JP4134170B2 - 抗ngf抗体およびそれらを使用する方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2002年12月24日に提出された米国仮特許出願番号60/436,905;2003年1月28日に提出された米国特許出願番号第60/443,522;および2003年10月8日に提出された米国特許出願番号第60/510,006に対して優先権を主張する。これら全ては、引用によりそれらの全体が本明細書中に組み込まれる。
本発明は、抗NGF抗体(例えば、抗NGFアンタゴニスト抗体)に関する。本発明はさらに、外科手術後の痛み、関節リウマチの痛み、および変形性関節症の痛みを含む痛みの処置および/または予防において、このような抗体および/またはポリヌクレオチドを使用することに関する。
適用せず。
本発明の実施には、他の場所で示されない限りは、分子生物学(組み換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学、および免疫学の従来技術が使用される。これらは当業者の能力の範囲内である。このような技術は、文献、例えば、Molecular Cloning:A LABORATORY MANUAL,second edition(Sambrook等,1989)Cold Spring Harbor Press;Oligonucleotide Synthesis(M.J.Gait編,1984);Methods in Molecular Biology,Humana Press;Cell Biology:A Laboratory Notebook(J.E.Cellis編,1998)Academic Press;Animal Cell Culture(R.I.Freshney編,1987);Introduction to Cell and Tissue Culture(J.P.Mather and P.E.Roberts,1998)Plenum Press;Cell and Tissue Culture:Laboratory Procedures(A.Doyle,J.B.Griffiths,and D.G.Newell編,1993−1998)J.Wiley and Sons;Methods in Enzymology(Academic Press,Inc.);Handbook of Experimental Immunology(D.M.Weir and C.C.Blackwell編);Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells(J.M.Miller and M.P.Calos編,1987);Current Protocols in Molecular Biology(F.A.Ausubel等編,1987);PCR:The Polymerase Chain Reaction,(Mullis等編,1994);Current Protocols in Immunology(J.E.Coligan等編,1991);Short Protocols in Molecular Biology(Wiley and Sons,1999);Immunobiology(C.A.Janeway and P.Travers、1997);Antibodies(P.Finch,1997);Antibodies:a practical approach(D.Catty編,IRL Press,1988−1989);Monoclonal antibodies:a practical approach(P.Shepherd and C.Dean編,Oxford University Press,2000);Using antibodies:a laboratory manual(E.Harlow and D.Lane(Cold Spring Harbor Laboratory Press,1999);The Antibodies(M.Zanetti and J.D.Capra編,Harwood Academic Publishers,1995);ならびにCancer:Principles and Practice of Oncology(V.T.DeVita等編,J.B.Lippincott Company,1993)に完全に説明されている。
「抗体」は、炭水化物、ポリヌクレオチド、脂質、ポリペプチドなどの標的に対して、免疫グロブリン分子の可変領域に存在する少なくとも1つの抗原認識部位を通じて特異的に結合することができる、免疫グロブリン分子である。本明細書中で使用される場合は、この用語には、完全なポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体だけではなく、それらの断片(例えば、Fab、Fab’、F(ab’)2、Fv)、単鎖(ScFv)、それらの変異体、抗体部分を含む融合タンパク質、および抗原認識部位を含む免疫グロブリン分子の任意の他の修飾された立体構造も含まれる。抗体には、IgG、IgA、またはIgM(またはそれらのサブクラス)のような任意のクラスの抗体、および必ずしも任意の特定のクラスである必要はない抗体が含まれる。その重鎖の定常ドメインの抗体アミノ酸配列によって、免疫グロブリンを種々のクラスに分けることができる。IgA、IgD、IgE、IgG、およびIgMの5つの主要な免疫グロブリンのクラスが存在する。これらのいくつかはさらに、サブクラス(イソ型)、例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、およびIgA2に分けることができる。種々の免疫グロブリンのクラスに対応する重鎖定常ドメインは、それぞれ、α、δ、ε、γ、およびμと呼ばれる。免疫グロブリンの種々のクラスのサブユニット構造および三次元構造は周知である。
「ポリヌクレオチド」または「核酸」は本明細書中では同義的に使用され、任意の長さのヌクレオチドの重合体をいい、これにはDNAとRNAが含まれる。ヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、修飾されたヌクレオチドもしくは塩基、および/またはそれらの類似体、あるいはDNAまたはRNAポリメラーゼにより重合体中に組み込むことができる任意の物質であり得る。ポリヌクレオチドには、修飾されたヌクレオチド、例えば、メチル化ヌクレオチドおよびそれらの類似体が含まれる場合がある。存在する場合には、ヌクレオチド構造の修飾は、重合体の組立の前または後に行うことができる。ヌクレオチドの配列には、ヌクレオチド以外の成分が間に存在する場合もある。ポリヌクレオチドを、例えば、標識成分との結合によって、重合後にさらに修飾することもできる。他の型の修飾としては、例えば、「キャップ付加」、類似体での1つ以上の自然界に存在しているヌクレオチドの置換、ヌクレオチド間修飾(例えば、電荷を有さない連結(例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホアミデート、カルバメートなど)、および電荷を有している連結(例えば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエートなど)を含むヌクレオチド間修飾、例えば、タンパク質(例えば、ヌクレアーゼ、毒素、抗体、シグナルペプチド、ply−L−リジンなど)のようなペンダント部分を含むヌクレオチド間修飾、挿入剤(例えば、アクリジン、プソラレンなど)を含むヌクレオチド間、キレート化剤(例えば、金属、放射性金属、ボラン、酸化力のある金属など)を含むヌクレオチド間修飾、アルキル化剤を含むヌクレオチド間修飾、修飾された連結(例えば、αアノマー核酸など)を含むヌクレオチド間修飾)、ならびにポリヌクレオチド(単数または複数)の修飾されていない形態が含まれる。