ES2244957T3 - Oligonucleotidos modificados, su preparacion, asi como su empleo. - Google Patents
Oligonucleotidos modificados, su preparacion, asi como su empleo.Info
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Abstract
Los oligonucleótidos según la invención presentan, en comparación con los oligonucleótidos naturales, una mejor afinidad de unión en la acumulación en ácidos nucleicos complementarios (ácidos nucleicos blanco). Para el uso terapéutico de estos oligonucleótidos es ventajoso cuando en ellos se pueden introducir modificaciones adicionales, por ejemplo de la espina dorsal del fosfato, la unidad de ribosa o los extremos del oligonucleótido. Por medio de modificaciones de la espina dorsal de azúcar-fosfato en sí conocidas, se protegen por ejemplo los oligonucleótidos según la invención aún mejor contra el ataque de nucleasas, lo cual es ventajoso. Por ello, se prefieren también compuestos de la fórmula I, en la que V, Y, Y¿ y W tienen el significado de tioxo, selenoxo, oxi, oxo, sulfandiílo, imino o metileno y U tiene el significado de hidroxi, mercapto o metilo. Se prefieren muy especialmente cuando R2 significa adicionalmente hidroxi o hidrógeno, en especial hidrógeno. Los compuestos de la fórmula I también representan una forma de realización preferida, en la que R1 y R 1a significan hidrógeno. Se prefieren muy especialmente compuestos de la fórmula I, en los que R 1 y/o R 1a es hidrógeno, R 2 es hidroxi o hidrógeno, U es hidroxi o mercapto y V, Y, Y¿ y W tienen el significado de tioxo, oxi, oxo o hidroxi.
Description
Oligonucleótidos modificados, su preparación, así
como su empleo.
La presente invención se refiere a nuevos
oligonucleótidos que contienen bases modificadas con valiosas
propiedades físicas, biológicas y farmacológicas, a un procedimiento
para su preparación, así como a su uso como inhibidores de la
expresión genética (oligonucleótidos antisentido, ribozimas,
oligonucleótidos en el sentido del marco de lectura y
oligonucleótidos formadores de tríplex), como sondas para la
detección de ácidos nucleicos, como agentes auxiliares en la
biología molecular y como medicamento o agente de diagnóstico.
De la bibliografía se conocen numerosas
modificaciones químicas de oligonucleótidos. Estas modificaciones
pueden afectar la estructura azúcar-fosfato o las
nucleobases. Por ejemplo, Uhlmann & Peyman, Chem. Rev. 1990, 90,
543 y Milligan et al., J. Med. Chem. 1993, 36, 1923, brindan
una síntesis sobre el estado de la técnica.
Una modificación química de oligonucleótidos es
generalmente necesaria, ya que los oligonucleótidos no modificados
se degradan muy rápidamente por medio de las actividades
nucleolíticas, tanto en las células como en el medio de cultivo
celular. La estabilización contra la degradación nucleolítica puede
realizarse por reemplazo de la espina dorsal
fosfato-azúcar o por modificación del puente
fosfato, del componente del azúcar o la nucleobase [Milligan et
al., supra y Uhlmann & Peyman, supra].
Además de las modificaciones que llevan a
oligonucleótidos con una mayor estabilidad frente a la degradación
nucleolítica, resultan de interés modificaciones que alteran el
comportamiento de hibridación de los oligonucleótidos modificados de
modo que puedan formar, por ejemplo, complejos de hibridación más
estables (dúplex) con ácidos nucleicos intracelulares (los así
llamados ácidos nucleicos blanco). Una modificación de las
propiedades de hibridación de oligonucleótidos es posible, por
ejemplo, por modificación de las bases. Las propiedades de
hibridación alteradas de estos oligonucleótidos modificados pueden
reconocerse, por ejemplo, en la temperatura de fusión modificada
(valor T_{m}) de los dúplex, en comparación con los
oligonucleótidos no modificados.
De esta manera, en la solicitud de PCT WO
92/002258 se describen oligonucleótidos modificados con pirimidina,
pero que, sin embargo, no presentan una afinidad de unión elevada,
sino reducida respecto de los ácidos nucleicos blanco mono- y
bicatenarios. Sin embargo, de la solicitud de PCT WO 93/10820
también se conocen oligonucleótidos que contienen bases de uracilo y
citosina modificadas y que pueden formar, en comparación con los
oligonucleótidos no modificados, estructuras de dúplex o tríplex más
estables con los ácidos nucleicos blanco. Las propiedades de
hibridación de dodecameroligonucleótidos sintéticos, que contienen
el análogo de base piridopirimidina, también fueron probadas [Inoue
et al. (1985), Nucleic Acid Res., 13,
7119-7129]. También se describieron mejores
propiedades de hibridación para oligonucleótidos que contienen el
análogo de base 2-aminoadenina [Chollet et
al. (1988), Nucleic Acid Research, 16, 305-317].
Dr. Grünberger et al., Biochimica Biophysica Acta, volumen
161, N.º 1, 1968, páginas 147-155, divulga (pág.
149, tabla 1; resumen) 3',5'-di- y trinucleótidos
modificados que contienen bases de 8-azapurina.
Por ello, es objeto de la presente invención
poner a disposición nuevos oligonucleótidos con ventajosas
propiedades.
Sorprendentemente, se halló que los
oligonucleótidos que contienen al menos una base de
8-aza-purina, por ejemplo
8-azaguanina o 8-azaadenina, forman
complejos de hibridación con los ácidos nucleicos blanco claramente
más estables que los oligonucleótidos comparables, que presentan
bases de purina no modificadas.
De esta manera, la invención se refiere a
oligonucleótidos de la fórmula I
así como a sus sales
fisiológicamente tolerables, en la que
significan
- R^{1}
- hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{18}, alquenilo C_{2}-C_{18}, alquinilo C_{2}-C_{18}, alquilcarbonilo C_{2}-C_{18}, alquenilcarbonilo C_{3}-C_{19}, alquinilcarbonilo C_{3}-C_{19}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), un grupo protector usual en la química de los nucleótidos o un radical de la fórmula IIa
(IIa)Z ---
\melm{\delm{\dpara}{W}}{P}{\para}--- Z'
- R^{1a}
- hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{18}, alquenilo C_{2}-C_{18}, alquinilo C_{2}-C_{18}, alquilcarbonilo C_{2}-C_{18}, alquenilcarbonilo C_{3}-C_{19}, alquinilcarbonilo C_{3}-C_{19}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}) o un radical de la fórmula IIb
(IIb)Z ---
\melm{\delm{\dpara}{W}}{P}{\para}--- X
- R^{2}
- hidrógeno, hidroxi, alcoxi C_{1}-C_{18}, alqueniloxi C_{1}-C_{6}, halógeno, azido o NH_{2};
- a
- oxi o metileno;
- n
- un número entero de 3 a 99;
- W
- oxo, tioxo o selenoxo;
- V
- oxi, sulfandiílo o imino;
- Y
- oxi, sulfandiílo, imino o metileno;
- Y'
- oxi, sulfandiílo, imino, (CH_{2})_{m} o V(CH_{2})_{m}, en donde significan
- m
- un número entero de 1 a 18;
- X
- hidroxi o mercapto;
- U
- hidroxi, mercapto, SeH, alcoxi C_{1}-C_{8}, alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), NHR^{3}, NR^{3}R^{4} o un radical de la fórmula III
(III),(OCH_{2}CH_{2})_{p}O(CH_{2})_{q}CH_{2}R^{5}
- \quad
- en la que significan
- R^{3}
- alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), 2-(CH_{2})_{c}-[NH(CH_{2})_{c}]_{d}-NR^{6}R^{6}, en donde c es un número entero de 2 a 6 y d es un número entero de 0 a 6, y R^{6} es, de modo independiente entre sí, hidrógeno o alquilo C_{1}-C_{6} o alcoxi C_{1}-C_{4}-alquilo C_{1}-C_{6};
