JP5424521B2 - アルブミン融合タンパク質 - Google Patents
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Description
本発明は、一般に、アルブミンまたはアルブミンのフラグメントもしくは改変体に融合された治療用タンパク質(少なくとも1つのポリペプチド、抗体、ペプチド、またはそれらのフラグメントおよび改変体を含むが、これらに限定されない)に関する。本発明は、治療用アルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド、治療用アルブミン融合タンパク質、組成物、薬学的組成物、処方物およびキットを包含する。治療用アルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドで形質転換された宿主細胞もまた、本発明に含まれ、これらのポリヌクレオチド、および/または宿主細胞を使用して、本発明のアルブミン融合タンパク質を作製する方法も同様に、本発明に含まれる。
(定義)
以下の定義は、本明細書を通して使用される特定の用語の理解を容易にするために提供される。
上記のように、本発明のポリヌクレオチドは、治療用タンパク質の少なくともフラグメントもしくは改変体およびヒト血清アルブミンの少なくともフラグメントもしくは改変体を含むかあるいはこれらからなるタンパク質をコードし、これらは、互いに、好ましくは遺伝的融合によって結合している。
1つの実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質では、非ヒト動物種の1つ以上の血清アルブミンタンパク質が、同じ非ヒト動物種の1つ以上の成長ホルモンタンパク質に、そのN末端またはC末端のいずれかでタンデムかつインフレームで融合されている。非ヒト血清アルブミンおよび成長ホルモンタンパク質は、当該分野で周知であり、かつ公開されているデータベースにて利用可能である。例えば、表4は、GenBankにおいて見出される非ヒト血清アルブミン配列(第2列)および非ヒト成長ホルモン配列(第3列)に対応する登録番号を示す。好ましい実施形態において、表4に列挙される非ヒト動物種由来の血清アルブミンタンパク質は、同じ非ヒト動物種由来の成長ホルモンタンパク質に融合される。
(フラグメント)
本発明はさらに、表1に記載される治療タンパク質、アルブミンタンパク質、および/または本発明のアルブミン融合タンパク質のフラグメントに関する。
「改変体」とは、参照核酸またはポリペプチドとは異なるがそれらの本質的な特性は保持している、ポリヌクレオチドまたは核酸をいう。一般的に、改変体は全体的に非常に類似しており、そして、多くの領域において、参照核酸またはポリペプチドと同一である。
「機能的活性を有するポリペプチド」とは、治療的タンパク質の全長形態、プロタンパク質形態、および/または成熟形態に関連する1以上の既知の機能的活性を示し得るポリペプチドをいう。このような機能的活性としては、生物学的活性、抗原性[抗ポリペプチド抗体に結合(または結合についてポリペプチドと競合)する能力]、免疫原性(本発明の特定のポリペプチドに結合する抗体を生成する能力)、本発明のポリペプチドとマルチマーを形成する能力、およびポリペプチドについてのレセプターまたはリガンドに結合する能力が挙げられるがこれらに限定されない。
上記のように、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療用タンパク質のうちの少なくともフラグメントもしくは改変体と、ヒト血清アルブミンの少なくともフラグメントもしくは改変体とを含み、これらは、互いに、好ましくは遺伝子融合によって結合されている。
本発明はまた、表1に開示される治療用タンパク質に特異的に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含む、アルブミン融合タンパク質を包含する。用語「治療用タンパク質」は、治療用タンパク質に結合する抗体(例えば、表1の欄Iに記載される)ならびにそのフラグメントおよび改変体を包含することが、特に企図される。従って、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療用タンパク質の少なくともフラグメントもしくは改変体、および/または治療用タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含み得る。
基本的な抗体構造単位は、テトラマーを含むことが公知である。各テトラマーは、2つの同一なポリペプチド鎖対から構成され、各対は、1つの「軽鎖」(約25kDa)および1つの「重鎖」(約50〜70kDa)を有する。各鎖のアミノ末端部分は、抗原認識を主に担う約100〜110アミノ酸以上の可変領域fを含む。各鎖のカルボキシ末端部分は、エフェクター機能を主に担う定常領域を規定する。ヒト軽鎖は、κ軽鎖およびλ軽鎖として分類される。重鎖は、μ、δ、γ、α、またはεとして分類され、それぞれ、抗体のアイソタイプをIgM、IgD、IgG、IgA、およびIgEとして規定する。一般に、Fundamental Immunology、第3〜5章(Paul,W.編、第4版、Raven Press,N.Y.(1998)(すべての目的のためにその全体が参考として援用される)を参照のこと。各軽鎖/重鎖対の可変領域は、抗体結合部位を形成する。
本発明は、治療用タンパク質(例えば、表1に開示される)に結合する抗体の少なくともフラグメントまたは改変体を含むアルブミン融合タンパク質、またはそのフラグメントもしくは改変体を包含する。
治療用タンパク質に結合しかつ本発明のアルブミン融合タンパク質の治療用タンパク質部分に対応し得る抗体は、当該分野で公知の任意の適切な方法によって産生され得る。目的の抗原に対するポリクローナル抗体は、当該分野で周知の種々の手順によって産生され得る。例えば、治療用タンパク質が種々の宿主動物(ウサギ、マウス、ラットなどを含むがこれらに限定されない)に投与されて、その抗原に対して特異的なポリクローナル抗体を含む血清の産生を誘導し得る。種々のアジュバントが、宿主種に依存して、免疫学的応答を増加させるために使用され得、そしてフロイント(完全および不完全)、水酸化アルミニウムのようなミネラルゲル、リゾレシチンのような界面活性物質、プルロニック(pluronic)ポリオール、ポリアニオン、ペプチド、油性乳剤、キーホールリンペットヘモシアニン、ジニトロフェノール、ならびにBCG(カルメット−ゲラン杆菌)およびcorynebacterium parvumのような潜在的に有用なヒトアジュバントを含むが、これらに限定されない。このようなアジュバントはまた、当該分野で周知である。
本発明はさらに、抗体およびそのフラグメントをコードするヌクレオチド配列を含むポリヌクレオチドを提供する。本発明はまた、ストリンジェントまたはより低いストリジェンシーのハイブリダイゼーション条件下で(例えば、上記に定義されるような)抗体(好ましくは、治療用タンパク質と特異的に結合する、そしてより好ましくは、表2の「配列番号Z」の欄に開示される「治療用タンパク質X」のアミノ酸配列を有するポリペプチドに結合する抗体)をコードするポリヌクレオチドにハイブリダイズするポリヌクレオチドを含む。
抗体、またはそのフラグメント、誘導体もしくはアナログ(例えば、抗体の重鎖もしくは軽鎖または単鎖抗体)の組換え発現は、その抗体をコードするポリヌクレオチドを含有する発現ベクターの構築を必要とする。一旦、抗体分子または抗体の重鎖もしくは軽鎖、あるいはそれらの部分(好ましくは、重鎖または軽鎖の可変ドメインを含有する)をコードする本発明のポリヌクレオチドが得られると、抗体分子の産生のためのベクターは、当該分野で周知の技術を用いる組換えDNA技術によって生成され得る。従って、抗体をコードするヌクレオチド配列を含有するポリヌクレオチドの発現によってタンパク質を調製するための方法は、本明細書に記載される。当業者に周知の方法は、抗体をコードする配列ならびに適切な転写制御シグナルおよび翻訳制御シグナルを含有する発現ベクターの構築のために使用され得る。これらの方法には、例えば、インビトロの組換えDNA技術、合成技術、およびインビボの遺伝子組換えが挙げられる。従って、本発明は、プロモーターに作動可能に連結された、本発明の抗体分子、あるいはその重鎖もしくは軽鎖、または重鎖もしくは軽鎖の可変ドメインをコードするヌクレオチド配列を含む、複製可能なベクターを提供する。このようなベクターは、抗体分子の定常領域(例えば、PCT公開 WO86/05807;PCT公開 WO89/01036;および米国特許第5,122,464号を参照のこと)をコードするヌクレオチド配列を含み得、そしてこの抗体の可変ドメインは、重鎖または軽鎖の全体の発現のためにこのようなベクターにクローニングされ得る。
治療タンパク質に結合する抗体、またはフラグメントもしくは改変体は、精製を容易にするペプチドのような、マーカー配列に融合され得る。好ましい実施形態において、マーカーアミノ酸配列は、とりわけヘキサ−ヒスチジンペプチド(例えば、pQEベクター(QIAGEN,Inc.,9259 Eton Avenue,Chatsworth,CA,91311)において提供されるタグ)であり、これらの多くのマーカーアミノ酸配列が市販されている。例えば、Gentzら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:821−824(1989)に記載されるように、ヘキサ−ヒスチジンは、融合タンパク質の都合の良い精製を提供する。精製のために有用な他のペプチドタグは、インフルエンザ赤血球凝集素タンパク質由来のエピトープに対応する赤血球凝集素タグ(「HA」タグともまた称される)(Wilsonら、Cell 37:767(1984))、および「flag」タグを含むが、これに限定されない。
治療タンパク質に結合し、そして本発明のアルブミン融合タンパク質の治療タンパク質部分に対応し得る抗体としては、表1の「治療タンパク質X」の欄に開示される治療タンパク質に結合する抗体、またはそのフラグメントもしくは改変体が挙げられるが、これらに限定されない。
本発明の抗体、あるいは治療タンパク質(またはそのフラグメントもしくは改変体)に結合する抗体の少なくとも1つのフラグメントまたは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質は、細胞株および生物学的サンプルの免疫表現型分類のために利用され得る。本発明の治療タンパク質は、細胞特異的マーカーとして、あるいはより詳細には、特定の細胞型の分化および/または成熟の種々の段階で差示的に発現される細胞マーカーとして有用であり得る。特異的エピトープ、またはエピトープの組み合わせに対して指向されるモノクロナール抗体(あるいは治療タンパク質に結合する抗体の少なくとも1つのフラグメントまたは改変体を含むルブミン融合タンパク質)は、マーカーを発現する細胞集団のスクリーニングを可能とする。種々の技術が、マーカーを発現する細胞集団をスクリーニングするために、モノクロナール抗体(あるいは治療タンパク質に結合する抗体の少なくとも1つのフラグメントまたは改変体を含むルブミン融合タンパク質)を用いて利用され得、そしてその技術には、抗体でコーティングされた磁気ビーズを用いる磁気分離、固体マトリクス(すなわち、プレート)に付着した抗体を用いる「パンニング」、ならびにフローサイトメトリー(例えば、米国特許第5,985,660号;およびMorrisonら、Cell,96:737−49(1999)を参照のこと)が挙げられる。
本発明の抗体、または治療タンパク質(またはそのフラグメントもしくは改変体)に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質は、種々の方法で特徴づけされ得る。特に、治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントまたは改変体を含む、本発明のアルブミン融合タンパク質は、本明細書中に記載される技術を使用してか、または当該分野で公知の技術を慣用的に改変して、アルブミン融合タンパク質の治療タンパク質部分に結合する抗体に対応する、治療タンパク質に結合する抗体によって特異的に結合される同じ抗原に特異的に結合する能力について、アッセイされ得る。
本発明はさらに、抗体ベースの治療に関し、この治療は、1つ以上の開示された疾患、障害、または状態を処置するために、動物、好ましくは哺乳動物、そして最も好ましくはヒトの患者に、本発明の抗体、または治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質を投与する工程を包含する。本発明の治療化合物としては、本発明の抗体(本明細書中に記載されるような、それらのフラグメント、アナログおよび誘導体を含む)、本発明の抗体をコードする核酸(本明細書中に記載されるような、それらのフラグメント、アナログおよび誘導体ならびに抗イディオタイプ抗体を含む)、治療タンパク質に結合する抗体の少なくとも1つのフラグメントまたは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質、ならびにこのようなアルブミン融合タンパク質をコードする核酸が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の抗体、または治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療タンパク質の異常な発現および/または活性に関連した疾患、障害または状態(本明細書中に記載される任意の1つ以上の疾患、障害、または状態を含むがこれらに限定されない)を処置、阻害または予防するために使用され得る。治療タンパク質の異常な発現および/または活性に関連した疾患、障害または状態の処置および/または予防は、それらの疾患、障害または状態に関連した症状を緩和する工程を含むが、これに限定されない。本発明の抗体、または治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントもしくは改変体を含む本発明のアルブミン融合タンパク質は、当該分野で公知であるか、または本明細書中に記載されるように、薬学的に受容可能な組成物中に提供され得る。
特定の実施形態において、治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントまたは変異体を含む治療タンパク質またはアルブミン融合タンパク質に結合する抗体をコードする配列を含む核酸は、遺伝子治療の方法によって、治療タンパク質の異常な発現および/または活性に関連する疾患または障害を処置、阻害または妨害するために投与される。遺伝子治療とは、発現されるまたは発現可能な核酸の被験体への投与によって実施される治療をいう。本発明の実施形態において、核酸は、治療的効果を媒介するこれらのコードされたタンパク質を作製する。
本発明の化合物または薬学的組成物は、好ましくは、ヒトでの使用の前にインビトロで、そして次いでインビボで、所望の治療活性または予防活性について試験される。例えば、化合物または薬学的組成物の、治療有用性または予防有用性を証明するためのインビトロアッセイとしては、細胞株または患者組織サンプルに対する化合物の効果が挙げられる。細胞株および/または組織サンプルに対する化合物または組成物の効果は、当業者に公知である技術(ロゼット形成アッセイおよび細胞溶解アッセイが挙げられるがこれらに限定されない)を利用して決定され得る。本発明に従って、特定の化合物の投与が示されるか否かを決定するために用いられ得るインビトロアッセイとしては、インビトロ細胞培養アッセイが挙げられ、このアッセイでは、患者組織サンプルが培養物において増殖し、そして化合物に曝されるか、そうでなければ化合物が投与され、そして、組織サンプルに対するそのような化合物の効果が観察される。
本発明は、被験体への有効量の本発明の化合物または薬学的組成物の投与による処置、阻害および予防の方法を提供する。好ましい実施形態において、化合物は実質的に精製される(例えば、その効果を制限するかまたは望ましくない副作用を生じる物質は実質的にない)。被験体としては、好ましくは、ウシ、ブタ、ウマ、ニワトリ、ネコ、イヌなどの動物が挙げられるがそれらに限定されない動物であり、そして好ましくは哺乳動物であり、そして最も好ましくはヒトである。
治療タンパク質(またはフラグメントもしくはそれらの変異体)(治療タンパク質に結合する抗体の少なくともフラグメントまたは変異体を含むアルブミン融合タンパク質を含む)に結合する標識化抗体、ならびにその誘導体およびそのアナログは、診断目的のために使用されて、治療タンパク質の異常な発現および活性に関連する疾患、障害または/および状態を検出、診断またはモニターし得る。本発明は、治療タンパク質の異常な発現の検出について提供し、これは、(a)目的のポリペプチドに特異的な1つ以上の抗体を使用して、個体の細胞または体液中の治療タンパク質の発現をアッセイする工程、および(b)この遺伝子発現レベルと標準的な遺伝子発現のレベルを比較する工程、を包含し、これによって、その標準的な発現レベルと比較されるアッセイされたポリペプチド遺伝子発現レベルの増加または減少が、異常な発現を示す。
本発明は、上記の方法において用いられ得るキットを提供する。1つの実施形態においては、キットは、1以上の容器中に、抗体(好ましくは精製された抗体)を備える。特定の実施形態においては、本発明のキットは、このキットに含まれる抗体と特異的に免疫反応性であるエピトープを含む、実質的に分離されたポリペプチドを備える。好ましくは、本発明のキットは、目的のポリペプチドと反応しないコントロール抗体を、さらに備える。別の特定の実施形態においては、本発明のキットは、目的のポリペプチドとの抗体の結合(例えば、この抗体は、検出可能な基質(例えば、抗体は、蛍光化合物、酵素基質、放射性化合物または発光化合物)と結合体化され得るか、あるいは第一の抗体を認識する第二の抗体は、検出可能な基質と結合体化され得る)を検出するための手段を備える。
本発明は、アルブミン融合タンパク質および疾患または障害を処置、妨害、または改善する方法に一般的に関する。本明細書において使用される場合、「アルブミン融合タンパク質」とは、少なくとも一つのアルブミン分子(もしくはフラグメントまたはそれらの変異体)の少なくとも一つの治療タンパク質(もしくはフラグメントまたはそれらの変異体)への融合によって形成されるタンパク質をいう。本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療タンパク質の少なくともフラグメントまたは変異体およびヒト血清アルブミンの少なくともフラグメントまたは変異体を含み、好ましくは遺伝子融合によって(すなわち、アルブミン融合タンパク質は、治療タンパク質の全部または一部をコードするポリヌクレオチドが、アルブミンの全部または一部をコードするポリヌクレオチドと骨格内で結合される核酸の翻訳によって発生される)別の一つとともに連結され、または別の一つに連結される。治療タンパク質およびアルブミンタンパク質は、いったんアルブミン融合タンパク質の部分になると、各々アルブミン融合タンパク質の「部分」、「領域」または「成分」と言われ得る。
HAまたはHAのドメインフラグメント内の1つ以上のペプチドループ内のアミノ酸のランダム化変異。ループ内の1つ、より多くまたは全ての残基のいずれかが、この様式で変異され得る。
(a)および/または(b)に加えて、N末端、C末端、またはN末端およびC末端のペプチド/タンパク質融合。
本発明のアルブミン融合タンパク質は、酵母、細菌のような微生物、またはヒトもしくは動物の細胞株からの分泌によって、組換え分子として産生され得る。好ましくは、このポリペプチドは、宿主細胞から分泌される。
MPIF−1シグナル配列(例えば、GenBank信託番号AAB51134のアミノ酸1〜21)MKVSVAALSCLMLVTALGSQA (配列番号2132)
スタンニオカルシン(stanniocalcin)シグナル配列(MLQNSAVLLLLVISASA、配列番号1054)
HSAシグナル配列のプレ−プロ(pre−pro)領域(例えば、MKWVTFISLLFLFSSAYSRGVFRR、配列番号1176)
HSAシグナル配列のプレ領域(例えば、MKWVTFISLLFLFSSAYS, 配列番号1177)またはそれらの改変体(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYS)(配列番号1168)
転化酵素シグナル配列(例えば、MLLQAFLFLLAGFAAKISA、配列番号1108)
酵母交配因子αシグナル配列(例えば、MRFPSIFTAVLAFAASSALAAPVNTTTEDETAQIPAEAVIGYSDLEGDFDVAVLPFSNSTNNGLLFINTTIASIAAKEEGVSLEKR、配列番号1109もしくはMRFPSIFTAVLAFAASSALAAPVNTTTEDETAQIPAEAVIGYSDLEGDFDVAVLPFSNSTNNGLLFINTTIASIAAKEEGVSLDKR、配列番号1109)
K.lactisキラー毒素リーダー配列
ハイブリッドシグナル配列(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRSLEKR、配列番号1110)
HSA/MFα−1ハイブリッドシグナル配列(HSA/kex2としてもまた公知)(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRSLDKR、配列番号1111)
K.lactisキラー/MFα−1融合リーダー配列(例えば、MNIFYIFLFLLSFVQGSLDKR、配列番号1169)
免疫グロブリンIgシグナル配列(例えば、MGWSCIILFLVATATGVHS、配列番号1095)
Fibulin B前駆体シグナル配列(例えば、MERAAPSRRVPLPLLLLGGLALLAAGVDA、配列番号1096)
クラスター前駆体シグナル配列(例えば、MMKTLLLFVGLLLTWESGQVLG、配列番号1097)
インスリン様増殖因子結合タンパク質4シグナル配列(例えば、MLPLCLVAALLLAAGPGPSLG、配列番号1098)
HSAシグナル配列のプレ−プロ前領域の改変体(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRGVFRR(配列番号1167))、
MKWVTFISLLFLFAGVLG(配列番号1099)、
MKWVTFISLLFLFSGVLG(配列番号1100),
MKWVTFISLLFLFGGVLG(配列番号1101),
改変されたHSAリーダーHSA #64
MKWVTFISLLFLFAGVSG(配列番号2133);
改変されたHSAリーダーHSA #66
MKWVTFISLLFLFGGVSG(配列番号2134);
改変されたHSA(A14)リーダー−
MKWVTFISLLFLFAGVSG(配列番号1102);
改変されたHSA(S14)リーダー(改変されたHSA #65としてもまた公知)− MKWVTFISLLFLFSGVSG(配列番号1103)
改変されたHSA(G14)リーダー-
MKWVTFISLLFLFGGVSG(配列番号1104)、またはMKWVTFISLLFLFGGVLGDLHKS(配列番号1105)
コンセンサスシグナル配列(MPTWAWWLFLVLLLALWAPARG、配列番号1055)
酸ホスファターゼ(PH05)リーダー(例えば、MFKSVVYSILAASLANA 配列番号2135)
MFoz−1のプレ配列
0グルカナーゼ(BGL2)のプレ配列
キラー毒素リーダー
キラー毒素のプレ配列
k.lactisキラー毒素プレプロ(29アミノ酸;プレの16アミノ酸およびプロの13アミノ酸)MNIFYIFLFLLSFVQGLEHTHRRGSLDKR(配列番号2136)
S.diastaticusグルコアルニラーゼ(glucoanylase)I1分泌リーダー配列
S.carlsbergensisαガラクトシド(MEL1)分泌リーダー配列
Candida glucoarnylaseリーダー配列
EP−A−387 319(参考として本明細書中で援用される)において開示されたハイブリッドリーダー
gp67シグナル配列(バキュロウイルス発現系との関連)(例えば、GenBank信託番号AAA72759のアミノ酸1〜19)または
治療タンパク質Xの天然リーダー;
JP 62−096086(911036516として認可される、参考として本明細書中で援用される)において開示されるような、S.cerevisiae転化酵素(SUC2)リーダー;または
イヌリナーゼ−MKLAYSLLLPLAGVSASVINYKR(配列番号2137).
改変されたTA57プロペプチドリーダー改変体 #1-MKLKTVRSAVLSSLFASQVLGQPIDDTESQTTSVNLMADDTESAFATQTNSGGLDVVGLISMAKR(配列番号2128)
改変されたTA57プロペプチドリーダー改変体 #2−MKLKTVRSAVLSSLFASQVLGQPIDDTESQTTSVNLMADDTESAFATQTNSGGLDVVGLISMAEEGEPKR(配列番号2129)
(アルブミン融合タンパク質の組換え産生および合成的産生のさらなる方法)
本発明はまた、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含むベクター、宿主細胞、および合成技術および組換え技術によるアルブミン融合タンパク質の産生に関連する。例えば、ベクターは、ファージベクター、プラスミドベクター、ウイルスベクター、またはレトロウイルスベクターであり得る。レトロウイルスベクターは、複製コンピテント、または複製欠損であり得る。後者の場合、一般的にウイルス増殖は、補完性(complementing)宿主細胞にのみ生じる。
a)MPIF−1シグナル配列(例えば、GenBank信託番号AAB51134のアミノ酸1−21)MKVSVAALSCLMLVTALGSQA(配列番号2132)
b)スタンニオカルシン(stanniocalcin)シグナル配列(MLQNSAVLLLLVISASA、配列番号1054)
c)HSAシグナル配列のプレ−プロ領域(例えば、MKWVTFISLLFLFSSAYSRGVFRR、配列番号1176)
d)HSAシグナル配列のプレ領域(例えば、MKWVTFISLLFLFSSAYS、配列番号1177)またはそれらの改変体、例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYS、(配列番号1168)
e)転化酵素シグナル配列(例えば、MLLQAFLFLLAGFAAKISA、配列番号1108)
f)酵母交配因子αシグナル配列(例えば、MRFPSIFTAVLAFAASSALAAPVNTTTEDETAQIPAEAVIGYSDLEGDFDVAVLPFSNSTNNGLLFINTTIASIAAKEEGVSLEKR、配列番号1109またはMRFPSIFTAVLAFAASSALAAPVNTTTEDETAQIPAEAVIGYSDLEGDFDVAVLPFSNSTNNGLLFINTTIASIAAKEEGVSLDKR、配列番号1109)
g)K.lactisキラー毒素リーダー配列
h)ハイブリッドシグナル配列(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRSLEKR、配列番号1110)
i)HSA/MFα−1ハイブリッドシグナル配列(HSA/kex2としてもまた公知)(例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRSLDKR、配列番号1111)
j)K.lactisキラー/MFα−1融合リーダー配列(例えば、MNIFYIFLFLLSFVQGSLDKR、配列番号1169)
k)免疫グロブリンIgシグナル配列(例えば、MGWSCIILFLVATATGVHS、配列番号1095)
l)Fibulin B前駆体シグナル配列(例えば、MERAAPSRRVPLPLLLLGGLALLAAGVDA、配列番号1096)
m)クルステリン(clusterin)前駆体シグナル配列(例えば、MMKTLLLFVGLLLTWESGQVLG、配列番号1097)
n)インスリン様増殖因子結合タンパク質4シグナル配列(例えば、MLPLCLVAALLLAAGPGPSLG、配列番号1098)
o)以下のようなHSAシグナル配列のプレ−プロ−領域の改変体、例えば、MKWVSFISLLFLFSSAYSRGVFRR(配列番号1167)、
MKWVTFISLLFLFAGVLG(配列番号1099)、
MKWVTFISLLFLFSGVLG(配列番号1100)、
MKWVTFISLLFLFGGVLG(配列番号1101)、
改変されたHSAリーダーHSA #64
MKWVTFISLLFLFAGVSG(配列番号2133);
改変されたHSAリーダーHSA #66
MKWVTFISLLFLFGGVSG(配列番号2134);
改変されたHSA(A14)リーダー−
MKWVTFISLLFLFAGVSG(配列番号1102);
改変されたHSA(S14)リーダー(改変されたHSA #65としてもまた公知)−
MKWVTFISLLFLFSGVSG(配列番号1103)、
改変されたHSA(G14)リーダー−
MKWVTFISLLFLFGGVSG(配列番号1104)、またはMKWVTFISLLFLFGGVLGDLHKS(配列番号1105)
p)コンセンサスシグナル配列(MPTWAWWLFLVLLLALWAPARG、配列番号1055)
q)酸ホスファターゼ(PH05)リーダー(例えば、MFKSVVYSILAASLANA、配列番号2135)
r)MFoz−1のプレ配列
s)0 グルカナ−ゼ(BGL2)のプレ配列
t)キラー毒素リーダー
u)キラー毒素のプレ配列
v)k.lactisキラー毒素プレプロ(29アミノ酸;プレの16アミノ酸およびプロの13アミノ酸)MNIFYIFLFLLSFVQGLEHTHRRGSLDKR(配列番号2136)
w)S.diastaticusグルコアミラーゼII分泌リーダー配列
x)S.carlsbergensisαガラクトシダーゼ(MEL1)分泌リーダー配列
y)Candida glucoarnylaseリーダー配列
z)EP−A−387 319(参考として本明細書中で援用される)において開示されるハイブリッドリーダー
aa)gp67シグナル配列(バキュロウイルス発現系との関連)(例えば、GenBank信託番号AAA72759のアミノ酸1〜19)または
bb)治療用タンパク質Xの天然リーダーX;
cc)JP62−096086(911036516として認可され、参考として本明細書中で援用される)において開示されるような、S.cerevisiae転化酵素(SUC2)リーダー;または
dd)イヌリナーゼ−MKLAYSLLLPLAGVSASVINYKR(配列番号2137)
ee)改変されたTA57プロペプチドリーダー改変体 #1−MKLKTVRSAVLSSLFASQVLGQPIDDTESQTTSVNLMADDTESAFATQTNSGGLDVVGLISMAKR(配列番号2128)。
ff)改変されたTA57プロペプチドリーダー改変体 #2−MKLKTVRSAVLSSLFASQVLGQPIDDTESQTTSVNLMADDTESAFATQTNSGGLDVVGLISMAEEGEPKR(配列番号2129)
グルタミンシンターゼ(GS)またはDHFRを、選択マーカーとして用いるベクターは、薬物(それぞれメチオニンスルホキシミン(methionine sulphoximine)またはメトトレキサート)の存在下で、増幅され得る。グルタミンシンターゼベースのベクターの利点は、グルタミンシンターゼ陰性の細胞株(例えば、マウス骨髄腫細胞株(NSO))が利用可能であることである。グルタミンシンターゼ発現系はまた、グルタミンシンターゼ発現細胞(例えば、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞)においても、さらなるインヒビターを提供して内因性遺伝子の機能を妨げることにより、機能し得る。グルタミンシンターゼ発現系およびその構成要素は、PCT公開第WO87/04462号;同第WO86/05807号;同第WO89/01036号;同第WO89/10404号;および同第WO91/06657号(これらの全体が本明細書中で参考として援用される)において記載される。さらに、グルタミンシンターゼ発現ベクターは、Lonza Biologics,Inc.(Portsmouth,NH)から得られ得る。GS発現系を用いた、マウス骨髄腫細胞におけるモノクローナル抗体の発現および生成は、Bebbingtonら,Bio/technology 10:169(1992)ならびにBibliaおよびRobinson Biotechnol.Prog.11:1(1995)(本明細書中で参考として援用される)において記載される。
さらに、当該分野で公知の技術は、相同組換えを介して、異種ポリヌクレオチド(例えば、アルブミンタンパク質、またはそのフラグメントもしくは改変体をコードするポリヌクレオチド)および/または異種制御領域(例えば、プロモーターおよび/またはエンハンサー)を、治療タンパク質をコードする内因性ポリヌクレオチド配列と、作動可能に連結するために使用され得る(例えば、1997年6月24日に発行された米国特許第5,641,670号;国際公開第WO 96/29411号;国際公開第WO 94/12650号;Kollerら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:8932−8935(1989);およびZijlstraら,Nature 342:435−438(1989)を参照のこと。これらの開示の各々は、それら全体において参考として援用される)。
特定の実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、陽イオン交換クロマトグラフィーを使用して精製される。陽イオン交換クロマトグラフィーとしては、SP−セファロースカラム、CMセファロースカラム、ポロス(poros)HSカラム、ポロスCMカラム、Toyopearl SPカラム、Toyopearl CMカラム、リソース/ソースSカラムおよびリソース/ソースCMカラム、Fractogel SカラムおよびFractogel CMカラムならびにこれらの等価物および類似物が挙げられるが、これらに限定されない。
特定の実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、サイズ排除クロマトグラフィーを使用して精製される。サイズ排除クロマトグラフィーとしては、セファロースS100カラム、セファロースS200カラム、セファロースS300カラム、セファデックスレジンカラムならびにこれらの等価物および類似物が挙げられるが、これらに限定されない。
本明細書中で同定されるポリヌクレオチドの各々は、多くの様式において試薬として使用され得る。以下の記載は、例示的であると見なされるべきであり、公知の技術を利用する。
本明細書中で同定される各々のポリペプチドは、多くの方法において使用され得る。以下の記述は、例示として考慮されるべきであり、そして公知の技術を利用する。
本発明の化合物は、哺乳動物(好ましくはヒト)における種々の障害の診断、処置、予防および/または予測のために有用である。このような障害としては、表1の相当する列、ならびに「免疫アッセイ」、「血液関連障害」、「過剰増殖障害」、「腎臓障害」、「心臓血管障害」、「呼吸障害」、「抗新脈管形成活性」、「細胞レベルでの疾患」、「創傷治癒および上皮細胞増殖」、「神経活性および神経学的疾患」、「内分泌障害」、「生殖系障害」、「感染障害」、「再発症」、および/または「胃腸障害」と見出しをつけた節のもとで本明細書において、各治療タンパク質について記載されたものが挙げられるが、これに限定されない。
さらに、当該分野で公知のキレート剤分子は、アルブミン融合タンパク質を標識するために使用され得る。キレート剤は、本発明のアルブミン融合タンパク質と結合し、前記タンパク質を、放射性核種または蛍光標識を含む金属イオンで標識することを容易にし得る。例えば、Subramanian,R.およびMeares,C.F.,「Bifunctional Chelating Agents for Radiometal−labeled monoclonal Antibodies」,(Cancer Imaging with Radiolabeled Antibodies(D.M.Goldenberg編)Kluwer Academic Publications,Boston);Saji,H.,「Targeted delivery of radiolabeled imaging and therapeutic agents:bifunctional radiopharmaceuticals.」Crit.Rev.Ther.Drug Carrier Syst.16:209−244(1999);Srivastava S.C.およびMease R.C.,「Progress in research on ligands,nuclides and techniques for labeling monoclonal antibodies.」Int.J.Rad.Appl.Instrum.B 18:589−603(1991);およびLiu,S.およびEdwards,D.S.,「Bifunctional chelators for therapeutic lanthanide radiopharmaceuticals.」Bioconjug.Chem.12:7−34(2001)を参照のこと。前記アルブミン融合タンパク質に共有結合し得る任意のキレート剤は、本発明に従って使用され得る。キレート剤は、アルブミン融合タンパク質に対するキレート部分と結合するリンカー部分をさらに含み得る。
(トランスジェニック生物体)
