JP2017521045A - アンジオポエチン様因子3発現を調節するための組成物及び方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、電子形式の配列表とともに出願されている。この配列表は、2015年4月28日に作成されたサイズ0.98MBのBIOL0254WOSEQ_ST25.txtという名称のファイルとして提供される。この配列表の電子形式の情報は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
発明の分野
動物においてアンジオポエチン様因子3(ANGPTL3)のmRNA及びタンパク質の発現を低下させるための方法、化合物、及び組成物が提供される。また、動物においてANGPTL3に関連する疾患または状態を軽減するためのANGPTL3阻害剤を含む方法、化合物、及び組成物が提供される。そのような方法、化合物、及び組成物は、例えば、動物において心血管疾患またはメタボリック症候群、またはその症状の任意の1つ以上の治療、予防、遅延、または改善に有用である。
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される共役アンチセンス化合物を提供する。
ある特定の実施形態では、次の構造を有する共役アンチセンス化合物が提供される。
R1は−OCH2CH2OCH3(MOE)であるとともにR2はHであるか、または、R1及びR2は互いに結合して架橋を形成し、ここで、R1は−O−であるとともにR2は−CH2−、−CH(CH3)−、または−CH2CH2−であり、かつ、R1及びR2は、形成される架橋が−O−CH2−、−O−CH(CH3)−、及び−O−CH2CH2−から選択されるよう直接結合され、
また、同一環上のR3とR4との各対は、環ごとに独立して、R3はH及び−OCH2CH2OCH3から選択されるとともにR4はHであるか、またはR3とR4が互いに結合して架橋を形成し、ここで、R3は−O−であるとともにR4は−CH2−、−CH(CH3)−、または−CH2CH2−であり、かつ、R3及びR4は、形成される架橋が−O−CH2−、−O−CH(CH3)−、及び−O−CH2CH2−から選択されるよう直接結合され、
また、R5はH及び−CH3から選択され、
また、Zは、S−及びO−から選択される]。
ある特定の実施形態では、ANGPTL3発現の調節は細胞または組織内で起こる。ある特定の実施形態において、調節は動物の細胞または組織内で起こる。ある特定の実施形態において、動物はヒトである。ある特定の実施形態において、調節はANGPTL3 mRNAレベルの低下である。ある特定の実施形態において、調節はANGPTL3ンパク質レベルの低下である。ある特定の実施形態において、ANGPTL3 mRNA及びタンパク質レベルの双方を低下させる。そのような低下は、時間依存的または用量依存的に生じ得る。
定義
特別に定義しない限り、本明細書に記載する分析化学、合成有機化学、並びに薬化学および製薬化学に関連して用いた専門語、並びにそれらの手順および技術は、当該技術分野で周知の一般に用いられているものである。化学合成および化学的分析には標準技術を用いることができる。それらのある特定の技術及び手順は、例えば、「Carbohydrate Modifications in Antisense Research” Edited by Sangvi and Cook,American Chemical Society ,Washington D.C.,1994、 ”Remington’s Pharmaceutical Sciences,” Mack Publishing Co.,Easton,Pa.,21st edition,2005、及び「Antisense Drug Technology,Principles,Strategies,and Applications” Edited by Stanley T.Crooke,CRC Press,Boca Raton,Florida、及びSambrook et al.,“Molecular Cloning,A laboratory Manual,” 2nd Edition,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989に見出すことができ、これらはいかなる目的においても参照により本明細書に組み込まれるものとする。許される場合には、すべての特許、出願、公開出願、およびその他の刊行物、国立バイオテクノロジー情報センター(NCBI)等のデータベースを介して入手可能なGENBANKアクセション番号および関連する配列情報、並びに本明細書の開示全体で参照されるその他のデータは、本明細書で論じる資料部分およびその資料全体について参照により本明細書に組み込まれる。
本明細書において、「ヌクレオシド」は、核酸塩基部分及び糖部分を含む化合物を意味する。ヌクレオシドには、(DNA及びRNAにみられる)天然に生じるヌクレオシド及び修飾ヌクレオシドが挙げられるが、これに限定されるものではない。ヌクレオシドをホスフェート部分に連結してよい。
本明細書において、「天然に生じる糖部分」は、天然に生じるRNAに見られるリボフラノシルまたは天然に生じるDNAに見られるデオキシリボフラノシルを意味する。
本明細書において、「修飾糖部分」は置換糖部分または糖代用物を意味する。
本明細書において、「2’−F ヌクレオシド」とは、2’位にフッ素を含む糖を含むヌクレオシドを言う。特に明記しない限り、2’−F ヌクレオシドのフッ素は(天然リボースのOHを置換する)リボ位にある。
本明細書において、「修飾ヌクレオシド」とは、天然に生じるRNAまたはDNAヌクレオシドと比較して少なくとも1つの化学修飾を含むヌクレオシドを意味する。修飾ヌクレオシドは、修飾糖部分及び/または修飾核酸塩基を含む。
本明細書において、「拘束エチルヌクレオシド」または「cEt」とは、4’−CH(CH3)−O−2’架橋を含む二環式糖部分を含むヌクレオシドを意味する。
本明細書において、「2’−置換ヌクレオシド」とは、2’位にHまたはOH以外の置換基を含むヌクレオシドを意味する。特に明記しない限り、2’−置換ヌクレオシドは二環式ヌクレオシドではない。
本明細書において、「ヌクレオシド間結合」とは、一つのオリゴヌクレオチド内で隣接するヌクレオシド同士の共有結合を意味する。
本明細書において、「修飾ヌクレオシド間結合」とは、天然に生じるヌクレオシド間結合以外の任意のヌクレオシド間結合を意味する。
本明細書において、「リン連結基」とは、リン原子を含む連結基を意味する。リン連結基には、以下の式
Ra及びRdはそれぞれ、独立して、O、S、CH2、NH、またはNJ1であり、J1は、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
RbはOまたはSであり、
RcはOH、SH、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、アミノまたは置換アミノであり、かつ
J1はRbはOまたはSである]を有する基が含まれるが、これに限定されない。リン連結基には、ホスホジエステル、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホネート、ホスホラミデート、ホスホロチオアミデート、チオノアルキルホスホネート、ホスホトリエステル、チオノアルキルホスホトリエステル及びボラノホスフェートが含まれるが、これらに限定されない。
本明細書において、「非ヌクレオシド間リン連結基」とは、2つのヌクレオシドを直接連結しないリン連結基を意味する。ある特定の実施形態では、非ヌクレオシド間リン連結基はヌクレオシドをヌクレオシド以外の基に連結する。の実施形態では、非ヌクレオシド間リン連結基は、どちらもヌクレオシドではない2つの基を連結する。
本明細書において、「非ヌクレオシド間中性連結基とは、2つのヌクレオシドを直接連結しない中性連結基を意味する。ある特定の実施形態では、非ヌクレオシド間中性連結基は、ヌクレオシドをヌクレオシド以外の基に連結する。ある特定の実施形態では、非ヌクレオシド間中性連結基は、どちらもヌクレオシドではない2つの基を連結する。
本明細書において、「炭水化物誘導体」とは、出発物質または中間体として炭水化物を用いて合成されうる任意の化合物を意味する。
「保護基」とは、当業者に知られている任意の化合物または保護基を意味する。保護基の非限定的な例は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる”Protective Groups in Organic Chemistry”,T. W. Greene,P. G. M. Wuts,ISBN 0−471−62301−6,John Wiley & Sons,Inc,New York”に見いだすことができる。
本明細書において、「本質的に未変化」とは、特定のパラメータ、特に、変化がより大きい別のパラメータに比して変化がほとんどない、または全くないことを意味する。ある特定の実施形態では、変化が5%未満の場合、パラメータは本質的に未変化である。ある特定の実施形態では、別のパラメータの変化が少なくとも10倍であるのに対し変化が2倍未満の場合、パラメータは本質的に未変化である。例えば、ある特定の実施形態では、アンチセンス活性は標的核酸の量的変化である。ある特定のそのような実施形態において、標的ではない核酸の量的変化が標的核酸のそれよりはるかに少ないが、その変化が必ずしもゼロではない場合、標的ではない核酸の量は本質的に未変化である。
本明細書において、オリゴマー化合物(例えば、連結されたヌクレオシド、オリゴヌクレオチド、または核酸)に関して使用する「相補的」とは、そのようなオリゴマー化合物またはその領域が、別のオリゴマー化合物またはその領域に核酸塩基相補性を介してハイブリダイズする能力を意味する。相補的オリゴマー化合物は、必ずしも各ヌクレオシドにおいて核酸塩基相補性を有しているわけではない。むしろ、いくつかのミスマッチが許容される。ある特定の実施形態では、相補的オリゴマー化合物または領域は、核酸塩基の70%において相補的である(70%相補性)。ある特定の実施形態では、相補的オリゴマー化合物または領域は、80%相補的である。ある特定の実施形態では、相補的オリゴマー化合物または領域は、90%相補的である。ある特定の実施形態では、相補的オリゴマー化合物または領域は、95%相補的である。ある特定の実施形態では、相補的オリゴマー化合物または領域は、100%相補的である。
本明細書において、「結合モチーフ」とは、オリゴヌクレオチドまたはその領域における結合修飾パターンを意味する。そのようなオリゴヌクレオチドのヌクレオシドは修飾されていても修飾されていなくてもよい。特に明記しない限り、結合のみを説明する本明細書におけるモチーフは、結合モチーフを意図している。したがって、そのような事例では、ヌクレオシドは限定されない。
「ヘテロアリール」及び「ヘテロ芳香族」とは、少なくとも1つの環が芳香環であるとともに1つ以上のヘテロ原子を含んでいる、単環式または多環式の芳香環、芳香環系若しくは縮合芳香環系を含むラジカルを意味する。ヘテロアリールは、縮合環の1つ以上がヘテロ原子を含有していない系を含む縮合環系も意味する。ヘテロアリール基には、典型的に、硫黄、窒素、または酸素から選択される1つの環原子が含まれる。ヘテロアリール基の例として、ピリジニル、ピラジニル、ピリミジニル、ピロリル、ピラゾリル、イミダゾリル、チアゾリル、オキサゾリル、イソオキサゾリル、チアジアゾリル、オキサジアゾリル、チオフェニル、フラニル、キノリニル、イソキノリニル、ベンズイミダゾリル、ベンゾオキサゾリル、キノキサリニルなどが挙げられるが、これらに限定されない。ヘテロアリール遊離基は、直接、または脂肪族基若しくはヘテロ原子などの連結部分を介して親分子に結合させることができる。本明細書においてヘテロアリール基には、任意選択で、さらなる置換基を含んでよい。
「3’標的部位」または「3’終止部位」とは、特定アンチセンス化合物の最も3’側のヌクレオチドに相補的な標的核酸のヌクレオチドを指す。
本明細書において、「5−メチルシトシン」とは、5’位に結合しているメチル基で修飾されたシトシンを意味する。5−メチルシトシンは修飾核酸塩基である。
本明細書において、「活性アンチセンス化合物」とは、標的の核酸レベル若しくはタンパク質レベルを低下させるアンチセンス化合物を意味する。
本明細書において、「薬剤」とは、動物に投与した場合に治療上の利益を与えうる活性物質を意味する。「第1剤」とは、本発明の治療化合物を意味する。例えば、第1剤は、ANGPTL3を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドであり得る。「第2剤」とは、本発明の第2の治療化合物(例えば、ANGPTL3を標的とする第2のアンチセンスオリゴヌクレオチド)および/または非ANGPTL3治療化合物を意味する。
本明細書において、「ANGPTL3の発現」とは、ANGPTL3をコードする遺伝子から転写されたmRNAのレベル、またはmRNAから翻訳されたタンパク質のレベルを意味する。ANGPTL3の発現は、ノーザンブロットまたはウエスタンブロット等の当該技術分野において公知の方法により測定できる。
本明細書において、「冠動脈心疾患(CHD)」とは、心臓に血液および酸素を供給する小血管の狭窄を意味し、これは多くの場合アテローム性動脈硬化症により生じる。
本明細書において、「代謝性または心血管系の疾患を有する対象を特定する」または「代謝性または心血管系の疾患を有する対象を選択する」とは、代謝性疾患、心血管系疾患、若しくはメタボリック症候群の診断を受けた対象を選択または同定すること;または、代謝性疾患、心血管系疾患、若しくはメタボリック症候群の何らかの症状、例えば、限定されるものではないが、高コレステロール血症、高血糖症、高脂血症、高トリグリセリド血症、高血圧、インスリン抵抗性の上昇、インスリン感受性の低下、正常より多い体重、および/または正常より高い体脂肪量、またはその任意の組合せを有する対象を選択または特定することを意味する。そのような特定は、任意の方法、例えば、限定されるものではないが、標準的な臨床検査または評価、例えば血清若しくは循環(血漿)コレステロールの測定、血清若しくは循環(血漿)血糖の測定、血清若しくは循環(血漿)トリグリセリドの測定、血圧の測定、体脂肪量の測定、体重の測定等により実現してよい。
本明細書において、「個体」または「対象」または「動物」とは、処置または治療に選択されたヒトまたは非ヒト動物を意味する。
本明細書において、「脂質低下」とは、対象における1種類以上の脂質の低下を意味する。脂質低下は、経時的な1つ以上の投薬によって起こり得る。
本明細書において、「MTP阻害剤」とは、酵素、ミクロソームトリグリセリド輸送タンパク質を阻害する薬剤を意味する。
本明細書において、「薬理学的に許容される担体」とは、オリゴヌクレオチドの構造または機能を妨害しない媒体または希釈剤を意味する。ある特定のそのような担体は、例えば、対象が経口摂取するための錠剤、丸剤、糖衣錠、カプセル剤、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー、懸濁液、および薬用ドロップとして医薬組成物を製剤化することを可能にする。ある特定のそのような担体は、注射または注入用に医薬組成物を製剤化することを可能にする。例えば、薬理学的に許容される担体は無菌水溶液であり得る。
本明細書において、「皮下投与」とは、皮膚の直下での投与を意味する。
本明細書において、「標的領域」とは、少なくとも1つの同定可能な構造、機能、または特徴を有する標的核酸の一部分と定義される。
本明細書において、「ライフスタイルの治療的変更」とは、脂肪/脂肪組織質量および/またはコレステロールを下げることを意図した食事およびライフスタイルの変更を意味する。そのような変更により心疾患を発達させるリスクを低減することができ、これらには、食事から摂取する一日の総カロリー、総脂肪、飽和脂肪、多価不飽和脂肪、一価不飽和脂肪、炭水化物、タンパク質、コレステロール、不溶性繊維についての推奨および身体活動についての推奨を含んでよい。
本明細書において、「2型糖尿病」(「2型真性糖尿病」または「真性糖尿病、2型」、及び以前の呼称で「真性糖尿病2型」、「インスリン非依存性糖尿病(NIDDM)」、「肥満関連糖尿病」、または成人発症型糖尿病」としても知られる)とは、インスリン抵抗性、相対的インスリン欠乏、および高血糖症を主な特徴とする代謝障害である。
ある特定の実施形態
本明細書に開示するある特定の実施形態では、ANGPTL3は、GenBankアクセション番号NM_014495.2(配列番号1として本明細書に組み込まれる)に記載の配列を有する。ある特定の実施形態では、ANGPTL3は、GenBankアクセション番号NT_032977.9ヌクレオチド33032001〜33046000(配列番号2として本明細書に組み込まれる)に記載の配列を有する。
本明細書に開示するある特定の実施形態は、修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物または組成物を提供し、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドは、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、配列番号1の核酸塩基1140〜1159に相補的な核酸塩基配列を含み、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、配列番号1に対して少なくとも80%相補的である。
本明細書に開示するある特定の実施形態は、修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物または組成物を提供し、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドは、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、配列番号1の核酸塩基1907〜1926に相補的な核酸塩基配列を含み、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、配列番号1に対して少なくとも80%相補的である。
本明細書に開示するある特定の実施形態は、修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物または組成物を提供し、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドは、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、配列番号1の核酸塩基147〜162に相補的な核酸塩基配列を含み、ここで、かかる修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、配列番号1に対して少なくとも80%相補的である。
また、同一環上のR3とR4との各対は、環ごとに独立して、R3はH及び−OCH2CH2OCH3から選択されるとともにR4はHであるかまたはR3とR4とが互いに結合して架橋を形成し、ここで、R3は−O−であるとともにR4は−CH2−、−CH(CH3)−、または−CH2CH2−であり、R3及びR4を、形成される架橋が−O−CH2−、−O−CH(CH3)−、及び−O−CH2CH2−から選択されるよう直接結合させ、
また、R5はH及び−CH3から選択され、
また、Zは、S−及びO−から選択される]。
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、少なくとも1つリン連結基または中性連結基を含む。
mは1〜12である]
の中から選択される構造を含む。
Z1はC(=O)O−R2であり、
Z2はH、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
R2はH、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、かつ
各m1は独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]。
各m1は独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]。
mは1〜12である]の中から選択される構造を有するテザーを有する。
ある特定の実施形態では、共役基は、修飾オリゴヌクレオチドに共有結合で結合している。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、
各nは独立して0または1であり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
Cは、共役リンカーであり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される構造を有する。
各nは、独立して1〜20である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーはピロリジンを含む。ある特定の実施形態では、共役リンカーはピロリジンを含まない。
ある特定の実施形態では、共役リンカーは1つのアミドを含む。ある特定の実施形態では、共役リンカーは少なくとも2つのアミドを含む。ある特定の実施形態では、共役リンカーは、アミドを含まない。ある特定の実施形態では、共役リンカーはポリアミドを含む。
ある特定の実施形態では、共役リンカーは1つ以上のジスルフィド結合を含む。
ある特定の実施形態では、共役リンカーはタンパク質結合部分を含む。ある特定の実施形態では、タンパク質結合部分は脂質を含む。ある特定の実施形態では、タンパク質結合部分は、コレステロール、コール酸、アダマンタン酢酸、1−ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、1,3−ビス−O(ヘキサデシル)グリセロール、ゲラニルオキシヘキシル基、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、1,3−プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、O3−(オレオイル)リトコール酸、O3−(オレオイル)コレン酸、ジメトキシトリチル、またはフェノキサジン)、ビタミン(例えば葉酸塩、ビタミンA、ビタミンE、ビオチン、ピリドキサール)、ペプチド、炭水化物(例えば単糖、二糖、三糖、四糖、オリゴ糖、多糖)、エンドソーム溶解成分、ステロイド(例えばウバオール、ヘシゲニン(hecigenin)、ジオスゲニン)、テルペン(例えばトリテルペン、例えばサルササポゲニン、フリーデリン、エピフリーデラノール誘導体化リトコール酸)、またはカチオン性脂質の中から選択される。ある特定の実施形態では、タンパク質結合部分は、飽和または不飽和のC16〜C22長鎖脂肪酸、コレステロール、コール酸、ビタミンE、アダマンタンまたは1−ペンタフルオロプロピルの中から選択される。
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、分岐基は、以下の構造の1つを有する
各nは、独立して1〜20である]。
ある特定の実施形態では、分岐基は、以下の構造の1つを有する
各nは、独立して1〜20である]。
ある特定の実施形態では、分岐基は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、分岐基は以下の構造を有する
mは2〜6である。
ある特定の実施形態では、分岐基は以下の構造を有する
式中、各nは1〜20の整数である]を含む。
ある特定の実施形態では、分岐基は、
ある特定の実施形態では、各テザーは、
Z1は、C(=O)O−R2であり、
Z2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
R2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、かつ
各m1は、独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]の中から選択される。
各m2は独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm2は0より大きい]の中から選択される。
mは1〜12である]の中から選択される。
ある特定の実施形態では、少なくとも1つのテザーは、エチレングリコールを含む。
ある特定の実施形態では、少なくとも1つのテザーは、アミンを含む。
ある特定の実施形態では、各テザーは、
各pは1〜約6である]の中から選択される。
ある特定の実施形態では、各テザーは、
ある特定の実施形態では、各テザーは、以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、各テザーは、以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、テザーは、
ある特定の実施形態では、リガンドはガラクトースである。
ある特定の実施形態では、リガンドはマンノース−6−リン酸塩である。
ある特定の実施形態では、各リガンドは、
ある特定の実施形態では、各リガンドは、以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、共役基は、以下の構造を有する、細胞を標的とする部分を含む
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は以下の構造を有する
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、
ある特定の実施形態では、共役基は、ホスホジエステル、アミド、またはエステルの中から選択される切断可能部分を含む。
ある特定の実施形態では、共役基は、切断可能部分を含まず、また、かかる共役基は、該共役基とオリゴヌクレオチドとの間のホスホロチオエート結合を含む。
ある特定の実施形態では、共役基は、エステル切断可能部分を含む。
ある特定の実施形態では、化合物は、以下の構造を有する
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Zは、Hまたは連結された固体支持体であり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Zは、Hまたは連結された固体支持体であり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]を含む。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]を含む。
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]を含む。
ある特定の実施形態において、動物はヒトである。