さらに、通常、糖の中に存在するヒドロキシル基のいずれかを、例えば、ホスホネート基、ホスフェート基によって置換することができ、また標準的な保護基によって保護することもでき、また別のヌクレオチドへの別の連結を作るように活性化することもでき、また固体支持体に結合させることもできる。5’および3’末端のOHはリン酸化することができるか、または1から20個の炭素原子のアミンもしくは有機キャップ基部分で置換することができる。他のヒドロキシルもまた、標準的な保護基へと誘導することができる。ポリヌクレオチドにはまた、例えば、2’−O−メチル、2’−O−アリール、2’−フルオロ、または2’−アジド−リボース、炭素環式糖類似体、α−アノマー糖、エピマー糖(例えば、アラビノース、キシロース、またはリキソース)、ピラノース糖、フラノース糖、セドヘプツロース、非環式類似体、および脱塩基ヌクレオシド類似体(例えば、メチルリボシド)を含む、当該分野で一般的に公知であるリボース糖またはデオキシリボース糖の類似体形態も含めることができる。1つ以上のホスホジエステル結合を、別の結合基で置き換えることもできる。これらの別の結合基としては、ホスフェートがP(O)S(「チオエート」)、P(S)S(「ジチオエート」)、(O)NR2(「アミデート」)、P(O)R、P(O)OR’、CO、またはCH2(「ホルムアセタール」)によって置き換えられる実施形態が含まれるが、これらに限定されない。ここでは、RまたはR’は独立して、Hであるか、あるいは、状況に応じてエーテル(−O−)結合、アリール、アルケニル、シクロアルキル、シクロアルケニル、もしくはアラルジルを含む置換または未置換のアルキル(1〜20C)である。ポリヌクレオチド中の全ての結合が同じである必要はない。上記の記載は、RNAおよびDNAを含む、本明細書中で言及される全てのポリヌクレオチドに適用される。
E3組成物、E3に由来する組成物、および組成物を作成する方法
本発明には、薬学的組成物を含む組成物が含まれ、これには、E3抗体またはポリペプチド;およびE3抗体またはポリペプチドをコードする配列を含むポリヌクレオチドが含まれる。本明細書中で使用される場合は、組成物は、NGFに結合する1つ以上の抗体またはポリペプチド(これは、抗体であっても抗体でなくてもよい)、および/またはNGFに結合する1つ以上の抗体またはポリペプチドをコードする配列を含む1つ以上のポリヌクレオチドが含まれる。これらの組成物にはさらに、当該分野で周知の適切な賦形剤、例えば、緩衝液を含む薬学的に許容される賦形剤が含まれる場合がある。
R2(「CDR L2」)YTSRFHS(配列番号7);および(f)軽鎖CDR3(「CDR L3」)QQEHTLPYT(配列番号8)。CDR領域の決定は当業者に周知である。いくつかの実施形態においては、CDRは、Kabat CDRとChothia CDRとの結合体(「結合型CDR」または「伸張型CDR」ともいわれる)であり得ることが理解される。いくつかの実施形態においては、CDRにはKabat CDRが含まれる。他の実施形態においては、CDRにはChothia CDRが含まれる。
(1)疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
(2)中性親水性:Cys、Ser、Thr;
(3)酸性:Asp、Glu;
(4)塩基性:Asn、Gln、His、Lys、Arg;
(5)鎖の方向性に影響を与える残基:Gly、Pro;ならびに
(6)芳香族:Trp、Tyr、Phe。
本発明により、また、本発明の抗体およびポリペプチド(図1Aおよび1Bに示される軽鎖可変領域および重鎖可変領域のポリペプチド配列を含む抗体を含む)をコードする単離されたポリヌクレオチド、ならびにこれらのポリヌクレオチドを含むベクターおよび宿主細胞も提供される。
を得ることによって計算される。
NGFに結合する抗体E3を使用して、NGFを同定、またはそれが存在するかどうかを検出することができる。簡単にするために、これらの方法が、本明細書中に記載されるNGFの結合の実施形態(例えば、ポリペプチド)の全てに対して適応されることを理解して、E3または抗体に関しての一般的な言及を行う。検出には、一般的には、生物学的試料を、NGFに結合する本明細書中に記載される抗体と接触させること、およびNGFとNGFに特異的に結合する抗体(例えば、E3)との間での複合体の形成が含まれる。このような複合体の形成は、生体外または生体内で行うことができる。用語「検出」は、本明細書中で使用される場合には、対照と比較するまたは対照と比較することのない、定性的および/または定量的検出(レベルの測定)が含まれる。
本発明の抗体およびポリペプチドは、NGFの発現が変化しているか、または異常なNGF発現(いくつかの実施形態においては、正常な試料と比較してNGFの発現が増大しているかまたは減少していること)、および/または不適切な発現(例えば、通常はNGFが発現されない組織(単数または複数)および/または細胞(単数または複数)中で発現があること、あるいは、通常はNGFの発現がある組織(単数または複数)または細胞(単数または複数)でのNGF発現がないこと)に関係している疾患、症状、または障害を検出、診断、およびモニターすることにおいて使用することができる。本発明の抗体およびポリペプチドはさらに、例えば、NGFに対する感度もしくは反応性が変化しているか、または異常な感度もしくは反応性に関係している疾患におけるNGFの発現の検出に有用である。いくつかの実施形態においては、NGFの発現は、NGFの発現に対する感度もしくは反応性が変化しているか、またはNGFの発現に対する異常な感度または反応性を特徴とするか、あるいはそれらに関係している疾患、障害(例えば、NGFが増殖およびまたは転位を促進するガン)を有していると疑われる個体に由来する試料中で検出される。
抗体E3は、NGFの生物学的活性を低下させるおよび/またはブロックするために有効である。このアンタゴニスト活性は、痛みのような内因性のNGFの生産に関係している臨床症状の処置に有用であると考えられている。一般的には、これらの実施形態においては、有効量が個体に投与される。したがって、1つの態様においては、本発明により、本明細書中に開示されるポリペプチド(抗体E3のような抗体を含む)のいずれかを使用して、ヒトNGFの生物学的活性をアンタゴナイズする方法が提供される。1つの実施形態においては、この方法には、ヒト成長因子を本明細書中に記載されるポリペプチド(抗体E3を含む)のいずれかと接触させ、それによってヒト成長因子の活性をアンタゴナイズする、低下させる、ブロックする、または抑制する段階が含まれる。さらに別の実施形態においては、痛み(例えば、外科手術後の痛み、または関節リウマチの痛み)を有している個体にE3での処置が施される。
いくつかの態様においては、本発明により、ヒトおよびヒト以外の両方である哺乳動物を含む個体における関節リウマチの痛みを処置および/または予防するための方法が提供される。したがって、1つの態様においては、本発明により、有効量の抗NGFアンタゴニスト抗体を投与する段階を含む、個体における関節リウマチの痛みを処置する方法が提供される。抗NGFアンタゴニスト抗体は当該分野で公知であり、本明細書中に記載されている。
いくつかの態様においては、本発明により、ヒトおよびヒト以外の両方である哺乳動物を含む個体における変形性関節症の痛みを処置および/または予防するための方法が提供される。したがって、1つの態様においては、本発明により、有効量の抗NGFアンタゴニスト抗体を投与する段階を含む、個体における変形性関節症の痛みを処置する方法が提供される。抗NGFアンタゴニスト抗体は当該分野で公知であり、本明細書中に記載されている。