本発明のアルブミン融合タンパク質を発現するトランスジェニック生物体もまた、本発明に含まれる。トランスジェニック生物体は、一般的に組換え体、外因性または転移されたクローン化遺伝材料に改変された生物体である。このような遺伝材料は、しばしば形質転換体として言われる。形質転換体の核酸配列は、コードタンパク質の最適な発現および分泌に必要とされ得る、1つ以上の転写制御配列および他の核酸配列(例えば、イントロン)を含み得る。形質転換体は、生物体または生物体により生産される産物(例えば、生物体の乳(milk)、血液、尿、卵、髪または種子)からの再生を容易にする様式で、コードタンパク質の発現を支配するように設計され得る。形質転換体(は、標的動物の種と同種のゲノムまたは異種のゲノムに由来する核酸配列からなり得る。形質転換体は、特定の核酸配列が他の方法で普通見出されないゲノムの位置でか、または形質転換体の正常位置のいずれかで組み込まれ得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質またはそれらの処方物は、任意の従来の方法(非経口(例えば、皮下または筋肉内)注入または静脈内注入を含む)により投与され得る。処置は、期間にわたって、単一の用量または複数の用量からなり得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質をコードする構築物は、遺伝子治療プロトコールの一部として使用され得、アルブミン融合タンパク質の治療有効投与量を送達し得る。核酸の、細胞へのインビボ導入に関する好ましいアプローチは、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードする核酸を含む、ウイルスベクターの使用による。ウイルスベクターを用いる細胞の導入は、標的細胞の大きな集団が、核酸を受け取り得るという利点を有する。さらに、ウイルスベクター内にコードされる分子(例えば、ウイルスベクター内に含まれたcDNAとして)は、ウイルスベクター核酸を得た細胞内で効果的に発現される。
また本発明によって包含されるものは、障害、疾患および状態を処置または予防するための遺伝子治療方法である。この遺伝子治療方法は、本発明のアルブミン融合タンパク質の発現を達成するための、核酸(DNA、RNAおよびアンチセンスDNAまたはRNA)配列の動物への導入に関する。この方法は、標的組織によるこの融合タンパク質の発現のために必要なプロモータおよび他の任意の遺伝因子と、作動可能に連結した本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを必要とする。このような遺伝子治療および送達技術は当該分野において公知である(例えば、本明細書中に参考として援用される、WO90/11092を参照のこと)。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/またはアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは1つ以上の生物学的活性を試験するアッセイにおいて使用され得る。あるアルブミン融合タンパク質および/またはアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドが、ある特定のアッセイにおいて活性を示した場合、その融合タンパク質に対応する治療タンパク質はその生物学的活性に関連する疾患に関与している可能性がある。従って、その融合タンパク質は関連する疾患の治療に使用され得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、例えば、免疫細胞の増殖、分化もしくは動員(走化性)を活性化または阻害することによる、免疫系の疾患、障害および/または状態を処置、予防、診断および/または予後診断において有用であり得る。免疫細胞は、造血と呼ばれるプロセスを介して発生し、多能性幹細胞から骨髄性細胞(血小板、赤血球、好中球およびマクロファージ)およびリンパ系細胞(Bリンパ球およびTリンパ球)を生成する。これらの免疫疾患、障害および/または状態の病因は、遺伝的、身体的(somatic)(例えば、癌およびいくつかの自己免疫性障害)、後天的(例えば、化学療法もしくは毒素による)または感染的であり得る。さらに、本発明の融合タンパク質および本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、特定の免疫系の疾患または障害のマーカーまたは検出物質(detector)として使用され得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用して、止血性活性(出血を止めること)または血栓崩壊活性(血餅形成)を調節し得る。例えば、止血活性または血栓崩壊活性を増大させることにより、本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用し、血液凝固の疾患、障害および/または状態(例えば、無線維素原血症、因子欠損症、血友病)、血液血小板の疾患、障害および/または状態(例えば、血小板減少症)、あるいは外傷、手術または他の原因から生じる創傷を処置または予防し得る。あるいは、止血活性または血栓崩壊活性を減少させ得る本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用し、凝血を阻害または溶解し得る。心臓発作(梗塞)、発作(stroke)または瘢痕の処置または予防において、これらの分子は重要であり得る。
特定の実施形態では、本発明の融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、過剰増殖性障害(新生物を含む)を処置または検出するために使用され得る。本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、直接的相互作用または間接的相互作用を通して、障害の増殖を阻害し得る。あるいは、本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、過剰増殖性障害を阻害し得る他の細胞を増殖し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用して、腎臓系の障害を、処置、予防、診断、および/または予後判定し得る。本発明の組成物を用いて診断、予後判定、予防、および/または処置され得る腎臓障害としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:腎不全、腎炎、腎臓の血管障害、代謝性腎臓障害および先天性腎臓障害、腎臓の尿障害、自己免疫障害、硬化症および壊死、電解質不均等、および腎臓癌。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用して、四肢虚血のような末梢動脈疾患を含むが、これらに限定されない心臓血管障害を処置、予防、診断、および/または予後判定し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、呼吸系の疾患および/または障害の処置、予防、診断、および/または予後判定するために用いられ得る。
新脈管形成の内因性の、刺激因子とインヒビターとの間の天然に存在する平衡は、阻害影響が優勢である平衡である。Rastinejadら、Cell 56:345〜355(1989)。新生血管形成が正常な生理学的条件下において生じるまれな場合(例えば、創傷治癒、器官再生、胚発生、および雌性生殖プロセス)において、新脈管形成は、厳密に調節され、そして空間的および時間的に定められる。病的な新脈管形成の条件(例えば、固形腫瘍増殖を特徴付ける)の下において、これらの調節の制御はできない。調節されていない新脈管形成は病的になり、そして多くの新生物性疾患および非新生物性疾患の進行を維持する。多くの重篤な疾患は、固形腫瘍の増殖および転移、関節炎、いくつかの型の眼の障害および乾癬を含む、異常な新生血管形成により支配される。例えば、Mosesら、Biotech.9:630〜634(1991);Folkmanら、N.Engl.J.Med.、333:1757〜1763(1995);Auerbachら、J.Microvasc.Res.29:401〜411(1985);Folkman、Advances in Cancer Research、KleinおよびWeinhouse編、Academic Press、New York、175〜203頁(1985);Patz、Am.J.Opthalmol.94:715〜743(1982);およびFolkmanら、Science 221:719〜725(1983)による概説を参照のこと。多くの病的状態において、新脈管形成のプロセスは、その疾患状態に寄与する。例えば、固形腫瘍の増殖が新脈管形成に依存することを示唆する有意なデータが蓄積されている。FolkmanおよびKlagsbrun、Science 235:442〜447(1987)。
本発明の融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドによって処置、予防、診断、および/または予後判定され得る細胞生存の増大あるいはアポトーシスの阻害に関連する疾患には、癌(例えば、濾胞性リンパ腫、p53変異を有する癌腫、およびホルモン依存性腫瘍、これらは以下:結腸癌、心臓腫瘍、膵臓癌、黒色腫、網膜芽細胞腫、神経膠芽細胞腫、肺癌、腸癌、精巣癌、胃癌、神経芽細胞腫、粘液腫、筋腫、リンパ腫、内皮腫、骨芽細胞腫、骨巨細胞腫、骨肉腫、軟骨肉腫、腺腫、乳癌、前立腺癌、カポージ肉腫および卵巣癌を含むが、これらに限定されない);自己免疫障害(例えば、多発性硬化症、シェーグレン症候群、橋本甲状腺炎、胆汁性肝硬変、ベーチェット病(Behcet’s disease)、クローン病、多発性筋炎、全身性エリテマトーデスおよび免疫関連糸球体腎炎ならびに慢性関節リウマチ)およびウイルス感染(例えば、ヘルペスウイルス、ポックスウイルスおよびアデノウイルス)、炎症、対宿主性移植片病、急性移植片拒絶、ならびに慢性移植片拒絶、が挙げられる。
本発明のなおさらなる局面に従って、本発明の融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、治療目的のため、例えば、創傷治癒の目的のために上皮細胞増殖および基底ケラチノサイトを刺激するため、ならびに毛包生成および皮膚創傷の治癒を刺激するために、利用するプロセスが提供される。本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、以下を含む創傷治癒を刺激する際に臨床的に有用であり得る:外科的創傷、切除の創傷、深い創傷(真皮および表皮の損傷を含む)、眼組織の創傷、歯組織の創傷、口腔創傷、糖尿病性潰瘍、皮膚の潰瘍、肘の潰瘍、動脈の潰瘍、静脈うっ滞潰瘍、熱への曝露または化学物質から生ずる熱傷、および他の異常な創傷治癒状態(例えば、尿毒症、栄養失調、ビタミン欠乏、ならびにステロイド、放射線療法および抗腫瘍性薬物および代謝拮抗物質を用いる全身性処置に関連する合併症。本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、皮膚損失後の皮膚の回復を促進するために使用され得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、脳および/または神経系の疾患、障害、損傷、または傷害の診断および/または処置のために使用され得る。本発明の組成物(例えば、本発明の融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド)を用いて処置され得る神経系の疾患には、軸索の切断、ニューロンの減少もしくは変性、または脱髄のいずれかを引き起こす、神経系損傷および疾患、障害および/または状態が挙げられるが、これらに限定されない。本発明に従って、患者(ヒト患者および非ヒト哺乳動物患者を含む)において処置され得る神経系病変には、以下の中枢神経系(脊髄、脳を含む)または末梢神経系のいずれかの病変が挙げられるが、これらに限定されない:(1)虚血病変(ここで、神経系の一部における酸素不足により、ニューロンの損傷または死が生じ、これには大脳梗塞もしくは虚血、または脊髄梗塞もしくは虚血が挙げられる);(2)外傷病変(身体的損傷により生じるかまたは手術に関連する病変、例えば、神経系の一部分を切断する病変、または圧縮損傷を含む);(3)悪性病変(ここで、神経系の一部分は、神経系関連悪性疾患もしくは非神経系組織由来の悪性疾患のいずれかである悪性組織により破壊または損傷される);(4)感染性病変(ここで、神経系の一部分は、例えば、膿瘍による感染の結果として、破壊または損傷されるか、あるいはヒト免疫不全ウイルス、帯状ヘルペスもしくは単純ヘルペスウイルスによる感染と関連するか、ライム病、結核、梅毒に関連する);(5)変性病変(ここで、神経系の一部分は、変性プロセスの結果として破壊または損傷され、これには、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンティングトン病または筋萎縮性側索硬化症(ALS)に関連する変性が挙げられるが、これらに限定されない);(6)栄養性の疾患、障害および/または状態に関連する病変(ここで、神経系の一部分は、栄養障害または代謝障害によって破壊または損傷され、これには、ビタミンB12欠乏症、葉酸欠乏症、ヴェルニッケ病、タバコ−アルコール弱視、マルキアファーヴァ−ビニャーミ病(脳梁の一次変性)およびアルコール小脳変性が挙げられるが、これらに限定されない);(7)全身性疾患に関連する神経性病変(糖尿病(糖尿病性ニューロパシー、ベル麻痺)、全身性エリテマトーデス、癌または類肉腫症が挙げられるが、これらに限定されない);(8)毒性物質(アルコール、鉛または特定の神経毒を含む)により生じる病変;ならびに(9)脱髄性病変(ここで、神経系の一部分は、脱髄性執権によって破壊または損傷され、これには、多発性硬化症、ヒト免疫不全ウイルス関連脊髄障害、横断脊髄障害または種々の病因、進行性多病巣性白質脳障害、および橋中央ミエリン溶解が挙げられるが、これらに限定されない)。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用して、ホルモンアンバランスに関連する障害および/または疾患、ならびに/あるいは内分泌系の障害または疾患を処置、予防、診断、および/または予後し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、生殖器系の疾患および/または障害を診断、処置または予防するために使用され得る。本発明の組成物によって処置され得る生殖器系の障害としては、生殖器損傷、感染、腫瘍性障害、先天性欠損、および不妊症を生じる疾患または障害、妊娠、分娩または出産の合併症、および出産後の困難が挙げられるが、これらに限定されない。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、感染因子を処置または検出するするために使用され得る。例えば、免疫応答を上昇させることによって、特にB細胞および/またはT細胞の増殖および分化を増加させることによって、感染性疾患が処置され得る。免疫応答は、既存の免疫応答を上昇させるか、または新たな免疫応答を開始させるかのいずれかにより上昇され得る。あるいは、本発明の融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドはまた、必ずしも免疫応答を誘発することなく、感染因子を直接阻害し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを用いて、細胞を分化させ、増殖させ、そして誘引して、組織の再生を導き得る(Science 276:59−87(1997)を参照のこと)。組織の再生を用いて、先天性欠損、外傷(創傷、熱傷、切開、または潰瘍)、加齢、疾患(例えば、骨粗鬆症、変形性関節炎(osteocarthritis)、歯周病、肝不全)、美容形成手術を含む手術、線維症、再灌流傷害、もしくは全身性サイトカイン損傷により損傷を受けた組織を修復、置換、または保護し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを使用して、炎症性疾患および/または状態、感染、癌(例えば、腸の新生物(小腸のカルチノイド類癌腫、小腸の非ホジキンリンパ腫、小腸のリンパ腫))、および潰瘍(例えば、消化性潰瘍)を含む胃腸傷害を処置、予防、診断、および/または予後を判定し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、走化性活性を有し得る。走化性分子は、細胞(例えば、単球、線維芽細胞、好中球、T細胞、肥満細胞、好酸球、上皮細胞および/または内皮細胞)を、身体中の特定の部位(例えば、炎症、感染、または過剰増殖の部位)に誘引または動員する。次いで、動員された細胞は、特定の外傷または異常性を撃退および/または治癒し得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質は、この融合タンパク質の治療タンパク質部分に結合する分子、またはこの融合タンパク質の治療タンパク質部分が結合する分子についてスクリーニングするために使用され得る。この融合タンパク質とこの分子との結合は、結合した融合タンパク質または分子の活性を活性化(アゴニスト)、増大、阻害(アンタゴニスト)、または減少させ得る。そのような分子の例としては、抗体、オリゴヌクレオチド、タンパク質(例えば、レセプター)、または低分子が挙げられる。
別の実施形態において、本発明は、組成物を、本発明のアルブミン融合タンパク質の成分についてのレセプターを発現する標的化細胞に送達する方法を提供する。
本発明のアルブミン融合タンパク質またはアルブミン融合タンパク質の治療タンパク質部分に相当するタンパク質の活性を改変する分子についてスクリーニングするための、本発明のアルブミン融合タンパク質、またはこれらの融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドの使用が、さらに意図される。このような方法は、融合タンパク質を、アンタゴニスト活性またはアゴニスト活性を有することが疑われる選択された化合物と接触させる工程、および結合に続いてこの融合タンパク質の活性をアッセイする工程を包含する。
本発明はまた、本発明のアルブミン融合タンパク質に結合するポリペプチドおよび非ポリペプチドを同定するためのスクリーニング方法、ならびにそれによって同定された結合分子を含む。これらの結合分子は、例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質のアゴニストおよびアンタゴニストとして有用である。そのようなアゴニストおよびアンタゴニストは、本発明に従って、以下に詳細に記載される治療実施形態において使用され得る。
a.本発明のアルブミン融合タンパク質を多数の分子と接触させる工程;および
b.アルブミン融合タンパク質に結合する分子を同定する工程。
本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、血管内皮細胞増殖を刺激する能力の結果として、種々の疾患状態(例えば、血栓症、動脈硬化、および他の心臓血管の状態)に起因する虚血組織の血管再生を刺激するための処置において利用され得る。本発明のアルブミン融合タンパク質および/または本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドをまた利用して、上記で議論されるように新脈管形成および肢の再形成を刺激し得る。
(実施例1:pScNHSAおよびpScCHSAの生成
ベクターpScNHSA (ATCC信託番号PTA−3279)およびpScCHSA (ATCC信託番号PTA−3276)pPPC0005 (ATCC信託番号PTA−3278)の誘導体であり、そして治療用タンパク質またはフラグメントまたはそれらの変異体をコードするポリヌクレオチドが、ヒト血清アルブミン「HSA」をコードするポリヌクレオチドを有する翻訳フレームに隣接してまたは翻訳フレーム中に挿入されるクローニングベクターとして使用される。pScCHSAは、治療用タンパク質HSA融合を生じるために使用され得、一方pScNHSAは、HSA治療用タンパク質融合を生じるために使用され得る。
成熟アルブミンタンパク質をコードするDNAに対する治療的タンパク質N末端をコードするDNAのクローニングを促進させるためのベクターを、pPPC0005におけるキメラHSAシグナルペプチドをコードする核酸配列がXhoI部位およびClaI部位を含むように変更することによって作製した。
5’−GCCTCGAGAAAAGAGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTCATCGATTTAAAGATTTGGG−3’ (配列番号1039)および5’−AATCGATGAGCAACCTCACTCTTGTGTGCATCTCTTTTCTCGAGGCTCCTGGAATAAGC−3’ (配列番号1040)。次いで、PCRの第二円形は、上流隣接プライマー5’−TACAAACTTAAGAGTCCAATTAGC−3’ (配列番号1041)および下流隣接プライマー5’−CACTTCTCTAGAGTGGTTTCATATGTCTT−3’ (配列番号1042)を用いて実施された。 次いで、得られたPCR産物を精製し、そしてAfl IIおよびXba Iで消化し、そしてpPPC0006中の同じ部位に連結して、pScCHSAを作製した。得られたプラスミドは、シグナル配列へと操作された、Xho I部位およびCla I部位を有する。Xho I部位の存在は、LDKRからLEKRへの、シグナル配列の末端に1アミノ酸変化を生じる。このDからEへの変化は、5’ Sal I部位(これは、Xho I部位と適合性である)および3’ Cla I部位を有する、アルブミン融合タンパク質の治療剤部分をコードするポリヌクレオチドを含む核酸配列が、pScCHSAのXho I部位およびCla I部位に連結される場合、最終的なアルブミン融合タンパク質発現プラスミド中に存在しない。Sal IおよびXho Iの連結は、シグナルペプチド配列の元のアミノ酸配列を回復させる。アルブミン融合タンパク質の治療剤部分をコードするDNAは、Kex2部位(Kex2は、シグナルペプチドの最後の二塩基性アミノ酸配列KRの後ろで切断する)の後ろでかつCla I部位の前に挿入され得る。
成熟アルブミンタンパク質をコードするDNAのC末端へと、治療剤タンパク質部分をコードするDNAをクローニングするのを容易にするベクターを、3つの8塩基対制限部位をpScCHSAに付加することにより作製した。Asc I制限部位、Fse I制限部位、およびPme I制限部位を、成熟HSAタンパク質をコードする核酸配列の末端にて、Bsu36 I部位とHind III部位との間に添加した。これを、下線を付したAsc I制限部位、Fse I制限部位、およびPme I制限部位を含む2つの相補的合成プライマー(配列番号1043および配列番号1044)の使用により達成した。
5−AGAATTAAGCTTAGTTTAAACGGCCGGCCGGCGCGCCTTATTATAAGCCTAAGGCAGCTT−3’ (配列番号1044).これらのプライマーを、Bsu36 I およびHind IIIを用いてアニールし、そして消化し、そしてpScNHSAを作製するpScCHSAにおける同様の部位に結合した。
ベクターpScNHSAおよびpScCHSAは、治療用タンパク質またはフラグメントまたはそれらの変異体をコードするポリヌクレオチドが、成熟したヒト血清アルブミン「HSA」をコードするポリヌクレオチドに隣接して挿入されるクローニングベクターとして使用され得る。pScCHSAは、治療用融合HSA融合を生じるために使用されるが、pScNHSAは、HSA治療用タンパク質融合を生じるために使用され得る。
治療タンパク質をコードするDNA(例えば、配列番号Xで示される、または当該分野で公知の配列)は、融合構築物の産生を容易にするプライマー(例えば、制限部位を加えることにより、継ぎ目のない融合をコードすることにより、リンカー配列をコードすることにより、など)を用いてPCR増幅され得る。例えば、当業者は、治療タンパク質をコードする(かつBsu36I部位を含む)DNAの5’末端上にHSAの成熟形態の最後の4つのアミノ酸をコードするポリヌクレオチドを加える5’プライマー;そして停止コドンおよび配列をコードする治療タンパク質の3’末端上の適切なクローニング部位を加える3’プライマーを設計し得る。例えば、治療タンパク質をコードするのに用いられる順方向プライマーは、配列
上記の方法と同様に、治療タンパク質をコードするDNAは、以下のプライマーを用いてPCR増幅され得る:Sal I部位を含み、治療タンパク質をコードするDNAの5’末端上のHSAリーダー配列、DKRの最後の3つのアミノ酸をコードするポリヌクレオチドを加える5’プライマー;および治療タンパク質をコードするDNAの3’末端上にCla I部位を含む成熟HSAの最初のいくつかのアミノ酸をコードするポリヌクレオチドを加える3’プライマー。例えば、治療タンパク質をコードするDNAを増幅するのに用いられる順方向プライマーは、配列
次いで、pScNHSAまたはpScCHSAから作製されるN末端またはC末端アルブミン融合タンパク質のいずれかをコードするDNAを含むNot Iフラグメントが、LEU2選択マーカーを有するpSAC35のNot I部位にクローニングされ得る。次いで、生じるベクターは、酵母S.cerevisiaeの発現システムの形質転換に用いられる。
酢酸リチウム形質転換、エレクトロポレーション、または当該分野で公知の、およびもしくはSambrook,Fritsch,およびManiatis.1989.“Molecular Cloning:A Laboratory Manual,2版”1−3巻、およびAusubelら、2000.Massachusetts General Hospital and Harvard Medical School“Current Protocols in Molecular Biology”,1−4巻に記載されるような他の方法により、酵母発現に適合性の発現ベクターが、酵母S.cerevisiae中に形質転換され得る。この発現ベクターは、形質転換により、酵母S.cerevisiae株DXY1、D88、またはBXP10に導入される。個々の形質転換体が、例えば、10mL YEPD(1% w/v酵母抽出物、2%w/v、ペプトン、2%w/v、デキストロース)中30℃で3日間の間、増殖し得、そして細胞は、60時間の増殖の後、固定相に集められ得る。上清は、10分間3000gで細胞を除去することで集められ得る。
好ましい実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療タンパク質またはその部分の成熟形態(例えば、表1に列挙される治療タンパク質の成熟形態、または表2に配列番号Zとして示される治療タンパク質の成熟形態)のN末端またはC末端のいずれかに融合するHSAの成熟形態を含む。本発明の1つの実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、発現のために使用される宿主の分泌経路における発生期の融合ポリペプチドを方向付けるシグナル配列を、さらに含む。好ましい実施形態において、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、そして成熟アルブミン融合タンパク質が、培養培地中に直接分泌される。本発明のアルブミン融合タンパク質は、好ましくは異種シグナル配列(例えば、特定の治療タンパク質の非天然シグナル配列)(MAF、INV、Ig、フィブリン B、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、改変体HSAリーダー配列(キメラHSA/MAFリーダー配列が挙げられるが、これに限定されない)、または当該分野において公知である他の異種シグナル配列が挙げられるが、これらに限定されない)を含む。表2に列挙されるシグナル配列ならびに/または上の明細書中の「融合タンパク質の発現」および/もしくは「アルブミン融合タンパク質の組み換えおよび合成的産生のさらなる方法」節において列挙されるシグナル配列として、特に好ましい。好ましい実施形態において、本発明の融合タンパク質は、N末端メチオニン残基を含む。これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチド(フラグメントおよび/または改変体を含む)もまた、本発明に包含される。
(哺乳動物細胞株においての発現に適合性のアルブミン融合構築物の産生)
アルブミン融合構築物が、哺乳動物細胞培養系における使用のための発現ベクターにおいて産生され得る。治療タンパク質をコードするDNAが、当該分野で公知の標準的な方法(例えば、PCR増幅、制限消化、および結合)により哺乳動物発現ベクターにおいてHSAへのN末端またはC末端をクローニングし得る。一旦発現ベクターが構築されると、哺乳動物発現系へのトランスフェクションが、進行し得る。適切なベクター(例えば、pC4ベクター、および/またはLonza Biologics,Inc.(Portsmouth,NH)から入手可能なベクターを含むが、これらに限定されない)が、当該分野で公知である。
pC4:HSA(ATCC受託番号PTA−3277)を用いて、治療タンパク質部分が、成熟アルブミン配列のC末端である、アルブミン融合構築物を生成する。例えば、ベクターのBsu 36IとAsc I制限部位との間の治療タンパク質のフラグメントまたはその改変体をコードするDNAを、クローニングし得る。Bsu 36IおよびAsc Iへクローニングする場合、酵母ベクター系(配列番号1045および配列番号1046)にクローニングするのに用いられる同じプライマー設計が、利用され得る(実施例2を参照のこと)。
pC4:HSA(ATCC受託番号PTA−3277)を用いて、治療タンパク質部分が成熟アルブミン配列のN末端にクローニングされるアルブミン融合構築物が、産生され得る。例えば、pC4:HSAのBam HI(またはHind III)とCla Iとの間の治療タンパク質自体のシグナル配列を有する治療タンパク質をコードするDNAをクローニングし得る。Bam HIまたはHind III部位のいずれかにクローニングするとき、Kozak配列
(実施例6:哺乳動物細胞株における一般的な発現)
哺乳動物細胞株における発現と適合性の発現ベクターにおいて産生されるアルブミン融合構築物が、リン酸カルシウム沈殿、リポフェクトアミン(lipofectamine)、エレクトロポレーション、または当該分野で公知のおよび/またはSambrook,Fritsch,およびManiatis 1989「分子クローニング:A Laboratory Manual,2版」およびAusubelら、2000 Massachusetts General Hospital and Harvard Medical School「Current Protocols in Molecular Biology」1−4巻に記載されるような、他のトランスフェクション方法により、適切な細胞株にトランスフェクトし得る。次いで、トランスフェクトされる細胞を、発現ベクターにおける選択可能なマーカーにより決定される選択剤の存在により選択する。
好ましい実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、治療タンパク質またはその部分(例えば、表1に列挙される治療タンパク質の成熟形態、または表2に配列番号Zとして示される治療タンパク質の成熟形態)の成熟形態のN末端またはC末端のいずれかに融合されたHSAの成熟形態を含む。本発明の1実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、さらに発現のために用いられる宿主の分泌経路における発生期の融合ポリペプチドを方向付けるシグナル配列を、さらに含む。さらに好ましい実施形態において、シグナル配列によってコードされるシグナルペプチドが除去され、そして成熟アルブミン融合タンパク質が、培養培地中に直接分泌される。本発明のアルブミン融合タンパク質は、好ましくは異種シグナル配列(例えば、特定の治療タンパク質の非天然シグナル配列)(MAF、INV、Ig、フィブリン B、クラステリン、インスリン様増殖因子結合タンパク質4、改変体HSAリーダー配列(キメラHSA/MAFリーダー配列が挙げられるが、これに限定されない)、または当該分野において公知である他の異種シグナル配列が挙げられるが、これらに限定されない)を含む。表2に列挙されるシグナル配列ならびに/または上の明細書中の「融合タンパク質の発現」および/もしくは「アルブミン融合タンパク質の組み換えおよび合成的産生のさらなる方法」節において列挙されるシグナル配列として、特に好ましい。好ましい実施形態において、本発明の融合タンパク質は、N末端メチオニン残基をさらに含む。これらのポリペプチドをコードするポリヌクレオチド(フラグメントおよび/または改変体を含む)もまた、本発明に包含される。
CHO細胞上清由来または一時的にトランスフェクトされた293T細胞上清由来のアルブミン融合タンパク質の精製は、リン酸ナトリウム緩衝液およびリン酸塩勾配溶出を用いるアニオン性HQ樹脂を有する最初の捕捉を含み得、塩勾配溶出を用いるBlue Sepharose FFカラム上の親和クロマトグラフィーがこれに続く。Blue Sepharose FFは、主なBSA/fetuin汚染物質を除去する。リン酸塩勾配を用いるPoros PI 50樹脂のさらなる精製が、エンドトキシン汚染物質を除去および低減させ得、ならびにアルブミン融合タンパク質を濃縮し得る。
NS0細胞上清由来のアルブミン融合タンパク質の精製は、Q−Sepharoseアニオン交換クロマトグラフィーを含み得、段階溶出を用いるSP−セファロース精製がこれに続き、段階溶出を用いるPhenyl−650M、および、最終的には、ダイアフィルトレーションがこれに続く。
構築物ID1966(pC4.EPO:M1−D192.HSA)は、EPO−HSA融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、EPOネイティブリーダー配列および哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合した、最終Arg残基(すなわち、M1−D192)を除く成熟EPOタンパク質を含む。
EPOをコードするDNAを、以下に記載されるプライマーEPO1およびEPO2を使用して増幅し、Bam HI/Cla Iで切断し、そしてBam HI/Cla I切断されたpC4:HSAに連結した。構築物ID番号1966は、成熟HSAタンパク質、続いて成熟HSAタンパク質を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする(表2における構築物1966についての配列番号297を参照のこと)。
PCR産物を精製し(例えば、Wizard PCR Preps DNA Purification System(Promega Corp))、続いてBam HIおよびCla Iで消化した。そしてゲル電気泳動によるBam HI−Cla Iフラグメントのさらなる精製の後、この産物をBam HI/Cla Iで消化されたpC4:HSAにクローニングし、構築物番号1966を産生した。
さらに、発現されたアルブミン融合タンパク質のN末端の、アミノ酸配列決定による分析により、予測されたEPO配列の存在を確認した(以下を参照のこと)。
(構築物ID1966の発現および精製)
(293T細胞またはCHO細胞のいずれかにおける発現)
構築物1966を、当該分野において公知の方法(例えば、リポフェクタミントランスフェクション)によって293T細胞にトランスフェクトし、そして100nMメトトレキサートを用いて選択した(実施例6を参照のこと)。発現レベルを、抗HSA血清を一次抗体として用いる免疫ブロット検出によって、試験し、特異的な産生速度を、捕捉のためのモノクローナル抗ヒトEPO抗体(Research Diagnostics,Inc.)および検出のためのBiotrendモノクローナル抗HSAビオチン化抗体を用いるELISAを介して、続いてホースラディシュペルオキシダーゼ/ストレプトアビジン結合および分析により決定した。
構築物ID番号1966から293T細胞において発現された、分泌EPO−HSA融合タンパク質を含む293T細胞上清を、実施例7に記載されるように精製した。具体的には、最初の捕捉を、陰イオン性HQ−50樹脂を用いて、段階溶出を使用してpH7.2で、実施し、続いてpH7.2で、段階溶出を再び利用するBlueセファロースカラムクロマトグラフィーを使用して実施した。プールされたフラクションは、段階溶出を用いてHQ−50樹脂を通過させた。この溶出したサンプルを、Phenyl−650Mカラム上に載せ、pH7.2で勾配溶出で溶出した。溶出したサンプルを、HQ−50樹脂を三回通過させた。目的のフラクションは、50mM Na2HPO4+200mM NaCl(pH7.2)にダイアフィルトレーションされた。N末端配列決定は、EPOの成熟形態のアミノ末端配列(すなわち、APPRLI)を生じた。90kDaのおよその分子量のタンパク質が得られた。1リットルの293T細胞上清あたり0.42mgのタンパク質の最終収量が得られた。
CHO細胞において構築物番号1966から発現されるEPOアルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例7に記載されるように精製した。具体的には、濃縮された1.4Lのサンプルの最初の捕捉を、リン酸ナトリウム緩衝液およびリン酸塩勾配溶出(0−100mMリン酸ナトリウム、pH7.2)を使用して、アニオン性Poros HQ 50樹脂を用いて実施した。カラムに載せる前に、このサンプルを、伝導性が5.0mSより小さくなるまで、さらなるカラムクロマトグラフィー精製と同様に3mMリン酸塩に希釈した。HQ樹脂を10mMリン酸ナトリウム(サンプル装填の前でpH7.2)で平衡化した。EPO−HSAを20mS、または50mSリン酸ナトリウムで溶出した。第2の精製工程は、親和クロマトグラフィーを含んだ。3mMリン酸緩衝液(pH7.2)を用いる5mS未満の伝導性に適合した、以前のHQ樹脂からの組み合わされたフラクションを、125mM NaCl、15mM リン酸ナトリウム(pH7.2)で平衡化したBlue Sepharose FFカラムに載せた。0−3M NaClの塩勾配が、0.5Mと1.0MNaClとの間のEPO−HSAを溶出した。Blue Sepharose FFは、主なBSA/fetuin汚染物質を除去する。エンドトキシン汚染物質を除去し、および低減し、ならびにEPO−HSAタンパク質を濃縮するPoros PI50樹脂を含む第3のカラムに、所望されるフラクションの伝導性は、再び適合され、そしてプールされたフラクションが、載せられた。その樹脂は、25mM NaCl、10mMリン酸ナトリウム(pH7.2)で平衡化された。EPO−HSAを、10mM−100mMリン酸塩勾配で溶出した。最終緩衝組成物は、100mM NaCl、20mM Na2HPO4(pH7.2)であった。87.7kDaのおよそのタンパク質分子量を得た。1リットルの上清あたり8.9mgのタンパク質の最終収量を得た。N末端配列決定が、EPOの成熟形態のアミノ末端に対応する配列APPRLを産生した。
