JP5374359B2 - 安定化されたポリペプチド化合物 - Google Patents
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Description
本願は、以下の米国仮特許出願への優先権の利益を請求し、それぞれは、あらゆる目的のために、それらの全体が本明細書中に参考として援用される:
1)2006年3月17日に出願された、表題「STABILIZED POLYPEPTIDES AND METHODS FOR EVALUATING AND INCREASING THE STABILITY OF SAME」の米国仮特許出願第60/783,622号;
2)2006年6月9日に出願された、表題「STABILIZED POLYPEPTIDES AND METHODS FOR EVALUATING AND INCREASING THE STABILITY OF SAME」の米国仮特許出願第60/812,688号;
3)2006年12月8日に出願された、表題「METHODS FOR EVALUATING AND ENHANCING BIOPHYSICAL PROPERTIES OF POLYPEPTIDES」の米国仮特許出願第60/873,502号;
4)2006年12月8日に出願された、表題「STABILIZED POLYPEPTIDE COMPOSITIONS」の米国仮特許出願第60/873,996号。
蛋白質の安定性は、今日、蛋白質、例えば、抗体分子の開発およびスケールアップについての中心的な論点として認識されている。抗体の重鎖および軽鎖可変ドメイン配列は選択圧の下にあり、1つの抗体と別の抗体とで配列が有意に変化し得る(Wu and Kabat,1970)。ヒトゲノム内に埋め込まれた非常に多数の機能的生殖系可変重鎖(〜40;Tomlinson et al.,1992;Tomlinson et al.,1994;Matsuda and Honjo,1996)、可変カッパ(〜40;Meindl et al.,1989;Cox et al.,1994;Barbie and Lefranc,1998)および可変ラムダ(〜30;Williams et al.,1996;Kawasaki,et al.,1997)遺伝子がある。重鎖および軽鎖可変ドメイン生殖系の多くの組合せを作り出す免疫系の能力は、抗体多様性を作り出す1つのメカニズムである(Edelman,1959;Franek,1961)。さらなる多様性は、可変連結ペプチド領域、J−連結ペプチド(+重鎖についてのD−連結ペプチド)の、可変ドメインおよび定常ドメインの間への挿入によって誘導される(Leder,1982)。特異的抗原に対する生殖系抗体選択に引き続いて、選択された可変ドメイン生殖系および(D−)J−連結ペプチドを含む単一抗体を発現するB−細胞は、可変重鎖および軽鎖ドメイン内に超体細胞突然変異のプロセスを受けて、抗原に向けての抗体親和性を増大させる(Leder,1982;Tomlinson et al.,1996)。可変ドメイン内の超体細胞挿入または欠失もまた通常に観察されるが、超体細胞突然変異よりもかなり低い(de Wildt et al.,1999)。かくして、特定の抗原に対して選択された成熟抗体は、必ずしも安定性に対して最適化されない高度にユニークな可変ドメイン配列を有する。
本発明は、少なくとも部分的には、改良された安定性を備えたscFv分子を含む、またはそれよりなる改良されたポリペプチド組成物、例えば、改良された結合分子、およびそれを作成する方法の開発に基づく。
i)VHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFvリンカー、ここに、該VHおよびVLドメインは、VHドメインにおけるアミノ酸およびVLドメインにおけるアミノ酸の間のジスルフィド結合によって連結されており、およびここに、scFv分子のVHおよびVLドメインは55℃;よりも高いTm値を有し;または
ii)VHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFv、ここに、該VHおよびVLドメインはVHにおけるアミノ酸およびVLドメインにおけるアミノ酸の間のジスルフィド結合によって連結されており、およびここにscFv分子は49℃よりも高いT50を有する;
を含む。
a.VHドメインおよびVLドメインの間に存在するアミノ酸配列(Gly4Ser)nを有するscFvリンカー、ここにVHおよびVLドメインはVHアミノ酸44およびVLアミノ酸100;の間のジスルフィド結合によって連結されており;
ii)VHドメインおよびVLドメイン、ここに分子は:
a)VHのKabat位置13におけるアミノ酸の置換
b)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換
c)VLのKabat位置46におけるアミノ酸の置換
d)VLのKabat位置49におけるアミノ酸の置換
e)VLのKabat位置50におけるアミノ酸の置換
f)VLのKabat位置49および50におけるアミノ酸の置換
g)VHのKabat位置101におけるアミノ酸の置換
h)VHのKabat位置20におけるアミノ酸の置換
i)VHのKabat位置48におけるアミノ酸の置換
j)VLのKabat位置3におけるアミノ酸の置換
k)VHのKabat位置55におけるアミノ酸の置換
l)VHのKabat位置67におけるアミノ酸の置換
m)VHのKabat位置6におけるアミノ酸の置換
n)VHのKabat位置32におけるアミノ酸の置換
o)VHのKabat位置49におけるアミノ酸の置換
p)VHのKabat位置43におけるアミノ酸の置換
q)VHのKabat位置72におけるアミノ酸の置換
r)VHのKabat位置79におけるアミノ酸の置換
s)VLのKabat位置50におけるアミノ酸の置換
t)VLのKabat位置75におけるアミノ酸の置換
u)VLのKabat位置80におけるアミノ酸の置換
v)VLのKabat位置83におけるアミノ酸の置換;
よりなる群から選択される少なくとも1つのアミノ酸置換を有し、または
iii)scFvのVHおよびVLの間の安定化された界面を備えたVHドメインおよびVLドメイン、ここに、分子は界面内に直接的にアミノ酸位置において、および/またはVHおよびVLの間の相互作用の足場となるアミノ酸位置において少なくとも1つの置換を有し、ここに、該少なくとも1つのアミノ酸位置は、Kabatナンバリングに従って、47H、37H、45H、46H、51H、59H、109H、14H、26H、27H、40H、69H、103H、29H、38H、44H、49H、55H、63H、54H、68H、72H、74H、79H、82bH、8H、32H、39H、41H、62H、85H、91H、24H、60H、37L、36L、44L、59L、57L、64L、46L、48L、63L、67L、68L、39L、45L、47L、54L、56L、79L、85L,98L,58L,74L,77L,83L,89Lおよび104Lよりなる群から選択され、およびここに、安定化されたscFv分子は、置換を欠如するscFv分子のそれよりも大きなT50を有する;
を含む。
a)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換、およびVLのKabat位置46におけるアミノ酸の、例えば、リシンでの置換;
b)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換;VLのKabat位置46におけるアミノ酸の、例えば、リシンでの置換;およびVHのKabat位置55におけるアミノ酸の、例えば、グリシンでの置換;および
c)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換;VLのKabat位置46におけるアミノ酸の、例えば、リシンでの置換;VHのKabat位置55におけるアミノ酸の、例えば、グリシンでの置換;およびVHのKabat位置101におけるアミノ酸の、例えば、アルパラギン酸での置換;
よりなる群から選択される置換の少なくとも1つの組を有する。
i)VHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFvリンカーを含む少なくとも1つのscFv分子、ここに、VHおよびVLドメインはVHにおけるアミノ酸およびVLドメインにおけるアミノ酸の間のジスルフィド結合によって連結されており、およびここに、少なくとも1つのscFv分子のVHおよびVLドメインは55℃よりも高いTmを有し;または
ii)VHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFvリンカーを含む少なくとも1つのscFv分子、ここに、VHドメインおよびVLドメインはVHにおけるアミノ酸およびVLドメインにおけるアミノ酸の間のジスルフィド結合によって連結され、およびここに、多価抗原結合分子の少なくとも1つのscFv分子は49℃よりも高いT50を有する;
を含む。
i)少なくとも1つの安定化されたscFv分子、ここに、安定化されたscFv分子はVHドメインおよびVLドメインの間に存在する(Gly4Ser)nscFvリンカーを含み、およびここに、VHおよびVLドメインはジスルフィド結合によって連結され;
ii)VHドメインおよびVLドメインの間に存在するアミノ酸配列(Gly4Ser)nを有するscFvリンカーを含む少なくとも1つの安定化されたscFv分子、ここに、VHおよびVLドメインはVHアミノ酸44およびVLアミノ酸100の間のジスルフィド結合によって連結されており;
iii)少なくとも1つの安定化されたscFv分子、ここに、安定化されたscFv分子は:
a)VHのKabat位置13におけるアミノ酸の置換
b)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換
c)VLのKabat位置46におけるアミノ酸の置換
d)VLのKabat位置49におけるアミノ酸の置換
e)VLのKabat位置50におけるアミノ酸の置換
f)VLのKabat位置49および50におけるアミノ酸の置換
g)VHのKabat位置101におけるアミノ酸の置換
h)VHのKabat位置20におけるアミノ酸の置換
i)VHのKabat位置48におけるアミノ酸の置換
j)VLのKabat位置3におけるアミノ酸の置換
k)VHのKabat位置55におけるアミノ酸の置換
l)VHのKabat位置67におけるアミノ酸の置換
m)VHのKabat位置6におけるアミノ酸の置換
n)VHのKabat位置32におけるアミノ酸の置換
o)VHのKabat位置49におけるアミノ酸の置換
p)VHのKabat位置43におけるアミノ酸の置換
q)VHのKabat位置72におけるアミノ酸の置換
r)VHのKabat位置79におけるアミノ酸の置換
s)VLのKabat位置50におけるアミノ酸の置換
t)VLのKabat位置75におけるアミノ酸の置換
u)VHのKabat位置80におけるアミノ酸の置換
v)VHのKabat位置83におけるアミノ酸の置換;
よりなる群から選択される少なくとも1つの置換を含み;または
iv)scFvのVHおよびVLの間の安定化された界面を備えたVHドメインVLドメイン、ここに、分子は直接的に界面内のアミノ酸位置において、および/またはVHおよびVLの間の相互作用の足場となるアミノ酸位置において少なくとも1つの置換を有し、ここに、少なくとも1つのアミノ酸位置は、Kabatナンバリングに従って、:47H、37H、45H、46H、51H、59H、109H、14H、26H、27H、40H、69H、103H、29H、38H、44H、49H、55H、63H、54H、68H、72H、74H、79H、82bH、8H、32H、39H、41H、62H、85H、91H、24H、60H、37L、36L、44L、59L、57L、64L、46L、48L、63L、67L、68L、39L、45L、47L、54L、56L、79L、85L、98L、58L、74L、77L、83L、89Lおよび104Lよりなる群から選択される;
を含む安定化された多価抗原結合分子に関する。
iii)少なくとも1つの安定化されたscFv分子、ここに、安定化されたscFv分子は:
a)VLのKabat位置3におけるアミノ酸(例えば、グルタミン)の、例えば、アラニン、セリン、バリン、アスパラギン酸、またはグリシンの置換;
b)VLのKabat位置46におけるアミノ酸(例えば、セリン)の、例えば、ロイシンでの置換;
c)VLのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)の、例えば、チロシンまたはセリンでの置換;
d)VLのKabat位置50におけるアミノ酸(例えば、セリンまたはバリン)の、例えば、セリン、スレオニン、およびアルギニン、アスパラギン酸、グリシンまたはロイシンでの置換;
e)VLのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)および、およびKabat位置50におけるアミノ酸(例えば、セリン)の、各々、チロシンおよびセリン;チロシンおよびスレオニン;チロシンおよびアルギニン;チロシンおよびグリシン;セリンおよびアルギニン;またはセリンおよびリシンでの置換;
f)VLのKabat位置75におけるアミノ酸(例えば、バリン)の、例えば、イソロイシンでの置換;
g)VLのKabat位置80におけるアミノ酸(例えば、プロリン)の、例えば、セリンまたはグリシンでの置換;
h)VLのKabat位置83におけるアミノ酸(例えば、フェニルアラニン)の、例えば、セリン、アラニン、グリシンまたはスレオニンでの置換;
i)VHのKabat位置6におけるアミノ酸(例えば、グルタミン酸)の、例えば、グルタミンでの置換;
j)VHのKabat位置13におけるアミノ酸(例えば、リシン)の、例えば、グルタメートでの置換;
k)VHのKabat位置16におけるアミノ酸(例えば、セリン)の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換;
l)VHのKabat位置20におけるアミノ酸(例えば、バリン)の、例えば、イソロイシンでの置換;
m)VHのKabat位置32におけるアミノ酸(例えば、アスパラギン)の、例えば、セリンでの置換;
n)VHのKabat位置43におけるアミノ酸(例えば、グルタミン)の、例えば、リシンまたはアルギニンでの置換;
o)VHのKabat位置48におけるアミノ酸(例えば、メチオニン)の、例えば、イソロイシンまたはグリシンでの置換;
p)VHのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)の、例えば、グリシンまたはアラニンでの置換;
q)VHのKabat位置55におけるアミノ酸(例えば、バリン)の、例えば、グリシンでの置換;
r)VHのKabat位置67におけるアミノ酸(例えば、バリン)の、例えば、イソロイシンまたはロイシンでの置換;
s)VHのKabat位置72におけるアミノ酸(例えば、グルタミン酸)の、例えば、アスパルテートまたはアスパラギンでの置換;
t)VHのKabat位置79におけるアミノ酸(例えば、フェニルアラニン)の、例えば、セリン、バリンまたはチロシンでの置換;および
u)VHのKabat位置101におけるアミノ酸(例えば、プロリン)の、例えば、アスパラギン酸での置換;
よりなる群から選択される少なくとも1つの置換を含む。
a)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換、およびVLのKabat位置46における、例えば、リシンでの置換;
b)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換;VLのKabat位置46におけるアミノ酸の、例えば、リシンでの置換;VHのKabat位置55におけるアミノ酸の、例えば、グリシンでの置換;および
c)VHのKabat位置16におけるアミノ酸の、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの置換;VLのKabat位置46におけるアミノ酸、例えば、リシンでの置換;VHのKabat位置55におけるアミノ酸の、例えば、グリシンでの置換;およびVHのKabat位置101におけるアミノ酸の、例えば、アスパラギン酸での置換;
よりなる群から選択される置換の少なくとも1つの組を含む。
(a)scFv分子の熱安定性テストを行って、候補scFv分子の熱安定性を決定し;
(b)該候補scFv分子の熱安定性を適当な対照と比較して、該対照に対して増加した熱安定性を有する安定化されたscFv分子を同定し;
(c)工程(b)で同定された安定化されたscFv分子を選択し;
(d)少なくとも1つの安定化されたscFv分子を遺伝子的に蛋白質に融合させて、安定化された融合蛋白質を形成し;
(e)哺乳動物宿主細胞を、該安定化された融合蛋白質をコードする核酸分子でトランスフェクトし;
(g)該安定化された融合蛋白質が発現されるような条件下で工程(f)の宿主細胞を培養することを含み、
ここに、該安定化された融合蛋白質は、10L以上の培養基中で成長させた場合に、10%以下の蛋白質凝集でもって発現される。
a)該ポリペプチドのIg折り畳みに対応する配列のキュレーションした参照組の整列を供し;
b)該整列の配列のアミノ酸残基の間の共変動を計算して、共変動データを作成し;
c)該共変動データ内の共変動からの候補配列内のアミノ酸の位置についての配列位置特異的共変動スコアを決定し;次いで、
d)該ポリペプチドの安定性の尺度としてのアミノ酸位置特異的配列共変動スコアを貯蔵し、または出力する工程を含む。
(i)初期配列収集プロセス;
(ii)請求項58ないし74のいずれか1つの整列からの配列データを保持することができる貯蔵ロケーション;
(iii)共変動データを得るための整列内の残基の対の間の共変動をプログラムにより解析する解析設備;
(iv)該エレクトロニックデバイスとでインターフェイスを形成する出力デバイス、該出力デバイスは該共変動データを出力する;
を含む、コンピュータデバイスにおけるシステムに関する。
(i)ポリペプチド配列の参照組についての残基用法頻度データの収集を含むグリッドレイアウト;および
(ii)共変動オーバーレイ;
のグラフ表示を含むグラフユーザーインターフェイスに関する。
a)ポリペプチドのIg折り畳みに対応する配列のキュレーションした参照組の整列を供し;
b)整列の配列の残基の間の共変動を計算して、共変動する残基を同定し;
c)共変動を満足しないポリペプチドの残基を、整列における対応する位置に見出される共変動残基で置換する;
工程を含む。
a)実験的に安定であると確証される鋳型抗体の高−分解能構造モデルを供し;
b)該構造モデルを用いて、該鋳型抗体におけるVH/VLインターフェイスおよび/またはインターフェイス足場残基を同定し;
c)相同性モデルを用いて、インターフェイスを安定化させるのに重要な抗体または修飾された抗体の対応するVH/VLインターフェイス残基を同定し;次いで、