本発明の方法(関節リウマチの痛みおよび変形性関節症の痛みに関する)では、抗NGFアンタゴニスト抗体が使用される。抗NGFアンタゴニスト抗体とは、NGFによる情報伝達(例えば、受容体の結合および/またはNGFに対する細胞性の応答の誘発)によって媒介される下流の経路を含むNGFの生物学的活性をブロックする、抑制する、または低下させる(顕著なものを含む)あらゆる抗体分子をいう。
抗NGFアンタゴニスト抗体は、当該分野で公知の方法を使用して同定する、または特徴付けることができる。それによると、NGFの生物学的活性の低下、緩和、中和が検出および/または測定される。例えば、米国特許第5,766,863号、および同第5,891,650号に記載されているキナーゼ受容体活性化(KIRA)アッセイは、抗NGF試薬を同定するために使用することができる。このELISA型アッセイは、受容体タンパク質チロシンキナーゼ(本明細書中以後、「rPTK」とする)、例えば、TrkA受容体のキナーゼドメインの自己リン酸化を測定することによるキナーゼの活性化を定量的または定性的な測定に、さらには、選択されたrPTK、例えば、TrkAについての可能性のあるアンタゴニストの同定および特徴付けに適している。アッセイの最初の段階には、キナーゼ受容体(例えば、TrkA受容体)のキナーゼドメインのリン酸化が含まれる。ここでは、受容体は、真核生物細胞の細胞膜中に存在する。受容体は、内因性受容体であっても、受容体をコードする核酸であっても、または受容体構築物であってもよく、細胞中に形質転換することができる。通常は、第1の固相(例えば、第1のアッセイプレートのウェル)が、実質的に均質なこのような細胞の集団(通常は、哺乳動物細胞株)でコーティングされ、それにより、細胞が固相に付着させられる。多くの場合は、細胞は粘着性があり、それによって第1の固相に対して自然に付着する。「受容体構築物」が使用される場合は、これには通常、キナーゼ受容体とフラッグポリペプチドとの融合体が含まれる。フラッグポリペプチドは、アッセイのELISA部分において、捕捉試薬(多くの場合は、捕捉抗体)によって認識される。候補の抗NGFアンタゴニスト抗体のような分析物が、次いで、細胞が付着しているウェルに対してNGFと共に添加され、それにより、チロシンキナーゼ受容体(例えば、TrkA受容体)がNGFと分析物に曝される(またはそれらと接触させられる)。このアッセイにより、そのリガンドであるNGFによるTrkAの活性化を阻害する抗体を同定することができる。NGFと分析物に曝された後、付着している細胞は、溶解緩衝液(これは、その中に可溶性の界面活性剤を含む)と穏やかな攪拌を使用して溶解させられ、それによって細胞溶解物を遊離させ、これを、細胞溶解物の濃縮または明澄化の必要なく、直接アッセイのELISA部分に供することができる。
抗NGFアンタゴニスト抗体は、任意の適切な経路を介して個体(関節リウマチおよび変形性関節症)に投与することができる。本明細書中に記載されている実施例が限定ではなく、利用できる技術の例示であることは、当業者に明らかなはずである。したがって、いくつかの実施形態においては、抗NGFアンタゴニスト抗体は、静脈内投与のような既知の方法によって、例えば、ボーラスとして、または一定期間にわたる持続注入によって、筋肉内、腹腔内、脳脊髄内、皮下、関節内、舌下、滑液内、送気、随腔内、経口、吸入、または局所経路によって、個体に投与される。投与は全身的(例えば、静脈内投与)であっても、また局所的であってもよい。市販されている液体処方物用のネブライザー(ジェットネブライザーおよび超音波ネブライザーを含む)は、投与に有用である。液体処方物は直接噴霧することができ、凍結乾燥させられた粉末は再構成の後、噴霧することができる。あるいは、抗NGFアンタゴニスト抗体は、過フッ化炭化水素処方物と定量吸入器を使用してエアロゾルとすることができるか、または凍結乾燥させた破砕粉末として吸入することができる。
本発明により、また、検出および/または治療における使用のための、抗体またはポリペプチドを含むキットが提供される。したがって、いくつかの実施形態においては、キットには、抗体E3が含まれる。いくつかの実施形態においては、キットには、本明細書中に記載される抗体またはポリペプチドのいずれかが含まれる。
本発明者らは、抗体のCDRを特徴付けるため、および/または「ライブラリースキャン突然変異誘発」と呼ばれる、抗体のようなポリペプチドの結合親和性を変化させる(例えば、改善する)ための方法を開発した。通常、ライブラリースキャン突然変異誘発は以下のような作業である。CDR中の1つ以上のアミノ酸位置が、当該分野で認識されている方法を使用して、2つ以上のアミノ酸(例えば、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、または20個)のアミノ酸で置き換えられる。これにより、クローンの小さいライブラリー(いくつかの実施形態においては、分析される全てのアミノ酸位置についてのもの)が生じ、それぞれが2つ以上のメンバーの複雑さを有する(全ての位置で2つ以上のアミノ酸によって置換される場合)。一般的には、ライブラリーには、自然界に存在している(置換されていない)アミノ酸を含むクローンも含まれる。それぞれのライブラリーに由来する少数のクローン(約20〜80個のクローン)(ライブラリーの複雑さによって異なる)が、標的ポリペプチドに対する結合親和性についてスクリーニングされ、高い結合、同じ結合、低い結合を有しているか、または結合しない候補が同定される。結合親和性を決定するための方法は当該分野で周知である。いくつかの実施形態においては、結合親和性は、BIAcore表面プラズモン共鳴分析を使用して決定される。これにより、約2倍またはそれ以上の結合親和性の差が検出される。BIAcoreは、出発抗体がすでに比較的高い親和性、例えば、約10nMまたはそれ未満のKDで結合する場合に、特に有用である。BIAcore表面プラズモン共鳴を使用するスクリーニングは、本明細書中の実施例に記載される。
これらの方法は、結合を改善するかまたは結合を保持するアミノ酸置換を同定するための、CDRアミノ酸位置の予備スクリーニングに有用である。重要な残基、結合を改善する置換および/または抗体機能を保持する置換の予備同定により、親和性成熟ライブラリーの効率のよい設計およびスクリーニングが可能になる。
マウスのアンタゴニスト抗NGF抗体911のヒト化および親和性成熟
A.一般的方法
以下の一般的方法を、本実施例において使用した。
ライブラリーは、Kay等(1996),Phage display of peptides and proteins:a laboratory mannual,San Diego,Academic Press(pg277−291を参照のこと)に記載されているような、縮重オリゴヌクレオチドを用いたPCRカセット突然変異誘発によって作成した。ドーピングコドンNNKを使用して、1つのアミノ酸位置を20個の可能なアミノ酸を含むようにランダムにした。1つのアミノ酸位置を特異的な特性を有しているアミノ酸のセットのみを含むようにランダムにするために、ドーピングコドンを、Balint等(1993)Gene 137(1):109−18に記載されているように使用した。部位特異的突然変異誘発を、Innis等(1990)PCR protocols:A guide to methods and applications(pp.177−183を参照のこと)に記載されているように、組み換えPCRを使用して行った。