ある特定の実施形態では、本明細書に開示する共役アンチセンス化合物の投与により、トリグリセリド値、コレステロール値、インスリン抵抗性、グルコース値またはその組み合わせなど脂質濃度が低下する。個々別々の1つ以上の濃度が、少なくとも5%、少なくとも10%、少なくとも20%、少なくとも30%、少なくとも35%、少なくとも40%、少なくとも45%、少なくとも50%、少なくとも55%、少なくとも60%、少なくとも65%、少なくとも70%、少なくとも75%、少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%または少なくとも95%低下し得る。共役アンチセンス化合物の投与よにより、インスリン感受性または肝インスリン感受性が改善され得る。本明細書に開示する共役アンチセンス化合物の投与により、アテローム性動脈硬化班、肥満、グルコース、脂質、グルコース耐性、コレステロールの低下、またはインスリン感受性若しくはその任意の組み合わせの改善がもたらされ得る。
アンチセンス化合物
オリゴマー化合物には、オリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオシド、オリゴヌクレオチド類似体、オリゴヌクレオチド模倣物、アンチセンス化合物、アンチセンスオリゴヌクレオチド、及びsiRNAが挙げられるが、これに限定されるものではない。オリゴマー化合物は、標的核酸に対して「アンチセンス」であり得、これは、該化合物が水素結合によって標的核酸にハイブリダイゼーションされうることを意味する。
ある特定のアンチセンス化合物モチーフ及び機序
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物に高い阻害活性、標的核酸に対する高い結合親和性、または生体内でのヌクレアーゼによる分解に対する耐性といった特性を付与するため、アンチセンス化合物はパターンまたはモチーフで配された化学修飾サブユニットを有してる。キメラアンチセンス化合物は、典型的に、ヌクレアーゼ分解に対する高い耐性、高い細胞取り込み、標的核酸に対する高い結合親和性、及び/または高い阻害活性が付与されるよう修飾された領域を少なくとも1つ含有する。キメラアンチセンス化合物の第2の領域では、所望される別の特性、例えば、RNA:DNA二重鎖のRNA鎖を切断する細胞エンドヌクレアーゼRNase Hの基質として作用する特性が付与されてよい。
RNase H媒介性アンチセンス
ある特定の実施形態では、アンチセンス活性は、少なくとも一部は、RNase Hによる標的RNAの分解に起因する。RNase Hは、RNA:DNA二重鎖のRNA鎖を切断する細胞エンドヌクレアーゼである。哺乳動物細胞において「DNA様」の一本鎖アンチセンス化合物はRNase H活性を誘発することが当技術分野で知られている。したがって、DNAヌクレオシドまたはDNA様ヌクレオシドの少なくとも一部分を含むアンチセンス化合物は、RNase Hを活性化して、標的核酸の切断をもたらしてよい。ある特定の実施形態では、RNase Hを利用するアンチセンス化合物は1つ以上の修飾ヌクレオシドを含む。ある特定の実施形態では、そのようなアンチセンス化合物は、修飾ヌクレオシド1〜8個のブロックを少なくとも1つ含む。ある特定のそのような実施形態では、修飾ヌクレオシドはRNase H活性を支持しない。ある特定の実施形態では、そのようなアンチセンス化合物が、本明細書に記載するギャップマーである。ある特定のそのような実施形態では、ギャップマーのギャップはDNAヌクレオシドを含む。ある特定のそのような実施形態では、ギャップマーのギャップはDNA様ヌクレオシドを含む。ある特定のそのような実施形態では、ギャップマーのギャップはDNAヌクレオシドとDNA様ヌクレオシドを含む。
[式中、
各Aは、独立して2’−置換ヌクレオシドであり、
各Bは、独立して二環式ヌクレオシドであり、
各Jは、独立して2’−置換ヌクレオシドまたは2’−デオキシヌクレオシドであり、
各Dは、2’−デオキシヌクレオシドであり、
mは0〜4、nは0〜2、pは0〜2、rは0〜2、tは0〜2、vは0〜2、wは0〜4、xは0〜2、yは0〜2、zは0〜4、gは6〜14であるが、
m、n、及びrの少なくとも1つは0以外であり、
w及びyの少なくとも1つは0以外であり、
m、n、p、r、及びtの和は2〜5であり、かつ
v、w、x、y、及びzの和2〜5である]。
RNAi化合物
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は干渉RNA化合物(RNAi)であり、これには、二本鎖RNA化合物(短鎖干渉RNAまたはsiRNAともいう)と一本鎖RNAi化合物(すなわちssRNA)が含まれる。そのような化合物は、少なくとも部分的にはRISC経路を介して作用し、標的核酸の分解及び/または隔離を行う(したがって、マイクロRNA/マイクロRNA模倣化合物を含む)。ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、そのような機序に特に適したアンチセンス化合物となる修飾を含む。
1. ssRNA化合物
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、一本鎖RNAi化合物(ssRNA)としての使用に特に適したものも含めて、修飾5’末端を含む。ある特定のそのような実施形態では、5’末端は修飾ホスフェート部分を含む。ある特定の実施形態では、そのような修飾ホスフェートは安定化されている(例えば、非修飾5’−ホスフェートと比較して分解/切断に対する耐性がある)。ある特定の実施形態では、そのような5’末端ヌクレオシドは5’−リン部分を安定化させる。ある特定の修飾5’末端ヌクレオシドは当該技術分野、例えばWO/2011/139702に見い出され得る。
T1は、任意選択で保護されたリン部分であり、
T2は、式IIcの化合物とオリゴマー化合物とを連結するヌクレオシド間連結基であり、
Aは、式
Q1及びQ2は、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニル、置換C2〜C6アルキニルまたはN(R3)(R4)であり、
Q3は、O、S、N(R5)またはC(R6)(R7)であり、
各R3、R4 R5、R6及びR7は、互いに独立して、H、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキルまたはC1〜C6アルコキシであり、
M3は、O、S、NR14、C(R15)(R16)、C(R15)(R16)C(R17)(R18)、C(R15)=C(R17)、OC(R15)(R16)またはOC(R15)(Bx2)であり、
R14は、H、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
R15、R16、R17及びR18は、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
BX1は、複素環式塩基部分であるか、
またはBx2が存在するならば、Bx2は複素環式塩基部分であり、BX1はH、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
J4、J5、J6及びJ7は、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであるか、
またはJ4は、J5またはJ7の一方と、O、S、NR19、C(R20)(R21)、C(R20)=C(R21)、C[=C(R20)(R21)]及びC(=O)から選択される1〜3個の連結したビラジカル基を含む架橋を形成し、かつ、残るJ5、J6及びJ7のうちの2つは、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
各R19、R20及びR21は、互いに独立して、H、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
Gは、H、OH、ハロゲンまたはO−[C(R8)(R9)]n−[(C=O)m−X1]j−Zであり、
各R8及びR9は、互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルでありであり、
X1はO、SまたはN(E1)であり、
Zは、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニル、置換C2〜C6アルキニルまたはN(E2)(E3)であり、
E1、E2及びE3は、それぞれ互いに独立して、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
nは、1〜約6であり、
mは、0または1であり、
jは、0または1であり、
各置換基は、互いに独立して、ハロゲン、OJ1、N(J1)(J2)、=NJ1、SJ1、N3、CN、OC(=X2)J1、OC(=X2)−N(J1)(J2)及びC(=X2)N(J1)(J2)から選択される、任意選択で保護された置換基を1つ以上含み、
X2は、O、SまたはNJ3であり、
各J1、J2及びJ3は、互いに独立して、HまたはC1〜C6アルキルであり、
jが1の時、Zはハロゲン若しくはN(E2)(E3)以外であり、かつ
ここで、上記オリゴマー化合物は8〜40個の単量体サブユニットを含み、標的核酸の少なくとも一部分にハイブリダイズ可能である]を有する。
ある特定の実施形態では、J4、J5、J6及びJ7は各々Hである。ある特定の実施形態では、J4はJ5またはJ7の一方と架橋を形成する。
Q1及びQ2は、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシまたは置換C1〜C6アルコキシである]の1つを有する。ある特定の実施形態では、Q1及びQ2は各々Hである。ある特定の実施形態では、Q1及びQ2は、それぞれ互いに独立して、Hまたはハロゲンである。ある特定の実施形態では、Q1及びQ2はHであり、他方のQ1及びQ2はF、CH3またはOCH3である。
Ra及びRcは、それぞれ互いに独立して、保護ヒドロキシル、保護チオール、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C1〜C6アルコキシ、置換C1〜C6アルコキシ、保護アミノまたは置換アミノであり、かつ
Rbは、OまたはSである]を有する。ある特定の実施形態では、RbはOであり、Ra及びRcは、それぞれ互いに独立して、OCH3、OCH2CH3またはCH(CH3)2である。
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、特にssRNAに好適なものも含めて、オリゴヌクレオチドまたはその領域に沿って、所定のパターンまたは糖修飾モチーフで配置された、1つ以上の修飾糖部分及び/または天然に生じる糖部分を含む。そのようなモチーフには、本明細書で論じる糖修飾及び/または他の既知の糖修飾のいずれも含まれてよい。
AABBAA、
ABBABB、
AABAAB、
ABBABAABB、
ABABAA、
AABABAB、
ABABAA、
ABBAABBABABAA、
BABBAABBABABAA、または
ABABBAABBABABAA
[式中、Aは第1タイプのヌクレオシドであり、Bは第2タイプのヌクレオシドである]。ある特定の実施形態では、A及びBはそれぞれ、2’−F、2’−OMe、BNA、及びMOEから選択される。
ある特定の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、2−2−3モチーフを有する領域を含む。そのような領域は、以下のモチーフを含む:
−(A)2−(B)x−(A)2−(C)y−(A)3−
[式中、Aは第1タイプの修飾ヌクレオシドであり、
B及びCは、修飾がAとは異なるヌクレオシドであるが、BとCの修飾は互いに同じでも異なっていてもよく、
x及びyは、1〜15である]。
5’−(Q)−(AB)xAy−(D)z
[式中、
Qは、安定化されたホスフェート部分を含むヌクレオシドである。ある特定の実施形態では、Qは、式IIcまたは式IIeを有するヌクレオシドであり、
Aは、第1タイプの修飾ヌクレオシドであり、
Bは、第2タイプの修飾ヌクレオシドであり、
Dは、それに隣接するヌクレオシドとは異なる修飾を含む修飾ヌクレオシドである。したがって、yが0ならば、Dには、Bとは異なって修飾をしなければならず、yが1ならば、Dには、Aとは異なる修飾をしなければならない。ある特定の実施形態では、DはAともBとも異なる。
Xは5〜15であり、
Yは、0または1であり、
Zは、0〜4である]。
5’−(Q)−(A)x−(D)z
[式中、
Qは、安定化されたホスフェート部分を含むヌクレオシドである。ある特定の実施形態では、Qは、式IIcまたは式IIeを有するヌクレオシドであり、
Aは、第1タイプの修飾ヌクレオシドであり、
Dは、Aとは異なる修飾を含む修飾ヌクレオシドである。
Xは11〜30であり、
Zは、0〜4である]。
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、二本鎖のRNAi化合物(siRNA)である。そのような実施形態では、一方の鎖または両鎖は、ssRNAについて上記修飾モチーフのいずれを含んでもよい。ある特定の実施形態では、ssRNA化合物は非修飾RNAであってよい。ある特定の実施形態では、siRNA化合物は、非修飾RNAヌクレオシド、及び修飾ヌクレオシド間結合を含んでよい。
占有
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、RNase Hによる標的核酸の切断をもたらすとも、RISC経路による切断または隔離をもたらすとも予想されない。ある特定のそのような実施形態では、アンチセンス活性は占有に起因してよく、その場合、ハイブリダイズしたアンチセンス化合物の存在により標的核酸の活性が損なわれる。ある特定のそのような実施形態では、アンチセンス化合物は、一様に修飾されていてもよいし、複数の修飾の混在並びに/または修飾ヌクレオシド及び非修飾ヌクレオシドを含んでよい。
標的核酸、標的領域及びヌクレオチド配列
ANGPTL3をコードするヌクレオチド配列には、以下が含まれるが、これらに限定されない:GenBankアクセション番号NM_014495.2(配列番号1として本明細書に組み込まれる)またはGenBankアクセション番号NT_032977.9ヌクレオチド33032001〜33046000(配列番号2として本明細書に組み込まれる)に記載のヒトの配列。本明細書に含まれる実施例の各配列番号に記載の配列は、糖部分、ヌクレオシド間結合、または核酸塩基に対するいかなる修飾にも依存しないことが理解される。したがって、配列番号により定義されるアンチセンス化合物は、独立して、糖部分、ヌクレオシド間結合、または核酸塩基に対する1つ以上の修飾を含み得る。Isis番号(Isis No)により記載されるアンチセンス化合物は核酸塩基配列とモチーフの組み合わせを示す。
ハイブリダイゼーション
いくつかの実施形態では、ハイブリダイゼーションは本明細書に開示するアンチセンス化合物とANGPTL3核酸の間で生じる。最も一般的なハイブリダイゼーション機構では、核酸分子の相補的核酸塩基間の水素結合(例えば、ワトソン−クリック型、フーグスティーン型または逆フーグスティーン型水素結合)を伴う。
配列が標的核酸と特異的にハイブリダイズできるか否か決定法は当技術分野で周知である(Sambrook and Russell,Molecular Cloning: A Laboratory Manual,3rd Ed.,2001)。ある特定の実施形態では、本明細書で提供するアンチセンス化合物は、ANGPTL3核酸と特異的にハイブリダイズ可能である。
相補性
アンチセンス化合物と標的核酸とは、アンチセンス化合物の十分な数の核酸塩基が標的核酸の対応する核酸塩基と水素結合して所望の効果が生じる場合(例えば、ANGPTL3核酸などの標的核酸のアンチセンス阻害)、互いに相補的である。
同一性
本明細書で提供するアンチセンス化合物はまた、特定のヌクレオチド配列、配列番号、若しくは具体的Isis番号により表される化合物の配列、またはその一部分に対して、所定のパーセント同一性をもち得る。本明細書において、あるアンチセンス化合物の核酸塩基対合能が同じ場合、そのアンチセンス化合物は本明細書に開示する配列と同一である。例えば、ウラシルとチミジンはどちらもアデニンと対合するので、開示したDNA配列中のチミジンの代わりにウラシルを含有するRNAは、そのDNA配列と同一であるとみなされるであろう。本明細書に記載するアンチセンス化合物の短縮型及び延長型、並びに本明細書で提供するアンチセンス化合物に対して同一ではない塩基を有する化合物も意図される。同一ではない塩基は互いに隣接するか、またはアンチセンス化合物全体に分散していてよい。アンチセンス化合物のパーセント同一性は、比較対象である配列に対して同一塩基対合を有する塩基の数に従って計算される。
修飾
ヌクレオシドは塩基−糖の組み合わせである。ヌクレオシドの核酸塩基(塩基としても知られる)部分は、通常、複素環式塩基部分である。ヌクレオチドは、ヌクレオシドの糖部分に共有結合で連結されたリン酸基がさらに含まれるヌクレオシドである。ペントフラノシル糖を含むヌクレオシドの場合、リン酸基は、糖の2’、3’または5’ヒドロキシル部分に連結することができる。オリゴヌクレオチドは、互いに隣接するヌクレオシドの共有結合で形成され、線状の高分子オリゴヌクレオチドを形成する。オリゴヌクレオチド構造内では、リン酸基は、オリゴヌクレオチドのヌクレオシド間結合を形成していると、一般に言われる。
修飾ヌクレオシド間結合
RNA及びDNAの天然に生じるヌクレオシド間結合は、3’→5’ホスホジエステル結合である。修飾された(すなわち天然には生じない)ヌクレオシド間結合を1つ以上有するアンチセンス化合物は、例えば、高い細胞取り込み、核酸標的に対する高い親和性、及びヌクレアーゼ存在下での高い安定性などといった望ましい特性ゆえに、天然に生じるヌクレオシド間結合を有するアンチセンス化合物よりも選択されることが多い。
修飾糖部分
本発明のアンチセンス化合物は、任意選択で、糖基が修飾されているヌクレオシドを1つ以上含有し得る。そのような糖修飾ヌクレオシドは、優れたヌクレアーゼ安定性、高い結合親和性、または他の何らかの有益な生物学的特性をアンチセンス化合物に付与してよい。ある特定の実施形態では、ヌクレオシドは化学修飾リボフラノース環部分を含む。化学修飾リボフラノース環の例には、置換基の付加(5’置換基、2’置換基、非ジェミナル環原子の架橋による二環式核酸(BNA)の形成、リボシル環酸素原子のS、N(R)、またはC(R1)(R2)による置換(R、R1及びR2は、それぞれ互いに独立して、H、C1〜C12アルキルまたは保護基である)、及びそれらの組み合わせが含まれるが、これらに限定されない。化学修飾糖の例としては、2’−F−5’−メチル置換ヌクレオシド(開示されている他の5’,2’−ビス置換ヌクレオシドについては、PCT国際出願WO2008/101157(公開日2008年8月21日)を参照のこと)、またはリボシル環酸素原子のSによる置換と2’位におけるさらなる置換(米国特許出願公開US2005−0130923(公開日2005年6月16日)を参照のこと)、または別法としてBNAの5’−置換(LNAが、例えば5’−メチル基または5’−ビニル基で置換されている、PCT国際出願WO2007/134181(公開日2007年11月22日)を参照のこと)などがある。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
-Qa-Qb-Qc-は、−CH2−N(Rc)−CH2−、−C(=O)−N(Rc)−CH2−、−CH2−O−N(Rc)−、−CH2−N(Rc)−O-または−N(Rc)−O−CH2であり、
Rcは、C1〜C12アルキル保護基またはアミノ保護基であり、かつ
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合である]を有する。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
Zaは、C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニル、置換C1〜C6アルキル、置換C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルキニル、アシル、置換アシル、置換アミド、チオールまたは置換チオールである]を有する。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
Zbは、C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニル、置換C1〜C6アルキル、置換C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルキニルまたは置換アシル(C(=O)−)である]を有する。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
Rdは、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、
各qa、qb、qc及びqdは、互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニル、C1〜C6アルコキシル、置換C1〜C6アルコキシル、アシル、置換アシル、C1〜C6アミノアルキルまたは置換C1〜C6アミノアルキルである]を有する、
ある特定の実施形態では、二環式ヌクレオシドは、式
Bxは、複素環式塩基部分であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
qa、qb、qe及びqfは、それぞれ互いに独立して、水素、ハロゲン、C1〜C12アルキル、置換C1〜C12アルキル、C2〜C12アルケニル、置換C2〜C12アルケニル、C2〜C12アルキニル、置換C2〜C12アルキニル、C1〜C12アルコキシ、置換C1〜C12アルコキシ、OJj、SJj、SOJj、SO2Jj、NJjJk、N3、CN、C(=O)OJj、C(=O)NJjJk、C(=O)Jj、O−C(=O)−NJjJk、N(H)C(=NH)NJjJk、N(H)C(=O)−NJjJkまたはN(H)C(=S)NJjJkであるか、
または、qe及びqfは全体として=C(qg)(qh)であり、
qg及びqhは、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C12アルキルまたは置換C1〜C12アルキルである]を有する。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
Ta及びTbは、それぞれ互いに独立して、H、ヒドロキシル保護基、共役基、反応性リン基、リン部分または支持媒体への共有結合であり、
各qi、qj、qk及びqlは、互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C12アルキル、置換C1〜C12アルキル、C2〜C12アルケニル、置換C2〜C12アルケニル、C2〜C12アルキニル、置換C2〜C12アルキニル、C1〜C12アルコキシル、置換C1〜C12アルコキシル、OJj、SJj、SOJj、SO2Jj、NJjJk、N3、CN、C(=O)OJj、C(=O)NJjJk、C(=O)Jj、O−C(=O)NJjJk、N(H)C(=NH)NJjJk、N(H)C(=O)NJjJkまたはN(H)C(=S)NJjJkであり、かつ
qiとqjまたはqlとqkは全体として=C(qg)(qh)であり、ここで、qg及びqhは、それぞれ互いに独立して、H、ハロゲン、C1〜C12アルキルまたは置換C1〜C12アルキルである]を有する。
本明細書において、用語「修飾テトラヒドロピランヌクレオシド」または「修飾THPヌクレオシド」とは、通常のヌクレオシド中のペントフラノシル残基が六員テトラヒドロピラン「糖」で置換されているヌクレオシドを意味し、これは糖代用物とも言われ得る。修飾THPヌクレオシドには、当技術分野においてヘキシトール核酸(HNA)、アニトール(anitol)核酸(ANA)、マニトール(manitol)核酸(MNA)(Leumann,Bioorg.Med.Chem.,2002,10,841−854を参照のこと)またはフルオロHNA(F−HNA)と呼ばれ、以下に図解するようにテトラヒドロピラン環系を有するものが挙げられるが、これに限定されない。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
T3及びT4は、それぞれ互いに独立して、テトラヒドロピランヌクレオシド類似体とオリゴマー化合物とを連結するヌクレオシド間連結基であるか、または、T3及びT4の一方が、テトラヒドロピランヌクレオシド類似体とオリゴマー化合物若しくはオリゴヌクレオチドとを連結するヌクレオシド間連結基であり、T3及びT4の他方がH、ヒドロキシル保護基、連結された共役基または5’若しくは3’末端基であり、
q1、q2、q3、q4、q5、q6及びq7は、それぞれ互いに独立して、H、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニルまたは置換C2〜C6アルキニルであり、かつ
R1及びR2の一方は水素であり、もう一方は、ハロゲン、置換または非置換アルコキシ、NJ1J2、SJ1、N3、OC(=X))J1、OC(=X))NJ1J2、NJ3C(=X)NJ1J2及びCNから選択され、ここで、XはO、SまたはNJ1であり、かつ、各J1、J2及びJ3は、互いに独立して、HまたはC1〜C6アルキルである]を有する糖代用物が選択される。
ある特定の実施形態では、例えば、上記モルホリノ構造にさまざまな置換基を付加するか、上記モルホリノ構造のさまざまな置換基を改変することによって、モルホリノを修飾してよい。そのような糖代用物を本明細書では「修飾モルホリノ」という。
Bxは、複素環式塩基部分であり、
T3及びT4は、それぞれ互いに独立して、シクロヘキセニルヌクレオシド類似体とアンチセンス化合物を連結するヌクレオシド間連結基であるか、またはT3及びT4の一方が、テトラヒドロピランヌクレオシド類似体とアンチセンス化合物とを連結するヌクレオシド間連結基であり、T3及びT4の他方はH、ヒドロキシル保護基、連結された共役基、または5’末端基若しくは3’末端基であり、かつ
q1、q2、q3、q4、q5、q6、q7、q8及びq9は、それぞれ互いに独立して、H、C1〜C6アルキル、置換C1〜C6アルキル、C2〜C6アルケニル、置換C2〜C6アルケニル、C2〜C6アルキニル、置換C2〜C6アルキニルまたは他の糖置換基である]。
「2’−OMe」または「2’−OCH3」、「2’−O−メチル」または「2’−メトキシ」は、各々、糖環の2’位に−OCH3基を含む糖を含むヌクレオシドを指す。
ある特定の実施形態では、アンチセンス化合物は、修飾糖部分を有する1つ以上のヌクレオシドを含む。ある特定の実施形態では、修飾糖部分は2’−MOEである。ある特定の実施形態では、2’−MOE修飾ヌクレオシドは、ギャップマーモチーフで配置される。ある特定の実施形態では、修飾糖部分は、(4’−CH(CH3)−O−2’)架橋基を有する二環式ヌクレオシドである。ある特定の実施形態では、(4’−CH(CH3)−O−2’)修飾ヌクレオシドが、ギャップマーモチーフのウィング全体にわたって配置される。