(方法)
EPOアルブミン融合タンパク質の生物学的活性を、インビトロTF−1細胞増殖アッセイにおいて測定し得る。TF1細胞株が、Kitamuraら(Kitamura,T.ら、1989、J.Cell.Physiol.,140:323−334)により確立された。TF−1細胞が、重症の汎血球減少症の35歳の日本人男性由来のヘパリン化された骨髄吸引サンプルから誘導された。TF−1細胞株は、複数のサイトカインに応答性の結果としての骨髄先祖細胞の増殖および分化を調査するために良好なシステムを提供する。
(方法)
TF−1細胞増殖アッセイ:ヒトTF−1細胞(ATCC番号CRL−2003)を、10%FBS、1X pen−strep、1X L−グルタミン、および2ng/mLヒトGM−CSFをRPMI培地に1×106細胞/mLの最大密度まで拡散する。細胞を、新鮮な培地中1:10または1:20に希釈することにより、2〜3日毎に継代した。アッセイ開始の日において、細胞を、50mLの容量のRPMI1640/10%FBSで3回洗い、GM−CSFを除去し、そしてRPMI1640/10%中1×105細胞/mLで再懸濁した。細胞を、底が平らなTC処理された96ウェルプレート中、10,000細胞/ウェルで平板培養した。hrEPO(R&D Systems;Research Diagnostics Inc.,RDI)の3倍連続希釈を、10U/mL〜0.001U/mL(最終濃度)の範囲でRPMI1640/10%中行ない、ここで1U=10ngタンパク質であった;各々の希釈液の0.1mLを、各々のウェルにおいて0.2mLの最終容積について細胞を含む3重ウェルに加えた。hrEPOに応答する細胞増殖応答およびEPOアルブミン融合タンパク質を、3H−チミジン(0.5μCi/ウェル)の取り込みを測定することにより、決定した。このアッセイを、3H−チミジンを加える前の24時間、48時間、または72時間のインキュベーション時間にて、および加えた後の4〜24時間の間、実行した。EPOアルブミン融合タンパク質の分子量の1/3のみが、希釈液がまた、モル比に対して適合され得る場合、事実上EPO分子である。
構築物1966を発現する293T細胞由来の上清または構築物1966を発現するCHO細胞から誘導されたEPO−HSAアルブミン誘導タンパク質を、EPO活性についての上のアッセイで試験した。平均して、rhEPOの5倍より大きいEC50が、確立された(図4を参照のこと)。
(方法)
このマウスモデルは、ヘマトクリット上の効果を測定することによりインビボのタンパク質の治療活性を測定する手段を提供する。
(方法)
6〜8週齢雌DBA/2NHsdマウス(Harlan)のインビボマウスモデルを用いて、0日目、2日目、4日目および6日目に0.5μg/kg、1.5μg/kg、4.5μg/kg、12μg/kgの投薬量で、rhEPO(Research Diagnostics,Inc.,カタロク番号RDI−PB11965)の投与、ならびに皮下、「SC」で0日目、2日目、4日目、および6日目に2μg/kg、6μg/kg、18μg/kg、および54μg/kgの濃度で構築物1966によりコードされる精製したアルブミン融合タンパク質の投与において、EPO活性の程度をモニタリングした。ヘマトクリットを、0日目および7日目に針で尾静脈を刺し、へパリン処理されたマイクロキャオイラリーチューブで血液を収集し、そして続いて実験の期間にわたってチューブをスピニングすることにより、決定した。EPOアルブミン融合タンパク質のより多くの投薬量は、コントロール組換えヒトEPO、「rhEPO」(Research Diagnostics,Inc.,カタロク番号RDI−PB11965)と比べて、大よそ等モルである。
組換えヒトEPOまたはEPOアルブミン融合タンパク質のいずれかで処理された0日〜7日のヘマトクリットにおいて有意な増加があった(実施例5を参照のこと)。しかし、構築物1966によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質は、ヘマトクリットレベルにおいてrhEPOコントロールよりもより強烈な効果を有するようであった。構築物1966によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質の52μg/kgの3投薬量/週または156μg/kgの1投薬量/週の皮下投与が、0日〜8日のヘマトクリットにおける40%を超える変化またはこれに等しい変化を引き起こした(図6を参照のこと)。ヘマトクリットにおける%変化は、三重投薬量に対して40%近くに保たれるか、または一週間の間にrhEPOの12μg/kgの3投薬量皮下投与に対して30%近くから10%未満までの低下と反対に、14日目において単一の投薬量に対して20%以下に抑制されるかのいずれかである。高められたヘマトクリットは、より通常のレベルに低下するrhEPOタンパク質により誘導されるヘマトクリットレベルと比較して、最後の皮下投与の後1週間の期間にわたって構築物1966によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質で保たれるようである。
構築物ID1981(pC4.EPO:HSA−EPO.A28−D192)は、EPOアルブミン融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、ネイティブHSAリーダー配列および哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたEPOの成熟形態のアミノ末端に融合した、最終Arg残基を除くDNAを含む。
EPOをコードするDNAを、以下に記載されるプライマーEPO3およびEPO4を使用して増幅し、Bsu 36I/Asc Iで切断し、そしてBsu 36I/Asc I切断されたpC4:HSAに連結した。構築物ID番号1981は、HSAの成熟形態、およびEPOの成熟形態、Ala 28〜Asp192を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする(Genbank登録AAA52400)。
PCR産物を精製し(例えば、Wizard PCR Preps DNA Purification System(Promega Corp))、続いてBsu 36IおよびAsc Iで消化した。そしてゲル電気泳動によるBsu 36I−Asc Iフラグメントのさらなる精製の後、この産物をBsu 36I/Asc Iで消化されたpC4:HSAにクローニングし、構築物番号1981を産生した。
さらに、発現されたアルブミン融合タンパク質のN末端の、アミノ酸配列決定による分析は、予測されたHSA配列の存在を確認した(以下を参照のこと)。
(構築物ID1981の発現および精製)
(CHO細胞の発現)
構築物1981を、実施例6および8に記載されるように、CHO細胞にトランスフェクトした。発現レベルおよび特異的な産生速度を、実施例8に記載されるように決定した。
構築物ID番号1981からCHO細胞において発現された、EPOアルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例7および8に記載されるように精製した。N末端配列決定が、DAHKS(HSAの成熟形態のアミノ末端の配列)を産生した。1リットルの上清あたり14mgのタンパク質を得た。およその分子量85.7kDaを得た。
(方法)
構築物1981によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイが、実施例8において「構築物1966についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」で始まる副節で記載されたように以前に実行した。
構築物1981を発現するCHO細胞からの上清を、HSA−EPOアルブミン融合タンパク質について90%以上精製し、そして実施例8記載されるようなアッセイにおいて試験した。平均して、rhEPOの5倍より大きいEC50が、確立された(実施例4および7を参照のこと)
(構築物1981の活性が、ヘマトクリットを測定するためのインビボマウスモデルHarlanを使用してアッセイされ得る)
(方法)
インビボHarlanマウスモデルを、構築物1981によりコードされるコントロールrhEPOまたはEPOアルブミン融合タンパク質のいずれかの皮下投与において、ヘマトクリットレベルを測定するために使用した。このアッセイを、実施例8において副節表題「構築物1966の活性が、ヘマトクリットを測定するためのインビボマウスモデルHarlanを使用してアッセイされ得る」で以前に記載されるように実行した。
rhEPOまたはEPOアルブミン融合タンパク質のいずれかで処理された動物について、0日〜7日のヘマトクリットにおける有意な増加があった(図5を参照のこと)。しかし、構築物1981によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質は、ヘマトクリットレベルにおいてrhEPOコントロールよりもより強烈な効果を有するようであった。
構築物ID1997(pEE12.1:EPO M1−D192.HSA)は、EPOアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、最終Arg残基を除く全長EPOタンパク質(ネイティブリーダー配列を含む)、すなわちM1−D192を有し、および哺乳動物発現ベクターpEE12.1にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合されている。
EPOをコードするDNAを、以下に記載されるプライマーEPO5およびEPO6を使用して増幅し、Eco RI/Cla Iで切断し、そしてEco RI/Cla I切断されたpcDNA3(Invitrogen Corporation,1600 Faraday Ave,Carlsbad,CA 92008)に連結した。pcDNA3.EPO M1−D192.HSAを、Eco RI/Hind IIIを消化してEPO M1−D192.HSA発現カセットフラグメントを放出し、Eco RI/Hind III消化されたpEE12.1.にクローニングした。構築物ID番号1997は、リーダー配列を含むアルブミン融合タンパク質およびEPOの成熟形態、続いて成熟EPOタンパク質をコードする(構築物1997についての表2における配列番号Yを参照のこと)。
さらに、アミノ酸配列決定によるアルブミン融合タンパク質のN末端の分析は、予測されたEPO配列の存在を確かめた。(以下を参照のこと)。
(構築物ID1997の発現および精製)
(NS0細胞の発現)
構築物1997を、実施例6に記載されるように、NS0細胞にトランスフェクトした。発現レベルおよび特異的な産生速度を、実施例8に記載されるように決定した。
(NS0細胞上清からの精製)
構築物1997でトランスフェクトされるNS0細胞由来の500mL細胞上清からのアルブミン融合タンパク質の精製は、20mM Tris−HCl中0〜1MのNaCl勾配を使用する、pH7.4におけるQ−Sepharose陰イオン交換クロマトグラフィー、続いて5〜40mMのクエン酸ナトリウム勾配を用いる、pH6.5におけるPoros PI 50陰イオン交換クロマトグラフィー、および10mMクエン酸(pH6.5)および140mM NaClの最終緩衝液濃度(実施例7を参照のこと)への、6DVについてのダイアフィルトレーションを包含する。N末端配列決定は、配列APPRLIを生じるはずであり、これは、EPOの成熟形態のアミノ末端である。このタンパク質は、87.7kDaのおよそのMWを有する。上清1リットル当たり52.2mgのタンパク質の最終収量が、得られた。
(構築物1997についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ)
(方法)
構築物1997によりコードされるEPO−HSAアルブミン融合タンパク質についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイが、実施例8において「構築物1966についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」で始まる副節で記載されたように以前に実行した。
(構築物1997の活性が、ヘマトクリットを測定するためのインビボマウスモデルHarlanを使用してアッセイされ得る)
(方法)
インビボHarlanマウスモデルが、0日、2日、4日および6日の種々の投薬量での構築物1981によりコードされるコントロールrhEPOまたはEPOアルブミン融合タンパク質のいずれかの皮下投与において、ヘマトクリットレベルを測定するために使用した。このアッセイを、実施例8において副節表題「構築物1966の活性が、ヘマトクリットを測定するためのインビボマウスモデルHarlanを使用してアッセイされ得る」で以前に記載されるように実行した。ヘマトクリットを、0日目、8日目、および14日面で決定した。
rhEPOまたはEPOアルブミン融合タンパク質のいずれかで処理された動物について、0日〜8日のヘマトクリットにおける有意な増加があった(図8を参照のこと)。しかし、構築物1966によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質の場合として、構築物1997によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質の52μg/kgの3投与量/週の皮下投与は、一週間当たりrhEPOの12μg/kg皮下投与レベルの3回の投与量について30%〜10%未満の衰退と反対に、14日目の15%未満に軽減される0日〜8日のヘマトクリットにおける30%に近い変化を引き起こした。
構築物ID2294(pC4.EPO R140G.HSA)は、EPOアルブミン融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、全長EPOタンパク質(ネイティブリーダー配列を含む)、すなわちM1−D192を有し、および哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合した、最終Arg残基を除くDNAを含む。
構築物ID番号2294は、リーダー配列およびEPOの成熟形態を含むアルブミン融合タンパク質、続いて成熟HSAタンパク質をコードする。構築物ID番号2294が、2工程のPCR法においてテンプレートとして、構築物ID番号1966(すなわちpC4:EPO.M1−D192.HSA)を用いることにより生成された。
さらに、アミノ酸配列決定によるアルブミン融合タンパク質のN末端の分析は、予測されたEPO配列の存在を確かめた。(以下を参照のこと)。
(CHO細胞における発現)
実施例6および8に記載されるようにして、構築物2294をCHO細胞にトランスフェクト得る。発現レベルおよび比産生率(specific productivity rate)を、実施例8に記載されるようにして決定し得る。
CHO細胞において構築物ID #2294から発現されたEPO−HSA融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例7および8のようにして精製し得る。N末端の配列決定は、EPOの成熟形態のアミノ末端に対応する配列APPRLI(配列番号2141)を生じるはずであり、約87.7kDaのMWのタンパク質を生じるはずである。
(方法)
構築物2294によってコードされるEPO−HSAアルブミン融合物についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイを、実施例8において副節の表題「構築物1966についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」の下で先に記載されたようにして実施し得る。
実施例8において副節の表題「ヘマトクリットの測定のためのインビボHarlanマウスモデル」の下で先に記載されるようなインビボHarlanマウスモデルを使用して、構築物2294によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質のヘマトクリットレベルを測定し得る。
構築物ID2298(pEE12.1:EPO.R140G.HSA)は、EPOアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、哺乳動物発現ベクターpEE12.1にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合された、最後のArg残基を除く全長EPOタンパク質(ネイティブのリーダー配列を含む)(すなわち、Arg−140をGlyに変異する点変異を有するM1−D192)を有する。
構築物ID #2298は、EPOのリーダー配列および成熟形態を含むアルブミン融合タンパク質、続いて成熟HSAタンパク質をコードする。構築物ID #2298を、構築物ID #1997(すなわち、pEE12.1:EPO.M1−D192.HSA)をPCR変異誘発のためのテンプレートとして使用することによって作製した。
(NS0細胞における発現)
実施例6および10に記載されるようにして、構築物2298をNS0細胞にトランスフェクトし得る。発現レベルおよび比産生率を、実施例8に記載されるようにして決定し得る。
NS0細胞において構築物ID #2298から発現されたEPO−HSA融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例7および10のようにして精製し得る。N末端の配列決定は、EPOの成熟形態のアミノ末端に対応する配列APPRLI(配列番号2141)を生じるはずであり、約87.7kDaのMWのタンパク質を生じるはずである。
(方法)
構築物2298によってコードされるEPO−HSAアルブミン融合タンパク質についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイを、実施例8において副節の表題「構築物1966によってコードされるアルブミン融合タンパク質についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」、および実施例10において副節の表題「構築物1997についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」の下で先に記載されたようにして実施し得る。
実施例8において副節の表題「ヘマトクリットの測定のためのインビボHarlanマウスモデル」の下および実施例10で先に記載されるようなインビボHarlanマウスモデルを使用して、構築物2298によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質のヘマトクリットレベルを測定し得る。
最適化された構築物ID2325(pC4.EPO:M1−D192.HSA)コドンは、EPOアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合された、全長EPOタンパク質(ネイティブのリーダー配列を含む)(すなわち、Arg−140からGlyへの点変異を有するM1−D192)を有する。
EPOオープンリーディングフレームをコードするDNAは、野生型EPO遺伝子配列にハイブリダイズしないように最適化されたコドンであった。EPOをコードするポリヌクレオチドを、6個の重複オリゴヌクレオチドによってPCR生成し、そしてTAベクターにクローニングした。構築物ID #2325は、リーダー配列およびEPOの成熟形態、続いて成熟HSAタンパク質を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(CHO細胞における発現)
実施例6および8に記載されるようにして、構築物2325をCHO細胞にトランスフェクトし得る。発現レベルおよび比産生率を、実施例8に記載されるようにして決定し得る。
CHO細胞において構築物ID #2325から発現されたEPO−HSA融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例7および8に記載の方法により精製し得る。N末端の配列決定は、EPOの成熟形態のアミノ末端に対応する配列APPRLI(配列番号2141)を生じるはずであり、約87.7kDaのMWのタンパク質を生じるはずである。
(方法)
構築物2325によってコードされるEPO−HSAアルブミン融合物についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイを、実施例8において副節の表題「構築物1966についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」の下で先に記載されたようにして実施し得る。
実施例8において副節の表題「ヘマトクリットの測定のためのインビボHarlanマウスモデル」の下で先に記載されるようなインビボHarlanマウスモデルを使用して、構築物2325によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質のヘマトクリットレベルを測定し得る。
上記のインビトロアッセイおよびインビボアッセイからの結果は、EPOアルブミン融合タンパク質が、種々の状態(末期腎臓疾患(透析患者)、透析前の慢性腎不全、ジドブジン処置されたHIV患者、化学療法中の癌患者、および未熟児が挙げられるが、これらに限定されない)によって引き起こされる出血障害および貧血の処置において使用され得ることを示す。EPOアルブミン融合タンパク質はまた、選択的な非心臓の非脈管の手術を受けている貧血患者における手術前において、輸血の必要性を減少させるために使用され得る。これらの薬剤の開発における適応症としては、以下が挙げられる:再生不良性貧血および他の難治性貧血、炎症性腸疾患における難治性貧血、ならびに選択的整形外科手術における輸血逃避。腎疾患および腫瘍における貧血は、構築物1966、1981、1997、2294、2298および2325によりコードされるEPOアルブミン融合タンパク質についての2つの主な適応症である。
構築物ID1812(pSAC35:IL2.A21−T153.HSA)は、IL2アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるHSAの成熟形態のアミノ末端に融合された、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)、成熟IL2タンパク質形態(すなわち、A21−T153)を有する。
IL2をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーIL2−1およびIL2−2を使用してPCR増幅した。これらの増幅体(amplimer)を、Sal I/Cla Iで切断し、そしてXho I/Cla Iで切断したpScCHSAに連結した。構築物ID #1812は、HSAのキメラリーダー配列、IL2の成熟形態、続いて成熟HSAタンパク質を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物1812の、酵母S.cerevisiae株BXP10へのトランスフェクションを、当該分野で公知の方法によって実施し(実施例3を参照のこと)、細胞を、増殖の72時間後に、定常状態において収集した。構築物1812によりトランスフェクトされた酵母由来の上清を、3000gで10分間、細胞を浄化することによって収集した。発現レベルを、抗HSA血清(Kent Laboratories)を一次抗体として用いて、免疫ブロット検出によって試験した。約85kDaの分子量のIL2アルブミン融合タンパク質を得た。比産生率を、ELISAによって決定し、ここで捕獲抗体は、US Biological #A1327−53モノクローナル抗HSA抗体またはモノクローナル抗ヒトIL2抗体(例えば、Biosource #AHCO422、Pharmingen #555051、R&D Systems #MAB202、またはR&D Systems #MAB602由来)であり、そして検出抗体は、それぞれ、モノクローナル抗ヒトIL2−ビオチン化抗体(例えば、Biosource #AHC069またはEndogen/Pierce #M−600−B由来)、またはモノクローナル抗HSA抗体(Biotrend #4T24)であり、結合体は、西洋ワサビペルオキシダーゼ/ストレプトアビジン(Vector Laboratories,#SA−5004)であり、そして基質は、KPL TMBペルオキシダーゼ基質(KPL #50−76−01)であった。分析を、製造者のプロトコルに従って、および/または当該分野で公知の方法によって、実施した。
酵母S.cerevisiae細胞における構築物ID #1812から発現されたIL2アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、Dyaxペプチドアフィニティーカラムによる小スケールで(実施例4を参照のこと)、または以下の5工程による大スケールのいずれかで精製した:ダイアフィルトレーション、DEAE−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陰イオン交換クロマトグラフィー、Butyl 650Sカラムを使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(HIC)、SP−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陽イオン交換クロマトグラフィーまたはBlue−Sepharoseクロマトグラフィー、およびQ−セファロース高速カラムクロマトグラフィーを使用する高速クロマトグラフィー(実施例4を参照のこと)。IL2アルブミン融合タンパク質は、DEAE−Sepharose Fast Flowカラムから、100〜250mMのNaClで溶出し、SP−Sepharose Fast Flowカラムから、150〜250mMのNaClで溶出し、そして、Q−Sepharose High Performanceカラムから、5〜7.5mS/cmで溶出した。N末端配列決定は、IL2の成熟形態のアミノの末端に対応する配列APTSSSTを生じるはずである。
マウスCTLL T細胞株を使用し、これは細胞の増殖および生存について、IL2に対して完全に依存性である。この細胞株は、高レベルの高親和性IL2レセプターを発現し、そして非常に低い用量のIL2に対して極めて感受性である。
CTLL−2細胞(マウスIL2依存性T細胞株)を、5ng/mLの組換えIL2およびBMEを含むRPMI 10% FBS中で増殖させる。アッセイの前に、これらの細胞を、PBSで二回洗浄して、IL2を除去する。1×104細胞/ウェルを、96ウェルプレートに、RPMI 10% FBSの最終容量200μlで播種した。酵母および293Tの上清を、10%、5%および1%の最終濃度で試験する。さらに、組換えヒトIL2、「hfIL2」を、ネガティブコントロールの上清(HSAのみ)中で希釈して、組換えタンパク質の安定性に対する培地の影響を試験する。これらの細胞を、37℃で20時間培養し、次いで、1μCiの3H−チミジンで6時間パルスする。増殖を、チミジン取り込みによって測定し、各サンプルを三重で試験する。
(方法)
CTLL−2細胞(マウスIL2依存性T細胞株)を、5ng/mLの組換えIL2およびBMEを含むRPMI 10% FBS中で増殖させた。アッセイの前に、これらの細胞を、PBSで二回洗浄して、IL2を除去した。1×104細胞/ウェルを、96ウェルプレートに、RPMI 10% FBSの最終容量200μlで播種した。酵母および293Tの上清を、10%、5%および1%の最終濃度で試験した。さらに、組換えヒトIL2、「rhIL2」を、ネガティブコントロールの上清(HSAのみ)中で希釈して、組換えタンパク質の安定性に対する培地の影響を試験した。これらの細胞を、37℃で20時間培養し、次いで、1μCiの3H−チミジンで6時間パルした。増殖を、チミジン取り込みによって測定し、各サンプルを三重で試験した。
IL2アルブミン融合構築物ID #1812は、用量依存性の様式で、CTLL−2細胞の増殖を刺激した(図9を参照のこと)。
マウスモデルは、BALB/cマウスのRENCA腺癌を用いる。これらの研究で使用されるRENCA腫瘍は自然に生じた。このRENCA腫瘍は、元々、NCI(Bethesda,MD)のDr.Sarah Stewartによって単離された。RENCA腫瘍は、50個程度の少ない生存細胞の移入後、次第に増殖し、そして、腎臓内移植物から局所的リンパ節、肺、肝臓および脾臓、ならびに他の器官へ自発的に転移する。RENCAの免疫原性は、低〜中程度であることが決定されている。RENCA保有マウスは、通常、1×105個のRENCA腫瘍細胞の腎臓内注射後35〜40日以内に、死亡する。同じ数の細胞のRENCA腫瘍細胞を腹腔内投与されたマウスは、通常、30〜50日以内に死亡する。
BALB/cマウス(6〜8週齢)(n=10)の中腹部に、インビボ第4継代から得られた105個のRENCA細胞を皮下注射した。プラセボ(PBS)、HSA、rhIL2(0.122mg/kg/QDまたは200,000または300,000U/マウス)、またはIL2アルブミン融合タンパク質(0.61mg/kg)での毎日(QD)または一日おき(QOD)の10日後、マウスを、腫瘍播種後14、17、21、25、28または31日目における腫瘍サイズにおける変化についてモニタリングした。データを、ドット分析において表し、ここで各ドットは単一の動物を表す。各群における横線は、平均値を表す(図10を参照のこと)。
構築物ID #1812によってコードされるIL2アルブミン融合タンパク質を、上記アッセイにおいて試験した。
構築物ID2030(pSAC35:ycoIL2.A21−T153.HSA)は、IL2アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるHSAの成熟形態のアミノ末端に融合された、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)、IL2タンパク質の成熟形態(すなわち、A21−T153)を有する。
IL2オープンリーディングフレーム「ORF」DNAは、野生型IL2遺伝子にハイブリダイズしないように最適化されたコドンであった。コドン最適化IL2をコードするポリヌクレオチドを、6個の重複オリゴヌクレオチドによってPCR生成し、そしてTAベクターにクローニングした。このコドン最適化IL2をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーIL2−3およびIL2−4を使用してこのクローンからPCR増幅し、Sal I/Cla Iで切断し、そしてXho I/Cla Iで切断したpScCHSAに連結した。構築物ID #2030は、HSAのキメラリーダー配列、およびHSAの成熟形態のアミノ末端に融合されたIL2の成熟形態を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
酵母S.cerevisiae株BXP10へのトランスフェクションを、当該分野で公知の方法によって(実施例3を参照のこと)、構築物ID 1812について先に記載されたようにして(実施例15を参照のこと)実施し得る。
酵母S.cerevisiae細胞における構築物ID #2030から発現されたIL2−HSAを含む細胞上清を、Dyaxペプチドアフィニティーカラムによる小スケールで(実施例4を参照のこと)、または以下の5工程による大スケールのいずれかで精製し得る:ダイアフィルトレーション、DEAE−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陰イオン交換クロマトグラフィー、Butyl 650Sカラムを使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(HIC)、SP−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陽イオン交換クロマトグラフィーまたはBlue−Sepharoseクロマトグラフィー、およびQ−セファロース高速カラムクロマトグラフィーを使用する高速クロマトグラフィー(実施例4および実施例15を参照のこと)。N末端配列決定は、IL2の成熟形態のアミノ末端に対応する配列APTSSST(配列番号2142)を生じるはずである。
構築物ID2030の活性は、実施例15のようなインビトロTおよびNK細胞株増殖アッセイを使用してアッセイされ得る。
構築物2030によってコードされるIL2アルブミン融合タンパク質の活性は、実施例15に記載されるようなインビボBALB/cモデルを使用してアッセイされ得、ここで治療に対するRENCA腫瘍応答がモニタリングされる。
構築物ID2031(pSAC35:HSA.ycoIL2.A21−T153)は、IL2アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるIL2の成熟形態(A21−T153)のアミノ末端に融合された、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)を含むHSA全長配列を有する。
IL2オープンリーディングフレーム「ORF」DNAは、野生型IL2遺伝子にハイブリダイズしないように最適化されたコドンであった。コドン最適化IL2をコードするポリヌクレオチドを、6個の重複オリゴヌクレオチドによってPCR生成し、そしてTAベクターにクローニングした。このコドン最適化IL2をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーIL2−5およびIL2−6を使用してこのコドンからPCR増幅し、Bsu 36I/Pme Iで切断し、そしてBsu 36I/Pme Iで切断したpScNHSAに連結した。構築物ID #2031は、HSAのキメラリーダー配列および成熟形態、ならびにIL2の成熟形態を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
酵母S.cerevisiae株BXP10へのトランスフェクションを、当該分野で公知の方法によって(実施例3を参照のこと)、構築物ID 1812について先に記載されたようにして(実施例15を参照のこと)実施し得る。
酵母S.cerevisiae細胞において構築物ID #2031から発現されたHSA−IL2を含む細胞上清を、Dyaxペプチドアフィニティーカラムによる小スケールで(実施例4を参照のこと)、または以下の5工程による大スケールのいずれかで精製し得る:ダイアフィルトレーション、DEAE−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陰イオン交換クロマトグラフィー、Butyl 650Sカラムを使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(HIC)、SP−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陽イオン交換クロマトグラフィーまたはBlue−Sepharoseクロマトグラフィー、およびQ−セファロース高速カラムクロマトグラフィーを使用する高速クロマトグラフィー(実施例4および実施例15を参照のこと)。N末端配列決定は、HSAの成熟形態のアミノの末端に対応する配列DAHKS(配列番号2143)を生じるはずである。
構築物ID 2031の活性は、実施例15に記載されるようにして、インビトロTおよびNK細胞株増殖アッセイを使用してアッセイされ得る。
構築物2031によってコードされるIL2アルブミン融合タンパク質の活性は、実施例15に記載されるようなインビボBALB/cモデルを使用してアッセイされ得、ここで治療に対するRENCA腫瘍応答がモニタリングされる。
IL2アルブミン融合タンパク質(構築物1812、2030および2031によってコードされるものが挙げられるが、これらに限定されない)の適応症としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:固形腫瘍、転移性腎細胞癌腫、転移性黒色腫、悪性黒色腫、腎細胞癌腫、HIV感染の処置(AIDS)、炎症性腸障害、カポージ肉腫、白血病、多発性硬化症、慢性関節リウマチ、移植拒絶、I型糖尿病、肺癌、急性骨髄性白血病、C型肝炎、非ホジキンリンパ腫、および卵巣癌。
構築物ID1642(pSAC35:GCSF.T31−P204.HSA)は、GCSFアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるHSAの成熟形態のアミノ末端に融合された、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)、顆粒球コロニー刺激因子、「G−CSF」タンパク質(すなわち、T31−P204)の「短い形態」の成熟形態を有する。
GCSFをコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーGCSF−1およびGCSF−2を使用してPCR増幅した。増幅体を、Sal I/Cla Iで切断し、Xho I/Cla Iで切断されたpScCHSAに連結した。構築物ID #1642は、HSAのキメラリーダー配列、GCSFの成熟形態、続いて成熟HSAタンパク質を含む、アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物1642の、酵母S.cerevisiae株D88、BXP10およびDXY1−aYAP3変異体への形質転換を、当該分野で公知の方法によって実施した(実施例3を参照のこと)。この形質転換された酵母が、融合構築物によってコードされるタンパク質を産生する場合、予備的な「ハロアッセイ(halo assay)」を実施した。HSA融合タンパク質の、抗HSA抗体を含む寒天培地への分泌は、不溶性「沈降素」のリングまたはハロの形成を生じる。このハロのサイズは、産生されるHSAタンパク質の量に比例する。LEU2+原栄養菌を、デキストロースを含有する合成完全ロイシンドロップアウト培地(「SCD−Leu」)上で選択した。選択されたコロニーおよびポジティブコントロールを、抗HSA抗体を含有するBMMDプレートにグリッド(grid)した。増殖後、これらのプレートを、4℃でインキュベートして、沈降素リングを形成させた。「ハロアッセイ」に基づいて、構築物1642の形質転換からのコロニーは、タンパク質を産生した。分泌の程度を確立するために、形質転換された細胞を、懸濁液中で48時間増殖させた後に、定常期で収集した。3000gで10分間細胞を除去することによって、上清を収集した。発現レベルを、抗HSA血清(Kent Laboratories)、またはアルブミン融合タンパク質の治療タンパク質部分(すなわちGCSF)に対する抗体を用いる免疫ブロット検出によって試験した。約88kDaの分子量のGCSFアルブミン融合タンパク質を得た。精製のための作業可能な量を得るために、酵母形質転換体を、1LのBMM培地中、150rpmで29.5℃で播種した。この培養物を、遠心分離し、0.45 mフィルターに通した。比産生率を、ELISAによって決定し、ここで、例えば、捕獲抗体は、R&D Systems Clone 3316.111モノクローナルマウス抗GCSFであり、検出抗体は、R&D Systems BAF214(すなわち、Clone ACN030081)ビオチン化ヤギ抗ヒトGCSF抗体であり、結合体は、西洋ワサビペルオキシダーゼ/ストレプトアビジン(Vector Laboratories,#SA−5004)であり、そして基質は、KPL TMB Peroxidase Substrate(KPL #50−76−01)であり、ここで、この分析は、製造者のプロトコルに従って、および/または当該分野で公知の方法によって実施される。
アルブミン融合タンパク質の一般的な精製手順は、実施例4に記載されている。GCSFアルブミン融合タンパク質の精製は、以下に詳細に記載される。別の精製スキームは、実施例20に記載される。
構築物1642によってコードされるGCSF−HSAを含有する酵母培養物上清(3L)を、50mMのTris(pH7.2)中1Mの硫酸アンモニウムを含むフェニル高速フローカラムに充填した。このカラムを、50mMのTris(pH7.2)中1Mの硫酸アンモニウム、50mMのTris(pH7.2)中0.2Mの硫酸アンモニウム、次いで緩衝液で洗浄した。GCSF−HSA融合タンパク質を、水(Water For Injection distilled water WFI)で溶出した。
工程1の溶出物を、等量の溶液(10.3mMのNa2HPO4および4.85mMのクエン酸から構成される、pH5.0)と混合した。この混合物を、SP高速フローカラムに充填し、そして溶液(10.3mMのNa2HPO4および4.85mMのクエン酸中0.5MのNaClからなる、pH5.0)で溶出した。次いで、このカラムを、溶液(10.3mMのNa2HPO4および4.85mMのクエン酸中1MのNaClからなる、pH5.0)でストリップした。
工程2の溶出物を、50mMのTris(pH7.2)中1Mの硫酸アンモニウム(143mS)の最終濃度まで滴定し、メチルHICカラムに充填した。このカラムを、ベースラインまで洗浄し、次いで50mMのTris(pH7.2)中0.6Mの硫酸アンモニウムで洗浄した。0.6Mの硫酸アンモニウムから0Mの硫酸アンモニウムの勾配を開始した。最後に、このカラムを、WFIおよび0.5MのNaOHでストリップした。サンプル中の多量の不純物は、より低い硫酸アンモニウム濃度で溶出し、それにより高純度のGCSF−HSA融合物を与えた。
工程3の溶出物を、WFIで5mS(pH5.5)まで希釈し、そしてCMカラムに300cm/時間で充填した。このカラムを、11mMのNa2HPO4および4mMのクエン酸中0.5MのNaCl(pH5.5)で溶出した。このカラムを、11mMのNa2HPO4および4mMのクエン酸中1MのNaCl(pH5.5)でストリップした。
精製された産物を、リン酸緩衝化生理食塩水(「PBS」)(pH7.2)中に限外濾過およびダイアフィルトレーションした。
(方法)
GCSF活性を評価するために、NSF−60細胞、NFSマウスのPrimary Lake Cascitus野生エコトロピックウイルス誘導性腫瘍由来の骨髄性因子依存性細胞株を用いる。
細胞を、最初に、T−75cm2のフラスコ中に、増殖培地(10% ウシ胎児血清、「FBS」、1×ペニシリン/ストレプトマイシン、1×L−グルタミン(最終濃度2mM)、および組換えマウスインターロイキン−3(IL3)(30ng/mL)を含む、RPMI 1640)中約1.5×104細胞/mLで播種する。細胞を、2日おきに、1:10〜1:20のどこかでスプリットし、そして新鮮な培地中に再播種する。
NFS−60アッセイを、Weinsteinら(Weinsteinら、1986,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,83,pp5010−4)に記載されるようにして実施する。簡単に述べると、アッセイを実施する前日に、細胞を、IL3を含む新鮮なアッセイ増殖培地中に、1.0×105まで再播種する。翌日、細胞を、50mLのコニカルチューブに移し、低速で遠心分離し、そして血清も増殖因子も含まないプレーンRPMIで2回洗浄する。ペレットを、25mLに再懸濁し、続いて細胞を計数する。細胞を、もう一度遠心分離し、そして作業濃度であるが、IL3を含まない増殖培地(上記)中に再懸濁する。細胞を、96ウェル丸底TC処理プレートに、1×105細胞/ウェルでプレーティングする。漸増する用量のGCSFを各ウェルに、最終容量0.1mLまで添加する。アッセイを、三重で行う。細胞を、24時間培養し、細胞増殖のレベルを決定する。3H−チミジン(5μCi/mL)を、実験の終了の4時間前に添加する。次いで、細胞を、ガラス繊維フィルター上に、細胞収集器を使用して収集し、そして3H−チミジンで標識されたDNAの量を、TOP−Countを使用して計数する。
(方法)
構築物1642によってコードされるGSCFアルブミン融合タンパク質を、上記のインビトロNFS−60細胞増殖バイオアッセイで試験した。
細胞を、上記のようにして調製した。
アッセイを実施する前日に、細胞を、IL3を含む新鮮なアッセイ増殖培地中に、1.0×105まで再播種した。翌日、細胞を、50mLのコニカルチューブに移し、低速で遠心分離し、そして血清も増殖因子も含まないプレーンRPMIで2回洗浄した。ペレットを、25mLに再懸濁し、続いて細胞を計数した。細胞を、もう一度遠心分離し、そして作業濃度であるが、IL3を含まない増殖培地(上記)中に再懸濁した。細胞を、96ウェル丸底TC処理プレートに、1×105細胞/ウェルでプレーティングした。漸増する用量のHSA、組換えヒトGCSF(rhGCSF)または酵母上清から部分的に精製されたGCSFアルブミン融合タンパク質のいずれかを、個々のウェルに、最終容量0.1mLまで添加する。アッセイを、三重で行った。細胞を、24時間培養し、細胞増殖のレベルを決定した。3H−チミジン(5μCi/mL)を、実験の終了の4時間前に添加した。次いで、細胞を、ガラス繊維フィルター上に、細胞収集器を使用して収集し、そして3H−チミジンで標識されたDNAを、TOP−Countを使用して計数した。
構築物1642は、NFS−60細胞増殖活性を、用量依存性の様式で引き起こす能力を実証し、一方で、HSA単独を発現する酵母由来のコントロール上清は、いずれの活性をも生じなかった(図11を参照のこと)。
(固定剤としてのGCSF)
G−CSFは、顆粒球を周囲に固定し得、かつマウスに投与された場合、全白血球(WBC)数を増加させ得る。組換えヒトGCSF(rhGCSF)は、組換えマウスGCSF(rmGCSF)と交差反応する。
注射を開始する前に、マウスの耳にタグを付ける。マウスに、7日間連続して、1日二回、5g(n=5)または10g(n=5)のいずれかで、rhGCSF(Neupogen,AMEN)を腹腔内注射する。コントロールマウス(n=3)には、Hepes緩衝化生理食塩水(HBSS)を投与する。最後のrhGCSF投与の24時間後、末梢血を尾から採取し、そして顆粒球数および全WBC数について分析する。
両方の用量のrhGCSFは、顆粒球の頻度および全数の両方、ならびに全WBC数を効率的に増加させる(図12を参照のこと)。この効果は、最終のrhGCSF腹腔内投与の24時間後に明白である。この効果は、一過性であり、顆粒球の数は、5日目までに通常の値に戻る。
(方法)
構築物1642によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質は、上記の手順に従ってアッセイされ得る。簡単に述べると、注射を開始する前に、マウスの耳にタグを付ける。マウスに、7日間連続して、1日二回、5g(n=5)または10g(n=5)のいずれかで、rhGCSF(コントロールとして)、またはGCSFアルブミン融合タンパク質を腹腔内注射する。さらなるコントロールマウス(n=3)には、Hepes緩衝化生理食塩水(「HBSS」)を投与する。最後のGCSF投与の24時間後、末梢血を尾から採取し、そして顆粒球数および全WBC数について分析し得る。
構築物ID1643(pSAC35:HSA.GCSF.T31−P204)は、GCSFアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるGCSFタンパク質の成熟形態(すなわち、A21−T153)のアミノ末端に融合された、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)を含む全長HSAタンパク質を有する。
GCSFをコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーGCSF−3およびGCSF−4を使用してPCR増幅した。増幅体を、Bsu 36I/Asc Iで切断し、Bsu 36I/Asc Iで切断されたpScNHSAに連結した。構築物ID #1643は、HSAのキメラリーダー配列、およびHSAの成熟形態、およびGCSFの成熟形態を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物1643の、S.cerevisiae内への形質転換を、当該分野において公知の方法によって(実施例3を参照のこと)、そして構築物ID1642について以前に記載されたように(実施例19を参照のこと)実施した。
アルブミン融合タンパク質の精製のための一般的な手順は、実施例4に記載されている。酵母S.cerevisiae細胞において、構築物ID番号1643から発現されるGCSFアルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、以下の方法に従って精製した。別の精製スキームは、実施例19に記載されている。
醗酵上清(3.5L)を、硫酸アンモニウムで139mSおよびpH7.2に調整し、50mM Tris(pH7.2)中1Mの最終濃度にした。フェニルセファロースカラムを、300cm/hrの流量で充填した。このカラムを50mMのTris−HCl(pH7.2)で洗浄した。一連の低塩溶出を実施して、夾雑タンパク質を除去し、その後、WFI溶出によって、標的タンパク質を溶出した。このカラムのNaOH除去は、かなりの部分の標的タンパク質が、先の処理によって除去されないことを明らかにした。
溶出した標的タンパク質を、20mMクエン酸リン酸緩衝液(CPB)(pH6.5)でダイアフィルター(diafilter)し、次いで、予め20mMのCPB(pH6.5)緩衝液で平衡化したMimetic Blueカラムに充填した。このカラムを、10カラム体積で、平衡化緩衝液で洗浄した。次いで、標的タンパク質の大部分を、0.2M NaCl洗浄で溶出した。より高い塩濃度の溶出溶液(1Mおよび2MのNaCl)は、何らかの標的タンパク質を明らかにした。しかし、HPLC−SECをこれらの画分に対して実施した場合、大部分の標的タンパク質は、凝集物として観察された。この精製工程は、85%より高純度の標的タンパク質を生じた。
標的タンパク質を20mMのCPB(pH6.5)(5倍)で希釈して、5mS未満の導電率にし、そしてQ HP樹脂に充填した。一連の溶出(100mM、200mM、500mM、および1MのNaCl)を実施した。標的タンパク質は、100mMのNaClで溶出した。
標的タンパク質を、20mMのCPB(pH5.0)で希釈し、そしてpHを5.0に調整した。標的タンパク質を、SP Sepharose FFカラムに充填した。このカラムを、5カラム体積の平衡化緩衝液で洗浄した。45kDaの夾雑タンパク質(HSAのタンパク質分解したフラグメント)は、この樹脂に結合せず、そして充填フロースルー(flow thru)(LFT)中で観察された。標的タンパク質は、0〜500mMのNaClの浅い傾斜で溶出した。標的タンパク質は、約250mMのNaClで溶出した。標的タンパク質を、20mMのCPB(pH6.5)の最終貯蔵緩衝液中にダイアフィルトレーションした。
(方法)
構築物1643によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質を、副節の表題「GCSFの活性はインビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」および「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性はインビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」の下の実施例19において先に記載されたインビトロNFS−60細胞増殖バイオアッセイにおいて試験した。
構築物1643は、NFS−60細胞増殖を、用量依存性の様式で引き起こす能力を実証し、一方で、HSA単独を用いたコントロール上清は、いずれの活性をも生じなかった(図11を参照のこと)。
(方法)
構築物1643によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質は、副節の表題「GCSFの活性は、C57BL/6マウスを使用して、GCSF−HSAを改変剤として、インビボでアッセイされ得る」および「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性は、C57BL/6マウスを使用して、GCSF−HSAを改変剤として、インビボでアッセイされ得る。」の下の実施例19において先に記載された手順に従って、アッセイされ得る。
上記アッセイにおけるGCSFアルブミン融合タンパク質の活性に基づいて、GCSFアルブミン融合タンパク質は、炎症性障害、骨芽細胞白血病、一次好中球減少症(例えば、Kostmann症候群)、二次好中球減少症、好中球減少症の予防、HIV感染患者における好中球減少症の予防および処置、化学療法に関連する好中球減少症の予防および処置、好中球減少症に関連する感染、脊髄嚢胞(myelopysplasia)、ならびに自己免疫障害、造血前駆細胞の動員、骨髄移植、急性骨髄性白血病、非ホジキンリンパ腫、急性リンパ芽球性白血病、ホジキン病、亢進性骨髄回復、およびグリコゲン貯蔵疾患を、化学的予防、処置、予防、ならびに/または診断する際に、有用である。
構築物ID2363(pC4:GCSF.HSA.EPO−A28−D192)は、GCSF−HSA−EPO三重融合タンパク質をコードするDNAを含む。この三重融合タンパク質は、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)の全長形態を有し、HSAの成熟形態のアミノ末端に融合するタンパク質であり、このHSAは、EPOの成熟形態のアミノ末端(すなわち、アミノ酸A28−D192)に融合しており、CHO哺乳動物細胞株発現ベクターpC4における最後のArg残基を例外とする。
構築物ID番号1642、すなわち、pSAC35:HGCSF.T31−P204.HSA(実施例19)をテンプレートとして使用して、構築物2363の一部を産生した。以下のポリヌクレオチドを合成した:
(CHO細胞における発現)
構築物2363は、実施例6および8に先に記載されるように、CHO細胞内にトランスフェクトされ得る。
アルブミン融合タンパク質についての一般的な精製手順は、実施例7に記載されている。構築物2363によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPOは、実施例7および9において先に記載されたように精製され得る。N末端配列決定は、GCSFの成熟形態に対応する、配列TPLGP(配列番号2144)を生じるはずである。
(方法)
構築物2363によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPOの活性を、実施例9において副節の表題「構築物1981についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」の下で先に記載されたようなインビトロTF−1細胞増殖アッセイにおいて、および実施例19において副節の表題「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性は、インビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」の下で先に記載されたようなインビトロNFS−60細胞増殖アッセイにおいて、アッセイした。
構築物2363によってコードされるGCSF−HSA−EPOアルブミン融合物は、TF−1細胞とNFS−60細胞との両方の増殖を実証した。
構築物2363によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPOの活性を、実施例9において副節の表題「構築物1981の活性は、ヘマトクリットを測定するためのインビボHarlanマウスモデルを使用してアッセイされ得る」の下で先に記載されたように、インビボHarlanマウスモデルにおいて、およびC57BL/6マウスにおいて(ここで、GCSF−HSA−EPOは動員剤である)、実施例19において副節の表題「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性は、C57BL/6マウスを使用して:GCSF−HSAを動員剤としてインビボでアッセイされ得る」の下で先に記載されたように、アッセイし、ヘマトクリットレベルを測定し得る。
構築物ID2373(pC4:GCSF.HSA.EPO−A28−D192.R140G)は、GCSF−HSA−EPO三重融合タンパク質をコードするDNAを含む。この三重融合タンパク質は、顆粒球コロニー刺激因子「G−CSF」の全長形態を有し、HSAの成熟形態のアミノ末端に融合するタンパク質であり、このHSAは、EPOの成熟形態のアミノ末端(すなわち、A28−D192)に融合しており、CHO哺乳動物細胞株発現ベクターpC4において、Arg−140のGlyへの変異を有する。
構築物ID番号2373は、GCSFのリーダー配列および成熟形態、続いて成熟HSAタンパク質、続いてEPOの成熟形態(これは、Arg−140からGlyへの変異を有する)を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする(配列番号401)。構築物ID番号2373を、構築物ID番号2363(すなわち、pC4:GCSF.HSA.EPO.R140G)をPCR変異誘発のためのテンプレートとして使用して、産生した。
(CHO細胞における発現)
構築物2373は、実施例6および8に先に記載されるように、CHO細胞内にトランスフェクトされ得る。
アルブミン融合タンパク質についての一般的な精製手順は、実施例7に記載されている。構築物2373によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPO.R140Gは、実施例7および8において先に記載されたように精製され得る。N末端配列決定は、GCSFの成熟形態に対応する、配列TPLGP(配列番号2144)を生じるはずである。
(方法)
構築物2373によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPO.R140Gの活性を、実施例9において副節の表題「構築物1981についてのインビトロTF−1細胞増殖アッセイ」の下で先に記載されたようなインビトロTF−1細胞増殖アッセイにおいて、および実施例19において副節の表題「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性は、インビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」の下で先に記載されたようなインビトロNFS−60細胞増殖アッセイにおいて、アッセイし得る。
構築物2373によってコードされるGCSF−HSA−EPO.R140Gアルブミン融合物は、TF−1細胞とNFS−60細胞との両方の増殖を実証した。
(方法)
構築物2373によってコードされる三重融合タンパク質GCSF−HSA−EPO.R140Gの活性を、実施例9において副節の表題「構築物1981の活性は、ヘマトクリットを測定するためのインビボHarlanマウスモデルを使用してアッセイされ得る」の下で先に記載されたように、インビボHarlanマウスモデルにおいて、およびC57BL/6マウスにおいて(ここで、GCSF−HSA−EPOは動員剤である)、実施例19において副節の表題「構築物ID番号1642によってコードされるGCSFアルブミン融合物の活性は、C57BL/6マウスを使用して:GCSF−HSAを動員剤としてインビボでアッセイされ得る」の下で先に記載されたように、アッセイし、ヘマトクリットレベルを測定し得る。
GCSF、EPOおよびHSAを含む三重融合タンパク質(構築物2363および2373によってコードされるものが挙げられるが、これらに限定されない)の適応症としては、EPOアルブミン融合タンパク質およびGCSFアルブミン融合タンパク質について詳述した適応症が挙げられ得、種々の状態(末期腎臓疾患(透析患者)、透析前の慢性腎不全、ジドブジン処置されたHIV患者、化学療法中の癌患者、および未熟児が挙げられるが、これらに限定されない)によって引き起こされる出血障害および貧血;輸血の必要性を減少させるために、選択的な非心臓の非脈管の手術を受けている貧血患者における手術前;再生不良性貧血および他の難治性貧血、炎症性腸疾患における難治性貧血、ならびに選択的整形外科化学防御における輸血逃避;炎症性障害、骨髄細胞白血病、一次好中球減少症(例えば、Kostmann症候群)、二次好中球減少症の処置、予防、および/または診断、好中球減少症の予防、HIV感染患者における好中球減少症の予防および処置、化学療法に関連する好中球減少症の予防および処置、好中球減少症に関連する感染、脊髄嚢胞、ならびに自己免疫障害、造血前駆細胞の動員、骨髄移植、急性骨髄性白血病、非ホジキンリンパ腫、急性リンパ芽球性白血病、ホジキン病、加速骨髄回復、ならびにグリコゲン貯蔵疾患;が挙げられるが、これらに限定されない。
構築物ID2053(pEE12.1:IFNb.HSA)は、IFNbアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、この融合タンパク質は、NS0発現ベクターpEE12.1におけるHSAの成熟形態のアミノ末端に融合した、ネイティブIFNbリーダー配列を含む全長IFNbタンパク質を有する。
IFNbをコードするポリヌクレオチドを、以下に記載されるプライマーIFNb−1およびIFNb−2を使用してPCR増幅し、Bam HI/Cla Iで切断し、そしてBam HI/Cla I切断されたpC4:HSAに連結して、構築物2011を生じた。構築物ID番号2011由来のEco RI/Eco RIフラグメントを、pEE12.1のEco RI部位にサブクローニングし、構築物ID番号2053を産生した。構築物ID番号2053は、IFNbのリーダー配列および成熟形態、続いて成熟HSAタンパク質を含む、アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。
(マウス骨髄腫NS0細胞株における発現)
構築物ID番号2053(pEE12.1:IFNb−HSA)を、当該分野において公知の方法によって、NS0細胞にエレクトロポレーションした(実施例6を参照のこと)。
NS0細胞上清からのIFNb−HSAの精製は、実施例10に記載される方法に従い得る。この方法は、20mM Tris−HCl中0〜1MのNaCl勾配を使用する、pH7.4におけるQ−Sepharose陰イオン交換クロマトグラフィー、続いて5〜40mMのクエン酸ナトリウム勾配を用いる、pH6.5におけるPoros PI 50陰イオン交換クロマトグラフィー、および10mMクエン酸(pH6.5)および140mM NaClの最終緩衝液濃度への、6DVについてのダイアフィルトレーションを包含する。N末端配列決定は、配列MSYNLLを生じるはずであり、これは、IFNbの成熟形態のアミノ末端である。このタンパク質は、88.5kDaのおよそのMWを有する。
全てのI型インターフェロンタンパク質は、共通のレセプター複合体および類似のJak/STATシグナル伝達経路(これは最終的に、インターフェロン配列応答性エレメント(「ISRE」)を介する、インターフェロン(「IFN」)応答性遺伝子の活性化となる)を介してシグナル伝達する。I型IFN活性についての好都合なアッセイは、下流レポーター遺伝子に融合したISREエレメントの複数のコピーを含む、プロモーター−レポーターベースのアッセイ系である。安定なHEK293細胞株が産生され得、そしてISRE−SEAPレポーター遺伝子の安定に一体化されたコピーを含み、この細胞株は、I型IFNに対して非常に感受性であり、そして濃度の5logにわたる直線性を示す。
構築物2053を、NS0細胞に、実施例6に記載されるようにエレクトロポレーションした。構築物ID番号2053でトランスフェクトしたNS0細胞を、ISRE−SEAPアッセイにおいて馴化した増殖培地を試験することによって、活性についてスクリーニングした。ISRE−SEAP/293Fレポーター細胞を、3×104細胞/ウェルで、96ウェルのポリD−リジンでコーティングされたプレートに、処理の1日前にプレートした。レポーター細胞を、構築物ID2053によってコードされるIFNbアルブミン融合タンパク質またはコントロールとしてrhIFNbの馴化上清または精製調製物の種々の希釈物(1:500および1:5000が挙げられるが、これらに限定されない)で処理した。次いで、レポーター細胞を、24時間インキュベートし、その後、SEAPレポーター遺伝子化学発光アッセイ(Rocheカタログ番号1779842)において使用するために、40Lを取り出した。組換えヒトインターフェロンβ(「rhIFNb」(Biogen))を、陽性コントロールとして使用した。
NS0発現したIFNb−HSAの精製調製物は、rhIFNb(Biogen)(これは、1.8×10−10g/mLのEC50を有した)より大きいEC50(9.3×10−9g/mL)を有した(図13を参照のこと)。
(方法)
OAS酵素(2’−5’−オリゴアデニレートシンテターゼ)を、抗ウイルス感染に応答して、インターフェロンによって、転写レベルで活性化する。インターフェロン構築物の効果を、処置されたサルから血液サンプルを得、そしてこれらのサンプルを2つのOAS mRNA(p41およびp69)の転写活性化について分析することによって測定し得る。0.5mLの体積の白血球が、1つの群あたり4匹の動物から、7の異なる時点(1匹の動物あたり0日目、1日目、2日目、4日目、8日目、10日目、および14日目)で得られ得る。種々の群は、ビヒクルコントロールの注射を、静脈内および/または皮下注射で、1日目に30g/kgおよび/または300g/kgのIFNアルブミン融合タンパク質、ならびに1日目、3日目、および5日目に、陽性コントロールとして40g/kgのインターフェロンα(Schering−Plough)の皮下注射を含み得る。p41 mRNA転写物およびp69 mRNA転写物のレベルを、リアルタイム定量PCR(Taqman)によって、p41−OASおよびp69−OASに特異的なプローブを使用して、決定し得る。OAS mRNAレベルを、18SリボソームRNA内因性コントロールに対して定量し得る。
(方法)
構築物2053によってコードされるHSA−IFNb融合タンパク質の活性を、副節の表題「インターフェロンによるOSのインビボ導入」の下で先に上に記載されたようなインビボOASアッセイにおいて、アッセイし得る。
IFNβアルブミン融合タンパク質(構築物2053によってコードされるものが挙げられるが、これらに限定されない)は、多発性硬化症を処置し、予防し、軽減し、そして/または検出するために使用され得る。他の適応症としては、黒色腫、固体腫瘍、癌、細菌感染、化学防御、栓球減少症、HIV感染、前立腺癌、癌、血液学的悪性腫瘍、血液学的障害、前白血病、神経膠腫、B型肝炎、C型肝炎、ヒトパピローマウイルス、肺繊維症、加齢性黄斑変性、脳癌、神経膠腫多型、肝癌、悪性黒色腫、結腸直腸癌、クローン病、神経変性、非小細胞肺癌、慢性関節リウマチ、および潰瘍性大腸炎が挙げられるが、これらに限定されない。
構築物ID1941(pC4.HSA.PTH84)は、HSA−PTH84融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたヒト副甲状腺ホルモン(「PTH84」)の成熟形態のSer−1〜Gln−84に融合した、ネイティブHSAリーダー配列を含むHSAの全長を含む。
PTH84をコードするDNAを、以下に記載されるプライマーPTH84−1およびPTH84−2を使用して増幅し、Bsu 36I/Not Iで切断し、そしてBus 36I/Not I切断されたpC4:HSAに連結した。構築物ID番号1941は、ネイティブHSAリーダー配列、続いて成熟PTH84タンパク質を含む、HSAの全長形態を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする。
(293T細胞における発現)
構築物1941を、当該分野において公知の方法(例えば、リポフェクタミントランスフェクション)によって293T細胞にトランスフェクトし、そして100nMメトトレキサートを用いて選択した(実施例6を参照のこと)。発現レベルを、抗HSA血清を一次抗体として用いる免疫ブロット検出によって、試験した。
構築物ID番号1941から293T細胞において発現された、分泌HSA−PTH84融合タンパク質を含む293T細胞上清を、実施例7に記載されるように精製した。具体的には、最初の捕捉を、陰イオン性HQ−50樹脂を用いて、pH7.2で、リン酸ナトリウム緩衝液(20mM Na2HPO4(pH7.2))および0〜0.5M NaClの16カラム体積の塩勾配溶出、続いてPhenyl 650M樹脂(Tosohaas製)を用いて、36カラム体積の2.75〜0M NaCl(pH7.2)の塩勾配溶出を使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(「HIC」)を使用して実施した。ここで、サンプルは、180mSの最終導電率を有した。このサンプルを、HQ Poros 50樹脂および0.15M NaCl増分の塩段階溶出を使用して濃縮した。最終緩衝組成物は、25mM Na2HPO4+150mM NaCl(pH7.2)からなった。N末端配列決定は、HSAの成熟形態のアミノ末端配列(すなわち、DAHKS、配列番号2143)を生じた。78kDaのおよそのMWのタンパク質が得られた。1リットルの293T細胞上清あたり0.78mgのタンパク質の最終収量が得られた。
(方法)
PTH84アルブミン融合タンパク質の生物学的活性を、SaOS−2(骨肉腫細胞株)が使用されるインビトロアッセイにおいて測定し得る。PTHは、アデニレートシクラーゼを活性化し、これによって、細胞内環状AMPレベルを増加させる。
SaOS−2細胞を、8.0×104細胞/ウェルの密度で、実験の開始の24時間前に継代培養する。実験の日に、細胞を2時間、血清飢餓させ、次いで、陽性コントロール(例えば、5mg/mLのフォルスコリン(forskolin))、組換えPTH、またはPTHアルブミン融合タンパク質で10分間処理する。処理後、これらの細胞をリンスし、そして細胞内環状AMPを冷エタノールで抽出する。エタノール抽出物を凍結乾燥させ、そしてさらなる使用のために−80℃で貯蔵する。サンプル中に存在する環状AMPの量を、ELISAによって、製造業者のプロトコル(Amersham Life Sciences,Inc.)に従って定量する。
(方法)
構築物1941によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質による、SaOS2細胞中の環状AMPの導入を測定するためのインビトロアッセイを、先に上で記載したように実施し得る。
(方法)
PTH活性を、PTHアルブミン融合タンパク質が、低カルシウム食餌の甲状腺上皮小体切除術(「TPTX」)の施行、および副甲状腺ホルモン処理の後に骨の鉱物質除去を低下させる能力をモニタリングすることによって、試験する。
構築物1941によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性を、TPTX動物、および表題「インビボ:TPTX動物におけるカルシウムの誘導された放出」の下で上に記載されたインビボアッセイを使用して、測定し得る。
(方法)
PTH活性を、卵巣切除された雌性のLewisラットまたはSprague Dawleyラットにおいて骨形成を誘導する能力をモニタリングすることによって、試験する。
構築物1941によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性を、表題「インビボで卵巣切除された雌性ラットモデル」の下で上に記載されたインビボアッセイを使用して測定し得る。
構築物ID1949(pC4.HSA84.S1−Q84.HSA)は、PTH84−HSA融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、MPIFリーダー配列、続いて哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合した、PTH84の成熟形態(すなわち、Ser−1〜Gln−84)を含む。
PTH84をコードするDNAを、以下に記載されるプライマーPTH84−3およびPTH84−4を使用して増幅し、Bam HI/SpeIで切断し、そしてBam HI/XbaI切断されたpC4:HSAに連結した。構築物ID番号1949は、成熟PTH84タンパク質、続いてHSAの成熟形態を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする。
(293T細胞における発現)
構築物1949を、当該分野において公知の方法(例えば、リポフェクタミントランスフェクション)によって293T細胞にトランスフェクトし、そして100nMメトトレキサートを用いて選択した(実施例6を参照のこと)。発現レベルを、抗HSA血清を一次抗体として用いる免疫ブロット検出によって、試験した。
構築物ID番号1949から293T細胞において発現された、分泌PTH84−HSA融合タンパク質を含む293T細胞上清を、実施例7に記載されるように精製した。具体的には、最初の捕捉を、陰イオン性HQ−50樹脂を用いて、pH7.2で、リン酸ナトリウム緩衝液(25mM Na2HPO4(pH7.2))および0〜0.5M NaClの16カラム体積の塩勾配溶出、続いてPhenyl 650M樹脂(Tosohaas製)を用いて、36カラム体積の2.75〜0M NaCl(pH7.2)の塩勾配溶出を使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(「HIC」)を使用して実施した。ここで、サンプルは、180mSの最終導電率を有した。このサンプルを、HQ Poros 50樹脂および0.15M NaCl増分の塩段階溶出を使用して濃縮した。最終緩衝組成物は、25mM Na2HPO4+150mM NaCl(pH7.2)からなった。N末端配列決定は、PTH84の成熟形態のアミノ末端配列(すなわち、SVSEI、配列番号2145)を生じた。78kDaのおよそのMWのタンパク質が得られた。1リットルの293T細胞上清あたり0.32mgのタンパク質の最終収量が得られた。
(結果)
構築物1949を発現する293T細胞由来の精製HSA−PTH84アルブミン融合タンパク質を、副題の表題「SaOS2細胞における環状AMPのインビトロ導入」の下で実施例27において記載されたインビトロアッセイにおいて、試験した。HSA−PTH84は、細胞内環状AMPレベルの増加を誘導した。
構築物1949によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性を、TPTX動物、および副節の表題「インビボ:TPTX動物におけるカルシウムの誘導された放出」の下で実施例27に記載されたインビボアッセイを使用して、測定し得る。
構築物1949によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性を、TPTX動物、および副節の表題「インビボで卵巣切除された雌性ラットモデル」の下で実施例27に記載されたインビボアッセイを使用して、測定し得る。
構築物ID2021(pC4.PTH84.S1−Q84.HSA)は、PTH84−HSA融合タンパク質をコードし、この融合タンパク質は、ネイティブHSAリーダー配列、続いて哺乳動物発現ベクターpC4にクローニングされたHSAの成熟形態のアミノ末端に融合した、PTH84の成熟形態(すなわち、Ser−1〜Gln−84)を含む。