96ウェルプレート中での少量の発現を、Fabライブラリーをスクリーニングするために最適化した。Fabライブラリーで形質転換した大腸菌(E.coli)から出発して、コロニーを採取して、マスタープレート(寒天LB+アンピシリン(50μg/ml)+2%のグルコース)と、作業プレート(2ml/ウェル、96ウェル/プレート、1.5mLのLB+アンピシリン(50μg/ml)+2%のグルコースを含む)の両方に植菌した。両方のプレートを30℃で8〜12時間増殖させた。マスタープレートを4℃で保存し、作業プレートに由来する細胞を、5000rpmでペレットにし、1mLのLB+アンピシリン(50μg/ml)+1mMのIPTGとともに再懸濁して、Fabの発現を誘導した。細胞を、30℃で5時間の発現時間の後、遠心分離によって回収し、その後、500μLの緩衝液HBS−EP(100mMのHEPES緩衝液(pH7.4)、150mMのNaCl、0.005%のP20、3mMのEDTA)に再懸濁した。HBS−EPに再懸濁した細胞の溶解を、1サイクルの凍結(−80℃)とその後の37℃での融解によって行った。細胞溶解物を5000rpmで30分間遠心分離して、Fabを含む上清から細胞の破片を分離した。その後、上清をBIA coreプラズモン共鳴装置に注入して、それぞれのFabについての親和性の情報を得た。Fabを発現するクローンをマスタープレートから取り出して、以下に記載するように、DNAを配列決定し、大量のFabを生産させ、詳細に特徴付けた。
詳細な速度論パラメーターを得るために、Fabを、大量の培養物から発現させ、精製した。200mLのLB+アンピシリン(50μg/ml)+2%のグルコースを含む三角フラスコに、選択したFabを発現する大腸菌(E.coli)クローンの一晩培養物5mLを植菌した。クローンを、30℃で、OD550nmが1.0に達するまでインキュベートし、その後、200mlのLB+アンピシリン(50μg/ml)+1mMのIPTGに培地を交換することによって誘導した。30℃で5時間の発現時間の後、細胞を遠心分離によってペレットにし、その後、10mLのPBS(pH8)に再懸濁した。細胞の溶解を、2サイクルの凍結/融解(それぞれ、−80℃および37℃)によって行った。細胞溶解物の上清を、PBS(pH8)で平衡化したNi−NTAスーパーフローセファロース(Qiagen,Valencia,CA)カラムにロードし、その後、5倍のカラム容量のPBS(pH8)で洗浄した。個々のFabを、PBS(pH8)+300mMのイミダゾールで種々の画分中に溶出させた。Fabを含む画分をプールし、PBS中で透析し、その後、ELISAによって定量した後、親和性を特徴付けた。
抗体全体を発現させるために、重鎖および軽鎖可変領域を、2つの哺乳動物発現ベクター(軽鎖についてはEb.911.E3またはEb.pur.911.3E、および重鎖についてはEb.911.3E;本明細書中に記載されている)中にクローニングし、リポフェクタミンを使用して、一時的発現のためにHEK293細胞にトランスフェクトした。抗体を、標準的な方法を使用し、プロテインAを使用して精製した。
抗NGF Fabとモノクローナル抗体の親和性を、BIAcore3000(登録商標)表面プラズモン共鳴(SPR)システム(BIAcore,INC,Piscaway NJ)を使用して決定した。CM5チップを、供給業者の説明書にしたがって、N−エチル−N’−(3−ジメチルアミノプロピル)−カルボジイミド塩酸塩(EDC)とN−ヒドロキシスクシンイミド(NHS)で活性化させた。ヒトNGFを、10mMの酢酸ナトリウム(pH4.0)で希釈して、0.005mg/mLの濃度で活性化したチップ上に注入した。個々のチップチャンネルを通過させるフロー時間を変化させることをもちいて、2つの抗原密度の範囲に到達させた:詳細な速度論の研究については100〜200反応単位(RU)、そしてスクリーニングアッセイについては500〜600RU。チップをエタノールアミンでブロックした。再生の研究は、Pierce溶出緩衝液(製品番号21004、Pierce Biotechnology,Rockford,IL)と4MのNaClの混合物(2:1)により200回の注入全てについてチップ上でhNGFの活性を維持したまま、結合したFabが効率よく除去されたことを示した。HBS−EP緩衝液(0.01MのHEPES(pH7.4)、0.15 NaCl、3mMのEDTA、0.005%のSurfactant P29)を、BIAcoreアッセイの泳動緩衝液として使用した。
スクリーニングBIAcoreアッセイを、ライブラリーからFabクローンの親和性を決定するために最適化した。少量の培養溶解物の上清を、50μl/分で2分間かけて注入した。BIAevaluationソフトウェアを用いた1つの指数的な解離速度(koff)の決定のためには、10から15分間の解離時間を使用した。ライブラリーを作成するために使用した温度と同じ範囲のkoff速度を示した試料(クローン8L2−6D5、k0ff1×10−3s−1)を確認のために注入し、45分までの解離時間によって良好なkoff値を得た。改善された(より遅い)koff値を示すクローンを大量に発現させて、全ての速度論パラメーターであるkonおよびkoffを精製したタンパク質について決定した。このアッセイによって、およそ2倍またはそれ以上の親和性の差を検出することができた。
精製したFab試料の段階希釈物(0.1〜10×推定のKD)を100μL/分で1分間かけて注入し、2時間までの解離時間とした。Fabタンパク質の濃度をELISAおよび/またはSDS−PAGE電気泳動によって、既知の濃度のFabを標準物(アミノ酸分析によって決定した)として使用して決定した。動的会合速度(kon)および解離速度(koff)を、1:1のLangmuir結合モデル(Karlsson,R.,Roos,H.,Fagerstam,L.Petersson,B.(1994).Methods Enzymology 6.99−110)に対して、BIAevaluationプログラムを使用してデータをフィットさせることによって同時に得た。平衡解離定数(KD)値をkon/koffとして計算した。
マウスのアンタゴニスト抗NGF抗体である911(Hongo等(2000),Hybridoma 19(3):215−227を参照のこと)を、ヒト化および親和性成熟のために選択した。Mab 911は、ヒトおよびラットのNGFに対して高い親和性で結合し、そしてニューロトロフィンNT3、NT4/5、またはBDNFとは有意な交差反応性は示さない。Hongo(同文献)を参照のこと。マウスMab 911のパパインで切断したFab断片の親和性を、上記のようなBIAcore分析を使用して決定した。マウスMab 911のパパインで切断したFab断片は、およそ10nMのKDでヒトNGFに結合した。
(1)CDR接続鋳型の調製。抗体911の軽鎖の伸張型CDR(すなわち、Kabat CDR領域とChothia CDR領域の両方を含む)を、JK2を有しているヒトの生殖系アクセプター配列O8に接続させ、抗体911の重鎖の伸張型CDRを、JH4を有しているヒトの生殖系アクセプター配列VH4−59に接続させた。ヒトの生殖系のアクセプター配列のアミノ酸配列は、図1Aおよび1Bに示す。アミノ酸のナンバリングは連続的である。上記に示したタンパク質フレームワークを使用して、マウスCDRを有しているヒトフレームワークをコードする合成遺伝子のDNA配列を設計した。これらのヒト化重鎖および軽鎖可変ドメインを、それぞれ、hVHおよびhVLと呼ぶ。コドンは、大腸菌(E.coli)およびハムスターでの使用法について最適になるようにした。それぞれの鎖について2つの短い隣接プライマーを有している全長のhVLおよびhVHにまで伸びるいくつかの重複オリゴヌクレオチド(69〜90塩基の長さ)を使用して、原則としてProdromou等(1992)Protein Eng 5(8):827−9に記載されているように、回帰PCR(reculsive PCR)によって2つの遺伝子を別々に合成した。得られた正確な長さのDNA断片をゲル精製し、その後、大腸菌(E.coli)の2シストロン性発現プラスミド(アンピシリン耐性)にクローニングした。抗体の発現は、Barbas(2001)Phage display:a laboratory manual,Cold Spring Harbor,NY,Cold Spring Harbor Laboratory Press(Vector pComb3X、pg.2.10を参照のこと)に記載されているものと同様のIPTG誘導性lacZプロモーターの制御下にあるが、修飾によって以下の別のドメインの付加および発現を含めた:ヒトκ軽鎖定常ドメイン(GenBank登録番号CAA09181を参照のこと)およびIgG2aヒト免疫グロブリンのCHI定常ドメイン(GenBank登録番号P01859)。