- R^{4}
- alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20} o aril (C_{6}-C_{10})-alquilo (C_{1}-C_{8}) o en el caso de NR^{3}R^{4} junto con R^{3} y el átomo de nitrógeno que llevan un anillo heterocíclico de 5-6 miembros que adicionalmente puede contener otro heteroátomo de la serie de O, S, N,
- p
- un número entero de 1 a 100,
- q
- un número entero de 0 a 22,
- R^{5}
- hidrógeno o un grupo funcional como, por ejemplo, hidroxi, amino, alquilamino C_{1}-C_{18}, COOH, CONH_{2}, COO-alquilo (C_{1}-C_{4}) o halógeno;
Z y Z' de modo independiente entre
sí,
- \quad
- hidroxi, mercapto, SeH, alcoxi C_{1}-C_{22}, -O-(CH_{2})_{b}-NR^{6}R^{7}, en donde b es un número entero de 1 a 6, y R^{7} es alquilo C_{1}-C_{6} o R^{6} y R^{7} junto con el átomo de nitrógeno que llevan forman un anillo de 3-6 miembros, alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), aril (C_{6}-C_{14})-alcoxi (C_{1}-C_{8}), en donde arilo también significa heteroarilo y arilo está eventualmente sustituido con 1, 2 ó 3 radicales iguales o diferentes de la serie de carboxi, amino, nitro, alquilamino C_{1}-C_{4}, alcoxi C_{1}-C_{6}, hidroxi, halógeno y ciano, alquilmercapto C_{1}-C_{18}, NHR^{3}, NR^{3}R^{4}, un radical de la fórmula III o un
- \quad
- grupo que favorece la absorción intracelular o que sirve como marcación de una sonda de ADN o en la hibridación del análogo de oligonucleótido en el ácido nucleico blanco lo ataca bajo unión, reticulación con enlaces cruzados o separación,
- \quad
- en donde cada nucleótido puede estar presente en su configuración D o L y la base B se puede hallar en posición \alpha o \beta, en donde
- B
- es, de modo independiente entre sí, una base usual en la química de los nucleótidos, por ejemplo bases naturales tales como adenina, citosina, timina, guanina, uracilo, hipoxantina o bases no naturales tales como, por ejemplo, purina, 8-azapurina, 2,6-diaminopurina, 7-desazaadenina, 7-desazaguanina, N^{4}N^{4}etancitosina, N^{6}N^{6}-etano-2,6-diaminopurina, pseudoisocitosina, 5-metilcitosina, 5-fluoruracilo, 5-alquinil (C_{3}-C_{6})-uracilo, 5-alquinil (C_{3}-C_{6})-citosina, en donde al menos una B significa una base de la fórmula IV
en la que E y F significan, de modo
independiente entre sí, H, OH o
NH_{2}.
Se prefieren compuestos de la fórmula I, en la
que E es igual a NH_{2} y F es igual a OH o E es igual a H y F es
igual a NH_{2}.
Se prefieren especialmente compuestos de la
fórmula I, en la que E es igual a NH_{2} y F es igual a OH.
También se prefieren compuestos de la fórmula I,
en los que la base se halla en el azúcar en posición \beta, los
nucleósidos en la configuración D, R^{2} está en posición 2' y a
es oxi.
Los oligonucleótidos según la invención
presentan, en comparación con los oligonucleótidos naturales, una
mejor afinidad de unión en la acumulación en ácidos nucleicos
complementarios (ácidos nucleicos blanco). Para el uso terapéutico
de estos oligonucleótidos es ventajoso cuando en ellos se pueden
introducir modificaciones adicionales, por ejemplo de la espina
dorsal del fosfato, la unidad de ribosa o los extremos del
oligonucleótido (J. S. Cohen, Topics in Molecular and Structural
Biology 12 (1989) Macmillan Press, E. Uhlmann et al.,
supra].
Por medio de modificaciones de la espina dorsal
de azúcar-fosfato en sí conocidas, se protegen por
ejemplo los oligonucleótidos según la invención aún mejor contra el
ataque de nucleasas, lo cual es ventajoso.
Por ello, se prefieren también compuestos de la
fórmula I, en la que V, Y, Y' y W tienen el significado de tioxo,
selenoxo, oxi, oxo, sulfandiílo, imino o metileno y U tiene el
significado de hidroxi, mercapto o metilo. Se prefieren muy
especialmente cuando R^{2} significa adicionalmente hidroxi o
hidrógeno, en especial hidrógeno.
Los compuestos de la fórmula I también
representan una forma de realización preferida, en la que R^{1} y
R^{1a} significan hidrógeno.
Se prefieren muy especialmente compuestos de la
fórmula I, en los que R^{1} y/o R^{1a} es hidrógeno, R^{2} es
hidroxi o hidrógeno, U es hidroxi o mercapto y V, Y, Y' y W tienen
el significado de tioxo, oxi, oxo o hidroxi.
Por grupos protectores usuales en la química de
los nucleótidos se entienden, por ejemplo, grupos amino, hidroxilo u
otros grupos protectores, tal como se describen en [E. Sonveaux,
1986, Bioorganic Chemistry, 14, 274-325 o S. L.
Beaucage et al., 1992, Tetrahedron, 48,
2223-2311].
Alquilo, alquenilo y alquinilo pueden ser de
cadena lineal o ramificada.
Por cicloalquilo también se entienden anillos
sustituidos con alquilo.
Arilo (C_{6}-C_{20}) es, por
ejemplo, fenilo, naftilo o bifenilo, con preferencia fenilo.
Por heteroarilo se entienden en especial
radicales que derivan de fenilo o naftilo, en los que uno o varios
grupos CH están reemplazados por N y/o en los que al menos dos
grupos CH adyacentes (con formación de un anillo aromático de cinco
miembros) están reemplazados por S, NH u O. Además, también uno o
ambos átomos del sitio de condensación de radicales bicíclicos (como
en el indolizinilo) pueden ser átomos de N.
Como heteroarilo son válidos en especial
furanilo, tienilo, pirrolilo, imidazolilo, pirazolilo, triazolilo,
tetrazolilo, oxazolilo, isoxazolilo, tiazolilo, isotiazolilo,
piridilo, pirazinilo, pirimidinilo, piridazinilo, indolilo,
indazolilo, quinolilo, isoquinolilo, ftalazinilo, quinoxalinilo,
quinazolinilo, cinolinilo.
Por sales fisiológicamente tolerables de
compuestos de la fórmula (I) se entienden tanto sales inorgánicas
como sales orgánicas, tal como se describen en Remington's
Pharmaceutical Sciences (17.ª edición, página 1418 (1985)).
En virtud de la estabilidad física y química y la
solubilidad, se prefieren para grupos ácidos, sobre todo, sales de
sodio, de potasio, de calcio y de amonio.
La invención no se limita a \alpha-,
\beta-D- o L-ribofuranósidos,
\alpha- y \beta-D- o
L-desoxirribofuranósidos y análogos carbocíclicos de
cinco anillos correspondientes, sino que también rige para análogos
de oligonucleótidos que están compuestos por otros componentes se
azúcares, por ejemplo, derivados de xilo- y arabinofuranosa,
azúcares con anillos ampliados o reducidos, derivados de azúcares
acíclicos, en puente u otros apropiados de una manera diferente. La
invención tampoco se limita a los derivados del radical fosfato
enumerado a modo de ejemplo en la fórmula I, sino que también se
refiere a los conocidos defosfo-derivados.
Los oligonucleótidos según la invención también
se pueden modificar de su estructura natural de múltiples formas.
Tales modificaciones, que se introducen de acuerdo con métodos
conocidos en sí, son por ejemplo:
Se mencionan como ejemplos: fosforotioato,
fosforoditioato, metilfosfonato, fosforamidato, boranofosfato, éster
fosfatometílico, éster fosfatoetílico, fenilfosfonato.
Modificaciones preferidas del puente fosfato son fosforotioato,
fosforoditioato y metilfosfonato.
