL-18. En particular, las isoformas humanas a y c de la IL-18BP son útiles de acuerdo con la presente invención. Las proteínas útiles de acuerdo con la presente invención pueden ser glicosiladas o no glicosiladas, pueden derivar de fuentes naturales, tales como orina, o pueden producirse de forma preferible de modo recombinante. La expresión recombinante puede llevarse a cabo en sistemas de expresión procarióticos como E. coli, o en sistemas de expresión eucarióticos, y preferiblemente de mamíferos.
La expresión "proteína fusionada" se refiere a un polipéptido que comprende una IL-18BPa o una IL-18BPc fusionada con otra proteína que, por ejemplo, tiene un tiempo de residencia extendido en los fluidos corporales. Por tanto, una IL-18BP puede estar fusionada con otra proteína, polipéptido o similar, por ejemplo una inmunoglobulina o un fragmento de la misma.
"Derivados funcionales" tal como se usa en la presente memoria cubre derivados de IL-18BPs y sus proteínas fusionadas, que pueden prepararse a partir de grupos funcionales que existen como cadenas laterales en los residuos o los grupos N- o C-terminales, por medios conocidos en la técnica, y que se incluyen en la invención siempre que sean farmacéuticamente aceptables, es decir, que no destruyan la actividad de la proteína que es sustancialmente similar a la actividad de IL-18BP y no confieran propiedades tóxicas a las composiciones que las contienen.
Estos derivados pueden, por ejemplo, incluir cadenas laterales de polietileno glicol (conjugadas a PEG), que pueden enmascarar los sitios antigénicos y extender la residencia de una IL-18BP o de una IL-18BP vírica en los fluidos corporales. Otros derivados incluyen ésteres alifáticos de los grupos carbonilos, amidas de los grupos carboxilos por reacción con amoniaco o con aminas primarias o secundarias, derivados de N-acilo de grupos amino libres de los residuos de aminoácido formados con restos acilo (por ejemplo, grupos alcanoilo o aroilo carbocíclico) o derivados de O-acilo de grupos hidroxilo libres (por ejemplo, el de los residuos de serilo o treonilo) formados con restos acilo.
Como "fracciones activas" de una IL-18BP y de proteínas fusionadas, la presente invención cubre cualquier fragmento o precursor de la cadena de polipéptido de la molécula de proteína solo o con moléculas asociadas o residuos ligados, por ejemplo, residuos de azúcares o de fosfato, o agregados de la molécula de proteína o de los residuos de azúcares por sí mismos, siempre que dicha fracción tenga una actividad sustancialmente similar a la IL-18BP.
Los derivados funcionales de IL-18BP pueden estar conjugados con polímeros con el objetivo de mejorar las propiedades de la proteína, tal como la estabilidad, la vida media, la biodisponibilidad, la tolerancia por el cuerpo humano, o la inmunogenicidad. Para alcanzar esta meta, la IL-18BP puede estar ligada, por ejemplo, a polietilenglicol (PEG). La conjugación a PEG puede llevarse a cabo empleando métodos conocidos descritos en el documento WO 92/13095, por ejemplo.
Por lo tanto, en una realización preferida de la presente invención, la IL-18BP está conjugada con PEG.
En otra realización preferida de la invención, el inhibidor de IL-18 es una proteína fusionada que comprende toda o parte de una proteína de unión de IL-18, que está fusionada a toda o parte de una inmunoglobulina. El especialista en la técnica entenderá que la proteína de fusión resultante retiene la actividad biológica de la IL-18BP, en particular la capacidad de unirse a IL-18. La fusión puede ser directa o a través de un péptido puente corto que puede tener una longitud de 1 a 3 residuos de aminoácido o más, por ejemplo una longitud de 13 residuos de aminoácido. Dicho puente puede ser un tripéptido de la secuencia E-F-M (Glu-Phe-Met), por ejemplo, o una secuencia puente de 13 aminoácidos que comprende Glu-Phe-Gly-Ala-Gly-Leu-Val-Leu-Gly-Gly-Gln-Phe-Met introducida entre la secuencia de IL-18BP y la secuencia de inmunoglobulina. La proteína de fusión resultante presenta propiedades mejoradas, tales como un mayor tiempo de residencia en fluidos corporales (vida media), una actividad específica incrementada, un nivel de expresión aumentado, o se facilita la purificación de la proteína de fusión.
La IL-18BP puede estar fusionada a la región constante de una molécula de Ig. Preferiblemente, está fusionada a regiones de cadenas pesadas, como los dominios CH2 y CH3 de la IgG1 humana, por ejemplo. La generación de proteínas de fusión específicas que comprenden IL-18BP y una porción de una inmunoglobulina se describen en el Ejemplo 11 del documento WP99/09063, por ejemplo. Otras isoformas de las moléculas de Ig también son adecuadas para la generación de proteínas de fusión de acuerdo con la presente invención, isoformas tales como IgG_{2} ó IgG_{4}, u otras clases de Ig, como la IgM o la IgA, por ejemplo. Las proteínas de fusión pueden ser monoméricas o multiméricas, hetero- u homomultiméricas.
El inhibidor de IL-18 puede ser un anticuerpo específico anti-IL-18. Los anticuerpos anti-IL-18 pueden ser policlonales o monoclonales, quiméricos, humanizados, o incluso completamente humanos. Los anticuerpos recombinantes y los fragmentos de los mismos se caracterizan por la elevada afinidad de unión a IL-18 in vivo y por la baja toxicidad. Los anticuerpos que pueden usarse en la invención se caracterizan por su capacidad para tratar pacientes durante un periodo suficiente para que tengan una buena, si no excelente, regresión o alivio de la afección patogénica o de cualquier síntoma o grupo de síntomas relacionados a una afección patogénica, y una baja toxicidad.
\newpage
Se ha demostrado que la IL-18 aumenta en el curso de una disfunción cardíaca provocada por sepsis. La co-administración de LPS junto con un inhibidor de IL-18, tal como un anticuerpo policlonal anti-IL-18 neutralizante, protege frente a la disfunción miocardial inducida por LPS.
Los anticuerpos neutralizantes se cultivan fácilmente en animales tales como conejos, cabras o ratones mediante inmunización con IL-18. Los ratones inmunizados son particularmente útiles para proporcionar fuentes de células B para la fabricación de hibridomas, que a su vez se cultivan para producir grandes cantidades de anticuerpos monoclonales anti-IL-18.
Los anticuerpos quiméricos son moléculas de inmunoglobulina que se caracterizan por dos o más segmentos o porciones derivadas de diferentes especies animales. Generalmente, la región variable del anticuerpo quimérico deriva de un anticuerpo de mamífero no humano, tal como un anticuerpo monoclonal murino, y la región constante de inmunoglobulina deriva de una molécula de inmunoglobulina humana. Preferiblemente, ambas regiones y la combinación tienen una baja inmunogenicidad, según se determina de forma rutinaria (Elliot y col., 1994). Los anticuerpos humanizados son moléculas de inmunoglobulina creadas mediante técnicas de ingeniería genética en las que las regiones constantes murinas se reemplazan con contrapartidas humanas a la vez que se mantienen las regiones de unión de antígeno murinas. El anticuerpo quimérico ratón-humano resultante preferiblemente tiene una inmunogenicidad reducida y una farmacocinética mejorada en humanos (Knight y col., 1993).
Por tanto, en una realización preferida adicional, el anticuerpo de IL-18 es un anticuerpo de IL-18 humanizado. Los ejemplos preferidos de anticuerpos anti-IL-18 humanizados se describen en la Solicitud de Patente Europea EP 0 974 600, por ejemplo.
En otra realización preferida adicional, el anticuerpo de IL-18 es completamente humano. La tecnología para producir anticuerpos humanos se describe en detalle, por ejemplo, en los documentos WO 00/76310, WO 99/53049, US 6.162.963 ó AU 5336100. Los anticuerpos completamente humanos son preferiblemente anticuerpos recombinantes, producidos en animales transgénicos, por ejemplo, xenoratones, que comprenden todas o parte de las localizaciones de Ig humana funcionales.
Los inhibidores de polipéptido pueden producirse en sistemas recombinantes procarióticos o eucarióticos, o pueden codificarse en vectores diseñados para dianas génicas.
Se pueden usar otros inhibidores de citoquina junto con los inhibidores de IL-18 en el tratamiento de la disfunción cardíaca relacionada con la sepsis. Un inhibidor de IL-18 puede usarse en combinación con un inhibidor de IL-12.