M50:M、I、G、Q、S、Lは結合した。
S26:SおよびFは結合した。
Y50:Yは結合した。
CDR−H1:I34L;N35N(変化なし)
CDR−H2:M50I;A62A(変化なし);L63V
CDR−L1:S26S(変化なし);D28S;H32N
CDR−L2:Y50Y(変化なし);I51T;F54F(変化なし);S56S(変化なし)。
H3 CDRおよびL3 CDRのそれぞれのアミノ酸位置を、ヒトNGFに対して増大した結合親和性を生じる置換について、個々に事前にスクリーニングした。任意の所定の位置において改善された結合、同じ結合、低下した結合を生じるか、または結合しないアミノ酸置換の頻度により、多くの異なるアミノ酸(20個の全てのアミノ酸を含む)に変化させることができるCDR中の位置、および変化させることができないか、または数個のアミノ酸にしか変化させることができないCDR中の位置に関する情報が得られた。増大した結合親和性を生じるアミノ酸置換もまた同定した。これらのスクリーニングの結果に基づいて、CDR H3およびCDR L3中のアミノ酸位置のサブセットを、親和性成熟ライブラリーの調製のために選択した。
次に、小さいライブラリーのランダム化分析(上記)の結果を使用して、H3 CDRおよびL3 CDRの親和性成熟のためのH3およびL3ライブラリーを生産するために残基を選択した。CDR H3の残基Y101およびG103、ならびにCDR L3の残基S91およびK92を、H3 CDRおよびL3 CDRの親和性成熟のためのH3およびL3ライブラリーを生産するために選択した。
CDR−H1:I34L;
CDR−H2:M50I;L63V;
CDR−L1:D28S;H32N;
CDR−L2:I51T。
マウスE13.5三叉神経ニューロンの生存性アッセイを用いた抗NGF抗体のNGFブロック能力の評価
Fab E3または抗体E3全体のNGF活性をブロックする能力を、生体外でのマウスE13.5三叉神経ニューロンのNGF依存的生存性を阻害する抗体の能力の測定によって評価した。三叉神経ガングリオンは、顔の領域に神経を分布させる皮膚の感覚ニューロンから構成される。マウスE13.5三叉神経ニューロンの生存性は、抗NGFアンタゴニスト抗体のNGFをブロックする活性を評価するための感度の高いアッセイである。なぜなら、NGFはこれらのニューロンの生存性をサポートするために必要であるからである。例えば、NGFの飽和濃度では、生存性は培養物中で48時間まで100%に近い。対照的に、NGFが存在しない場合には、48時間までのニューロンの生存性は5%に満たない。
マウス三叉神経の生存性アッセイおよび結節ニューロンの生存性アッセイを用いた抗NGF抗体E3の特異性の評価
NGF活性を特異的にブロックする抗体E3の能力を、飽和濃度のNGF、NGFに関係しているニュートロフィンNT3、またはNGFとは無関係な神経栄養因子、マクロファージ刺激タンパク質(MSP)の存在下で、生体外でのマウスE17/18三叉神経ニューロンの生存性を阻害する抗体の能力の測定によって評価した。マウスE17/18三叉神経ニューロンの生存性は、抗NGFアンタゴニスト抗体のNGFブロック活性を評価するための感度の高いアッセイである。なぜなら、NGFはE13.5 TGニューロンの生存性をサポートするために必要なNGFのレベルよりも高い濃度を、これらのニューロンの生存性をサポートするために必要とするからである。これらのニューロンの生存性はまた、NT3またはMSPによってもサポートされ、したがって、これらのニューロンの生存性はまた、抗NGFアンタゴニスト抗体がNT3またはMSPをもまたブロックするかどうかを評価するための感度の高いアッセイでもある。
哺乳動物発現ベクターの調製および哺乳動物細胞中での抗体E3の発現
哺乳動物細胞中での抗体E3の発現における使用のために、3つの哺乳動物発現ベクターを設計し、構築した。
抗NGF抗体E3は外科手術後の痛みの処置に有効である
本発明者らは、抗体E3での治効を評価するために、外科手術後の痛みを再現する痛みのモデルを使用した。抗体E3は、以下の変異:A330P331からS330S331(野生型IgG2a配列に関するアミノ酸のナンバリング;Eur.J.Immunol.(1999)29:2613−2624を参照のこと)を含むヒトの重鎖IgG2a定常領域;ヒトの軽鎖κ定常領域;ならびに、表1Aおよび1Bに示した重鎖および軽鎖可変領域から構成される。
関節リウマチのラットモデルにおける抗NGFアンタゴニスト抗体911の鎮痛効果の評価
完全なフロイトのアジュバント(CFA)によって誘導したラットの慢性関節炎における抗NGF抗体911(Hongo等,Hybridoma 19(3):215−227(2000))の鎮痛効果を、対照物質として使用したインドメタシンと比較して、発声試験を使用して研究した。
1グループあたりn=10匹のラット
0日目(D0):CFAの投与による慢性関節炎の誘導
ビヒクル:生理食塩水
911(10mg/kg)を14日目(D14)または17日目(D17)に静脈内投与し、痛みの測定を18日目(D18)に行った。
ダネット検定:*は、ビヒクルで処置したグループと比較した有意な差を示す(p<0.05)。
関節リウマチのラットモデルにおける抗NGFアンタゴニスト抗体E3および911の薬理効果
抗NGFアンタゴニスト抗体E3および911の薬理効果(坑炎症効果および鎮静効果)を、内部陽性対照物質として使用したインドメタシンと比較して、完全なフロイトのアジュバント(CFA)によって誘導したラットの慢性関節炎のモデルにおいて研究した。E3および911の鎮静効果は、侵害刺激反応の測定によって評価した。抗炎症効果は、足の容積、関節炎指数(炎症スコア)、体および後足の重量によって評価した。足のサイトカイン濃度(IL−6、IL−1β、TNF−α、およびTGF−β1)、血清中の循環しているRGF−β1、E3、および911の血漿濃度、生物学的パラメーター、およびX線検査を、実験の最後に行った。
1.研究計画
5週齢の80匹の雄性Lewisラット(LEWIS Lew/Ico)(Charles River Laboratories−Belgium)を、本研究に含めた。彼らを、研究の間中、濾過した水道水と標準的なペレット状の研究室用の食餌(SAFE,France)を無制限に摂取できるようにして、一定の温度(19.5〜24.5℃)、相対湿度(45〜65%)で、12時間の明/暗のサイクルに制御して飼育した。動物を設備に収容する際に、彼らを、1つのケージあたり5匹ずつ収容し、全ての試験の前に、10日間の環境順応期間について観察した。動物を尾で個々に識別した。
0日目(D0)に、0.05mlのウシ型結核死菌(Mycobacterium butyricum)の懸濁液を尾に皮内注射することにより、70匹のラットにおいて関節炎を誘導した。1つのグループの10匹のラットには、皮内注射を全く行わなかった(関節炎ではないラット)。14日目(D14)に、関節炎のラットを以下の基準を使用して研究に含めた:関節炎ではないグループにおける平均の足の容積(左足と右足の容積の平均)と比較して、少なくとも0.30mlの平均の足の容積(左足と右足の容積の平均)の増加を示した全てのラットを含めた(以下に記載するような足の容量の測定);軽い屈曲の際に声を発した全てのラットを含めた(以下に記載するような侵害刺激反応の測定);ならびに、それぞれの後足について2〜3の関節炎指数のスコアを示した全てのラットを含めた(以下に記載するような関節炎指数の測定)(0、1、または4のスコアを有している動物は廃棄した)。