修飾核酸塩基
核酸塩基(または塩基)の修飾または置換は、天然に生じる非修飾核酸塩基または合成非修飾核酸塩基とは構造上識別できるが、機能的には天然に生じる非修飾核酸塩基または合成非修飾核酸塩基と交換可能である。天然核酸塩基及び修飾核酸塩基はどちらも水素結合に関与できる。そのような核酸塩基修飾により、ヌクレアーゼ安定性、結合親和性または他の何らかの有益な生物学的特性がアンチセンス化合物に付与されてよい。修飾核酸塩基には、例えば5−メチルシトシン(5−me−C)などの合成及び天然の核酸塩基が含まれる。5−メチルシトシン置換などのある特定の核酸塩基置換は、標的核酸に対するアンチセンス化合物の結合親和性を高めるために特に有用である。例えば5−メチルシトシン置換は、核酸二重鎖安定性を0.6〜1.2℃増加させることが示されている(Sanghvi,Y.S.,Crooke,S.T. and Lebleu,B.,eds.,Antisense Research and Applications,CRC Press,Boca Raton,1993,pp.276−278)。
組成物および医薬組成物の製剤化方法
アンチセンスオリゴヌクレオチドを、医薬組成物または製剤を調製するために、薬理学的に許容される活性または不活性物質と混合してよい。組成物および医薬組成物の製剤化方法は、いくつかの基準に依存し、それには投与経路、疾患の程度、または投与すべき用量などが含まれるが、これらに限定されない。
共役アンチセンス化合物
アンチセンス化合物は、得られるアンチセンスオリゴヌクレオチドの活性、細胞分布、または細胞取込みを増強する1つ以上の部分若しくは共役体と共有結合で連結され得る。典型的な共役基としては、コレステロール部分および脂質部分が挙げれる。さらなる共役基としては、炭水化物、リン脂質、ビオチン、フェナジン、葉酸塩、フェナントリジン、アントラキノン、アクリジン、フルオレセイン、ローダミン、クマリン、および染料が挙げられる。
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]によって表される共役アンチセンス化合物を提供する。
T2はヌクレオシド、ヌクレオチド、単量体サブユニット、またはオリゴマー化合物である]。
i. ある特定の切断可能部分
ある特定の実施形態では、切断可能部分は切断可能な結合である。ある特定の実施形態では、切断可能部分は、切断可能な結合を含む。ある特定の実施形態では、共役基は、切断可能部分を含む。ある特定のそのような実施形態において、切断可能部分はアンチセンスオリゴヌクレオチドに結合する。ある特定のそのような実施形態において、切断可能部分は、細胞を標的とする部分に直接結合する。ある特定のそのような実施形態において、切断可能部分は共役リンカーに結合する。ある特定の実施形態では、切断可能部分はホスフェートまたはホスホジエステルを含む。ある特定の実施形態では、切断可能部分は切断可能なヌクレオシドまたはヌクレオシド類似体である。ある特定の実施形態では、ヌクレオシドまたはヌクレオシド類似体は、プリン、置換プリン、ピリミジン、または置換ピリミジンから選択される任意選択で保護された複素環式塩基を含む。ある特定の実施形態では、切断可能部分は、ウラシル、チミン、シトシン、4−N−ベンゾイルシトシン、5−メチルシトシン、4−N−ベンゾイル−5−メチルシトシン、アデニン、6−N−ベンゾイルアデニン、グアニン、及び2−N−イソブチリルグアニンから選択される、任意選択で保護された複素環式塩基を含むヌクレオシドである。ある特定の実施形態では、切断可能部分は、ホスホジエステル結合によってアンチセンスオリゴヌクレオチドの3’位に結合し、かつホスホジエステル結合またはホスホロチオエート結合によってリンカーに結合している、2’−デオキシヌクレオシドである。ある特定の実施形態では、切断可能部分は、ホスホジエステル結合によってアンチセンスオリゴヌクレオチドの3’位に結合し、かつホスホジエステル結合またはホスホロチオエート結合によってリンカーに結合している、2’−デオキシアデノシンである。ある特定の実施形態では、切断可能部分は、ホスホジエステル結合によってアンチセンスオリゴヌクレオチドの3’位に結合し、かつホスホジエステル結合によってリンカーに結合している、2’−デオキシアデノシンである。
ある特定の実施形態では、共役基はリンカーを含む。ある特定のそのような実施形態では、リンカーは切断可能部分と共有結合される。ある特定のそのような実施形態では、リンカーはアンチセンスオリゴヌクレオチドと共有結合される。ある特定の実施形態では、リンカーは細胞を標的とする部分と共有結合される。ある特定の実施形態では、リンカーは、固体支持体への共有結合をさらに含む。ある特定の実施形態では、リンカーは、タンパク質結合部分への共有結合をさらに含む。ある特定の実施形態では、リンカーは、固体支持体への共有結合をさらに含み、タンパク質結合部分への共有結合もさらに含む。ある特定の実施形態では、リンカーは、係留される(tethered)リガンドを結合させるための位置を複数含んでいる。ある特定の実施形態では、リンカーは、係留されるリガンドを結合させるための位置を複数含み、分岐基には結合していない。ある特定の実施形態では、リンカーは、1つ以上の切断可能な結合をさらに含む。ある特定の実施形態では、共役基はリンカーを含まない。
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
各nは、互いに独立して1〜20である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、構造:
ある特定の実施形態では、共役リンカーは、構造、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ある特定の実施形態では、リンカーは、
ii. 特定の細胞を標的とする部分
ある特定の実施形態では、共役基は、細胞を標的とする部分を含む。ある特定のそのような細胞を標的とする部分は、アンチセンス化合物の細胞取り込みを増加させる。ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、分岐基、1つ以上のテザー、及び1つ以上のリガンドを含む。ある特定の実施形態では、細胞を標的とする部分は、分岐基、1つ以上のテザー、1つ以上のリガンド及び1つ以上の切断可能な結合を含む。
1. ある特定の分岐基
ある特定の実施形態では、共役基は、分岐基及び少なくとも2つの係留されるリガンドを含む標的とする部分を含む。ある特定の実施形態では、分岐基は共役リンカーを結合する。ある特定の実施形態では、分岐基は切断可能部分を結合する。ある特定の実施形態では、分岐基はアンチセンスオリゴヌクレオチドを結合する。ある特定の実施形態では、分岐基は、リンカー及び係留されるリガンドの各々に共有結合で結合している。ある特定の実施形態では、分岐基は、アルキル、アミド、ジスルフィド、ポリエチレングリコール、エーテル、チオエーテル及びヒドロキシルアミノ基から選択される基を含む分岐脂肪族基を含む。ある特定の実施形態では、分岐基は、アルキル、アミド及びエーテル基から選択される基を含む。ある特定の実施形態では、分岐基は、アルキル及びエーテル基から選択される基を含む。ある特定の実施形態では、分岐基は、単環式または多環式の環系を含む。ある特定の実施形態では、分岐基は、1つ以上の切断可能な結合を含む。ある特定の実施形態では、共役基は分岐基を含まない。
jは、1〜3であり、かつ
mは、2〜6である]の中から選択される構造を有する。
mは、2〜6である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、分岐基は、
ある特定の実施形態では、分岐基は、
各nは、互いに独立して1〜20である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、分岐基は、
各nは、互いに独立して1〜20である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、分岐基は、
各nは、互いに独立して1〜20である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、分岐基は、
ある特定の実施形態では、分岐基は、
ある特定の実施形態では、分岐基は、
2. ある特定のテザー
ある特定の実施形態では、共役基は、分岐基に共有結合で結合している1つ以上のテザーを含む。ある特定の実施形態では、共役基は、連結基に共有結合で結合している1つ以上のテザーを含む。ある特定の実施形態では、各テザーは、アルキル、エーテル、チオエーテル、ジスルフィド、アミド及びポリエチレングリコール基から選択される1つ以上の基を任意の組み合わせで含む線状脂肪族基である。ある特定の実施形態では、各テザーは、アルキル、置換アルキル、エーテル、チオエーテル、ジスルフィド、アミド、ホスホジエステル及びポリエチレングリコール基から選択される1つ以上の基を任意の組み合わせで含む線状脂肪族基である。ある特定の実施形態では、各テザーは、アルキル、エーテル及びアミド基から選択される1つ以上の基を任意の組み合わせで含む線状脂肪族基である。ある特定の実施形態では、各テザーは、アルキル、置換アルキル、ホスホジエステル、エーテル及びアミド基から選択される1つ以上の基を任意の組み合わせで含む線状脂肪族基である。ある特定の実施形態では、各テザーは、アルキル及びホスホジエステルから選択される1つ以上の基を任意の組み合わせで含む線状脂肪族基である。ある特定の実施形態では、各テザーは、リン連結基または中性連結基を少なくとも1つ含む。
各pは、1〜約6である]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、テザーは、
ある特定の実施形態では、テザーは、
ある特定の実施形態では、テザーは、
Z1は、C(=O)O-R2であり、
Z2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
R2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、かつ
各m1は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、テザーは、
各m1は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]の中から選択される構造を有する。
の中から選択される構造を有する。
ある特定の実施形態では、テザーはリン連結基を含む。ある特定の実施形態では、テザーは、いかなるアミド結合も含まない。ある特定の実施形態では、テザーはリン連結基を含み、いかなるアミド結合も含まない。
3. ある特定のリガンド
ある特定の実施形態では、本開示は、各リガンドがテザーに共有結合で結合しているリガンドを提供する。ある特定の実施形態では、各リガンドは、標的細胞において少なくとも1種類の受容体に対する親和性を有するように選択される。ある特定の実施形態では、哺乳類肝臓細胞の表面において少なくとも1種類の受容体に対する親和性を有するリガンドが選択される。ある特定の実施形態では、肝アシアロ糖タンパク質受容体(ASGP−R)に対する親和性を有するリガンドが選択される。ある特定の実施形態では、各リガンドは炭水化物である。ある特定の実施形態では、各リガンドは、互いに独立して、ガラクトース、N−アセチルガラクトースアミン、マンノース、グルコース、グルコサモン(glucosamone)及びフコースから選択される。ある特定の実施形態では、各リガンドはN−アセチルガラクトースアミン(GalNAc)である。ある特定の実施形態では、標的とする部分は、2〜6個のリガンドを含む。ある特定の実施形態では、標的とする部分は、3個のリガンドを含む。ある特定の実施形態では、標的とする部分は、3個のN−アセチルガラクトースアミンリガンドを含む。
ある特定の実施形態では、1つ以上のリガンドは、
ある特定の実施形態では、1つ以上のリガンドは、
ある特定の実施形態では、1つ以上のリガンドは、
iii. ある特定の共役体
ある特定の実施形態では、共役基は、上述の構造的特徴を含む。ある特定のそのような実施形態において、共役基は以下の構造を含む
ある特定のそのような実施形態において、共役基は以下の構造を含む
Zは、Hまたは連結された固体支持体であり、
Qは、アンチセンス化合物であり、
Xは、OまたはSであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]。
b. ある特定の共役アンチセンス化合物
ある特定の実施形態では、共役体は、ヌクレオシドの2’、3’、または5’位で、アンチセンスオリゴヌクレオチドのヌクレオシドに結合される。ある特定の実施形態では、共役アンチセンス化合物は以下の構造を有する
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。
ある特定のそのような実施形態において、分岐基は、少なくとも1つの切断可能な結合を含む。
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。ある特定の実施形態では、共役体は、ヌクレオシドの2’、3’、または5’位で、アンチセンスオリゴヌクレオチドのヌクレオシドに結合される。ある特定の実施形態では、共役アンチセンス化合物は以下の構造を有する
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。ある特定の実施形態では、共役アンチセンス化合物は以下の構造を有する
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。ある特定の実施形態では、共役アンチセンス化合物は以下の構造を有する
Aは、アンチセンスオリゴヌクレオチドであり、
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]。
ある実施形態では、各テザーは、少なくとも1つの切断可能な結合を含む。
アンチセンス化合物がANGPTL3核酸の濃度、活性、または発現に与える効果は、さまざまな細胞型での生体外試験が可能である。そのような解析に使用される細胞型は、商業的供給業者(例えば、American Type Culture Collection,Manassus,VA; Zen−Bio,Inc.,Research Triangle Park,NC; Clonetics Corporation,Walkersville,MD)から入手可能であり、細胞は供給業者の指示書に従い市販の試薬(例えば、Invitrogen Life Technologies,Carlsbad,CA)を用いて培養し得る。例示的な細胞型には、HepG2細胞、Hep3B細胞、Huh7(肝細胞癌)細胞、初代肝細胞、A549細胞、GM04281線維芽細胞及びLLC-MK2細胞が挙げられるが、これに限定されない。
アンチセンスオリゴヌクレオチドの生体外試験
本明細書には、細胞をアンチセンスオリゴヌクレオチドで処理するための方法を記載し、この方法は、他のアンチセンス化合物で処理するために適宜変更を加えることができる。
培養細胞にアンチセンスオリゴヌクレオチドを導入するためによく使用される試薬の一つに、カチオン性脂質トランスフェクション試薬LIPOFECTIN(登録商標)(Invitrogen,Carlsbad,CA)がある。アンチセンスオリゴヌクレオチドをOPTI−MEM(登録商標)1(Invitrogen,Carlsbad,CA)中でLIPOFECTIN(登録商標)と混合し、アンチセンスオリゴヌクレオチドの所望の最終濃度と、典型的にはアンチセンスオリゴヌクレオチド100nMあたり2〜12μg/mLの範囲のLIPOFECTIN(登録商標)濃度を達成する。
RNAの単離
RNA分析は、全細胞RNAまたはポリ(A)+mRNAで実施可能である。RNAの単離方法は、当技術分野において周知である(Sambrook and Russell,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd Ed.,2001)。RNAは、当技術分野において周知の方法を使用して、例えば、TRIZOL(登録商標)試薬(Invitrogen,Carlsbad,CA)を製造者が推奨するプロトコルに従って使用し調製される。
標的の濃度または発現の阻害に関する分析
ANGPTL3核酸の濃度または発現の阻害については、当技術分野で公知の多種多様な方法で分析し調べることができる(Sambrook and Russell,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd Ed.,2001)。例えば、標的核酸濃度は、例えば、ノーザンブロット法、競合ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、または定量リアルタイムPCRで定量できる。RNA分析は、全細胞RNAまたはポリ(A)+mRNAで実施可能である。RNAの単離方法は、当技術分野において周知である。ノーザンブロット法もまた、当技術分野で常法である。定量リアルタイムPCRは、PE−Applied Biosystems,Foster City、CAから入手でき製造者の指示書に従い使用される市販のABI PRISM(登録商標)7600、7700、または7900Sequence Detection Systemを用いて好都合に実現される。
標的RNAレベルの定量リアルタイムPCR分析
標的RNAレベルの定量は、ABI PRISM(登録商標)7600、7700、または7900Sequence Detection System(PE−Applied Biosystems,Foster City,CA)を製造者の指示書に従って使用し、定量リアルタイムPCRにより実現できる。定量リアルタイムPCR法は当技術分野において周知である。
タンパク質レベル分析
ANGPTL3核酸のアンチセンス阻害は、ANGPTL3タンパク質レベルを測定することにより評価され得る。ANGPTL3のタンパク質レベルは、当技術分野で周知のさまざまな手法、例えば、免疫沈降法、ウエスタンブロット法(免疫ブロット法)、酵素免疫吸着測定法(ELISA)、定量的タンパク質分析、タンパク質活性分析(例えば、カスパーゼ活性アッセイ)、免疫組織化学、免疫細胞化学、または蛍光活性化細胞分類(FACS)(Sambrook and Russell,Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd Ed.,2001)などで評価または定量が可能である。標的を対象とする抗体は、抗体のMSRSカタログ(Aerie Corporation、Birmingham、MI)などのさまざまな供給源により同定および入手可能であり、または、当技術分野で周知である従来のモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体生成方法により調製してよい。
アンチセンス化合物の生体内試験
アンチセンス化合物、例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチドがANGPTL3の発現を阻害し表現型の変化を生じさせる能力を評価するため、これらの化合物を動物で試験する。試験は、正常動物で、または実験用疾患モデルで実施され得る。動物への投与用に、アンチセンスオリゴヌクレオチドを、リン酸緩衝生理食塩水などの薬理学的に許容される希釈剤に配合する。投与としては、非経口投与経路が挙げられる。アンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置期間後、RNAを細胞から単離してANGPTL3核酸発現の変化を測定する。ANGPTL3タンパク質レベルの変化も測定する。
ある特定の適応
ある特定の実施形態では、本明細書に記載する医薬組成物の1つ以上を投与することを含む、個体を処置する方法が本明細書で提供される。ある特定の実施形態では、個体は、代謝性疾患及び/または心血管疾患に罹患している。ある特定の実施形態では、個体は、複合型高脂血症(例えば、家族性または非家族性)、高コレステロール血症(例えば、ホモ接合体性家族性高コレステロール血症(HoFH)、ヘテロ接合体性家族性高コレステロール血症(HeFH))、脂質異常症、リポジストロフィー、高トリグリセリド血症(例えば、ヘテロ接合体性LPL欠損症、ホモ接合体性LPL欠損症)、冠動脈疾患(CAD)、家族性カイロミクロン血症症候群(FCS)、IV型高リポ蛋白血症)、メタボリック症候群、非アルコール性脂肪性肝疾患(NAFLD)、非アルコール性脂肪性肝炎(NASH)、糖尿病(例えば、2型糖尿病、脂質異常症を伴う2型糖尿病)、インスリン抵抗性(例えば、脂質異常症を伴うインスリン抵抗性)、血管壁肥厚、高血圧(例えば、肺動脈性肺高血圧)、硬化症(例えば、アテローム性動脈硬化症、全身性硬化症、進行性皮膚硬化症、及び、手指潰瘍及び肺血管病変などの増殖性閉塞性血管障害(proliferative obliterative vasculopathy))、またはその組み合わせに罹患している。
投与
ある特定の実施形態では、本明細書に記載する化合物及び組成物は、非経口投与される。
ある特定の併用療法
ある特定の実施形態では、本明細書に開示する修飾オリゴヌクレオチドを含む第1剤は1つ以上の第2の薬剤と同時投与される。ある特定の実施形態では、そのような第2剤を、本明細書に記載する第1剤と同じ疾患、障害または状態を処置するよう設計する。ある特定の実施形態では、そのような第2剤を、本明細書に記載する第1剤とは異なる疾患、障害、または状態を処置するよう設計する。ある特定の実施形態では、そのような第2剤を、本明細書に記載する1つ以上の医薬組成物の望ましくない副作用を治療するよう設計する。ある特定の実施形態では、第2剤を第1剤と同時投与して、第1剤の望ましくない作用を治療する。ある特定の実施形態では、第2剤を第1剤と同時投与して併用効果を生じさせる。ある特定の実施形態では、第2剤を第1剤と同時投与して相乗効果を生じさせる。
ある特定の化合物
ヒトANGPTL3を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドは、先の公開に記載された(参照によりその全体が本明細書に組み込まれるPCT特許公開番号WO2011/085271(公開日2011年7月14日)を参照のこと)。かかる公開に記載のいくつかのオリゴヌクレオチド(233676、233690、233710、233717、233721、233722、337459、337460、337474、337477、337478、337479、337481、337484、337487、337488、337490、337491、337492、337497、337498、337503、337505、337506、337508、337513、337514、337516、337520、337521、337525、337526及び337528)は、生体外で最も強力であった10のアンチセンス化合物も含めて、以下の、及びUS61/920,652号に記載するアンチセンス化合物を生体外スクリーニングで選択する際に全体を通して基準として使用した。WO2011/085271に記載された最も強力な化合物のうち、ISIS233722はそのANGPTL3阻害能が非常に多様であることがわかった。そのため、当初は生体外試験に組み入れられたが、後のさらなる試験には233722を基準として選択しなかった。先に同定された強力な生体外基準化合物のうち、5化合物(233710、233717、337477、337478、337479及び337487)を、下に記載のように、huANGPTL3トランスジェニックマウスでの生体内試験用に選択し、ヒトmRNA転写産物及びタンパク質の発現を最も強力に抑制する化合物について調べた(実施例126)。初期に生体内でのANGPTL3レベル抑制能が最も高かったアンチセンスオリゴヌクレオチド(233710)を、下に記載する新しいアンチセンス化合物の生体内試験の基準として使用した。
実施例1:ホスホラミダイト(化合物1、1a、及び2)の調製のための一般的方法
実施例2:化合物7の調製
実施例3:化合物11の調製
実施例4:化合物18の調製
実施例5:化合物23の調製
実施例6:化合物24の調製
実施例7:化合物25の調製
実施例8:化合物26の調製
実施例9:3’末端にGalNAc3−1を含む共役ASO(化合物29)の一般的調製
共役GalNAc3−1(GalNAc3−1a)のGalNAc3クラスター部分を任意の切断可能部分と組み合わせて、さまざまな共役基をうることができる。ここで、GalNAc3−1aは式
固体支持体に結合された保護GalNAc3−1(化合物25)を実施例7に例示される手順に従い調製した。3’末端にGalNAc3−1を含むオリゴマー化合物29を、自動DNA/RNA合成における標準的手順を用いて調製した(Dupouy et al.,Angew.Chem.Int.Ed.,2006,45,3623−3627を参照のこと)。ホスホラミダイト構築ブロック(化合物1及び1a)を実施例1に例示される手順どおりに調製した。他のホスホラミダイト構築ブロックを用いて所定の配列及び組成物を有するオリゴマー化合物を調製することができるため、例示されるホスホラミダイトは代表例であり、限定することを意図しない。固体支持体に加えるホスホラミダイトの順序及び量を調整して、本明細書に記載するギャップト(gapped)オリゴマー化合物を調製することができる。そのようなギャップトオリゴマー化合物は、任意の所与の標的によって指示される所定の組成及び塩基配列を有し得る。
実施例10:5’末端にGalNAc3−1を含む共役ASO(化合物34)の一般的調製
実施例11:化合物39の調製
実施例12:化合物40の調製
実施例13:化合物44の調製
実施例14:化合物45の調製
実施例15:化合物47の調製
実施例16:化合物53の調製
実施例17:化合物54の調製
実施例18:化合物55の調製
実施例19:固相技法による3’位にGalNAc3−1を含む共役ASOの調製のための一般的方法(ISIS647535、647536、及び651900の調製)
特に明記しない限り、オリゴマー化合物の合成に用いるすべての試薬及び溶液を商業的供給源から購入する。標準のホスホラミダイト構築ブロック及び固体支持体を、例えば、T、A、G、及びmC残基を含む、ヌクレオシド残基の組み込みのために用いる。無水アセトニトリルに溶解させたホスホラミダイトの0.1M溶液をβ−D−2’−デオキシリボヌクレオシド及び2’−MOEに用いた。
これらの方法を用いて、ApoC IIIを標的とする3個の別個のアンチセンス化合物を調製した。下記表17に要約されるように、ApoC IIIを標的とする3個のアンチセンス化合物はそれぞれ、同一の核酸塩基配列を有し、ISIS304801は、すべてがホスホロチオエート結合である5−10−5MOEギャップマーであり、ISIS647535は、GalNAc3−1がその3’末端に共役していること以外はISIS304801と同一であり、ISIS647536は、特定のヌクレオシド間結合がホスホジエステル結合であること以外はISIS647535と同一であった。表17にさらに要約されるように、SRB−1を標的とする2つの別個のアンチセンス化合物を合成した。ISIS440762は、すべてがホスホロチオエートヌクレオシド間結合である2−10−2 cEtギャップマーであり、ISIS651900は、その3’末端にGalNAc3−1が含まれること以外は、ISIS440762と同一であった。