Adicionalmente, se puede usar un inhibidor de IL-18 en combinación con inhibidores de otras citoquinas, de las que se sabe que desempeñan un papel importante en el choque séptico, por ejemplo la IL-1, el TNF, la IL-8, etc. (Dinarello, 1996, y Okusawa y col., 1988). Un ejemplo de inhibidor de IL-1 es el antagonista de receptor de IL-1, y para el TNF, la porción soluble de los receptores TNFR1 y TNFR2.
La expresión "inhibición de citoquinas" en el contexto de esta invención se refiere a cualquier molécula que modula la producción de la citoquina referida (por ejemplo, inhibidores de ICE en el caso de IL-1) y/o la acción de tal modo que su producción y/o acción se atenúa, reduce o se evita o bloquea de forma parcial, sustancial o total.
Un inhibidor de producción puede ser cualquier molécula que afecte de forma negativa a la síntesis, el procesado o la maduración de dicha citoquina. Los inhibidores, considerados de acuerdo con la invención, pueden ser por ejemplo supresores de expresión génica de la citoquina, ARNms que reduzcan o prevengan la trascripción del ARNm de la citoquina, o ribozimas que conduzcan a la degradación del ARNm, proteínas que afecte a un plegamiento correcto, o que eviten parcial o sustancialmente la secreción de dicha citoquina, proteasas que degraden la citoquina y similares.
Los antagonistas de citoquinas ejercen su actividad de diferentes modos. Los antagonistas pueden unirse o secuestrar a la propia molécula de citoquina con una afinidad y una especificidad suficientes, o neutralizar sustancialmente el epítopo o epítopos de citoquina responsables de la unión de receptor de citoquina (denominados a partir de aquí "antagonistas secuestradores"). Un antagonista secuestrador puede ser, por ejemplo, un anticuerpo dirigido contra la citoquina, una forma truncada del receptor de citoquina (por ejemplo, receptor soluble TNFRI y TNFRII en el caso de TNF), que comprende los dominios extracelulares del receptor o las porciones funcionales del mismo, etc. De forma alternativa, los antagonistas de citoquina pueden inhibir el mecanismo de señalización de citoquina activado por el receptor de superficie celular después de la unión de citoquina (denominados a partir de aquí "antagonistas de señalización"). Un antagonista también puede ser una molécula que se una al receptor pero que no sea capaz de disparar el mecanismo de señalización activado tras la unión de la citoquina a dicho receptor (por ejemplo, IL-Ra, Dinarello 1996). Todos los grupos de antagonistas son útiles, tanto solos como en conjunto, en combinación con un inhibidor de IL-18 para la terapia de la sepsis.
El inhibidor de IL-18 puede usarse simultáneamente, secuencialmente o de forma separada con respecto a los inhibidores de citoquina descritos anteriormente.
La invención se refiere además al uso de un vector de expresión que comprende la secuencia de codificación de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre los anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión de IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc, en la preparación de un medicamento para la prevención y/o el tratamiento de la disfunción cardíaca relacionada con la sepsis. Por tanto se usa una estrategia de terapia génica para el tratamiento y/o la prevención de la enfermedad. Así, de forma ventajosa, la expresión del inhibidor de IL-18 se producirá in situ, bloqueando de este modo de forma eficaz la IL-18 directamente en el(los) tejido(s) o células afectados por la enfermedad.
\global\parskip0.900000\baselineskip
El uso de un vector para inducir y/o potenciar la producción endógena de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre las proteínas de unión de IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc, en una célula normalmente silenciosa para la expresión de un inhibidor de IL-18, o que expresa cantidades del inhibidor que no son suficientes, también queda contemplado por la invención. El vector puede comprender secuencias reguladoras funcionales en las células deseadas para expresar el inhibidor o IL-18. Dichas secuencias reguladoras pueden ser promotores o potenciadores, por ejemplo. La secuencia reguladora puede introducirse a continuación en la localización correcta del genoma mediante recombinación homóloga, ligando de este modo de forma operativa la secuencia reguladora con el gen del cual se requiere que la expresión sea inducida o potenciada. La tecnología se denomina normalmente "activación génica endógena" (EGA), y se describe, por ejemplo, en el documento WO 91/09955.
La invención también comprende la administración de células modificadas genéticamente, capaces de producir un inhibidor para el tratamiento o la prevención de la disfunción cardíaca relacionada con la sepsis.
La definición de "farmacéuticamente aceptable" pretende abarcar cualquier vehículo que no interfiere con la eficacia de la actividad biológica del ingrediente activo, y que no es tóxico para el anfitrión al que se administra. Por ejemplo, para administración parenteral (por ejemplo, intravenosa, subcutánea, intramuscular), la(s) proteína(s) activa(s) pueden formularse en una forma de dosis unitaria para inyección en vehículos tales como disolución salina, disolución de dextrosa, suero de albúmina y disolución de Ringer.
Los ingredientes activos de la composición farmacéutica de acuerdo con la invención pueden administrarse a un individuo en una serie de formas. Las rutas de administración incluyen las rutas intradermal, transdermal (por ejemplo, en formulaciones de liberación lenta), intramuscular, intraperitoneal, intravenosa, subcutánea, oral, epidural, tópica e intranasal. Se puede usar cualquier otra ruta de administración que sea terapéuticamente eficaz, por ejemplo absorción a través de los tejidos epiteliales o endoteliales o mediante terapia génica en al que una molécula de ADN que codifica el agente activo es administrada al paciente (por ejemplo, a través de un vector), que hace que el agente activo sea expresado y secretado in vivo. Adicionalmente, la(s) proteína(s) de acuerdo con la invención pueden administrarse junto a otros componentes de agentes biológicamente activos tales como tensioactivos, excipientes, vehículos, diluyentes y portadores farmacéuticamente aceptables.
Para administración parenteral (por ejemplo intravenosa, subcutánea, intramuscular) la(s) proteína(s) activa(s) puede(n) formularse como una disolución, una suspensión, una emulsión o un polvo liofilizado en asociación con un vehículo parenteral farmacéuticamente aceptable (por ejemplo, agua, disolución salina, disolución de dextrosa) y aditivos que mantengan la isotonicidad (por ejemplo, manitol) o la estabilidad química (por ejemplo, conservantes y tampones). La formulación se esteriliza mediante técnicas usadas habitualmente.
La biodisponibilidad de proteína(s) activa(s) de acuerdo con la invención también puede aliviarse usando procedimientos de conjugación que aumentan la vida media de la molécula en el cuerpo humano, por ejemplo ligando la molécula a polietilenglicol, tal como se describe en la Solicitud de Patente PCT WO 92/13095.
Las cantidades terapéuticamente efectivas de la(s) proteína(s) activa(s) dependerán de muchas variables, que incluyen el tipo de antagonista, la afinidad del antagonista por IL-18, cualquier actividad citotóxica residual exhibida por los antagonistas, la ruta de administración, la condición clínica del paciente (incluyendo la deseabilidad de mantener un nivel no tóxico de actividad de IL-18 endógena).
Una "cantidad terapéuticamente efectiva" es aquella que cuando se administra, el inhibidor de IL-18 produce la inhibición de la actividad biológica de IL-18. La dosis administrada, en forma de dosis sencillas o múltiples, a un individuo variará dependiendo de una serie de factores, que incluyen las propiedades farmacocinéticas del inhibidor de IL-18, la ruta de administración, las condiciones y características del paciente (sexo, edad, peso corporal, salud, tamaño), la extensión de los síntomas, tratamientos concurrentes, la frecuencia del tratamiento y el efecto deseado. El ajuste y la manipulación de los intervalos de dosis establecidos son competencia y están al alcance de los especialistas en la técnica, así como los métodos in vitro e in vivo para determinar la inhibición de IL-18 en un individuo.
De acuerdo con la invención, el inhibidor de IL-18 puede administrarse profiláctica o terapéuticamente a un individuo que lo necesite anteriormente, simultáneamente o secuencialmente respecto a otros regímenes o agentes terapéuticos (por ejemplo, regímenes de múltiples fármacos), en una cantidad terapéuticamente efectiva, en particular con un inhibidor de IL-12 y/o un inhibidor de IL-1, interferón y antagonista de TNF. Los agentes activos que son administrados simultáneamente a otros agentes terapéuticos pueden administrarse en la misma o en diferentes composiciones.
Además se describe un método para la preparación de una composición farmacéutica que comprende mezclar una cantidad efectiva de un inhibidor de IL-18 y/o de un inhibidor de IL-12 y/o de un inhibidor de IL-1, interferón y/o un antagonista de TNF con un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Habiendo descrito ya la invención, será más fácil de entender a través de los siguientes ejemplos, que se proporcionan a modo de ilustración.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Ejemplos Ejemplo 1 Niveles de IL-18BPa e IL-18 en suero en individuos sanos y en pacientes con sepsis
La mediad de citoquinas específicas en circulación y sus inhibidores naturales en pacientes sanos y enfermos proporciona información acerca de su implicación en la progresión y la gravedad de una enfermedad. Como se ha mencionado en la sección de antecedentes, uno de los mediadores clave de la sepsis es el IFN-\gamma. Puesto que la IL-18 es un co-inductor de IFN-\gamma, el nivel de IL-18 y su inhibidor natural, la variante a de la IL-18BP, fueron monitorizadas en pacientes con sepsis y comparadas con los niveles encontrados en sujetos sanos usando ELISAs específicos (ejemplo 3).