Se mencionan como ejemplos: reemplazo por
formacetal, 3'-tioformacetal, metilhidroxilamina,
oxima, metilendimetilhidrazo, dimetilensulfona, grupos sililo. Se
prefiere el reemplazo por formacetales y
3'-tioformacetales.
Se mencionan como ejemplos: azúcares
\alpha-anoméricas,
2'-O-metilribosa,
2'-O-butilribosa,
2'-O-alilribosa,
2'-fluoro-2'-desoxirribosa,
2'-amino-2'-desoxirribosa,
\alpha-arabinofuranosa, análogos carbocíclicos de
azúcar. La modificación preferida es por
2'-O-metilribosa y
2'-O-n-butilribosa.
Se mencionan como ejemplos los ácidos nucleicos
peptídicos (PNA), en los que la espina dorsal de azúcar / fosfato
está reemplazada por una espina dorsal de aminoetilglicina, así como
los oligómeros de morfolino en puente carbamato.
Se mencionan como ejemplos:
5-propinil-2'-desoxiuridina,
5-propinil-2'-desoxicitidina,
5-hexinil-2'-desoxiuridina,
5-hexinil-2'-desoxicitidina,
5-fluoro-2'-desoxicitidina,
5-fluoro-2'-desoxiuridina,
5-hidroximetil-2'-desoxiuridina,
5-metil-2'-desoxicitidina,
5-bromo-2'-desoxicitidina.
Modificaciones preferidas son
5-propinil-2'-desoxiuridina,
5-hexinil-2'-desoxiuridina,
5-hexinil-2'-desoxicitidina
y
5-propinil-2'-desoxicitidina.
f) Inversiones 3'-3' y
5'-5' [por ejemplo, M. Koga et al., J. Org.
Chem. 56 (1991) 3757].
g) Conjugados 5' y 3'.
Grupos, que favorecen la absorción intracelular,
son distintos radicales lipofílicos tales como
-O-(CH_{2})_{x}-CH_{3}, en donde x es
un número entero de 6 a 18,
-O-(CH_{2})_{n}-CH=CH-(CH_{2})_{m}-CH_{3},
en donde n y m son, de modo independiente entre sí, un número entero
de 6 a 12,
-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{4}-(CH_{2})_{9}-CH_{3},
O-(CH_{2}CH_{2}O)_{8}-(CH_{2})_{13}-CH_{3}
y -O-(CH_{2}CH_{2}O)_{7}-
(CH_{2})_{15}-CH_{3}, pero también radicales esteroides tales como colesterilo o radicales de vitaminas tales como vitamina E, vitamina A o vitamina D y otros conjugados que aprovechan los sistemas de portadores naturales tales como ácido biliar, ácido fólico, 2-(N-alquil, N-alcoxi)-aminoantraquinona y conjugados de manosa y péptidos de los correspondientes receptores que llevan a la endocitosis de los oligonucleótidos mediada por receptores como EGF (factor de crecimiento epidérmico), bradiquinina y PDGF (factor de crecimiento plaquetario). Por grupos de marcación se deben entender grupos fluorescentes, por ejemplo de dansil-(= N-dimetil-1-aminonaftil-5-sulfonilo), derivados de fluoresceína o cumarina o grupos quimioluminiscentes, por ejemplo de derivados de acridina, así como el sistema de digoxigenina detectable por medio de ELISA, el grupo biotina detectable por medio del sistema biotina / avidina o también brazos de ligadores con grupos funcionales que permiten una derivación posterior con grupos informantes detectables, por ejemplo un ligador de aminoalquilo que se hace reaccionar con un éster activado de acridinio para la prueba de quimioluminiscencia. Típicos grupos marcación son:
(CH_{2})_{15}-CH_{3}, pero también radicales esteroides tales como colesterilo o radicales de vitaminas tales como vitamina E, vitamina A o vitamina D y otros conjugados que aprovechan los sistemas de portadores naturales tales como ácido biliar, ácido fólico, 2-(N-alquil, N-alcoxi)-aminoantraquinona y conjugados de manosa y péptidos de los correspondientes receptores que llevan a la endocitosis de los oligonucleótidos mediada por receptores como EGF (factor de crecimiento epidérmico), bradiquinina y PDGF (factor de crecimiento plaquetario). Por grupos de marcación se deben entender grupos fluorescentes, por ejemplo de dansil-(= N-dimetil-1-aminonaftil-5-sulfonilo), derivados de fluoresceína o cumarina o grupos quimioluminiscentes, por ejemplo de derivados de acridina, así como el sistema de digoxigenina detectable por medio de ELISA, el grupo biotina detectable por medio del sistema biotina / avidina o también brazos de ligadores con grupos funcionales que permiten una derivación posterior con grupos informantes detectables, por ejemplo un ligador de aminoalquilo que se hace reaccionar con un éster activado de acridinio para la prueba de quimioluminiscencia. Típicos grupos marcación son:
\vskip1.000000\baselineskip
x = 2-18,
preferentemente
4
R = H o alquilo
C_{1}-C_{4}
(= "fluoresceína" para x = 4 y
R =
CH_{3})
Los análogos de oligonucleótidos que se unen a
ácidos nucleicos o se intercalan y/o separan o reticulan con enlaces
cruzados, contienen conjugados de acridina, psoraleno, fenantridina,
naftoquinona, daunomicina o cloroetilaminoarilo. Típicos radicales
intercalantes y con enlaces cruzados son:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Se mencionan a título de ejemplo para los grupos
NR^{3}R^{4}, en los que R^{3} y R^{4} forman juntos con el
átomo de nitrógeno que los lleva un anillo heterocíclico de 5 a 6
miembros que adicionalmente contiene otro heteroátomo, el radical
morfolinilo y el radical imidazolidinilo.
También es objeto de la invención el compuesto de
la fórmula V
en la que
significan
- V
- oxi, sulfandiílo o imino;
- a
- oxi o metileno;
- R^{1}
- un grupo protector usual en la química de los nucleótidos;
- R^{1b}
- un radical de la fórmula IIc o IId
U ---
\uelm{P}{\para}--- Q
\hskip1cm(IIc)
\hskip3cmO
\biequal
\melm{\delm{\para}{H}}{P}{\para}--- O^{\ominus}
\hskip1cm(IId)
en las que
significan
- U
- O-R^{7} o S-R^{7};
- Q
- un radical -NR^{8}R^{9};
- R^{7}
- -(CH_{2})_{2}-CN;
R^{8} y R^{9} son iguales o
diferentes y son alquilo C_{1}-C_{6}, en
especial isopropilo o etilo o juntos con el átomo de nitrógeno que
los lleva, significan un anillo heterocíclico de 5-9
miembros que adicionalmente puede contener otro heteroátomo de la
serie de O, S, N, en
especial
\vskip1.000000\baselineskip
E' y F' son, de modo independiente
entre sí, H, OH o
NR^{10}R^{11},
en
donde
R^{10} y R^{11} son iguales o
diferentes y son hidrógeno o un grupo protector de amino usual en la
química de los nucleótidos o R^{10} y R^{11} forman juntos un
grupo protector de amino usuales en la química de los
nucleótidos,
- R^{12}
- un grupo protector de hidroxilo usual en la química de los nucleótidos, como por ejemplo t-butil-dimetil-sililo, tri-isopropil-sililo, o-nitro-bencilo, p-nitro-bencilo, tris(1-metiletil)sililo o 2-fluorofenil-4-metoxipiperidin-4-ilo (FPMP).
Una forma de realización preferida es
representada por los compuestos de la fórmula (V), en los que V,
Y^{b} y a son oxi, R^{2b} es hidrógeno u OR^{12}, en especial
hidrógeno y R^{1b} es un radical de la fórmula (IIc) o (IId), en
donde U es O(CH_{2})_{2}-CN y
R^{8} y R^{9} son iguales o diferentes y significan isopropilo o
etilo.