実施例20:huApoC IIIトランスジェニックマウスにおけるヒトApoC IIIの用量依存的アンチセンス阻害
ヒトApoC IIIを標的とする上述のISIS304801及びISIS647535を、そのヒトApoC III阻害能について、ヒトApoC IIIトランスジェニックマウスで用量依存的試験を行い、別々に検討し評価した。
処置
ヒトApoCIIIトランスジェニックマウスを12時間の明暗周期で維持し、Teklad実験食餌を自由に摂食させた。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。ASOをPBS中に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。注射用にASOを0.9%PBSに溶解させた。
ApoC III mRNA分析
標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いてマウスの肝臓におけるApoC III mRNAレベルを決定した。PBS処置した対照を基準として正規化する前に、トータルRNAに対するApoC III mRNAレベルを(Ribogreenを用いて)決定した。下記の結果は、PBS処置した対照を基準として正規化された、処置群ごとのApoC III mRNAレベルの平均パーセントとして提示され、「%PBS」で表記される。各ASOの50%有効量(ED50)も下記表18に示される。
2013年3月29日の出版前にオンラインで公開されたGraham et al,Circulation Researchによって報告された手順を用いて、血漿ApoC IIIタンパク質分析を行った。
ASOのPKも評価した。肝臓及び腎臓試料を切り刻み、標準のプロトコルを用いて抽出した。試料をIP−HPLC−MSを利用するMSD1で分析した。完全長ISIS304801及び647535の組織濃度(μg/g)を測定した結果を表23に提供する。総完全長アンチセンス化合物の肝臓濃度は、これら2つのアンチセンス化合物と同様であった。したがって、GalNAc3−1共役アンチセンス化合物は、肝臓でより活性ではあるが(上述のRNA及びタンパク質データによる実証のとおり)、肝臓内で実質的に高い濃度では存在しない。実際、計算したEC50(表23に提供)は、共役化合物の力価で観察された増加が蓄積増加に完全に起因するわけではないことを裏付けている。この結果から、共役体は、肝臓蓄積単独以外の機序、おそらくアンチセンス化合物の細胞内への生産的取り込みを改善することによって、力価を改善したことが示唆される。
それぞれヒトApoC IIIを標的とする表17に記載のISIS304801、647535、及び647536を、ヒトApoC IIIを阻害するそれらの能力について、ヒトApoC IIIトランスジェニックマウスでの単回投与試験においてさらに評価した。
処置
ヒトApoCIIIトランスジェニックマウスを12時間の明暗周期で維持し、Teklad実験動物用固形飼料を自由に摂食させた。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。ASOをPBS中に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。注射用にASOを0.9%PBSに溶解させた。
実施例22:SRB−1を標的とするGalNAc3−1共役修飾ASOの生体内での作用
それぞれSRB−1を標的とする表17に記載のISIS440762及び651900を、SRB−1を阻害するそれらの能力についてBalb/cマウスで用量依存的試験にて評価した。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS440762、651900、または対照処置のPBSを1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から48時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓におけるSRB−1 mRNAレベルを決定した。PBS処置した対照を基準として正規化する前に、トータルRNAに対するSRB−1 mRNAレベルを(Ribogreenを用いて)決定した。下記の結果は、PBS処置した対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして提示され、「%PBS」で表記される。
BD Vautainer CPTチューブ法を用いてhPBMCアッセイを実施した。US HealthWorks clinic(Faraday & El Camino Real,Carlsbad)においてインフォームドコンセントを得た志願ドナー由来の全血試料を得て、4〜15個のBD Vacutainer CPT8mLチューブ(VWRカタログ番号BD362753)内に収集した。PBMCアッセイデータシートを用いて、各ドナーのCPTチューブ内の開始時総全血量の近似値を記録した。
実施例24:hPBMCアッセイにおけるGalNAc3−1共役ASOの炎症誘発作用の評価
表30に列記されるアンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を、炎症誘発作用について、実施例23に記載の操作手順を用いてhPBMCアッセイで評価した。ISIS353512は、このアッセイにおいてIL−6放出に対する高レスポンダーであることが既知の内部標準物である。hPBMCを新鮮な志願ドナーから単離し、それらを濃度0、0.0128、0.064、0.32、1.6、8、40、及び200μMのASOで処理した。処理から24時間後、サイトカインレベルを測定した。
上述のISIS304801及び647535を生体外で試験した。密度25,000細胞/ウェルのトランスジェニックマウス由来初代肝細胞を、濃度の0.03,0.08、0.24、0.74、2.22、6.67、及び20μmの修飾オリゴヌクレオチドで処理した。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定し、hApoC III mRNAレベルをRIBOGREENで測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。
実施例26:ApoC III ASO活性に対するPO/PS結合の効果
ISIS304801若しくはISIS616468(両方ともに上述)のヒトApoC IIIトランスジェニックマウス、または対照にはPBS処置、25mg/kgで週1回2週間、腹腔内注入した。処置群は3匹の動物で構成され、対照群は4匹の動物で構成された。処置前及び最終投与後にそれぞれのマウスの血液を採取し、血漿試料を分析した。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。
これらの結果は、完全PS化合物(ISIS304801)と比較して、ウィングにPO/PSを有するアンチセンス化合物(ISIS616468)の力価減少を示している。
実施例28:化合物60の調製
他の単保護された置換または非置換アルキルジオール、例えば、限定するわけではないが、本明細書に提示されるものを用いて、所定の組成を有するホスホラミダイトを調製することができるため、化合物57は代表例であり、限定することを意図しない。
実施例29:化合物63の調製
実施例30:化合物63bの調製
実施例31:化合物63dの調製
実施例32:化合物67の調製
実施例33:化合物70の調製
実施例34:化合物75aの調製
実施例35:化合物79の調製
実施例36:化合物79aの調製
実施例37:固体支持体による5’末端にホスホジエステル連結GalNAc3−2共役体を含む共役オリゴマー化合物82の調製のための一般的方法(方法I)
共役基GalNAc3−2のGalNAc3クラスター部分(GalNAc3−2a)と、任意の切断可能部分とを組み合わせて、さまざまな共役基を提供することができる。ここで、GalNAc3−2aは式
VIMAD結合オリゴマー化合物79bを、自動DNA/RNA合成の標準的手順を用いて調製した(Dupouy et al.,Angew.Chem. Int. Ed.,2006,45,3623−3627を参照のこと)。ホスホラミダイト化合物56及び60をそれぞれ、実施例27及び28に例示される手順に従い調製した。他のホスホラミダイト構築ブロック、例えば限定するわけではないが、本明細書に提示されるものを用いて、5’末端にホスホジエステル結合共役基を有するオリゴマー化合物を調製することができるため、例示のホスホラミダイトは代表例であり、限定することを意図ない。固体支持体に加えるホスホラミダイトの順序及び量を調整して、任意の所定の配列及び組成を有する本明細書に記載するオリゴマー化合物を調製することができる。
実施例38:5’末端にホスホジエステル結合GalNAc3−2共役体を含むオリゴマー化合物82の調製のための代替方法(方法II)
実施例39:固体支持体による、5’末端にGalNAc3−3共役体(5’末端結合用にGalNAc3−1を修飾したもの)を含むオリゴマー化合物83hの調製のための一般的方法
共役基GalNAc3−3のGalNAc3クラスター部分(GalNAc3−3a)と、任意の切断可能部分とを組み合わせて、さまざまな共役基を提供することができる。ここで、GalNAc3−3aは式
実施例40:固体支持体による3’末端にホスホジエステル結合GalNAc3−4共役体を含むオリゴマー化合物89の調製のための一般的方法
共役基GalNAc3−4のGalNAc3クラスター部分(GalNAc3−4a)と、任意の切断可能部分とを組み合わせて、さまざまな共役基を提供することができる。ここで、GalNAc3−4aは式
保護されたUnylinker機能化固体支持体化合物30は市販されている。化合物84を、文献(Shchepinov et al.,Nucleic Acids Research,1997,25(22),4447−4454;Shchepinov et al.,Nucleic Acids Research,1999,27,3035−3041;及びHornet et al.,Nucleic Acids Research,1997,25,4842−4849を参照のこと)に報告された手順と同様の手順を用いて調製する。
実施例41:固相技法による5’位にホスホジエステル結合GalNAc3−2(Bxがアデニンである実施例37を参照のこと)共役体を含むASOの調製のための一般的方法(ISIS661134の調製)
特に明記しない限り、オリゴマー化合物の合成に用いるすべての試薬及び溶液を商業的供給源から購入する。標準のホスホラミダイト構築ブロック及び固体支持体を、例えば、T、A、G、及びmC残基を含む、ヌクレオシド残基の組み込みのために用いる。ホスホラミダイト化合物56及び60を使用して、5’末端のホスホジエステル結合GalNAc3−2共役体を合成した。無水アセトニトリルに溶解させたホスホラミダイトの0.1M溶液をβ−D−2’−デオキシリボヌクレオシド及び2’−MOEに用いた。
[注:Aeはアクセントの付いたA]オリゴパイロット合成装置(40〜200μmolの規模)で、カラムに充填したVIMAD固体支持体でのホスホラミダイトカップリング法(110μmol/g、Guzaev et al.,2003)により、ASO合成を実施した。このカップリングステップでは、固体支持体の初期負荷量に対して4倍過剰量のホスホラミダイトを送達し、ホスホラミダイトカップリングを10分間行った。他のすべてのステップは、製造業者から提供された標準のプロトコルに従った。トルエンに溶解させたジクロロ酢酸6%溶液を使用して、ヌクレオチドの5’−ヒドロキシル基からジメトキシトリチル(DMT)基を除去した。カップリングステップ中、4,5−ジシアノイミダゾール(0.7M)含有無水CH3CNを活性化剤として使用した。ホスホロチオエート結合は、1:1のピリジン/CH3CN中で3分間接触させキサンタンヒドリド0.1M溶液を用いた硫化によって導入した。6%の水を含有する20%tert−ブチルヒドロペルオキシド含有CH3CN溶液を酸化剤として用い、接触時間12分でホスホジエステルヌクレオシド間結合を得た。
実施例42:固相技法による5’位にGalNAc3−3共役体を含むASOの調製のための一般的方法(ISIS661166の調製)
実施例39及び41に例示の手順と同様の手順を使用してISIS661166の合成を実施した。
実施例43:生体内におけるSRB−1を標的とする5’末端でのホスホジエステル結合GalNAc3−2(Bxがアデニンである実施例37及び41を参照のこと)の用量依存的試験
5’末端にホスホジエステル結合GalNAc3−2共役体を含むISIS661134(実施例41を参照のこと)を、SRB−1のアンチセンス阻害について、マウスでの用量依存的試験において試験した。非共役ISIS440762及び651900(3’末端でのGalNAc3−1共役体、実施例9を参照のこと)を比較対照用に試験に含めた。なお、これらは先の表17に記載されている。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS440762、651900、661134、または対照処置のPBSを皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。PBS処置した対照を基準として正規化する前に、トータルRNAに対するSRB−1 mRNAレベルを(Ribogreenを用いて)決定した。下記の結果は、PBS処置した対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして提示され、「%PBS」で表記される。ED50sを、先に記載の方法と同様の方法を用いて測定し、以下に提示する。
薬物動態分析(PK)
高用量群(7mg/kg)のASOのPKを調べ、実施例20に例示の方法と同一の方法で評価した。肝臓試料を切り刻み、標準のプロトコルを用いて抽出した。661134(5’GalNAc3−2)及びISIS651900(3’GalNAc3−1)の完全長代謝物を同定し、それらの質量を高分解能質量分析によって確認した。結果から、5’末端にホスホジエステル結合GalNAc3−2共役体(ISIS661134)を含むASOで検出された主な代謝物は、ISIS440762(データ示さず)であることが示された。検出可能レベルでは、それ以外の代謝物は観察されなかった。3’末端にGalNAc3−1共役体を有するASO(ISIS651900)では、もう一方の被験ASOとは異なり、先の表23aに報告された代謝物と同様のさらなる代謝物が観察された。これらの結果は、ホスホジエステル結合したGalNAc3−1共役体またはGalNAc3−2共役体を有していると、その力価を損なうことなくASOのPKプロファイルが改善されうることを示唆している。
実施例44:SRB−1を標的とする3’末端にGalNAc3−1共役体(実施例9を参照のこと)を含むASOのアンチセンス阻害に対するPO/PS結合の効果
3’末端にGalNAc3−1共役体を含む、SRB−1を標的とするISIS655861及び655862を、SRB−1阻害能について、マウスでの単回投与試験において試験した。非共役の親化合物ISIS353382を比較のために試験に含めた。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS353382、655861、655862、または対照処置のPBSを1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。処置前及び最終投与後にそれぞれのマウスの血液を採取し、血漿試料を分析した。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。PBS処置した対照を基準として正規化する前に、トータルRNAに対するSRB−1 mRNAレベルを(Ribogreenを用いて)決定した。下記の結果は、PBS処置した対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして提示され、「%PBS」で表記される。ED50sを先に記載の方法と同様の方法を用いて測定し、それらを以下に報告する。
実施例46:PFPエステル(オリゴヌクレオチド111)との共役のための一般的手順、ISIS666881(GalNAc3−10)の調製
標準の固相オリゴヌクレオチド手順を用いて5’−ヘキシルアミノ修飾オリゴヌクレオチドを合成し、精製した。5’−ヘキシルアミノ修飾オリゴヌクレオチドを0.1M四ホウ酸ナトリウム(pH8.5、200μL)に溶解させ、DMSO(50μL)に溶解させた選択されたPFPエステル化GalNAc3クラスター3当量を添加した。ASO溶液への添加時にPFPエステルが沈降した場合は、PFPエステルがすべて溶解するまでDMSOを添加した。反応は、室温で約16時間混合後に完了した。得られた溶液を水で希釈して12mLとし、その後、質量カットオフ3000Daのスピンフィルター内で3000rpmにて遠心にかけた。このプロセスを2回繰り返し、低分子の不純物を除去した。次いで、溶液を凍結乾燥乾固させてから濃縮アンモニア水に再溶解させ、室温で2.5時間混合した後、減圧濃縮してアンモニアの大部分を除去した。共役オリゴヌクレオチドをRP−HPLCにより精製及び脱塩し、凍結乾燥させてGalNAc3共役オリゴヌクレオチドを得た。
GalNAc3−10共役オリゴヌクレオチド
実施例47:GalNAc3−8を含むオリゴヌクレオチド102の調製
化合物112(5g、8.6mmol)を、1:1メタノール/酢酸エチル(22mL/22mL)に溶解させた。炭素上の水酸化パラジウム(0.5g)を添加した。反応混合物を水素下で室温にて12時間撹拌した。セライトパッドを通して反応混合物を濾過し、そのパッドを1:1メタノール/酢酸エチルで洗浄した。濾液と洗液を合わせ、濃縮乾固させて、化合物105a(定量的)を得た。構造をLCMSによって確認した。
メリフィールドフラスコ(Merrifield flask)に、アセトニトリル、ジメチルホルムアミド、ジクロロメタン、及びアセトニトリルで洗浄したアミノメチルVIMAD樹脂(2.5g、450μmol/g)を添加した。この樹脂は、アセトニトリル(4mL)中で膨潤した。化合物133を、100mLの丸底フラスコ内で、20(1.0mmol、0.747g)、TBTU(1.0mmol、0.321g)、アセトニトリル(5mL)、及びDIEA(3.0mmol、0.5mL)を添加して事前に活性化させた。この溶液を5分間撹拌し、次いで、振盪しながらメリフィールドフラスコ(Merrifield flask)に添加した。懸濁液を3時間振盪させた。反応混合物を排出し、樹脂をアセトニトリル、DMF、及びDCMで洗浄した。DCM中のDMTカチオンの吸光度を500nm(消光係数=76000)で測定することにより新たな樹脂負荷量を定量し、238μmol/gであると決定した。樹脂を、無水酢酸溶液中に10分間ずつ3回懸濁させることによりキャップした。
固体支持体に結合された化合物143をアンモニア水(28〜30重量%)中に懸濁し、55℃で16時間加熱した。溶液を冷却し、固体支持体をろ過した。残渣を水中に溶解させ、強アニオン交換カラム上でHPLCによって精製した。完全長化合物144を含有する画分を合わせてプールし、脱塩した。得られたGalNAc4−11共役オリゴマー化合物を、LC−MSによって分析したところ、観察された質量はその構造と一致した。
化合物156、(18.60g、29.28mmol)をメタノール(200mL)に溶解させた。パラジウム炭素(6.15g、10重量%、担持(乾燥ベース)、マトリックス炭素粉末、湿潤)を添加した。反応混合物を水素下で室温にて18時間撹拌した。反応混合物をセライトパッドを通してろ過し、セライトパッドをメタノールで完全に洗浄した。合わせた濾液を洗浄し、濃縮乾固させた。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、5〜10%メタノール含有ジクロロメタンで溶出させて化合物157(14.26g、89%)を得た。質量(m/z)544.1[M−H]−。
実施例54:化合物18(GalNAc3−1a及びGalNAc3−3a)の調製のための代替手順
実施例55:生体内におけるSRB−1を標的とする3’−共役基または5’−共役基のいずれかを含むオリゴヌクレオチドの用量依存的試験(GalNAc3−1、3、8及び9の比較)
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。非共役ISIS353382を標準物として含めた。多様なGalNAc3共役基の各々を、さまざまなGalNAc3共役基のそれぞれは、ホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド(切断可能部分)により、それぞれのオリゴヌクレオチドの3’末端または5’末端のいずれかで結合させた。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS353382、655861、664078、661161、665001、または生理食塩水を1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして提示される。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。非共役ISIS353382を標準物として含めた。多様なGalNAc3共役基の各々は、GalNAc3共役基が3’末端で結合しているISIS655861以外は、それぞれのオリゴヌクレオチドの5’末端でホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド(切断可能部分)により結合している。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS353382、655861、664507、661161、666224、666961、666981、666881、または生理食塩水を1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして提示される。
マウスに下記用量を1回注入し、ApoC−III及び血漿トリグリセリド(血漿TG)レベルを42日間にわたって監視した。各群におけるヒトAPOC−IIIを発現するトランスジェニックマウス3匹を用いて、この試験を実施した。
実施例58:生体内におけるSRB−1を標的とする3’−共役基を含むオリゴヌクレオチドの用量依存的試験(GalNAc3−1及びGalNAc4−11の比較)
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。非共役ISIS440762を非共役標準物として含めた。共役基の各々を、それぞれのオリゴヌクレオチドの3’末端で、ホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド切断可能部分により結合させた。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS440762、651900、663748、または生理食塩水を1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、FXIのアンチセンス阻害についてマウスでの複数回投与試験で試験した。ISIS404071を非共役標準物として含めた。共役基の各々は、それぞれのオリゴヌクレオチドの5’末端で、ホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド切断可能部分により結合している。
処置
6週齢雄Balb/cマウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に下記に示す用量のISIS404071、656172、656173または対照処置のPBSを週2回3週間、皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓FXI mRNAレベルを決定した。ELISAを用いてFXIタンパク質血漿濃度も測定した。PBS処置した対照を基準として正規化する前に、トータルRNAに対するFXI mRNAレベルを測定した(RIBOGREEN(登録商標)使用)。下記の結果は、処置群ごとのFXI mRNAレベルの平均パーセントとして示される。データを、PBS処置した対照を基準として正規化したものを「%PBS」で表記している。先に記載の方法と同様の方法を用いてED50を測定し、それを以下に提示する。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウス初代肝細胞での複数回投与試験で試験した。ISIS353382を非共役標準物として含めた。共役基の各々を、それぞれのオリゴヌクレオチドの3’末端または5’末端でホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド切断可能部分により結合させた。
処置
上に列記されるオリゴヌクレオチドを、ウェル当たり25,000細胞の密度でプレーティングされ、0.03、0.08、0.24、0.74、2.22、6.67、または20nMの修飾オリゴヌクレオチドで処理されたマウス初代肝細胞で生体外の試験を行った。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離してmRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定し、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがってSRB−1 mRNAレベルを調整した。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。非共役ISIS353382を標準物として含めた。GalNAc3共役基の各々は、それぞれのオリゴヌクレオチドの5’末端で、ホスホジエステル結合2’−デオキシアデノシンヌクレオシド(切断可能部分)により結合している。
処置
6〜8週齢のC57bl6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS353382、661161、671144、670061、671261、671262、または生理食塩水を1回または2回皮下注射した。2回投与を受けたマウスは、初回投与から3日後に第2投与を受けた。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水の対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。GalNAc3共役基の各々は、それぞれのオリゴヌクレオチドの5’末端でホスホジエステル連結ヌクレオシド(切断可能部分(CM))により結合している。