\vskip1.000000\baselineskip
Niveles de IL-18 e IL-18BPa en pacientes sanos
El nivel medio de IL-18 en 107 donantes sanos fue de 64\pm17 pg/mL, determinado mediante ensayo ECL (Pomerantz y col., 2001). El ensayo ECL se evaluó para determinar la interferencia de proteínas relacionadas. Se descubrió que no se veía afectado por la presencia de IL-1\beta madura o de pro-IL-1\beta, mientras que la pro-IL-18 era reactiva. Por lo tanto, hasta un 20% de la IL-18 madura detectada en las muestras de suero humano en el presente estudio puede ser pro-IL-18. El ensayo ECL de IL-18 no se vio afectado por IL-18BPa en una concentración \leq 160 ng/mL.
Se evaluaron los niveles de IL-18BPa en el suero procedente de los 107 individuos sanos mediante ELISA (ejemplo 3). Los niveles de IL-18BPa oscilaron entre 0,5 ng/mL y 7 ng/mL, con un promedio de 2,15 \pm 0,15 ng/mL (Figura 1).
Debido a que tanto la IL-18 como la IL-18BPa están presentes de forma concomitante en el suero, puede que algo de la IL-18 esté presente formando un complejo con IL-18BPa. El nivel de IL-18 libre se calculó en base al nivel medio de IL-18 total (2,15 ng/mL). La IL-18 libre fue determinada de acuerdo a la ley de acción de masas. El cálculo se basó en los siguientes parámetros: las concentraciones de IL-18 total determinadas mediante ensayo ECL; la concentración de IL-18BPa total determinada mediante ELISA; una estequiometría de 1:1 en el complejo de IL-18BPa y de IL-18, y una constante de disociación (Kd) de 0,4 nM (Novick y col., 1999, y Kim y col., 2000). En un sistema de equilibrio L + R \leftrightarrow LR, donde L representa IL-18 y R representa IL-18BP, se aplican las siguientes ecuaciones:
Kd = [LR]/[L_{libre}][R_{libre}]
L_{libre} = L_{total} - LR
R_{libre} = R_{total} - LR
Sustituyendo: L_{total} = 64\pm17 pg/mL (nivel medio), R_{total} = 2,15\pm0,15 ng/mL (de media) y Kd = 0,4 nM, se obtuvo que en pacientes sanos aproximadamente 51,2 pg/mg de IL-18 (cerca del 80% del total) está en forma libre.
\vskip1.000000\baselineskip
Niveles de IL-18 e IL-18BPa en pacientes con sepsis
Se evaluaron los niveles de IL-18 y de IL-18BPa en 192 muestras de suero procedentes de 42 pacientes sépticos inmediatamente después del ingreso y durante la hospitalización. Los niveles de IL-18 y de IL-18BPa fueron significativamente más elevados en pacientes con sepsis que en los sujetos sanos (Figura 2 A), y se observó una amplia distribución de valores (Figura 2 B). Además, dichos niveles fueron incluso más altos en estos pacientes el día del ingreso, mostrando un incremento del 2200 por cien en el nivel de IL-18 en comparación con los individuos sanos (1,5 \pm 0,4 ng/mL frente a 0,064 \pm 0,17 ng/mL) y un incremento del 1300 por cien en el nivel de IL-18BPa (28,6 \pm 4,5 frente a 2,15 \pm 0,15 ng/mL, Figura 2 A). No pudo observarse ninguna correlación estadísticamente significativa entre los niveles de creatinina y las concentraciones de IL-18 o de IL-18BPa en estos sueros (determinado mediante puntuación APACHE II, Knaus y col., 1993), lo que sugiere que los niveles elevados de IL-18 y de IL-18BPa en estos pacientes no se debían a un fallo renal.
Debido a que los niveles en suero de IL-18 y de IL-18BPa en pacientes con sepsis variaban considerablemente (Figura 2 B), se calcularon los niveles de IL-18 libre en suero en las muestras individuales. Los cálculos se realizaron como se ha descrito previamente, usando las mismas tres ecuaciones y sustituyendo los valores de Kd, L_{total}, R_{total} determinados experimentalmente. Los cálculos muestran que la IL-18BPa redujo el nivel de IL-18 libre en la mayoría de los pacientes (Figura 3). De forma destacable, este efecto fue particularmente fuerte cuando la IL-18 total era elevada. Por ejemplo, en dos pacientes, la IL-18 en suero alcanzó 0,5 nM (10 ng/mL), un incremento del 15000 por ciento sobre los individuos sanos. Sin embargo, considerando la unión a la IL-18BPa en circulación (27 ng/mL y 41,2 ng/mL), el nivel de IL-18 libre en estos dos pacientes cayó en un 78% y un 84%, respectivamente (Figura 3). Por lo tanto, la mayoría de la IL-18 en suero está bloqueada por la IL-18BPa en circulación. Aún así, de acuerdo con estos cálculos, la IL-18 que queda libre todavía es superior a la presente en individuos sanos. Por tanto, es de esperar que la administración de IL-18BPa exógena a pacientes sépticos disminuya aún más el nivel de IL-18 libre en circulación, aliviando los efectos de la enfermedad.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 2 Efecto de IL-18BPa sobre la producción de IFN-\gamma inducida por S. epidermidis en células presentes en muestras de sangre entera procedentes de sujetos sanos
Como se ha mencionado en la sección de antecedentes, se sabe que la bacteria Gram-positiva Staphylococcus epidermidis produce sepsis. La inducción de citoquinas, por ejemplo IL-1, IFN-\gamma y TNF-\alpha, es una etapa clave en esta patología. Puesto que la IL-18 es un co-inductor de IFN-\gamma, se evaluó el efecto de su inhibición sobre la inducción de IFN-\gamma de Staphylococcus epidermidis. La IL-18BPa, usada como inhibidor de IL-18, fue una versión marcada con histidina recombinantes producida en células CHO.
Se mezclaron 0,5 mL de sangre en tubos de polipropileno de fondo redondo de 12x75 mm de 5 mL (Falcon, Becton Dickinson Labware, Franklin Lakes, NL) con 0,5 mL de medio de crecimiento RPMI (Cellgro Mediatech, Hendon, VA suplementado con L-glutamina 10 mM, 100 U/mL de penicilina, 100 \mug/mL de estreptomicina y FBS al 10% [Gibco BRL, Grand Island, NY]) que contenía S. epidermidis (de ATCC) con o sin IL-18BP. Las muestras fueron incubadas a 37ºC (5% de CO_{2}) durante 48 horas seguidas de un tratamiento con Triton X-100 (Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA) a una concentración final del 0,5% para lisar las células presentes en la muestra de sangre entera. Los tubos que contenían las muestras fueron invertidos varias veces hasta que la muestra sanguínea mostró una apariencia clara. La concentración de IFN-\gamma en las muestras lisadas de sangre, que representa tanto citoquina intracelular como secretada, se midió mediante electroluminiscencia (ECL) tal como se describe en Pomerantz y col. (2001).
Para este estudio se usó sangre entera de voluntarios sanos no fumadores. La sangre se extrajo mediante punción de vena y se mantuvo en tubos heparinizados. Se propagó S. epidermidis en caldo de infusión cerebro-corazón durante 24 horas, se lavó en disolución salina libre de pirógeno y se hirvió tal como se describe en Aiura y col. (1993). La concentración de bacterias muertas por efecto del calor se ajustó a 10 células bacterianas por célula sanguínea blanca (WBC).
Los resultados de la Figura 4 muestran que la IL-18BPa es capaz de inhibir la inducción de S. epidermidis de
IFN-\gamma.