Se prefieren muy especialmente, en caso de que
adicionalmente la base en el azúcar se halle en posición \beta y
R^{2b} se halle en posición 2'.
También son objeto de la invención los compuestos
de la fórmula V, en los que la unión con el radical del azúcar se
realiza a través del átomo de N_{2} de la base de
8-azapurina.
Grupos protectores de amino preferidos son, por
ejemplo, grupos protectores de acilo o amidina.
La invención también se refiere a compuestos de
la fórmula VI
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
en la que, de modo independiente
entre
sí,
U' = U'' = U''' es igual a
hidroxilo o
mercapto;
e y f son 0 ó
1;
- R^{13}
- es hidrógeno u OH y
E y F son H, OH o
NH_{2},
en donde se excluyen compuestos de
la fórmula VI, en los que U', U'', U''', R^{13} y F significan OH,
E es igual a NH_{2} y e y f significan
1.
Se prefieren compuestos de la fórmula VI, en los
que U' significa hidroxilo o mercapto, U'' = U''' significa
hidroxilo y e y/o f es igual a 1.
También se prefieren compuestos de la fórmula VI,
en los que
- E
- es igual a H y F es igual a NH_{2} o, en caso de que E sea igual a NH_{2} y F sea igual a OH, R^{13} es igual a H o, en caso de que
- E
- sea igual a NH_{2} y F, R^{13}, U', U'' y U''' sean iguales a OH, e y/o f es igual a 0, o en caso de que
- E
- sea igual a NH_{2} y F, R^{13}, U'' y U''' sean iguales a OH y e y f sean iguales a 1, U' es igual a mercapto.
Los compuestos de la fórmula VI según la
invención pueden usarse como agentes auxiliares en la biología
molecular, por ejemplo en reacciones de PCR (e = f = 1, R^{13} =
OH) o para la secuenciación (e = f = 1; R^{13} = H u OH).
La obtención de los compuestos de la fórmula VI
es posible a partir de los correspondientes nucleósidos de
8-azapurina y se realiza de acuerdo con métodos de
conocimiento general. Con preferencia, se pueden preparar los
compuestos de la fórmula VI de acuerdo con un procedimiento
abreviado de Ludwig, en un solo recipiente, en presencia de
1,8-bis(dimetilamino)naftalina y
trimetilfosfato [J. Ludwig et al., (1981) Acta Biochem.
Biophys. Sci. Hung, 16, 131].
La invención también comprende todas las formas
tautoméricas de los compuestos de la fórmula I, V y VI, en especial
todas las formas tautoméricas de las bases de
8-azapurina de la fórmula IV.
Además, es objeto de la invención un
procedimiento para la preparación de los compuestos de la fórmula I
según la invención.
Se describe la preparación de difosfatos de
trirribonucleódisos que contienen 8-azaguanina por
vía enzimática o química / enzimática [Grünberger et al.,
Biochim. Biophys. Acta, (1968) 161, 147-155]. Bodnar
et al. describen la síntesis enzimática de ADN de fagos
bicatenarios que contienen 8-azaguanina por medio de
ADN-polimerasa [Bodnar et al. (1983) J. Biol.
Chem., 258, 15206-15213].
Debido al hecho de que la unión
N-glucosídica de
8-azadesoxiguanosina es extremadamente estable a los
ácidos (Seela et al. (1993), Helv. Chim. Acta. 76,
2388-2397], para la preparación de los
oligonucleótidos según la invención que contienen
8-azapurina se pueden aplicar las condiciones
estándar usuales en la síntesis química de los oligonucleótidos.
La obtención de los compuestos de la fórmula I
según la invención se realiza en disolución o preferentemente en
fase sólida, eventualmente con la ayuda de un equipo de síntesis
automático. La conformación de los oligómeros de la fórmula I se
puede realizar por etapas, condensando sucesivamente un
mononucleótido con una nucleobase en un soporte correspondientemente
derivado o una cadena de oligómeros creciente.
La conformación de los oligonucleótidos se
realiza de acuerdo con procedimientos conocidos por el especialista,
como es el método de triésteres, el método de
H-fosfonatos o el método de fosforamiditas, [E.
Sonveaux (1986), Bioorganic Chemistry, 14, 274-325;
S. L. Beaucage et al. (1992), Tetrahedron, 48,
2223-2311]. Para introducir los derivados de
8-azapurina se usan preferentemente los componentes
monoméricos de nucleótidos de la fórmula V, con preferencia especial
los de la fórmula V, en la que E' es igual a NR^{10}R^{11} y F'
es igual a OH.
La preparación de los compuestos de la fórmula V
como componentes para la síntesis en fase sólida de oligonucleótidos
puede realizarse a partir de los correspondientes nucleósidos de
8-azapurina. Después de introducir grupos
protectores apropiados para los grupos amino de las bases de
8-azapurina, así como del grupo
5'-hidroxilo libre del azúcar, se convierten los
monómeros en los correspondientes derivados de fosfonato o
fosforamidita. La introducción de grupos protectores apropiados, por
ejemplo en forma de un grupo protector de formamidina
((dimetilamino)metilideno) o grupo protector de acilo se
realiza de acuerdo con métodos de conocimiento general [L. J. Mc
Bride et al. (1983), Tetrahedron Lett., 24, 2953, G. S. Ti
et al. (1982), J. Am. Chem. Soc., 104, 1316; H. Schaller
et al. (1963), J. Am. Chem. Soc., 85, 3821], siendo
ventajosa, en el caso de la acilación del grupo amino, la aplicación
del método de peracilación según Schaller. Un grupo protector
apropiado para el grupo 5'-OH libre del azúcar es,
por ejemplo, 4,4'-dimetoxitritilo, cuya introducción
también se realiza por medio de métodos conocidos [C. B. Reese
(1978), Tetrahedron, 34, 3143; D. Flockerzi et al. (1981),
Liebigs Ann. Chem., 1568]. Los monómeros protegidos de esta manera
pueden hacerse reaccionar conforme a una disposición de Froehler
et al. respecto de los correspondientes fosfonatos [B. C.
Froehler et al. (1986), Nucl. Acid Res., 14, 5399]. La
preparación de derivados de cianoetil-fosforamidita
se puede llevar a cabo, por ejemplo, por reacción de los monómeros
con
cloro-\beta-cianoetoxi-(N,N-diisopropilamino)fosfano
en diclorometano anhidro [N. D. Sinha et al., (1984) Nucl.
Acid Res., 12, 4539].
La síntesis de oligorribonucleótidos se dificulta
en comparación con la síntesis de desoxiribooligonucleótidos por
medio del grupo 2'-OH adicional. La primera
dificultad consiste en hallar una combinación de grupos protectores
de 2'- y 5'-OH compatibles. De esta manera, el
radical en la posición O-2' en la síntesis de los
oligonucleótidos debe ser estable frente a las condiciones ácidas de
la hidrólisis de los grupos protectores de tritilo. Además, se deben
evitar condiciones que podrían llevar a una migración del radical
fosfato de la posición 3' a la posición 2'. En la introducción del
grupo protector se pretende una reacción regioselectiva.
Es ventajoso para la síntesis de los
oligorribonucleótidos de la fórmula (I) según la invención el uso de
cloruro de triisopropilsililo como grupo protector de
2'-OH, con el cual se pueden lograr altas
selectividades con suficiente estabilidad y moderadas condiciones de
separación (TBAF / THF). La selectividad de la reacción se puede
aumentar aún más si, en lugar de imidazol, se aplica nitrato de
plata como catalizador [F. Seela, K. Mersmann, J. A. Grasby, M. J.
Gait, Helv. Chim. Acta 1993, 76, 1809].