d)抗体または修飾された抗体における対応するVH/VLインターフェイス残基を、鋳型蛋白質からのインターフェイス残基で置換する;
工程を含む。
(a)scFv分子の可変ドメイン配列に対応する配列の参照組を供し;
(b)該参照組における対応する位置において存在しない、または低い頻度で見出される可変ドメイン内のアミノ酸を同定し;次いで、
(c)この情報を、参照組における低い頻度で同定されるアミノ酸の修飾は、可変ドメイン内の現存の共変動拘束を満足できることを示唆する共変動データと組合せ;次いで、
(d)工程(b)のアミノ酸を、候補安定化アミノ酸で置き換え、それにより、安定化されたscFv分子を含むライブラリーを作成することを含む。
(a)請求項56記載の方法に従って設計されたscFvライブラリーを供し、
(b)熱挑戦アッセイでscFvライブラリーをスクリーニングして、候補scFv分子を同定し、
(c)scFvライブラリーの候補scFv分子の熱安定性を、適当な対照と比較することを含み、
それにより、対照に対する候補scFv分子の熱安定性の増加は、安定化されたscFv分子として候補scFv分子を同定する。
(a)候補蛋白質の候補ドメイン配列に対応するアミノ酸配列の参照組を供し;
(b)テストドメイン配列内の個々のアミノ酸位置における残基頻度を決定して、コンセンサススコアが得られ;および
(c)該コンセンサススコアを用いて、候補蛋白質の安定性を予測することを含み、
ここに、該コンセンサススコアは候補蛋白質の安定性に相関する。
(a)候補蛋白質のテストドメイン配列に対応する配列の参照組を供し;
(b)テストドメイン配列内の個々のアミノ酸位置における残基頻度を決定して、コンセンサススコアが得られ;次いで、
(c)該コンセンサススコアを用いて、候補蛋白質の安定性を予測することを含み、
ここに、該コンセンサススコアは候補蛋白質の安定性に相関する。
(a)候補蛋白質のテストドメイン配列に対応する配列の参照組を供し;
(b)テストドメイン配列内のアミノ酸位置における残基頻度を決定して、コンセンサススコアが得られ;
(c)参照組の配列内の対応するアミノ酸位置における残基頻度を決定して、平均コンセンサススコアを決定し;
(d)コンセンサススコアを平均コンセンサススコアと比較して、配列スコアを決定し;次いで、
(e)配列スコアを用いて、候補蛋白質の安定性を予測することを含み、
ここに、コンセンサススコアは候補蛋白質の安定性に直接的に相関する。
(a)該候補抗体または修飾抗体のテストVHドメイン配列に対応するVHドメイン配列の参照組を供し;
(b)テストVHドメイン配列内のアミノ酸位置における残基頻度を決定して、コンセンサススコアが得られ;
(c)参照組の配列内の対応するアミノ酸位置における残基頻度を決定して、平均コンセンサススコアを決定し;
(d)コンセンサススコアを平均コンセンサススコアと比較して、配列スコアを決定し;次いで、
(e)配列スコアを用いて、候補抗体または修飾抗体の安定性を予測することを含み、
ここに、コンセンサススコアは候補抗体または修飾抗体の安定性を直接的に相関する。
ci(r)はコンセンサス配列のアミノ酸位置におけるコンセンサス残基頻度と等しく、
hi(r)はテスト配列のアミノ酸位置のテスト残基頻度と等しく、および
iはテスト配列内のアミノ酸位置の数と等しい]
を用いて計算される。
本発明は、少なくとも部分的には、安定化されたscFv分子よりなる、またはそれを含む安定化された標的結合分子、およびそのような安定化された結合分子を作成する方法の開発に基づく。加えて、本発明は、抗体分子のような安定な蛋白質を設計するための方法を提供する。
I.定義
本明細書中で用いるように、用語「scFv分子」は、1つの軽鎖可変ドメイン(VL)またはその部分、および1つの重鎖可変ドメイン(VL)またはその部分よりなる結合分子を含み、ここに、各可変ドメイン(またはその部分)は同一または異なる抗体に由来する。scFv分子は、好ましくは、VHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFvリンカーを含む。scFv分子は当該分野で知られており、例えば、米国特許第5,892,019号、Ho et al.1989に記載されている。Gene 77:51; Bird et al.1998 Science 242:423;Pantoliano et al.1991. Biochemistry 30:10117; Milenic et al.1991.Cancer Research 51:6363;Takkinen et al.1991.Protein Engineering 4:837。
1つの具体例において、本発明の結合分子は一価であり、すなわち、(例えば、scFv分子の場合におけるように)1つの標的結合部位を含む。1つの具体例において、本発明の結合分子は多価であり、すなわち、1を超える標的結合部位を含む。もう1つの具体例において、結合分子は少なくとも2つの結合部位を含む。1つの具体例において、結合分子は2つの結合部位を含む。1つの具体例において、結合分子は3つの結合部位を含む。もう1つの具体例において、結合分子は4つの結合部位を含む。もう1つの具体例において、結合分子は4を超える結合部位を含む。
2 残基ナンバリングはChothia et al.,supraの命名法に従う。
3 MacCallum et al.,supraの命名法に従う。
II.安定化されたscFv分子
1つの具体例において、本発明の結合分子は安定化されたscFv分子である。本発明の安定化されたscFv分子はVHドメインおよびVLドメインの間に存在するscFvリンカーを含むことができ、ここに、VHおよびVLドメインは、VHにおけるアミノ酸およびVLドメインにおけるアミノ酸の間のジスルフィド結合によって連結される。他の具体例において、本発明の安定化されたscFv分子は、最適化された長さまたは組成を有するscFvリンカーを含む。なお他の具体例において、本発明の安定化されたscFv分子は、少なくとも1つの安定化アミノ酸置換を有するVHまたはVLドメインを含む。なおもう1つの具体例において、本発明の安定化されたscFv分子は前記リストの安定化特徴の内の少なくとも2つを含む。
a)例えば、アラニン、セリン、バリン、アスパラギン酸、またはグリシンでの、VLのKabat位置3におけるアミノ酸(例えば、グルタミン)の置換;
b)例えば、ロイシンでの、VLのKabat位置46におけるアミノ酸(例えば、セリン)の置換;
c)例えば、チロシンまたはセリンでの、VLのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)の置換;
d)例えば、セリン、スレオニン、およびアルギニン、アスパラギン酸、グリシン、またはリシンでの、VLのKabat位置50におけるアミノ酸(例えば、セリンまたはバリン)の置換;
e)各々、チロシンおよびセリン;チロシンおよびスレオニン;チロシンおよびアルギニン;チロシンおよびリシン;セリンおよびアルギニン;またはセリンおよびリシンでの、VLのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)およびKabat位置50におけるアミノ酸(例えば、セリン)の置換;
f)例えば、イソロイシンでの、VLのKabat位置75におけるアミノ酸(例えば、バリン)の置換;
g)例えば、セリンまたはグリシンでの、VLのKabat位置80におけるアミノ酸(例えば、プロリン)の置換;
h)例えば、セリン、アラニン、グリシン、またはスレオニンでの、VLのKabat位置83におけるアミノ酸(例えば、フェニルアラニン)の置換;
i)例えば、グルタミンでの、VHのKabat位置6におけるアミノ酸(例えば、グルタミン酸)の置換;
j)例えば、グルタメートでの、VHのKabat位置13におけるアミノ酸(例えば、リシン)の置換;
k)例えば、グルタメートまたはグルタミンでの、VHのKabat位置16におけるアミノ酸(例えば、セリン)の置換;
l)例えば、イソロイシンでの、VHのKabat位置20におけるアミノ酸(例えば、バリン)の置換;
m)例えば、セリンでの、VHのKabat位置32におけるアミノ酸(例えば、アスパラギン)の置換;
n)例えば、リシンまたはアルギニンでの、VHのKabat位置43におけるアミノ酸(例えば、グルタミン)の置換;
o)例えば、イソロイシンまたはグリシンでの、VHのKabat位置48におけるアミノ酸(例えば、メチオニン)の置換;
p)例えば、グリシンまたはアラニンでの、VHのKabat位置49におけるアミノ酸(例えば、セリン)の置換;
q)例えば、グリシンでの、VHのKabat位置55におけるアミノ酸(例えば、バリン)の置換;
r)例えば、イソロイシンまたはロイシンでの、VHのKabat位置67におけるアミノ酸(例えば、バリン)の置換;
s)例えば、アスパルテートまたはアスパラギンでの、VHのKabat位置72におけるアミノ酸(例えば、グルタミン酸)の置換;
t)例えば、セリン、バリン、またはチロシンでの、VHのKabat位置79におけるアミノ酸(例えば、フェニルアラニン)の置換;および
u)例えば、アルパラギン酸での、VHのKabat位置101におけるアミノ酸(例えば、プロリン)の置換;
よりなる群から選択される。
v)例示的な具体例において、本発明の安定化されたscFv分子は、前記a)ないしu)に記載された安定化突然変異の2以上を含む。例示的な具体例において、本発明の安定化されたscFvは、例えば、チロシンまたはセリンでの、VLのKabat位置49におけるアミノ酸の置換、および例えば、スレオニン、およびアルギニン、アルパラギン酸、グリシンまたはリシンでの、VLのKabat位置50におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの例示的な具体例において、本発明の安定化されたscFv分子は、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの、VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換、および例えば、リシンでの、VLのKabat位置46におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの、VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換;例えば、リシンでの、VLのKabat位置46におけるアミノ酸の置換;および例えば、グリシンでの、VHのKabai位置55におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの、VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換;例えば、リシンでの、VLのKabat位置46におけるアミノ酸の置換;例えば、グリシンでの、VHのKabat位置55におけるアミノ酸の置換;および例えば、アスパラギン酸での、VHのKabat位置101におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グルタミンでの、VHのKabat位置6におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グルタメートでの、VHのKabat位置13におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グルタメートまたはグルタミンでの、VHのKabat位置16におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、イソロイシンでの、VHのKabat位置20におけるアミノ酸の置換を含む;もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、セリンでの、VHのKabat位置32におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、リシンまたはアルギニンでのVHのKabat位置43におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、イソロイシンまたはグリシンでのVHのKabat位置48におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グリシンまたはアラニンでの、VHのKabat位置49におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、グリシンでの、VHのKabat位置55におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、イソロイシンまたはロイシンでのVHのKabat位置67におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、アスパルテートまたはアスパラギンでの、VHのKabat位置72におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、セリン、バリン、またはチロシンでの、VHのKabat位置79におけるアミノ酸の置換を含む。もう1つの具体例において、本発明の結合分子は、例えば、アスパラギン酸での、VHのKabat位置101におけるアミノ酸の置換を含む。
III.蛋白質安定性を予測し/決定するための方法
ある態様において、本発明は、大規模な発現について選択された蛋白質、例えば、治療蛋白質または工業用酵素に関する潜在的な生物物理学的問題を先験的に予測する方法を提供する。ある例示的な態様において、本発明の方法は、当業者が、例えば、哺乳動物細胞において組換え的に発現された場合に、固有に貧弱な安定性を有すると予測される蛋白質配列の発現を回避するのを可能とする。代替態様において、本発明の方法を使用して、限定されるものではないが、改良された安定性、pHの変化に対する改良された安定性、および増強された生化学的機能を含めた、改良された生物物理学的特性を有すると予測される蛋白質配列の変種を同定することができる。
a.共変動解析
ある例示的な態様において、本発明は、生物物理学的特性(例えば、蛋白質安定性)を予測するための「共変動解析」と言われる改良された計算方法を提供する。本明細書中で用いるように、「共変動解析」とは、候補配列のホモログにおいて、通常は共に起こり、または共に変化する候補ポリペプチド配列内の2以上のアミノ酸残基位置(本明細書中においては、「共変化残基位置」または「共変動残基位置」)を同定するための計算方法をいう。2以上のアミノ酸位置の間の共変動は、第一のアミノ酸位置において見出されたアミノ酸のタイプがもう1つのアミノ酸位置で見出されたアミノ酸のタイプに依存する場合に観察される。すなわち、1つの特定のアミノ酸が配列内の第一の位置に見出される場合、第二の特別なアミノ酸は、通常、該配列内の第二の位置において見出される。
1.候補ポリペプチドの配列またはそのドメインまたは部分(本明細書中においては、「テストドメイン配列」)に対応する相同配列の組(本明細書中においては、「参照組」)を供する。
工程1:参照組の提供
本発明の共変動方法は、注目する配列または「テスト配列」に相同な(すなわち、関連する)配列の組(「参照組」)を使用する。参照組は、テスト配列に対して中程度または高度な同様性を有する相同配列の組を含むことができる。ある具体例において、参照組の相同配列は、中程度ないし高度なアミノ酸配列同様性を有する。より好ましい具体例において、参照組の相同な配列は、中程度ないし高度な構造的同様性を有する。なおより好ましい具体例において、参照組の相同な配列は高度な構造的同様性を有する(例えば、それらは少なくとも1つの蛋白質ドメインまたは折畳みを共有する)。合理的に偏っていない選択が得られる限り、相同配列の組は大きい必要はない。
工程2:参照組の整列
第二の工程において、参照組の配列を正確に整列させて、配列の整列された組(または整列)を生じさせる。1つの具体例において、参照組の配列を配列整列アルゴリズム(例えば、LALIGNまたはBLASTおよび前記した他の当該分野で認められた整列)を用いて整列させて、配列の整列した組を生じさせる(本明細書中においては、「配列−ベースの配列整列」)。もう1つの具体例において、構造整列アルゴリズム(例えば、シュレジンガーストラクトアラインパッケージを用いる二次構造マッチング(SSM)を用いて整列させて、構造の整列した組(本明細書中においては、「構造整列」)を得る。好ましくは、構造整列アルゴリズムは、介入ループの代わりに、各構造のコア領域(例えば、βストランド)が整列するのを確実とする。なおもう1つの具体例において、参照組の配列は、構造−ベースの方法によって(例えば、シュレジンガーパッケージを用いてポリペプチド骨格のα−炭素の間の最も短い距離に基づいて、もう1つの重ねた構造のそれに対して1つの重ねた構造からのアミノ酸をマッチさせることによって)整列させる。
一旦整列した組の配列が編集されたならば、共変動解析を、整列組におけるアミノ酸残基の1以上の次いで行う。共変動解析の結果、整列内の相関残基の統計学的有意性を記載する新規なデータベース(本明細書中においては、「共変動データ組」)の作成がもたらされる。ある具体例において、共変動データ組は、整列内の残基の各可能な対の間の相関をリストする。
c(i,j)は同一配列で観察されるp(i)およびp(j)を掛け合わせた数であり;および
c(t)は整列における合計配列の数であり;
ここに、剰余頻度は、整列中の特定の位置で観察される剰余タイプを掛け合わせた数を、整列中の配列の合計数で割ったものと定義される。
ある具体例において、共変動データ組内の統計学的に有意な共変動を用いて、候補またはテスト配列内の対応する共変動についてサーチする。特に、候補またはテスト配列内の対応するアミノ酸位置における参照組の1以上の共変動アミノ酸の保存は、これらの残基が機能的に重要であって、好都合な蛋白質安定性を予測することを示す。従って、候補またはテスト配列内で保存された共変動アミノ酸の数を用いて、配列の安定性を予測することができる。
他の具体例において、本発明の計算方法は、関連ポリペプチド配列のデータベースに対する候補ポリペプチド配列を比較する「コンセンサス−ベースのスコアリング」と呼ばれる新規なスコアリング技術を使用して、潜在的に低い安定性を持つ蛋白質を同定する。本明細書中で用いるように、「コンセンサス−ベースのスコアリング」とは、関連蛋白質の配列編集から利用可能な情報に基づく、蛋白質(例えば、テスト蛋白質)内の非−コンセンサスアミノ酸の数の計算をいう。該計算の結果、該蛋白質についての「コンセンサススコア」が得られる。後記実施例に示されるように、蛋白質のコンセンサススコアはその経験的に決定された蛋白質安定性とかなり相関する。従って、本発明の目的は、コンセンサス−ベースのスコアリングを使用して、蛋白質の安定性を予測することにある。コンセンサス配列からのテスト蛋白質配列の偏差がより大きければ、コンセンサススコアはより高くなり、かつテスト蛋白質はその安定性に有害なアミノ酸をより含有するようである。