動物を、0日目から24日目まで、1日1回、体重を測定した(処置前の週末の日を除く:D1、D2、D8、D9、D10)。全ての測定を、14日目(D14)(7:30〜9:00am)および24日目(D24)(7:30〜8:00am)を除いて、9:00から12:00amまでの間に行った。
それぞれのラット(関節炎のラットおよび関節炎ではないラット)の右および左の後足の容積を、足容積測定装置を使用して測定した。測定は、以下の時間に行った(関節炎の誘導後):14日目(i.v.ボーラスまたはp.o.投与の前);および24日目(最後のi.v.ボーラス注射の5日後、または最後のp.o.投与の24時間後)。全ての測定を、9:00から12:00amの間に行った。全てのデータを回収し、WinDasソフトウェアによって保存した。
関節炎指数は、それぞれの後足および前足(関節炎のラット)についての炎症スコアを使用して評価した:スコア0:正常な挙動;スコア1:紅斑;スコア2;わずかな浮腫を伴う紅斑;スコア3:硬直は伴わない強い炎症;スコア4:硬直。この評価を以下の時間に行った(関節炎の誘導後):14日目(i.v.ボーラスまたはp.o.投与の前);および24日目(最後のi.v.ボーラス注射の5日後、または最後のp.o.投与の24時間後)。全ての測定を、2:00から3:00pmの間に(14日目(D14))、8:00から9:00amの間に(24日目(D24))行った。全てのデータを回収し、WinDasソフトウェアによって保存した。
侵害刺激反応を、オペレーターの指で4から5秒の間隔で2回繰り返して右および左の後足を軽く屈曲させることによって評価した(関節炎のラット)。発声のレベルの強さを、それぞれの後足に関して各動物について記録した(2回:右後足について:s1およびs3;2回:左後足について:s2およびs4)。この評価を、以下の時間に行った:(関節炎の誘導後):14日目(i.v.ボーラスまたはp.o.投与の前);18日目(2回目のi.v.ボーラス注射の前、またはp.o.投与の1時間後);および24日目(最後のi.v.ボーラス注射の5日後、または最後のp.o.投与の24時間後)。全ての測定を、14日目(D14)(7:30〜9:00am)および24日目(D24)(7:30〜9:00am)を除いて、9:00から12:00amの間に行った。
24日目(足容積と関節炎指数の測定、ならびに侵害刺激反応試験の後)に、イソフルラン(酸素と亜酸化窒素の混合気体)を使用した全身麻酔下で、血液試料(約800〜1000μl)を、眼窩洞(retroorbital sinus)からマイクロピペットを用いて毛管現象によって回収した。
24日目(最後のi.v.ボーラス注射の5日後、または最後のp.o.投与の24時間後)(X線検査後)に、それぞれのマウスの後足(関節炎のラット、および関節炎ではないラット)の重さを量り、ラベルをつけたポリエチレンバイアルに回収した。組織試料を液体窒素中で凍結させ、−80℃で保存した。
24日目に、採血の後に動物を屠殺し、関節の病変の評価のためにX線写真(後足)を撮影した。X線解析は、両方の後足の関節の目減り、関節窩、骨膜の異常に焦点をあてて行った。全てのX線写真を、7つの異なる項目を見ることによって分析した:軟組織の損傷、奇形、脱塩、関節窩、目減り、骨形成、および骨膜の反応。それぞれの動物について、最初の6つの項目を、悪い後足を見ることによって別々に分析した。骨膜の反応は、尾を見ることによって分析した。それぞれの項目について、スコアを0(正常)から4(最大の損傷)とした。したがって、合計スコアは、0から28までとなる。X線写真の解釈は、動物(処置したかまたは処置していない)について何も知らされていない同じ助手が行った。
1匹の動物(#65)は、インドメタシンの投与後23日目(D23)(23日目(D23)の投与の前)に、不明な原因によって死亡した。
全ての結果を、それぞれの時点での各グループの10匹のラットの平均±標準誤差として記録した。足の容積は、右足と左足の容積の平均値から計算し、mlで示した。関節炎指数は、4本の足のそれぞれについて得られたスコアの和から計算した。侵害刺激反応は、それぞれの動物について記録した発声のレベルの強さによって、mVで評価した(4つの値の平均:片方の足について2回ずつ)。侵害刺激反応の阻害の割合は、ビヒクルで処置した関節炎のグループの値の平均値から計算した[(ビヒクルで処置した関節炎のグループの平均値−処置した関節炎のグループの平均値/ビヒクルで処置した関節炎のグループの平均値)×100]。体重は、グラムで表示した。後足(左および右)の重量はグラムで表示した。それぞれの後足のサイトカイン濃度(IL−6、IL−1β、TNF−α、およびTGF−β1)は、pg/mlで表示した。TGF−β1の循環濃度は、pg/mlで表示した。それぞれのパラメーター(脱塩、目減り、骨膜の反応、軟組織の損傷、関節窩、骨形成の奇形)についての放射線写真による指数と、合計の放射線写真指数(合計スコア)は、それぞれのパラメーターについて得られたスコアの和から計算した。ビヒクルで処置したグループ(関節炎のラット)の値とビヒクルで処置したグループ(関節炎ではないラット)の値との間での偏差のグループ間での有意性は、スチューデントt検定によって、または同じ変量の試験もしくは正常性の試験ができなかった場合にはマンホイットニーランクサム検定によって評価した。ビヒクルで処置したグループ(関節炎のラット)の値とE3および911およびインドメタシンで処置したグループの値との間での偏差のグループ間の有意性は、一元分散分析ANOVA、続いて、対にしていない(non−paired)ダネットt検定によって評価した。p≦0.05の確率を、有意であるとみなした。全ての統計分析を、Sigmastat(登録商標)ソフトウェアによって行った。
1.侵害刺激反応(発声試験)
表11および図18に示すように、14日目(D14)には、侵害刺激反応は、ビヒクルで処置した、インドメタシンで処置した、E3で処置した、および911で処置した関節炎のグループにおいて、それぞれ、4147±331、4386±235、4644±367、および4468±143であった。インドメタシンは、3mg/kg/日p.o.(10日間)の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、侵害刺激反応を強力かつ有意に、18日目(D18)および24日目(D24)に、それぞれ、約−3768mV(%阻害:71%)および−4353mV(%阻害:74%)低下させた(18日目(D18):1511±398mV対5279±326mV;24日目(D24):1552±508mV対5905±345mV)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、侵害刺激反応を強力かつ有意に、18日目(D18)および24日目(D24)に、それぞれ、約−4167mV(%阻害:79%)および−5905mV(%阻害:100%)低下させた(D18:1112±401mV対5279±326mV;D24:0±0mV対5905±345mV)。911(14日目(D14)および19日目(D19)の2日間に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、侵害刺激反応を強力かつ有意に、18日目(D18)および24日目(D24)に、それぞれ、約−3932mV(%阻害:74%)および−5358mV(%阻害:91%)低下させた(18日目(D18):1347±492mV対5279±326mV;24日目(D24):547±307mV対5905±345mV)。