処置
6〜8週齢のC57bl6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、下記に示す用量のISIS661161、670699、670700、670701、671165、または生理食塩水を1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、肝臓SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水による対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。GalNAc3共役基の各々は、それぞれのオリゴヌクレオチドの5’末端で結合している。
処置
6〜8週齢のC57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、表60に列記されるオリゴヌクレオチドを下記に示す用量で、または生理食塩水を、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水による対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
実施例65、66、及び74に記載される処理手順に従って得た肝臓試料を用いて、上表54、57、及び60におけるASOのPKを評価した。肝臓試料を切り刻み、標準のプロトコルを用いて抽出し、内部標準とともにIP−HPLC−MSによって分析した。全代謝物の合わせた組織濃度(μg/g)を、適切なUVピークを統合することにより測定し、共役体を欠く完全長ASO(この場合、ISIS番号353382の「親」)の組織濃度を適切な抽出イオンクロマトグラム(EIC)を用いて測定した。
実施例76:GalNAc3−23を含むオリゴマー化合物230の調製
以下に列記するオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で試験した。
処置
6〜8週齢のC57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)それぞれに、表64に列記されるオリゴヌクレオチドを下記に示す用量で、または生理食塩水を1回、皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水による対照を基準として正規化された、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
以下に列記するオリゴヌクレオチドをアンジオテンシノーゲン(AGT)のアンチセンス阻害について、正常血圧Sprague Dawleyラットでの用量依存的試験で試験した。
処置
6週齢の、雄Sprague Dawleyラットそれぞれに、下記に示す用量の表67に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、週1回、全3回投与で、皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。ラットを最終投与から72時間後に屠殺した。肝臓のAGT mRNAレベルを、リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて標準のプロトコルに従って測定した。AGT血漿タンパク質レベルを、TotalアンジオテンシノーゲンELISA(カタログ番号JP27412、IBL International、Toronto、ON)を用いて1:20,000で希釈した血漿で測定した。下記の結果は、PBS対照を基準として正規化された、処置群ごとの、肝臓のAGT mRNAレベルまたは血漿中AGTタンパク質レベルの平均パーセントとして示される。
下記表70に列記されるオリゴヌクレオチドを、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で試験した。
処置
ヒトAPOC−III を発現する6〜8週齢のトランスジェニックマウスそれぞれに、表70に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを1回皮下注射した。各処置群は3匹の動物で構成された。血液を、ベースライン決定のために投与前に採取し、また、投与から72時間、1週間、2週間、3週間、4週間、5週間、及び6週間の後に採取した。血漿トリグリセリド及びAPOC−IIIタンパク質レベルを、実施例20に記載のように測定した。下記の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、血漿トリグリセリド及びAPOC−IIIレベルの平均パーセントとして提示されており、これによると、共役基のない親オリゴヌクレオチド(ISIS304801)の投与量が、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドの投与量の3倍であったにもかかわらず、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドの方が親オリゴヌクレオチドよりも長い作用持続時間を示したことがわかる
下記表72に列記されるオリゴヌクレオチドを、A1ATに対する用量依存的阻害についてマウスでの試験において検討した。
処置
6週齢の、雄C57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)それぞれに、下記に示す用量の表72に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、週1回、全3回投与で皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。肝臓のA1AT mRNAレベルを、リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて標準のプロトコルに従って測定した。A1AT血漿タンパク質レベルを、マウスα1−抗トリプシンELISA(カタログ番号41-A1AMS-E01、Alpco,Salem,NH)を用いて測定した。下記の結果は、PBS対照を基準として正規化された、処置群ごとの肝臓のA1AT mRNAレベル及び血漿タンパク質レベルの平均パーセントとして示される。
表72に列記されるオリゴヌクレオチドを、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。
処置
6週齢の、雄C57BL/6マウスそれぞれに、表72に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。血液を、ベースライン決定のために投与前日に採取し、また、投与から5、12、19、及び25日後に採取した。血漿A1ATタンパク質レベルをELISAにより測定した(実施例80を参照のこと)。下記の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、血漿A1ATタンパク質レベルの平均パーセントとして示される。結果は、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、GalNAc共役体を欠く親(ISIS476366)よりも強力、かつ作用持続時間が長かったことを示している。さらに、5’−GalNAc共役体(ISIS678381、678382、678383、及び678384)を含むオリゴヌクレオチドは、概して、3’−GalNAc共役体(ISIS656326)を含むオリゴヌクレオチドよりさらに一層強力、かつ作用持続時間が長かった。
処理の2時間前に、マウス初代肝細胞を15,000細胞/ウェルで96ウェルプレートに播種した。ウィリアムE培地に2、10、50、または250nMで添加し、細胞を37℃、5%CO2内で一晩インキュベートした。オリゴヌクレオチド添加後、細胞を16時間溶解させ、RNease 3000 BioRobot(Qiagen)を用いてトータルRNAを精製した。SRB−1 mRNAレベルを、リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて標準のプロトコルに従って測定した。IC50値を、Prism 4ソフトウェア(GraphPad)を用いて測定した。結果は、多様な異なるGalNAc共役基及び多様な異なる切断可能部分を含むオリゴヌクレオチドは、生体外自由取り込み実験において、GalNAc共役基を欠く親オリゴヌクレオチド(ISIS353382及び666841)よりも有意に強力であることを示している。
実施例83:GalNAc3クラスターを含む、第XI因子を標的とするオリゴヌクレオチドによる生体内でのアンチセンス阻害
下記表77に列記されるオリゴヌクレオチドを、第XI因子の用量依存的阻害試験においてマウスで試験した。
処置
6〜8週齢マウスそれぞれに、以下に列記のオリゴヌクレオチドを下記に示す用量で、またはPBSを、週1回、全3回投与で、皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。第XI因子肝臓mRNAレベルをリアルタイムPCRを用いて測定し、標準のプロトコルに従ってシクロフィリンを基準として正規化した。肝臓の各トランスアミナーゼ、BUN、及びビリルビンも測定した。下記の結果は、PBS対照を基準として正規化された、処置群ごとの平均パーセントとして示される。
表77に列記されるオリゴヌクレオチドを、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。
処置
6〜8週齢マウスそれぞれに、表77に列記されるオリゴヌクレオチドまたはPBSを、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。尾採血による血液採取を、ベースライン決定のための投与前、また、投与から3、10、及び17日後に行った。R & D Systems(Minneapolis,MN)の第XI因子捕捉及びビオチン化検出抗体(それぞれ、カタログ番号AF2460及びBAF2460)、並びにOptEIA試薬セットB(カタログ番号550534、BD Biosciences,San Jose,CA)を用いて、ELISAにより第XI因子血漿タンパク質レベルを測定した。下記の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、第XI因子血漿タンパク質レベルの平均パーセントとして示される。結果は、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、GalNAc共役体を欠く親(ISIS404071)よりも強力、かつ作用持続時間が長いことを示している。さらに、5’−GalNAc共役体(ISIS663086、678347、678348、及び678349)を含むオリゴヌクレオチドは、3’−GalNAc共役体(ISIS656173)を含むオリゴヌクレオチドよりもさらに強力、かつ作用持続時間が長かった。
表76に列記のオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
6〜8週齢のC57BL/6マウスそれぞれに、下記に示す用量の、表76に列記のオリゴヌクレオチド、または生理食塩水を、週1回計3回の投与で皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から48時間後にマウスを屠殺し、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて、SRB−1 mRNAレベルを決定した。下記の結果は、生理食塩水による対照を基準として正規化された、処置群ごとの肝臓SRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
処置群ごとの平均値を下記表82に示す。
下記表83に列記のオリゴヌクレオチドを、アンチセンス阻害について、ヒトTTR遺伝子(TTR)を発現するトランスジェニックマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
8週齢TTRトランスジェニックマウスそれぞれに、下記表に列記する用量のオリゴヌクレオチド、またはPBSを、週1回3週間、計3回の投与で皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。実験を通してさまざまな測定時点で尾採血を実施し、血漿TTRタンパク質、ALT、及びASTレベルを測定し、表85〜87に記載した。動物を屠殺後、血漿ALT、AST、及びヒトTTR レベルを測定し、また、体重、臓器重量、及び肝臓ヒトTTR mRNAレベルも測定した。臨床分析装置(AU480、Beckman Coulter,CA)を使用してTTRタンパク質レベルを測定した。リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を標準のプロトコルに従って使用し、肝臓ヒトTTR mRNAレベルを測定した。表84〜87に提示される結果は処置群ごとの平均値である。mRNAレベルは、PBS群の平均に対する平均値である。血漿タンパク質レベルは、ベースラインにおけるPBS群の平均値に対する平均値である。体重は、屠殺されるまでの個体処置群それぞれのベースラインからの平均体重変化(パーセント)である。示されている臓器重量は動物の体重を基準として正規化され、その後、PBS群の正規化された臓器重量の平均に対する処置群ごとの正規化された臓器重量平均が提示されている。
ISIS番号420915及び660261(表83を参照)を、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。ISIS番号420915、682883、及び682885(表83を参照)も、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。
処置
ヒトTTRを発現する8週齢雄トランスジェニックマウスそれぞれに、ISIS番号420915を100mg/kgまたはISIS番号660261を13.5mg/kg、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。尾採血を、ベースライン決定のための投与前に、また、投与から3、7、10、17、24、及び39日目に実施した。血漿TTRタンパク質レベルを、実施例86に記載のように測定した。下記の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、血漿TTRレベルの平均パーセントとして示される。
ヒトTTRを発現する雌トランスジェニックマウスそれぞれに、100mg/kgのISIS番号420915、10.0mg/kgのISIS番号682883、または10.0mg/kgの682885を1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。尾採血を、ベースライン決定のための投与前に、また、投与から3、7、10、17、24、及び39日目に実施した。血漿TTRタンパク質レベルを、実施例86に記載のように測定した。下記の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、血漿TTRレベルの平均パーセントとして示される。
実施例88:GalNAc3共役体を含む、SMNを標的とするオリゴヌクレオチドによる、生体内におけるスプライシング調節
表90に列記されるオリゴヌクレオチドを、ヒト生存運動ニューロン(SMN)のスプライシング調節についてマウスで試験した。
処置
ヒトSMN を発現する6週齢トランスジェニックマウスに、表91に列記されるオリゴヌクレオチドまたは生理食塩水を1回皮下注射した。各処理群は、雄2匹と雌2匹で構成された。投与から3日後にマウスを屠殺し、リアルタイムPCRを標準のプロトコルに従い使用して、エクソン7の有無,双方の場合の肝臓ヒトSMN mRNAレベルを測定した。Ribogreen試薬を用いてトータルRNAを測定した。SMN mRNAレベルを総mRNAを基準として正規化し、さらに生理食塩水処置群の平均を基準として正規化した。そこから得られた、エクソン7を含むSMN mRNAと、エクソン7を欠くSMN mRNAとの平均比を表91に示す。結果は、スプライシング調節を行う、GalNAc共役体を含む完全修飾オリゴヌクレオチドは、GlaNAc共役体を欠く親オリゴヌクレオチドよりも有意に一層強力に肝臓におけるスプライシングを改変させることを示す。その上、この傾向は、2’−MOE及びモルホリノ修飾オリゴヌクレオチドを含む複数の修飾化学についても維持される。
下記表92に列記されるオリゴヌクレオチドを、Apo(a)kの用量依存的阻害についてトランスジェニックマウスでの試験で検討した。
処置
8週齢の雌C57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)それぞれに、下記に示す用量の表92に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、週1回、計6回投与で皮下注射した。各処置群は、動物3〜4匹で構成された。尾採血を、初回投与前日、及び各投与後に週1回実施し、血漿Apo(a)タンパク質レベルを測定した。最終投与から2日後にマウスを屠殺した。Apo(a)肝臓mRNAレベルを、リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて標準のプロトコルに従って測定した。Apo(a)血漿タンパク質レベルをELISAを用いてを測定し、肝臓トランスアミナーゼレベルを測定した。表93のmRNA及び血漿タンパク質の各結果は、PBS処置群に対する、処置群平均パーセントとして示される。血漿タンパク質レベルを、PBS群のベースライン(BL)値を基準としてさらに正規化した。トランスアミナーゼ絶対値平均及び体重(ベースライン平均に対する%)を表94に報告する。
下記表95に列記されるオリゴヌクレオチドを、アンチセンス阻害について、ヒトTTR遺伝子(TTR)を発現するトランスジェニックマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
TTRトランスジェニックマウスそれぞれに、表96に列記される用量のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、週1回3週間、計3回の投与で皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。初回投与前に、尾採血を実施し、ベースライン(BL)における血漿TTRタンパク質レベルを測定した。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。臨床分析装置(AU480、Beckman Coulter,CA)を使用してTTRタンパク質レベルを測定した。リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を標準のプロトコルに従って使用し、肝臓ヒトTTR mRNAレベルを測定した。表96に提示される結果はは、処置群ごとの平均値である。mRNAレベルは、PBS群の平均に対する平均値である。血漿タンパク質レベルは、ベースラインにおけるPBS群の平均値に対する平均値である。「BL」はベースラインを示し、初回投与直前に測定したものである。表96に例示されるように、アンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、TTR発現レベルが用量依存的に低下した。GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、GalNAc共役体を欠く親(ISIS420915)よりさらに強力であり、ホスホジエステルまたはデオキシアデノシンの切断可能部分を含むオリゴヌクレオチドは、共役体を欠く親と比較して、力価の有意な改善を示した(ISIS番号682883及び666943対420915、並びに実施例86及び87を参照のこと)。
下記表97に列記のオリゴヌクレオチドを、第VII因子のアンチセンス阻害についてサルでの非終末期用量漸増試験で検討した。
処置
処置を受けたことのある(non−nai ve)サルそれぞれに、0、15、及び29日目に、表97に列記されるオリゴヌクレオチドを用量漸増的に、またはPBSを皮下注射した。各処理群は、雄4匹と雌1匹で構成された。初回投与前、及びその後のさまざまな測定時点で、血液採取を実施し、血漿トロンボプラスチン第VII因子タンパク質レベルを測定した。第VII因子タンパク質レベルをELISAで測定した。表98に提示される結果は、初回投与直前に測定したベースラインにおけるPBS群の平均値(BL)に対する、処置群ごとの平均値である。表98に例示されるように、アンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、第VII因子発現レベルが用量依存的に低下し、サルにおいて、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、GalNAc共役体を欠くオリゴヌクレオチドよりも有意に一層強力であった。
マウス初代肝細胞を、15,000細胞/ウェルで96ウェルプレートに播種し、マウスApoC−IIIを標的とする表99に列記のオリゴヌクレオチドを、0.46、1.37、4.12、または12.35、37.04、111.11、若しくは333.33nMまたは1.00μmで添加した。オリゴヌクレオチドとともに24時間インキュベートした後、細胞を溶解させ、RNeasy(Qiagen)を用いてトータルRNAを精製した。ApoC−III mRNAレベルを、標準のプロトコルに従ってリアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.)を用いて測定した。IC50値をPrism4ソフトウェア(GraphPad)を用いて測定した。結果は、切断可能部分がホスホジエステルであるかホスホジエステル結合デオキシアデノシンであるかにかかわらず、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、共役体を欠く親オリゴヌクレオチドよりも有意に一層強力であったことを示している。
実施例93:混成ウィング及び5’−GalNAc3共役体を含む、SRB−1標的オリゴヌクレオチドによる生体内でのアンチセンス阻害
表100に列記されるオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
6〜8週齢のC57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、表100に列記されるオリゴヌクレオチドを下記に示す用量で、または生理食塩水を、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。肝臓SRB−1 mRNAレベルをリアルタイムPCRを用いて測定した。SRB−1 mRNAレベルを、標準のプロトコルに従ってシクロフィリンmRNAレベルを基準として正規化した。結果は、生理食塩水対照群に対する、処置群ごとのSRB−1 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。表101に例示されるように、アンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、SRB−1 mRNAレベルが用量依存的に低下し、GalNAc共役体を含み、かつ完全cEtまたは混成糖修飾のいずれかのウィングを有するギャップマーオリゴヌクレオチドは、共役体を欠き、かつ完全cEt修飾ウィングを含む親オリゴヌクレオチドよりも有意に強力であった。
表102に列記されるオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
実施例93に記載の操作手順を用いて試験を完了した。結果は下記表103に示され、GalNAc共役体を含む、2’−MOE修飾オリゴヌクレオチド及び2’−OMe修飾オリゴヌクレオチドはいずれも、共役体を欠くそれぞれの親オリゴヌクレオチドよりも有意に強力であったことを示している。体重、肝臓の各トランスアミナーゼ、総ビリルビン、及びBUNの測定結果から、いずれの化合物も忍容性が良好であることが示された。
表104に列記されるオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
実施例93に記載の操作手順を用いて試験を完了した。結果は以下の表105に示され、GalNAc共役体及びさまざまな二環式ヌクレオシド修飾を含むオリゴヌクレオチドは、共役体を欠き、二環式ヌクレオシド修飾を含む親オリゴヌクレオチドよりも有意に強力であったことを示している。さらに、GalNAc共役体及びフルオロ-HNA修飾を含むオリゴヌクレオチドは、共役体を欠き、フルオロ-HNA修飾を含む親よりも有意に強力であった。体重、肝臓の各トランスアミナーゼ、総ビリルビン、及びBUNの測定結果から、いずれの化合物も忍容性が良好であることが示された。
血漿タンパク質結合を評価するため、ApoC−IIIを標的とする表70に列記のオリゴヌクレオチド及びApo(a)を標的とする表106のオリゴヌクレオチドを限外濾過アッセイにおいて試験した。
Ultrafree−MC限外濾過ユニット(30,000NMWL、低結合再生セルロース膜、Millipore,Bedford,MA)を、300μLの0.5%Tween 80で事前コンディショニングし、2000gで10分間遠心分離し、その後、H2Oに溶解させた300μg/mL対照オリゴヌクレオチド溶液300μLで事前コンディショニングし、2000gで16分間遠心分離した。表70及び106の各被験オリゴヌクレオチドのフィルターへの非特異的結合を評価するために、H2O中の250ng/mLオリゴヌクレオチド溶液(pH7.4)300μLを事前コンディショニングしたフィルターに設置し、2000gで16分間遠心分離した。濾過されなかった試料及び濾過された試料をELISAアッセイによって分析し、オリゴヌクレオチド濃度を測定した。3つの複製試料を使用して、各試料の平均濃度を得た濾過されなかった試料に対する濾過されたた試料の平均濃度を用いて、血漿不在下でフィルターにより回収されたオリゴヌクレオチドの割合(%回収)を決定する。
GalNAc共役体を含む表108に示すオリゴヌクレオチドを、TTRを標的とするよう設計した。
実施例98:GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドの炎症誘発作用のhPMBCアッセイにおける評価