PTH84をコードするDNAを、以下に記載されるプライマーPTH84−5およびPTH84−6を使用して増幅し、Xho I/Cla Iで切断し、そしてXho I/Cla I切断されたpC4:HSAに連結した。構築物ID番号2021は、成熟PTH84タンパク質、続いてHSAの成熟形態を含む、アルブミン融合タンパク質をコードする(実施例5を参照のこと)。
(293T細胞における発現)
構築物2021を、当該分野において公知の方法(例えば、リポフェクタミントランスフェクション)によって293T細胞細胞にトランスフェクトし得、そして100nMメトトレキサートで選択し得る(実施例6を参照のこと)。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いた免疫ブロット検出によって試験し得る。
293T細胞中で構築物ID番号2021から発現した分泌性PTH84−HSA融合タンパク質を含む293T細胞上清を、実施例7で記載するように精製し得る。特に、サンプルが180mSの最終伝導性を有する場合、初期の捕捉を、陰イオンHQ−50樹脂でpH7.2でリン酸ナトリウム緩衝液(25mM Na2HPO4(pH7.2))および16倍のカラム容量の0〜0.5M NaClの塩勾配溶離を使用して実行し得、そのあと36倍のカラム容量の2.75〜0M NaClの塩勾配溶離をpH7.2で使用するPhenyl650M樹脂(Tosohaasから)での疎水的相互作用クロマトグラフィー、「HIC」を行う。サンプルを、HQ Poros 50樹脂および0.15mMの増加NaClの塩段階溶離を使用して濃縮し得る。最終的な緩衝組成は、25mM Na2HPO4+150mM NaCl(pH7.2)からなり得る。N末端の配列決定は、PTH84の成熟形態のアミノ末端配列(すなわち、SVSEI)を生じるはずである。およそMWが78kDaのタンパク質が得られるはずである。
構築物2021を発現する293T細胞に由来するHSA−PTH84アルブミン融合タンパク質を、表題「SaSO2細胞におけるサイクリックAMPのインビトロ誘導」の下で、実施例27において記載するインビトロアッセイにおいて試験し得る。
構築物2021によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性を、表題「インビボ:TPTX動物におけるカルシウムの誘導放出」の下で実施例27において記載するTPTX動物およびインビボアッセイを使用して測定し得る。
構築物2021によってコードされるPTHアルブミン融合タンパク質の活性は、表題「インビボで卵巣摘出された雌性ラットモデル」の下で実施例27において記載するインビボアッセイを使用して測定し得る。
上述したインビトロおよびインビボアッセイからの結果は、PTH84アルブミン融合タンパク質が骨粗鬆症、悪性の高カルシウム血症、およびパジェット病の処置、予防、および/または診断のために有用であることを示す。
構築物ID2249(pSAC35:IFNa2.HSA)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35においてHSAの成熟形態のアミノ酸末端に融合した、HSAキメラリーダー配列、続くIFNa2タンパク質の成熟形態(すなわち、C1−E165)を有するIFNa2アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。
IFNa2をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載するプライマーIFNa2−1およびIFNa2−2を使用してPCR増幅した。このPCR増幅物をSalI/ClaIで切断し、そしてXhoI/ClaI切断したsPcCHSAにライゲーションした。構築物ID番号2249は、HSAのキメラリーダー配列、IFNa2の成熟形態、続く成熟HSAタンパク質を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2249の、酵母S.cerevisiae株BXP10での形質転換を、当該分野で公知の方法によって実行した(実施例3を参照のこと)。細胞を72時間の増殖後、定常期に回収し得る。上清を、細胞を3000gで10分間不純物除去することで回収する。発現レベルを、抗HSA血清(Kent Laboratories)で、またはこの1次抗体として免疫ブロット検出によって試験し得る。およそ88.5kDaの分子量のIFNa2アルブミン融合タンパク質を回収し得る。
酵母S.cerevisiae細胞において構築物ID番号2249から発現したIFNa2アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、Dyaxペプチドアフィニティカラム上で小スケールで(実施例4を参照のこと)、または以下の5ステップ:ダイアフィルトレーション、DEAE−Sepharose Fast Flowカラムを使用する陰イオン交換クロマトグラフィー、Butyl 650Sカラムを使用する疎水性相互作用クロマトグラフィー(HIC)、SP−Sepharose Fast FlowカラムまたはBlue−Sepharoseクロマトグラフィーを使用する陽イオン交換クロマトグラフィー、およびQ−sepharose high perfomanceカラムクロマトグラフィーを使用する高性能クロマトグラフィーによる大スケール(実施例4を参照のこと)のいずれかで精製し得る。IFNa2アルブミン融合タンパク質を、100〜250mM NaClでDEAE−Sepharose Fast Flowカラムから、150〜250mM NaClでSP−Sepharose Fast Flowカラムから、および5〜7.5mS/cmでQ−Sepharose High Performanceカラムから溶出し得る。N末端の配列決定は、IFNa2の成熟形態に対応する配列CDLPQ(配列番号2146)を生じるはずである。
(方法)
構築物ID番号2249によってコードされるIFNa2アルブミン融合タンパク質を、実施例25において前もって記載したようなISRE−SEAPアッセイにおいて、活性について試験し得る。簡単に言えば、ISRE−SEAP/293Fレポーター細胞株に対してISREシグナル伝達を指向する能力について、馴化酵母上清を1:1000の希釈で試験した。ISRE−SEAP/293Fレポーター細胞を、処理1日前に、3×104細胞/ウェルで96ウェルのポリ−D−リジンでコートされたプレート中にプレーティングした。次いで、SEAP Reporter Gene Chemiluminescent Assay(Rocheカタログ番号1779842)における使用のために40μLを除去する前に、レポーター細胞を18時間または24時間インキュベートした。組み換えヒトInterferonβ「rhIFNb」(Biogen)を、陽性コントロールとして使用した。
IFNa2−HSAの精製された調製物は、ISRE−SEAPアッセイにおいて、10−1〜101ng/mL(図15を参照のこと)または10−10〜10−8ng/mL(図16を参照のこと)の範囲にある濃度にわたって比較的直線的な増加を証明した。
(方法)
OAS酵素(2’−5’−オリゴアデニレートシンテターゼ)を、抗ウイルス感染に応じてインターフェロンによって、転写レベルで活性化する。インターフェロン構築の効果を、処置したサルから血液サンプルを回収すること、およびこれらのサンプルを2つのOAS mRNA(p41およびp69)の転写活性について分析することによって測定し得る。0.5mL容量の全血を、1群あたり4頭の動物から7つの異なる時間点(1匹の動物あたり、0日目、1日目、2日目、4日目、8日目、10日目、および14日目)で回収した。種々の群は、ビヒクルコントロール(1日目に30μg/kgのHSA−IFNの静脈注射、1日目に30μg/kgのHSA−IFNの皮下注射、1日目に300μg/kgのHSA−IFNの皮下注射)、ならびに陽性コントロールとして、1日目、3日目、および5日目に40μg/kgのインターフェロンα(Schering−Plough)の皮下注射を含む。p41およびp69のmRNA転写物のレベルを、p41−OASおよびp69−OASに特異的なプローブを使用するリアルタイム定量PCR(Taqman)によって決定した。OASのmRNAレベルを、18SリボソームRNA内因性制御と比較して定量した。構築物2249によってコードされるアルブミン融合タンパク質を類似の実験に供し得る。
p41OASおよびp69OASの両方についてのmRNA転写レベルにおける有意な増加が、IFNaを処置したサルとは対照的にHSA−インターフェロンを処置したサルにおいて観察された(p41のデータについて図17を参照のこと)。効果は10日近く続いた。
多発性硬化症を処置し、予防し、改善し、そして/または検出するためにIFNαアルブミン融合タンパク質(構築物2249、2343、2410、2366、2382、および2381によってコードされるタンパク質を含むが、これらに限定されない)を使用し得る。他の指標としては、C型肝炎、腫瘍学での使用、癌、肝炎、ヒトパピローマウイルス、線維筋腫症、シェーグレン症候群、ヘアリーセル白血病、慢性骨髄性白血病、AIDS関連のカポージ肉腫、慢性B型肝炎、悪性黒色腫、非ホジキンリンパ種、外部尖圭コンジローム、HIV感染、小細胞肺癌、血液学的な悪性疾患、単純ヘルペスウイルス感染、多発性硬化症、ウイルス性出血熱、固形腫瘍、腎臓癌、骨髄傷害、骨傷害、膀胱癌、胃癌、D型肝炎、多発性骨髄腫、I型糖尿病、ウイルス感染、皮膚型T細胞リンパ腫、子宮頚部形成異常、慢性疲労症候群、および腎臓癌が挙げられるが、これらに限定されない。
構築物ID2250(pSAC35.HSA.INSULIN(GYG).F1−N62)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35にクローニングした32位のTyrで合成一本鎖で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(GY32G))のアミノ末端に融合した全長のHSA(ネイティブなHSAリーダー配列を含む)を含む、HSA−INSULIN(GYG)融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GYG)の合成一本形態をコードするDNAを、4つの重複するプライマーを使用してPCR合成した。プロインスリンのプロセシングの必要性を除去し、そして正確な一本鎖タンパク質の折り畳みを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を、インスリン成長因子1(「IGF−1」)のCドメイン(GY32GSSSRRAPQT、配列番号2147)によって置換した。配列は酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。このPCRフラグメントを消化し、そしてBsu361/AscIで消化したpScNHSAにサブクローニングした。次いで、NotIフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2250は、合成一本鎖形態のINSULIN(GYG)のアミノ末端に融合した全長HSA(ネイティブなHSAリーダー配列を含む)をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2250を、当該分野において公知の方法によって酵母S.cerevisiaeで形質転換し得る(実施例3を参照のこと)。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いる免疫ブロット検出法によって試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2250から発現した分泌性のINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載したように精製し得る。このアルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、HSAの成熟形態のアミノ末端に対応する配列DAHKS(配列番号2143)を生じるはずである。
(方法)
構築物2250によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下での3T3−L1脂肪細胞中の糖の取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、実施例41において以下に記載したように実行した。INSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を試験するために使用され得る当該分野において公知の他のアッセイとしては、グリコーゲン合成キナーゼ−3(GSK−3)を介するL6ラット筋芽細胞増殖アッセイならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)−SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)−SEAPレポーター,脂肪酸合成(FAS)−SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)−SEAPレポーターを含むHAIIeレポーターアッセイ(実施例48を参照のこと)が挙げられるが、これらに限定されない。
構築物2250によってコードされるインスリンアルブミン融合タンパク質を発現する形質転換された酵母S.cerevisiaeに由来する上清は、3T3−L1脂肪細胞における糖の取り込み/輸送活性を証明した(図18を参照のこと)。
(方法)
構築物2250によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下で管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定し、そして/またはインスリン産生RIN−Mβ細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイを、表題「実施例42:膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロでのアッセイ」の下で以下に記載するように実行し得る。
構築物2250によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の活性を、表題「実施例44:NODマウスにおける糖尿病の発生」、「実施例45:NODマウスの組織学的実験」、および「実施例47:NIDDMのインビボマウスモデル」の下で以下に記載するNODおよび/またはNIDDMマウスモデルを使用して測定し得る。
構築物ID2255(pSAC35.INSULIN(GYG).F1−N62.HSA)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35にクローニングした32位のTyrで合成一本鎖で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(GY32G))のアミノ末端に融合し、これは、次にHSAの成熟形態に融合されたHSAのHSAキメラリーダー配列を含み、INSULIN(GYG)−HSA融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GYG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの重複するプライマーを使用してPCR生成した。プロインスリンのプロセシングの必要性を除去し、そして正確な一本鎖タンパク質の折り畳みを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列をインスリン成長因子1(「IGF−1」)のCドメイン(GY32GSSSRRAPQT、配列番号2147)によって置換した。配列は酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。このPCRフラグメントをSalI/ClaIで消化し、そしてXhoI/ClaIで消化したpScCHSAにサブクローニングした。次いで、NotIフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2250は、合成一本鎖形態のINSULIN(GYG)のアミノ末端に融合したHSAのキメラリーダー配列をHSAの成熟形態に続いてコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2255を、当該分野において公知の方法によって酵母S.cerevisiaeで形質転換し得る(実施例3を参照のこと)。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いる免疫ブロット検出法によって試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2255から発現した分泌性のINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載するように精製し得る。この発現しそして精製したアルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、合成一本鎖形態で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(GY32G))のアミノ末端に対応するFVNQHを生じるはずである。
(方法)
構築物2255によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下での3T3−L1脂肪細胞中の糖の取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、実施例41において以下に記載するように実行した。INSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質を試験するために使用され得る当該分野において公知の他のアッセイとしては、グリコーゲン合成キナーゼ−3(GSK−3)を介するL6ラット筋芽細胞増殖アッセイならびにラットリンゴ酸酵素プロモーター(rMEP)−SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)−SEAPレポーター,脂肪酸合成(FAS)−SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)−SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイ(実施例48を参照のこと)が挙げられるが、これらに限定されない。
(方法)
構築物2255によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の存在下で管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定し、そして/またはインスリン産生RIN−Mβ細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイを、表題「実施例42:膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロでのアッセイ」の下で以下に記載するように実行し得る。
構築物2255によってコードされるINSULIN(GYG)アルブミン融合タンパク質の活性を、表題「実施例44:NODマウスにおける糖尿病の発生」、「実施例45:NODマウスの組織学的実験」、および「実施例47:NIDDMのインビボマウスモデル」の下で以下に記載するNODおよび/またはNIDDMマウスモデルを使用して測定し得る。
構築物ID2276(pSAC35.HSA.INSULIN(GGG).F1−N58)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35にクローニングした32位のGlyで合成一本鎖で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(GG32G))のアミノ末端に融合した、全長HSA(ネイティブのHSAリーダー配列を含む)を含む、HSA−INSULIN(GGG)融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GGG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの重複するプライマーを使用してPCR生成した。プロインスリンのプロセシングの必要性を除去し、そして正確な一本鎖タンパク質の折り畳みを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を合成リンカー(「GG32GPGKR」)(配列番号2148)によって置換した。配列は酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。このPCRフラグメントを消化し、そしてBsu361/AscIで消化したpScNHSAにサブクローニングした。次いで、NotIフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2276は、INSULIN(GGG)の合成一本鎖形態のアミノ末端に融合する、ネイティブのHSAリーダー配列を含む全長HSAをコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2276を、当該分野において公知の方法(実施例3を参照のこと)によって酵母S.cerevisiaeに形質転換し得る。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いる免疫ブロット検出法によって試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2276から発現した分泌性のINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載されたように精製し得る。N末端配列決定は、HSAの成熟形態のアミノ末端に対応するDAHKS(配列番号2143)を生じるはずである。
(方法)
構築物2276によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下での3T3−L1脂肪細胞中の糖の取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、実施例41において以下に記載するように実行した。INSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を試験するために使用され得る当該分野において公知の他のアッセイとしては、グリコーゲン合成キナーゼ−3(GSK−3)を介するL6ラット筋芽細胞増殖アッセイならびにラットリンゴ酸デヒドロゲナーゼプロモーター(rMEP)−SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)−SEAPレポーター,脂肪酸合成酵素(FAS)−SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)−SEAPレポーターを含むHAIIeレポーターアッセイ(実施例48を参照のこと)が挙げられるが、これらに限定されない。
構築物2276によってコードされるインスリンアルブミン融合物を発現する形質転換された酵母S.cerevisiaeに由来する上清は、3T3−L1脂肪細胞におけるグルコースの取り込み/輸送活性を証明した(図18を参照のこと)。
(方法)
構築物2276によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下で管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定し、そして/またはインスリン産生RIN−Mβ細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイを、表題「実施例42:膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロでのアッセイ」の下で以下に記載するように実行し得る。
構築物2276によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の活性を、表題「実施例44:NODマウスにおける糖尿病の発生」、「実施例45:NODマウスの組織学的試験」、および「実施例47:NIDDMのインビボマウスモデル」の下で以下に記載するNODおよび/またはNIDDMマウスモデルを使用して測定され得る。
構築物ID2278(pSAC35.INSULIN(GGG).HSA)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35にクローニングされたHSAのHSAキメラリーダー配列を含む、32位のGlyで合成一本鎖で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(GG32G))のアミノ末端に融合された、次にHSAの成熟形態に融合され、INSULIN(GGG)−HSA融合タンパク質をコードする。
INSULIN(GGG)の合成一本鎖形態をコードするDNAを、4つの重複するプライマーを使用してPCR生成した。プロインスリンのプロセシングの必要性を除去し、そして正確な一本鎖タンパク質の折り畳みを確実にするために、プロインスリンcDNAの中間領域のCペプチドに対応する配列を、合成リンカー(「GG32GPGKR」)(配列番号2148)によって置換した。配列は酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。このPCRフラグメントをSalI/ClaIで消化し、そしてXhoI/ClaIで消化したpScCHSAにサブクローニングした。次いで、NotIフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2278は、合成一本鎖形態のINSULIN(GGG)のアミノ末端に引き続いてHSAの成熟形態に融合したHSAのキメラリーダー配列をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2278を、当該分野において公知の方法によって酵母S.cerevisiaeで形質転換し得る(実施例3を参照のこと)。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いる免疫ブロット検出法によって試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2278から発現した分泌性のINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載されたように精製し得る。この発現しそして精製したアルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、合成一本鎖形態で長時間作用型のインスリンアナログ(INSULIN(CG32G))のアミノ末端に対応するFVNQH(配列番号2149)を生じるはずである。
(方法)
構築物2278によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下での3T3−L1脂肪細胞中のグルコースの取り込みを測定するためのインビトロアッセイを、実施例41において以下に記載するように実行し得る。INSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質を試験するために使用され得る当該分野において公知の他のアッセイとしては、グリコーゲン合成キナーゼ−3(GSK−3)を介するL6ラット筋芽細胞増殖アッセイならびにラットリンゴ酸酵素プロモーター(rMEP)−SEAPレポーター、ステロール調節エレメント結合タンパク質(SREBP)−SEAPレポーター,脂肪酸合成酵素(FAS)−SEAPレポーター、およびホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)−SEAPレポーターを含むH4IIeレポーターアッセイ(実施例48を参照のこと)が挙げられるが、これらに限定されない。
(方法)
構築物2278によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の存在下で管上皮膵臓ARIP細胞株のインスリン産生β細胞への分化および増殖を測定し、そして/またはインスリン産生RIN−Mβ細胞株の増殖を測定するためのインビトロアッセイを、表題「実施例42:膵臓細胞株への[3H]チミジン取り込みのインビトロでのアッセイ」の下で以下に記載するように実行し得る。
構築物2278によってコードされるINSULIN(GGG)アルブミン融合タンパク質の活性を、表題「実施例44:NODマウスにおける糖尿病の発生」、「実施例45:NODマウスの組織学的試験」、および「実施例47:NIDDMのインビボマウスモデル」の下で以下に記載するNODおよび/またはNIDDMマウスモデルを使用して測定し得る。
上述したインビトロアッセイからの結果は、インスリンアルブミン融合タンパク質が、高血糖、インスリン抵抗性、インスリン欠損症、高脂血症、高ケトン尿症、ならびに糖尿病、1型糖尿病および2型糖尿病の処置、予防、および/または診断のために有用であることを示す。
HSA−hGH融合タンパク質を、以下のとおり調製した。
hGH cDNAを、ヒトの下垂体のcDNAライブラリー(カタログ番号HL1097v、Clontech Laboratories,Inc)からPCR増幅によって得た。hGH cDNAのPCR増幅に適切な2つのオリゴヌクレオチド(HGH1およびHGH2)を、Applied Biosystems 380B Oligonucleotide Synthesizerを使用して合成した。
pBST(+)を形成するために、ファージミドpBluescribe(+)(Stratagene)のポリリンカー配列を、オリゴヌクレオチドリンカーを挿入することによって置換し、EcoRIとHindIIIとの間で、2つの75マーオリゴヌクレオチドをアニーリングすることによって形成した。新規のポリリンカーは、独特のNotI部位を含んだ。
HSA cDNAをhGH cDNAの5’末端に融合させるために、pHSA1 HindIII−Bsu361のフラグメント(HSA cDNAの大部分を含む)を、2つのオリゴヌクレオチド(HGH7およびHGH8)を介して、pHGH1 EcoRI−HindIIIフラグメント(hGH cDNAの大部分を含む)に結合した。
hGH cDNAをHSA cDNAの5’末端に融合するために、EcoN1部位をコード領域の5’末端近くに導入するために、最初にHSA cDNAを部位特異的変異誘発によって変化させた。これを、pHSAIおよび合成オリゴヌクレオチド(LEU4)から調製される一本鎖DNAテンプレートを使用するKunkelら(Methods in Enzymol.154:367(1987))の方法によって、実行した:
hGH分子がHSAの最初の2つのドメイン(残基1〜387)に融合した融合ポリペプチドを作った。オリゴヌクレオチドHGH11およびHGH12を介して、HSAのドメイン1および2についてのコード配列のほとんどを含むpHSA1 HindIII−Sap1フラグメントを、pHGHI EcoR1−HindIIIフラグメントに連結することによってhGHのN末端への融合を達成した。
可撓性リンカー([Gly−Gly−Gly−Gly−Ser)n(配列番号2150)の反復単位を含み、ここでnは、2または3のいずれかであった)を、以下のオリゴヌクレオチドHGH16、HGH17、HGH18およびHGH19のクローニングによってHSAとhGHアルブミン融合タンパク質との間に導入した。
HSA−hGHおよびhGHを、5%ウマ血清を含む細胞培養培地中に、最終濃度100〜200μg/mlまで、別々に希釈し、4℃、37℃または50℃でインキュベートした。ゼロ時間およびその後1週間に1回の間隔で、サンプルのアリコートを、Nb2細胞増殖アッセイにおいてこれらの生物学的活性について試験し、データを、コントロール(時間ゼロでのhGH溶液)の生物学的活性について正規化した。他のアッセイにおいて、hGHおよびHSA−hGHを、リン酸緩衝液中で4℃、37℃、および50℃でインキュベートした。
治療タンパク質のアルブミンへの融合は、水性溶液または他の溶液中での安定性を付与する。HSA融合タンパク質の貯蔵寿命は、37℃で5週間までの、細胞培養培地中での貯蔵後に残存する、HSA−hGHの生物学的活性に関して、延長される。200μg/ml HSA−hGHの溶液を、5%ウシ血清を含む組織培養培地中で調製し、そして、この溶液は、ゼロ時間で開始し、37℃でインキュベートされる。示される時間で、サンプルを、除去し、最終濃度2ng/mlで、Nb2細胞アッセイにおいてその生物学的活性について試験した。HSA−hGHの生物学的活性は、37℃での5週間のインキュベーションの後、本質的にインタクトのまま(実験バリエーション以内)である。この実験のためにコントロールとして使用される組換えhGHは、実験の第1週においてその生物学的活性を喪失した。
インビトロアッセイおよびインビボアッセイからの結果は、hGHアルブミン融合タンパク質が、先端巨大症、増殖欠損、成長不全および内因性成長ホルモン置換、成長ホルモン欠乏、2歳以上の幼児の増殖欠損および増殖遅延プラーダーヴィリ症候群、不完全成長(growth deficiency)、慢性腎機能不全に関連する増殖欠損、閉経後骨粗鬆症、火傷、悪液質、癌悪液質、小人症、代謝障害、肥満症、腎不全、ターナー症候群(小児および成人)、結合組織炎、骨折処置、薄志弱行、またはAIDSるいそうを、処置、予防、検出、診断、および/または改善するために使用し得る。
本発明のアルブミン融合構築物の多くは、表3において示されるようにATCCに寄託された。アルブミン融合構築物は、以下の発現ベクターのいずれか1つを含み得る:酵母S. cerevisiae発現ベクター:pSAC35、哺乳動物発現ベクターpC4、または哺乳動物発現ベクターpEE12.1。
第1に、当該分野で公知の方法を使用して、アルブミン融合構築物を、表1中の個々の構築物ID番号についての配列番号Xに対応するポリヌクレオチドプローブを使用して、寄託されたプラスミドDNAのサンプルをスクリーニングすることによって、直接単離し得る。例えば、30〜40ヌクレオチドを有する特定のポリヌクレオチドは、報告された配列に従ってApplied Biosystems DNA合成機を使用して合成され得る。オリゴヌクレオチドは、例えば、T4ポリヌクレオチドキナーゼを使用して32P−γ−ATPを用いて標識され得、慣用的な方法に従って精製される。(例えば、Maniatisら、Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Press,Cold Spring,NY(1982)。)所定のATCC寄託物由来のアルブミン融合構築物を、上記されるように、当業者に公知の技術を使用して適切な宿主(例えば、XL−1 Blue(Stratagene))(例えば、これらは、ベクター供給業者によって提供されるか、または上に引用される関連刊行物または特許中に提供される)中に形質転換する。形質転換体を、プレート当たり約150形質転換体(コロニー)の密度まで、1.5%寒天プレート(適切な選択薬剤(例えば、アンピシリン)を含む)上にプレートする。これらのプレートを、細菌コロニースクリーニングのための慣用的な方法(例えば、Sambrookら、Molecular Cloning:A Laboratory Manual,第2版(1989),Cold Spring Harbor Laboratory Press,第1.93頁〜第1.104頁)または当業者に公知の他の技術に従ってNylon膜を使用してスクリーニングする。
あるいは、所定のアルブミン融合タンパク質をコードするDNAは、例えば、所定のアルブミン融合タンパク質をコードするDNAに対して5’側および3’側の寄託されたアルブミン融合構築物に対してハイブリダイズする17〜20ヌクレオチドの2つのプライマーを使用することによって、配列番号Xを有する寄託されたアルブミン融合構築物のサンプルから増幅され得る。ポリメラーゼ連鎖反応を、慣用的な条件下で、例えば、0.5μgの上記cDNAテンプレートとの反応混合物(25μl)中で、実施する。従来の反応混合物は、1.5〜5mM MgCl2、0.01%(w/v)ゼラチン、各20μMのdATP、dCTP、dGTP、dTTP、25pmolの各プライマーおよび0.25単位のTaqポリメラーゼである。35サイクルのPCR(94℃1分間の変性;55℃1分間のアニーリング;72℃1分間の伸長)を、Perkin−Elmer Cetus自動化サーマルサイクラーを使用して実施する。増幅産物を、アガロースゲル電気泳動によって分析し、予想される分子量を有するバンドを切り出し、精製する。PCR産物は、サブクローニングによって選択された配列であることが示され、DNA産物を配列決定する。
脂肪、骨格筋、および肝臓は、インシュリン感受性組織である。インシュリンは、これらの組織へのグルコース取り込み/輸送を刺激し得る。脂肪および骨格筋の場合、インシュリンは、分化された細胞内区画から細胞表面まで、グルコース輸送体4分子(GLUT4)のトランスロケーションを最終的に導く、シグナル伝達を開始する。一旦、細胞表面上にくると、GLUT4は、グルコース取り込み/輸送を可能にする。