表12および図19に示すように、関節炎の確立が原因である体重増加の明らかな減少が、関節炎ではないラットと比較して、0日目(D0)から14日目(D14)までに関節炎のラットにおいて観察された。14日目(D14)(選択の日)に、関節炎のラットは、関節炎ではないラットと比較して、体重の明らかな減少を示した(289±2g対217±4g)(スチューデントt検定、p<0.05)。しかし、全ての関節炎のグループにおいて、体重(14日目(D14))に有意な差は検出されなかった(ダネットt検定、p>0.05)。体重は、インドメタシンで処置したグループ(10日間にわたって3mg/kg/日)においては、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、17日目(D17)から24日目(D24)までに穏やかかつ有意に増加し(261±5g対218±3g)、24日目(D24)に約43gで最大となった。E3での処置(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)の後、体重は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、17日目(D17)から24日目(D24)までに穏やかかつ有意に増加し(264±5g対218±3g)、24日目(D24)に約46gで最大となった。911での処置(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)の後、体重は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、18日目(D18)から24日目(D24)までに穏やかかつ有意に増加し(265±7g対218±3g)、24日目(D24)に約47gで最大となった。
23日目および24日目のインドメタシン(n=9)を除き、1グループあたりn=10匹の動物
ダネットt検定:*は、ビヒクルで処置した関節炎のラットに対してp≦0.05。
14日目(D14)に、足の容積の項目において均質なグループを得るためにランダムにした。表13に示すように、14日目(D14)には、後足の容積(右足と左足の容積の平均)は、関節炎ではないグループよりも関節炎のグループにおいて有意に大きかった(2.10±0.05mL対1.44±0.02mL(スチューデントt検定、P<0.05))。インドメタシン(10日間にわたって、3mg/kg/日p.o.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、足の容積を有意に、約−0.75mL(24日目(D24))減少させた(1.59±0.03mL対2.34±0.08mL)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、足の容積を僅かであるが有意に、約0.37mL増大させた(2.71±0.09mL対2.34±0.08mL)。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、足の容積を僅かであるが有意に、約0.36mL増大させた(2.70±0.11mL対2.34±0.08mL)。
表14に示すように、14日目(D14)には、関節炎指数は、ビヒクルで処置した、インドメタシンで処置した、E3で処置した、および911で処置した関節炎のグループにおいて、それぞれ、10.1±0.8、8.7±0.6、10.2±0.4、および9.4±0.7であった。インドメタシンは、(10日間にわたる)3mg/kg/日p.o.の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、最大で約−8.0まで、関節炎指数を強く、有意に低下させた(2.7±0.7対10.7±0.6mL)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、関節炎指数には影響を与えなかった(11.4±0.4対10.7±0.6mL)。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、関節炎指数には影響を与えなかった(10.9±0.7対10.7±0.6)。
表15に示すように、24日目(D24)には、左足および右足のサイトカイン濃度は、関節炎ではないビヒクルで処置したグループと比較して、関節炎のビヒクルで処置したグループにおいては、最大で約3.5倍(IL−1β)、4倍(TNF−α)、および1.8倍(TGF−β1)まで増大した。IL−6濃度については、2つのグループの間で、左足においても右足においても、有意な差は観察されなかった。関節炎のグループのサイトカイン濃度は、IL−6、IL−1β、TNF−α、およびTGF−β1について、それぞれ、左足においても右足においても同様であった:259.7±38.5pg/ml対219.2±32.4pg/ml、4802.8±365.5pg/ml対4007.1±380.4pg/ml、17.8±1.6pg/ml対18.6±1.9pg/ml、および9735.0±1219.8pg/ml対9161.4±846.1pg/ml。インドメタシンは、(10日間にわたる)3mg/kg/日p.o.の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、約1.3倍に、右足のTGF−β1濃度をわずかではあるが、有意に低下させたが(7057.4±335.6対9161.4±846.1)、IL−6、TNF−α、またはIL−1βの濃度は変化させなかった。有意ではないが同様の効果が、左足においても観察された。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、いずれの足においても、IL−6、IL−1β、TNF−α、またはTGF−β1の濃度には影響を与えなかった。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、右足においてIL−1β濃度を増大させた(6215.3±666.7対4007.1±380.4)。911は、いずれの足おいても他のサイトカイン濃度には影響を与えなかった。
関節炎ではない/ビヒクル(右足)、関節炎/ビヒクル(左足)、およびインドメタシン(n=9)を除き、1グループあたりn=10匹の動物
ダネットt検定:*は、ビヒクルで処置した関節炎のラットに対してp≦0.05。
表16に示すように、24日目(D24)には、血清TGF−β1濃度は、関節炎ではないビヒクルで処置したグループと比較して、関節炎のビヒクルで処置したグループにおいて増大した(81715.7±1984.1対60269.9±2142.8)。インドメタシンは、(10日間にわたる)3mg/kg/日p.o.の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、約1.5倍、血清TGF−β1濃度を有意に低下させた(57222.2±3194.1対81715.7±1984.1)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)および991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、血清TGF−1β濃度を有意に低下させ、その結果、E3で処置したグループと911で処置したグループのサイトカイン濃度は、ビヒクルで処置した関節炎ではないグループにおいて観察されたサイトカイン濃度と匹敵するものであった(60269.9±2142.8に対して、それぞれ、69408.8±3926.7および67214.5±3649.4)。表16.ラットの関節リウマチにおける血清TGF−β1濃度に対する、i.v.注射(2日間:14日目と19日目)後のE3および911の効果