実施例23及び24に記載のように、表109に列記されるオリゴヌクレオチドを、炎症誘発作用についてhPMBCアッセイで試験した。(オリゴヌクレオチドの説明については表30、83、95、及び108を参照のこと)。ISIS353512は陽性対照として使用する高レスポンダーであり、他のオリゴヌクレオチドは、表83、95、及び108に記載のものである。1人の志願ドナーの血液を用いて表109に示す結果を得た。結果は、PO/PS混合型ヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチドは、完全PS結合を有する同一のオリゴヌクレオチドと比較して、有意に低い炎症誘発応答をもたらしたことを示している。さらに、GalNAc共役基は、このアッセイにおいて有意には影響しなかった。
表110に列記されるオリゴヌクレオチド(オリゴヌクレオチドの説明については表76を参照のこと)のアシアロ糖タンパク質受容体に対する結合親和性を競合的受容体結合アッセイにおいて試験した。競合相手のリガンドであるα1−酸性糖タンパク質(AGP)を、50mM酢酸ナトリウム緩衝液(pH5)中で1Uノイラミニダーゼ−アガロースとともに37℃で16時間インキュベートし、シアル酸アッセイでもサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)でも90%超の脱シアル化を確認した。Atsma et al.(J Lipid Res.1991 Jan、32(1):173−81を参照のこと)の手順に従って、一塩化ヨウ素を用いてAGPをヨウ素化した。この方法では、脱シアル化α1−酸性糖タンパク質(de−AGP)を、10mM塩化ヨウ素、Na125I、及び1Mグリシンを溶解させた0.25M NaOHに添加した。室温で10分間インキュベートした後、3KDMWCOスピンカラムを利用してこの混合物を2回濃縮することにより、遊離125Iから125I標識de−AGPを分離した。このタンパク質を、標識効率及び純度について、Agilent SEC−3カラム(7.8×300mm)及びβ−RAMカウンターを装備したHPLCシステムにおいて試験した。125I標識de−AGP及びASO含有の各種GalNAcクラスターを利用した競合実験を以下のとおりに実施した。ヒトHepG2細胞(106細胞/mL)を、2mLの適切な成長培地中の6ウェルプレートにプレーティングした。10%ウシ胎児血清(FBS)、2mM L−グルタミン、及び10mM HEPESを添加したMEM培地を用いた。細胞を、5%及び10%のそれぞれのCO2で、37℃にて16〜20時間インキュベートした。実験に先立ち、細胞をFBS不含培地で洗浄した。細胞を、2%FBS、10-8M 125I標識de−AGP、及びASOを10-11〜10-5Mの濃度範囲で含有するGalNAcクラスターを含む適切な成長培地を含有する競合混合物1mLとともに、37℃で30分間インキュベートした。非特異的結合を、10-2M GalNAc糖存在下で測定した。細胞をFBS不含培地で2回洗浄し、結合しなかった125I標識de−AGP及び競合相手のGalNAc ASOを除去した。1%β−メルカプトエタノールを含有するQiagen製RLT緩衝液を用いて細胞を溶解させた。10分間の短時間凍結/融解サイクル後に溶解物を丸底アッセイチューブに移し、γ−カウンターで評価した。非特異的結合を差し引いてから、125Iタンパク質カウントをGalNAc−ASO濃度最低カウント値で割った。非線形回帰アルゴリズムを用いた単一部位競合結合等式に従って阻害曲線を当てはめて、結合親和性(KD)を計算した。
下記表111aに列記されるオリゴヌクレオチドを、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。
処置
ヒトApo(a)を発現する雌トランスジェニックマウスそれぞれに、表111bに列記される用量のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、週1回、計6回投与で皮下注射した。各処置群は3匹の動物で構成された。血液を、Apo(a)タンパク質血漿中濃度のベースライン決定のために投与前日に採取し、その後は、初回投与から72時間、1週間、及び2週間後に採取した。初回投与から3週間、4週間、5週間、及び6週間後にさらに採血する。血漿Apo(a)タンパク質レベルをELISAを用いて測定した。表111bの結果は、ベースラインレベル(%BL)を基準として正規化された、処置群ごとの、血漿Apo(a)タンパク質レベルの平均パーセントとして提示され、結果は、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドがApo(a)発現を強力に低下させたことを示している。この強い作用は、完全PSヌクレオシド間結合を含むオリゴヌクレオチド及びPO結合とPS結合の混合を含むオリゴヌクレオチドにおいて観察された。
表112に列記されるオリゴヌクレオチドを、生体内におけるマウスAPOC−III発現の阻害について試験した。C57Bl/6マウスそれぞれに、表112に列記されるオリゴヌクレオチドつまたはPBSを、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。ISIS440670で処置をした各マウスは、2、6、20、または60mg/kgの投与を受けた。ISIS680772または696847で処置をした各マウス0.6、2、6、または20mg/kgの投与を受けた。ISIS696847のGalNAc共役基は安定部分、すなわち、容易に切断可能なホスホジエステルを含む結合ではなくホスホロチオエート結合を介して連結されている。動物を投与から72時間後に屠殺した。肝臓APOC−III mRNAレベルをリアルタイムPCRを用いて測定した。APOC−III mRNAレベルを、標準のプロトコルに従ってシクロフィリンmRNAレベルを基準として正規化した。結果は、処置群ごとの、生理食塩水対照群に対する各処理群のAPOC−III mRNAレベルの平均パーセントとして表112に提示される。結果は、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドは、共役基を欠くオリゴヌクレオチドよりも有意に強力であったことを示している。さらに、切断可能部分を介してオリゴヌクレオチドに連結されたGalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチド(ISIS680772)は、安定部分を介してオリゴヌクレオチドに連結されたGalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチド(ISIS696847)よりもさらに強力であった。
実施例102:GalNAc共役体を含むアンチセンスオリゴヌクレオチドの肝臓における分布
GalNAc共役体を含まないISIS353382(表36を参照のこと)及びGalNAc共役体を含むISIS655861(表36を参照のこと)の肝臓に内分布を評価した。雄balb/cマウスに、ISIS353382または655861を、表113に列記される投与量で1回、皮下注射した。各処置群は3匹の動物で構成されたが、ISIS655861投与の18mg/kg群だけは動物2匹で構成された。動物を投与から48時間後に屠殺し、オリゴヌクレオチドの肝臓分布を測定した。1細胞当たりのアンチセンスオリゴヌクレオチド分子数を測定するため、ルテニウム(II)トリス−ビピリジン・タグ(MSD TAG、Meso Scale Discovery)をオリゴヌクレオチドプローブに結合させ、アンチセンスオリゴヌクレオチドの検出に使用した。表113に提示される結果は、1細胞あたり100万オリゴヌクレオチド分子を1単位として表した処理群ごとのオリゴヌクレオチド平均濃度である。結果は、等価用量では、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、全肝臓及び肝細胞において、GalNAc共役体を含まないオリゴヌクレオチドよりも高い濃度で存在したことを示している。さらに、GalNAc共役体を含むオリゴヌクレオチドは、非実質肝臓細胞において、GalNAc共役体を含まないオリゴヌクレオチドよりも低い濃度で存在した。また、1細胞当たりの肝細胞及び非実質肝臓細胞におけるISIS655861の濃度が同様であった一方で、肝臓は、約80容量%が肝細胞であった。したがって、肝臓内に存在するISIS655861オリゴヌクレオチドの大部分が肝細胞内に見られる一方で、肝臓内に存在するISIS353382オリゴヌクレオチドの大部分は、非実質肝臓細胞内に見られた。
下記表114に列記されるオリゴヌクレオチドを、作用持続時間についてマウスでの単回投与試験で検討した。
処置
ヒトAPOC−III を発現する雌トランスジェニックマウスそれぞれに、表114に列記のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、1回皮下注射した。各処置群は3匹の動物で構成された。血液採取を、ベースライン決定のための投与前に、また、投与から3、7、14、21、28、35、及び42日後に行った。血漿トリグリセリド及びAPOC−IIIタンパク質レベルを、実施例20に記載のように測定した。表115の結果は、ベースラインレベルを基準として正規化された、処置群ごとの、血漿トリグリセリド及びAPOC−IIIレベルの平均パーセントとして示される。実施例79の表71の結果と下記表115の結果を比較すると、ホスホジエステルヌクレオシド間結合とホスホロチオエートヌクレオシド間結合の両方を含むオリゴヌクレオチドは、ホスホロチオエートヌクレオシド間結合のみを含む等価オリゴヌクレオチドよりも作用持続時間が延長していることがわかる。
別法として、以下に示すスキームを用いてオリゴヌクレオチド236を合成し、実施例10に記載される手順を用いて、化合物238を用いてオリゴヌクレオチド236を形成した。
表116及び117に列記のオリゴヌクレオチドを、SRB−1のアンチセンス阻害についてマウスでの用量依存的試験で検討した。
処置
6週齢の雄C57BL/6マウス(Jackson Laboratory,Bar Harbor,ME)に、2、7、もしくは20mg/kgのISIS番号440762、または0.2、0.6、2、6、若しくは20mg/kgのISIS番号686221、686222、もしくは708561、または生理食塩水を1回皮下注入した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から72時間後にマウスを屠殺した。リアルタイムPCRを用いて、肝臓のSRB−1 mRNAレベルを測定した。SRB−1 mRNAレベルを、標準のプロトコルに従ってシクロフィリンmRNAレベルを基準として正規化した。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、用量依存的にSRB−1 mRNAレベルを低下させ、そのED50の結果を表116及び117に示す。先の研究において、三価GalNAc共役オリゴヌクレオチドは二価GalNAc共役オリゴヌクレオチドよりも有意に強力であり、これら、次いで、一価GalNAc共役オリゴヌクレオチドよりも有意に強力であることが示されたが(例えば、Khorev et al.,Bioorg.& Med.Chem.,Vol.16,5216−5231(2008)を参照のこと)、表116及び117に示されるように、一価、二価、及び三価GalNAcクラスターを含むアンチセンスオリゴヌクレオチドでの処置は、同様の力価でSRB−1 mRNAレベルを低下させた。
実施例75に記載の手順を用いて、表116及び117のオリゴヌクレオチドの肝臓中濃度も評価した。下記表117a及び117bに示される結果は、肝臓組織1g当たりのオリゴヌクレオチド(単位:μg)をUVにより測定した、処置群ごとの平均総アンチセンスオリゴヌクレオチド組織濃度である。結果は、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドはGalNAc共役基を欠く同一用量のオリゴヌクレオチドよりも有意に高いレベルで肝臓に蓄積したことを示している。さらに、それらのそれぞれの共役基に1、2、または3個のGalNAcリガンドを含むアンチセンスオリゴヌクレオチドはいずれも同様のレベルで肝臓に蓄積した。上記で引用したKhorevらの参考文献を考慮すると、これは驚くべき結果であり、上表116及び117に示される活性データと一致する。
下記表118に列記されるオリゴヌクレオチドを、マウスでの単回投与試験で検討した。
処置
ヒトApo(a)を発現する雄トランスジェニックマウスそれぞれに、表119に列記される用量のオリゴヌクレオチドまたはPBSを、1回皮下注射した。各処置群は4匹の動物からなった。血液を投与前日に採取してApo(a)タンパク質の血漿中濃度ベースラインを決定し、その後、初回投与の1週間後に採取した。以降、約8週間、毎週採血する。血漿Apo(a)タンパク質レベルをELISAを用いて測定した。表119の結果は、ベースラインレベル(%BL)を基準として正規化された、処置群ごとの、血漿Apo(a)タンパク質レベルの平均パーセントとして提示され、結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドがApo(a)タンパク質の発現を低下させたことを示している。さらに、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドは、共役基を含まないオリゴヌクレオチドよりもさらに強力にApo(a)発現を低下させることが示された。
GalNAcリガンドを1つ含有する共役基を含んでいるオリゴヌクレオチドの力価をさらに試験するため、SRB−1を標的とする表120のオリゴヌクレオチドをGalNAc1共役基と共に合成した。
表121のオリゴヌクレオチドを、ヒトアンジオポエチン様因子3(ANGPTL3)を標的とするよう設計した。
ヒトANGPTL3を発現する6週齢雄C57Bl/6トランスジェニックマウスそれぞれに、下記に示す用量の表122に列記(表121に記載)のオリゴヌクレオチド、またはPBSを、週1回、計2回投与で、腹腔内に注入した。各処置群は4匹の動物からなった。最終投与から2日後にマウスを屠殺した。肝臓でのANGPTL3 mRNAレベルを、リアルタイムPCR及びRIBOGREEN(登録商標)RNA定量試薬(Molecular Probes,Inc.Eugene,OR)を用いて標準のプロトコルに従って測定した。下記の結果は、PBS対照を基準として正規化された、処置群ごとの、肝臓でのANGPTL3 mRNAレベルの平均パーセントとして示される。
実施例115:マウスANGPTL3を標的とするGalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドによる生体内でのアンチセンス阻害
下記表123に列記されるオリゴヌクレオチドをマウスでの用量依存的試験で検討した。
低比重リポタンパク質受容体ノックアウト(LDLR−/−)マウスに1週間の西洋食を給餌してから、下記に示す用量の表123に列記のオリゴヌクレオチド、またはPBSを、週1回腹腔内に注入した。各処置群は5匹の動物で構成された。ベースラインのトリグリセリド血漿中濃度を決定定するために、初回用量の投与前に血液を採取し、その後、初回投与から2週間後に採血した。表124の結果は、ベースラインレベル(%BL)を基準として正規化された、処置群ごとの、血漿トリグリセリド値の平均パーセントとして提示され、結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドがトリグリセリドを用量依存的に低下させたことを示している。さらに、GalNAc共役基を含むオリゴヌクレオチドは、共役基を含まないオリゴヌクレオチドよりもトリグリセリドをさらに強力に低下させた。
アンチセンスオリゴヌクレオチドを、アンジオポエチン様因子3(ANGPTL3)の核酸を標的とするよう設計し、そのANGPTL3 mRNAに対する効果について生体外で試験した。アンチセンスオリゴヌクレオチドを、培養条件が同様である一連の実験において試験した。各実験結果を、下記の別々の表に示す。密度20,000細胞/ウェルで培養したHep3B細胞を、電気穿孔法を用いて4,500nMアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約24時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRにより測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGB(順方向配列CCGTGGAAGACCAATATAAACAATT(本明細書ではこれを配列番号4とする)、逆方向配列AGTCCTTCTGAGCTGATTTTCTATTTCT(本明細書ではこれを配列番号5とする)、プローブ配列AACCAACAGCATAGTCAAATA(本明細書ではこれを配列番号6とする))を使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
生体外で有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記試験の5−10−5MOEギャップマーを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。細胞を、密度20,000細胞/ウェルでプレーティングし、下記表に具体的に示すように、電気穿孔法を用いて濃度0.75μM、1.50μM、3.00μM、6.00μM及び12.00μMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
生体外で有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記試験の5−10−5MOEギャップマーを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。細胞を、密度20,000細胞/ウェルでプレーティングし、下記表に具体的に示すように、電気穿孔法を用いて濃度0.813μM、1.625μM、3.25μM、6.50μM及び13.00μMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
別のアンチセンスオリゴヌクレオチドを、ANGPTL3の核酸を標的とするよう設計し、ANGPTL3 mRNAに対するその効果について生体外で試験した。密度20,000細胞/ウェルで培養したHep3B細胞を、電気穿孔法を用いて4,500nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約24時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
別のアンチセンスオリゴヌクレオチドを、ANGPTL3の核酸を標的とするよう設計し、ANGPTL3 mRNAに対するその効果について生体外で試験した。5−10−5MOEギャップマーであるISIS337487及びISIS233717も、基準オリゴヌクレオチドとしてアッセイに含めた。密度20,000細胞/ウェルで培養したHep3B細胞を、電気穿孔法を用いて4,500nMアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約24時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
別のアンチセンスオリゴヌクレオチドを、ANGPTL3の核酸を標的とするよう設計し、ANGPTL3 mRNAに対するその効果について生体外で試験した。密度20,000細胞/ウェルで培養したHep3B細胞を、電気穿孔法を用いて4,500nMアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約24時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRにより測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
生体外で有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記試験のデオキシ、MOE、及びcEtオリゴヌクレオチドを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。ISIS233717とISIS337847のいずれの5−10−5MOEギャップマーも、試験に含めた。アンチセンスオリゴヌクレオチドを、培養条件が同様である一連の実験において試験した。各実験結果を以下に別々の表に示す。
生体外で有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記試験のデオキシ、MOE、及びcEtオリゴヌクレオチドを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。5−10−5MOEギャップマーであるISIS337847も試験に含めた。アンチセンスオリゴヌクレオチドを、培養条件が同様である一連の実験において試験した。各実験結果を以下に別々の表に示す。
生体外での有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記実施例のMOEギャップマーを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。細胞を、密度20,000細胞/ウェルでプレーティングし、下記表に具体的に示すように、電気穿孔法を用いて濃度0.160μM、0.481μM、1.444μM、4.333μM及び13.00μMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
生体外で有意なANGPTL3 mRNA阻害を示した上記試験のデオキシ、MOE、及びcEtオリゴヌクレオチドを選択し、用量をさまざまに変えてHep3B細胞において試験した。細胞を、密度20,000細胞/ウェルでプレーティングし、下記表に具体的に示すように、電気穿孔法を用いて濃度0.111μM、0.333μM、1.00μM、3.00μM及び9.00μMのアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクションした。約16時間の処理期間後、細胞からRNAを単離し、ANGPTL3 mRNAレベルを定量リアルタイムPCRで測定した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS3492_MGBを使用してmRNAレベルを測定した。ANGPTL3 mRNAレベルを、RIBOGREEN(登録商標)で測定したトータルRNA含有量にしたがって調整した。結果を、未処置対照細胞と比べたANGPTL3の阻害パーセントとして示す。
上記試験に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチドを、ヒトANGPTL3 mRNAの転写を抑制する能力について、ヒトANGPTL3導入遺伝子を有するC57Bl/6マウス(Tgマウス)でさらに評価した。
試験1
雌Tgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、RTS3492_MGBを用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。ヒトのプライマー・プローブセットRTS1984(順方向配列CTTCAATGAAACGTGGGAGAACT(本明細書ではこれを配列番号7とする)、逆方向配列TCTCTAGGCCCAACCAAAATTC(本明細書ではこれを配列番号8とする)、プローブ配列AAATATGGTTTTGGGAGGCTTGAT(本明細書ではこれを配列番号9とする))を用いてmRNAレベルも測定した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置によりANGPTL3タンパク質レベルの低下がもたらされたことを示している。
10日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄Tgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、RTS1984を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置によりANGPTL3タンパク質レベルの低下がもたらされたことを示している。
8日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022(順方向配列AAATTTTAGCCAATGGCCTCC(本明細書ではこれを配列番号10とする)、逆方向配列TGTCATTAATTTGGCCCTTCG(本明細書ではこれを配列番号11とする)、プローブ配列TCAGTTGGGACATGGTCTTAAAGACTTTGTCC(本明細書ではこれを配列番号12とする))を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。各ギャップマーのED50も下記表に示す。「n.d.」は、ED50が測定不可能であったことを示す。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置によりANGPTL3タンパク質レベルの低下がもたらされたことを示している。「n.d.」は、ED50が測定不可能であったことを示す。
17日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
10日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、RTS1984を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
9日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドのうちいくつかは、その処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAを有意に低下させた。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、ISISオリゴヌクレオチドのうちいくつかを用いた処置により、ANGPTL3タンパク質レベルの低下がもたらされたことを示している。
10日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、一部のISISオリゴヌクレオチドを用いた処置により、ANGPTL3レベルの低下がもたらされたことを示している。この場合、値「0」は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置で発現が阻害されなかったことを意味し、場合によっては、発現レベルの上昇が記録された可能性もある。
9日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置により、ANGPTL3レベルの低下がもたらされたことを示している。