1.候補蛋白質(本明細書中においては、「テストドメイン配列」)のドメイン(またはその部分)の配列に対応する相同な配列の組(本明細書中においては、「参照組」)を供する。
4.平均スコアを得るために、参照組(またはそのサブセット)の各配列内における各対応する残基位置における残基頻度を決定する。
本発明のコンセンサススコアリングベースの方法は、注目する配列または「テスト配列」に対して相同な(すなわち、それに関連する)配列の組(「参照組」)を使用する。参照組は、テスト配列に対して中程度または高度な同様性を有する相同配列の組を含むことができる。
参照組の配列が一旦編集されれば、参照組のコンセンサス配列を決定して、本発明のコンセンサススコアリング方法を容易とする。本明細書中で用いるように、用語「コンセンサス配列」とは、配列内の各位置における残基(例えば、アミノ酸残基)が関連配列の整列させた組(すなわち、参照組)におけるその位置の最も共通する残基に対応する配列をいう。
ci(r)はコンセンサス配列のアミノ酸位置におけるコンセンサス残基頻度と等しく、
hi(r)はテスト配列のアミノ酸位置のテスト残基頻度と等しく、および
iはテスト配列内のアミノ酸位置の数と等しい)。
工程3:蛋白質安定性を予測するためのコンセンサススコアの使用
ついで、コンセンサススコアを使用して、テスト蛋白質の安定性を予測することができる。一般には、コンセンサススコアの値がより高ければ、テスト蛋白質がその意図した使用について適切な安定性を有するであろう確率はより大きくなる。ある具体例において、テスト蛋白質のコンセンサス配列は、対照配列のコンセンサススコアと比較することができる。1つの例示的な具体例において、対照配列は、貧弱なまたは望まない安定性特性を有することが知られた蛋白質(本明細書中においては、「陰性対照」)からのものである。従って、テスト蛋白質は、もしそのコンセンサススコアが陰性対照のそれよりも高いならば、改良された安定性を有すると予測される。もう1つの例示的具体例において、対照配列は、望ましい安定性特性を有することが知られた蛋白質(本明細書中においては、「陽性対照」)からのものである。従って、テスト蛋白質がもしそのコンセンサススコアが陽性対照のそれと実質的に同様であり、またはより高いならば、改良された安定性を有すると予測される。他の具体例において、テスト配列のコンセンサススコアは、テスト配列中のアミノ酸の合計数に対応する値である、その仮定完全コンセンサススコアと比較することができる。
ある具体例において、参照組内の配列のアミノ酸位置のいくつかまたは全てにおける平均コンセンサススコアは、テスト配列内の対応する位置におけるコンセンサススコアとの比較のために決定される。好ましい具体例において、参照組についての平均合計コンセンサススコアは、テスト配列の合計コンセンサススコアとの比較のために決定される。参照組についての平均合計コンセンサススコアは、参照組内の配列のすべてのアミノ酸位置についての残基頻度の合計を、参照組中の配列の合計数で割ったものである。
ある具体例において、配列スコアは、参照組の平均コンセンサススコアをテスト配列のコンセンサススコアと比較することによって決定される。これらの値の差は、(本明細書中においては「Δスコア」とも言われる。テスト配列の「配列スコア」である。配列スコアは、平均コンセンサススコアからコンセンサススコアを差し引くことによって決定することができる。
配列スコアは、参照組の平均コンセンサススコアからのテスト配列のコンセンサススコアの偏差の尺度を提供する。後記実施例は、蛋白質の配列スコアが蛋白質の安定性(例えば、熱安定性)と高度に相関することを示す。従って、ある具体例においては、配列スコアを用いて、蛋白質の安定性を予測することができる。もし蛋白質のΔスコアが負の値であれば(すなわち、コンセンサススコアが平均コンセンサススコアよりも小さいならば)、予測は、注目する蛋白質の安定性が参照組内の蛋白質の大部分よりも低い安定性を有するであろうということである。
(a)共変動設計
もう1つの態様において、本発明は、共変動解析の結果を用いて、それが由来する親分子に対して増強された生物物理学的特性を持つ蛋白質変種を設計する方法を提供する。多くのタイプの蛋白質エンジニアリングの努力があり、そこでは、共変動データを用いて、限定されるものではないが、増強された蛋白質安定性設計pH折畳み解除プロフィールの修飾、グリコシル化の安定な除去、および生化学的機能の改変を含めた設計を容易とすることができる。
なお他の態様において、本発明は、合理的設計のための鋳型蛋白質として第一の蛋白質を用い、第二のまたは候補の蛋白質(例えば、抗体)の生物物理学的特性(例えば、蛋白質安定性)を増強させる方法を提供する。
(1)鋳型蛋白質および候補蛋白質の構造的モデルを供する;
(2)安定性について重要な鋳型蛋白質中の残基を同定する;および
(3)重要な残基鋳型蛋白質に対応する候補蛋白質中の残基を置換する。
本発明のなお他の態様において、本明細書中で記載された配列ベースの設計ツールの2以上を、最適化された蛋白質変種の設計のために使用することができる。1つの例示的な具体例において、界面設計を共変動解析と共に使用して、例えば、蛋白質安定性を含めた蛋白質構造および機能で重要な残基または複数残基位置を決定する。1つの例示的な具体例において、共変動分析を用いて、反対ドメイン上の界面残基と物理的に相互作用しないか、あるいは表面領域を界面に寄与させないが、それにも関わらず、界面残基のための適切な構造的関連を供するのに重要な界面外部の複数残基または残基位置(本明細書中においては、「足場残基」という)を決定する。例えば、共変動解析は、界面残基と共に変動する足場残基を同定するために界面内に位置する残基で行うことができる。好ましくは、表面領域のかなりの程度に埋もれる界面残基(例えば、少なくとも40Å2の表面領域が埋もれる残基)は共変動解析のために選択される。次いで、本発明の共変動方法を用い、選択された界面残基と共に変動する足場残基が同定される。好ましくは、強く共変動する(例えば、少なくとも0.25のカイ−値)足場残基が選択される。もう1つの好ましい具体例において、足場残基は、もしそれらが少なくとも2つの界面残基(例えば、2、3、4、5、6、7、8、9、10以上の界面残基)と共変動するならば、その残基が選択される。共変動の数が大きくなれば、共変動スコアは足場残基により高く帰すことができる。というのは、共変動の数は、VH/VL界面の安定化に対する足場残基によってなされる貢献を予測する。
(1)鋳型蛋白質および候補蛋白質の構造的モデルを供し;
(2)安定性に重要である鋳型蛋白質中の界面残基(例えば、VH/VLを同定し;
(3)例えば、本明細書中に記載された共変動解析ツール(Covariation Analysisツール)を用い、工程(2)の界面残基と共変動する足場残基を同定し;
(4)候補蛋白質中の1以上の界面残基または足場残基を、工程(2)および(3)で同定された対応する残基または足場残基で置換する。
本発明の1つの態様は、本発明の選択または設計方法を実行するための方法(例えば、コンピュータ実施方法)、装置、およびソフトウェアに関する。例示的な具体例において、本発明は、候補配列中のアミノ酸残基(例えば、共変動アミノ酸残基)を同定するためのコンピュータ実施方法および装置を提供する。もう1つの具体例において、本発明は、生物物理学的特性(例えば、蛋白質安定性、触媒活性、治療活性、病原体またはトキシンに対する耐性、毒性など)を予測するスコア(例えば、コンセンサススコアまたは共変動スコア)によって1以上のテストまたは候補配列をランク付けするためのコンピュータ実施方法および装置を提供する。
(i)コンピュータ実施コンセンサスソーティング
1つの態様において、本発明は、コンピュータ実施アルゴリズムを用いて前記した本発明のコンセンサススコアリング方法を実行するためのコンピュータ実施方法、装置およびソフトウェアに関する。例示的な具体例において、アルゴリズムは、以下の工程:(1)整列の各残基位置を行として切り出し、その位置におけるコンセンサス残基頻度を計算し;(2)テスト配列の各残基位置を切り出し、その位置におけるテスト残基頻度を計算し、次いで、(3)テスト残基頻度をコンセンサス残基頻度で割って、コンセンサススコアが得られ;および/または(4)各位置におけるコンセンサススコアを合計して、合計コンセンサススコアを得る;の1以上を実行するように設計される。他の具体例において、アルゴリズムは、以下のさらなる工程:(5)参照組の平均コンセンサススコアを計算し、および/または(6)テスト配列の配列スコアを計算する;の1以上を実行するように設計することができる。
本発明のもう1つの態様は、コンピュータ実施アルゴリズムを用いて前記した本発明の共変動解析方法を実行するためのコンピュータ実施方法に関する。例示的な具体例において、該方法は以下の工程:(1)整列した組の各残基位置を行として切り出し;(2)行を行列中に配置し;(3)行列中の種々の行内の相関を計算して、相関項を誘導し;(4)相関項を、アミノ酸残基に対応する線形項に加えて、拡大したプレディクター行列が得られ;(5)拡大されたプレディクター行列から経験的に誘導されたモデル(例えば、隠れたMarkovモデル)を作製して、重要な相関を同定する;の1以上を実行する。
ある例示的な態様において、本発明は、本発明の共分散方法で用いられる新規なグラフユーザーインターフェイス(GUI)を提供する。NAPMAPといわれるこの共変動解析ツールは、配列の整列させた組の関係で共変動を可視化するにおいてユーザーを助ける。新規なグラフユーザーインターフェイスは、(例えば、Processing.orgからの処理ライブラリーを利用するJava(登録商標) 1.4.2において)当該分野で認められたプログラミング言語を用いて実行されるコンピュータである。
1つの具体例において、本発明のグラフユーザーインターフェイスは、整列(例えば、前記した本発明の方法に従って作り出された配列整列)またはそれに対応するデータのグラフ表示を含む。このディスプレイの単純な形態はグリッドレイアウトである。本明細書中で用いるように、(整列プラットフォームとしても知られた)用語「グリッドレイアウト」とは、整列の特性が表される行列をいう。1つの具体例において、グリッドレイアウトは整列の配列の残基位置をグラフで表す。もう1つの具体例において、グリッドレイアウトは整列内の配列の残基タイプをグラフで表す。もう1つの具体例において、グリッドレイアウトは、整列内の残基タイプの頻度(または「残基用法頻度」)をグラフで表す。なお他の具体例において、グリッドレイアウトは整列内の残基の1以上の特性(例えば、疎水性、電荷、サイズ、pKaなど)を表す。
他の態様において、本発明のグラフユーザーインターフェイスは、1以上の共変動(例えば、前記本発明の方法に従って同定された共変動)またはそれに対応するデータのグラフ表示を含む。
他の任意の態様において、グラフユーザーインターフェイスは、注目する配列のグラフ表示を含んで、可能な蛋白質設計努力を助ける。注目する配列はテストまたは候補配列(すなわち、入力配列)とすることができるか、あるいはそれは望ましい共変動が一体化される配列とすることができる(すなわち、出力配列)。注目する配列は線としてグラフ表示することができる。
グラフユーザーインターフェイスはいずれの当該分野で認められた機能性も容易とすることができる。例えば、ある具体例においては、グラフユーザーインターフェイスはグリッドレイアウトの異なる部分に対して流し撮り、またはズーミングすることができる。例えば、グリッドレイアウトのビューポートサイズは、ユーザーのコンピュータスクリーンの分解能に依存して変化させることができ、可視化は、ビューポートにおいて最初はフィットしない整列を見るためにズーミング、または流し撮りすることができる。
ビューワーモード#1:注目する配列にやはり存在する残基の間の共変動のみを表示する。これらの共変動は、対応する蛋白質分子を一緒に保持し、機能について重要であり得る仮定された残基−残基相互作用(例えば、統計学的残基対頻度解析によって見出されたもの)と考えることができる。
本発明の組成物の安定性特性は、当該分野で公知の方法を用いて解析することができる。当業者に許容される安定性パラメーターを使用することができる。例示的なパラメーターは以下でより詳細に記載する。例示的な具体例において、熱安定性が評価される。好ましい具体例において、本発明の組成物の(例えば、%収率によって測定した)発現レベルを評価する。他の好ましい具体例において、本発明の組成物の凝集レベルが評価される。
本発明の組成物の熱安定性は、当該分野で知られた多数の非限定的生物物理学または生化学技術を用いて解析することができる。ある具体例において、熱安定性は分析分光測定によって評価される。
ある具体例において、本発明の組成物の安定性は、凝集するその傾向を測定することによって決定される。凝集は、多数の非限定的生化学または生物物理学技術によって測定することができる。例えば、本発明の組成物の凝集は、クロマトグラフィー、例えば、サイズ−排除クロマトグラフィー(SEC)を用いて評価することができる。SECはサイズに基づいて分子を分離する。カラムには、イオンおよび小さな分子をその内部に受け入れるが、大きなものは受け入れないポリマーゲルの半個体ビーズが充填される。蛋白質組成物がカラムの頂部に適応されると、緻密な折畳まれた蛋白質(例えば、凝集していない蛋白質)は、大きな蛋白質凝集体が利用できるよりも大きな容量の溶媒を通って分布する。その結果、大きな凝集体はカラムを通ってより迅速に移動し、このようにして、混合物はその成分に分離でき、または分画することができる。各画分はそれがゲルから溶出されるにつれ、(例えば、光散乱によって)別々に定量することができる。従って、本発明の組成物の%凝集は、画分の濃度を、ゲルに適用された蛋白質の全濃度と比較することによって決定することができる。安定な組成物は実質的に単一の画分としてカラムから溶出され、溶出プロフィールまたはクロマトグラムにおいては実質的に単一のピークとして出現する。
他の具体例において、本発明の組成物の安定性は、蛋白質の発現(例えば、組換え体発現)に続いて回収される蛋白質の量(ここでは、「%収率」)を測定することによって評価される。例えば、%収率は、宿主培養基の各mlについて回収された蛋白質のミリグラム(すなわち、蛋白質のmg/ml)を決定することによって測定することができる。好ましい具体例において、%収率は哺乳動物宿主細胞(例えば、CHO細胞)における発現に続いて評価される。
なお他の具体例において、本発明の組成物の安定性は、貯蔵に続いての一定範囲の温度(例えば、−80ないし25℃)における定義された時間の間での蛋白質の喪失をモニターすることによって評価される。回収された蛋白質の量または濃度は、当該分野で知られたいずれかの蛋白質定量方法を用いて決定することができ、蛋白質の初期濃度と比較することができる。例示的な蛋白質定量方法は、SDS−PAGE分析またはブラッドフォード(Bradford)アッセイ(Bradford,et al.,Anal.Biochem.72,248,(1976))を含む。%喪失を評価するための好ましい方法は、前記した分析SEC方法のいずれかを使用する。%喪失測定は、例えば、凍結乾燥された蛋白質調製物を含めたいずれかの貯蔵条件または貯蔵処方の下で決定することができると認められる。
なお他の具体例において、本発明の組成物の安定性は、標準的な条件下での彫像に続いて分解された蛋白質の量を決定することによって評価される。例示的な具体例において、蛋白質分解は蛋白質の試料をSDS−PAGEによって決定され、そこでは、初期蛋白質の量を、SDS−PAGEゲルに出現する低分子量断片の量と比較される。もう1つの例示的な具体例において、蛋白質分解は質量分析(MS)によって決定され、そこでは、予測される分子量の蛋白質の量が、試料内の低分子量蛋白質断片の量と比較される。
なお他の具体例において、本発明の組成物の安定性は、その標的結合親和性を決定することによって評価することができる。結合親和性を決定するための広く種々の方法が当該分野で知られている。結合親和性を決定するための例示的な方法は、表面プラズモン共鳴を使用する。表面プラズモン共鳴は、例えば、BIAcoreシステム(Pharmacia Biosensor AB,Uppsala,Sweden and Piscataway,NJ)を用いる、バイオセンサーマトリックス内の蛋白質濃度の変化の検出によって、リアルタイム生物特異的相互作用の分析を可能とする光学的現象である。さらなる記載については、Jonsson,U.,et al.(1993)Ann Biol. Clin.51:19−26;Jonsson,U.,et al.(1991)Biotechniques 11:620−627;Johnsson,B.,et al.(1995)J.Mol.Recognit.8:125−131;およびJohnnson,B.,et al.(1991)Anal.Biochem.198:268−277参照。
なお他の具体例において、本発明の組成物の安定性は、標識された化合物の、結合分子の変性したまたは折畳み解除された部分への結合を定量することによってアッセイすることができる。そのような分子が好ましくは疎水性である。というのは、それらは、好ましくは、通常は天然蛋白質の内部に埋もれているが、変性した、または折畳み解除された結合分子においては露出されるアミノ酸の大きな疎水性パッチと結合し、または相互作用するからである。例示的な標識された化合物は疎水性蛍光色素、1−アニリノ−8−ナフタリンスルホネート(ANS)である。
蛋白質安定性の予測のための前記した方法を使用して、さらなる使用のための候補蛋白質(例えば、抗体)を選択することができる。ある具体例において、本発明の方法を使用して、発現用の蛋白質を選択する。他の具体例において、本発明の方法を用いて、修飾のための候補蛋白質を選択する。例示的な具体例において、本発明の予測方法は、(例えば、アクセプター免疫グロブリンを選択するための)非−ヒトドナー抗体のヒト化で使用することができる。
a.抗体ヒト化のためのアクセプター免疫グロブリンの選択