Puesto que se sabe que el IFN-\gamma es co-estimulado por IL-18 e IL-12, se evaluó el efecto de la combinación de anticuerpos específicos de IL-18BPa y de IL-12 (Mab anti-IL-12 humano 11.5.14, Prepotech, Rocky Hill, NJ) sobre la inducción de IFN-\gamma dirigida por S. epidermidis. Dicha inducción se evaluó en presencia de 125 ng/mL de IL-18BPa (IL-18BPa marcada con histidina producida en células COS y purificada en una columna de talón tal como describe Novick y col., 1999) y 2,4 \mug/mL de anticuerpo específico anti-IL-12 humano. Los resultados mostrados en la Figura 5 sugieren que los anticuerpos específicos anti-IL-12 potencian el efecto inhibidor de la IL-18BPa sobre la inducción de IFN-\gamma por efecto de S. epidermidis.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 3 Desarrollo de un ensayo ELISA específico de IL-18BP
El ensayo ELISA comprendió dos anticuerpos anti-IL-18BPa: Mab murino 582.10, un subclon del Mab 582 descrito en el Ejemplo 4, como anticuerpo de captura, y anticuerpo policlonal de ratón para la detección (Ejemplo 4). Se recubrieron placas ELISA de 96 pocillos de microtitulación (Maxisorb, Nunc A/S, Roskilde, Dinamarca) con Mab anti-IL-18BPa Nº 582.10 (un subclon del Mab 582, 4 \mug/mL en PBS) durante una noche a 4ºC. Las placas fueron lavadas con PBS que contenía un 0,05% de Tween 20 (disolución de lavado) y bloqueadas (2 h, 37ºC) con disolución de stock de BSA (KPL, Geithersburg, MD) diluida 1:10 en agua. La disolución de stock de BSA se diluyó 1:15 en agua (diluyente) para la dilución de todas las muestras evaluadas y del anticuerpo de detección. Las muestras de suero se diluyeron al menos a 1:5 en el diluyente y se añadieron alícuotas de 100 \muL a los pocillos. Se diluyó rIL-18BPa altamente puro (preparado en CHO y purificado mediante inmunoafinidad usando el Mab N 430 purificado-G específico para IL-18BP mostrado en la tabla 1, ejemplo 4) mediante 7 diluciones en serie al 50% (de 4 a 0,062 ng/mL) y se añadió a todas las placas ELISA para la generación de una curva de calibrado. Las placas fueron incubadas durante 2 horas a 37ºC y lavadas 3 veces con la disolución de lavado. Se añadió suero de anti-IL-18BPa de conejo (1:5000 en diluyente, 100 \muL/pocillo) y las placas fueron incubadas otras 2 horas a 37ºC. Las placas se lavaron 3 veces, se añadió un conjugado de peroxidada de rábano cabra-anti-conejo (HRP, Jackson ImmunoResearch Labs, 1:10.000 en PBS, 100 pL/pocillo) y las placas se incubaron durante 1 h a 37ºC. Las placas fueron lavadas 3 veces y desarrolladas mediante la adición de sustrato de Peroxidasa OPD (comprimidos de o-fenilendiamina dihidrocloruro, Sigma) durante 30 minutos a temperatura ambiente. La reacción se detuvo mediante HCl 3 N (100 \muL) y se determinó la absorbancia a 492 nm mediante un lector ELISA. Se representó la OD en función de la concentración de IL-18BPa y se observó linealidad en un rango entre 0,12 y 2,00 ng/mL de IL-18BPa (Figura 6).
La curva de calibrado de IL-18BPa en ausencia de suero o en presencia de hasta un 20% de suero humano permaneció igual. Puesto que la IL-18BPa se une a IL-18 con una afinidad muy alta, fue necesario determinar si el ensayo ELISA distingue entre la IL-18BPa libre y la ligada. Se descubrió que la IL-18 interfiere con el método ELISA de IL-18, sin embargo, la interferencia no es significativa en muestras de suero. En el 90% de los pacientes de sepsis los niveles en suero de IL-18 permanecieron por debajo de 4 ng/mL (ver más adelante). Dichas muestras de suero tienen una IL-18BPa elevada, lo que requiere una dilución de 5 a 20 veces antes de medir la IL-18BPa. En dichas diluciones, la interferencia de IL-18 con la IL-18BPa en el ELISA es inferior al 10% (Figura 7). Otras citoquinas relacionadas, incluyendo la proIL-18, usadas con un exceso molar de 10 a 1 respecto a la IL-18BPa, así como con un exceso de 200 a 1 de IL-1\beta madura, no mostraron interferencia con el ensayo.
La isoforma más abundante de la IL-18BP humana es la IL-18BPa, mientras que las isoformas b, c y d son variantes de división minoritarias (Novick y col., 1999, y Kim y col., 2000). La IL-18BPa exhibe la mayor afinidad por la IL-18 (Kim y col., 2000). La afinidad de la IL-18BPc por IL-18 es 10 veces más baja, mientras que las isoformas b y d no se unen o neutralizan IL-18. Por lo tanto, fue importante determinar la reactividad cruzada de la IL-18BPa en ELISA con las otras isoformas de IL-18BP. Tal como se muestra en la Figura 8, la IL-18BPc humana generó una señal 10 veces más baja referido a masa en comparación con la huIL-18BPa, mientras que las isoformas b y d generaron una señal insignificante en el ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4 Generación de anticuerpos específicos anti-IL-18BP
Se inyectó un conejo con rIL-18BPa-His6 para la generación de anticuerpos policlonales.
Para la producción de anticuerpos monoclonales, se inyectaron ratones Balb/C 5 veces con 10 \mug de IL-18BPa recombinante marcada con histidina (rIL-18BPa-His6). Al ratón que presentó el mayor título, determinado mediante un radioinmunoensayo invertido (IRIA, ejemplo 5) o RIA en fase sólida (sRIA, ejemplo 5), se la aplicó una dosis final intraperitonealmente 4 y 3 días antes de la fusión. Se prepararon linfocitos a partir de bazo y se llevó a cabo la fusión con células de mieloma NSO/1. Los hibridomas que produjeron anticuerpos de IL-18BPa fueron subclonados mediante dilución limitante. Los clones generados fueron evaluados mediante IRIA (Ejemplo 5). En la Tabla 1 se muestran hibridomas representativos.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 1 Hibridomas representativos que producen anti-IL-18BPa
1
_{1} Placas recubiertas con anticuerpos anti-ratón de cabra, y detección de hibridomas con ^{125}I IL-18BPa.
_{2} Placas recubiertas con IL-18BP urinaria, y detección de hibridomas con anticuerpos ^{125}I anti-ratón de cabra.
\vskip1.000000\baselineskip
Los hibridomas que secretan anticuerpos dirigidos contra la etiqueta de histidina fueron descartados. Los anticuerpos fueron caracterizados con más detalle empleando sRIA para determinar su capacidad para reconocer la IL-18BP natural (purificada a partir de orina). En la Tabla 1 se muestran las características de unión de varios hibridomas positivos. Los hibridomas nº 148, 430, 460 y 582 fueron positivos con IL-18BP tanto recombinante como urinaria. Se obtuvieron los anticuerpos adecuados para el ensayo de transferencia Western, de inmunoprecipitación, de purificación por inmunoafinidad y para el desarrollo de un ELISA específico. Los clones positivos que producen anticuerpos específicos anti-IL-18BP fueron inyectados en ratones Balb/C pre-imprimados con pristano para la producción de ascites. Los isotipos de los anticuerpos fueron definidos mediante el uso de un ensayo ELISA de IgG anti-ratón (Amersham-Pharmacia, Biotech). El Mab 582, que fue altamente reactivo con la IL-18BP recombinante y nativa (Tabla 1) fue usado para la preparación del ELISA específico de IL-18BP (Ejemplo 3).
Se evaluaron anticuerpos mediante sRIA en presencia de IL-18 (ejemplo 5) para determinar su capacidad para reconocer un complejo de IL-18BPa con IL-18. La mayoría de los anticuerpos fueron incapaces de reconocer IL-18BP cuando forma un complejo con IL-18. Por lo tanto, dichos anticuerpos parecen estar dirigidos contra el dominio de unión de ligando de la IL-18BPa.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 5 Radioinmunoensayos para la detección de clones de células que producen anticuerpos anti-IL-18BP Radioinmunoensayo invertido (IRIA)
Se recubrieron placas de microtitulación de PVC (Dynatech Laboratories, Alexandria, VA) durante una noche a 4ºC con anticuerpos F(ab)2 anti-ratón de cabra purificados por afinidad (10 \mug/mL, 100 \muL/pocillo; Jackson ImmunoResearch Labs). Las placas fueron lavadas entonces dos veces con PBS que contenía un 0,05% de Tween 20 (disolución de lavado) y bloqueadas con BSA (0,5% en disolución de lavado) durante 2 horas a 37ºC. Se añadieron sobrenadantes de cultivo de hibridoma (100 \muL/pocillo) y se incubaron las placas durante 2 horas a temperatura ambiente. Las placas fueron lavadas tres veces, se añadió ^{125}I-rIL-18BPa-His6 (10^{5} cpm en 100 \muL) a cada pocillo y las placas fueron incubadas durante 5 horas a 22ºC. A continuación las placas fueron lavadas tres veces y se contabilizaron los pocillos individuales con un contador gamma. Los hibridomas que generaron sobrenadante, que exhibieron una radioactividad ligada en niveles 5 veces superiores al control negativo, fueron considerados positivos.
