JP2019065017A - 変性コラーゲン - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、単離されたコラーゲンを用意すること;単離されたコラーゲンを凍結させること;凍結されたコラーゲンを脱水すること;および脱水されたコラーゲンを熟成させること、により得ることができる変性コラーゲンに関する。同じく、変性コラーゲンを製造する方法およびその使用が、開示される。
水性コラーゲン分散体を乾燥または凍結乾燥して、膜またはスポンジを作製することにより、ヒトおよび獣医学において使用するためのコラーゲンを基剤とする材料の調製方法は、当該技術分野で周知である。術後癒着の形成を予防または低減するために、術後に接近した外傷組織表面を分離するための一時的な生分解性バリアとして、コラーゲンを基剤とするフィルムまたは膜を使用することも、公知である。
本発明の第一の態様によれば、単離されたコラーゲン、場合により単離されたコラーゲン分散体を用意すること;単離されたコラーゲンを凍結させること;および凍結されたコラーゲンを脱水すること、により得ることができる変性コラーゲンが提供される。
(a)単離されたコラーゲン、場合により単離されたコラーゲン分散体を用意するステップと;
(b)単離されたコラーゲンを凍結させるステップと、
(c)凍結されたコラーゲンを脱水するステップと
を含む、変性コラーゲンを調製する方法が提供される。
(a)単離されたコラーゲン、場合により単離されたコラーゲン分散体を用意するステップと;
(b)単離されたコラーゲンを凍結させるステップと、
(c)凍結されたコラーゲンを脱水するステップと、
(d)脱水されたコラーゲンを熟成させるステップと
を含む、変性コラーゲンを調製する方法が提供される。
(a)コラーゲンの供給源を用意するステップと;
(b)コラーゲンの供給源のpHを約6.5〜約7.5に上昇させるステップと、
を含む、コラーゲンを単離する方法が提供される。
(a)変性コラーゲンを用意するステップと;
(b)変性コラーゲンの水性分散体を調製するステップと;
(c)水性分散体を分解するステップと;
(d)水性分散体を脱水するステップと、
を含む、本発明の第一の態様による変性コラーゲン、または本発明の第二の態様により調製された変性コラーゲンを含む組成物の製造方法が提供される。
(a)単離されたコラーゲン、場合により単離されたコラーゲン分散体を用意するステップと;
(b)単離されたコラーゲンを凍結させるステップと;
(c)凍結されたコラーゲンを脱水するステップと、
を含む、薬物の持続放出のための薬物送達組成物を調製する方法が提供される。
(a)単離されたコラーゲン、場合により単離されたコラーゲン分散体を用意するステップと;
(b)単離されたコラーゲンを凍結させるステップと;
(c)凍結されたコラーゲンを脱水するステップと;
(d)脱水されたコラーゲンを熟成させるステップと、
を含む、薬物の持続放出のための薬物送達組成物を調製する方法が提供される。
本発明の実施形態を、ここに、以下の非限定的実施例および添付の図面を参照しながら説明し、図中のエラーバーは標準偏差を表す。
実施例1−コラーゲンの単離
コラーゲンは、複数の供給源、例えば動物の皮革および動物の腱から単離することができる。好ましい実施形態において、コラーゲンは、動物の腱、例えばウマまたはウシの腱から単離されるが、線維性組織、場合により結合組織をはじめとする任意の公知コラーゲン供給源が当業者により使用および選択されてもよい。好ましくはコラーゲンは、ウマの腱から単離される。単離の方法において、ウマの腱を粉砕してコラーゲンの供給源を分解した。工程の開始時に、粉砕されたウマの腱を1N水酸化ナトリウム(NaOH)をはじめとする複数の試薬で処理して、プリオンなどの微生物混入物を除去した。過酸化水素での処理ステップおよび異なるpH値での洗浄ステップを実施した後、次の処理ステップのために表面を増加させるのに利用される粉砕ステップを実施した。コラーゲンの供給源の分子量を、追加的に、およそpH2.5でタンパク質分解酵素ペプシンでの処理により低下させた。pHを、1N HClの水性溶液で調整した。ペプシンを用いて、ウマ血清アルブミン(ESA)などの混入した血清成分を分解して、コラーゲン分子の非らせん部分(テロペプチド)を脱離させた。この工程の間、コラーゲン材料も一部、酸媒体に可溶化された。ろ過の後、1N水酸化ナトリウム(NaOH)の添加により、pHレベルを2.5から7.5に上昇させた。このpH調整により、溶液から線維性コラーゲンが沈殿し、その後、遠心分離により濃縮されて、約3〜30%(w/w)の濃度を有するコラーゲン分散体をもたらした。得られた材料は、新鮮なコラーゲンと呼称した。新鮮なコラーゲンは、複数の方法で加工することができる。