ヒト化抗体は組換えDNA技術を用いて生産することができる。例えば、Queen et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,(1989),86:10029−10033;Jones et al.,Nature,(1986),321:522−25;Riechmann et al.,Nature,(1988),332:323−27;Verhoeyen et al.,Science,(1988),239:1534−36;Orlandi et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,(1989),86:3833−37;米国特許第5,225,539号;第5,530,101号;第5,585,089号;第5,693,761号;第5,693,762号;第6,180,370号参照。好ましい非ヒトドナー抗体がヒト化のために選択された場合、適当なヒトアクセプター抗体は、例えば、発現されたヒト抗体遺伝子の配列データベースから、いくつかのヒト抗体の生殖系Ig配列またはコンセンサス配列から得ることができる。非ヒトCDRのヒト可変ドメインフレームワークからの置換の結果、もしヒト可変ドメインフレームワークが、CDRが由来する非ヒト可変フレームワークに対して同一または同様な立体配座を採るならば、それらの正しい空間的向きの保持が最ももたらされるようである。これは、そのフレームワーク配列が、CDRが由来する非ヒト可変フレームワークドメインに対して高い度合いの配列同一性を呈するヒトアクセプター抗体からのヒト可変ドメインを得ることによって達成される。重鎖および軽鎖可変フレームワーク領域は、同一または異なるヒト抗体配列から由来することができる。好ましくは、ヒトアクセプター抗体は、ドナー抗体のカノニカルおよび界面残基を保持する。加えて、ヒトアクセプター抗体は、好ましくは、CDRループの長さにおいて実質的同様性を有する。Kettleborough et al.,Protein Engineering 4:758(1991);Kolbinger et al.,Protein Engineering 6:971(1993)およびCarter et al.,WO 92/22653参照。
VIII.安定化されたscFv分子を同定するためのライブラリーベースの分子
もう1つの態様において、本発明は、改良された蛋白質安定性、例えば、改良された熱安定性を持つscFv分子を同定する方法を提供する。本発明の方法は、(i)候補scFv分子を含むライブラリーを供し;次いで、(ii)ライブラリーをスクリーニングして、適当な対照(例えば、対照scFv分子)に対して改良された蛋白質安定性を持つ候補scFv分子を同定することを含む。本明細書中で用いるように、「候補scFv分子」は、1以上の候補安定化突然変異をscFv分子に導入することによって形成されたscFv分子であり、そこでは、scFv分子の安定性に対する候補安定化突然変異の効果は先験的には知られておらず、すなわち、突然変異が導入され、突然変異が増大した安定性を持つscFv分子をもたらすか否かを決定するのに評価されなければならないscFv分子である。1つの具体例において、候補scFv分子は、1以上の候補安定化突然変異を慣用的な(すなわち、非−安定化)scFv分子へ導入することによって形成されたものである。もう1つの具体例において、候補scFv分子は、前記セクションIIに記載された安定化scFv分子の1つで、1以上の候補安定化突然変異を導入することによって形成されたものである。
a.scFvライブラリーの設計
scFvライブラリーを設計するための方法は、分子または計算モデリングによって助けることができる。ある具体例において、ライブラリーの設計はコンピュータ内で実施される。ある具体例において、scFvライブラリーは以下の2−工程方法によって設計することができる:
1)突然変異によって(例えば、アミノ酸置換によって)改変した場合、改良されたscFv安定性をもたらすと予測されるscFvにおける標的アミノ酸残基(本明細書中においては、「候補脱安定化残基」)を同定し;次いで、
2)標的アミノ酸残基を、候補安定化アミノ酸残基で置換する。
ある具体例において、候補脱安定化アミノ酸残基は、配列−ベースの分析によって同定することができる。例えば、候補脱安定化アミノ酸は、scFvの可変領域配列を、可変領域配列、例えば、天然に生じるヒト抗体からの可変領域配列の参照組と比較し、次いで、参照組内のそれらの対応するアミノ酸位置において異常な、または稀であるscFvの可変領域アミノ酸残基を選択することによって同定することができる。好ましい具体例において、scFvの可変領域配列のフレームワーク領域のみが解析され、他方、可変領域の相補性決定領域(CDR)を保存して、scFv分子の結合活性の破壊を回避する。
1以上の候補脱安定化アミノ酸を同定したら、次の工程は、各脱安定化アミノ酸についての1以上の候補安定化突然変異を選択することである。次いで、scFvライブラリーは、選択される各候補安定化突然変異についての代表的な候補scFv分子を含むように設計することができる。
候補安定化突然変異がscFvライブラリーに含まれると決定したら、種々の可能な方法のいずれかを用いて、突然変異を含む候補scFv分子を生じさせることができる。そのようなペプチド、例えば、組換え方法によって生産することができる。さらに、遺伝暗号の縮重のため、種々の核酸配列を用いて、各所望のscFvをコードすることができる。
本発明のscFvライブラリーはアッセイ(例えば、高−スループットアッセイ)においてスクリーニングして、所望の蛋白質安定性を持つ候補scFv分子を同定することができる。そのようなアッセイは、前記セクションVIに記載された蛋白質安定性を評価する方法のいずれかを使用することができる。特に好ましい方法は熱挑戦アッセイである。そのようなアッセイ方法は、一般に、候補scFv分子の熱安定性を適当な対照のそれと比較し、もし熱安定性が対照のそれよりも大きいならば、候補scFv分子を選択することを含む。例示的な適当な対照は慣用的なscFv分子、例えば、(Gly4Ser)3 scFv分子を含む。候補scFv分子は、もしそれらが対照のそれよりも約0.1、約0.25、約0.5、約0.75、約1、約1.25、約1.5、約1.75、約2、約3、約4、約5、約6、約7、約8、約9、または約10度摂氏高い熱安定性を有すれば、選択することができる。例示的な具体例において、候補scFv分子は、もしそれが対照のそれよりも約3度摂氏高ければ選択される。
前記スクリーニング方法によって同定された安定なscFv分子は再度モデル化し、その蛋白質安定性をさらに改良するようにさらに最適化することができる。かくして、前記した工程を、初期ラウンドの最適化で同定された安定なscFv分子で反復することができる。別法として、2以上の安定化されたscFv分子からの安定化突然変異を単一scFv分子において組合せて、蛋白質安定性をさらに改良することができる。
他の態様において、本発明は、結合分子の安定性特性を改良するための方法を提供する。これらの方法は、一般に、本発明の安定化されたscFv分子を結合分子に一体化させ、または付着させることを含む。驚くべきことに、本明細書中における実施例に示したように、本発明のscFv分子はそれら自体に対して安定であるのみならず、それらは改良された安定性を、それらが一体化された結合分子に付与する。従って、本発明の方法は、貧弱な蛋白質安定性によってしばしば大規模な製造が制限される商業的に価値ある結合分子(例えば、多特異的抗体(例えば、二特異的抗体)および他の修飾された抗体)の安定性を改良するための便宜かつ信頼性がある手段を提供する。
(CHO)細胞、HELA(ヒト頸部癌腫)細胞、CVI(サル腎臓系)細胞、COS(CVIとSV40T抗原との誘導体)細胞、R1610(チャイニーズハムスター線維芽細胞)細胞、BALBC/3T3(マウス線維芽細胞)細胞、HAK(ハムスター腎臓系)細胞、SP2/O(マウスミエローマ)細胞、BFA−1c1BPT細胞(ウシ内皮細胞)、RAJI(ヒトリンパ球)細胞および293細胞(ヒト腎臓)を含む。好ましい具体例において、2つの安定化されたscFv細胞を抗体分子に付着させて、CHO細胞での分泌のための安定化された二特異的分子が作製される。
1つの具体例において、本発明の安定化された結合分子は融合蛋白質である。例えば、本発明の安定化されたscFv分子は第二のscFv分子または非−scFv分子に連結させることができる。1つの具体例において、本発明の安定化されたscFv分子を連結されることができる非−scFv分子は、少なくとも1つの更なる結合部位を提供する。例えば、本発明の結合分子に含めることができる例示的な結合部位は:リガンドの受容体結合部分、受容体のリガンド結合部分、酵素の基質結合部分、基質の酵素結合部分、または抗体の1以上の抗原結合部分を含む。scFv分子を、例えば、抗体分子に連結させて修飾された抗体分子を形成でき、あるいは他のポリペプチドを連結させて、融合蛋白質を形成することができる。いくつかの例は以下に記載する。
1つの具体例において、本発明の安定化されたscFv分子を抗体またはその部分に連結させて、修飾された抗体である安定化された結合蛋白質を形成する。もう1つの具体例において、本発明の安定化されたscFvは修飾された抗体、すなわち、天然に生じない抗体分子に連結されて、安定化された結合蛋白質を形成する。好ましい修飾された抗体構築体は以下に更に詳細に記載される。本明細書中で用いるように、用語「修飾された抗体」は、それらが天然に生じないように改変された抗体、例えば、少なくとも2つの重鎖部分を含むが、(ドメイン欠失抗体またはミニボディのような)2つの完全な重鎖を含まない抗体の合成形態;2以上の異なる抗原に、または単一抗原上の異なるエピトープに結合するように改変された抗体の多特異的形態(例えば、二特異的、三特異的など)を含む。加えて、用語「修飾された抗体」は、抗体の多価形態(例えば、同一抗原の3以上のコピーに結合する三価、四価などの抗体)を含む。
ある具体例において、本発明の安定化された結合分子は修飾された融合蛋白質である。1つの例示的な具体例において、本発明の結合分子は、受容体のリガンド−結合領域、接着分子、リガンド、または酵素に連結された安定化されたscFv分子を含む融合蛋白質である。もう1つの例示的な具体例において、本発明の結合分子は、リガンドの受容体結合部分に連結された安定化されたscFv分子を含む融合蛋白質である。例えば、本発明の結合分子は、以下の分子の1以上に対する安定化されたscFv分子を含む融合蛋白質である:
サイトカインおよびサイトカイン受容体
サイトカインはリンパ球の増殖、分化、および機能的活性化に対して多面的効果を有する。種々のサイトカイン、またはその受容体結合部分は、本発明の融合蛋白質で利用することができる。例示的なサイトカインはインターロイキン(例えば、IL−1、IL−2、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、IL−8、IL−9、IL−10、IL−11、IL−12、IL−13、およびIL−18)、コロニー刺激因子(CSF)(例えば、顆粒球CSF(G−CSF)、顆粒球−マクロファージCSF(GM−CSF)、および単球マクロファージCSF(M−CSF))、腫瘍壊死因子(TNF)アルファおよびベータ、およびインターフェロン−α、β、またはγのようなインターフェロンを含む(米国特許第4,925,793号および第4,929,554号)。
接着分子は、細胞を相互に相互作用させる膜−結合蛋白質である。その受容体結合部分の、白血球ホーミング受容体および細胞接着分子を含めた、種々の接着蛋白質を本発明の結合分子に組み込むことができる。白血球ホーミング受容体は炎症の間に白血球細胞表面に発現され、これは、細胞外マトリックス成分への結合を媒介するβ−1インテグリン(例えば、VLA−1、2、3、4、5、および6、および血管内皮上の細胞接着分子(CAM)に結合するβ2−インテグリン(例えば、LFA−1、LPAM−1、CR3、およびCR4)を含む。例示的なCAMはICAM−1、ICAM−2、VCAM−1、およびMAdCAM−1を含む。他のCAMは、E−セレクチン、L−セレクチン、およびP−セレクチンを含めたセレクチンファミリーのものを含む。
感染の部位に向けられた白血球の移動を刺激する化学走性蛋白質であるケモカイン、またはそのケモカイン受容体結合部分もまた、本発明の結合分子に組み込むことができる。例示的なケモカインはマクロファージ炎症蛋白質(MIP−1−αおよびMIP−1−β)、好中球化学走性因子、およびRANTES(regulated on activation normally T−cel expressed and secreted)(活性化に際して調節され、正常T−細胞により発現され分泌される)を含む。
成長因子またはそれらの受容体(またはその受容体結合またはリガンド結合部分)、あるいはそれらに結合する分子を本発明の結合分子に組み込むことができる。例示的な成長因子はアンジオポエチン、血管内皮成長因子(VEGF)およびそのイソ形態(米国特許第5,194,596号);表皮成長因子(EGF);aFGFおよびbFGFを含めた線維芽細胞成長因子(FGF);心房性ナトリウム利尿因子(ANF);肝臓成長因子(HGF;米国特許第5,227,158号および第6,099,841号)、骨−由来神経栄養因子(BDNF)のような神経栄養因子、ニュートロフィン−3、−4、−5、または−6(NT−3、NT−4、NT−5、またはNT−6)、NGF−β血小板−由来成長因子(PDGF)のような神経成長因子(米国特許第4,889,919号、第4,845,075号、5,910,574号および第5,877,016号);TGF−アルファおよびTGF−ベータのようなトランスフォーミング成長因子(TGF)(WO 90/14359)、骨形成蛋白質(BMP)を含めた骨誘導因子;インスリン−様成長因子−Iおよび−II(IGF−IおよびIGF−II;米国特許第6,403,764号および第6,506,874号);エリスロポエチン(EPO);幹−細胞因子(SCF)、トロンボポエチン(c−Mplリガンド)、およびWntポリペプチド(米国特許第6,159,462号)を含む。
本発明の結合分子において標的化剤として用いるためにそれらに結合する例示的な成長ホルモンまたは分子は、レニン、ヒト成長ホルモン(HGH;米国特許第5,834,598号)、N−メチオニルヒト成長ホルモン;ウシ成長ホルモン;成長ホルモン放出因子;副甲状腺ホルモン(PTH);甲状腺刺激ホルモン(TSH);チロキシン;プロインスリンおよびインスリン(米国特許第5,157,021号および第6,576,608号);卵胞刺激ホルモン(FSH)、カルシトニン、黄体ホルモン(LH)、レプチン、グルカゴン;ボンベシン;ソマトトロピン;ミュラー−刺激物質;レラキシンおよびプロレラキシン;ゴナドトロピン−関連ペプチド;プロラクチン;胎盤ラクトゲン;OB蛋白質;またはミュラー−刺激物質を含む。
本発明の結合分子において標的化剤として用いるための例示的な血液凝固因子は凝固因子(例えば、第V、VII、VIII、X、IX、XI、XIIおよびXIII因子、フォン・ヴィレブランド因子);組織因子(米国特許第5,436,991号、第5,349,991号、第5,726,147号および第6,596,84号);トロンビンおよびプロトロンビン;フィブリンおよびフィブリノーゲン;プラスミンおよびプラスミノーゲン;ウロキナーゼまたはヒト尿または組織−タイププラスミノーゲンアクチベーター(t−PA)のようなプラスミノーゲンアクチベータを含む。
1つの具体例において、本発明の結合分子は、細胞の表面に存在する、または可溶性である標的分子に結合する。
のいずれかの形成に際して調節される。
前記した本発明のポリペプチドを提供するための単離された遺伝物質の操作に続いて、遺伝子は、典型的には、特許請求された結合分子を提供する所望の量のポリペプチドを生産するのに用いることができる宿主細胞への導入用の発現ベクターに挿入される。
(FACS)、免疫組織化学等を含む。
XII.結合分子の標識またはコンジュゲーション
本発明の結合分子は非−コンジュゲーテッド形態で用いることができ、あるいは種々のエフェクター、すなわち、例えば、標的検出を容易とするために、または患者のイメージングまたは療法のための機能的分子の少なくとも1つにコンジュゲートさせることができる。本発明のポリペプチドは、精製を行う場合に、精製の前または後いずれかに標識し、またはコンジュゲートさせることができる。特に、本発明のポリペプチドは(放射性同位体、細胞傷害性薬物、またはトキシンのような)細胞トキシン、治療剤、精細胞剤、生物学的トキシン、プロドラッグ、ペプチド、蛋白質、酵素、ウイルス、脂質、生物学的応答モディファイアー、医薬剤、免疫学的に活性なリガンド(例えば、リンホトキシンまたは他の抗体、ここに、得られる分子は新形成細胞、およびT細胞のようなエフェクター細胞双方に結合する)、PEG、またはイメージングでいうような検出可能な分子にコンジュゲートさせることができる。もう1つの具体例において、本発明のポリペプチドは、腫瘍の血管形成を減少させる分子にコンジュゲートさせることができる。他の具体例において、開示された組成物は、薬物またはプロドラッグにカップリングされた本発明のポリペプチドを含むことができる。本発明のなお他の具体例はリシン、ゲロニン、シュードモナスエキソトキシンまたはジフテリアトキシンのような特異的なバイオトキシンまたはそれらの細胞傷害性断片にコンジュゲートした本発明のポリペプチド使用を含む。いずれのコンジュゲートしたまたはコンジュゲートしていないポリペプチドを用いるかの選択は、癌のタイプおよび段階、補助的処置(例えば、化学療法または外部放射線)の使用および患者の状態に依存するであろう。当業者であれば、本明細書中における教示に鑑みてそのような選択を容易になすことができることが認識されよう。
X−Y−Z
[式中、
Xは付着分子であり;
Yはスペーサー分子であり;および
Zはエフェクター付着部位である]
の連結分子と反応させることによって形成される。
本発明の結合分子を調製し、対象に投与する方法は当業者によく知られており、あるいは当業者によって容易に決定される。本発明の結合分子の投与の経路は経口、非経口、吸入または局所であり得る。本明細書中で用いる用語非経口は静脈内、動脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、直腸または膣投与を含む。非経口投与の静脈内、動脈内、皮下および筋肉内形態は一般に好ましい。投与の全てのこれらの形態は本発明の範囲内にあると明瞭に考えられるが、投与のための形態は注射用、特に、静脈内または動脈内注射または点滴用の溶液であろう。通常、発明のための適当な医薬組成物は緩衝液(例えば、酢酸、リン酸またはクエン酸緩衝液)、界面活性剤(例えば、ポリソルベート)、所望により安定化剤(例えば、ヒトアルブミン)などを含むことができる。しかしながら、本明細書中での教示に適合する他の方法においては、ポリペプチドを直接的に有害な細胞集団の部位に送達することができ、それにより、病気の組織の治療剤への暴露を増加させることができる。
本発明の分子は、例えば、診断または治療目的で、安定かされたxcFv分子またはそのようなscFv分子を含む組成物を用いるのが望ましい状況で用いることができる。本発明の好ましい具体例は、本発明の結合分子の投与から利益を受けるであろう障害、例えば、そのような治療を必要とする哺乳動物対象における新形成障害の診断および/または治療のための化合物、組成物、ヒトおよび方法を提供する。好ましくは、対象はヒトである。
一般的材料および方法