\vskip1.000000\baselineskip
RIA en fase sólida (sRIA)
Se usó rIL-18BPa (5 \mug/mL) como antígeno de captura y se usaron anticuerpos anti-ratón ^{125}I de cabra (100 \muL, 10^{5} cpm) para la detección. El bloqueo y los lavados se realizaron como se ha indicado anteriormente. Los clones positivos fueron escrutados mediante sRIA para determinar su capacidad para reconocer la IL-18BP aislada a partir de orina humana concentrada (Novick y col., 1999). Las placas de microtitulación fueron recubiertas con IL-18BP purificada mediante afinidad de ligando (1 \mug/mL), bloqueadas y lavadas como se ha indicado anteriormente. Se añadieron sobrenadantes de hibridoma (100 \muL) y se llevó a cabo la detección con anticuerpos anti-ratón ^{125}I de cabra (10^{5} cpm en 100 \muL).
\vskip1.000000\baselineskip
sRIA para anticuerpos específicos para la posición de unión a ligando de IL-18BP
Las placas de microtitulación se recubrieron con IL-18BP urinaria (0,5 \mug/mL) o con rIL-18BPa (5 \mug/mL), se bloquearon y se lavaron como en el caso de sRIA. Se añadió IL-18 humana recombinante (50 \muL) hasta una concentración final de 1,5 \mug/mL (15 minutos a temperatura ambiente), seguido de la adición de sobrenadantes de hibridoma (50 \muL). La detección se realizó con anticuerpos anti-ratón ^{125}I de cabra (10^{5} cpm en 100 \muL, 2 h a temperatura ambiente).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 6 Contenido de IL-18 miocardial después de LPS
El TNF\alpha y la IL-1\beta han sido implicadas en la disfunción cardíaca durante la sepsis. Puesto que la IL-18 es una citoquina pro-inflamatoria que media en la producción de TNF\alpha y de IL-1\beta, se evaluó el efecto de la concentración de IL-18 sobre la disfunción cardíaca inducida por LPS.
Se trataron ratones con vehículo (disolución salina) o con LPS. Se recolectaron los corazones a 2, 4 y 6 horas después de la administración de LPS y se homogeneizaron para determinar el contenido miocardial de IL-18 mediante ELISA (Kit adquirido a R&D Systems (Minneapolis, MN)). Los resultados de la Figura 9 muestran un aumento del 100% en el contenido miocardial de IL-18 4 horas después de la administración de LPS, lo que indica que la IL-18 está implicada en la disfunción cardíaca durante la sepsis.
\newpage
Ejemplo 7 Efecto de la neutralización de IL-18 sobre la disfunción miocardial inducida por LPS
En el ejemplo previo se ha observado un aumento del contenido de IL-18 en la disfunción cardíaca inducida por LPS. Por tanto, se evaluó el efecto de la neutralización de IL-18 sobre disfunción miocardial inducida.
Se determinó la función miocardial mediante una técnica Langerdorff isovolumétrica, sin recirculación, tal como se ha descrito anteriormente (Meng y col., 1998). Se perfusionaron corazones aislados con disolución normotérmica Krebs-Henseleit que contiene 11,0 mmol/L de glucosa, 1,2 mmol/L de CaCl_{2}, 4,7 mmol/L de KCl, 25 mmol/L de NaHCO_{3}, 119 mmol/L de NaCl, 1,17 mmol/L de MgSO_{4} y 1,18 mmol/L de KH_{2}PO_{4}. Se insertó un globo de látex en el ventrículo izquierdo a través del atrio izquierdo y se infló con agua para lograr una presión ventricular y diastólica izquierda (LVEDP) de 1333 Pa (10 mmHg). Se colocaron cables marcapasos en el atrio derecho y los corazones se llevaron hasta 300 latidos por minuto. Se cuantificó el flujo coronario recolectando el efluente de las arterias pulmonares. La temperatura miocardial se mantuvo a 37ºC. La presión ventricular izquierda desarrollada (LVDP), sus primeras derivadas (+dP/dt, -dP/dt) y la LVEDP fueron registradas continuamente mediante un amplificador-digitalizador de presión computerizado (Maclab 8, AD Instrument, Cupertino, CA). Después de un periodo de equilibrado de 20 minutos se determinaron la LVDP y +/-dP/dt a diferentes niveles de LVEDP (1333, 2000 y 2666 Pa, 10, 15 y 20 mmHg, respectivamente).
Después de la administración de LPS, la presión ventricular izquierda desarrollada (LVDP) se redujo en un 38% en comparación con los controles de disolución salina (4840 +/- 253 Pa ó 36,3 +/- 1,9 mmHg frente a 7879 +/- Pa ó 59,1 +/- mmHg, P<0,001, Figura 10). El pretratamiento de ratones 30 minutos antes de la administración con LPS con suero de conejo normal (NRS) tuvo una influencia mínima sobre la disfunción miocardial inducida por LPS; sin embargo el pretratamiento con anticuerpo neutralizante de IL-18 eliminó la disfunción (Figura 10). El flujo coronario no fue diferente entre los grupos (no mostrado).
Los resultados indican que la neutralización de IL-18 protege frente a la disfunción miocardial inducida por LPS.
\vskip1.000000\baselineskip
Referencias
Aestiz, M.E. y Rackow, E.C. (1998) "Septic shock"THE LANCET 351, 1501-5.
Aiura, K., Gelfand, J.A., Burke, J.F., Thompson, R.C. y Dinarello, C.A. (1993) "Interleukin-1 (IL-1) receptor antagonist prevents Staphylococcus epidermidis-induced hypotension and reduces circulating levels of tumor necrosis factor and IL-1 beta in rabbits". Infect Immun 61, 3342-50.
Anderson, D.M., Maraskovsky, E., Billingsley, W.L., Dougall, W.C., Tometsko, M.E., Roux, E.R., Teepe, M.C., DuBose, R.F., Cosman, D., Galibert, L. (1997) "A homologue of the TNF receptor and its ligand enhance T-cell growth and dendritic-cell function". Nature, 390, 175-179.
Bazan, J.F., Timans, J.C., y Kaselein, R.A. (1996) "A newly defined interleukin-1?"Nature 379, 591.
Blumberg, R.S. y Strober, W. (2001) "Prospects for research in inflammatory bowel disease"JAMA 285, 643-7.
Cleveland, M.G., Gorham, J.D., Murphy, T.L., Tuomanen, E. y Murphy, K.M. (1996) "Lipoteichoic acid preparations of Gram-positive bacteria induce interleukin-12 through a CD14-dependent pathway"Infect Immun 64, 1906-12.
Dinarello C.A. (1996) "Biologic basis for interleukin-1 in disease" Blood 87, 2095-147.
Elliot, M.J., Maini, R.N., Feldmann, M., Long-Fox, A., Charles, P., Bijl, H. y Woody J.N., (1994) "Repeated therapy with monoclonal antibody to tumour necrosis factor alpha (cA2) in patients with rheumatoid arthritis" Lancet 344, 1125-1127.
Endo, S., Inada, K., Yamada, Y., Wakabayashi, G., Ishikura, H., Tanaka, T. y Sato, S. (2000) "Interleukin 18 (IL-18) levels in patients with sepsis". J Med 31, 15-20.
Engelmann, H., Aderka, D., Rubinstein, M., Rotman, D. y Wallach D. (1989) "A tumor necrosis factor-binding protein purified to homogeneity from human urine protects cells from tumor necrosis factor toxicity" J. Biol. Chem. 264, 11974-11980.
Engelmann, H., Novick, D. y Wallach, D. (1990) "Two tumor necrosis factor-binding proteins purified from human urine. Evidence for immunological cross-reactivity with cell surface tumor necrosis factor receptors". J. Biol. Chem. 265, 1531-1536.
\newpage
Fiocchi, C. (1999) "From immune activation to gut tissue injury: the pieces of the puzzle are coming together". Gastroenterology 117, 1238-46.
Foss DL, Zilliox MJ, Murtaugh MP (2001) "Bacterially induced activation of interleukin-18 in porcine intestinal mucosa". Vet. Immunol. Immunopathol. 78, 263-77.
Ghayur, T., Banerjee, S., Hugunin, M., Butler, D., Herzog, L., Carter, A., Quintal, L., Sekut, L., Talanian, R., Paskind, M., Wong, W., Kamen, R., Tracey, D., y Allen, H. (1997). "Caspase-1 processes IFN-gamma-inducing factor and regulates LPS-induced IFN-gamma production". Nature 386, 619-623.