水性変性コラーゲン分散体を、予備加熱された(35〜42℃)精製水を用いてステンレス鋼容器で調製して、pH4.0±0.2に調整した。変性コラーゲン塊を破壊してコラーゲン線維を酸性媒体に暴露するためには、高せん断混合が必要であった。高せん断ミキサー(ホモジナイザー)には、回転ホモジナイザーヘッドを通して変性コラーゲンを引出し、近位の静止した固定子ヘッドに対して変性コラーゲンを付勢することにより、高いせん断力を生成するように設計された回転子/固定子ヘッドが含まれた。この設計により、水性分散体調製の開始時に線維性コラーゲン塊を分離するのに必要となる高いせん断力が提供される。しかし他の同等の混合機器を用いてもよく、それは当業者が選択することができる。例えばIKA Ultra−Turraxミキサーを、高速で約2〜約5分間使用してもよい。
組成物(膜)は全て、本明細書の先に記載された方法を用いて0.6%分散体から調製した。コラーゲン分散体に関する試験は全て、配合後1日以内に実施し;膜を用いた特徴づけ実験は全て、非滅菌膜を用いて膜製造後1ヶ月以内に実施した。
新鮮なコラーゲン、凍結コラーゲン、非熟成凍結乾燥粉砕コラーゲン、および実施例2による熟成凍結乾燥粉砕コラーゲンのそれぞれから調製された0.9%コラーゲン分散体の粘度を、ブルックフィールド粘度計(TC−501 Circulating Bathを伴うDigital Rheometer DV−III+)を用いて測定した。粘度値は一定のせん断速度(15s−1)で、25〜40℃の温度範囲にわたり5℃の増分で測定した。温度あたり60回の測定値を平均して、信頼性のある値を得た。
3つの長方形試料(1.5×4cmサイズ)を、新鮮なコラーゲン、凍結コラーゲン、古い凍結乾燥粉砕コラーゲンおよび熟成凍結乾燥粉砕コラーゲンのそれぞれから調製された5つの膜から切断した。これらの試料それぞれを、WFI(注射用水)中に10分間浸漬し、水取込み(湿重量−乾重量)および膨潤(湿潤厚さ−乾燥厚さ)に関して分析した。試料の厚さは、ミツトヨマイクロメータIP54を用いて測定した。
分解試験を、新鮮なコラーゲン、凍結コラーゲン、古い凍結乾燥粉砕コラーゲン、および熟成凍結乾燥粉砕コラーゲンのそれぞれのバッチあたり4〜5枚の膜を用いて実施した。1枚の膜(4.5×4.5cmサイズ)を、ビーカーに入れて、0.2Nリン酸緩衝液(CaCl2でpH7.4)15mLで覆った。コラゲナーゼ(コラゲナーゼIA−S型、滅菌済、50mg、SIGMA, REF C5894)を、WFI 5mLで再構成して、得られた溶液0.5mLを混合物に添加した。ビーカー内の溶液を、37℃の振とう水浴(Julabo SW22)(120rpm)を用いて60分間撹拌した。試料の写真を5分毎に撮影することにより、分解を記録した。結果を表1に示す。凍結乾燥粉砕コラーゲンから調製された膜は、最も急速に分解して残渣を含まなかったが、新鮮なコラーゲンおよび凍結コラーゲンから調製された膜は、かなり緩やかに分解して、小さな線維性凝結物が残留した。
ゲンタマイシンを含む組成物の調製
ゲンタマイシン硫酸塩(Fujian Fukang Pharmaceutical Co. Ltd,中国所在)を含有する組成物(スポンジ)を、溶解試験のために、本明細書に記載された方法の改良法を利用して、1.6%w/wコラーゲン分散体から調製した。各スポンジは、2.5×2.5×0.5cmと測定され、コラーゲン50mgおよびゲンタマイシン硫酸塩50mgを含んだ。手短に述べると、ゲンタマイシン硫酸塩(1.6%w/w)および1N酢酸を、注射用水(WFI)に添加して、透明の溶液が得られるまで撹拌した。コラーゲン(1.6%w/w)を、凍結コラーゲン(製造前に直接解凍)として、非熟成凍結乾燥粉砕コラーゲン(非熟成LMC;製造前に直接凍結乾燥)として、または本発明による変性コラーゲン(熟成LMC)として、その溶液に添加した。混合物を、均質な粘性分散体が得られるまで、市販の高せん断ミキサー(Ultraturrax, IKA,ドイツ所在)を用いて38〜42℃の温度で1〜5分間ホモジナイズした。分散体を250μmメッシュでろ過して、およそ30分間撹拌した。分散体のアリコットをブリスターに充填して、適切なフリーズドライヤーの棚に配置させて、凍結乾燥した。分散体を充填されたブリスターを、分散体を充填されたブリスターを、市販のフリーズドライヤーの棚に移して、0.3℃〜1.5℃のランプレートで約−38℃の温度に凍結させた。およそ30〜60分の平衡期間の後、真空を開始して、棚の温度を約0.5℃/分の速度で約−38℃から約+30℃に引き続き上昇させた。真空と、棚の温度を約−38℃から+30℃に引き続き上昇させることを組み合わせることで、生成物が0℃の温度に達するまでずっと、凍結分散体からの氷の昇華が促進された。コラーゲン温度の均一な上昇を確実にするために、棚の温度を、一定の所望の温度で少なくとも30分間維持しながら、またはコラーゲンが所望の温度に達するまで、少なくとも1つの平衡ステップを実施した。スポンジ状の多孔質組成物を、ブリスターの空洞から取り出し、本明細書の先の実施例2に記載されたパウチに包装した。