8日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、一部のISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAが有意に低下した。この場合、値「0」は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置で発現が阻害されなかったことを意味し、場合によっては、発現レベルの上昇が記録された可能性もある。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。結果は、一部のISISオリゴヌクレオチドを用いた処置により、ANGPTL3レベルの低下がもたらされたことを示している。この場合、値「0」は、ISISオリゴヌクレオチドを用いた処置で発現が阻害されなかったことを意味し、場合によっては、発現レベルの上昇が記録された可能性もある。
9日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄及び雌のTgマウスを12時間の明暗周期で維持した。動物を実験開始前に研究施設で少なくとも7日間馴化させた。アンチセンスオリゴヌクレオチド(ASO)を緩衝生理食塩水(PBS)に調製し、0.2ミクロンフィルターを通す濾過により滅菌した。オリゴヌクレオチドを、注射用に0.9%PBSに溶解させた。
RNA分析
処置期間の終了時、RNAを肝臓から抽出し、hANGPTL3_LTS01022の他にRTS3492_MGBも用いた、ANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、一部のISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAの低下がもたらされた。
8日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらの肝機能マーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
CD1(登録商標)マウス(Charles River、MA)は、多目的マウスモデルであり、安全性及び有効性試験に利用されることが多い。マウスを、上述の試験から選択したISISアンチセンスオリゴヌクレオチドで処置し、各種血漿化学マーカーのレベルの変化について評価した。
試験1
雄CD1マウス(各処置群につき動物1匹)に、200mg/kgのデオキシ、MOE、及びcEtオリゴヌクレオチドを単回投与でを腹腔内に注入した。雄CD1マウス1匹にPBSを単回投与で皮下注射した。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
4日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらのいずれかの肝機能マーカーのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
ISISオリゴヌクレオチドの単回投与の翌日、体重を測定し、下記表に示す。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄CD1マウス(各処置群につき動物1匹)に、200mg/kgのデオキシ、MOE及びcEtオリゴヌクレオチドを単回投与でを腹腔内に注入した。雄CD1マウス1匹にPBSを単回投与で皮下注射した。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
5日目のISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を使用してトランスアミナーゼ(ALT及びAST)の血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらのいずれかの肝機能マーカーのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄CD1マウス(処置群当たり動物4匹)に、100mg/kgの5−10−5MOEギャップマーを週1回、6週間の投与で腹腔内に注入した。雄CD1マウス4匹の一群にPBSを週1回、6週間投与で、腹腔内に注入した。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
ISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて、45日目の肝臓及び腎臓機能の各種マーカーの血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらのマーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
43日目に体重を測定したものを下記表に示す。45日目の試験終了時、腎臓、肝臓及び脾臓重量を測定した。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄CD1マウス(処置群当たり動物4匹)に、50mg/kg若しくは100mg/kgの5−10−5MOEギャップマー、またはデオキシ、MOE及びcEtオリゴヌクレオチドを、週1回、6週間投与で腹腔内に注入した。雄CD1マウス4匹の一群にPBSを週1回、6週間投与で、腹腔内に注入した。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
ISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて、46日目の肝臓及び腎臓機能の各種マーカーの血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらのマーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
44日目に体重を測定したものを下記表に示す。46日目の試験終了時、腎臓、肝臓及び脾臓重量を測定した。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄CD1マウス(処置群当たり動物4匹)に、50mg/kgのデオキシ、MOE及びcEtオリゴヌクレオチドを、週1回、6週間投与で腹腔内に注入した。雄CD1マウス4匹の一群にPBSを週1回、6週間投与で、腹腔内に注入した。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
ISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて、43日目の肝臓及び腎臓機能の各種マーカーの血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。これらのマーカーのいずれかのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
41日目に体重を測定したものを下記表に示す。43日目の試験終了時、腎臓、肝臓及び脾臓重量を測定した。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
粘度が40センチポアズ(cP)以上のアンチセンスオリゴヌクレオチドをスクリーニングで除くことを目的として、上述の試験から選択したアンチセンスオリゴヌクレオチドの粘度を測定した。粘度より大きい40cPであるオリゴヌクレオチド至適粘度に満たないと考えられる。
Sprague−Dawleyラットは、安全性及び有効性評価に使用される多目的モデルである。上述の実施例に記載されている試験から得たISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでラットを処理し、各種血漿化学マーカーのレベルの変化について評価した。
試験1
雄Sprague−Dawleyラットを12時間の明暗周期で維持し、Purinaラット用通常固形食餌5001を自由に摂食させた。1群がSprague−Dawleyラット4匹からなる複数の群に、PBSまたは100mg/kgの5−10−5MOEギャップマーを週1回、6週間、皮下注射した。最終投与から48時間後、ラットを安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
肝機能
ISISオリゴヌクレオチドの肝機能に対する効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いてトランスアミナーゼの血漿レベルを測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿レベルを45日目に測定し、その結果を下記表に示す(単位:IU/L)。ビリルビンの血漿レベルも同一の臨床化学分析装置を使用して測定し、その結果も下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの肝機能マーカーのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
ISISオリゴヌクレオチドの腎機能に対する効果を評価するため、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿中レベルを自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて測定した。結果を下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの腎機能マーカーのレベルが、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。総尿タンパク質量及び尿クレアチニン量を測定し、総尿タンパク質量とクレアチニンとの比を評価した。結果を下記表に示す。
42日目に体重を測定し、下記表に示す。試験終了にあたる45日目に肝臓、脾臓及び腎臓の重量を測定し、それを下記表に示す。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄Sprague−Dawleyラットを12時間の明暗周期で維持し、Purinaラット用通常固形食餌5001を自由に摂食させた。1群がSprague−Dawleyラット4匹からなる複数の群に、5−10−5MOEギャップマーまたはデオキシ、MOE及びcEtオリゴヌクレオチドを50mg/kgまたは100mg/kg、またはPBSを週1回、6週間、皮下注射した。最終投与から48時間後、ラットを安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
肝機能
ISISオリゴヌクレオチドの肝機能に対する効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いてトランスアミナーゼの血漿レベルを測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿レベルを44日目に測定し、その結果を下記表に示す(単位:IU/L)。ビリルビンの血漿レベルも同一の臨床化学分析装置を使用して測定し、その結果も下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの肝機能マーカーのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
ISISオリゴヌクレオチドの腎機能に対する効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿中レベルを44日目に測定した。結果を下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの腎機能マーカーのレベルが、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。総尿タンパク質量及び尿クレアチニン量を測定し、総尿タンパク質量とクレアチニンとの比を評価した。結果を下記表に示す。
42日目に体重を測定し、下記表に示す。試験終了にあたる44日目に肝臓、脾臓及び腎臓の重量を測定し、それを下記表に示す。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
雄Sprague−Dawleyラットを12時間の明暗周期で維持し、Purinaラット用通常固形食餌5001を自由に摂食させた。1群がSprague−Dawleyラット4匹からなる複数の群に、PBSまたは50mg/kgのデオキシ、MOE及びcEtオリゴヌクレオチドを週1回、6週間、皮下注射した。最終投与から48時間後、ラットを安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
肝機能
ISISオリゴヌクレオチドの肝機能に対する効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いてトランスアミナーゼの血漿レベルを測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿レベルを44日目に測定し、その結果を下記表に示す(単位:IU/L)。ビリルビンの血漿レベルも同一の臨床化学分析装置を使用して測定し、その結果も下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの肝機能マーカーのレベルを、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
ISISオリゴヌクレオチドの腎機能に対する効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿中レベルを44日目に測定した。結果を下記表に示す(単位:mg/dL)。いずれかの腎機能マーカーのレベルが、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。総尿タンパク質量及び尿クレアチニン量を測定し、総尿タンパク質量とクレアチニンとの比を評価した。結果を下記表に示す。
42日目に体重を測定し、下記表に示す。試験終了にあたる44日目に肝臓、脾臓及び腎臓の重量を測定し、それを下記表に示す。臓器重量をアンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外まで変化させたISISオリゴヌクレオチドは、それ以降の試験では除外された。
カニクイザルを、上述の実施例に記載の試験から選択したISISアンチセンスオリゴヌクレオチドで処置した。アンチセンスオリゴヌクレオチドの有効性及び忍容性、並びに、肝臓及び腎臓にける薬物動態プロファイルを評価した。
試験に先立ち、サルを少なくとも30日間隔離して飼育し、その期間中、動物を全身の健康状態について毎日観察した。サルは2〜4歳齢、及び体重2〜4kgであった。1群が無作為に割り付けた雄カニクイザル5匹からなる9つの群それぞれに対し、背中の4部位に時計回りに(すなわち左、上、右、及び下)、1投与につき1部位にて、ISISオリゴヌクレオチドまたはPBSの皮下注射を行った。サルに対し、第1週は、PBSまたは40mg/kgのISISオリゴヌクレオチドの負荷量を隔日投与し(1、3、5、及び7日目)、以降は、PBSまたは40mg/kgのISISオリゴヌクレオチドを週1回12週間(14、21、28、35、42、49、56、63、70、77、及び84日目)投与した。
肝標的の低下
RNA分析
86日目、ANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析用にRNAを肝臓から抽出した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。下記表に示すように、ISISアンチセンスオリゴヌクレオチドを用いた処置により、PBS対照と比較して、ANGPTL3 mRNAの有意な低下がもたらされた。ANGPTL3 mRNAレベルの分析により、アカゲザル配列と十分に交差反応性を有するISIS544199とISIS559277はともに発現レベルを有意に低下させることが明らかになった。ミスマッチを有するサル配列を標的とする他のISISオリゴヌクレオチドもANGPTL3 mRNAレベルを低下させることができた。
85日目において利用可能な全動物から血液を約1mL採取し、EDTAのカリウム塩が入ったチューブに入れた。血液試料を氷中に置き、遠心分離(3000rpm、4℃で10分間)にかけて血漿を得た。
体重測定
動物の全体的な健康状態に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するため、体重を測定し、それを下記表に示す。結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドでの処置が体重に与える影響は、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲内であることを示している。具体的には、ISIS563580を用いた処置はサルの体重に関しては忍容性が良好であった。
ISISオリゴヌクレオチドの肝機能に対する効果を評価するため、全試験群から血液試料を採取した。投与から48時間後に橈側皮静脈、伏在静脈、または大腿静脈から血液試料を採取した。サルは、血液採取前の一晩、絶食させた。血液は、血清を分離するため抗凝固剤を入れずにチューブに採取した。チューブを最低90分間室温で維持してから、遠心分離(約3,000rpmで10分間)にかけて血清を得た。Toshiba200FR NEO化学分析装置(Toshiba Co., Japan)を使用して、さまざまな肝機能マーカーレベルを測定した。ALT及びASTの血漿レベルを測定し、結果を下記表に示す(単位:IU/L)。肝機能マーカーであるビリルビンも同様に測定し、下記表に示す(単位:mg/dL)。結果は、大部分のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、アンチセンスオリゴヌクレオチドについての予想範囲外となるような影響を肝機能に対して与えなかったことを示している。具体的には、ISIS563580を用いた処置は、サルにおける肝機能に関して忍容性が良好であった。
ISISオリゴヌクレオチドの腎機能に対する効果を評価するため、全試験群から血液試料を採取した。投与から48時間後に橈側皮静脈、伏在静脈、または大腿静脈から血液試料を採取した。サルは、血液採取前の一晩、絶食させた。血液は、血清を分離するため抗凝固剤を入れずにチューブに採取した。チューブを最低90分間室温で維持してから、遠心分離(約3,000rpmで10分間)にかけて血清を得た。Toshiba200FR NEO化学分析装置(Toshiba Co., Japan)を使用して、BUN及びクレアチニンのレベルを測定した。結果を下記表に示す(単位:mg/dL)。
カニクイザルにおけるISISオリゴヌクレオチドの血液学的パラメータに及ぼす影響を評価するため、利用可能な試験動物それぞれから血液約0.5mLの血液試料を採取しK2−EDTAが入ったチューブに入れた。ADVIA120血液分析装置(Bayer、米国)を使用して、赤血球(RBC)数、白血球(WBC)数、各種白血球数(単球、好中球、リンパ球などの数)について、並びに血小板数、ヘモグロビン含量及びヘマトクリットについて試料を分析した。データを下記表に示す。
カニクイザルにおけるISISオリゴヌクレオチドの炎症作用を評価するため、84日目の投与前のC反応性タンパク質とC3レベルの分析用に血液試料を採取した。各動物から約血液1.5mLを採取し、血清を分離するため抗凝固剤を入れずにチューブに入れた。チューブを最低90分間室温で維持してから、遠心分離(約3,000rpmで10分間)にかけて血清を得た。炎症マーカーとして使用するC反応性タンパク質(CRP)及び補体C3を、Toshiba200FR NEO化学分析装置(Toshiba Co., Japan)を使用して測定した。結果は、ISIS563580を用いた処置は、サルにおいて忍容性があったことを示している。
完全長オリゴヌクレオチドの濃度を測定した。使用した方法は、先に公表されている方法(Leeds et al.,1996、Geary et al.,1999)の変法であり、フェノール−クロロホルム(液−液)抽出と、それに続く固相抽出からなる。抽出に先立ち、内部標準(ISIS355868、27−mer 2’−O−メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT(本明細書ではこれを配列番号13とする))を付加した。組織試料濃度を、定量下限(LLOQ)が約1.14μg/gである検量線を使って算出した。結果を下記表に示す(単位:μg/肝臓または腎臓組織1g)。腎臓と肝臓の完全長オリゴヌクレオチド濃度の比を計算した。ISIS563580で処置した後の腎臓と肝臓の完全長オリゴヌクレオチド濃度の比が、他の被験化合物の場合と比較して最も至適であることがわかった。
GalNAc3−7aを含むアンチセンスオリゴヌクレオチドと、共役していない対応するアンチセンスオリゴヌクレオチドとを、TgマウスでのヒトANGPTL3 mRNA転写抑制能力について比較し評価した。配列番号1を標的とするギャップマーを下記表及び表121に記載する。骨格化学の列の記号は、「s」はチオエートエステルを意味し、「o」はリン酸エステルを意味する。
RNA分析
処置期間の終了時、肝臓組織からRNAを抽出し、ヒトのプライマー・プローブセットhANGPTL3_LTS01022を用いてANGPTL3のmRNA発現を測定するリアルタイムPCR分析に供した。結果を、RIBOGREEN(登録商標)で正規化した、PBS対照に対するmRNAの変化率として記載する。ゼロ値は、単純に、アンチセンスオリゴヌクレオチドが測定可能なレベルで発現を阻害しなかったことを示す。
市販のELISAキット(カタログ番号DANL30:R&D System、Minneapolis,MN)及び希釈度1:20,000のトランスジェニック血漿試料を製造者記載の操作手順を用いて使用し、ヒトANGPTL3タンパク質レベルを定量した。結果を下記表に示す。ゼロ値は、単純に、アンチセンスオリゴヌクレオチドが測定可能なレベルで発現を阻害しなかったことを示す。
雄CD1マウス(処置群当たり動物4匹)に、ISIS703802を下記表に記載のようにさまざまな用量で6週間(1、3、5、8、14、21、28、35及び42日目)皮下注射した。雄CD1マウス4匹の一群にPBSの皮下注射を6週間行った。マウスを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
血漿化学マーカー
ISIS703802の効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いて、44日目の肝臓及び腎臓機能の各種マーカーの血漿中レベルを測定した。結果を下記表に示す。ISIS703802は、高用量でも忍容性のある化合物であることが示された。
44日目の試験終了時、体重、腎臓重量、肝臓重量及び脾臓重量を測定した。ISIS703802は、高用量を投与した場合でも体重及び臓器重量を有意には変化させなかった。
Sprague−Dawleyラットは、安全性及び有効性評価に使用される多目的モデルである。雄Sprague−Dawleyラットを12時間の明暗周期で維持し、Purinaラット用通常固形食餌5001を自由に摂食させた。1群がSprague−Dawleyラット4匹からなる複数の群に、ISIS703802を下記表に記載のようにさまざまな用量で、6週間(1、3、5、8、14、21、28、35、及び42日目)皮下注射した。ラット4匹からなる一群にPBSの皮下注射を6週間行った。ラットを最終投与から48時間後に安楽死させ、さらなる分析用に臓器及び血漿を回収した。
肝機能及び腎機能
肝機能に対するISIS703802の効果を評価するため、自動臨床化学分析装置(Hitachi Olympus AU400e,Melville,NY)を用いてトランスアミナーゼの血漿レベルを測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿レベルを44日目に測定し、その結果を下記表に示す(単位:IU/L)。
試験終了にあたる44日目に、体重、肝臓重量、脾臓重量及び腎臓重量を測定し、それを下記表に示す。ISIS703802は、高用量を投与した場合でも、体重、腎臓重量及び肝臓重量を有意には変化させなかった。
Claims (187)
- 修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、少なくとも8個の核酸塩基が連続する、配列番号1の核酸塩基1140〜1159の長さが等しい部分に相補的な部分を含む核酸塩基配列を含み、ここで、前記修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、配列番号1に対して少なくとも80%相補的である、前記化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが、少なくとも10個、少なくとも12個、少なくとも14個、少なくとも16個、少なくとも18個、少なくとも19個、または少なくとも20個の核酸塩基が連続する、配列番号1の等しい長さの部分に相補的な部分を含む核酸塩基配列を含んでいる、請求項1に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、少なくとも8個、少なくとも9個、少なくとも10個、少なくとも11個、少なくとも12個、少なくとも13個、少なくとも14個、少なくとも15個、少なくとも16個、少なくとも17個、少なくとも18個、少なくとも19個、または20個の核酸塩基が連続する、配列番号1の核酸塩基1140〜1159の等しい長さの部分に相補的な部分を含む核酸塩基配列を含み、ここで、前記修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列は、配列番号1に対して少なくとも80%相補的である、前記化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドの核酸塩基配列が配列番号1に対して少なくとも85%、少なくとも90%、少なくとも95%、または100%相補的である、請求項1〜3のいずれかに記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、配列番号77、20、35、90、93または94の核酸塩基配列のいずれかの連続する核酸塩基を少なくとも8個、少なくとも9個、少なくとも10個、少なくとも11個、少なくとも12個、少なくとも13個、少なくとも14個、少なくとも15個、少なくとも16個、少なくとも17個、少なくとも18個、少なくとも19個、または20個含む核酸塩基配列を有する、前記化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドが、12〜30個の連結されたヌクレオシドからなり、かつ、配列番号110または114の核酸塩基配列のいずれかの連続する核酸塩基を少なくとも8個、少なくとも9個、少なくとも10個、少なくとも11個、少なくとも12個、少なくとも13個、少なくとも14個、少なくとも15個、または16個含む核酸塩基配列を有する、前記化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが一本鎖または二本鎖である、請求項1〜6のいずれかに記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが修飾ヌクレオシド間結合を少なくとも1つ含む、請求項1〜7のいずれかに記載の化合物。