一般に、本発明の実施は、特に断りのない限り、化学、生物物理学、分子生物学、組換DNA技術、免疫学(特に、例えば、抗体技術)、および電気泳動における標準的な技術を使用する。例えば、Sambrook,Fritsch and Maniatis,Molecular Cloning: Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989);Antibody Engineering Protocols(Methods in Molecular Biology),510,Paul,S.,Humana Pr(1996);Antibody Engineering:A Practical Approach(Practical Approach Series,169),McCafferty,Ed.,Irl Pr(1996);Antibodies:A Laboratory Manual,Harlow et al.,C.S.H.L.Press,Pub.(1999);and Current Protocols in Molecular Biology,eds.Ausubel et al.,John Wiley & Sons (1992)参照。
発現構築体
一般に、特に断りのない限り、以下の実施例におけるscFvのための発現構築体は、N−末端遺伝子IIIシグナルペプチド、ならびにMycおよびHisタグを含むC−末端精製ペプチド、およびエンテロキナーゼ切断部位を含んだ。各ペプチドについてのDNA配列を以下に記載する。
N−末端遺伝子IIIシグナルペプチドDNA配列
ある実施例(BIIB1ないしBIIB18)で用いるBIIB抗体は、種々の特異性の治療抗体のコレクションである。18の抗体のうち17は安定なバルクまたはクローン性CHO細胞系いずれかから発現され、抗体の1つ(BIIB13)は、HEK293E細胞において一過性トランスフェクションを用いて発現させた。全ての18の抗体はカッパ軽鎖を含有する。抗体の大部分はヒトIgG1であり;しかしながら、BIIB2、BIIB5、およびBIIB11はヒトIgG4であった。18の抗体のうち17はヒトまたはヒト化されていた。BIIB15はPRIMATIZED(登録商標)(Nakamura et al.,2000)であった。各抗体に対するヒト生殖系の同一性は、公に入手可能なヒト生殖系(Lefranc et al.,1999)に対するBIIB VHまたはVΚ配列のClustalW整列によって評価した(ClustalW WWW Service at the European Bioinformatics Institute,Thompson et al.,1994)。
慣用的なBHA10 scFvおよびFab蛋白質の調製
BHA10 scFvは、以下の表2に示したオリゴヌクレオチドプライマーと共にポリメラーゼ鎖反応(PCR)を用いてプラスミドpXWU034からサブクローンした。順方向プライマーBHA10−01FはユニークなSph I制限エンドヌクレアーゼ部位(下線を施した配列)、続いて、BHA10のN−末端重鎖可変ドメイン遺伝子に対して相補的な配列の18塩基を含有する。逆方向プライマーBHA10−01RはBHA10 C−末端軽鎖可変ドメイン遺伝子に対して相補的な配列の24塩基、エンテルキナーゼ部位に対して相補的な配列の15塩基、および隣接するHind IIIおよびXba I制限エンドヌクレアーゼ部位を含有する(エンドヌクレアーゼ部位は下線を施す)。PCR増幅に続いて、予測されるサイズに対応するPCR産物をアガロースゲル電気泳動によって分解し、切り出し、製造業者の指示に従ってMillipore Ultrafree−DA抽出キットを用いて精製した(Millipore;Bedford,MA)。精製されたPCR産物をSphIで消化し、dNTPの存在下でDNAポリメラーゼIで消化することによって平滑末端とし、次いで、HindIIIで消化した。平滑末端とした/HindIII消化産物をScaI HindIII消化pKJS216に連結した。pKJS216は、誘導性araCプロモーターの制御下にある組換え蛋白質発現を駆動するE.coliベクターである。連結混合物の一部を用いて、E.coli株XL1−Blueを形質転換した。アンピシリン薬物耐性コロニーをスクリーニングし、DNA配列分析は最終pIEH003構築体の正しい配列を確認した。BHA10 scFvのDNAおよびアミノ酸配列を、各々、図1Aおよび1Bに示す。
慣用的BHA10 scFv分子の熱的安定性
示差走査型熱量測定(DSC)を用いて、単離されたBHA10 scFvが固有にそのFabカウンターパートよりも安定性でない否かをテストした。走査は、自動キャピラリー示差操作型熱量計(capDSC,MicroCal,LLC)を用いて行った。蛋白質および参照用液は、ロボットアタッチメントを用いて96−ウェルプレートから自動的にサンプリングした。各蛋白質走査に先立って、二回の走査を試料セル中の緩衝液で行い、バックグラウンドを差し引くために用いた。単一の清浄走査は、各蛋白質走査後に5%リキノックス(Liquinox)を用いて行った。各走査後に、機器は参照セルおよび試料セル双方を、0.01%アジ化ナトリウムを含有する2mlの蒸留した脱イオン水で三回自動的に洗浄した。走査は、増強されたピーク分解のためのメディウムフィードバックモードを用いて1℃/分で行った。走査範囲は20ないし95℃であった。蛋白質を含有する全ての96−ウェルプレートを6℃にて機器内に貯蔵した。
改良された熱安定性を持つBHA10 scFv分子の構築
実施例2において証明されているように、BHA10 scFvドメインが固有に不安定であることが分かったので、熱挑戦条件下で熱力学的にまたは機能的にFabに同等な修飾されたscFvを生じさせるための組換えDNA技術の使用を介するscFvの作製の結果、二特異的抗体を構築するのに有用なscFvドメインがもたらされるはずであると仮定した。さらに、単離されたscFvドメインの作製それ自体は、全二特異的分子の成分として再度導入した場合に有益ないずれの生物物理学的特性も付与するはずであるとも仮定した。その目的に向けて、E.coli発現系を用いてBHA10 scFvドメインの生物物理学的安定性、および熱的挑戦アッセイにおいてリガンドに対する熱的抵抗性のscFvドメインの結合を測定することによる安定性のモニターされた改良を改善するための努力を開始した。
BHA10 scFv生産細菌発現ベクターpIEH003を親ベクターとして利用した。製造業者の指示に従って、QuickChange部位−特異的突然変異誘発キット(Stratagene;La Jolla,CA)を用いて、2つのシステイン残基を導入し、1つはVHに、第二のものが、安定化ジスルフィド結合の形成に参画することができるVLに導入した。プライマー対VH44−FおよびVH44−R(表3)を用いて、BHA10可変重鎖の位置44(Kabatナンバリングシステム)におけるGly残基(GGA)をCys残基(TGC)に突然変異誘発した。突然変異誘発産物を、キットプロトコルに従って、メチル化感受性酵素DpnIで消化し、E.coli株XL10−GOLD(登録商標)(Stratagene;La Jolla,CA)に形質転換した。アンピシリン薬物耐性に形質転換されたE.coliコロニーを、DNA配列分析によって、正しい配列突然変異についてスクリーニングした。得られたプラスミドpIEH004を引き続いての反応のために利用して、プライマー対VL100−FおよびVL100−Rを用いてBHA10可変軽鎖の位置100(Kabatナンバリングシステム)におけるGln残基(CAG)をCys残基(TGC)に突然変異させた(表3)。順方向(VH44−F)および逆方向(VH44−R)プライマーは、VH位置44(下線を施した配列によって示されるTGC)においてGly(GGA)をCys(TGC)に突然変異させる。順方向(VL100−F)および逆方向(VL100−R)プライマーは、VL位置100(下線を施した配列によって示されるTGC)においてGln(CAG)をCys(TGC)に突然変異させる。
慣用的な(Gly4Ser)3リンカーを持つhuBHA10 scFvをコードするプラスミドpIEH003を、表4に記載されたオリゴヌクレオチドプライマーを用いるPCR増幅によって(Gly4Ser)4または(Gly4Ser)5リンカーを含有するように修飾した。
A.作製されたBHA10 scFvの発現およびウェスタンブロット分析
作製されたBHA10 scFvの発現のため、E.coli株W3110(ATCC,Manassas,Va.Cat.#27325)をプラスミドpIEH003、pXWU002、pXWU003およびpIEH006で形質転換し、アンピシリン耐性コロニーを選択し、50mlの円錐型遠心管中にて50μg/mlカルベニシリンを含有する10mlのSB培地(Teknova,Half Moon Bay,Ca.Cat.#S0140)中でOD600≒0.8まで成長させ、0.02%アラビノースを加えることによって誘導し、一晩培養した。細菌を遠心によって集め、ペレットを、50mM Tris−HCl、pH8.0、1mM EDTA、および20%スクロース(w/v)の1/20で容量の氷冷等浸透圧溶液に再懸濁させ、氷上で冷却した。2mg/ml Lysozyme(Sigma)を含有する、同等な容量の50mM Tris−HCl、pH8.0、1mM EDTA、および20%スクロース(w/v)を細菌懸濁液に加え、10分間場合により混同しつつ氷上でインキュベートした。細菌懸濁液を8000xg、4℃にて10分間遠心し、ペリプラズマ画分を保持した。
次いで、熱挑戦事象に続いてそれらの抗原結合活性をscFv分子の50%が保有する温度を決定するのに用いることができる熱挑戦アッセイにおいて、慣用的および作製されたBHA10 scFvの活性を比較した。この温度に対応する数値を「T50」値といい、単位は℃で表す。このアッセイにおいては、scFvを、慣用的なBHA10 scFvの熱転移温度を含む温度の範囲に付した。
等温滴定熱量測定(ITC)を用いて、BHA10 IgG1分子の酵素切断を用いて導かれたBHA10 Fabに対するsLTβRの親和性を測定した。sLTβRは従前に記載されているように調製した(Eldredge et al.,Biochemistry,(2006))。FabおよびsLTβRを、Amicon超遠心フィルターデバイス(MWCO 10,000)を用いて、各々、6.0および2.0mg/mLまで濃縮した。濃縮されたストック溶液は、ITC測定に先立って、PBSに対して同時に透析された。ITCは30℃に設定されたVP−ITCユニット(MicroCal LLC,Northampton,MA)で行った。ほぼ500μLの7μM sLTβR溶液を試料セルに入れ、PBS透析物を参照セルに入れた。合計234μLの70μM BHA10 Fabを、7x10μL、12x7μL、続いて、8x10μL注射にて試料セルに滴定した。反応の化学量論は1:1であった。製造業者によって供給されたOriginソフトウェアを用いてITC曲線を解析した。
示差走査型熱量測定(DSC)分析は、BHA10 scFv、BHA10(Gly4Ser)4scFv、およびBHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFv調製物で行った。実験は、それを4℃/分の走査速度で行う以外は、酵素的に生じさせたFabに対する慣用的なscFvの初期比較について前記したように行った。BHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFvは、野生型scFvと比較してすぐれた熱安定性特性を示した。特に、2つのドメインの内より安定でないもの、BHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFvのVHドメインは、慣用的BHA10 scFvのそれよりもほぼ5℃を超えて編成した(図9)。「融解温度」またはTMの増加は2つの別々の因子、(i)平衡折畳み状態の熱的安定性の増加、または(ii)凝集する減少した傾向のためであり得た。BHA10 scFvおよびBHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFvの〜5℃の温度差は、走査速度(0.2および4.0℃/分の間)から比較的独立しており、これは、観察されたTM変化が平衡折畳み状態の安定化によるものであることを示唆する。
疎水性蛍光色素1−アニリノ−8−ナフタリンスルホネート(ANS)に結合する能力は、しばしば、蛋白質の天然状態、あるいは温度での増加した処理に際して起こり得る部分的に折畳み解除された状態いずれかにおける有意に大きな疎水性領域との相互作用のホールマークである。該色素の固有の蛍光は溶液中で消光され、大きな疎水性表面積に曝露されると有意に増加する。慣用的VHA10 scFvは、BHA10(Gly4Ser)4scFv、またはBHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFvよりもかなり強いレベルでANSに固有に結合し、これは、疎水性暴露の存在が不適切なサイズのリンカーによってscFvに力を加えたことを示す。より長いリンカー、具体的には、(Gly4Ser)4の添加はこの効果を媒介するように見えた。慣用的なBHA10 scFvによる疎水性表面の見掛けの暴露は、他の蛋白質または分子の存在下における、あるいは単離におけるそれ自体の存在下においてでさえ、凝集の増大したレベルに導くことができる。そのTMを超えてのBHA10 scFvの加熱は、慣用的および作製されたBHA10 scFvに対するANS結合を誘導するように見えた。興味深いことには、慣用的BHA10 scFvは、上昇する温度の関数としてのANS結合の漸次増加を示し、これは、細菌および哺乳動物細胞培養で用いた温度(すなわち、37℃)のような、TM未満の温度での疎水性暴露の可能な増加を示唆する(図10)。対照的に、BHA10(Gly4Ser)4およびBHA10 VH44:VL100/(Gly4Ser)4scFvの双方はこの特性を呈さず、本発明で記載された安定化突然変異は、疎水性表面領域の低下した暴露に基づいて自己−会合、または他の細胞−培養蛋白質成分と会合する傾向を減少させることを示唆する。
改良された固有の蛋白質安定性を付与する安定化突然変異の同定
(i)安定化突然変異の同定
種々の配列−ベースの方法(例えば、コンセンサススコアリング、共変動分析、VH/VL界面相同性モデリング)を用いて、改良された蛋白質安定性を注目する結合分子に付与する安定化突然変異を同定した。これらの安定化突然変異は、抗体可変領域発現ライブラリーの設計および構築で用いた。
多数の設計を、単一配列内の2以上の残基によって呈される強力な共変動に基づいてBHA10 scFv VHおよびVLドメインを安定化させるために開発した。後記実施例17に記載されたのと同様な方法を用い、共変動解析をBHA10 scFv VHおよびVLドメインで行って、安定化突然変異が予測され、かつ実験的スクリーニングのために抗体可変領域発現ライブラリーに含まれるように、失われたまたは侵害共変動を同定した。
コンセンサススコアリングは、突然変異誘発のためのscFv VHおよびVL領域内のアミノ酸残基を同定して、scFvの固有の安定性を改良する方法として利用された。該スコアリングは、超体細胞突然変異および進化による生殖系の変動によるコンセンサスVHおよびVκ配列からの相対的ドリフトを評価する。次いで、この分析に由来する情報を用いて、改良された安定性を持つscFv変種についてスクリーニングするためのライブラリーを設計した。
後の実施例15に記載するように、示差走査型熱量測定分析を17のヒト抗体について行った。頂部候補、BIIB1−4は、全て、優れた(すなわち、非常に高いおよび所望の)安定性特性を有した。これらの高度に安定な抗体を、低い固有の安定性を持つscFvまたは抗体ドメインの安定性を改良するためのプラットフォームとして用いることができる。特に、安定性特性の潜在的により大きなレベルを供するためにVHおよびVLの間の界面を強調した。
計算方法を用いて、それにより、アミノ酸置換が安定性を改良するであろう位置に対する推奨を行うためにBHA10を分析した。これらの方法は2つの工程:配列−ベースの分析(工程1);および構造−ベースの分析(工程2)から構成されるものであった。第一の工程の間に、抗体の可変ドメインの配列のデータベースを用いた。(データベース配列の10%におけるもの未満の)それらの各位置において低い頻度で存在するアミノ酸、または対応するコンセンサスアミノ酸にマッチしなかったアミノ酸を、高−頻度またはコンセンサスアミノ酸に対する置換について選択した(候補突然変異)。第二の工程の間に、抗体のFab断片の三次元構造またはモデルを用いた。候補突然変異をそれらの構造の関係で評価し、構造特性、相補性決定領域(CDR)立体配座との適合性、VL/VH界面パッキングにおける役割、および重鎖および軽鎖の折畳みに基づく実験テストについて優先順位をつけた。
共変動解析を用いて、VHおよびVLの間の界面を供し、それを支持するのに、およびVH/VLの間の強い親和性を維持し、それにより、増加したscFv安定性をもたらすのに重要な残基ネットワークを決定した。BHA10 scFvのVHおよびVLの間の界面に直接的に関与する残基は実施例5Cに記載されたように同定し、前記表6にリストされる。前記表6にリストされた最も高度に埋もれた残基と共に強く共変動する残基は、前記セクションIII(a)に記載された共変動方法を用いて計算した。共変動解析で用いたHMMは、界面に埋もれたVHおよびVL双方のドメインのCDR2およびCDR3における残基を調査する能力を排除する。それにもかかわらず、これらの残基位置から強い共変動は生じないであろうと考えられる。というのは、それらは、高い親和性でもって抗原を認識することができる抗体について存在する強い選択圧によりかなり可変であるからである。従って、共変動ネットワークが、VHおよびVL双方の間の界面を支持するために共変動ネットワークが存在するか否かを決定するのに用いた残基は以下の通りであった:
*識別サブクラス特徴
**一次残基と同一の残基の多くと共に共変動するが、より弱い残基頻度のため相関レベルはより低い。
*Q50、A89、Y135は重鎖および軽鎖双方において保存されており、共変動は軽鎖位置と相関するように見えない。
ii)改良された熱安定性を持つBHA10 scFvライブラリーの構築およびスクリーニング
A)scFvライブラリーの構築
実施例4、5および6に記載された方法を用いて慣用的なBHA10 scFvにおいて所望のアミノ酸置換を含有するように設計されたライブラリー(pXWU002)は、表9にリストされたオリゴヌクレオチドを用いて製造業者(Stratagene,La Jolla,Ca)によって供された支持に従ってQuickChange II部位−特異的突然変異誘発キットを用いて作製された。慣用的なscFvのDNA配列を図1に示す。
次いで、慣用的なおよび作製されたBHA10 scFvsの活性を、熱挑戦事象後にscFv分子の50%がそれらの抗原結合活性を保有する温度を決定するのに用いることができる熱挑戦アッセイで比較した。この温度に対応する数値をT50値といい、単位は℃で表す。このアッセイにおいては、scFvを、慣用的なBHA10 scFvの熱転移温度を含む一定範囲の温度に付した。
表11は、慣用的なscFvに導入された種々の個々のおよび組み合わされた安定化突然変異の包括的な熱的安定性解析の結果を示す。これらの結果は、活性の改良が相加的であって、本発明に記載された方法が、天然Fabのそれを超えさえするscFvの熱的安定性特性を改良することができることを示す。位置VH44−VL100における共有ジスルフィド結合の不存在下においてさえ、組合せに際して、慣用的BHA10 scFvに対して+19℃ないし+33℃の範囲の熱的安定性の増加を呈した安定化突然変異が同定された。