ブピバカインHClを含有する組成物(スポンジ)を、溶解試験のために、先に記載されたものと同様の方法に従って製造した。スポンジを、凍結コラーゲン(FWC)および周囲条件下で3年間老化させた脱水凍結コラーゲン(古いLMC)から製造した。各スポンジは、5×5×0.5cmと測定され、コラーゲン75mgおよびブピバカインHCl 100mgを含んだ(図3参照)。同じくスポンジを、周囲条件下で3年間老化させた脱水凍結コラーゲン(古いLMC)、および脱水凍結コラーゲン(非成熟LMC)から製造し、10×10×0.5cmと測定され、ブピバカインHCl 100mgおよびコラーゲン300mgを含んだ(図8B参照)。手短に述べると、1N酢酸をWFIに添加して、簡単に混合した。コラーゲン(0.6%w/w;凍結コラーゲン、凍結乾燥粉砕コラーゲン、または熟成LMCのいずれか)を溶液に添加した。混合物を、均質な粘性分散体が得られるまで、市販の高せん断ミキサー(Ultraturrax, IKA,ドイツ所在)を用いて38〜42℃の温度で1〜5分間ホモジナイズした。分散体を250μmメッシュでろ過した。ブピバカインHCl(0.8%w/w)を少量のWFIに溶解して、コラーゲン分散体に添加した。混合物をおよそ30分間撹拌した。分散体のアリコットをモールドに充填して、市販のフリーズドライヤーの棚に移し、0.3℃〜1.5℃のランプレートで約−38℃の温度に凍結させた。およそ30〜60分の平衡期間の後、真空を開始して、棚の温度を約0.5℃/分の速度で約−38℃から約+30℃に引き続き上昇させた。真空と、棚の温度を約−38℃から+30℃に引き続き上昇させることを組み合わせることで、生成物が0℃の温度に達するまでずっと、凍結分散体からの氷の昇華が促進された。コラーゲン温度の均一な上昇を確実にするために、棚の温度を、一定の所望の温度で少なくとも30分間維持しながら、またはコラーゲンが所望の温度に達するまで、少なくとも1つの平衡ステップを実施した。スポンジ状の多孔質組成物を、モールドから取り出し、本明細書の先の実施例2に記載されたパウチに包装した。
ゲンタマイシン硫酸塩を含有する組成物(スポンジ)の溶解特性を、Dissolution Apparatus Type II(Distek Inc.,米国所在)を用い、製造業者の使用説明書に従って二重測定で分析した。スポンジが浮遊するのを防ぐために、スポンジを特注のステンレス鋼シンカーに配置させた。重量測定されたスポンジをPBS緩衝液(リン酸緩衝生理食塩水、pH7.4、浴槽温度37℃)500mLに浸し、50rpmで24時間撹拌した。試料4.0mLを5、10、30、45、60、120、180、240および1440分後に取り出した。試料を、フタルアルデヒド(試料4mL+1%フタルアルデヒドを含む溶液1.6mL+メタノール4.4mL)での化学的誘導体化反応に、60℃で15分間供した(4/10希釈)。得られた溶液をろ過して、HPLCシステム(島津製作所、日本所在)において、製造業者の使用説明書に従って分析した。RP−18 HPLCカラム、ならびにWFI、メタノール、酢酸および1−ヘプタンスルホン酸ナトリウムを含む移動相を、0.5mL/分の流速で使用した。330nmでのゲンタマイシンのピークC1、C2およびC2aを統合して、試料および同一の試料調製に供された参照標準の曲線下面積から、ゲンタマイシン濃度を算出した。
ブピバカインHClを含有する組成物(スポンジ)の溶解特性を、先に記載された通り、Dissolution Apparatus Type II(Distek Inc.,米国所在)を用いて二重測定で分析した。スポンジが浮遊するのを防ぐために、スポンジを特注のステンレス鋼シンカーに配置させた。手短に述べると、重量測定されたスポンジをPBS緩衝液(リン酸緩衝生理食塩水、pH6.8、浴槽温度37℃)500mLに浸し、50rpmで24時間撹拌した。試料4.0mLを5、10、30、45、60、120、180、240および1440分後に取り出した。試料をPBS緩衝液で1:1希釈してろ過し、HPLCシステム(島津製作所、日本所在)において分析した。RP−18 HPLCカラム、ならびにリン酸緩衝液pH4.5およびアセトニトリルを含む移動相を、0.5mL/分の流速で使用した。230nmでのブピバカインのピークを統合して、試料および参照標準の曲線下面積から、ブピバカイン濃度を算出した。