- 修飾ヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合である、請求項8に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも1つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも2つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも3つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも4つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも5つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも6つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも7つのホスホジエステルヌクレオシド間結合を含む、請求項9に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合が、ホスホジエステルヌクレオシド間結合及びホスホロチオエートヌクレオシド間結合から選択される、請求項10〜16のいずれかに記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドの各ヌクレオシド間結合がホスホロチオエートヌクレオシド間結合を含む、請求項8に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが少なくとも1つの修飾糖を含む、請求項1〜18のいずれかに記載の化合物。
- 修飾糖の少なくとも1つが二環式糖である、請求項19に記載の化合物。
- 少なくとも1つの修飾糖が、2’−O−メトキシエチル、拘束エチル、3’−フルオロ−HNA、または4’(CH2)n−O−2’架橋を含み、ここで、nは1または2である、請求項19に記載の化合物。
- 少なくとも1つのヌクレオシドが修飾核酸塩基を含む、請求項1〜21のいずれかに記載の化合物。
- 修飾核酸塩基が5−メチルシトシンである、請求項22に記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチドが12〜30個の連結されたヌクレオシドからなる請求項1〜23のいずれかに記載の化合物であって、
連結されたデオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント、
連結されたヌクレオシドからなる5’ウィングセグメント、
連結されたヌクレオシドからなる3’ウィングセグメント、
を含み、ここで、前記ギャップセグメントは前記5’ウィングセグメントと前記3’ウィングセグメントとの間に位置し、各ウィングセグメントの各ヌクレオシドが修飾糖を含む、前記化合物。 - 修飾オリゴヌクレオチドが、15〜30個、18〜24個、19〜22個、13〜25個、14〜25個、15〜25個、16個または20個の連結されたヌクレオシドからなる、請求項1〜24のいずれかに記載の化合物。
- 修飾オリゴヌクレオチド及び共役基を含む化合物であって、前記修飾オリゴヌクレオチドは、連結された20個のヌクレオシドからなり、かつ、配列番号77のいずれかの長さの等しい部分に相補的な、連続する核酸塩基を少なくとも8個含む核酸塩基配列を有しており、ここで、前記修飾オリゴヌクレオチドは、
連結した10個のデオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント、
ヌクレオシド5個の連結からなる5’ウィングセグメント、
ヌクレオシド5個の連結からなる3’ウィングセグメント
を含み、前記ギャップセグメントは前記5’ウィングセグメントと前記3’ウィングセグメントとの間に位置し、各ウィングセグメントの各ヌクレオシドは2’−O−メトキシエチル糖を含み、各ヌクレオシド間の連結はホスホロチオエート結合であり、かつ、各シトシン残基は5−メチルシトシンである、前記化合物。 - ISIS563580と共役基、ISIS544199と共役基、ISIS560400と共役基、ISIS567233と共役基、ISIS567320と共役基、ISIS567321と共役基、ISIS559277と共役基、ISIS561011と共役基からなる化合物。
- 共役基が、前記修飾オリゴヌクレオチドの5’末端で前記修飾オリゴヌクレオチドに連結されている、請求項1〜28のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が、前記修飾オリゴヌクレオチドの3’末端で前記修飾オリゴヌクレオチドに連結されている、請求項1〜28のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が厳密に1個のリガンドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が厳密に2個のリガンドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が3個以上のリガンドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が厳密に3個のリガンドを含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。
- 各リガンドが、多糖、修飾多糖、マンノース、ガラクトース、マンノース誘導体、ガラクトース誘導体、D−マンノピラノース、L−マンノピラノース、D−アラビノース、L−ガラクトース、D−キシロフラノース、L−キシロフラノース、D−グルコース、L−グルコース、D−ガラクトース、L−ガラクトース、α−D−マンノフラノース、β−D−マンノフラノース、α−D−マンノピラノース、β−D−マンノピラノース、α−D−グルコピラノース、β−D−グルコピラノース、α−D−グルコフラノース、β−D−グルコフラノース、α−D−フルクトフラノース、α−D−フルクトピラノース、α−D−ガラクトピラノース、β−D−ガラクトピラノース、α−D−ガラクトフラノース、β−D−ガラクトフラノース、グルコサミン、シアル酸、α−D−ガラクトサミン、N−アセチルガラクトサミン、2−アミノ−3−O−[(R)−1−カルボキシエチル]−2−デオキシ−β−D−グルコピラノース、2−デオキシ−2−メチルアミノ−L−グルコピラノース、4,6−ジデオキシ−4−ホルムアミド−2,3−ジ−O−メチル−D−マンノピラノース、2−デオキシ−2−スルホアミノ−D−グルコピラノース、N−グリコロイル−α−ノイラミン酸、5−チオ−β−D−グルコピラノース、メチル2,3,4−トリ−O−アセチル−1−チオ−6−O−トリチル−α−D−グルコピラノシド、4−チオ−β−D−ガラクトピラノース、エチル3,4,6,7−テトラ−O−アセチル−2−デオキシ−1,5−ジチオ−α−D−グルコ−ヘプトピラノシド、2,5−アンヒドロ−D−アロノニトリル、リボース、D−リボース、D−4−チオリボース、L−リボース、L−4−チオリボースの中から選択される、請求項31〜34のいずれかに記載の化合物。
- 各リガンドがN−アセチルガラクトサミンである、請求項35に記載の化合物。
- 共役基が、
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、リン連結基または中性連結基を少なくとも1つ含む、請求項30〜36のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が、
[式中、nは1〜12であり、かつ、
mは1〜12である]
の中から選択される構造を含む、請求項1〜42のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
[式中、Lは、リン連結基または中性連結基のいずれかであり、
Z1は、C(=O)O−R2であり、
Z2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
R2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、かつ
各m1は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]
の中から選択される構造を有するテザーを有している、請求項1〜42のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
[式中、Z2は、HまたはCH3であり、かつ
各m1は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]
の中から選択される構造を有するテザーを有している、請求項44に記載の化合物。 - 共役基が、
[式中、nは1〜12であり、かつ
mは1〜12である]
の中から選択される構造を有するテザーを有している、請求項30〜36のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、修飾オリゴヌクレオチドに共有結合で結合している、請求項1〜46のいずれかに記載の化合物。
- 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり
Cは、共役リンカーであり
Dは、分岐基であり
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、
各nは、互いに独立して0または1であり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
Cは、共役リンカーであり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Cは、共役リンカーであり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Bは、切断可能部分であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が、式
[式中、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Dは、分岐基であり、
各Eは、テザーであり、
各Fは、リガンドであり、かつ
qは、1〜5の整数である]
によって表される構造を有する、請求項1〜47のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
[式中、各Lは、互いに独立してリン連結基または中性連結基であり、かつ、
各nは、互いに独立して1〜20である]
の中から選択される構造を有する、請求項48〜55のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
- 共役リンカーが以下の構造を有する、請求項48〜55のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーが、
- 共役リンカーが、
- 共役リンカーが、
の中から選択される構造を有する、請求項48〜55のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーがピロリジンを含む、請求項48〜61のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがピロリジンを含まない、請求項48〜61のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがPEGを含む、請求項48〜63のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがアミドを含む、請求項48〜64のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーが少なくとも2つのアミドを含む、請求項48〜64のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがアミドを含まない、請求項48〜64のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがポリアミドを含む、請求項48〜67のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがアミンを含む、請求項48〜68のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーが1つ以上のジスルフィド結合を含む、請求項48〜69のいずれかに記載の化合物。
- 共役リンカーがタンパク質結合部分を含む、請求項48〜70のいずれかに記載の化合物。
- タンパク質結合部分が脂質を含む、請求項71に記載の化合物。
- タンパク質結合部分が、コレステロール、コール酸、アダマンタン酢酸、1−ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、1,3−ビス−O(ヘキサデシル)グリセロール、ゲラニルオキシヘキシル基、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、1,3−プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、O3−(オレオイル)リトコール酸、O3−(オレオイル)コレン酸、ジメトキシトリチル、またはフェノキサジン)、ビタミン(例えば、葉酸塩、ビタミンA、ビタミンE、ビオチン、ピリドキサール)、ペプチド、炭水化物(例えば、単糖、二糖、三糖、四糖、オリゴ糖、多糖)、エンドソーム溶解成分、ステロイド(例えば、ウバオール、ヘシゲニン(hecigenin)、ジオスゲニン)、テルペン(例えば、トリテルペン、例えばサルササポゲニン、フリーデリン、エピフリーデラノール誘導体化リトコール酸)、またはカチオン性脂質の中から選択される、請求項71に記載の化合物。
- タンパク質結合部分が、飽和または不飽和のC16〜C22長鎖脂肪酸、コレステロール、コール酸、ビタミンE、アダマンタンまたは1−ペンタフルオロプロピルの中から選択される、請求項71に記載の化合物。
- 共役リンカーが、
[式中、各nは互いに独立して1〜20であり、かつ、pは1〜6である]
の中から選択される構造を有する、請求項48〜74のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
[式中、各nは、互いに独立して1〜20である]
の中から選択される構造を有する、請求項48〜75のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
- 共役リンカーが、
[式中、nは1〜20である]
の中から選択される構造を有する、請求項48〜75のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
の中から選択される構造を有する、請求項48〜75のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが、
[式中、各nは、互いに独立して、0、1、2、3、4、5、6、または7である]
の中から選択される構造を有する、請求項48〜75のいずれかに記載の化合物。 - 共役リンカーが以下の構造を有する、請求項48〜75のいずれかに記載の化合物
- 分岐基が、以下の構造
[式中、各A1は、互いに独立して、O、S、C=OまたはNHであり、かつ
各nは、互いに独立して1〜20である]
の1つを有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が、以下の構造
[式中、各A1は、互いに独立して、O、S、C=OまたはNHであり、かつ
各nは、互いに独立して1〜20である]
の1つを有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が以下の構造
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が以下の構造
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が以下の構造
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が以下の構造
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基がエーテルを含む、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。
- 分岐基が以下の構造
[各nは、互いに独立して1〜20であり、かつ
mは、2〜6である]
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が以下の構造
- 分岐基が以下の構造
を有する、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が、
各nは1〜20の整数である]
を含む、請求項48〜81のいずれかに記載の化合物。 - 分岐基が、
- 各テザーが、
[式中、Lは、リン連結基及び中性連結基から選択され、
Z1は、C(=O)O−R2であり、
Z2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、
R2は、H、C1〜C6アルキルまたは置換C1〜C6アルキルであり、かつ
各m1は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm1は0より大きい]
の中から選択される、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - 各テザーが、
[式中、Z2は、HまたはCH3であり、かつ
各m2は、互いに独立して0〜20であり、ここで、各テザーの少なくとも1つのm2は0より大きい]
の中から選択される、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - 各テザーが、
[式中、nは1〜12であり、かつ
mは1〜12である]
の中から選択される、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - 少なくとも1つのテザーがエチレングリコールを含む、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。
- 少なくとも1つのテザーがアミドを含む、請求項48〜93または95のいずれかに記載の化合物。
- 少なくとも1つのテザーがポリアミドを含む、請求項48〜93または95のいずれかに記載の化合物。
- 少なくとも1つのテザーがアミンを含む、請求項48〜93または95のいずれかに記載の化合物。
- 少なくとも2つのテザーが互いに異なる、請求項48〜93または95のいずれかに記載の化合物。
- すべてのテザーが互いに同一である、請求項48〜93または95のいずれかに記載の化合物。
- 各テザーが、
[式中、各nは、互いに独立して1〜20であり、
各pは、1〜約6である]
の中から選択される、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - 各テザーが、
- 各テザーが以下の構造
[式中、各nは、互いに独立して1〜20である]
を有する、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - 各テザーが以下の構造
を有する、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - テザーが、
の中から選択される構造を有する、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - テザーが、
の中から選択される構造を有する、請求項48〜93のいずれかに記載の化合物。 - リガンドがガラクトースである、請求項105〜108のいずれかに記載の化合物。
- リガンドがマンノース−6−リン酸塩である、請求項105〜108のいずれかに記載の化合物。
- 各リガンドが、
[式中、各R1は、OH及びNHCOOHから選択される]
の中から選択される、請求項105〜108のいずれかに記載の化合物。 - 各リガンドが、
- 各リガンドが、以下の構造
を有する、請求項105〜108のいずれかに記載の化合物。 - 各リガンドが、以下の構造
を有する、請求項105〜108のいずれかに記載の共役アンチセンス化合物。 - 共役基が、細胞を標的とする部分を含む、請求項1〜30または56〜81のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が、以下の構造
[式中、各nは、互いに独立して1〜20である]
を有する、細胞を標的とする部分を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
を有する、請求項116のいずれかに記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
[式中、各nは、互いに独立して1〜20である]
を有する、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造を有する、請求項116に記載の化合物。
- 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
を有する、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
を有する、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
を有する、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 前記細胞を標的とする部分が、以下の構造
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 細胞を標的とする部分が、
- 細胞を標的とする部分が以下の構造
- 細胞を標的とする部分が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 共役基が、
を含む、請求項116に記載の化合物。 - 細胞を標的とする部分が以下の構造
を有する、請求項116に記載の化合物。 - 共役基が、
- 共役基が、
- 共役基が、
- 共役基が、
- 共役基が、ホスホジエステル、アミド、またはエステルの中から選択される切断可能部分を含む、請求項1〜147のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が、ホスホジエステル切断可能部分を含む、請求項1〜147のいずれかに記載の化合物。
- 共役基が切断可能部分を含まず、かつ、該共役基がオリゴヌクレオチドとの間にホスホロチオエート結合を含む、請求項1〜147のいずれかに記載の化合物。
- 共役基がアミド切断可能部分を含む、請求項1〜148のいずれかに記載の化合物。
- 共役基がエステル切断可能部分を含む、請求項1〜148のいずれかに記載の化合物。
- 化合物は、以下の構造
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物は、以下の構造
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Zは、Hまたは連結された固体支持体であり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Q13は、HまたはO(CH2)2−OCH3であり、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、
Zは、Hまたは連結された固体支持体であり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 化合物が以下の構造
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を有する、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - 共役基が、
Aは、修飾オリゴヌクレオチドであり、かつ
Bxは、複素環式塩基部分である]
を含む、請求項1〜30のいずれかに記載の化合物。 - Bxが、アデニン、グアニン、チミン、ウラシル、またはシトシンの中から選択されるか、または5−メチルシトシンである、請求項153〜170のいずれかに記載の化合物。
- Bxがアデニンである、請求項153〜170のいずれかに記載の化合物。
- Bxがチミンである、請求項153〜170のいずれかに記載の化合物。
- Q13がO(CH2)2−OCH3である、請求項153〜170のいずれかに記載の化合物。
- Q13がHである、請求項153〜170のいずれかに記載の化合物。
- 請求項1〜175のいずれかに記載の化合物またはその塩、及び少なくとも1つの薬理学的に許容される担体または希釈剤を含む組成物。
- 請求項1〜176のいずれかに記載の化合物を含むプロドラッグ。
- 請求項1〜177のいずれかに記載の化合物、組成物、またはプロドラッグを動物に投与することを含む方法。
- 動物がヒトである、請求項178に記載の方法。
- 前記化合物の投与が、心血管性及び/または代謝性疾患の進行を予防、治療、改善、または減速する、請求項178に記載の方法。
- 前記化合物または組成物と第2剤とを同時投与することを含む、請求項178に記載の方法。
- 化合物または組成物と第2剤とを同時に投与する、請求項181に記載の方法。
- 投与を非経口的に行う、請求項178に記載の方法。
- 投与を皮下に行う、請求項178に記載の方法。
- 心血管性及び/または代謝性疾患に罹患したヒトを特定し、請求項1〜177のいずれかに記載の化合物または組成物の治療有効量をそのヒトに投与し、そのヒトの心血管性及び/または代謝性疾患を治療することを含む、心血管性及び/または代謝性疾患に罹患したヒトを治療するための方法。
- 治療で使用するための、請求項1〜185のいずれかに記載の化合物を含む組成物。
- ANGPTL3高値に関連した疾患の進行を治療する、予防する、または減速させる際に使用するための、請求項185に記載の組成物。
- 疾患が、心血管性及び/または代謝性の疾患、障害または状態である、請求項185に記載の組成物。
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