安定化突然変異を含む安定化されたBHA10 scFvの生物物理学的特徴付け
表11にリストされた種々のプラスミドからのV領域遺伝子配列を修飾されたE.coli発現ベクターにサブクローンして、誘導性araCプロモーターの制御下にある組換え蛋白質発現を駆動した。変種BHA10 scFvを発現させ、前記した方法を用いて精製した。VLドメインのN−末端における見掛けの切断部位は、SDS−Page分析によって判断してほとんどのscFv調製物において低いレベルのVLに導いた(図53)。
において、ギブス−ヘルムホルツ方程式を非−線形曲線フィッティングルーチンへの取り込みによりANS蛍光を用いても誘導された。該方程式は:
まで拡大することができる。この方程式を用いて、蛍光強度が折畳まれたおよび折畳み解除されたscFvの存在下における固有のANS蛍光の総和:
であると仮定することによって、ANS蛍光強度の温度−依存性を誘導することができる。折畳まれた分率は、平衡折畳み解除定数および折畳み解除の自由エネルギーに関連する:
b全ての引き続いてのscFvは(G4S)*4 20アミノ酸リンカーで構築した。
c多重転移複雑化分析
dVH vs.VLを識別できず
まとめ
ライブラリースクリーニングから拾った全ての設計された単一突然変異:VHS16E、S16Q、V55G、P101D、およびVLS46Lは、VHドメインを有意に安定化させ、いくつかの例においては、同様にVLドメインを有意に安定化させた(図53)。安定化増強のためのこれらの位置のテストの背後の原理は、しばしば、分析の多数の形態に由来した。コンセンサス方法は、突然変異VHS16E、S16Q、V55G、P101D、およびVLS46Lの全てがBHA10 scFvを安定化させるであろうと予測した(実施例3)。しかしながら、VHV55GおよびP101D(ちなみに、2つの最も安定化性突然変異)は、各々、VHのCDR2およびCDR3内に位置し、これらの2つの位置における突然変異が安定化事象に導くことができることを示唆したさらなる予測的証拠が蓄積するまで、突然変異誘発については考慮されなかった。VHV55GおよびVLS46Lの双方もまた、共変動解析に基づいて安定化性であると予測された。最後に、VHP101DおよびVLS46Lは、高度に安定なヒト抗体の界面組成に基づいてVH/VL界面に対して潜在的に安定化性であると予測された(実施例3)。
安定化された二特異的「Hercules」抗体の生産
慣用的BHA10 scFvおよび本発明の安定化されたBHA10 scFvの双方を用いて、「Hercules」という二特異的抗体を構築した。Hercules二特異的抗体は、LTβRに結合するBHA10 scFvと共にTRAIL R2受容体に結合するキメラ14A2 IgG抗体の融合を含む。Hercules抗体はN−末端およびC−末端BHA10 scFv融合双方として組立てられた(図13参照)。N−末端scFv融合は、軽鎖および/または重鎖融合として作成することができる(各々、「NL−Hercules」または「NH−Hercules」)。いずれのアミノ末端V領域(重鎖または軽鎖)をscFvを接合させるのに選択するかに関する決定は、第一に、Fabドメインの第二の標的抗原への結合に認識可能に干渉できずして、いずれの鎖が第一の標的抗原を認識することができる融合されたscFvを許容すると考えられるかによって駆動される。
4つの抗−LTβR(BHA10)x抗−TRAIL R2(chi14A2)二特異的抗体の設計は、抗−TRAIL R2抗体重鎖のアミノ末端への慣用的および変種BHA10 scFvを付着させることに基づいた。実施例3に記載されたBHA10 scFv DNAを用いて、表14に記載されたオリゴヌクレオチドプライマーを用いるPCR増幅によってNH−Hercules二特異的抗体を構築した。(Gly4Ser)5リンカーを用いて、BHA10 scFvを、chi14A2重鎖成熟アミノ末端に連結させた。順方向5’VHPCRプライマー(scFvBHA10−F1)は、クローニングのためのMlu I制限エンドヌクレアーゼ部位(下線を施した配列)、続いての、重鎖シグナルペプチドの最後の3つのアミノ酸、およびBHA10 VHのアミノ末端をコードする配列を含む。逆方向3’PCRプライマーを用いて、BHA10 VLのカルボキシル末端、続いての、(Gly4Ser)5リンカーをコードする内部逆方向プライマーXWU005−R、およびクローニングのための部分的抗−TRAIL R2 VH領域およびBglII部位(下線を施した配列)をコードする逆方向プライマーscFvBHA10−R1を持つPCR産物を生じさせた。
4つの抗−LTβR(BHA10)x抗−TRAIL R2(chi14A2)二特異的抗体の設計は、慣用的および変種BHA10 scFvの抗−TRAIL R2抗体重鎖のカルボキシル末端への慣用的および変種BHA10 scFvの付着に基づくものであった。実施例3に記載されたBHA10 scFv DNAを用いて、表15に記載されたオリゴヌクレオチドプライマーを用いるPCR増幅によってC−Hercules二特異的抗体のパネルを構築した。Ser(Gly4Ser)3リンカーを用いて、BHA10 scFvを、chi14A2重差のカルボキシル末端へ連結させた。順方向5’VH PCRプライマー(XWU006−F1)は、クローニングのためのBamHI制限エンドヌクレアーゼ部位(下線を施した配列)、続いて、Ser(Gly4Ser)3リンカーペプチドの一部をコードする配列、およびBHA10 VHのアミノ末端を含む。逆方向3’VL PCRプライマー(XWU006−R1)はBHA10 scFv軽鎖の起点となり、クローニングのための停止コドン、続いての、BamHI部位(下線を施した配列)を含む。順方向5’内部重複PCRプライマー(XWU006−F2)は、(Gly4Ser)3リンカーをコードする配列を含み、太文字タイプで示されるサイレント突然変異を含有する。逆方向3’末端重複PCRプライマー(XWU006−R2)は、(Gly4Ser)3リンカーをコードする配列を含み、太文字タイプで示されるサイレント突然変異を含有して、BHA10 scFv(Gly4Ser)3リンカー領域に位置するBamH I部位を除去する。
プラスミドDNA pXWU005、pXWU026、pXWU027、pXWU028;およびpXWU006、pXWU034、pXWU035、およびpXWU036(表16)を用いて、抗体蛋白質の一過的生産のためにCHO DG44細胞を形質転換した。各20ugのプラスミドDNAを、0.4MLの1XPBSの用量中の4x106細胞と合わせた。混同物を0.4cmキュベット(BioRad)に加え、氷上に15分間置いた。細胞を、Gene Pulserエレクトロポレーター(BioRad)にて、600ufおよび350ボルトで電気泳動に付した。細胞を、T−25フラスコ中の100uMヒポキサンチンおよび16uMチミジンを含有するCHO−SSFM II培地に入れ、37°で4日間インキュベートした。
上清を、ELISAアッセイにおいて、組換えにより生産されたTRAIL R2およびLTβR受容体に対する個々の結合活性についてテストした。双方のアッセイにおいて、受容体をプレートに固定化し、テスト試料をインキュベートして受容体に対する結合を許した。結合した試料を標識された抗体で検出した。
プラスミドDNA pXWU027、pXWU028、およびpXWU006、pXWU035およびpXWU036(表16)を用いて、抗体蛋白質の安定な生産のためにDHFR−欠乏CHO DG44細胞を形質転換した。10%透析胎児ウシ血清(Invitrogen Corporation)を補足した2mMグルタミンを含有するアルファマイナスMEM培地中でトランスフェクトされた細胞を成長させ、蛍光標識抗体および反復蛍光−活性化細胞ソーティング(FACS)(Brezinsky,et al.,J.Immunol Methods.277(1−2):141−55(2003))を用いて安定なバルク培養プールとして豊富化させた。また、FACSを用いて、個々の細胞を生じさせた。細胞プールまたは細胞系を無血清条件に適合させ、抗体生産を測った。
CHO細胞における安定化された二特異的(Hercules)抗体の大規模生産
プラスミドDNA pXWU028およびpXWU036で安定にトランスフェクトされたDHFR−欠乏CHO細胞系(表16)をスクリーニングして、本発明の方法を用いて安定かされた高レベルの安定化されかつ適切に折畳まれたHercules分子を発現することができる単一細胞単離体について選択した。該細胞スクリーニング方法は、Brezinky et al.(Brezinky et al.,J.Immunol Meth(2003).277;141−155)の蛍光−活性化細胞ソーティング(FACS)分析を使用した。簡単に述べると、蛍光タグド抗−Hercules抗体を用いて、それらの表面にHercules抗体の一過性発現を呈するCHO細胞を標識した。次いで、細胞ソーター装置のゲーティングをそのシグニチャーに対して仕立てることによって、シグニチャー蛍光強度を呈する細胞を選択した。高レベルの生産性を呈する単一細胞を、それにより、選択し、安定なプロデューサー細胞系を確立するために無血清条件に適合させた。プロデューサー細胞系を、引き続いて、二特異的抗体蛋白質の生産および精製のためにスケールアップした。
二特異的「Hercules」抗体の生物学的活性
腫瘍細胞系WiDr、(ATCC CCL−218)ヒト結腸癌腫細胞系、Me180、(ATCC HTB 33)ヒト頸部上皮癌腫細胞系、およびMDA231、(Dr.Dajun Yang,University of Michigan)ヒト乳癌腫細胞系を、10%FCS、2mM L−グルタミン、1×非−必須アミノ酸0.5mMピルビン酸ナトリウム、およびペニシリン/ストレプトマイシンを含むMEM−Earles中で培養した。腫瘍培養系をPBSで1回濯ぎ、トリプシンでの消化によって細胞を放出させた。細胞を遠心によって集め、完全培地中に再懸濁させ、カウントし、96−ウェル組織培養プレートをWiDrおよびMe180について5000細胞/ウェルで蒔き、MDA231については1500細胞/ウェルで蒔いた。ヒトIFNγ(Biogen Idec,Corp)を細胞懸濁液に加えて、WiDrについては80U/mlおよびMe180については50U/mlの最終サイトカイン濃度が得られた。50μlの腫瘍細胞/IFNγ懸濁液を、完全培地中に調製されたテスト抗体の50μlの2×濃縮3倍系列希釈と混同した。テスト抗体の最終濃度は、典型的には、5000pMないし0.07pMの範囲であった。細胞を、5%CO2湿潤チャンバー中で37℃にて4日間(WiDr&Me180)または3日間(MDA231)成長させ、細胞死滅を、20μL/ウェルPromega CellTiter 96 AQueous One Solution Cell Proliferationアッセイ試薬(Promega Corporation,Madison,WI)の添加によって評価した。プレートを490nMにてマイクロタイタープレートリダーで読んだ(Spectromax Plus,Molecular Devices,Sunnyvale CA)。データを、Micro Soft Excel(Microsoft Inc,WA)を用いてグラフ化した。
二特異的「Hercules」抗体の安定性実験
2ないし8℃にて3ヶ月間貯蔵したN−およびC−末端二特異的抗体試料XWU028(BHA10 scFv VH44:VL100/(Gly4Ser)4 N−Hercules)およびXWU036(BHA10 scFv VH44:VL100/(Gly4Ser)4 C−Hercules)のリアルタイム安定性実験を行った。蛋白質の品質を(1)凝集、(2)沈殿、(3)ポリペプチド切断または蛋白質分解、および(4)脱アミド化または酸化のような翻訳後修飾について評価した。
蛋白質凝集または沈殿をインライン光散乱および屈折率ディテクター(各々、(Wyatt Techonologies,MiniDawn and rEX)に連結された分析サイズ排除クロマトグラフィー(SEC)を用いてモニターした。SEC/光散乱分析は、凝集、または沈殿を通じて起こるかもしれない物質喪失の証拠を示さなかった。XWU028、XWU036、およびBHA10についての初期T=0、および最終T=3ヶ月の時点のSEC溶出プロフィールはほとんど同一であった(各々図56A、56B、および56C)。XWU028およびXWU036試料は、共に、実験の完了までに〜1%凝集物質を蓄積し;しかしながら、これらの凝集体の検出はこの方法で決定された検出の下方限界近かった(表17)。凝集体形成は蛋白質濃度と独立していた。光散乱検出を用いて決定された分子質量に基づき、テスト試料中の低レベルの凝集体は、ダイマーに変換されるモノマー種の産物のようである可能性がある。二特異的抗体試料XWU028またはXWU036のいずれも検出可能なレベルも高次凝集体を蓄積しなかったが、このタイプの凝集体はこれらの方法を用いて容易に観察されていた。BHA10抗体は、実験の3ヶ月の経過に渡って凝集体の増加を示さなかった(表17)。
SDS−PAGEおよび液体クロマトグラフィー/質量分析(LC/MS)無傷質量分析(エレクトロスプレイ界面を介してAgilent 1100 LCシステムにカップリングされた(Agilent LC/MSD TOF)を用いて蛋白質分解をモニターした。SDS−PAGE分析については、5ugの蛋白質をレーンあたりに負荷した。還元された試料を、5%β―メルカプトエタノールを含有する1×Trisグリシン試料緩衝液中で調製した。XWU028およびXWU036は、非−還元および還元SDS−PAGE分析によって決定して、2ないし8℃の3ヶ月間貯蔵期間に渡って蛋白質分解の証拠を示さなかった(図57AおよびB)。同様に、XWU028およびXWU036は、LC/MS分析によって決定して2ないし8℃の3ヶ月貯蔵期間に渡るより低い分子量の蛋白質分解産物の証拠を示さなかった(図58)。
二特異的「Hercules」抗体のイン・ビボファルマコキネティック活性および血清中安定性
リン酸−干渉化生理食塩水PBS中に希釈された10mg/kg(1mg/ml)のN−末端Hercules(XWU028)またはC−末端Hercules(XWU036)の単一ボーラス注射を雄CB17−SCIDマウスに腹腔内投与した。各二特異的抗体について、時点当たり3匹のマウスを用いて、マウスを注射から0、0.5、6、24、48、72、96、168、240および336時間後に犠牲にした。血清中試料をELISAアッセイによる分析のために調製して、二特異的抗体のレベルを定量した。ELISAプレートをヤギ−抗−ヒトIgGで被覆し、PBS/1%BSAでブロックし、二特異的抗体を含有する血清の希釈物でPBS/1%BSAに系列的に希釈し、プレートに加え、インキュベートした。区画された抗体をヤギ−抗−ヒトカッパー鎖−HRP−連結抗体で検出した。ファルマコキネティック実験の結果を表18に示す。N−末端Hercules(XWU028)は10.3日の排除半減期(t1/2)を有し、ピーク血清中濃度は75.67μg/mlであった。C−末端Hercules(XWU036)は15.1日のより長い排除半減期(t1/2)を有し、ピーク血清中濃度は105.67μg/mlであった。双方の分子は、同様な分布の容量(Vd)を有したが、これらの値は生物学的利用性のために調整しなかった。
二特異的「Hercules」抗体のイン・ビボ生物学的活性
(A)結腸癌腫瘍モデルにおける二特異的「Hercules」抗体のイン・ビボ生物学的活性
WiDrヒト結腸癌腫マウス当たり2×10E6細胞)細胞を、125匹の無胸腺ヌードマウスに皮下移植した。腫瘍をそれがほぼ100mgに到達するまで成長させ、その時点において、合計70匹のマウスを実験のために選択し、10匹のマウスの7つの群に分割した。IP処理を投与し、以下のように移植後13日に開始した:群1=パイロジェンフリーPBS;群2=CBE11、2mg/kg、1×/wk;群3=hBHA10、2mg/kg、2×/wk;群4=ch14A2、2mg/kg、2×/wk;群5=Hercules−II XWU028、2mg/kg、1×/wk;群6=Hercules−II XWU036、2mg/kg、1×/wk;群7=hBHA10+ch14A2、各々1mg/kg、2×/wk。腫瘍のサイズおよび体重を毎2週間記録した。ビークル群の平均腫瘍サイズがほぼ2000mgに到達した場合に実験を停止した。腫瘍容量は式:(L×W2/2)を用いて計算したXWU0028およびXWU036で処理したマウスの暫定的分析はPBSビークル対照と比較して双方の二特異的抗体について有意な抗−腫瘍活性(p<0.001)を示した(図60)。
MDA−MB−231ヒト乳癌腫細胞を、135匹の無胸腺ヌードマウス(マウスあたり2×10E6細胞)を皮下移植した。腫瘍を13日まで成長させ、その時点で、ほぼ168mgの平均サイズを持つ75匹の腫瘍−担持マウスに処理(N=10)およびビークル対照(N=15)群に割り当てた。マウスは13日に出発して抗体およびビークルIPを受けた。例示的な群を以下に示す:群1=パイロジェンフリーPBS;1×/wk;群2=hBHA10、2mg/kg、2×/wk;群3=ch14A2、2mg/kg、2×/wk;群4=Hercules−II XWU036、2mg/kg、2×/wk;群3=ch14A2、2mg/kg、2×/wk;群4=Hercules−II XWU036、2mg/kg、1×/wk;群5=hBHA10+ch14A2、各々1mg/kg、2×/wk。腫瘍のサイズおよび体重は毎2週間ごとに記録した。ビークル群の平均腫瘍サイズがほぼ2800mgに到達した場合に、実験を停止した。式:(LxW2/2)を用いて腫瘍容量を計算した。XWU036は、hBHA10またはch14A2 mAbでの単一処理いずれかと、あるいは2つの抗体の混合物での処理と比較して、統計学的に有意な(p<0.001)抗−腫瘍活性を示した。重要なことには、二特異的抗体XWU036は、週投与スケジュールあたり1回でイン・ビボ投与される良好な抗−腫瘍活性を示し、これは、本発明に記載された安定性増強の結果、生理学的条件下で改良された抗体特性および物理学的安定性をもたらすことを示唆する(図86参照)。
非−共有結合安定化性scFv突然変異を含有する安定化された二特異的「Hercules」抗体の生産
単独で、およびVH44:VL100ジスルフィド結合と組合せて非−共有結合安定化性突然変異を含有する本発明のBHA10 scFvを用いて、TRAIL R2受容体に結合するキメラ14A2 IgG抗体と、LTβRに結合するBHA10 scFvとの融合を含む安定化された二特異的C−Hercules抗体を構築した。二特異的抗体は、実施例7に実質的に記載された方法を用いてC−末端BHA10 scFv融合として構築した。