Para la síntesis en fase sólida de
oligorribonucleótidos son menos apropiados los componentes de
fosforamidita, contrariamente a la síntesis en fase sólida de los
desoxirribonucleótidos. Esto se debe sobre todo a que el impedimento
estérico de la fosforamidita reactiva requiere tiempos de
acoplamiento relativamente largos por el grupo protector bloqueante
de 2'-sililo (N. Usman, R. T. Pon, K. K. Ogilviee,
Tetrahedron Lett., 1985, 26, 4567] y, además, ocasiona un menor
rendimiento de acoplamiento. En comparación con las fosforamiditas,
los fosfonatos de ribonucleósidos son estables frente a la
hidrólisis y la oxidación y presentan en la síntesis de
oligonucleótidos tiempos de ciclos relativamente cortos.
Los fosfonatos de ribonucleótidos según la
invención pueden prepararse según una disposición de Froehler [B.
Froehler, P. G. Nug, M. O. Mateuci, Nucl. Acids Res. 1986, 14,
5399].
La síntesis de compuestos de la fórmula I, cuya
parte de oligonucleótido está modificada en el extremo 3' y/o en el
extremo 5', se realiza, según estas modificaciones, de acuerdo con
procedimientos descritos en el documento EP-A 0 552
766.
Además, es objeto de la invención el uso de
compuestos de la fórmula I según la invención para preparar un
medicamento, así como un procedimiento para preparar un medicamento,
caracterizado porque se mezclan los oligonucleótidos según la
invención con un portador fisiológicamente aceptable, así como
eventualmente aditivos y/o coadyuvantes apropiados.
Muy en general, la presente invención se refiere
al uso de compuestos de la fórmula I como componentes
terapéuticamente efectivos de un medicamento. Por derivados de
oligonucleótidos terapéuticamente efectivos se entienden en general
oligonucleótidos antisentido, oligonucleótidos formadores de triples
hélices, aptámeros o ribozimas, en especial oligonucleótidos
antisentido.
Más allá de ello, otro objeto de la presente
invención es el uso de oligonucleótidos con al menos una
8-azapurina, preferentemente con
8-azaguanina o 8-azaadenina como
agente de diagnóstico, por ejemplo para la detección de la presencia
o la ausencia o la cantidad de una molécula de ácido nucleico
específica bicatenaria o monocatenaria en una sonda biológica.
Los oligonucleótidos tienen, para el uso según la
invención, una longitud de 4 a 100, preferentemente de
aproximadamente 5-40, en especial de aproximadamente
6-30 nucleótidos. Por lo demás, aquí también rigen
los intervalos de preferencia, las modificaciones o conjugaciones
antes mencionados.
Los medicamentos de la presente invención pueden
ser usados, por ejemplo, para el tratamiento de enfermedades que son
causadas por virus, por ejemplo por VIH, HSV-1,
HSV-2, gripe, VSV, hepatitis B o papilomavirus.
Los derivados de oligonucleótidos según la
invención, también los oligonucleótidos antisentido, en los que al
menos una base de purina está reemplazada por una base de
8-azapurina y que son efectivas con esos blancos,
tienen por ejemplo la siguiente secuencia de bases:
\newpage
a) contra VIH, por
ejemplo
b) contra HSV-1,
por
ejemplo
Los medicamentos de la presente invención también
son apropiados, por ejemplo, para el tratamiento de cáncer. A modo
de ejemplo, en este caso se pueden emplear secuencias de
oligonucleótidos que están dirigidas contra blancos que son
responsables del origen o el crecimiento del cáncer. Tales blancos
son, a modo de ejemplo:
- 1)
- Oncoproteínas nucleares, tales como, por ejemplo, c-myc, N-myc, c-myb, c-fos, c-fos/jun, PCNA, p120
- 2)
- Oncoproteínas citoplasmáticas/asociadas a membrana, tales como, por ejemplo, EJ-ras, c-Ha-ras, N-ras, rrg, bcl-2, cdc-2, c-raf-1, c-mos, c-src, c-abl
- 3)
- Receptores celulares tales como, por ejemplo, receptor EGF, c-erbA, receptores de retinoides, subunidad reguladora de la proteína quinasa, c-fms
- 4)
- Citoquinas, factores de crecimiento, matriz extracelular como, por ejemplo, CSF-1, IL-6, IL-1a, IL-1b, IL-2, IL-4, bFGF, mieloblastina, fibronectina.
Los oligonucleótidos antisentido de la fórmula I
según la invención, que son efectivos contra esos blancos, tienen
por ejemplo la siguiente secuencia de bases:
a) contra
c-Ha-ras, por
ejemplo
c) c-myc, por
ejemplo
d) c-myb, por
ejemplo
e) c-fos, por
ejemplo
f) p120, por
ejemplo
g) receptor EGF, por
ejemplo
\newpage
h) supresor tumoral p53, por
ejemplo
Además, los medicamentos de la presente invención
son apropiados, por ejemplo, para el tratamiento de enfermedades que
son influenciadas por integrinas o receptores de adhesión
célula-célula, por ejemplo por
VLA-4, VLA-2, ICAM, VCAM o ELAM.
Los derivados de oligonucleótidos antisentido
según la invención, que son efectivos contra esos blancos, tienen
por ejemplo la siguiente secuencia de bases:
a) VLA-4, por
ejemplo
b) ICAM, por
ejemplo
c) ELAM-1, por
ejemplo
Los medicamentos de la presente invención también
son apropiados, por ejemplo, para evitar la restenosis. En este
caso, se pueden usar por ejemplo secuencias de oligonucleótidos que
están dirigidas contra blancos que son responsables de la
proliferación o la migración. Estos blancos son por ejemplo:
- 1)
- proteínas transactivadoras nucleares y ciclinas tales como, por ejemplo, c-myc, c-myb, c-fos, c-fos/jun, ciclinas y cdc2-quinasa
- 2)
- Mitógenos o factores del crecimiento, tales como, por ejemplo, PDGF, bFGF, EGF, HB-EGF y TGF-\beta.
- 3)
- Receptores celulares tales como, por ejemplo, receptor bFGF, receptor EGF y receptor PDGF.
Los oligonucleótidos de la fórmula I según la
invención, que son efectivos contra esos blancos, tienen por ejemplo
la siguiente secuencia de bases:
a)
c-myb
b)
c-myc
c)
cdc2-quinasa
d) PCNA (antígeno nuclear de
células proliferativas de
rata)
\vskip1.000000\baselineskip
Los medicamentos pueden usarse, por ejemplo, en
forma de preparados farmacéuticos, que se pueden administrar por vía
oral, por ejemplo en forma de comprimidos, grageas, cápsulas de
gelatina dura o blanda, disoluciones, emulsiones o suspensiones. La
incorporación de los medicamentos en liposomas que eventualmente
contienen otros componentes como proteínas, también constituye una
forma de aplicación apropiada. También se pueden administrar por vía
rectal, por ejemplo, en forma de supositorios, o por vía parenteral,
por ejemplo, en forma de disoluciones para inyección. Para la
obtención de preparados farmacéuticos se pueden elaborar estos
compuestos en portadores orgánicos e inorgánicos terapéuticamente
inertes. Ejemplos de estos portadores para comprimidos, grageas y
cápsulas de gelatina duras son lactosa, almidón de maíz o derivados
de ellos, sebo y ácido esteárico o sales de ellos. Portadores
apropiados para la preparación de disoluciones son agua, polioles,
sacarosa, azúcar invertida y glucosa. Portadores apropiados para
disoluciones para inyección son agua, alcoholes, polioles, glicerol
y aceites vegetales. Portadores apropiados para supositorios son
aceites vegetales y endurecidos, ceras, grasas y polioles
semilíquidos. Los preparados farmacéuticos también pueden contener
conservantes, solubilizantes, estabilizantes, humectantes,
emulsionantes, endulzantes, colorantes, saboreantes, sales para
modificar la presión osmótica, tampones, agentes de recubrimiento,
antioxidantes, así como eventualmente otros principios
activos
terapéuticos.
terapéuticos.