非熟成凍結乾燥粉砕コラーゲン(非熟成LMC)を、実施例1に記載された通り調製し、本明細書に記載された通りポリエチレン容器(袋)に最長で4週間貯蔵することにより熟成させた。得られた材料は、熟成凍結乾燥粉砕コラーゲン(熟成LMC)と呼称した。
Claims (18)
- (a)単離されたコラーゲンを用意するステップと、
(b)前記単離されたコラーゲンを凍結させるステップと、
(c)前記凍結されたコラーゲンを脱水するステップと、
(d)前記脱水されたコラーゲンを熟成させるステップと
を含み、前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2週間〜6ヶ月間貯蔵することを含む、変性コラーゲンを調製する方法。 - 前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2週間〜6週間貯蔵することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2ヶ月間〜6ヶ月間貯蔵することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で6週間〜2ヶ月間貯蔵することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記用意するステップが、前記用意するステップの前に、流体を除去して、3〜30%(w/w)のコラーゲン粒子濃度を有する分散体を提供するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記凍結ステップが、−33℃〜−42℃の温度に凍結させることを含むか、前記脱水ステップが、圧力を0.05〜0.5ミリバールに低下させることにより水相を除去することを含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記脱水ステップが、前記コラーゲンの温度を+30℃まで上昇させることを含む、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記熟成ステップが、70%〜80%の相対湿度で実施される、請求項1に記載の方法。
- 前記熟成ステップが、75%の相対湿度で実施される、請求項8に記載の方法。
- 前記熟成ステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度かつ70%〜80%の相対湿度で、2〜6週間貯蔵することを含む、請求項1に記載の方法。
- (a)単離されたコラーゲンを用意するステップと、
(b)前記単離されたコラーゲンを凍結させるステップと、
(c)前記凍結されたコラーゲンを脱水するステップと、
(d)前記脱水されたコラーゲンを熟成させるステップと
を含み、前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2週間〜6ヶ月間貯蔵することを含み、前記方法は、薬物を準備し、それに前記熟成されたコラーゲンを添加するステップ、または前記薬物を前記熟成されたコラーゲンに添加するステップを更に含む、薬物の持続放出のための薬物送達組成物を調製する方法。 - 前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2週間〜6週間貯蔵することを含む、請求項11に記載の方法。
- 前記熟成させるステップが、前記脱水されたコラーゲンを40℃の温度で2ヶ月間〜6ヶ月間貯蔵することを含む、請求項11に記載の方法。
- 前記熟成ステップが、70%〜80%の相対湿度で実施される、請求項11、12、または13に記載の方法。
- 前記薬物が、ゲンタマイシン((3R,4R,5R)−2−{[(1S,2S,3R,4S,6R)−4,6−ジアミノ−3−{[(2R,3R,6S)−3−アミノ−6−[(1R)−1−(メチルアミノ)エチル]オキサン−2−イル]オキシ}−2−ヒドロキシシクロヘキシル]オキシ}−5−メチル−4−(メチルアミノ)オキサン−3,5−ジオール)またはそれらの塩もしくはプロドラッグ、およびブピバカイン((RS)−1−ブチル−N−(2,6−ジメチルフェニル)ピペリジン−2−カルボキサミド)またはそれらの塩から選択される、請求項11に記載の方法。
- 前記薬物を含有する薬物送達組成物を凍結乾燥および/または脱水するステップを更に含む、請求項11、12、または13に記載の方法。
- 請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法によって得られた変性コラーゲン。
- 請求項11〜16のいずれか1項に記載の方法によって得られた薬物の持続放出のための薬物送達組成物。
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