PCRを用いて、表19に記載されたオリゴヌクレオチドプライマーを用い、各々、BHA10 VHS16E+VLS46LおよびVH44−VL100/VHS16E+VLS46L scFVを含有する、プラスミドDNA pIEH−050(高発現プラスミドpIEH076の親プラスミド)およびpIEH−052(高発現プラスミドpIEH080の親プラスミド)からの変種BHA10 scFv遺伝子断片を増幅した。変種BHA10 scFv遺伝子断片をゲル単離した。プラスミドpIEH−050およびpIEH−052のリンカー領域中のBamHI部位のため、遺伝子断片をpPuMIおよびKpnI制限エンドヌクレアーゼで消化し、同一制限エンドヌクレアーゼで消化された修飾されたプラスミドpN5KG1に連結し、その結果、16アミノ酸Ser(Gly4Ser)3リンカーを介する抗−TRAILR2(14A2)抗体CH3ドメインのカルボキシル末端への安定化された抗−LTBR(BHA10)scFvの融合産物がもたらされた。正しい配列はDNA配列分析によって確認した。
プラスミドDNA pXWU054およびpXWU055で安定にトランスフェクトされ、かつ無血清条件に適合されたDHFR−欠乏CHO細胞系を、二特異的抗体蛋白質の生産について測定し、実施例8に記載されたように蛋白質を精製した。安定化されたVHS16E+VLS46L BHA10 scFvを備えたC−Hercules、および安定化されたVH44−VL100/VHS16E+VLS46L BHA10 scFvを備えたC−二特異的抗体を含有する上清からのプロテインA溶出物を、分析サイズ排除クロマトグラフィーによって凝集体の存在について調べた(図65)。慣用的BHA10 scFvを含有するC−Herculesのクロマトグラムプロフィールは〜40%凝集体を示した。対象的に、安定化されたVHS16E+VLS46L BHA10 scFvを備えたC−末端Herculesは、標準IgGで観察されたのに匹敵するレベルまで凝集体を有意に低下させた。
非−共有結合安定化scFv突然変異を含有する二特異的「Hercules」抗体の生物学的活性
VHS16E+VLS46L BHA10 scFvを備えたC−末端Hercules(XWU054)およびVH44−VL100/VHS16E+VLS46L BHA10 scFvを備えたC−末端Hercules(XWU055)のイン・ビトロ生物学的活性を、実施例7に記載されたように、腫瘍細胞増殖アッセイでテストした。
観察されたのと匹敵するWIDr細胞の増強された腫瘍細胞殺傷を示した。図68Aは、14A2 IgGおよびBHA10 IgG抗体の双方は、単一剤として、ならびに組合せて用いた場合に、MDA231腫瘍細胞の成長を阻害するにおいて無視できる活性を有した。対称的に二特異的Hercules抗体(XWU054およびXWU055)は、実施例10に記載されたXWU036分子/VH44−VL100/(Gly4Ser)4リンカー安定化BHA10 scFVを備えたC−末端Hercules/観察されたのと匹敵するMDA231細胞の増強された腫瘍殺傷を示した。
ヒトまたはヒト化抗体配列の熱安定性を測定するための示差走査型熱量測定
(DSC)の利用
抗体の見掛け安定性の範囲を評価するために示差走査型熱量測定(DSC)を17のヒトまたはヒト化BIIB抗体の組で行った。
最適下安定性を持つ抗体可変領域を同定するためのコンセンサススコアリングの利用
コンセンサススコアリングは、BIIB抗体のいずれがそれらのFv領域内で非常に多数の非−最適アミノ酸を有意に含有したかを同定するための方法として利用した。該スコアリングは、過剰体細胞突然変異および進化的生殖系変動によるコンセンサスVHおよびVK 配列からの相対的なドリフトを評価する。17の抗体についてのDSC測定を用いて、貧弱な抗体安定性を予測するコンセンサススコアリングアプローチの能力を定量した。
を用いて各ヒトVHおよびVκテスト配列について計算した。哺乳動物データベースのコンセンサス配列についての完全なコンセンサススコアはVHについては104であって、Vκについては100であった。
VHおよびVκサブクラスコンセンサス配列を哺乳動物データベースコンセンサスに対してスコア取りし、各々、図71Aおよび71Cにおいてプロットした。VH3−サブクラスコンセンサスは哺乳動物データベースコンセンサスの仮定「完全」スコアよりも低い1ポイントのみをスコア取りし、合計3つの残基だけ哺乳動物データベースコンセンサスから異なった。かくして、哺乳動物データベースはVH3−様配列に向けて偏っていることは明らかである。全ての他のヒトVHサブクラスコンセンサス配列はかなり低いスコアであった。Vκ4配列に向けての偏りは、哺乳動物Vκデータベースで観察された(図71C)。ヒトまたはヒト化BIIB配列スコアは、匹敵するサブクラスのヒトNCBI配列の性能に基づいて分析した。個々のVH配列スコアの分布を図71Bに示し、個々のVκ配列スコアの分布を図71Dに示す。
全ての18のBIIB抗体についてのVHおよびVκスコアを計算し、NCBIヒトV−遺伝子配列参照組に由来する相対数と比較した(表20)。また、BIIB V−遺伝子スコアおよび平均サブクラススコアの間の差も表20に含める。潜在的安定性傾向を調べるために用いたのはこれらのスコアの間の差である。BIIB1ないし18を、それらの測定したFab安定性の下がる順に記した。V−遺伝子サブクラス、およびBIIB VHおよびVκ遺伝子についての最も近い個々のヒト生殖系をClustalW分析によって決定した。
VH配列の哺乳動物データベースに対するBIIB VHドメインのスコアリングは、Fabの全安定性を制限し得る各VHドメイン内の非−最適アミノ酸の豊富性を決定するための有用なツールであることが判明した。スコアは、低い安定性、ならびに低下したイン・ビトロ長寿および増大した凝集速度の潜在能力を持つFabを拾い出すのに有用であった。哺乳動物をV−遺伝子データベースで観察されたサブクラス偏りに基づき、本明細書中で用いた哺乳動物データベースとは反対にコンセンサススコアリングを行うための厳格にヒトのV−遺伝子データベースを用いるのは最良であるか否かの疑問があろう。しかしながら、非−コンセンサスアミノ酸の正確な残基1、VH/VL相互作用の強さ、V−(D−)J−C接合の性質、および過剰体細胞挿入または欠失の発生率のような、スコアリングが反映しない変数を決定する有意な数の安定性に基づき、全てのヒトVHデータベースが有意な改良を供すると考えるのは困難である。スコアリングで用いる厳格にヒトのデータベースもまた、哺乳動物データベース内にナイーブに含まれた進化的多様性にマッチするのに有意により大きな数の配列を必要とするであろう。哺乳動物データベースアプローチがよく働くことを示すデータの一つのピースは、ヒトサブクラスコンセンサスVH配列が、それらのゲノムサブクラスの豊富性および見掛けのサブクラス用法の上昇する順番のスコアとなったことである(Guigou et al.,1990;Teale and Medina,1992;Tomlinson et al.,1992)。哺乳動物VHデータベースは、ヒトVHサブクラスの全寄与を適切に重み付けするように見える。各VHおよびVκサブクラスコンセンサス配列は一般にはNCBIから拾った個々のかつユニークなヒト配列のほとんど大部分よりも高いスコアであったという事実は、偏りがVH3に向けて存在するのに拘わらず、哺乳動物データベースが全てのサブクラスについてコンセンサス情報を捕獲していることを示唆する。従って、スコアリングが取り込まない他の安定性に影響する因子の存在のため、図72Aで観察された傾向は、スコアリングで用いるVH配列データベースの微妙なチューニングによって改良されないようである。
18の抗体の多くは、そのCDRおよび過剰体細胞突然変異が変化し、そのVHまたはVK対合が同一または異なる重複生殖系V−遺伝子を含有した。これは、それらが由来する個々の生殖系に対して抗体Fab安定性を比較することを可能とした。2つの最も安定なFab、BIIB1およびBIIB2は、同一のVH1およびVκ1生殖系組合せを有する。VHおよびVκ対合は、Winterおよび共同研究者による研究に基づいて明らかな固有の偏りを有するようには見えないが、「受容体駆動」されると考えられる(de Wildt et al.,1999b)。BIIB1およびBIIB2は比較的似ていない抗原CCL2およびVLA4に結合し;従って、組合せはランダムに起こったか、またはヒト化の結果であった。最も安定でないFab、BIIB17およびBII8(すなわち、低い配列スコア;BIIB18は異常な挿入を含んだ)のVHドメイン内に非−最適アミノ酸の明瞭な豊富性は無かった。これらの抗体の双方は、同一のVκ2に生殖系をやはり含有し、これは、スコアリングによって同定されたVH−ベースの論点の頂部にある軽鎖蛋白質安定性の論点を潜在的に示唆する。興味がある将来の研究は、この特定のVκ2がこれらの2つの抗体の貧弱な生物物理学的挙動に対して寄与するものであるか否かを決定することであろう。Vκ2サブクラスは、一般には、貧弱なFab安定性と関連しなかった。というのは、BIIB3およびBIIB4はやはりVκ2サブクラス遺伝子を含有するからである。AB019438VH1生殖系(Lefranc et al.,1999)は4回まで収穫された。これらのFab(BIIB12,BIIB11,BIIB7およびBIIB3)についてのTM−値は71.2ないし78.2の範囲であった。興味深いことには、それらのVH配列スコアはそれらの見掛けのFab安定性に相関した(BIIB12<BIIB11<BIIB7〜BIIB3)。正VHスコアリング相関もまた、同一VH1生殖系について前記したBIIB1およびBIIB2抗体で見出された。しかしながら、VHスコアリングの見掛けの不正確性は、共にM99649VH3生殖系を含有したBIIB4およびBIIB6で観察された負の安定性相関によって強調された。
Ig−折畳みポリペプチドの共変動解析
A.Ig―折畳み構造の収集および濾過
哺乳動物蛋白質からのIg−折畳み蛋白質またはIg−折畳みドメインの構造は、SCOPヒエラルヒーにマッチするドメイン構造を含有するASTRALデータベースから集めた。免疫グロブリン特異的Ig−ドメインはSCOPヒエラルヒー内の以下の分類の下で見出された:「全てのベータ蛋白質」→「免疫グロブリン―様ベータ―サンドイッチ」→「免疫グロブリン」。免疫グロブリンの下では、構造の4つの組が入手可能であった:「V組」、「C1組」、「C2組」、および「I組」。4つの慣用的なダウンロードスクリプトを別々に行って、「V−クラス」、「C1−クラス」、「I−クラス」、および「C2−クラス」pdbファイルを得た。
工程#1 切断を有する配列の除去
各サブクラスからの構造を、配列中の切断(分解されない密度、またはドメイン交換による失われたセクションいずれか)について、SwissPDB Viewerを用いて肉眼で精査した。誤った構造のPDBファイルをV−、C1−、C2−、およびI−クラス構造データ組から手動で除去した。
PDB様式構造をFASTA様式アミノ酸配列に変換し、濾過して、残りの配列に100%同一であるか、またはその完全なマッチサブストリングであるかのいずれかであるいずれの配列も除去した。
異常に長いまたは短いアミノ酸配列を持つPDB構造を構造データ組から除去した。長さのカットオフ基準は、全ての配列の長さのヒストグラムを調べることによって決定した(図74)。該ヒストグラムは幾分正規分布したように見えた。平均から2標準偏差の外側にある配列を各サブファミリーデータ組から除去した。免疫グロブリンスーパーファミリーについての残基の全平均数は106.10であって、標準偏差は12.19であった。その結果、用いた全体的カットオフは<=81および>=131残基であった。平均長さおよび標準偏差の内訳を表21に示す。
SwissPDB Viewerを用い、構造を誤った折畳みについて肉眼で精査した。2つのベータ―シートサンドイッチトポロジーに適合しないいずれの構造も捨てた。5つのC2−クラスドメインのみがSCOPから得られたので、C2−サブクラスIg−折畳みは更には追求しなかった。以後、C1−クラスをC−クラスをいう。
各別々のクラスについて、Schrodingerのstructalignパッケージ(重ね合わせの創生についての指示に関するSchrodinger Primeプログラム書類参照)内の二次構造マッチング(SSM)を用いて、Ig−折畳み構造を相互に重ね合わせた。重ね合わせは、「全部―対―全部」または「全部―対−一つ」に基づいて行った。各アリゴリズムは同様な品質の整列に導き、従って、重ね合わせのために「全部―対―一つ」を選択した。幾らかの重ね合わせを修正して、各構造のコア領域がループの代わりに重ね合わせられていることを確実とした。次いで、重ね合わせを用いて、各構造整列内の全てのV−クラス、I−クラス、およびC−クラス配列の構造―ベースの配列整列を作り出した。相互への各配列の整列は、ポリペプチド骨格のα―炭素の間の最も短い距離に基づいて第二の配列のそれに対して1つの配列からのアミノ酸をマッチングさせることによってSchrodingerパッケージを用いて行った。
多数の規定された工程を作り出して、頑強な共変動統計学を計算するためのキュレーションされたIg−折畳みデータ組を生じさせた。
3つの隠されたマルコフモデル(Hidden Markov Model)(HMM)プロフィールを形成し、各々は、3つのIg−折畳みクラスの内の1つについての構造―ベースの配列整列に基づくものであった。標準オプションでのコマンド「hmmbuild」および「hmmcalibrate」を用い、プロフィールをHMMERソフトウェアパッケージ(バージョン1.8)で作り出した。次いで、これらのHMMを用いて、NCBIにおいて維持されたNR−データベース中の更なるIg−折畳み配列を検出し、整列させた。
3つのクラス―特異的HMMを用いて、局所的NRデータベース中の同様な配列についてサーチした。NRデータベースは〜300万の非−冗長蛋白質配列を含有する大きなファイルである。V−、I−、およびC−クラスHMMの各々について、HMMERコマンド「hmmsearch」を用いて、NRをサーチした。各出力を用いたHMMに対するそれらのスコアによってNR配列をランク付けし、HMMによる領域ヒトの数、および各NR配列内のヒト領域の位置についての情報を供した。各Ig−折畳みクラス―特異的HMMサーチについて、推奨される基準スコア閾値を超えるヒトNR配列は、そのHMMを用いたIg−折畳みクラスの候補メンバーとして保持した。NR配列のサブ配列であるヒト領域については、正確なNRサブ配列ヒトは、カスタムプログラムを用いて全NR配列から抽出した。
PFAMは、個々の蛋白質配列に適用することができる、Welcome Trust Sanger Institute(Fin,et al.,Nuc.Acids.Res.,(2006),34:D247−D251)において作り出され、維持されている蛋白質ファミリーおよびドメイン分類ツールである。Pfamツール「pfamverify」を、前記工程2で得られた各Ig−折畳み候補配列に適用して、それが、構造―ベースの配列整列から作り出されたIg−折畳みクラス―特異的HMMによって正しく分類されたことを確認した。(V−、I−、C1−、C2−、およびより特異的でないIg HMMを含めた)PFAMのIg−clan HMMプロファイルをPFAMウェブサイトからダウンロードした。NRからの各配列をIg−clan HMMによってスコア取りし、どれくらいよく各配列が各PFAM HMMに適合するかを明らかにした。そのスコアがV−、I−、またはC−クラスについて推奨されたカットオフ(PFAMウェブサイトにおいて定義されたTC1)未満である配列は、各配列組から除去した。かくして、工程2において見出された候補クラス―特異的Ig−折畳み配列は、もしそれらのPFAMスコアがそれらのIg−折畳みクラス割り当てを確証した場合にのみ保持された。
HMMサーチにてNRから引っ張り出された、および前記工程3で残ったIg−折畳み配列を、次に、それらの割り当てられたクラスの我々のカスタムHMMに対して整列させた。これらのHMMは注意深い構造割り当てに基づいていたので、このプロセスは新しい配列の構造がガイドする整列を保証した。HMMERパッケージを利用して、後に記載する配列共変動ツールで用いるべきfasta出力様式の「mapali」整列を生じさせた。該整列は「Stockholm」出力様式における出力でもあり、手動で省略した異常なまたは誤って整列した配列について精査した。元来の構造的に整列した配列およびNRからの加えられたHMM−整列配列よりなる群から選択される得られた整列は、以下の数の配列を含有した:〜50,000のV−クラス;〜10,000のC−クラス;〜10,000のI−クラス。
我々は、これらの整列は、稀な配列の過少表示および、結果としての配列多様性のマスキングを伴って、頻繁に観察される配列に対して偏っていると予測した。例えば、我々はネズミおよびヒト免疫グロブリン可変ドメインに対するV−クラスIg−折畳み配列整列における大きな偏りを予測した。特定の配列タイプの過剰表示は共変動解析の有用性を制限するので、濾過ツールを作り出し、これを適用して、整列冗長性を低下させた。該ツールは新規な問題解決アルゴリズムを用いて、相互に>80%同一性を持つ配列を見出し、整列からそれらを除去した。簡単に述べると、パーセント同一性を全ての配列対について計算した。次いで、同一性値をパーセント同一性のビンにグループ分けした(すなわち、99%ビン、98%ビン、97%ビン等)。各ビンの低下の間に、非−ギャップ残基カウントを減少させることによって、次いで、それらのHenikoff配列重み(Henikoff S and Henikoff JG,J.Mol.Biol.,(1994),243:184−199)によって、各ビンの配列をランク付けした。この工程の後、各整列における配列の残りの数は:2,786のV−クラス;1,587のI−クラス;および518のC−クラスであった。
最終整列において、これらの配列を見出すのに用いたHMMプロファイルにおける状態にマッチしなかった行(HMMERマニュアル参照)を除去した。従って、配列のうち多くは最終整列長さよりも多くのアミノ酸を含有するが、長さは、整列のより情報的でないギャップ領域での計算を回避するために切形された。整列内の(ギャップを含めた)残基の最終数は、V−クラスについては144、I−クラスについては60、およびC−クラスについては111であった。
a)V―クラス
最終80%フィルターを適用した後、2,786のV−クラス配列は3つのカテゴリーに分割できた:(1)多様な免疫グロブリンのVHおよびVLドメイン双方を含む免疫グロブリン可変遺伝子クラス、49%;(2)超可変ドメインを含有したT−細胞受容体V−クラス遺伝子、16%;および(3)他のV−クラス遺伝子、35%。免疫グロブリンV−クラス遺伝子は、軟骨魚から霊長類までの範囲の非常に種々の種に由来する。ヒトV−クラス配列に対して偏りがあった(1272配列の内537)しかしながら、他の脊椎動物種は最小に表されたに過ぎなかった:マウス(33)、ウシ(5)、ラクダ(23)、リャマ(31)、マカクザル(17)、ニワトリ(6)など。配列のT−細胞受容体は魚類から霊長類までの範囲までほとんど多様なものであり、ヒト配列に対する偏りは含有しなかった。「他の」カテゴリーは、非常に多数の多様な配列からなり、残りの配列の1ないし2%を超えて含む現実のサブカテゴリーはなかった。「他の」カテゴリーは、(主として、脊索動物、軟骨魚類、頭足動物、および昆虫を含めたより広い種のアレイさえ含有した。