Formas de administración preferidas son
aplicaciones tópicas, aplicaciones locales tales como, por ejemplo,
con la ayuda de un catéter, pero también inyecciones. Para la
inyección se formulan los derivados de oligonucleótidos antisentido
en una disolución acuosa, preferentemente en un tampón
fisiológicamente aceptable, como por ejemplo disolución de Hank o
disolución de Ringer. Los oligonucleótidos antisentido también
pueden formularse de forma sólida y disolverse o suspenderse antes
de usar. Las dosis preferidas para la administración sistemática son
de aproximadamente 0,01 mg/kg a aproximadamente 50 mg/kg de peso
corporal y por día.
Muy en general, la invención se refiere al uso de
compuestos de la fórmula I como cebadores en el diagnóstico de
ADN.
Los compuestos (1) - (16) mencionados en los
Ejemplos presentan la siguiente fórmula estructural.
R(a) | R(b) | R(c) | R | ||
(7) | -COCH_{3} | -COCH_{3} | -COCH_{3} | -NH-CO-C_{5}H_{19} | |
(8) | -COCH_{3} | -COCH_{3} | -COCH_{3} | NH_{2} | |
(9) | OH | OH | OH | NH_{2} | |
(10) | OH | OH | OH | -NH-CO-C_{6}H_{5} | |
(11) | OH | OH | OH | -N=CH-N(CH_{3})_{2} | |
(12) | OH | OH | OH | CH_{3}-N=CH-N(CH_{3})_{2} | |
(13) | OH | OH | Dmt | '' | |
(14) | Tms | OH | Dmt | '' | |
(15) | OH | Tms | Dmt | '' | |
(16) | Tms | TEP | Dmt | '' |
\vskip1.000000\baselineskip
Se solubilizó
3-(2-desoxi-\beta-D-eritro-pentofuranosil)-5-amino-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
(8-
aza-2'-desoxiguanosina (1)) (26 mg; 0,09 mmol) junto con 1,8-bis(dimetilamino)naftalina (33 mg, 0,15 mmol) en trimetilfosfato (0,25 ml) bajo ligero calentamiento. Después de enfriar hasta 0ºC, se realizó una adición de POCl_{3} recién destilado (12 \mul, 0,13 mmol). La reacción se mantuvo durante 4 h a 4ºC y luego se añadió una disolución de difosfato de tri-n-butilamonio (0,5 m en DMF, 1 ml) y tri-n-butilamina (100 \mul, 0,42 mmol). Tras agitar durante 3 min a 0ºC, se combinó la mezcla con tampón de TBK 1 M (10 ml) y se evaporó hasta sequedad. El residuo se cromatografió en DEAD Sephadex® (columna 1,5 x 20 cm, forma HCO_{3}). Después de lavar con aproximadamente 500 ml de H_{2}O, se cromatografió con un gradiente lineal de H_{2}O / tampón de TBK 0,9 M (cada uno 1 litro). En este caso, se obtuvo una zona principal con aproximadamente tampón de TBK 0,5 M (0,019 mM, 20%). CCD (gel de sílice, i-propanol/H_{2}O/NH_{3}, 3:1:1): R_{f} 0,2. UV (H_{2}O): \lambda_{máx} 256 nm.
aza-2'-desoxiguanosina (1)) (26 mg; 0,09 mmol) junto con 1,8-bis(dimetilamino)naftalina (33 mg, 0,15 mmol) en trimetilfosfato (0,25 ml) bajo ligero calentamiento. Después de enfriar hasta 0ºC, se realizó una adición de POCl_{3} recién destilado (12 \mul, 0,13 mmol). La reacción se mantuvo durante 4 h a 4ºC y luego se añadió una disolución de difosfato de tri-n-butilamonio (0,5 m en DMF, 1 ml) y tri-n-butilamina (100 \mul, 0,42 mmol). Tras agitar durante 3 min a 0ºC, se combinó la mezcla con tampón de TBK 1 M (10 ml) y se evaporó hasta sequedad. El residuo se cromatografió en DEAD Sephadex® (columna 1,5 x 20 cm, forma HCO_{3}). Después de lavar con aproximadamente 500 ml de H_{2}O, se cromatografió con un gradiente lineal de H_{2}O / tampón de TBK 0,9 M (cada uno 1 litro). En este caso, se obtuvo una zona principal con aproximadamente tampón de TBK 0,5 M (0,019 mM, 20%). CCD (gel de sílice, i-propanol/H_{2}O/NH_{3}, 3:1:1): R_{f} 0,2. UV (H_{2}O): \lambda_{máx} 256 nm.
^{31}P-RMN
(Tris-HCl 0,1 M, pH 8,0, 100 mm de EDTA/D_{2}O):
-10,27 (d, J = 19,3, P_{x}); -10,63 (td, J = 20,2 y 6,0,
P_{\alpha}); -22,60 (t, J = 19,8, P_{\beta}).
Se disolvió
3-(2-desoxi-\beta-D-eritro-pentofuranosil)-5-amino-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
(8-aza-2'-desoxiguanosina
(1)) (290 mg; 1,06 mmol) en DMF absoluto (7 ml) y se mezcló con
dietilacetal de N,N-dimetilformamida (5 ml). Después
de agitar durante 24 horas a temperatura ambiente, la tanda se hizo
rotar al vacío y se coevaporó con tolueno. La purificación del
residuo se realizó por medio de cromatografía en gel de sílice
(columna: 20 x 4 cm, 0,5 bar, CH_{2}Cl_{2}/MeOH 8:2). Se obtuvo
el compuesto (2) (320 mg, 92%) en forma de espuma incolora que
cristalizó en MeOH. Punto de fusión 236ºC.
CCD (CH_{2}Cl_{2}/MeOH 8:2): R_{f} 0,7. UV
(MeOH): 301 (26500), 244 (15500).
^{1}H-RMN
((D_{6})DMSO: 8,66 (s, CH); 6,43 (t, J = 6,32,
H-C(1')); 5,40 (br.s.
OH-C(3')); 4,79 (br.s,
OH-C(5')); 4,48 (m,
H-C(3')); 3,85 (m,
H-C(4')); 3,57 (m,
H-C(5')); 3,19, 3,06 (2 s, 2CH_{3}); 2,90
(m, H_{\beta}-C(2')); 2,34 (m,
H(_{\alpha})-C(2')).
C_{12}H_{17}N_{7}O_{4} (323,31) | Calc. C 44,56, H 5,29, N 30,32 |
Exp. C 44,64, H 5,26, N 30,37. |
La
8-aza-2'-desoxiguanosina
(2) protegida con amino del Ejemplo 2 (170 mg, 0,53 mmol) se trató
por medio de varias evaporaciones con piridina absoluta y luego se
tomó en 6 ml de ella. A temperatura ambiente se añadió cloruro de
4,4'-dimetoxitritilo (260 mg, 0,7 mmol) y se agitó
durante 3 horas. La disolución se vertió luego en NaHCO_{3} al 5%
(40 ml) y se extrajo dos veces con 30 ml de CH_{2}Cl_{2} por
vez. Las fases orgánicas combinadas se secaron sobre
Na_{2}SO_{4} y se hicieron girar al vacío. El residuo se
cromatografió en gel de sílice (columna: 15 x 4 cm, 0,5 bar,
CH_{2}Cl_{2}/MeOH 95:5). El rendimiento era de 270 mg (82%),
espuma incolora.
CCD (CH_{2}Cl_{2}/MeOH 95:5) R_{f} 0,3. UV
(MeOH): 302 (24600), 235 (35000).
^{1}H-RMN
((D_{6})DMSO): 12,03 (s, NH); 8,66 (s, CH); 7,39 - 6,70 (2
m, H aromát.); 6,48 (m, H-C(1')); 4,57 (m,
H-C(3')); 3,97 (m,
H-C(4')); 3,69 (s, 2 OCH_{3}); 3,37 (m,
H-C(5')), 3,22, 3,07 (2s, 2CH_{3}); 2,90
(m, H_{\beta}-C(2')); 2,40 (m,
H_{(\alpha)} C(2')).