Grantham, R. (1974) "Amino acid difference formula to help explain protein evolution"Science 185, 862-4.
Grobmyer, S.R., Lin, E., Lowry, S.F., Rivadeneira, D.E., Potter, S., Barie, P.S. y Nathan, C.F. (2000). "Elevation of IL-18 in human sepsis". J Clin Immunol 20, 212-5.
Gu, Y., Kuida, K., Tsutsui, H., Ku, G., Hsiao, K., Fleming, M.A., Hayashi, N., Higashino, K., Okamura, H., Nakanishi, K., Kurimoto, M., Tanimoto, T., Flavell, R.A., Sato, V., Harding, M. W., Livingston, D. J., y Su, M. S. (1997) "Activation of interferon-gamma inducing factor mediated by interleukin-1 beta converting enzyme". Science 275, 206-209.
Gupta, D., Kirkland, T. N., Viriyakosol, S. Y Dziarski, R. (1996) "CD14 is a cell-activating receptor for bacterial peptidoglycan". J. Biol Chem 271, 23310-6.
Hachicha, M., Rathanaswami, P., Naccache, P.H. y McColl, S.R. (1998) "Regulation of chemokine gene expression in human peripheral blood neutrophils phagocytosing microbial pathogens". J Immunol 160, 449-54.
Henderson, B., Poole, S. y Wilson, M. (1996) "Bacterial modulins: a novel class of virulence factors which cause host tissue pathology by inducing cytokine synthesis". Microbiol Rev 60, 316-41.
Karp, C.L., Biron, C.A. e Irani, D.N. (2000) "Interferon \beta in multiple sclerosis: is IL-12 suppression the key?"Immunology today 21, 24-8.
Kim, S.H., Eisenstein, M. Reznikov, L., Fantuzzi, G., Novick, D., Rubinstein, M. y Dinarello, C.A. (2000) "Structural requirements of six naturally occurring isoforms of the IL-18 binding protein to inhibit IL-18". Proc. Natl. Acad. Sci USA 97, 1190-5.
Kim, S.H., Reznikov, L.L., Stuyt, R.J., Selzman, C.H., Fantuzzi, G., Hoshino, T., Young, H.A. y Dinarello, C.A. (2001) "Functional reconstitution and regulation of IL-18 activity by the IL-18R beta chain". J Immunol 166, 148-54.
Knaus, W.A., Harrell, F.E., Fisher, C.J. Jr., Wagner, D.P., Opal, S.M., Sadoff, J.C., Drapper, E.A., Walawander, C.A., Conboy, K. y Grasela, T.H. (1993) "The clinical evaluation of new drugs for sepsis. A prospective study design based on survival analysis". JAMA 1993 270, 1233-41.
Knight, D.M., Trinh, H., Le, J., Siegel, S., Shealy, D., McDonough, M., Scallon, B., Moore, M.A., Vilcek, J. y Daddona, P. (1993) "Construction and initial characterization of a mouse-human chimeric anti-TNF antibody". Mol Immunol 16, 1443-53.
Kohno, K., J. Kataoka, T. Ohtsuki, Y. Suemoto, J. Okamoto, M. Usui, M. Ikeda y M. Kurimoto (1997) "IFN-gamma-inducing factor (IGIF) is a costimulatory factor on the activation of Th1 but not Th2 cells and exerts its effect independently of IL-12" J. Immunol. 158: 1541-1550.
Liu, B., Novick, D., Kim, S.H. y Rubinstein, M. (2000) "Production of a biologically active human interleukin 18 requires its prior synthesis as pro-IL-18 cytokine" 12, 1519-1525.
Maliszewski, C.R., Sato, T.A., Vanden Bos, T., Waugh, S., Dower, S.K., Slack, J., Beckmann, M.P. y Grabstein, K.H. (1990) "Cytokine receptors and B cell functions, I. Recombinant soluble receptors specifically inhibit IL-1- and IL-4-induced B cell activities in vitro". J Immunol 144, 3028-33.
Mattner, F., Fischer, S., Guckes, S., Jin, S., Kaulen, H., Schmitt, E., Rude, E. y Germann, T. (1993) "The interleukin-12 subunit p40 specifically inhibits effects of the interleukin-12 heterodimer". Eur J Immunol 23, 2202-8.
Muhl, H., Kampfer, H., Bosmann, M., Frank, S., Radeke, H. Y Pfeilschifter, J. (2000) "Interferon-gamma mediates gene expression of IL-18 binding protein in nonleukocytic cells". Biochem Biophys Res Commun Enero 267, 960-3.
Nakamura, K., Okamura, H., Wada, M., Nagata, K. y Tamura, T. (1989) "Endotoxin-induced serum factor that stimulates gamma interferon production". Infect-Immun 57, 590-5. ISSN: 0019-9567.
Nakamura, K., Okamura, H., Nagata, K., Komatsu, T. y Tamura, T. (1993) "Purification of a factor which provides a costimulatory signal for gamma interferon production". Infect. Immun. 61, 64-70.
Nakamura, S., Otani, T., Ijiri, Y., Otoda, R., Kurimoto, M. y Orita, K. (2000) ``IFN-\gamma dependent and independent mechanisms in adverse effects caused by concomitant administration of IL-18 and IL-12. The journal of Immunology 164, 3330-6.
Nakanishi, K., Yoshimoto T., Tsutsui H., Okamura H. (2001) "Interleukin-18 is a unique cytokine that stimulates both Th1 and Th2 responses depending on its cytokine milieu". Cytokine Growth Factor Rev 12, 53-72.
Nathens AB, Marshall JC. (1996) "Sepsis, SIRS, and MODS: what's in a name?" World J Surg 20, 386-91.
Netea, M. G., Fantuzzi, G., Kullberg, B. J., Stuyt, R. J. L., Pulido, E. J., McIntyre, Jr. R. C., Joosten, L. A. B., Van der Meer, J. W. M. y Dinarello, C. A. (2000) "Neutralization of IL-18 reduces neutrophil tissue accumulation and protects mice against lethal Escherichia coli and Salmonella typhimurium endotoxemia". The journal of immunology 2644-2649.
Novick, D., Engelmann, H., Wallach, D. y Rubinstein, M. (1989) "Soluble cytokine receptors are present in normal human urine". J. Exp. Med. 170, 1409-14.
Novick, D., Cohen, B. y Rubinstein, M. (1992) "Soluble Interferon-alpha Receptor Molecules Are Present in Body Fluids". FEBS Lett 314, 445-8.
Novick, D., Cohen, B. y Rubinstein, M. (1994) "The Human Interferon alpha/beta Receptor - Characterization and Molecular Cloning". Cell 77, 391-400.
Novick, D., Kim, S., Fantuzzi, G., Reznikov, L.L., Dinarello, C.A. y Rubinstein, M. (1999) "Interleukin-18 Binding Protein: A Novel Modulator of the Th1 Cytokine Response". Immunity 10, 127-36.
Okamura, H., Tsutsui, H., Komatsu, T., Yutsudo, M., Hakura, A., Tanimoto, T., Torigoe, K., Okura, T., Nukada, Y., Hattori, K., Akita, K., Namba, M., Tanabe, F., Konishi, K., Fukuda, S., y Kurimoto, M. (1995) "Cloning of a new cytokine that induces IFN-gamma production by T cells". Nature 378, 88-91.
Okamura, H., Kashiwamura, S., Tsutsui, H., Yoshimoto, T. y Nakanishi, K. (1998) "Regulation of IFN-\gamma production by IL-12 and IL-18"Current Opinion in Immunology 10, 259-264.
Okusawa, S., Gelfand, J.A., Ikejima, T., Connolly, R.J. y Dinarello, C.A. (1988) "Interleukin-1 induces a shock-like state in rabbits. Synergism with tumor necrosis factor and the effect of cyclooxygenase inhibition". J Clin Invest 81, 1162-72.
Pomerantz, B.J., Reznikov, L.L., Harken, A.H., y Dinarello C.A. (2001) "Inhibition of caspase-1 reduces human myocardial ischemic dysfunction via inhibition of IL-18 and IL-1 beta" Proc Natl Acad Sci U S A 98, 2871-6.
Puren, A.J., Fantuzzi, G., Dinarello, C.A. (1999) "Gene expression, synthesis, and secretion of interleukin 18 and interleukin 1 beta are differentially regulated in human blood mononuclear cells and mouse spleen cells". Proc Natl Acad Sci U S A, 96, 2256-61.
Sakao, Y., Takeda, K., Tsutsui, H., Kaisho, T., Nomura, F., Okamura, H., Nakanishi, K. y Akira S. (1999) "IL-18-deficient mice are resistant to endotoxin-induced liver injury but highly susceptible to endotoxin shock" Int Immunol 3, 471-80.