最終80%フィルターを適用した後、518のC−クラス配列は3つのカテゴリーに分割することができた:(1)免疫グロブリン定常ドメイン、44%;(2)MHC−タイプのIg−折畳み、21%;および(3)他のC−クラスのIg−折畳み、35%。免疫グロブリン定常ドメインカテゴリーは、軟骨魚類から霊長類までの範囲の多様な配列を含有した。C−クラスの免疫グロブリンサブカテゴリーは、霊長類または哺乳動物配列さえによって偏らなかった(3つのヒト配列のみが濾過されないままであった:IgE−CH4、カッパCL、およびラムダCL)。また、MHCサブカテゴリーは軟骨魚類から霊長類までの範囲であり、また、1つの進化群に対してほとんど偏りは示さなかった。「他の」C−クラスカテゴリーは多くの未知の蛋白質、種々のベータ―2−ミクログロブリンの非常に小さなサブカテゴリー、およびサブカテゴリーの価値がある頻度でもって観察されなかった多くの他の蛋白質を含有した。
I―クラスはいずれかの明瞭なサブカテゴリーを有しなかった。巨大または巨大―様分子は、細胞―接着または細胞―接着―様分子がそうであったのと共通して収穫された。
整列におけるアミノ酸の全ての可能な対の間の共変動の(φ―値で表した)相関強度および(χ2−値で表した)有意性は、当該分野で認められた方法に基づいて計算したが、以下の変動を含むものであった:(1)ギャップは区別される残基タイプとして含まれ;(2)Henikoff重み付けスキームは行わなかった;(3)配列平均同一性(SAI)を用いて、共変動対を濾過しなかった;(4)χ2値は頻度よりはむしろ事象ベースのカウント(出現の数)を用いて計算した;および(5)共変動対は、それらが最少数の回数観察されたのでなければ、プログラムによって報告しなかった。統計学の二つのボディを作成し、最初のもの(およびより小さな組)は10の事象カットオフを持ち、第二のもの(かなり大きな組)は6事象の事象カットオフを持つものであった。いずれかの与えられた配列整列についてのこれらのパラメーターを計算する能力は実行可能なJava(登録商標)にコード化され、Java(登録商標) Runtime Engine JRE)バージョン1.4.2でテストした。
Ig―折畳みデータベースから由来する強い共変動が有意であって、計算に基づく統計学的強さから離れて意味があることを確証するのに用いたいくつかの基準があった。第一のものは、相互に共変動する残基、および既知の構造のIg−折畳み内部のそれらの近接性の間に傾向があるか否かを分析するものであった。文献中の従前の研究は、我々の結果と合致して、共変動する位置および相互に対するそれらの近接性の間に相関が存在するが、それらは非常に弱いことを示している。第二の基準は、既知のIg−折畳みサブセット内に存在することが既に報告されているアミノ酸位置の間において、Ig―折畳み共変動計算が既知の関係を生じたか否かを見るものであった。1つの明らかなテストケースは、ヒト/ネズミIgG可変重鎖折畳み(V−クラスの一部)のN−末端におけるものであった。残基6ないし10は、アミノ酸の共変動対の保存に基づく非常に特異的な確認を採用することが知られている(Ewert S,et al.,Methods,(2004),24:184−199)。共変動アミノ酸の3つの報告された対のうち2つは、データ組の見掛けのバックグラウンドを十分に超える、約0.3を超えるφ値を有することが判明した。
慣用的p5E8 scFvを含むPRIMATIZED(登録商標)P5E8価抗体の調製。
PRIMATIZED(登録商標)p5E8 scFvおよびFab蛋白質の調製
双方の向き(VL→(Gly4Ser)3リンカー→VH(VL/VH)およびVH→(Gly4Ser)3リンカー→VL(VH/VL))のPRIMATIZED(登録商標)p5E8 scFvは、米国特許出願20050163782に記載されたプラスミドからPCR増幅によってサブクローンされた。構築で用いたオリゴヌクレオチドは表22に示す。
慣用的なp5E8 scFv抗体の熱安定性
実施例4および5に記載された熱挑戦アッセイを用いて得られたT50値、およびDSC分析(r2=0.93)によって計算されたTm値の間で、優れた相関が観察されたので、熱挑戦アッセイを使用して、p5E8(VL/VH)およびp5E8(VH/VL)scFVの相対的熱安定性を評価した。1ug/mlの可溶性CD23抗原を用いて、プレートをコーティングし、Eu−標識抗―6His抗体(Perkin Elmer,Boston,MA.Cat.#AD0109)の濃度を250ng/mlまで増加させる以外は、実施例4および5に記載されたように、熱挑戦アッセイを利用した。このアッセイからの結果は、p5E8(VL/VH)のT50値を38℃であると、およびp5E8(VH/VL)が34℃よりもわずかに低いと決定した(図85)。双方のscFvの顕著に低いT50値、および2つのp5E8(VL/VH)がわずかにより熱的に安定であるという観察を仮定して、p5E8(VL/VH)を更なる安定性エンジニアリングのために選択した。
改良された熱的安定性を持つp5E8 scFv分子の構築
実施例3および5に記載された方法を用いる慣用的p5E8(VH/VL)scFvにおける所望のアミノ酸置換を含有するように設計された個々の変種およびライブラリーは、表23にリストされたオリゴヌクレオチドを用いて従前に記載されたように作成した。
(T50>38℃)がもたらされた。特に、p5E8ライブラリー位置VH6(E6Q)、ライブラリー位置VH49(S49GおよびS49A)、ライブラリー位置VH43(Q43K)、ライブラリー位置VH72(E72DおよびE72N)、およびライブラリー位置VH79(F79S)のT50値は、慣用的なp5E8 scFvに対して+4℃ないし+5℃の範囲の熱安定性の増加を呈した。p5E8ライブラリー位置VL50(V50DおよびV50S)、ライブラリー位置VL75(V75I)、ライブラリー位置VL80(P80S)、およびライブラリー位置VL83(F83A、F83G、F83SおよびF83T)のT50値は、慣用的なp5E8 scFvに対して+3℃ないし+7℃の範囲の熱安定性の増加を呈した。
実施例21に記載されたp5E8 scFv DNAを用いて、前記実施例7に記載されたのと同様なNH−p5E8四価抗体を構築する。(Gly4Ser)5リンカーを用いて、p5E8 scFvをPRIMATIZED(登録商標)p5E8 IgG重鎖の成熟アミノ末端に連結させる。該分子の組織化はp5E8 scFv−(Gly4Ser)5リンカー−PRIMATIZED(登録商標)p5E8 IgG重鎖である。この分子は軽鎖と共に組立てられて、四価抗体を形成する。正しい配列はDNA配列解析によって確認されるであろう。該構築体は、NH−p5E8四価抗体の大規模生産のために、実施例8に記載されたようにCHO細胞をトランスフェクトするのに用いることができよう。トランスフェクトされたCHO細胞は、DELFIAアッセイによって、固定化されたCD23抗原への結合についてスクリーニングすることができる。96−ウェルプレート。例えば、(MaxiSorp,Nalge Nunc,Rochester,NY,Cat.#437111)は、0.1M炭酸ナトリウム緩衝液、pH9.5中の1ug/mlにおいて可溶性CD23抗原でコーティングすることができる。プレートは4℃にて一晩コーティングし、室温にて震盪しつつ、DELFIAアッセイ緩衝液(DAB,10mM Tris HCl,150mM NaCl,20mM EDTA,0.5% BSA,0.02% Tween 20,0.01% NaN3,pH 7.4)で1時間ブロックする。プレートはBSA(洗浄緩衝液)なくしてDABで3回洗浄し、DABに希釈されたテスト試料を、100ulの最終容量にてプレートに加える。室温にて振盪しつつ、プレートを1時間インキュべートし、次いで、洗浄緩衝液で3回洗浄して、未結合物質を除去する。結合された抗体は、250ng/mlのEu−標識ヒト抗体(Perkin Elmer,Boston,MA,Cat.#1244−330)を含有するDABのウェル当たり100μg添加によって検出し、振盪しつつ室温にて1時間インキュベートする。プレートを洗浄緩衝液で3回洗浄し、および100ulのDELFIA増強溶液(Perkin Elmer,Boston,MA,Cat.#4001−0010)をウェル当たり加える。15分間のインキュベーションに続いて、Victor 2プレートリーダー(Perkin Elmer,Boston,MA)にてユーロピウム方法を用いてプレートを読む。
前記実施例21に記載されたp5E8 scFv DNAを用いて、前記実施例7に記載されたようにC−p5E8四価抗体を構築する。Ser(Gly4Ser)3リンカーペプチドを用いて、p5E8 scFvをPRIMATIZED(登録商標)p5E8 IgG重鎖のカルボキシ末端に連結させる。分子の組織化はPRIMATIZED(登録商標)p5E8 IgG重鎖−Ser(Gly4Ser)3リンカー−p5E8 scFvである。この分子を軽鎖とで組立てて、四価抗体を形成する。正しい配列はDNA配列解析によって確認されるであろう。構築体は、C−p5E8四価抗体の大規模生産のために、実施例8に記載されたように、CHO細胞をトランスフェクトするのに用いることができよう。トランスフェクトされたCHO細胞は、前記したようにスクリーニングすることができる。
当業者であれば、ルーチン的実験のみを用い、本明細書中に記載された発明の具体的な実施対応に対して多くの同等物を認識し、あるいはそれを確認することができるであろう。そのような同等物は、特許請求の範囲に含まれることを意図する。
Claims (22)
- 安定化された抗体またはその抗原結合断片を設計するための方法であって、該安定化された抗体またはその抗原結合断片は、候補抗体のVHドメインおよびVLドメイン由来の安定化されたVHドメインおよび安定化されたVLドメインを含み、ここで該方法は、
(a)免疫グロブリンスーパーファミリーポリペプチドに属するアミノ酸配列のキュレーションされた参照組を提供する工程;
(b)該参照組のアミノ酸配列を整列して、整列された組を生成する工程;
(c)該整列された組における2以上のアミノ酸位置の間の共変動を計算して、共変動データセットを作成する工程;
(d)該候補抗体VHドメインまたは該候補抗体VLドメインにおいて共変動しないアミノ酸を同定する工程であって、ここで、該共変動しないアミノ酸は、該共変動データセットにおいて1以上の共変動を満足しない、工程;および
(e)該候補抗体VHドメインまたは候補抗体VLドメインにおける該共変動しないアミノ酸のうちの1以上を、該整列された組において対応するアミノ酸位置で見出された、該共変動データセットにおける共変動を満足するアミノ酸で置換することにより、改良された生物物理学的特性を有する安定化された抗体およびその抗原結合断片を作製する工程
を含む、方法。 - 前記生物物理学的特性が、熱安定性、pH折り畳み解除プロフィール、グリコシル化の安定な除去、溶解性、生化学機能、およびそれらの組合せよりなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記安定化された抗体またはその抗原結合断片は、ドメイン抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、非ヒトモノクローナル抗体、キメラ抗体、二特異的抗体、scFv分子、scFv含有抗体、ドメイン欠失抗体、およびこれらの抗体断片のいずれかの組合せよりなる群から選択される、請求項1に記載の方法。
- (b)における前記共変動データセットにおける前記アミノ酸は、ジスルフィド結合、塩架橋、リガンド結合ポケットまたは表面の一部分、ファンデルワールス相互作用のネットワーク、水素結合相互作用のネットワーク、電荷−電荷相互作用のネットワーク、およびこれらの構造的特徴のうちの2つ以上の組合せよりなる群から選択される構造的特徴の
一部である、請求項1に記載の方法。 - (b)における前記整列された組の各アミノ酸配列は、該整列された組における他の配列と95%未満の同一性を有する、請求項1に記載の方法。
- 前記アミノ酸配列のキュレーションされた参照組の構築は、
(a)Ig折畳みの三次元構造の組を収集する工程であって、ここで、該構造は、V−クラス折畳み、I−クラス折畳み、C1−クラス折畳み、C2−クラス折畳みおよびこれらのIg折畳みクラスの組み合わせよりなるIg折畳みクラスの群より選択されるIg折畳みを含む、工程;
(b)破壊、100%配列同一性、異常な長さ、または誤って折畳まれたトポロジーの提示を有する配列を含むIg折畳み構造を捨てることにより、該Ig折畳み構造の組をフィルタリングする工程;
(c)構造整列を構築する工程であって、ここで、該フィルタリングされたIg折畳み構造の組は、互いに重ねられる、工程;
(d)該構造整列から配列整列を得る工程であって、ここで、1つの構造の配列からのアミノ酸は、該ポリペプチド骨格のα−炭素環の最も短い距離に基づいて、第2の構造の配列からのアミノ酸に適合する、工程;
(e)該Ig折畳みクラスのうちの1つについての構造ベースの配列整列に基づいて隠れたマルコブモデル(HMM)を構築する工程;
(f)該Ig折畳みクラスに特異的なHMMのうちの1以上を用いて蛋白質配列データベースを検索する工程であって、ここで、該蛋白質配列データベースにおける該HMMに適合する配列が収集される、工程;および
(g)蛋白質ドメインの注釈されたデータベースを用いて(f)において収集された該蛋白質配列の該Ig折畳みクラスの整列を確認する工程であって、ここで、(f)において見出される候補Ig折畳み蛋白質配列は、該蛋白質ドメインの注釈されたデータベースにおけるIg折畳みクラスに対するそれらの割り当てが統計学的に有意な場合にのみ保持される、工程;
を含む、請求項1に記載の方法。 - 前記整列がさらに、
(aa)(b)において得られた前記配列整列から冗長なまたは高度に類似するアミノ酸配列を除去する工程;および
(bb)HMMプロフィールにおいて適合状態にない該整列における列を除去する工程
を含む、請求項1に記載の方法。 - 前記(c)の計算が、(i)区別されるアミノ酸タイプとしてのギャップの同定;(ii)重み付け関数、ここで、該重み付け関数は、Henikoff多様性重み付け関数ではない;(iii)共変動対についてのフィルタリング関数、ここで、該関数は、配列平均同一性(SAI)を使用しない;(iv)事象カットオフ、ここで、共変動対は、最少数の回数観察されたのでない限り報告されず、そしてここで該事象カットオフは、約2以上の事象である;ならびに(v)これらの特徴のうちの2以上の組み合わせよりなる群から選択される1以上の特徴を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記(c)の計算が、χ2解析を用いた変動の統計学的有意性の計算を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記χ2の値が、事象ベースのカウントの式を用いて計算される、請求項9に記載の方法。
- 前記共変動の計算は、統計学的有意性の閾値レベルを満足する共変動についてのみ共変動スコアの作成を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記共変動スコアは、閾値χ2値またはφ値を超えるかまたは下回る共変動についてのみ作成される、請求項13に記載の方法。
- 前記候補配列のアミノ酸位置に、+0.25〜+1.0のφ相関係数を有する正の共変動については正の特定の共変動スコアが割り当てられる、請求項14に記載の方法。
- 前記候補配列のアミノ酸位置に、−0.25〜−1.0のφ相関係数を有する負の共変動については負の特定の共変動スコアが割り当てられる、請求項14に記載の方法。
- (aa)鋳型抗体のVHドメインまたはVLドメインおよび前記候補抗体のVHドメインまたはVLドメインの構造モデルを提供する工程;
(bb)鋳型抗体のVHドメインまたはVLドメイン中の、安定性に重要である蛋白質−蛋白質界面アミノ酸を同定する工程;
(cc)該(bb)の界面アミノ酸と共変動する骨格アミノ酸を同定する工程;
(dd)該候補抗体のVHドメインまたはVLドメイン中の1以上の界面アミノ酸または骨格アミノ酸を、(bb)および(cc)で同定された対応する界面アミノ酸または骨格アミノ酸で置換する工程、
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 前記鋳型抗体のVHドメインまたはVLドメインは、Igスーパーファミリー折畳みを含む、請求項17に記載の方法。
- 前記蛋白質−蛋白質界面アミノ酸は、候補のVHドメインまたはVLドメインのVH/VL界面に位置する、請求項17に記載の方法。
- (1)前記候補抗体のVHドメインまたはVLドメインの1以上のアミノ酸位置についてコンセンサスベースのスコアを計算する工程;
(2)該コンセンサスベースのスコアを、前記共変動データセット中のデータと合わせる工程;および
(3)該候補抗体のVHドメインまたはVLドメインを安定化すると予測されるアミノ酸置換を選択する工程であって、ここで、該選択は、コンセンサスベースのスコアおよび共変動データの組み合わせに基づく、工程
をさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 前記コンセンサスベースのスコアの計算が、
(i)前記免疫グロブリンスーパーファミリーに属するポリペプチド配列のキュレーションされた参照組を提供する工程;
(ii)該参照組の配列を整列して整列された組を生成する工程;および
(iii)該候補抗体のVHドメインまたはVLドメイン中の各アミノ酸位置について試験アミノ酸頻度を計算する工程であって、ここで、該頻度は、該アミノ酸位置における該アミノ酸が、該整列された組における対応する位置に存在する回数を合計し、そして該合計された値を該参照組中の配列の合計数によって割ることにより計算される、工程
を含む、請求項20に記載の方法。 - さらなる工程:
(a)コンセンサス配列を計算する工程であって、該配列中の各位置における前記アミノ酸が、前記整列された組中の該位置での最も一般的なアミノ酸に対応する、工程;
(b)該コンセンサスポリペプチド配列中の各アミノ酸位置について該コンセンサスアミノ酸頻度を計算する工程であって、ここで、該配列は、該アミノ酸位置における該アミノ酸が、該整列された組の対応する位置において存在する回数を合計し、そして該合計された値を該参照組中の配列の合計数によって割ることにより計算される、工程;および
(c)前記試験アミノ酸頻度を該コンセンサスアミノ酸頻度によって割って、コンセンサススコアを得る工程;
を含む、請求項21に記載の方法。
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