C_{33}H_{35}N_{7}O_{6} (625,68) | Calc. C 63,34, H 5,64, N 15,67 |
Exp. C 63,42, H 5,72, N 15,71 |
A una disolución de PCl_{3} (200 \mul, 0,22
mmol), así como N-metilmorfolina (2,7 ml, 2,24 mmol)
en CH_{2}Cl_{2} (10 ml) se añadió 1,2,4-triazol
(0,54 g, 7,56 mmol). Se dejó la disolución bajo agitación durante 30
min y luego se enfrió hasta 0ºC. El compuesto de
5'-O-dimetoxitritilo 3 del Ejemplo 3
(220 mg, 0,35 mmol) se secó por evaporación con MeCN seco y luego se
añadió disuelto en CH_{2}Cl_{2} (5 ml). Tras agitar durante 10
min, se vertió la mezcla en (Et_{3}NH)HCO_{3} 1 M (tampón
de TBK, pH 8,0, 30 ml), se agitó dos veces con CH_{2}Cl_{2} y se
separaron las fases. Las disoluciones orgánicas combinadas se
secaron sobre Na_{2}SO_{4} y se evaporaron. La cromatografía se
realizó en gel de sílice (columna: 4 x 15 cm, 0,5 bar, 1.
CH_{2}Cl_{2}/Et_{3}N 98:2; 2. CH_{2}Cl_{2}/MeOH/Et_{3}N
88:10:2). La sustancia de la zona principal se tomó en
CH_{2}Cl_{2} (10 ml) y se agitó varias veces con tampón de TBK
0,1 M (pH 8,0). Se obtuvo el H-fosfonato 4 (240 mg,
85%) en forma de espuma incolora. CCD (CH_{2}Cl_{2} / MeOH /
Et_{3}N 88:10:2): R_{f} 0,3. UV (MeOH): 285 (sh, 14900), 303
(18400).
^{1}H-RMN
((D_{6})DMSO): 11,68 (s, NH); 8,83 (s, CH); 7,77, 5,45 (d,
J = 585, HP); 7,24-6,69 (2 m, H aromát.); 6,53 (m, J
= 4,5, H-C(1')); 5,22 (m,
H-C(3')); 4,09 (m,
H-C(4')); 3,67 (s, 2 OCH_{3}); 3,07, 3,23
(s, 2 CH_{3}, H-C(5')); 2,97 (m,
CH_{3}CH_{2}); 2,56 (m, H-C(2')); 1,13
(m, CH_{3}CH_{2}).
^{31}P-RMN
((D_{6})DMSO): 1,16 (^{1}J(P,H) = 585);
^{3}J(P,H-C(3') = 8,90.
C_{39}H_{51}N_{8}O_{8}P_{1} (790,87) | Calc. C 59,23, H 6,49, N 14,17 |
Exp. C 59,33, H 6,79, N 13,95 |
A una disolución del compuesto (3) del Ejemplo 3
(50 mg, 0,08 mmol) en CH_{2}Cl_{2} (1 ml) se añadió
(i-Pr)_{2}EtN (56 \mul, 0,27 mmol), así
como
cloro-(2-cianoetoxi)(diisopropilamino)-fosfano
(115 \mul, 0,51 mmol). La tanda se agitó a temperatura ambiente
bajo argón durante 2 horas. Luego se vertió la mezcla en NaHCO_{3}
al 5% (3 ml) y se extrajo dos veces con CH_{2}Cl_{2} (30 ml).
Las fases orgánicas combinadas se secaron sobre Na_{2}SO_{4} y
se hicieron rotar hasta sequedad. La cromatografía se realizó en gel
de sílice (columna: 7 x 2 cm, 0,5 bar,
CH_{2}Cl_{2}/AcOEt/Et_{3}N 45:45: 10). Se podían identificar
dos zonas superpuestas de diastereoisómeros de fosforamidita (5),
que se obtuvieron como espuma incolora (35 mg, 55%).
CCD (CH_{2}Cl_{2}/AcOEt/Et_{3}N 45:45:10):
R_{f} 0,4.
^{31}P-RMN
((D_{6})DMSO): 149,4, 148,9.
A una disolución del nucleósido protegido (3) del
Ejemplo 3 (110 mg, 0,18 mmol) en piridina (5 ml) se añadieron
4-dimetil-aminopiridina (30 mg, 0,23
mmol), así como anhídrido de ácido succínico (90 mg, 0,88 mmol). Se
dejó la tanda bajo agitación durante 48 horas a temperatura
ambiente. La reacción se detuvo con la adición de 2 ml de agua.
Después de evaporar hasta sequedad, se coevaporó con tolueno para
eliminar la piridina restante. El residuo se disolvió en un poco de
CH_{2}Cl_{2} y se lavó con una disolución acuosa al 10% de ácido
cítrico y agua. La fase orgánica se secó sobre Na_{2}SO_{4} y se
concentró al vacío. Tras disolver en CH_{2}Cl_{2}/piridina
(95:5, 2 ml) se añadió rápidamente n-pentano/éter
(1:1, 30 ml). El sobrenadante se filtró y quedó un polvo incoloro
(85 mg, 66%). CCD (CH_{2}Cl_{2} / MeOH 9:1): R_{f} 0,25.
^{1}H-RMN
((D_{6})DMSO): 8,71 (s, CH); 7,28-6,75 (2
m, H aromát.); 6,46 (m, J = 4,1, H-C(1'));
5,48 (m, H-C(3')); 4,21 (m,
H-C(4')); 3,36 (s, 2 OCH_{3}); 3,18, 3,05
(2 s, 2 CH_{3}); 3,10 (m, H-C(5')); 2,51
(m, H-C(2'), 2 CH_{2}).
Se evapora 8-azaadenina (200 mg,
1,47 mmol) tres veces en piridina seca, luego se extrae en 5 ml de
piridina seca. A continuación se vierte gota a gota cloruro de
benzoílo (0,28 ml, 2,20 mmol) y se agita durante 3 horas a 60ºC.
Luego se hierve a reflujo durante otra hora más. Se deja reposar la
mezcla de reacción durante la noche y se concentra hasta
aproximadamente 1 ml. A esta mezcla se añaden 15 ml de agua fría, se
deja bajo agitación durante 5 min y se filtra el precipitado
producido por succión. El precipitado ligeramente amarillento se
lava dos veces con 1 ml de agua fría y 1 ml de acetonitrilo frío por
vez. Se obtienen 0,30 g (85%) de cristales incoloros (MeOH). Pf =
263ºC (descomposición).
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2} / MeOH =
8:2); R_{f} = 0,6.
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
242 (12100); 291 (16000).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 7,58; 7,69; 8,13 (H_{5}
arom.), 8,89 (s, H-5), 11,99
(s-N_{6}-H).
C_{11}H_{8}N_{6}O | Calc. C 54,99 H 3,36 N 34,99. |
Exp. C 55,10 H 3,34 N 35,04. |
Se evaporan 500 mg (1,81 mmol) de
7-nonanoilamido-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidina
tres veces hasta sequedad en piridina seca. El residuo se toma en 20
ml de acetonitrilo seco. Se añaden 0,58 g (1,81 mmol) de
1,2,3,5-tetra-O-acetil-\beta-D-ribofuranosa,
0,64 ml (5,43 mmol) de tetracloruro de estaño y la mezcla de
reacción se agita durante 24 horas a temperatura ambiente. La
disolución de reacción se añade luego a 25 ml de disolución saturada
de hidrógeno-carbonato de sodio y se extrae cuatro
veces con 15 ml de diclorometano. Después de secar sobre sulfato de
sodio, las fases orgánicas combinadas se evaporan hasta sequedad. Se
obtienen 0,81 g de un residuo oleoso. La separación de la mezcla del
producto se realiza a través de cromatografía en columna (columna
5,5 x 30 cm, gel de sílice. Eluyente: CH_{2}Cl_{2}/ MeOH 95:5).