関節炎ではない/ビヒクル(右足)、関節炎/ビヒクル(左足)、およびインドメタシン(n=9)を除き、1グループあたりn=10匹の動物
ダネットt検定:*は、ビヒクルで処置した関節炎のラットに対してp≦0.05。
表17に示すように、白血球および血小板のような血液学的パラメーターは、ビヒクルで処置した関節炎ではないラットと比較して、ビヒクルで処置した関節炎のラットにおいて高かったが(スチューデントt検定、p<0.05)、赤血球、ヘモグロビン、およびヘマトクリット(スチューデントt検定、p>0.05)は変化しなかった。インドメタシンは、(10日間にわたる)3mg/kg/日p.o.の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、血液のパラメーターには影響を与えなかった。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、血液のパラメーターには影響を与えなかった。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、血液のパラメーターには影響を与えなかった。
表17.ラットの関節リウマチにおける血液のパラメーターに対する、i.v.注射(2日間:14日目と19日目)後のE3および911の効果(24日目に測定)
表18に示すように、左と右の後足の重量は、ビヒクルで処置した関節炎ではないラットよりも、ビヒクルで処置した関節炎のラットにおいて重かった(それぞれ、3.43±0.11g対1.98±0.01g、および3.32±0.12g対1.99±0.02g)(スチューデントt検定またはマンホイットニー検定、p<0.05)。インドメタシンは、(10日間にわたる)3mg/kg/日p.o.の後、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、後足の重量を有意に減少させた(左後足:2.23±0.04g対3.43±0.11g;右後足:2.20±0.05g対3.32±0.12g)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、左後足の重量だけを大きく増大させた(左後足:3.86±0.14g対3.43±0.11g;右後足:3.72±0.13g対3.32±0.12g)。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、右後足の重量だけを大きく増大させた(左後足:3.73±0.12g対3.43±0.11g;右後足:3.83±0.15g対3.32±0.12g)。
表19に示すように、ビヒクルで処置した関節炎ではないラットについては、0.0±0.0の合計スコアを観察した。ビヒクルで処置した関節炎のラットは、合計スコアが15.1±1.3であり、脱塩(2.4±0.3)、目減り(2.7±0.3)、軟組織の損傷(3.1±0.2)、および関節窩(3.3±0.2)については高いスコアを、骨膜の反応(1.0±0.3)、骨形成(0.8±0.2)、および奇形(1.8±0、2)については中程度のスコアを有していた。インドメタシン(10日間にわたる、3mg/kg/日p.o.)は、ビヒクルで処置した関節炎のラットと比較して、合計スコアを大きく有意に、約10.7低下させた(4.4±0.9対15.1±1.3)。E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、合計スコアには影響を与えなかった(14.2±1.3対15.1±1.3)。991(14日目(D14)および19日目(D19)に、10mg/kgのi.v.)は、ビヒクルで処置した関節炎のグループと比較して、合計スコアには影響を与えなかった(15.4±1.0対15.1±1.3)。
上記の実験条件下では、E3(14日目(D14)および19日目(D19)に、1mg/kgのi.v.)および991(14日目(D14)および19日目(D19)の2日間に、10mg/kgのi.v.)は強い鎮静効果を示したが、この関節炎モデルにおいては有意な抗炎症効果は示さなかった。
関節リウマチのラットモデルにおける種々の用量の抗NGF抗体E3の効果
関節炎のラットにおいて痛みの軽減を生じるE3の能力を、さらに、E3の投与と痛みの軽減との間での容量応答関係を試験することによって研究した。ラットを、上記のように関節炎を誘導するためにアジュバントで処置した。アジュバントを注射しなかった10匹のラットを、関節炎ではない対照として使用した。アジュバントの注射後14日目に、動物を、上記の基準に基づいて研究への適格性を定め、10匹のラットの8個のグループにランダムに分け、彼らの発声の応答の強さについて試験した。その後、彼らに、14日目に生理食塩水、あるいは、0.003mg/kg、0.01mg/kg、0.03mg/kg、0.1mg/kg、0.3mg/kg、1mg/kg、または5mg/kgの上記のE3抗体を投与した。動物を、16日目、18日目、20日目、および24日目に、彼らの発声の応答について試験した。動物に、18日目に発声試験後に同じ用量の生理食塩水またはE3を再び投与した。動物をまた、14日目から毎日体重を測定した。したがって、動物には、14日目と18日目に所定の用量の抗体または生理食塩水を2回投与し、14日目、16日目、18日目、20日目、および24日目に痛みについて5回評価した。データを、表20〜22、および図20〜22に示す。
以下の材料を、アメリカンタイプカルチャーコレクション、10801 University Boulevard,Manassas,Virginia,USA(ATCC)に寄託した:
重鎖可変領域(Kabat CDRに下線をつける:Chothia CDRは、太字のイタリックである)
Claims (7)
- 重鎖が配列番号16に示されるアミノ酸配列から構成され、軽鎖が配列番号17に示されるアミノ酸配列から構成される、抗体。
- (a)請求項1に記載の抗体、および(b)薬学的に許容される賦形剤を含む、薬学的組成物。
- 請求項1に記載の抗体を含むキット。
- 配列番号16に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド及び配列番号17に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチドのセット。
- 下記(i)、(ii)の両方のポリヌクレオチドを含むベクター、又は、下記(i)のポリヌクレオチドを含むベクター及び(ii)のポリヌクレオチドを含むベクターのセット。
(i) 配列番号16に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド
(ii)配列番号17に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド - 下記(i)、(ii)の両方のポリヌクレオチドを含む宿主細胞。
(i) 配列番号16に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド
(ii)配列番号17に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド - 下記(i)、(ii)の両方のポリヌクレオチドを宿主細胞中で発現させる段階を含む、請求項1に記載の抗体を作成する方法。
(i) 配列番号16に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド
(ii)配列番号17に示されるアミノ酸配列をコードするポリヌクレオチド
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