多くの脂肪関連細胞株および筋肉関連細胞株を、糖尿病の処置について列挙される、任意の1つ以上の治療薬物の組み合わせの非存在下または存在下において、グルコース取り込み/輸送活性について試験し得る。特に、3T3−L1マウス線維芽細胞およびL6マウス骨格筋細胞は、それぞれ、3T3−L1脂肪細胞および筋管に分化され得、[3H]−2−デオキシグルコース取り込みアッセイについての適切なインビトロモデルとして働く(Ursoら、J Biol Chem,274(43):30864−73(1999);Wangら、J Mol Endocrinol,19(3):241−8(1997);Haspelら、J Membr Biol,169(1):45−53(1999);Tsakiridisら、Endocrinology,136(10):4315−22(1995))。簡潔には、2×105細胞/100μLの脂肪細胞または分化されたL6細胞を、分化後培地中の96ウェル組織培養(「TC」処理された)(すなわち、50μg/mLのポリ−L−リジンでコートされた)プレートに移し、そして5% CO2中で37℃で一晩インキュベートした。細胞を、無血清低グルコースDMEM培地で一度洗浄し、次いで、1nMのインシュリンの非存在下または存在下で、100μL/ウェルの同じ培地および100μL/ウェルの緩衝液または糖尿病の処置について列挙された1つ以上の治療薬物(例えば、漸増濃度の1nM、10nM、および100nMの本発明の治療剤(例えば、配列番号Yとして開示された特定の融合物ならびにそのフラグメントおよび改変体))の組み合わせのいずれかで、37℃で16時間枯渇する。プレートを、100μL/ウェルのHEPES緩衝化生理食塩水を用いて3回洗浄する。インシュリンを、10μM標識[3H]−2−デオキシグルコース(Amersham,#TRK672)および10μM非標識2−デオキシグルコース(SIGMA,D−3179)の存在下で、HEPES緩衝化生理食塩水中で、37℃で30分間、1nMで添加する。コントロールとして、インシュリンの非存在下であることを除いて、同じ条件を実施する。最終濃度の10μMのサイトカラシンB(SIGMA,C6762)を、非特異的取り込みを測定するために別々のウェルに100μL/ウェルで添加する。細胞を、HEPES緩衝化生理食塩水で3回洗浄する。標識された、すなわち10μMの[3H]−2−デオキシグルコースおよび標識されない、すなわち10μMの2−デオキシグルコースを、室温で10分間添加した。細胞を、冷リン酸緩衝化生理食塩水「PBS」で3回洗浄する。細胞は、0.2N NaOHの150μL/ウェルの添加および続いての室温で20分間の振盪を伴うインキュベーションの際に溶解される。次いで、サンプルをシンチレーションバイアルに移し、それに5mLのシンチレーション流体を添加する。バイアルを、β−シンチレーションカウンターにおいて計数する。二連の条件における取り込み(差異は、インシュリンの非存在または存在である)は、以下の方程式を用いて決定される:[(1分当たりのインシュリン計数「cpm」−非特異的cpm)/(インシュリンなしcpm−非特異的cpm)]。平均応答は、脂肪細胞および筋管に対するコントロールのそれぞれ約5倍および3倍の限度内に含まれる。
細胞を、T−75cm2フラスコ中で完全にコンフルエントにさせる。培地を除去し、25mLの分化前培地で、48時間置換する。細胞を、5% CO2、85%湿度で、37℃でインキュベートする。48時間後、分化前培地を、除去し、25mLの分化培地で48時間置換する。細胞を、再度、5% CO2、85%湿度で、37℃でインキュベートする。48時間後、培地を除去し、30mLの分化後培地で置換する。分化後培地を、14〜20日間または完全な分化が達成されるまで維持する。培地を、2〜3日毎に交換する。ヒト脂肪細胞を、Zen−Bio,INC(#SA−1096)から購入し得る。
GLP−1が、時間依存性様式および用量依存性様式で、ラット膵臓管上皮細胞株ARIPの分化を低下することが最近示された。この分化は、Islet Duodenal Homeobox−1(IDX−1)mRNAレベルおよびインシュリンmRNAレベルの増加に関連する(Huiら、2001,Diabetes,50(4):785−96)。次いで、IDX−1は、GLP−1レセプターのmRNAレベルを増加する。
(RIN−M細胞)
これらの細胞は、American Type Tissue Culture Collection(ATCC細胞株番号CRL−2057)から入手可能である。RIN−M細胞株は、放射線誘導された移植可能なラット島細胞腫瘍に由来した。この株を、腫瘍のヌードマウス異種移植片から樹立する。この細胞は、島ポリペプチドホルモンを産生し、分泌し、そしてL−ドーパデカルボキシラーゼ(アミン前駆体取り込みおよび脱炭酸(すなわち、APUD)活性を有する細胞に対するマーカー)を産生する。
American Type Tissue Culture Collection(ATCC細胞株番号CRL−1674)から入手可能な上皮形態学の膵臓外分泌細胞が存在する。参考文献:Jessop,N.W.およびHay,R.J.,「Characteristics of two rat pancreatic exocrine cell lines derived from transplantable tumors」Vitro 16:212,(1980);Cockell,M.ら、「Identification of a cell−specific DNA−binding activity that interacts with a transcriptional activator of genes expressed in the acinar pancreas」Mol.Cell.Biol.9:2464−2476,(1989);Roux,E.ら、「The cell−specific transcription factorPTF1 contains two different subunits that interact with the DNA」Genes Dev.3:1613−1624,(1989);ならびにHui,H.ら、「Glucagon−like peptide 1 induces differentiation of islet duodenalhomeobox−1− positive pancreatic ductal cells into insulin−secreting cells」Diabetes 50:785−796(2001)もまた参照のこと。
RIN−M細胞株を、10%ウシ胎仔血清(Hyclone,#SH30088.03)を含むRPMI 1640培地(Hyclone,#SH300027.01)中で増殖し、1:3〜1:6の比で、6〜8日毎に植え継がれる。培地を、3〜4日毎に交換する。
細胞を、96ウェルプレート中で4000細胞/ウェルで接種し、そして50%交会まで48〜72時間培養した。細胞を、100μL/ウェルで血清を含まない媒体に変えた。48〜72時間インキュベート後、披験発明の血清および/または治療(例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質およびフラグメントおよびそれらの改変体)を、ウェルに加える。インキュベーションは、さらに36時間継続する。[3H]−Thymidine(5−20Ci/mmol)(Amersham Pharmacia、#TRK120)を、マイクロCuries/5マイクロリットルに希釈する。36時間のインキュベーション後、5マイクロリットルを、さらに24時間で1ウェル当たり加える。この反応を、冷Phosphate−Buffered Sal ine、「PBS」で一度、徐々に細胞を洗浄することによって終結した。次いで、細胞を、4℃で15分間、100マイクロリットルの10%氷冷TCAで固定する。PBSを除去し、そして200マイクロリットルの0.2N NaOHを加える。プレートを、撹拌しながら室温で1時間インキュベートする。溶液を、シンチレーションバイアルに移動し、そして水溶液と適合する5mLのシンチレーション流体を加え、そして活発に撹拌する。バイアルを、βシンチレーション計数器で計数する。陰性コントロールの場合、緩衝液だけを使用する。陽性コントロールの場合、胎児子ウシ血清を使用する。
糖尿(すなわち、尿中の過剰の糖分)は、糖尿病の疾患状態の指標を提供するために、容易にアッセイされ得る。正常な患者サンプルと比較した場合に患者サンブルにおける過剰の尿は、IDDMおよびNIDDMの症状である。IDDMおよびNIDDMを患う患者の処置の有効性は、尿中の過剰のグルコース量の得られた減少によって示される。IDDMおよびNIDDMをモニタリングする好ましい実施形態において、患者からの尿サンプルを、当該分野で公知の技術を使用して、グルコースの存在についてアッセイする。ヒトにおける糖尿は、100mlあたり100mgを超える尿グルコース濃度によって定義される。糖尿を示す患者における過剰な糖分レベルは、血液サンブルを得、そして血清グルコースをアッセイすることによって、すっとより正確に測定され得る。
雌性NOD(非肥満性糖尿病)マウスを、ヒトにおいて見出されるコースと同様のコースを用いてIDDMを表すことによって特徴付けられるが、この疾患は雄性NODマウスより雌性NODマウスにおいてより深刻である。以後、他に規定されないなら、用語「NODマウス」とは、雌性NODマウスをいう。NODマウスは、慢性自己免疫疾患によって引き起こされる、ベータ細胞の進行性の崩壊を有する。従って、NODマウスは、正常血糖値(euglycemia)または正常血中グルコースレベルを有して生を始める。しかし、約15〜16週齢までに、NODマウスは高血糖値になり始める。このことは、そのマウスの大部分の膵臓β細胞の崩壊、およびそれに対応して膵臓が十分なインスリンを産生不能であることを示す。従って、疾患の原因および進行の両方は、ヒトIDDM患者と同様である。
NODマウスからの組織サンプルの組織学的試験は、本発明の組成物および/または本発明の組成物および糖尿病のための他の治療剤との併用が、膵臓中のβ細胞の相対濃度を増加させる能力を、実証し得る。実験方法は、以下の通りである。
特に標的自己組織が重篤に損傷を受けている場合、移植は自己免疫疾患の処置の一般の形態である。例えば、膵臓移植およびランゲルハンス島細胞移植は、IDDMに対する通常の処置選択肢であるが、これらに限定されない(例えば、Stewattら,Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism 86(3)984−988(2001);Brunicardi,Transplant.Proc.28:2138−40(1996);Kendall & Robertson,Diabates Metab.22:157−163(1996);Hamanoら,Kobe J.Med.Sci.42:93−104(1996);Larsen & Stratta,Diabates Metab.22:139−146(1996);およびKikhabwalaら,Am.J.Surg.171:516−520(1996)を参照のこと)。任意の移植方法に関して、自己免疫疾患患者に対する移植治療は、移植組織の宿主からの拒絶の危険性を最低にするための処置を包含する。しかし、自己免疫疾患は、元の自己組織に損傷を与えた、予め存在する宿主の自己免疫応答が、移植組織に対して同じ損傷効果をもたらすという、さらなる別個の危険性を含む。従って、本発明は、自己免疫疾患の移植治療を受ける個体において、免疫調節剤および/または免疫抑制剤と併用して本発明のアルブミン融合タンパク質を用いて、自己免疫膵臓疾患の処置のための方法および組成物を包含する。
Jackson Laboratory(Bar Harbor,ME)から3週齢の雄性C57BL/6Jマウスを入手し得、そして慣用的な食餌、または高脂肪食(重量あたり35.5重量%;Bioserv.Frenchtown,NJ)もしくは高フルクトース食(重量あたり60重量%;Harlan Teklad,Madison,WI)のいずれかを、給餌し得る。規則的な食餌は、重量あたり4.5重量%の脂肪、重量あたり23重量%のタンパク質、重量あたり31.9重量%の炭水化物、重量あたり3.7重量%のフルクトースおよび重量あたり5.3重量%の繊維からなる。高脂肪(ラード)食は、重量あたり35.5重量%の脂肪、重量あたり20重量%のタンパク質、重量あたり36.4重量%の炭水化物、重量あたり0.0重量%のフルクトースおよび重量あたり0.1重量%の繊維からなる。高フルクトース食は、 重量あたり5重量%の脂肪、重量あたり20重量%のタンパク質、重量あたり0.0重量%の炭水化物、重量あたり60重量%のフルクトースおよび重量あたり9.4重量%の繊維からなる。ケージあたり5匹以下、22℃+/−3℃に温度制御し且つ20%湿潤制御した部屋で、12時間の日照(午前6時〜午後6時)/暗サイクルで、これらのマウスを飼育し得る(Luoら,1998,Metabolism 47(6):663−8,「Nongenetic mouse models of non−insulin−dependent diabates mellitus」;Larsenら,Diabates 50(11):2530−9(2001),「Systemic administration of the long−acting GLP−1 derivative NN2211 induces lasting and reversible weight loss in both normal and obese rats」)。3週間それぞれの食餌にさらした後、体重kgあたり100mgでのストレプトゾシン「STZ」(Sigma,St.Louis,MO)またはビヒクル(0.05モル/Lのクエン酸、pH4.5)のいずれかを、マウスに腹膜内注射し得、そして続く4週間、同じ食餌で維持し得る。非飢餓条件の下で、STZの1週後、2週後および4週後に、尾の遠位部分を切断することによって血液を得る。サンプルを使用して、非飢餓の血漿グルコース濃度およびインスリン濃度を測定する。体重および食餌摂取を、週ごとに記録する。
(種々のH4IIeレポーター)
H4IIe/rMEP−SEAP:ラットから単離されたリンゴ酸酵素プロモーター(rMEP)は、インスリン経路において存在するPPAR−γエレメントを含む。このレポーター構築物を、肝臓H4IIe細胞株に安定にトランスフェクトする。
増殖培地は、10%ウシ胎仔血清(FBS)、10%ウシ血清、1% NEAA、1×ペニシリン/ストレプトマイシン、および0.75mg/mL G418(H4IIe/rFAS−SEAPおよびH4IIe/SREBP−SEAPに対して)または0.50mg/mL G418(H4IIe/rMEP−SEAPに対して)を含む。H4IIe/PEPCK−SEAPに対して、増殖培地は、10% FBS、1% ペニシリン/ストレプトマイシン、15mM HEPES緩衝化生理食塩水および0.50mg/mL G418からなる。
96ウェルプレートを、対数増殖期の細胞が接着するまで、ウェルあたり100μLの増殖培地中に、ウェルあたり75,000個の細胞播種する。増殖培地をアッセイ媒体(ウェルあたり200μL)に交換することによって、細胞を48時間飢餓させる。(例えば、H4IIe/PEPCK−SEAPに対して、0.5μMのデキサメタゾンを含むアッセイ媒体をウェルあたり100μLで添加し、そして約20時間インキュベートする)。このアッセイ媒体を、その後ウェルあたり100μLの新鮮なアッセイ媒体に交換し、そして本発明の治療剤(例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質ならびにそのフラグメントおよび改変体)を発現するトランスフェクト細胞株から得られた細胞上清の50μLのアリコートを、ウェルに添加する。空のベクターをトランスフェクトされた細胞株を、ネガティブコントロールとして使用する。ウェルへの10nMおよび/または100nMのインスリンの添加を、ポジティブコントロールとして使用する。48時間のインキュベーション後、馴化培地を収集し、そしてSEAP活性を測定する(Phospha−LightSystemプロトコル,Tropix #BP2500)。簡潔に述べると、サンプルを希釈緩衝液で希釈し、そして65℃で30分間インキュベートして、内因性の非胎盤形態のSEAPを不活性化させる。希釈したサンプルの50μLアリコートを、非胎盤性SEAPアイソザイムに対して活性なインヒビター混合物を含む、50μLのSEAP Assay Bufferと共に混合し、そしてさらに5分間インキュベートする。CSPD化学発光基質の50μLアリコート(これは、Emerald発光増強剤中に1:20に希釈される)をこの混合物に添加し、そして15〜20分間インキュベートする。プレートを、Dynexプレートルミノメーターで解読する。
目的のサイトカインまたは増殖因子(例えば、EPO)のcDNAを、cDNAライブラリーから、RT−PCRによって、および一連の重複合成オリゴヌクレオチドプライマーを使用するPCRによって(標準的方法を使用する全て)を含む種々の手段によって、単離し得る。これら全てのタンパク質についてのヌクレオチド配列は、公知でありそして利用可能である(例えば、米国特許第4,703,088号、同4,810,643号および同5,908,763号)。、このcDNAを5’末端および3’末端で調製して、HAのためのcDNAを含むベクターへのcDNAのクローニングのため、制限部位(オリゴヌクレオチドリンカーが使用され得るもののような制限部位)を形成し得る。これは、N末端またはC末端に、スペーサー配列を使用しても使用してなくてもよい。EPO(または他のサイトカイン)のcDNAを、ベクター(例えば、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4)にクローニングする:次いで、完全な発現カセットが存在するHSAを切り出しそしてプラスミドpSAC35へと挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。酵母から分泌されるアルブミン融合タンパク質を、収集し得、そして培地から精製し得、そしてその生物学的活性についてテストし得る。哺乳動物細胞株における発現のために、同様の手順が当てはめられるが、使用される発現カセットが哺乳動物のプロモーター、リーダー配列およびターミネーター(実施例1を参照のこと)を使用することを除く。次いで、この発現カセットを切り出し、そして哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適したプラスミドへと挿入する。
IFNαのような目的のインターフェロンのcDNAを、種々の手段によって、単離し得る。種々の手段としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:全て標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーから、一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT−PCRまたはPCRによって。インターフェロン(例えば、IFNα)の核酸配列は、例えば、米国特許第5,326,859および4,588,585号において、およびEP32,134において、ならびにGenBankのような公のデータべースにおいて、公知であり、かつ利用可能である。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、HA配列のN末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。IFNα(または他のインターフェロン)cDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集して、精製し、その生物学的活性について、試験し得る。哺乳動物細胞株における発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、同様の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次に、この発現カセットを切りだし、そして、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
本発明のアルブミン融合タンパク質は、低濃度で包装された場合であっても、高度に安定である。さらに、低タンパク質濃度にも関わらず、水溶液がバイアルの壁に対する結合を最小限にするための他のタンパク質を含まない場合であっても、良好な融合タンパク質の回収が、観察される。バイアルに収容されたHA−IFN溶液の回収を、ストックしておいた溶液と比較した。6または30μg/mlのHA−IFN溶液を、バイアル中に入れて、4℃で保存した。48から72時間後、最初の10ngのサンプルに相当する容量を、取り出し、そしてIFNサンドイッチELISAで測定した。推定された容量を、高濃度ストック溶液の容量と比較した。示されるように、これらバイアルにおいて、サンプルは、実質的に損失しなかった。このことは、バイアルの壁に対するサンプルの損失を防ぐために、外来の物質(例えば、アルブミン)を添加する必要がないことを示す。
インビボにおける、HA−α−IFN融合分子の安定性およびバイオアベイラビリティを決定するために、(酵母より)精製された融合分子を、サルに投与した。HA−α−IFN融合物から処方された薬学的組成物は、延長された血清半減期およびバイオアベイラビリティを、説明し得る。従って、薬学的組成物を、天然のα−インターフェロン分子と比較して、より低い投薬量のα−インターフェロン活性を含むように、処方し得る。
HA−α−IFN発現ベクターを改変して、二機能性HA−α−IFN融合タンパク質の発現のための挿入物を含ませてもよい。例えば、目的の第二のタンパク質のcDNAを、二重の終止コドンを除去するか、またはコード配列の下流に移動させた後に、「rHA−α−IFN」配列の下流にフレームを合わせて、挿入し得る。
目的のホルモン(例えば、インスリン)のcDNAを、種々の手段によって、単離し得る。種々の手段としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:全て標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーから、一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT−PCRまたはPCRによって。これらタンパク質全てのヌクレオチド配列は、例えば、GenBankのような公のデータべースにおいて、公知であり、かつ利用可能である。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、N末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。ホルモンのcDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集して、精製し、その生物学的活性について、試験し得る。哺乳動物細胞株における発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、同様の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次に、この発現カセットを切りだし、そして、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
(実施例52:HA可溶性レセプタータンパク質またはHA結合タンパク質の融合タンパク質(例えば、HA−TNFレセプター)の調製)
TNFレセプターのような目的の可溶性レセプタータンパク質または結合タンパク質のcDNAを、種々の手段によって、単離し得る。種々の手段としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:全て標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーから、一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT−PCRまたはPCRによって。これらタンパク質全てのヌクレオチド配列は、例えば、GenBankのような公のデータべースにおいて、公知であり、かつ利用可能である。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、N末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。レセプターのcDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集して、精製し、その生物学的活性について、試験し得る。哺乳動物細胞株における発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、同様の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次に、この発現カセットを切りだし、そして、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
(実施例53:HA−増殖因子(例えば、HA−IGF−1融合タンパク質)の調製)
IGF−1のような目的の増殖因子のcDNAを、種々の手段によって、単離し得る。種々の手段としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:全て標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーから、一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT−PCRまたはPCRによって(GenBankアクセッション番号NP_000609を参照のこと)。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、N末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。増殖因子のcDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集して、精製し、その生物学的活性について、試験し得る。哺乳動物細胞株における発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、同様の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次に、この発現カセットを切りだし、そして、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
(実施例54:HA−単鎖抗体融合タンパク質の調製)
単鎖抗体を、いくつかの方法によって産生する。その方法としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:ファージライブラリーからの選択、抗体のcDNAをクローニングし、隣接する定常領域をプライマーとして使用して可変領域をクローニングすることによる特異的抗体の可変領域のクローニング、または任意の特異的抗体の可変領域に対応するオリゴヌクレオチドの合成。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、N末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。細胞のcDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。
(実施例55:HA−細胞接着分子融合タンパク質の調製)
目的の細胞接着分子のcDNAを、種々の手段によって、単離し得る。種々の手段としては、以下が挙げられるが、これらに限定されない:全て標準的な方法を用いる、cDNAライブラリーから、一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるRT−PCRまたはPCRによって。公知の細胞接着分子のヌクレオチド配列は、例えば、GenBankのような公のデータべースにおいて、公知であり、かつ利用可能である。cDNAを、5’末端および3’末端において改変して、制限部位を生成し得る。その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを使用して、cDNAを、HAのcDNAをクローニングするためのベクター中にクローニングすることができる。このことは、N末端またはC末端において、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、なし得る。細胞接着分子のcDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングする。次に、このようなベクターから、完全な発現カセットを切りだし、そして、プラスミドpSAC35中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を培地から収集して、精製し、その生物学的活性について、試験し得る。哺乳動物細胞株における発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、同様の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次に、この発現カセットを切りだし、そして、哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
目的のペプチド(例えば、抗菌性ペプチド)のcDNAは、cDNAライブラリーから、種々の手段(一連の重複合成オリゴヌクレオチドプライマーを使用するRT−PCRおよびPCR(これら全ては標準的方法を使用する)を含むが、排他的ではない)によって単離され得る。cDNAは、5’末端および3’末端で変更されて、制限部位を生成し得、その結果、オリゴヌクレオチドリンカーは、HAのcDNAを含むベクターへのcDNAのクローニングのために使用され得る。これは、スペーサー配列を使用するかまたは使用せずに、N末端またはC末端においてであり得る。ペプチドcDNAは、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSAまたはpC4:HSAのようなベクターにクローニングされ、次いで、このベクターから、完全発現カセットが切り出され、そしてプラスミドpSAC35に挿入されて、酵母におけるアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質は、次いで、収集され、そして培地から精製され、そしてその生物学的活性について試験され得る。哺乳動物細胞株における発現について、使用される発現カセットが哺乳動物プロモーター、リーダー配列およびターミネーターを使用する以外は、類似の手順が採用される(実施例1を参照のこと)。次いで、この発現カセットが、切り出され、そして哺乳動物細胞株のトランスフェクションに適したプラスミドに挿入される。
目的のタンパク質のcDNAを、標準的な分子生物学的方法を用いて、cDNAライブラリーから単離し得るか、または、いくつかの重複するオリゴヌクレオチドを用いて合成し得る。適切なヌクレオチドを、cDNA中で操作して、都合よい制限部位を形成し得、そしてhGHについて記載された方法と同様にして、タンパク質cDNAの、アルブミンcDNAへの付着を可能にし得る。標的化タンパク質またはペプチドのcDNA(例えば、単鎖抗体、あるいはタンパク質を細胞内に向け得る核局在化シグナルのようなペプチド)を、アルブミンの他の末端に融合し得る。目的のタンパク質および標的化ペプチドを、アルブミンcDNAとの融合を可能にするベクター(例えば、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSA)中にクローニングする。この様式において、アルブミンのN末端およびC末端の両方を、他のタンパク質と融合する。次に、融合したcDNAを、pPPC0005から切り出し、そしてpSAC35のようなプラスミド中に挿入して、酵母中でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。上記の手順の全ては、分子生物学の標準的方法を用いて行うことができる。酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を、培地から回収および精製して、適切な生化学的試験および生物学的試験を用いて、その生物学的活性および標的化活性について試験する。
目的の酵素のcDNAを、種々の手段(排他的ではないが、全て標準的な方法を用いる、以下の手順が挙げられる、cDNAライブラリーから、RT−PCRによって、および一連の重複する合成オリゴヌクレオチドプライマーを用いるPCRによって)によって単離し得る。cDNAを、5’末端および3’末端で改変して、制限部位を作ることができ、その結果、オリゴヌクレオチドリンカーを、cDNAをHAのcDNAを含むベクター中にクローニングするために、使用し得る。この手順は、スペーサー配列を用いて、または用いることなく、N末端またはC末端において、なし得る。酵素cDNAを、pPPC0005(図2)、pScCHSA、pScNHSA、またはpC4:HSAのようなベクター中にクローニングし、次に、そのベクターから、完全な発現カセットを切り出し、そしてプラスミドpSAC35中に挿入し、酵母でのアルブミン融合タンパク質の発現を可能にする。次に、酵母から分泌されたアルブミン融合タンパク質を、培地から回収して精製し、その生物学的活性について試験する。哺乳動物細胞株での発現のために、使用する発現カセットが哺乳動物のプロモーター、リーダー配列、およびターミネーターを用いる以外は、類似の手順を適用する(実施例1を参照のこと)。次にこの発現カセットを切り出し、そして哺乳動物細胞株へのトランスフェクションに適切なプラスミド中に挿入する。
細菌のシグナル配列を含む、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを、DNA配列の5’末端および3’末端に対応するPCRオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅し、挿入フラグメントを合成する。挿入物をコードするポリヌクレオチドを増幅するために使用するプライマーは、増幅産物を発現ベクター中にクローニングするために、好ましくは、制限部位(例えば、BamHIおよびXbaI)を、プライマーの5’末端に含む。例えば、BamHIおよびXbaIは、細菌発現ベクターpQE−9(Qiagen,Inc.、Chatsworth,CA)の制限酵素部位に対応する。このプラスミドベクターは、抗生物質耐性(Ampr)、細菌の複製起点(ori)、IPTG−調節可能なプロモーター/オペレーター(P/O)、リボソーム結合部位(RBS)、6−ヒスチジンタグ(6−His)、および制限酵素クローニング部位をコードする。
本発明のアルブミン融合タンパク質を、哺乳動物細胞内で発現し得る。典型的な哺乳動物発現ベクターは、mRNAの転写開始を媒介するプロモーターエレメント、タンパク質コード配列、および転写終結および転写物のポリアデニル化に必要なシグナルを含む。さらなるエレメントとしては、エンハンサー、Kozak配列、およびRNAスプライシングのためのドナー部位およびアクセプター部位に隣接する介在配列が挙げられる。高度に効率的な転写が、SV40の初期プロモーターおよび後期プロモーター、レトロウイルス(例えば、RSV、HTLVI、HIVI)の長い末端反復(LTR)、ならびにサイトメガロウイルス(CMV)の初期プロモーターによって達成される。しかし、細胞性のエレメントもまた、使用し得る(例えば、ヒトアクチンプロモーター)。
アルブミン融合タンパク質(例えば、アルブミン(あるいはそのフラグメントまたは改変体)と融合した治療的タンパク質(あるいはそのフラグメントまたは改変体)が挙げられる)は、さらに他のタンパク質と融合し、「多重融合タンパク質」を生じ得る。これらの多重融合タンパク質は、様々な適用に使用され得る。例えば、本発明のアルブミン融合タンパク質とHisタグ、HAタグ、プロテインA、IgGドメイン、およびマルトース結合タンパク質とを融合させることで、精製が容易になる(例えば、EP A 394、827;Trauneckerら、Nature331:84−86(1988)を参照のこと)。本発明のポリペプチドと融合された核局在化シグナルは、タンパク質を特定の細胞下領域に標的化し得るが、一方、共有結合性のヘテロ二量体またはホモ二量体はアルブミン融合タンパク質の活性を増加または低下させ得る。さらに、本発明のアルブミン融合タンパク質とさらなるタンパク質配列との融合は、さらに融合タンパク質の可溶性および/または安定性を向上させ得る。前述の融合タンパク質は、当該技術分野で公知の技術を使用するかまたは慣用的な改変をすることによって、および/あるいは次のプロトコル(これはポリペプチドとIgG分子との融合の概説するものである)を改変することによって、製造され得る。
ヒトIgG Fc部分:
(ハイブリドーマ技術)
本発明のアルブミン融合タンパク質および本発明のアルブミン融合タンパク質の1部分(例えば、融合タンパク質の治療的タンパク質部分またはアルブミン部分)に結合する抗体は、様々な方法(Current Protocols、第2章を参照のこと)によって調製され得る。そのような方法の1例として、本発明のアルブミン融合タンパク質または本発明のアルブミン融合タンパク質の1部分の調製物が、調製され、実質的に天然の汚染物を含まないように精製される。その後、そのような調製物はより
大きな比活性を有するポリクローナル血清を生産するために、動物に導入される。
ヒトPBLから単離された天然のV遺伝子は、本発明のアルブミン融合タンパク質または本発明のアルブミン融合タンパク質の一部分に対する反応性を含む抗体フラグメントのライブラリーに構築されている。そこには、ドナーがさらされてもよいし、またはさらされなくてもよい。(例えば、本明細書においてその全体が参考として援用される米国特許番号5,885,793を参照のこと)
(ライブラリーのレスキュー)