Seki, S., Habu, Y., Kawamura, T., Takeda, K., Dobashi, H., Ohkawa, T., Hiraide, H. (2000) "The liver as a crucial organ in the first line of host defense: the roles of Kupffer cells, natural killer (NK) cells and NK1.1 Ag+ T cells in T helper 1 immune responses". Immunol Rev 174, 35-46.
Simonet, W.S., Lacey, D.L., Dunstan, C.R., Kelley, M., Chang, M.S., Luthy, R., Nguyen, H.Q., Wooden, S., Bennett, L., Boone, T., Shimamoto, G., DeRose, M., Elliott, R., Colombero, A., Tan, H.L., Trail, G., Sullivan, J., Davy, E., Bucay, N., Renshaw-Gegg, L., Hughes, T.M., Hill, D., Pattison, W., Campbell, P., Boyle, W.J. (1997). "Osteoprotegerin: a novel secreted protein involved in the regulation of bone density". Cell, 89, 309-19.
Skeen, M.J. y Ziegler, H.K. (1995) "Activation of gamma delta T cells for production of IFN-gamma is mediated by bacteria via macrophage-derived cytokines IL-1 and IL-12". J Immunol. 154, 5832-41.
Trinchieri, G. (1998) "Interleukin-12: a cytokine at the interface of inflammation and immunity". Adv Immunol 70, 83-243.
\newpage
Tripp, C.S., Wolf, S.F. y Unanue, E.R. (1993) "Interleukin 12 and tumor necrosis factor alpha are costimulators of interferon gamma production by natural killer cells in severe combined immunodeficiency mice with listeriosis and interleukin 10 is a physiologic antagonist". Proc Natl Acad Sci U S A 90, 3725-9.
Tsutsui, H., K. Nakanishi, K. Matsui, K. Higashino, H. Okamura, Y. Miyazawa y K. Kaneda (1996) "IFN-gamma-inducing factor up-regulates Fas ligand-mediated cytotoxic activity of murine natural killer cell clones". J. Immunol. 157, 3967-73. ISSN: 0022-1767.
Urushihara, N., Iwagaki, H., Yagi, T., Kohka, H., Kobashi, K., Morimoto, Y., Yoshino, T., Tanimoto, T., Kurimoto, M., Tanaka, N. (2000) "Elevation of serum interleukin-18 levels and activation of Kupffer cells in biliary atresia". J Pediatr Surg 35, 446-9.
Ushio, S., Namba, M., Okura, T., Hattori, K., Nukada, Y., Akita, K., Tanabe, F., Konishi, K., Micallef, M., Fujii, M., Torigoe, K., Tanimoto, T., Fukuda, S., Ikeda, M., Okamura, H. y Kurimoto, M. (1996) "Cloning of the cDNA for human IFN-gamma-inducing factor, expression in Escherichia coli, and studies on the biologic activities of the protein". J. Immunol. 156, 4274-9.
Vigers, G.P., Anderson, L.J., Caffes, P., Brandhuber, B.J. (1997) "Crystal structure of the type-1 interleukin-1 receptor complexed with interleukin-1 beta"Nature 386, 190-4.
Xiang, Y. y Moss, B. (1999) "Identification of human and Mouse homologs of the MC51L-53L-54L family of secreted glycoproteins encoged by the Molluscum contagiosum poxvirus". Virology 257, 297-302.
Yasuda, H., Shima, N., Nakagawa, N., Mochizuki, S.I., Yano, K. Fujise, N., Sato, Y., Goto, M., Yamaguchi, K., Kuriyama, M., Kanno, T., Murakami, A., Tsuda, E., Morinaga, T., Higashio, K. (1998) "Identity of osteoclastogenesis inhibitory factor (OCIF) and osteoprotegerin (OPG): a mechanism by which OPG/OCIF inhibits osteoclastogenesis in vitro". Endocrinology, 139, 1329-37.

Claims (7)

1. El uso de un inhibidor de IL-18 en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de disfunción cardíaca relacionada con sepsis, en donde el inhibidor se selecciona a partir de anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión a IL-18, IL-18BPa e IL-18BPc.
2. El uso de acuerdo con la reivindicación 1, en el que la proteína de unión a IL-18 está conjugada con PEG.
3. El uso de acuerdo con la reivindicación 1, en el que el inhibidor de IL-18 es un anticuerpo específico anti-IL-18 seleccionado entre anticuerpos quiméricos, humanizados y humanos.
4. El uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones precedentes, en el que el medicamento comprende además un inhibidor de una citoquina, en donde la citoquina se selecciona entre factor \alpha (TNF-\alpha) e IL-1\beta, y en donde dicho inhibidor de TNF-\alpha es la porción soluble de TNFRI o de TNFRII y el inhibidor de IL-1\beta es el antagonista de receptor de IL-1.
5. El uso de un vector de expresión que comprende la secuencia de codificación de un inhibidor de IL-18 seleccionado entre anticuerpos contra IL-18, y las proteínas de unión a IL-18 IL-18BPa e IL-18BPc, en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de disfunción cardíaca relacionada con sepsis.
6. El uso de un vector de expresión, que se define como en la reivindicación 5, para la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de la disfunción cardíaca relacionada con sepsis mediante terapia génica.
7. El uso de una célula que ha sido modificada genéticamente para producir un inhibidor de IL-18 seleccionado entre anticuerpos contra IL-18 y las proteínas de unión de IL-18 IL-18BPa e IL-18BPc en la fabricación de un medicamento para el tratamiento y/o la prevención de la disfunción cardíaca relacionada con sepsis.
ES02736912T 2001-05-16 2002-05-16 Uso de inhibidores de il-18 para el tratamiento o prevencion de la sepsis. Expired - Lifetime ES2334773T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US29146301P 2001-05-16 2001-05-16
US291463P 2001-05-16

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2334773T3 true ES2334773T3 (es) 2010-03-16

Family

ID=23120395

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES02736912T Expired - Lifetime ES2334773T3 (es) 2001-05-16 2002-05-16 Uso de inhibidores de il-18 para el tratamiento o prevencion de la sepsis.

Country Status (20)

Country Link
US (1) US20030008822A1 (es)
EP (1) EP1425028B1 (es)
JP (1) JP4502580B2 (es)
KR (1) KR100877033B1 (es)
CN (1) CN100556450C (es)
AT (1) ATE451930T1 (es)
BR (1) BR0210904A (es)
CA (1) CA2446942C (es)
CY (1) CY1109713T1 (es)
DE (1) DE60234778D1 (es)
DK (1) DK1425028T3 (es)
EA (1) EA009125B1 (es)
ES (1) ES2334773T3 (es)
HK (1) HK1066723A1 (es)
IL (2) IL158866A0 (es)
MX (1) MXPA03010575A (es)
PT (1) PT1425028E (es)
SI (1) SI1425028T1 (es)
UA (1) UA85531C2 (es)
WO (1) WO2002092008A2 (es)

Families Citing this family (37)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6894155B2 (en) 2000-10-11 2005-05-17 Viron Therapeutics Nucleic acid molecules and polypeptides for immune modulation
US7718368B2 (en) 2000-12-04 2010-05-18 Viron Therapeutics Inc. Immunomodulatory protein and useful embodiments thereof
PL1622939T3 (pl) 2003-05-13 2012-08-31 Merck Serono Sa Aktywne warianty białka wiążącego IL-18 i ich medyczne zastosowania
EP1628530B8 (en) 2003-05-15 2012-08-01 Genentech, Inc. Methods and compositions for the prevention and treatment of sepsis
US7482376B2 (en) 2003-07-03 2009-01-27 3-Dimensional Pharmaceuticals, Inc. Conjugated complement cascade inhibitors
US7968684B2 (en) 2003-11-12 2011-06-28 Abbott Laboratories IL-18 binding proteins
EP1752159A4 (en) * 2004-05-17 2009-07-01 Univ Keio MEDICAL COMPOSITION AND THERAPEUTIC PROCEDURE
FI116804B (fi) * 2004-05-18 2006-02-28 Ekspansio Engineering Ltd Oy Materiaalikappaleiden eri suuntiin osoittavien pintojen optinen tarkastus
SI2267024T1 (sl) 2005-06-03 2012-09-28 Ares Trading Sa Proizvodnja rekombinantnega IL-18 vezavnega proteina
ES2375831T3 (es) 2005-06-10 2012-03-06 Ares Trading S.A. Procedimiento para la purificación de prote�?nas de unión a il-18.