scFvsのライブラリーは、国際公開番号WO92/01047に記載されているように、ヒトPBLのRNAから構築されている。抗体フラグメントを提示しているファージをレスキューするために、ファージミドを保有する約109個のE.coliが使用され、1% グルコースおよび100μg/ml アンピシリンを含む2×TY(2×TY−AMP−GLU)(50ml)に播種され、O.D.が0.8になるまで振とうしながら増殖させる。この培養液のうち5mlが、2×TY−AMP−GLU(50ml)に播種するために使用され、2×108TUのデルタ遺伝子3ヘルパー(M13デルタ遺伝子’’’、国際公開番号WO92/01047を参照のこと)が添加され、振とうせずに37℃で45分、その後、振とうしながら37℃で45分、培養液がインキュベートされる。培養液は4000r.p.m.で10分間の間、遠心分離され、ペレットは、100μg/ml アンピシリンおよび50μg/mlカナマイシンを含む2×TY(2l)に再懸濁され、一晩増殖させられる。ファージは、国際公開番号WO92/01047に記載されているように、調製される。
イムノチューブ(Nunc)がPBS中で、100μg/mlまたは10μg/mlの本発明のアルブミン融合タンパク質または本発明のアルブミン融合タンパク質の1部分(4ml)によって一晩ーティングされた。チューブは37℃で2時間、2% Marvel−PBSによってブロックされ、その後、PBSで3回洗浄される。約1013TUのファージがチューブに適用され、ターンテーブルの上および下で横に倒したまま、室温で30分、インキュベートされる。そして、さらに1.5時間静置したままにしておかれる。チューブはPBS 0.1% Tween−20で10回およびPBSで10回、洗浄される。ファージは1mlの100mMトリエチルアミンを加え、ターンテーブル上および下で15分間、回転させる(この後、溶液がすぐに0.5mlの1.0M Tris−HCl(pH7.4)で中和される)ことで溶出される。その後、ファージは、溶出されたファージを細菌と37℃で30分間、インキュベートすることにより、10mlの中ログ期のE.coli TG1に感染させるために使用される。その後、このE.coliは、1% グルコースおよび100μg/ml アンピシリンを含むTYEプレートにプレートされる。そして、その結果生じた細菌ライブラリーは、ファージを調製するために上で記載したように、この後の選択の段階でデルタ遺伝子3ヘルパーファージによってレスキューされる。その後、このプロセスでは、親和性精製が計4回繰り返され、ここでPBS、0.1% Tween−20で20回、3回目と4回目においてはPBSで20回、チューブを洗浄される。
第3回目、第4回目の選択から溶出されたファージは、E.coli HB2151を感染させるために使用され、アッセイよる単一のコロニーから可溶性scFvが生産される(Marksら、1991)。ELISA法が、50mM重炭酸イオン緩衝剤(pH9.6)中で、10pg/mlの本発明のアルブミン融合タンパク質または本発明のアルブミン融合タンパク質の1部分のいずれかでコートされたマイクロタイトレプレートによって、実施される。ELISAでポジティブなクローンは、さらにPCRフィンガープリンティング法(例えば、国際公開番号WO92/01047を参照のこと)、およびその後の配列決定によって、特徴付けられる。これらのELISAポジティブクローンはまた、当該技術分野において公知である技術(例えば、エピトープマッピング、結合親和性、レセプターシグナル伝達、抗体/抗原結合をブロックするかまたは競合的に阻害する能力、および競合的アゴニスト活性またはアンタゴニスト活性)によって、さらに特徴付けられ得る。
遺伝子治療の1つの方法は、線維芽細胞を移植し、これは、本発明のアルブミン融合タンパク質を患者へと発現し得る。一般的に、線維芽細胞は、皮膚生検によって被験体から得られる。得られた組織を、組織培養培地に配置し、小片に分離する。この組織の小塊を組織培養フラスコの湿潤表面に配置し、約10片を各フラスコに配置する。フラスコを上下に振り、硬く閉めて、室温で一晩置く。室温で24時間後、フラスコを反転させ、組織塊を、フラスコの底部に固定されたままにし、新鮮な培地(例えば、Ham’s F12培地(10%FRS、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含む))を加える。次いで、フラスコを37℃で約1週間インキュベートする。
本発明の別の局面は、インビボ遺伝子治療法を使用して、障害、疾患および状態を処置することである。遺伝子治療法は、本発明のアルブミン融合タンパク質をコードする裸の核酸(DNA、RNA、およびアンチセンスDNAまたはRNA)の動物への導入に関する。本発明のアルブミン融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、標的組織によってポリペプチドの発現に必要なプロモーターまたは任意の他の遺伝子エレメントに作動可能に連結(すなわち、会合)され得る。このような遺伝子治療および送達技術および方法は、当該分野で公知である。例えば、W090/11092, W098/11779 ; 米国特許第5693622, 同第5705151号, 同第5580859号 ; Tabataら, Cardiovasc. Res. 35 (3): 470−479 (1997); Chaoら, Pharmacol. Res. 35 (6): 517−522 (1997); Wolff, Neuromuscul. Disord. 7 (5): 314−318 (1997); Schwartzら, Gene Ther. 3 (5): 405−411 (1996); Tsurumiら, Circulation 94 (12): 3281− 3290 (1996)(本明細書で参考として援用される)。
本発明のアルブミン融合タンパク質はまた、トランスジェニック動物において発現され得る。任意の種の動物(マウス、ラット、ウサギ、ハムスター、モルモット、ブタ、小ブタ、ヤギ、ヒツジ、ウシならびに非ヒト霊長類(例えば、ヒヒ、サル、およびチンパンジー)が挙げられるが、これらに限定されない)を使用して、トランスジェニック動物を生成し得る。特定の実施形態において、本明細書で記載される技術またはそうでなければ当該分野で公知の技術を使用して、ヒトにおいて遺伝子治療プロトコルの一部として本発明の融合タンパク質を発現する。
機能的体液性免疫応答の生成には、B連結細胞とそれらの微小環境との間に可溶性かつ同族のシグナル伝達が必要である。シグナルは、B連結細胞がそのプログラムされた発達を持続し得るポジティブな刺激か、または細胞にその現在の発達経路を停止するように指示するネガティブな刺激を与え得る。今日まで、多くの刺激性シグナルおよび阻害性シグナルが、B細胞応答(IL−2、IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、IL−10、IL−13、IL−14およびIL−15)に影響を及ぼすことが見出されている。興味深いことに、これらのシグナルは、それら単独では弱いエフェクターであるが、種々の同時刺激性タンパク質と組み合わせると、B細胞集団の間で、活性化、増殖、分化、ホーミング(homing)、寛容性および死を誘導し得る。
CD3誘導性増殖アッセイをPBMCに対して実施し、そして3H−チミジンの取り込みによって測定する。このアッセイは以下のように実施する。96ウェルプレートを、CD3に対して100μl/ウェルのmAb(HIT3a,Pharmingen)か、またはイソ型適合コントロールmAb(B33.1)により、4℃で一晩コーティング(0.05M 炭酸塩緩衝液中1μg/ml、pH9.5)し、次いで、PBSで3回洗浄する。F/H勾配遠心分離により、ヒト抹消血からPBMCを単離し、RPMI(10% FCSおよびP/Sを含む)中、種々の濃度の本発明のアルブミン融合タンパク質(治療タンパク質のフラグメントもしくは改変体ならびに/またはアルブミンあるいは種々のアルブミンのフラグメントもしくは改変体を含む)(全容量200μl)の存在下で、mAbコーティングプレートの4連のウェル(5 x 104ウェル)に加える。関連タンパク質緩衝液および培地単独をコントロールとする。37℃での48時間の培養後、1000rpmで2分間回転させ、そして100μlの上清を除去し、増殖に対する影響が観察される場合、IL−2(または他のサイトカイン)の測定のために−20℃で保存する。100μlの培地(0.5uCiの3H−チミジン)をウェルに補充し、そして、37℃で18〜24時間培養する。ウェルを回収し、増殖の測定のように、3H−チミジンの取り込みを使用する。抗CD3単独は、増殖についてのポジティブコントロールである。IL−2(100U/ml)をまた、コントロールとして使用し、これは、増殖を増強する。T細胞の増殖を誘導しないコントロール抗体を、本発明の融合タンパク質の効果についてのネガティブコントロールとして使用する。
樹状細胞を、末梢血において見出される増殖前駆体の拡大によって生成する:接着PBCMまたはエルトリエーションした単球画分は、GM−CSF(50ng/ml)およびEL−4(20ng/ml)とともに7〜10日間培養する。これらの樹状細胞を、未成熟細胞(CD1、CD80、CD86、CD40およびMHCクラスII抗原の発現)の特徴的な表現型を有する。TNF−αのような活性化因子での処理は、表面の表現型(NHCクラスIおよびクラスII、同時刺激分子および細胞接着分子の発現増加、FCγRIIの下方調節、CD83の上方調節)の迅速な変化を生じさせる。これらの変化は、抗原提示能力の増強、および樹状細胞の成熟に関連する。
樹状細胞(特に、IL−12)によって産生されたサイトカインは、T細胞依存性免疫応答の阻害において重要である。IL−2は、Th1ヘルパーT細胞免疫応答の発達に強く影響し、細胞傷害性T細胞機能およびNK細胞機能を誘導する。ELISAを使用して、以下のようにIL−12放出を測定する。樹状細胞(106/ml)を、逓増濃度の本発明のアルブミン融合タンパク質を用いて24時間処理する。LPS(100ng/ml)を、ポジティブコントロールとして細胞培養物に添加する。次いで、これらの細胞培養物からの上清を回収し、市販のELISAキット(例えば、R&D Systems(Minneapolis,MN))を用いてIL−12含有量について分析する。キットに添付された標準的なプロトコルを使用する。
細胞表面抗原の3つの主要なファミリー(接着分子、抗原提示に関与する分子、およびFcレセプター)が、単球において観察され得る。HMCクラスII抗原および他の同時発現分子(例えば、B7およびICAM−1)の発現調節は、単球の抗原提示能力およびT細胞を誘導する能力における変化を生じ得る。Fcレセプターの発現増加は、単球細胞傷害性活性、サイトカイン放出および食作用の改善に関連し得る。
単球を活性化(または、不活性化)および/または単球の生存を増強(または単球の生存減少)させる分子についてのアッセイは、当該分野で公知であり、本発明の分子が単球のインヒビターまたはアクチベーターとして機能するか否かを決定するために慣用的に適応され得る。本発明のアルブミン融合タンパク質は、以下に記載される3つのアッセイを用いてスクリーニングされ得る。これらのアッセイの各々について、末梢血単核細胞(PBMC)は、Histopaque gradient (Sigma)による遠心分離によって、単一のdonor leukopack(American Red Cross,Baltimore,MD)から精製する。単球を、向流遠心分離エルトリエーションによってPBMCから単離する。
血清の非存在下または他の刺激下で培養された場合、ヒト末梢血単球は次第に死滅する。単球の死は、内部調節プロセス(アポトーシス)の結果である。TNF−αのような活性化因子を培養に添加すると、細胞の生存およびDNA断片化からの保護を劇的に改善する。プロピジウムアイオダイド(PI)染色を使用して、以下のようにアポトーシスを測定する。単球を、血清を含まない培地(ポジティブコントロール)、100ng/ml TNF−αの存在下(ネガティブコントロール)、および多様な濃度の試験される融合タンパク質の存在下において、ポリプロピレンチューブ中で48時間培養する。細胞を、最終濃度5μg/mlのPI含有PBS中で、2×106個/1mlの濃度で懸濁し、次いでFACScan分析の前、5分間にわたって室温でインキュベートする。PIの取り込みは、この実験パラダイムにおいて、DNA断片化と相関することが実証されている。
単球/マクロファージの重要な機能は、刺激後のサイトカイン放出を介する免疫系の他の細胞集団に関するその調節活性である。サイトカイン放出を測定するためのELISAを、以下のように実施する。ヒト単球を、5×105細胞/mlの密度で、逓増濃度の本発明のアルブミン融合タンパク質、および同じ条件下であるがこの融合タンパク質の非存在下において培養する。IL−2産生について、これらの細胞を、融合タンパク質の存在下において、IFN(100U/ml)で一晩プライミングする。次いで、LPS (10 ng/ml)を添加する。条件付けした培地を、24時間後に回収し、使用するまで凍結保存する。次いで、TNF−α、IL−10、MCP−1およびIL−8の測定を、市販のELISAキット(例えば、R&D Systems(Minneapolis,MN))を用いて、キットに添付された標準的なプロトコルに使用して実施する。
精製した単球を、2〜1×105細胞/ウェルで96ウェルにプレートする。本発明の逓増濃度の融合タンパク質を、総体積0.2ml培養培地(RPMI 1640+10% FCS、グルタミンおよび抗生物質)においてウェルに添加する。3日間のインキュベーション後、これらのプレートを遠心分離し、そして培地をウェルから除去する。マクロファージ単層について、1ウェルあたり0.2mlのフェノールレッド溶液(140mM NaCI、10mMリン酸カリウム緩衝液(pH 7.0)、5.5mMデキストロース、0.56mMフェノールレッドおよび19U/mlのHRPO)を、刺激剤(200nM PMA)とともに添加する。これらのプレートを37℃で2時間インキュベートし、反応を1ウェルあたり1N NaOH(20μl)を添加して停止させる。吸光度を610nmで読み取る。マクロファージによって産生されるH2O2量を測定するために、モル濃度が既知のH2O2溶液標準曲線を各実験について実施する。
(星状細胞および神経アッセイ)
本発明のアルブミン融合タンパク質は、皮質神経細胞の生存、神経突起成長、または表現型の分化を促進する活性について、およびグリア繊維性酸性タンパク質免疫保護細胞、星状細胞の増殖誘導について試験し得る。バイオアッセイについての皮質細胞の選択は、皮質構造におけるFGF−1およびFGF−2の遍在的発現、ならびに以前に報告されているFGF−2処理による皮質神経細胞生存の促進に基づく。例えば、チミジン取り込みアッセイは、これらの細胞における本発明のアルブミン融合タンパク質の活性を解明するために使用され得る。
ヒト肺線維芽細胞を、Clonetics(San Diego,CA)から入手し、そしてCloneticsからの増殖培地で維持する。真皮性微小血管内皮細胞をCell Applications(San Diego,CA)から得る。増殖アッセイについては、ヒト肺線維芽細胞および真皮性微小血管内皮細胞を、96ウェルプレートの増殖培地中で1日間、5,000細胞/ウェルで培養し得る。次いでこの細胞を0.1%BSA基礎培地中で1日間インキュベートする。新鮮な0.1%BSA培地で培地を置換した後、細胞を本発明の試験融合タンパク質と3日間インキュベートする。Alamar Blue(Almar Biosciences,Sacramento,CA)を10%の最終濃度になるように各ウェルに添加する。この細胞を4時間インキュベートする。細胞生存度をCytoFluor蛍光リーダーでの読取りにより測定する。PGE2アッセイについては、ヒト肺線維芽細胞を、96ウェルプレート中で1日間、5,000細胞/ウェルで培養する。0.1%BSA基礎培地に培地を交換した後、細胞をIL−1αとともに、またはそれをともなわずに、FGF−2または本発明の融合タンパク質と24時間インキュベートする。上清を収集し、そしてEIAキット(Cayman,Ann Arbor,MI)によりPGE2についてアッセイする。IL−6アッセイについては、ヒト肺線維芽細胞を、96ウェルプレート中で1日間、5,000細胞/ウェルで培養する。0.1%BSA基礎培地に培地を交換した後、細胞を本発明のアルブミン融合タンパク質および/またはIL−1αとともに、またはそれをともなわずに、FGF−2と24時間インキュベートする。上清を収集し、そしてELISAキット(Endogen,Cambridge,MA)によりIL−6についてアッセイする。
以下の[3H]チミジン組み込みアッセイは、細胞(例えば、線維芽細胞、上皮細胞または未成熟筋細胞)の増殖に対する治療タンパク質(例えば、増殖因子タンパク質)の効果を測定するために使用され得る。
パーキンソン病における運動機能の喪失は、黒質線条体のドーパミン作動性投射ニューロンの変性から生じる線条体ドーパミンの欠乏に起因する。広範に特徴付けされたパーキンソン病の動物モデルは、1−メチル−4フェニル1,2,3,6−テトラヒドロピリジン(MPTP)の全身投与を含む。CNSにおいて、MPTPは、星状細胞により取り込まれ、そしてモノアミンオキシダーゼBにより1−メチル−4−フェニルピリジン(MPP+)に異化され、そして放出される。引き続き、MPP+は、ドーパミンの高親和性再取り込みトランスポーターによりドーパミン作動性ニューロンに能動的に蓄積する。次いで、MPP+は、電気化学勾配によりミトコンドリア中で濃縮され、そしてニコチン酸アミドアデニン二リン酸:ユビキノン酸化還元酵素(複合体I)を選択的に阻害し、これにより電子伝達を妨害し、そして最終的に活性酸素を生成する。
1日目に、ヒト臍帯静脈上皮細胞(HUVEC)を、4%ウシ胎仔血清(FBS)、16単位/mlへパリン、および50単位/ml上皮細胞増殖補充物(ECGS、Biotechinique,Inc.)を含むM199培地中に、2〜5×104細胞/35mmディッシュ密度で播種する。2日目に、培地を、10%FBS、8単位/mlへパリンを含むM199と置き換えた。本発明のアルブミン融合タンパク質、およびポジティブコントロール(例えば、VEGFおよび基礎的なFGF(bFGF)が種々の濃度で添加される。4日目および6日目に、培地を置換する。8日目に、細胞数を、Coulter Counterを用いて決定する。
この動物モデルは、本発明のアルブミン融合ポリペプチドの、新生血管形成に対する効果を示す。実験プロトコルは、以下を含む:
角膜の中心から支質層へと1〜1.5mmの長さの切開を作ること。
(糖尿病db+/db+マウスモデル)
本発明のアルブミン融合タンパク質が治癒プロセスを促進することを実証するために、創傷治癒の遺伝的糖尿病マウスモデルを、使用する。db+/db+マウスにおける全層(full thickness)創傷治癒モデルは、損傷創傷治癒の十分に特徴付けられた、臨床的に関連性のある、そして再現可能なモデルである。糖尿病性創傷の治癒は、収縮よりむしろ肉芽組織の形成および再上皮形成に依存する(Gartner,M.H.ら、J.Surg.Res.52:389(1992);Greenhalgh,D.G.ら、Am.J.Pathol.136:1235(1990))。
a.[8日目の開放面積]−[1日目の開放面積]/[1日目の開放面積]。
ステロイドによる創傷治癒の阻害は、種々のインビトロ系およびインビボ系において十分に実証されている(Wahl,Glucocorticoids and Wound healing:Anti−Inflammatory Steroid Action:Basic and Clinical Aspects.280−302(1989); Wahlら、J.Immunol.115:476−481(1975);Werbら、J.Exp.Med.147:1684−1694(1978))。糖質コルチコイドは、新脈管形成を阻害すること、血管透過性(Ebertら、An.Intern.Med.37:701−705(1952))、線維芽細胞増殖、およびコラーゲン合成(Beckら、Grows Factors.5:295−304(1991);Haynesら、J.Clin.Invest.61:703−797(1978))を低下させること、ならびに循環する単球の一過性の減少を生じること(Haynesら、J.Clin.Invest.61:703−797(1978);Wahl,「Glucocorticoids and wound healing」:Antiinflammatory Steroid Action:Basic and Clinical Aspects,Academic Press,New York,280−302頁(1989))によって創傷治癒を遅延させる。障害性創傷治癒に対するステロイドの全身性投与は、ラットにおいて十分に確立された現象である(Beckら、Growth Factors.5:295−304(1991); Haynesら、J.Clin.Invest.61:703−797(1978) ;Wahl,「Glucocorticoids and wound healing」:Antiinflammatory Steroid Action:Basic and Clinical Aspects,Academic Press,New York,280−302頁(1989);Pierceら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:2229−2233(1989))。
a.[8日目の開放面積]−[1日目の開放面積]/[1日目の開放面積]。
この実験アプローチの目的は、ラット後肢におけるリンパ管形成(lymphagiogenesis)およびリンパの循環系の再確立における本発明のアルブミン融合タンパク質の治療的効果を試験するための、適切かつ一貫したリンパ水腫モデルを作製することである。有効性は、罹患した肢の腫脹体積、リンパ脈管の量の定量、総血漿タンパク質の量、および組織病理学により測定される。急性リンパ水腫は、7〜10日間観察される。恐らくより重要なことは、水腫の慢性進行は、3〜4週間まで続く。
炎症および新脈管形成の領域に対するリンパ球の漸増は、リンパ球上の細胞表面接着分子(CAM)と血管内皮との間の特異的なレセプター−リガンド相互作用に関する。この接着プロセスは、通常の設定および病理学的設定の両方において、細胞間接着分子−1(ICAM−1)、血管細胞接着分子−1(VCAM−1)、および内皮細胞(EC)における内皮白血球接着分子−1(E−セレクチン)発現を含む、多段階カスケードに続く。これらの分子および他の分子の血管内皮における発現は、白血球が局所血管系に接着し得、そして炎症応答の発生の間に局所組織に溢出し得る効率を決定する。サイトカインおよび増殖因子の局所濃度は、これらのCAMの発現の調節に関与する。
細胞の分化および増殖に関与する1つのシグナル伝達経路は、Jaks−STAT経路と呼ばれる。Jaks−STAT経路において活性化されたタンパク質は、多くの遺伝子のプロモーターに位置する、γ活性化部位「GAS」エレメントまたはインターフェロン感受性応答エレメント(「ISRE」)に結合する。これらのエレメントに対するタンパク質の結合は、関連する遺伝子の発現を変化させる。
本明細書中に開示される実施例に記載されるアッセイのためのレポーター分子として、SEAP活性を、以下の一般的な手順に従ってTropix Phospho−light Kit(カタログ番号BP−400)を用いてアッセイする。Tropix Phospho−light Kitは、以下で使用される希釈緩衝液、アッセイ緩衝液、および反応緩衝液を供給する。
細胞が分化および増殖を経る場合、一群の遺伝子が多くの異なるシグナル伝達経路を介して活性化される。これらの遺伝子の1つであるEGR1(初期増殖応答遺伝子1)は、活性化時に種々の組織および細胞型において誘導される。EGR1のプロモーターはこのような誘導を担う。レポーター分子に結合したEGR1プロモーターを使用して、細胞を活性化する本発明のアルブミン融合タンパク質の能力を評価し得る。
第1のプライマー:5’GCGCTCGAGGGATGACAGCGATAGAACCCCGG−3’(配列番号1117)
第2のプライマー:5’GCGAAGCTTCGCGACTCCCCGGATCCGCCTC−3’(配列番号1118)。
以下のプロトコルを使用して、因子を同定すること、および本発明のアルブミン融合タンパク質がT細胞を増殖および/または分化するか否かを決定することによって、T細胞活性を評価する。T細胞の活性を実施例75で作製したGAS/SEAP/Neo構築物を用いて評価する。従って、SEAP活性を増加させる因子は、Jaks−STATSシグナル伝達経路を活性化する能力を示す。このアッセイに使用したT細胞は、Jurkat T細胞(ATCC受託番号TIB−152)であるが、Molt−3細胞(ATCC受託番号CRL−1552)およびMolt−4細胞(ATCC受託番号CRL−1582)細胞もまた使用し得る。
NF−KB(核因子KB)は、広範な種々の薬剤(炎症性サイトカインであるIL−1およびTNF、CD30およびCD40、リンホトキシン−αおよびリンホトキシン−βを含む)により、LPSまたはトロンビンへの曝露により、ならびに特定のウイルス遺伝子産物の発現により活性化される転写因子である。転写因子として、NF−KBは免疫細胞の活性化に関与する遺伝子の発現、アポトーシスの制御(NF−KBは、アポトーシスから細胞を保護するようである)、B細胞およびT細胞の発生、抗ウイルス応答および抗菌応答、ならびに複数のストレス応答を調節する。
5’:GCGGCCTCGAGGGGACTTTCCCGGGGACTTTCCGGGGACTTTCCGGGACTTTCCATCCTGCCATCTCAATTAG:3’(配列番号1120)。
5’:GCGGCAAGCTTTTTGCAAAGCCTAGGC:3’(配列番号1115)。
以下のプロトコルを使用して、融合タンパク質が骨髄性細胞を増殖および/または分化させるか否かを決定することにより本発明のアルブミン融合タンパク質の骨髄性活性を評価する。骨髄性細胞の活性を実施例75において産生されたGAS/SEAP/Neo構築物を用いて評価する。従って、SEAP活性を増加させる因子は、Jaks−STATSシグナル伝達経路を活性化させる能力を示す。このアッセイに使用した骨髄性細胞は、U937(前単球(pre−monocyte)細胞株である)が、TF−1、HL60、またはKG1も使用し得る。
レセプターへのリガンドの結合は、カルシウム、カリウム、ナトリウムのような低分子およびpHの細胞内レベルを変化させ、ならびに膜電位を変化させることが公知である。これらの変化を特定細胞のレセプターに結合する融合タンパク質を同定するためのアッセイで測定し得る。以下のプロトコルは、カルシウムについてのアッセイを記載するが、このプロトコルは、カリウム、ナトリウム、pH、膜電位、または蛍光プローブにより検出可能な任意の他の低分子の変化を検出するように容易に改変され得る。
プロテインチロシンキナーゼ(PTK)は、多様な群の膜貫通キナーゼおよび細胞質キナーゼを表す。レセプタープロテインチロシンキナーゼ(RPTK)群内に、PDGF、FGF、EGF、NGF、HGFおよびインスリンレセプターサブファミリーを含む、一定の範囲のマイトジェン性および代謝性成長因子のレセプターがある。さらに、対応するリガンドが未知である大きなRPTKのファミリーがある。RPTKのリガンドは、主として分泌される低分子量タンパク質を含むが、膜結合型および細胞外マトリックスタンパク質も含む。
実施例82に記載のタンパク質チロシンキナーゼ活性アッセイの可能性のある代替物および/または補体(compliment)として、主要な細胞内シグナル伝達中間体の活性化(リン酸化)を検出するアッセイもまた使用し得る。例えば、下記のように、一つの特定のアッセイは、Erk−1キナーゼおよびErk−2キナーゼのチロシンリン酸化を検出し得る。しかし、Raf、JNK、p38 MAP、Mapキナーゼキナーゼ(MEK)、MEKキナーゼ、Src、筋肉特異的キナーゼ(MuSK)、IRAK、TecおよびJanusのような他の分子、ならびに他の任意のホスホセリン、ホスホチロシンまたはホスホスレオニン分子のリン酸化を、以下のアッセイにおいてこれらの分子でErk−1またはErk−2を置き換えることにより検出し得る。
このアッセイは、ヒトCD34+が、造血増殖因子の存在下で増殖する能力に基づき、そしてCD34+細胞の増殖を刺激する本発明の融合タンパク質の能力を評価する。
細胞外マトリックス増強細胞応答(EMECR)アッセイの目的は、細胞外マトリックス(ECM)誘導シグナルに関連して、造血幹細胞に作用する本発明の融合タンパク質の能力を評価することである。
本発明の融合タンパク質を、正常なヒト皮膚線維芽細胞(NHDF)およびヒト大動脈平滑筋細胞(AoSMC)の培養物に添加し、そして2つの同時アッセイを各サンプルを用いて実施する。第1のアッセイは、正常なヒト線維芽細胞(NHDF)または大動脈平滑筋細胞(AoSMC)の増殖に対する、融合タンパク質の効果を試験する。線維芽細胞または平滑筋細胞の異常な増殖は、いくつかの病理学的プロセス(繊維症および再狭窄を含む)の一部である。第2のアッセイは、NHDFおよびSMCの両方によるIL6産生を試験する。IL6産生は、機能的活性化の指標である、活性化細胞は、多数のサイトカインおよび他の因子の産生の増加を有し、これは、炎症誘発性(proinflammatory)または免疫調節性の結果を生じ得る。アッセイは、同時刺激活性または阻害活性をチェックするために、同時TNFα刺激とともに行い、そして同時TNFα刺激なしで行う。
リンパ球の、炎症および新脈管形成の領域に対する動員は、リンパ球上の細胞表面接着分子(CAM)と脈管内皮との間の特異的なレセプタリガンド相互作用を含む。接着プロセスは、正常の環境および病的な環境の両方において、多段階のカスケードに従い、このカスケードは、内皮細胞(EC)上での細胞内接着分子1(ICAM−1)、脈管細胞接着分子1(VCAM−1)、および内皮性白血球接着分子1(E−セレクチン)の発現を含む。脈管内皮上でのこれらの分子などの発現は、白血球が局所的な脈環構造と接着し、そして炎症性応答の進行の間に局所的な組織へと溢出し得る効率を決定する。サイトカインおよび増殖因子の局所的濃度は、これらのCAMの発現の調節に関与する。
このアッセイを使用して、ウシリンパ内皮細胞(LEC)、ウシ大動脈内皮細胞(BAEC)、またはヒト微小血管子宮筋細胞(UTMEC)のbFGF誘導増殖のタンパク質媒介性阻害を定量的に決定し得る。このアッセイは、代謝活性の検出に基づく、蛍光定量的な増殖インジケーターを組み込む。標準Alamar Blue増殖アッセイを、内皮細胞刺激の供給源として添加した10ng/mlのbFGFを含むEGM−2MV中で調製する。このアッセイは、増殖培地および細胞濃度がわずかに変化した様々な内皮細胞と共に使用され得る。試験されるべきタンパク質バッチの希釈物を、適切に希釈する。bFGFなしの無血清培地(BIBCO SFM)を、非刺激コントロールとして使用し、そしてAngiostatinまたはTSP−1を、既知の阻害コントロールとして含める。
このアッセイを使用して、本発明の融合タンパク質による混合リンパ球反応(MLR)の阻害を検出および評価し得る。MLRの阻害は、細胞増殖および生存度、相互作用する細胞における同時刺激分子の調節、リンパ球と補助細胞との間の接着の調節、または補助細胞によるサイトカイン産生の調節に対する直接効果に起因し得る。複数の細胞は、MLRを阻害する本発明のアルブミン融合タンパク質によって標的化され得る。なぜなら、このアッセイで使用される末梢血液単核画分は、Tリンパ球、Bリンパ球およびナチュラルキラーリンパ球、ならびに単球および樹状細胞を含むためである。
以下のアッセイは、本発明のアルブミン融合タンパク質のプロテアーゼ活性を評価するために使用され得る。
当該分野で公知の方法または本明細書中に記載された方法を用いて、セリンプロテアーゼ活性を有する本発明のアルブミン融合タンパク質の基質特異性を決定し得る。基質特異性決定の好ましい方法は、GB 2 324 529(本明細書中にその全体が援用される)に記載されるように、合成コンビナトリアルライブラリーの位置的スキャニングの使用による方法である。
以下のアッセイは、本発明のアルブミン融合タンパク質のリガンド結合活性を評価するために用いられ得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質をコードする線状化プラスミドテンプレート由来のキャップRNA転写物を、標準手順に従ってRNAポリメラーゼを用いてインビトロで合成する。インビトロ転写物を、0.2mg/mlの最終濃度で水中に懸濁する。卵巣葉を成体雌性カエルから取り出し、第V段階の濾胞除去した卵母細胞を得、そしてRNA転写物(10ng/卵母細胞)を、微量注入装置を用いて50nlボーラスで注射する。2電極電圧クランプを用いて、融合タンパク質およびポリペプチドアゴニスト曝露に対する個々のアフリカツメガエル卵母細胞由来の電流を測定する。室温でCa2+を含まないバルト培地(Barth’s medium)において記録を行う。このアフリカツメガエル系を、リガンドの活性化のための公知のリガンドおよび組織/細胞抽出物のスクリーニングに使用し得る。
多種多様の二次メッセンジャー系(secondary messenger system)の活性化により、細胞から少量の酸が噴出する。形成された酸は、主に、細胞内シグナル伝達プロセスを刺激するのに必要な代謝活性の増大の結果である。細胞周囲の培地のpH変化は非常に小さいが、CYTOSENSOR微量生理機能測定器(Molecular Devices Ltd.,Menlo Park,Calif.)によって検出可能である。従って、CYTOSENSORは、エネルギーを利用した細胞内シグナル伝達系と共役する二次メッセンジャーを活性化する本発明のアルブミン融合タンパク質の能力を、検出可能である。
今のところ同系の活性化リガンド(アゴニスト)が存在しない多数の哺乳類レセプタが存在する。従って、これらのレセプターに対する活性リガンドは、現在まで同定されたとしてリガンドバンク内に含まれていないかもしれない。従って、本発明のアルブミン融合タンパク質はまた、本発明のアルブミン融合タンパク質の治療用タンパク質部分および/またはアルブミンタンパク質部分についての天然のリガンドを同定するために、組織抽出物に対して、(カルシウム、cAMP、微量生理機能測定器、卵母細胞電気生理学など機能的スクリーニングを使用して)機能的にスクリーニングされ得る。陽性の機能的応答を生じる抽出物は、活性化リガンドが単離および同定されるまで、連続して細分画され得る。
以下のアッセイが、本発明の融合タンパク質のATP結合アッセイを評価するために使用され得る。
本発明のアルブミン融合タンパク質のリン酸化活性についてのアッセイのために、米国特許第5,958,405号(これは、参考として本明細書中に援用される)に記載されるように、リン酸化アッセイを利用する。簡単には、リン酸化活性は、γ標識化32P−ATPを用いてタンパク質基質をリン酸化し、そしてγ放射性同位体カウンターを用いて取り込まれた放射活性を定量化することによって、測定され得る。本発明の融合タンパク質を、タンパク質基質、32P−ATPおよびキナーゼ緩衝液と共にインキュベートする。次いで、基質に取り込まれた32Pを、電気泳動によって遊離の32P−ATPから分離し、この取り込まれた32Pをカウントし、そして陰性コントロールと比較する。陰性コントロール以上の放射活性カウントが、融合タンパク質のリン酸化活性を示す。
当該分野で公知の方法または本明細書に記載される方法を使用して、本発明のアルブミン融合タンパク質のリン酸化活性を決定し得る。リン酸化活性を決定する好ましい方法は、米国特許第5,817,471号(本明細書中に参考として援用される)に記載されるように、チロシンリン酸化アッセイを使用する。
(実施例99:本発明のアルブミン融合タンパク質と相互作用するシグナル伝達タンパク質の同定)
本発明のアルブミン融合タンパク質を、シグナル伝達経路タンパク質またはレセプタータンパク質の同定、特徴付けおよび精製のための研究手段として供し得る。簡単には、本発明の標識融合タンパク質は、それが相互作用する分子の精製のための試薬として有益である。親和性精製の1つの実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、クロマトグラフィーカラムに共有結合される。推定の標的細胞(例えば、癌組織)に由来する無細胞抽出液をカラムに通し、適切な親和性を有する分子をアルブミン融合タンパク質に結合する。このタンパク質複合体をカラムから回収し、分離し、そして回収された分子をN末端タンパク質配列決定に供する。次いで、このアミノ酸配列を使用して、補足分子を同定するか、または適切なcDNAライブラリーから関連遺伝子をクローニングするための縮重オリゴヌクレオチドプローブを設計する。
本発明のアルブミン融合タンパク質の増殖性効果を試験するための種々のアッセイが、当該分野で公知である。例えば、そのような1つのアッセイは、Marzら(Proc.Natl.Acad Sci.,U.S.A.,95:3251−56(1998)、本明細書中に参考として援用される)によって記載されるような、IL−6バイオアッセイである。37℃で68時間後、生細胞の数を、テトラゾリウム塩チアゾリルブルー(thiazolyl blue)(MTT)を添加してさらに37℃で4時間インキュベートすることによって、測定する。B9細胞をSDSによって溶解し、光学密度を570nmで測定する。IL−6を含むコントロール(陽性)およびサイトカインを含まないコントロール(陰性)。簡単には、IL−6依存性マウスB9細胞を、IL−6を含まない培地中で3回洗浄し、50μl中に5,000細胞/ウェルの濃度でプレートし、そして50μlの本発明の融合タンパク質を添加する。利用する。陰性コントロールと比較して増強された試験サンプル(本発明のアルブミン融合タンパク質を含む)における増殖は、融合タンパク質によって媒介された増殖性効果を示す。