CA2681828A1 (en) * 2007-03-28 2008-10-09 Universidad De Barcelona Cd6 products for the treatment of sepsis
CL2008002153A1 (es) 2007-07-24 2009-06-05 Amgen Inc Anticuerpo aislado o fragmanto de unión de antigeno del mismo que se une al receptor de il-18 (il-18r); molecula de ácido nucleico codificante; celula huesped que la comprende; composición farmaceutica; uso médico para tratar o prevenir una condición asociada con il-18r; método in vitro para inhibir la unión de il-18 al il-18r.
PE20140190A1 (es) 2010-08-27 2014-02-10 Stem Centrx Inc Moduladores de proteinas notum y metodos de uso
EP3395356B1 (en) * 2011-02-18 2021-05-19 Stemdr Inc. Composition containing inducer of sirt1 expression for preventing or treating sepsis or septic shock
ES2691070T3 (es) 2012-05-11 2018-11-23 Kael-Gemvax Co.,Ltd Péptidos antiinflamatorios y composición que comprende los mismos
WO2013169077A1 (ko) 2012-05-11 2013-11-14 주식회사 카엘젬백스 악액질 예방 또는 치료용 조성물
WO2014010971A1 (ko) 2012-07-11 2014-01-16 주식회사 카엘젬백스 세포 투과성 펩티드, 그를 포함한 컨쥬게이트 및 그를 포함한 조성물
EP2987497B1 (en) 2013-04-19 2018-12-26 Gemvax & Kael Co., Ltd. Composition for treating and preventing ischemic damage
EP3004883B1 (en) 2013-06-07 2022-09-14 Gemvax & Kael Co., Ltd. Gv1001, gemcitabine and capecitabine for use in the treatment of pancreatic cancer in high eotaxin baseline level patients
ES2808076T3 (es) 2013-06-21 2021-02-25 Gemvax & Kael Co Ltd Regulador de la secreción hormonal, composición que lo contiene y procedimiento para controlar la secreción hormonal mediante su uso
KR102512797B1 (ko) * 2013-09-05 2023-03-22 에이비2 바이오 에스에이 염증성 질환에서 il-18 결합 단백질(il-18bp)
CA2926183C (en) 2013-10-23 2018-07-03 Gemvax & Kael Co., Ltd. Composition for treating and preventing benign prostatic hyperplasia
JP6553605B2 (ja) 2013-11-22 2019-07-31 ジェムバックス アンド カエル カンパニー,リミティド 血管新生抑制活性を有するペプチド、及びそれを含む組成物
EP3085380B1 (en) 2013-12-17 2020-06-17 Gemvax & Kael Co., Ltd. Composition for treating prostate cancer
GB201400997D0 (en) * 2014-01-21 2014-03-05 Vib Vzw Targeting of interleukin-1 and -18 in treatment of septic shock
US9937240B2 (en) 2014-04-11 2018-04-10 Gemvax & Kael Co., Ltd. Peptide having fibrosis inhibitory activity and composition containing same
US10662223B2 (en) 2014-04-30 2020-05-26 Gemvax & Kael Co., Ltd. Composition for organ, tissue, or cell transplantation, kit, and transplantation method
KR102413243B1 (ko) 2014-12-23 2022-06-27 주식회사 젬백스앤카엘 안질환 치료 펩티드 및 이를 포함하는 안질환 치료용 조성물
ES2799511T3 (es) 2015-02-27 2020-12-18 Gemvax & Kael Co Ltd Péptido para prevenir la pérdida de audición, y composición que lo comprende
CN107660150B (zh) 2015-03-05 2023-10-24 Ab2生物股份有限公司 Il-18结合蛋白(il-18bp)和抗体在炎性疾病中
EP3318265B1 (en) 2015-07-02 2021-08-18 Gemvax & Kael Co., Ltd. Peptide having anti-viral effect and composition containing same
JP7114481B2 (ja) 2016-04-07 2022-08-08 ジェムバックス アンド カエル カンパニー,リミティド テロメラーゼ活性の増加及びテロメアの延長の効能を有するペプチド、及びこれを含む組成物
JP2019535834A (ja) 2016-11-18 2019-12-12 ユニベルシタ デ バルセロナ 感染症及び関連炎症プロセスの処置のためのcd6及びイミペネムの併用療法
CN107715105B (zh) * 2017-10-26 2020-11-24 重庆医科大学 Il-34在制备治疗或预防脓毒症药物中的应用
CN109954131B (zh) * 2017-12-14 2023-05-02 深圳市中科艾深医药有限公司 一种肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体拮抗剂作为脓毒血症治疗药物的应用
CN111012899A (zh) * 2020-01-08 2020-04-17 重庆医科大学 Il-38的新用途
WO2024148232A2 (en) 2023-01-06 2024-07-11 Alector Llc Anti-il18 binding protein antibodies and methods of use thereof

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4847325A (en) * 1988-01-20 1989-07-11 Cetus Corporation Conjugation of polymer to colony stimulating factor-1
WO1991008231A1 (en) * 1989-11-29 1991-06-13 Brigham And Women's Hospital [Ala IL-8]77 AS A LEUKOCYTE ADHESION INHIBITOR
US5536637A (en) * 1993-04-07 1996-07-16 Genetics Institute, Inc. Method of screening for cDNA encoding novel secreted mammalian proteins in yeast
CA2268103A1 (en) * 1996-10-11 1998-04-23 Warner-Lambert Company Sulfonamide substituted aspartic acid interleukin-1.beta. converting enzyme inhibitors
IL131815A0 (en) * 1997-03-18 2001-03-19 Basf Ag Methods and compositions for modulating responsiveness to corticosteroids
US6054487A (en) 1997-03-18 2000-04-25 Basf Aktiengesellschaft Methods and compositions for modulating responsiveness to corticosteroids
IL121860A0 (en) * 1997-08-14 1998-02-22 Yeda Res & Dev Interleukin-18 binding proteins their preparation and use
CA2276216A1 (en) * 1998-06-24 1999-12-24 Kabushiki Kaisha Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo An artificial peptide capable of neutralizing the biological activity of interleukin-18
AU2001236807A1 (en) * 2000-02-10 2001-08-20 Abbott Laboratories Antibodies that bind human interleukin-18 and methods of making and using
KR20070057282A (ko) * 2000-02-21 2007-06-04 어플라이드 리서치 시스템스 에이알에스 홀딩 엔.브이. Il-18 저해물질의 용도
WO2002032374A2 (en) * 2000-10-18 2002-04-25 Immunex Corporation Methods for treating il-18 mediated disorders

Also Published As

Publication number Publication date
CY1109713T1 (el) 2014-08-13
JP4502580B2 (ja) 2010-07-14
US20030008822A1 (en) 2003-01-09
EP1425028A2 (en) 2004-06-09
MXPA03010575A (es) 2005-03-07
UA85531C2 (uk) 2009-02-10
WO2002092008A2 (en) 2002-11-21
IL158866A (en) 2011-01-31
KR100877033B1 (ko) 2009-01-07
DE60234778D1 (de) 2010-01-28
BR0210904A (pt) 2005-08-16
SI1425028T1 (sl) 2010-02-26
EA200301248A1 (ru) 2005-06-30
CA2446942A1 (en) 2002-11-21
WO2002092008A3 (en) 2004-04-08
EA009125B1 (ru) 2007-10-26
IL158866A0 (en) 2004-05-12
HK1066723A1 (en) 2005-04-01
JP2004531546A (ja) 2004-10-14
KR20040045400A (ko) 2004-06-01
CA2446942C (en) 2010-07-20
DK1425028T3 (da) 2010-03-01
EP1425028B1 (en) 2009-12-16
CN1529611A (zh) 2004-09-15
ATE451930T1 (de) 2010-01-15
EP1425028A4 (en) 2006-03-01
CN100556450C (zh) 2009-11-04
PT1425028E (pt) 2010-01-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2334773T3 (es) Uso de inhibidores de il-18 para el tratamiento o prevencion de la sepsis.
AU2001240636B8 (en) Use of IL-18 inhibitors
US7696154B2 (en) Methods for treating interleukin-18 mediated disorders with interleukin-18 binding proteins
US20100254941A1 (en) Interleukin-18 binding proteins, their preparation and use for the treatment of sepsis
AU2001240636A1 (en) Use of IL-18 inhibitors
ES2365600T3 (es) Uso de inhibidores de il-18.
US20040247598A1 (en) Use of il-18 inhibitors in hypersensitivity disorders
AU2002309887B2 (en) Use of IL-18 inhibitors for the treatment or prevention of sepsis
AU2002331376A1 (en) Use of IL-18 inhibitors in hypersensitivity disorders
AU2002309887A1 (en) Use of IL-18 inhibitors for the treatment or prevention of sepsis