交感神経細胞生存度が、本発明のアルブミン融合タンパク質によって支持されるか否かを試験するために、Senaldiらのニワトリ胚ニューロン生存アッセイが利用され得る(Proc.Natl.Acad.Sci.,U.S.A.,96:11458−63(1998)、これは、本明細書中に参考として援用される)。簡単には、運動ニューロンおよび交感神経を、ニワトリ胚から単離し、L15培地(10% FCS、グルコース、亜セレン酸ナトリウム、プロゲステロン、コナルブミン、プトレシン、およびインスリンを含む;Life Technologies,Rockville,MD.)ならびにダルベッコ改変イーグル培地[10% FCS、グルタミン、ペニシリン、および25mM Hepes緩衝液(pH7.2)を含む;Life Technologies,Rockville,MD.]中に、それぞれ再懸濁し、異なる濃度の本発明の精製融合タンパク質の存在下で、ならびに陰性コントロールはサイトカインを全く含まずに、5% CO2中で37℃でインキュベートする。3日後、ニューロン生存を、細胞形態学の評価によって、Mosmannの比色分析アッセイ(Mosmann,T.,J.Immunol.Methods,65:55−63(1983))を使用して決定する。サイトカインを含まないコントロールと比較して増強されたニューロン細胞生存度は、アルブミン融合タンパク質がニューロン細胞の生存を高める能力を示す。
以下のアッセイは、本発明のアルブミン融合タンパク質のセリン/トレオニンホスファターゼ(PTPアーゼ)活性を評価するのに使用され得る。
セリン/トレオニンホスファターゼ活性を有する本発明の融合タンパク質(例えば、実施例102において決定されるような)は、例えば、さらなる相互作用タンパク質またはレセプタータンパク質あるいは他のシグナル伝達経路タンパク質の同定、特徴付けおよび精製のための研究手段として有用である。簡単には、本発明の標識融合タンパク質は、この融合タンパク質とが相互作用する分子の精製のための試薬として有用である。アフィニティ精製の1つの実施形態において、本発明のアルブミン融合タンパク質は、クロマトグラフィーカラムに共有結合的に結合する。推定標的細胞由来の無細胞抽出液(例えば、神経細胞または肝細胞)は、カラムを通過し、適切な親和性を有する分子が、この融合タンパク質に結合する。融合タンパク質−複合体をカラムから回収し、分離し、そして回収した分子をN末端タンパク質配列決定に供す。次いで、このアミノ酸配列を用いて、捕捉分子を同定するか、または適切なcDNAライブラリー由来の関連遺伝子をクローニングするための縮重オリゴヌクレオチドプローブを設計する。
本発明のアルブミン融合タンパク質のヘパラナーゼ活性についてのアッセイに使用され得る当該分野で公知の多数のアッセイがある。1つの実施例において、本発明のアルブミン融合タンパク質のヘパラナーゼ活性を、Vlodavskyら(Vlodavskyら,Nat.Med.,5:793−802(1999))に記載されるようにアッセイする。簡単には、細胞溶解産物、馴化培地、インタクトな細胞(1×106細胞/35mmディッシュ)、細胞培養上清、または精製融合タンパク質を、37℃で18時間、pH6.2〜6.6で、35S標識ECMまたは可溶性ECM誘導性のピークIプロテオグリカンと共にインキュベートする。このインキュベーション培地を遠心し、そして上清をSepharose CL−6Bカラム(0.9×30cm)を用いたゲル濾過によって分析する。画分をPBSで溶出し、それらの放射活性を測定する。ヘパラン硫酸側鎖の分解フラグメントを、0.5<Kav<0.8(ピークII)で、Sepharose 6Bから溶出する。各実験を、少なくとも3回行う。「ピークII」に相当するフラグメントは、Vlodavskyによって記載されるように、ヘパラン硫酸の開裂における本発明のアルブミン融合タンパク質の活性を示す。
この実施例は、非宿主細胞脂質二重層構築物中の本発明のアルブミン融合タンパク質の安定化のための方法(例えば、Bieriら、Nature Biotech 17:1105−1108(1999)(これによって、その全体が参考として本明細書中に援用される)を参照のこと)を提供し、この方法は、上記の種々の機能的アッセイにおける本発明の融合タンパク質の研究のために適合され得る。簡単には、ビオチン化についての糖質特異的化学を用いて、本発明のアルブミン融合タンパク質にビオチンタグを拘束し、固定化の際の均一な方向を可能にする。洗浄された膜中の本発明のアルブミン融合タンパク質の50μM溶液を、20mM NaIO4、1.5mg/ml(4mM)BACHまたは2mg/ml(7.5mM)ビオチン−ヒドラジド(反応容量、150μl)と共に、室温で1時間インキュベートする。次いで、このサンプルを、まず4℃で5時間、1時間後毎に緩衝液を交換して透析(Pierce Slidealizer Cassett,10kDaカットオフ;Pierce Chemical Co.,Rockford IL)を行い、最終的に500ml緩衝液R(0.15M NaCl、1mM MgC12、10mMリン酸ナトリウム、pH7)で12時間、透析する。キュベットに添加する直前に、このサンプルを緩衝液ROG50(50mMオクチルグルコシドを追加した緩衝液R)で1:5に希釈する。
メタロプロテイナーゼは、金属イオン(例えば、Zn2+)を触媒機構として用いるペプチド加水分解酵素である。本発明のアルブミン融合タンパク質のメタロプロテイナーゼ活性を、当該分野で公知の方法に従ってアッセイし得る。以下の例示的方法が提供される:
(α−2−マクログロブリンのタンパク質分解)
プロテイナーゼ活性を確認するために、本発明の精製融合タンパク質を、1×アッセイ緩衝液(50mM HEPES、pH7.5、0.2M NaCI、10mM CaCl2、25μM ZnCl2および0.05% Brij−35)中で、基質α−2−マクログロブリン(0.2単位/ml;Boehringer Mannheim,Germany)と混合し、37℃で1〜5日間インキュベートする。トリプシンを、陽性コントロールとして使用する。陰性コントロールは、アッセイ緩衝液中にα−2−マクログロブリンのみを含む。サンプルを収集し、5%の2−メルカプトエタノールを含むSDS−PAGEサンプル緩衝液中で5分間煮沸し、次いで8% SDS−ポリアクリルアミドゲルにロードする。電気泳動後、これらのタンパク質を銀染色によって可視化する。タンパク質分解は、陰性コントロールと比較した低分子量バンドの出現によって明らかである。
公知のメタロプロテイナーゼ阻害剤(金属キレート剤(EDTA、EGTAおよびHgCl2)、ペプチドメタロプロテイナーゼ阻害剤(TIMP−1およびTIMP−2)、および市販用低分子MMP阻害剤)もまた、本発明のアルブミン融合タンパク質タンパク分解活性を特徴付けるために使用し得る。使用し得る3つの合成MMP阻害剤は:MMP阻害剤 I、「MMP−1に対しておよびMMP−8に対してIC50=1.0μM ;MMP−9に対してIC50=30μM;MMP−3に対してIC50=150μM」;MMP−3(ストロメリシン−1)阻害剤I「MMP−3に対してIC50=5μM」、およびMMP−3阻害剤II「MMP−3に対してKi=130nM」;Calbiochemを通じて入手可能な阻害剤(各々、カタログ番号444250、444218および444225)である。簡潔には、異なる濃度の低分子MMP阻害剤を、本発明の精製融合タンパク質(50μg/ml)と22.9μl 1XHEPES緩衝液(50mM HEPES、pH7.5、0.2M Nacl、10mM CaCl2、25μM ZnCl2および0.05%Brij−35)中で混合し、室温(24℃)にて2時間インキュベートし、次いで、7.1μLの基質α−2−マクログロブリン(0.2単位/ml)を添加し、37℃で20時間インキュベートする。4Xサンプル緩衝液の添加によってこの反応を止め、直ちに5分間煮沸する。SDS−PAGE後、このタンパク質のバンドを銀染色によって可視化する。
例示されたメタロプロテイナーゼ活性を有する本発明の融合タンパク質についての基質特異性を、当該分野で公知の技術(例えば、合成蛍光発生ペプチド基質(BACHEM Bioscience Incから購入した))を用いて決定し得る。試験基質としては、M−1985、M−2225、M−2105、M−2110およびM−2255が挙げられる。最初の4つの基質は、MMP基質であり、そして最後の一つの基質は、腫瘍壊死因子−α(TNF−α)転換酵素(TACE)の基質である。これらの基質を、好ましくは、1:1のジメチルスルホキシド(DMSO)および水中で調製する。ストック溶液は、50〜500μMである。蛍光アッセイを、一定温度の水浴槽が装備されたPerkin Elmer LS 50B ルミネセンス分光計を用いて実施する。励起λは328nmであり、放出λは393nmである。簡潔には、このアッセイを、176μl 1XHEPES緩衝液(0.2M NaCl、10mM CaCl2、0.05% Brij−35および50mM HEPES、pH7.5)を4μlの基質溶液(50μM)とともに25℃にて15分間インキュベートすることにより実施し、次いで、アッセイキュベットへ20μlの本発明の精製融合タンパク質を添加する。基質の最終濃度は1μMである。初期の加水分解速度を30分間モニターする。
特定の抗体を発現する細胞株から、VHドメインおよびVLドメインを同定およびクローン化するための一つの方法は、抗体を発現する細胞株から作製されたcDNAに対してVH特異的プライマーおよびVL特異的プライマーを用いて、PCRを実施することである。簡潔には、RNAを、細胞株から単離し、そして、EBV細胞株により発現される抗体のVHドメインおよびVLドメインを増幅するために設計されたRTーPCRのテンプレートとして使用する。細胞を、TRIzol(登録商標)試薬(Life Technologies、Rockville.MD)で溶解し得、1/5量のクロロホルムで抽出する。クロロホルム添加後、溶液を室温で10分間インキュベートし、そして、卓上遠心分離機にて、4℃で15分間14,000rpmにて遠心分離する。上清を収集し、そしてRNAを等量のイソプロパノールを用いて沈殿化する。沈殿化RNAを、卓上遠心分離機にて、4℃で15分間14,000rpmにて遠心分離することによって、ペレットにする。遠心分離後、上清を捨て、75%エタノールを用いて洗浄する。洗浄後、RNAを再度、4℃で5分間800rpmにて遠心分離する。この上清を捨て、そしてこのペレットを風乾する。RNAをDEPC水で溶解し、60℃で10分間加熱する。RNA量は、光学密度測定を用いて決定し得る。
構築物ID2672(配列番号1186)、pSAC35:HSA.T20は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35に、HIV−1阻害ペプチド T20のアミノ末端(すなわち、Y643−F678)へ融合させた全長HSAを有する、T20アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含有する。T20ペプチドは、HIV−1膜貫通タンパク質gp41の外部ドメイン由来であり、これは、HIV−1感染に対して阻害活性を有することが示されている。
T20をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載される、4つのオーバーラップするプライマーT20−1、T20−2、T20−3およびT20−4を用いて、PCRで作製した。この配列は、酵母S.cerevisiaeでの発現のために最適化されたコドンであった。そのPCRフラグメントをBsu 36I/Asc Iで切断し、そしてBsu 36I/Asc I切断したpScNHSAへ連結した。次いで、Not I フラグメントをpSAC35プラスミドへサブクローンした。構築物ID番号2672は、全長HSAおよびHIV−1阻害ペプチドT20(すなわち、Tyr−643〜Phe−678(配列番号1188))を含むアルブミン融合タンパク質コードする。
(酵母S.cerevisiaeでの発現)
構築物2672を、当該分野で公知の方法(実施例3を参照)によって、酵母S.cerevisiaeへ形質転換し得る。発現レベルを、一次抗体として抗HSA血清を用いる免疫ブロット検出により試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2672から発現された分泌性T20アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4に記載されるように、精製し得る。アルブミン融合タンパク質のN末端の配列決定は、HSA成熟形態のアミノ末端に対応する、配列DAHKS(配列番号2143)を生じる。
インビトロ感染性アッセイおよび細胞−細胞融合阻害アッセイは、Wildら、「Peptides corresponding to a predictive alpha−helical domain of human immunodeficiency virus type 1 gp41 are potent inhibitors of virus infection」、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、91:9770−9774(1994)に記載される。
高い力価のウイルスストックは、上記(Wild、C.ら、「A synthetic peptide inhibitor of human immunodeficiency virus replication:correlation between solution structure and viral inhibition」Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89:10537−10541(1992))に記載されるように、CEMヒト白血病細胞にて調製され得る。感染力価を、AA5連続細胞株およびCEM連続細胞株での終点希釈によって評価し得る。上清に存在する逆転写酵素(RT)活性は、首尾良い感染についての基準として、受け取り得る。50%組織培養感染量(TCID50)は、ReedおよびMuench(Wildら、「Peptides corresponding to a predictive alpha−helical domain of human immunodeficiency virus type 1 gp41 are potent inhibitors of virus infection」、Proc.Natl.Acad.Sci.USA、91:9770−9774(1994))の式を用いることによって計測され得る。初代HIV−1単離株を、正常ドナー由来の活性化末梢血単核細胞(「PBMC」)中で増殖し得る。
(方法)
構築物2672によってコードされるT20アルブミン融合タンパク質は、サブセクション表題「T20の活性は、インビトロ感染性アッセイおよび/または細胞−細胞融合阻害アッセイを使用してアッセイされ得る」の下で上述されたような、インビトロ感染性バイオアッセイおよび細胞−細胞融合阻害アッセイにおいて試験され得る。
構築ID2673(pSAC35:T20.HSA)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35において、HSAの成熟形態のアミノ末端と融合した、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド)、続くHIV−1阻害性ペプチドT20(すなわち、Y643−F678)を有するT20アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。
HIV−1阻害性ペプチドをコードするDNAを、4つの重複プライマーを使用してPCR生成した。この配列を、酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。PCRフラグメントをSal I/Cla Iで消化し、そしてXho I/Cla Iで消化したpScCHSAにサブクローニングした。次いで、Not IフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2673は、HIV−1阻害性ペプチドT20と融合したHSAのキメラリーダー配列(すなわち、Tyr−643〜Phe−678)、続くHSAの成熟形態をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2673を、当該分野で公知の方法によって酵母S.cerevisiaeに形質転換し得る(実施例3を参照のこと)。発現レベルを、1次抗体として抗HSA血清を用いて免疫ブロット検出により試験し得る。
酵母S.cerevisiaeにおいて、構築物ID番号2673から発現した分泌性T20アルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例4において記載されるように精製し得る。発現し、そして精製したアルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、HIV−1阻害性ペプチドT20のアミノ末端に対応するYTSLI(配列番号2151)を生じるはずである。
(方法)
構築物2673によってコードされるT20アルブミン融合タンパク質は、サブセクション表題「T20の活性は、インビトロ感染性アッセイおよび/または細胞−細胞融合阻害アッセイを使用してアッセイされ得る」の下で、実施例108において上述されたように、インビトロ感染性バイオアッセイおよび細胞−細胞融合阻害アッセイにおいて試験され得る。
上記のアッセイにおけるT20アルブミン融合タンパク質の活性に基づいて、T20アルブミン融合タンパク質は、HIV、AIDSおよび/またはSIV(サル免疫不全ウイルス)感染の処置、予防、および/または診断において有用である。
構築物ID2667(pSAC35:HSA.T1249)は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35において、第2世代の融合インヒビターペプチド「T1249」(すなわち、W1−F39)のアミノ末端と融合した、全長HSAタンパク質(ネイティブのHSAリーダー配列を含む)を有するT1249アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。このT1249ペプチドは、HIV−1膜貫通タンパク質gp41に由来する第2世代の融合インヒビターであり、そしてHIV−1感染に対して阻害活性を有することが示される。
T1249をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載する4つの重複プライマー、T1249−1、T1249−2、T1249−3およびT1249−4を使用してPCR生成した。この配列は、酵母S.cerevisiaeにおける発現のためにコドン最適化した。PCRフラグメントをBsu 36I/Asc Iで切断し、そしてBsu 36I/Asc Iで切断したpScNHSAにライゲーションした。次いで、Not IフラグメントをpSAC35プラスミドにサブクローニングした。構築物ID番号2667は、T1249ペプチド(すなわち、Trp−1〜Phe−39)に融合した全長HSAタンパク質(ネイティブHSAリーダー配列を含む)を含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物2667は、当該分野で公知の方法(実施例3を参照)により、酵母S.cerevisiae内に形質転換され得る。発現レベルは、抗HSA血清を一次抗体として用いた免疫ブロット検出により、試験され得る。
分泌されたT1249アルブミン融合タンパク質(酵母S.cerevisiae中の構築物ID#2667から発現される)を含む細胞上清は、実施例4において記載されるように、精製され得る。アルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、配列DAHKS(HSAの成熟形態のアミノ末端に相当する)を生じる。
(方法)
構築物2667によってコードされるT1249アルブミン融合タンパク質は、実施例108における小節の表題「T20の活性は、インビトロ感染性アッセイおよび/または細胞間融合阻害アッセイを使用してアッセイされ得る」下で上記されるように、インビトロ感染性バイオアッセイおよび細胞間融合阻害アッセイにおいて、試験され得る。
構築物ID2670、pSAC35:T1249.HSAは、T1249アルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。この融合タンパク質は、HSAキメラリーダー配列(すなわち、HSA−kex2シグナルペプチド、第二世代融合インヒビターペプチド、「T1249」(すなわち、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35におけるHSAの成熟形態のアミノ末端に融合したW1−F39))を有する。
第二世代融合インヒビターペプチドをコードするDNAを、4つの重複プライマーを使用して、PCR生成した。この配列は、酵母S.cerevisiaeにおける発現のために最適化されたコドンであった。PCRフラグメントを、SalI/ClaIを用いて切断し、そしてXhoI/ClaI切断したpScCHSA内にサブクローニングした。NotIフラグメントを、次いで、pSAC35プラスミド内にサブクローニングした。構築物ID#2670は、T1249ペプチド(すなわち、Trp−1〜Phe−39)に融合したHSAのキメラリーダー配列をコードし、HSAの成熟形態がそれに続く。
(方法)
構築物2670によってコードされるT1249アルブミン融合タンパク質は、上記の実施例108における小節の表題「T20の活性は、インビトロ感染性アッセイおよび/または細胞間融合阻害アッセイを使用してアッセイされ得る」において記載されるように、インビトロ感染性バイオアッセイおよび細胞間融合阻害アッセイにおいて、試験され得る。
上のアッセイにおけるT1249アルブミン融合タンパク質の活性に基づき、T1249アルブミン融合タンパク質は、HIV、AIDS、および/またはSIV(サル免疫不全ウイルス)感染の処置、予防、および/または診断において、有用である。
構築物ID2702、pSAC35:HSA.GCSF.T31−L201は、GCSFアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含む。この構築物は、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35中に、HSA/kex2リーダー配列の下流およびGCSFのT31〜L201のアミノ酸の上流に融合した成熟HSAを有する。
GCSF C末端欠失変異体をコードするポリヌクレオチドを、以下に記載するGCSF−5プライマーおよびGCSF−6プライマーを使用して、PCR増幅した。この増幅産物を、Bsu36I/AscIを用いて切断し、そしてpScNHSA内にサブクローニングした。構築物ID#2702は、HSA/kex2リーダー配列の下流およびGCSFのT31〜L201のアミノ酸の上流に融合した成熟HSAを含むアルブミン融合タンパク質をコードする。
(酵母S.cerevisiaeにおける発現)
構築物#2702を、当該分野で公知の方法(実施例3を参照)により、および構築物ID#1642に関して上記に記載された(実施例19を参照)ように、酵母S.cerevisiae内に形質転換した。発現レベルは、抗HSA血清を一次抗体として用いた免疫ブロット検出法により、試験された(データは示さず)。
アルブミン融合タンパク質の精製のための一般的手順は、実施例4において記載される。酵母S.cerevisiae中の構築物ID#2702から発現されるGCSFアルブミン融合タンパク質を含む細胞上清を、実施例20において記載されるように、精製した。アルブミン融合タンパク質のN末端配列決定は、配列DAHKS(HSAの成熟形態のアミノ末端に相当する)を生じる。
(方法)
構築物2702によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質を、実施例19における小節の表題「GCSFの活性は、インビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」および「構築物ID#1642によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質の活性は、インビトロNFS−60細胞増殖アッセイを使用してアッセイされ得る」下で上記に記載されるように、インビトロNFS−60細胞増殖バイオアッセイを使用して、試験した。
部分精製された、構築物1634(HSA−GCSF)によってコードされるGCSFアルブミン融合タンパク質、および、構築物2702によってコードされるGCSF C末端欠失変異体アルブミン融合タンパク質(L−171)の両方は、NFS−60細胞増殖を引き起こす能力を実証し、C末端欠失変異体は、より強力な増殖効果を示した(図19を参照)。予期しなかったことに、構築物2702によってコードされる融合タンパク質は、構築物1643によってコードされる融合タンパク質より、2〜3倍高い活性を示した。代替のGCSFアルブミン融合構築物は、成熟GCSFのアミノ酸残基1〜169に融合するアルブミンおよび成熟GCSFのアミノ酸残基1〜170に融合するアルブミンを含む。
構築物ID2876 pSAC35:HSA.IFNαA(C1−Q91)/D(L93−E166)R23K、A113Vは、IFNαハイブリッドアルブミン融合タンパク質をコードするDNAを含み、このDNAは、酵母S.cerevisiae発現ベクターpSAC35中に、HSA/kex2リーダー配列の下流およびIFNαA/Dハイブリッドのアミノ酸配列の上流に融合した成熟HSAを有する。ハイブリッドIFNの組成に関しては、最初の91アミノ酸はIFNα2(IFNαAとも呼ばれる)サブタイプ由来であり、残りの75アミノ酸は、IFNα1(IFNαD)由来である。本発明者らは、2つの点変異(R23K、A113V)を組み込んだ。この融合体を、PCRによって産生し、そして酵母発現ベクターpSAC35内のHSAの下流に融合させた。
(CID2876発現および精製)
酵母株BXP−10を、pSAC35:CID2876を用いて形質転換し、形質転換体を、発酵のために選択した。5リットル発酵を行い、上清を分析したところ、高発現(およそ500mg/l)が実証された。上清の少量の一部を、試験的に精製した。CID2876タンパク質(N末端配列に基づき、95%以上純粋)のおよそ1mgを、ブルーセファロースを通した精製、次いでゲルろ過、次にQ−アニオン変換を、行った後に得た。残りの発酵出発物質は、必要に応じて、さらなる精製の為に利用可能である。
全てのI型IFNは、共通のIFNレセプター複合体の関与およびISREシグナル伝達経路の活性化を通して、その活性を媒介する。この経路を通した遺伝子転写の活性化は、抗増殖、抗ウイルスおよび免疫調節を含むIFNに関連した、細胞応答をもたらす。レポーターベースの戦略を使用して、CID 2876がISREシグナル伝達経路を活性化する能力を、決定した。CID 2876が、ISRE経路の強力なアクチベーターであることを見出し、2.7ng/mlのEC50を、実証した(データは示さず)。この結果は、このアッセイ系におけるCID3165の効力と、有望に匹敵する。
IFNの重要な活性は、IFNのウイルス感染に対する細胞保護を仲介する能力である。殆どのヒトI型IFNが、種に制限された様式において抗ウイルス活性を示すが、他方、本研究において使用されるハイブリッドIFNは、マウス細胞において活性であることが、実証された。従って、CID 2876の抗ウイルス活性を、EMCVによって感染させたマウス細胞株L929において、評価した。結果は、CID 2876は、複数の種にわたる様式で(cross species manner)、抗ウイルス活性を実証することを示す(データは示さず)。
近年、GLP−1が、膵臓β細胞において、インスリンmRNAの発現を増加させることが示されている(Buteauら,Diabetologia 1999 Jul;42(7):856−64)。従って、CID 3070によってコードされるGLP−1アルブミン融合タンパク質の、インスリンmRNAを刺激する能力を、膵臓β細胞株INS−1(832/13)を使用して、評価した。
出願人は、出願に基づきカナダ国特許が発行されるか、あるいは同出願が拒絶または放棄されて回復され得なくなるかもしくは取り下げられるまでは、特許庁長官(Commissioner of Patents)が、長官により指名された独立の専門家に対してのみ出願中で言及された寄託済みの生物学的材料のサンプルの供与を許可する旨を請求し、出願人は、国際出願の公表のための技術的な準備が完了する前に、書面によりその旨を国際事務局に告知しなければならない。
出願人はここにおいて、出願が(ノルウェー特許庁により)公開に付されるかあるいは公開を経ずにノルウェー特許庁による決定を受けるまでは、サンプルの供与は当該技術の専門家に対してのみ行われる旨を、請求する。この旨の請求は、ノルウェー特許法第22条および第33条(3)に基づき出願が公に利用可能にされる時点以前に、出願人によりノルウェー特許庁に対してなされるものとする。そのような請求が出願人によりなされた場合は、第三者によるサンプルの供与のいかなる請求においても、利用される専門家を表示するものとする。専門家は、ノルウェー特許庁により作成された公認専門家のリスト(list of recognized experts)に記載された任意の者か、あるいは、個々の場合において出願人により承認された任意の者であり得る。
出願人はここにおいて、微生物のサンプルの供与は、特許の付与前において、あるいは出願の放棄(lapsing)、拒絶あるいは取り下げ前において、発明に対し利害関係を有さない当業者である対象者(skilled addressee)に対してのみ行われる旨を、告知するものである(オーストラリア国特許法第3.25(3)号規定)。
出願人はここにおいて、出願が(特許および統制委員会(National Board of Patents and Regulations)により)公開に付されるかあるいは公開を経ずに国立特許および法規委員会による決定を受けるまでは、サンプルの供与は当該技術の専門家に対してのみ行われる旨を、請求する。
出願人はここにおいて、微生物のサンプルは専門家に対してのみ利用可能にされる旨を、請求する。この旨の請求は、出願の国際公表のための技術的な準備が完了する前に、出願人により国際事務局に対してなされなければならない。
出願人はここにおいて、出願が(デンマーク特許庁により)公開に付されるかあるいは公開を経ずにデンマーク特許庁による決定を受けるまでは、サンプルの供与は当該技術の専門家に対してのみ行われる旨を、請求する。この旨の請求は、デンマーク特許法第22条および第33条(3)に基づき出願が公に利用可能にされる時点以前に、出願人によりデンマーク特許庁に対してなされるものとする。そのような請求が出願人によりなされた場合は、第三者によるサンプルの供与のいかなる請求においても、利用される専門家を表示するものとする。専門家は、デンマーク特許庁により作成された公認専門家のリスト(list of recognized experts)に記載された任意の者か、あるいは、個々の場合において出願人により承認された任意の者であり得る。
出願人はここにおいて、出願が(スウェーデン特許庁により)公開に付されるかあるいは公開を経ずにスウェーデン特許庁による決定を受けるまでは、サンプルの供与は当該技術の専門家に対してのみ行われる旨を、請求する。この旨の請求は、優先日から16ヶ月が経過するよりも前に、出願人により国際事務局に対してなされるものとする(好ましくはPCT Applicant’s GuideのVolume Iのannex Zに記載された書式PCT/RO/134による)。そのような請求が出願人によりなされた場合は、第三者によるサンプルの供与のいかなる請求においても、利用される専門家を表示するものとする。専門家は、スウェーデン特許庁により作成された公認専門家のリスト(list of recognized experts)に記載された任意の者か、あるいは、個々の場合において出願人により承認された任意の者であり得る。
出願人はここにおいて、オランダ特許の発行日まで、あるいは出願が拒絶、取り下げまたは放棄(lapsed)される日までは、特許規則31F(1)の規定に基づき、微生物が専門家へのサンプル供与の形でのみ行われる旨を、請求する。この旨の請求は、オランダ王国特許法の第22C条または第25条に基づき出願が公に利用可能にされる日のうちいずれか早い方の日付よりも前に、出願人によりオランダ工業所有権局に対して提出されるものとする。
Claims (21)
- アルブミン融合タンパク質であって、配列番号1038のアミノ酸配列を含むヒトアルブミンのN末端にそのC末端を介して融合された2つのタンデムに方向付けられたGLP−1(7−36(A8G))を含み、ここで、該アルブミンは、該タンデムに方向付けられたGLP−1(7−36(A8G))の血清血漿半減期を増加させ、そして該融合タンパク質は、GLP−1活性を有する、アルブミン融合タンパク質。
- 請求項1に記載のアルブミン融合タンパク質であって、前記アルブミン融合タンパク質を発現する構築物を含む宿主細胞から生成され、ここで、該構築物は、以下の構築物:
c.配列番号1231のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号2803);
g.配列番号1280のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3070);
h.配列番号1607のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3027);
j.配列番号1609のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3045);
l.配列番号1621のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3069);
m.配列番号1622のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3071);および
n.配列番号1623のアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドを含んでなる構築物(構築物番号3072);
から選択される、アルブミン融合タンパク質。 - アルブミン融合タンパク質であって、ヒトアルブミンのN末端にそのC末端を介して融合された2つのタンデムに方向付けられたGLP−1(7−36(A8G))を含み、ここで、該アルブミン融合タンパク質は、以下:
a.配列番号1231のアミノ酸25〜669;
h.配列番号1280のアミノ酸30〜674;
i.配列番号1607のアミノ酸20〜664;
k.配列番号1609のアミノ酸19〜663;
m.配列番号1621のアミノ酸24〜668;
n.配列番号1622のアミノ酸86〜730;および、
o.配列番号1623のアミノ酸18〜662;
からなる群より選択されるアミノ酸配列を含み、
ここで、該アルブミンは、該タンデムに方向付けられたGLP−1(7−36(A8G))の血清血漿半減期を増加させ、そして該融合タンパク質は、GLP−1活性を有する、アルブミン融合タンパク質。 - アルブミン融合タンパク質であって、ヒトアルブミンのN末端にそのC末端を介して融合された2つのタンデムに方向付けられたGLP−1(7−36(A8G))を含み、ここで、該融合タンパク質は、ATCC受託番号PTA−4671に含まれる3070構築物のアミノ酸配列を含む宿主細胞から生成されるアルブミン融合タンパク質。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質をコードする、ポリヌクレオチド。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- 請求項6に記載のベクターを含む宿主細胞。
- グリコシル化されているか、または非グリコシル化されている、請求項1〜4のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 酵母において発現される、請求項1〜4のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 前記酵母が、サッカロマイセス・セレビシエ(S.cerevisiae)、クリベロマイセス・ラクティス(K.lactis)、またはピキア・パストリス(P.pastoris)である、請求項9に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 前記酵母が、グリコシル化欠損性である、請求項9または10に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 前記酵母が、グリコシル化欠損性かつプロテアーゼ欠損性である、請求項9〜11のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 哺乳動物細胞によって発現される、請求項1〜4のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 前記哺乳動物細胞が、CHO細胞、COS細胞またはNSO細胞である、請求項13に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 前記アルブミン融合タンパク質が、分泌リーダー配列をさらに含む、請求項1〜4および8〜14のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質。
- 請求項1〜4および8〜15のいずれか1項に記載のアルブミン融合タンパク質を含んでなる、医薬組成物。
- 薬学的に許容可能な担体を更に含んでなる、請求項16に記載の医薬組成物。
- 高血糖症、糖尿病、尿崩症、真性糖尿病、I型糖尿病、II型糖尿病、インスリン抵抗性、インシュリン欠損症、高脂血症、高ケトン血症、インシュリン非依存性糖尿病、インシュリン依存性糖尿病、肥満、心臓病、網膜症、潰瘍、体重の抑制、食欲の抑制、代謝性疾患、免疫障害、感染、血管障害、またはX症候群の処置に使用するための、請求項16または17に記載の医薬組成物。
- 糖尿病の処置に使用するための、請求項16または17に記載の医薬組成物。
- II型糖尿病の処置に使用するための、請求項16または17に記載の医薬組成物。
- 肥満の処置または体重の抑制に使用するための、請求項16または17に記載の医薬組成物。
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