De la zona de curso rápido se obtienen 0,27 g (28%) de nucleósido
incoloro.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH);
R_{f} = 0,75.
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
275 (16800).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 0,82 (m,
-CH_{3}-9''); 1,22 (m, -(CH_{2})_{5}-);
1,62 (m, J = 6,8 Hz, -CH_{2}-3''); 1,93; 2,08;
2,11 (3s, O = CCH_{3}); 2,61 (t, J = 7,2 Hz,
-CH_{2}-2''); 4,26 (m, H-5'); 4,52
(m, H-4'); 5,77 (m, H-3'); 6,12 (m,
H-2'); 6,63 (d, J = 3,4 Hz, H-1');
8,89 (s, H-5); 11,48 (s, br,
N^{6}-H).
Se suspenden 340 mg (2,5 mmol) de
7-amino-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidina
y 800 mg (2,5 mmol) de
1,2,3,5-tetra-O-acetil-\beta-D-ribofuranosa
en 10 ml de acetonitrilo seco. A esta mezcla se añaden gota a gota
bajo argón 0,88 ml (7,5 mmol) de tetracloruro de estaño en un lapso
de 5 min y se agitó durante 24 horas a temperatura ambiente. La
disolución producida se vierte cuidadosamente en 32 ml de disolución
saturada de NaHCO_{3}. El precipitado producido se filtra por
succión y se lava dos veces con 10 ml de agua. El filtrado y el agua
de lavado se extraen cuatro veces con 15 ml de cloruro de metileno
por vez. Tras secar sobre Na_{2}SO_{4} y extraer el disolvente,
se obtienen 0,87 g de una espuma ligeramente amarillenta. La
separación de los productos de reacción se realiza a través de
cromatografía en columna (columna: 5,5 x 20 cm, gel de sílice,
CH_{2}Cl_{2}/ MeOH 98:2-90:10).
La zona de curso más rápido da como resultado
0,34 g (34%) de una espuma incolora.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2} / MeOH 9:1):
R_{f} = 0,45
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
280 (10900).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 1,89; 2,10; 2,11 (3s,
2',3',5'-O-C = O); 4,20 (m,
H_{2}-5'); 4,48 (m, H-4'); 5,74
(t, J = 5,5 Hz, H-3'); 6,07 (t, J = 3,7 Hz,
H-2'); 6,48 (d, J = 2,8, H-1');
8,25; 8,6 (2s, N^{6}-H_{2}), 8,34 (s,
H-5).
C_{15}H_{18}N_{6}O_{7} | Calc. C 45,68 H 4,61 N 21,31 |
Exp. C 45,98 H 4,72 N 21,40. |
De la zona de curso más rápido de la elaboración
cromatográfica se obtienen 0,46 g (47%) de una espuma incolora.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2} / MeOH):
R_{f} = 0,35
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
253 (3900), 300 (10400).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 1,94; 2,07; 2,11 (3s,
2',3',5'-O-C = O); 4,25 (m,
H_{2}-5'); 4,52 (m, H-4'); 5,74
(t, J = 6,0, H-3'); 5,91 (d, J = 3,4,
H-2'); 6,53 (s, H-1'); 8,3; 8,45
(2s, N^{6}-H_{2}); 8,34
(H-5).
C_{15}H_{18}N_{6}O_{7} | Calc. C 45,68 H 4,61 N 21,31. |
Exp. C 45,86 H 4,71 N 21,22. |
Se agitan 2,04 g (5,17 mmol) del compuesto (8) en
5 ml de metanol y 5 ml de amoníaco acuoso (25%) durante dos horas a
temperatura ambiente. Después de evaporar hasta sequedad y la
recristalización en 3 ml de agua, se obtienen 1,04 g (75%) de
cristales incoloros que se descompusieron a 217ºC.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH =
8:2)): R_{f} = 0,45.
UV: \lambda_{máx} (pH 7) = 279 (11600);
\lambda_{máx} (pH 1) = 263, \lambda_{máx} (pH 14) = 279.
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 3,56 (m,
H_{2}-5'); 4,01 (m, H-4'), 4,29
(m, 3'); 4,85 (m, H-2'); 5,01 (t, J = 5,9 Hz,
HO-5'); 5,28 (d, J = 5,7, HO-3');
5,56 (d, J = 6,0 HO-2'); 6,15 (d, J= 5,2 Hz,
H-1'); 8,31 (s, H-5); 8,53; 8,19
(2s, N^{7}H_{2}).
Se agitan a temperatura ambiente 0,81 g (2,05
mmol) del compuesto del Ejemplo 11 en 5 ml de metanol y 5 ml de
amoníaco acuoso (25%) durante dos horas. Tras evaporar hasta
sequedad y recristalizar en 2,5 ml de agua, se obtienen 0,32 g (59%)
de cristales incoloros que se descomponen a 209ºC.
CCCD (CH_{2}Cl_{2} / MeOH = 8:2): R_{f} =
0,20
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
255 (4400), 263 (4100), 297 (10400).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 3,59 (m,
H_{2}-5'); 4,06 (m, H-4'); 4,33
(m, H-3'); 4,61 (m, H-2'); 4,76 (t,
J = 5,3 Hz, HO-5'); 5,27 (d, J = 5,8 Hz,
HO-3'); 5,68 (d, J = 5,5 Hz, HO-2');
6,08 (s, J = 3,4 Hz, H-1'); 8,31 (s,
H-5); 8,12 (s, N^{7}-H_{2}).
Se disponen 100 mg (0,37 mmol) de
7-amino-3-\beta-D-ribofuranosil-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidina
en 5 ml de piridina seca. A esta disolución se vierten gota a gota
bajo una atmósfera de argón 0,47 ml (3,7 mmol) de cloruro de
trimetilsililo. Después de agitar durante media hora a temperatura
ambiente (control con CCD), se vierten gota a gota 0,25 ml (2,0
mmol) de cloruro de benzoílo y se agita durante cuatro horas a
temperatura ambiente. La mezcla de reacción se enfría hasta
0-5ºC, se mezcla con 1 ml de agua, a los 5 min se
combina con 2 ml de amoníaco acuoso (25%) y se agita nuevamente
durante 30 min. El disolvente se extrae y se evapora luego con
tolueno. El residuo se toma en 15 ml de disolución saturada de
NaHCO_{3}, se extrae una vez con 25 ml de cloruro de metileno y
varias veces con acetato de etilo. Las fases orgánicas combinadas se
secan con Na_{2}SO_{4}.
Después de extraer el disolvente por succión, se
obtienen 0,05 g (36%) de una sustancia cristalina incolora que se
funde con descomposición después de la cristalización en metanol a
188ºC.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH =
9:1): R_{f} = 0,25
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
242 (9400), 282 (20300).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 3,56 (m,
H_{2}-5'); 4,04 (m, H-4'); 4,36
(m, H-3'); 4,84 (t, HO-5'); 4,92 (m,
H-2'); 5,33 (d, J = 5,2 Hz, HO-3');
5,66 (d, J = 5,4 Hz, HO-2'); 6,30 (d, J = 4,3 Hz,
1'); 7,54-8,11 (m, H_{5} arom.); 8,94 (s,
H-5); 11,99 (s, br, N^{6}-H).
C_{16}H_{16}N_{6}O_{6} | Calc. C 51,60 H 4,34 N 22,57. |
Exp. C 51,49 H 4,43 N 22,74. |
Se agitan 100 mg (0,37 mmol) de
7-amino-3-\beta-D-ribofuranosil-(3H)-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidina
durante la noche en 2 ml de DMF seca y 0,25 ml (1,85 mmol) de
N,N-dimetilacetal de dimetilformamida a temperatura
ambiente. A esta mezcla de reacción se añaden luego 4 ml de metanol.
Después de agitar durante dos horas, la tanda se evapora hasta
sequedad, se coevapora con tolueno y se cromatografía en gel de
sílice (columna: 3x20 cm, eluyente CH_{2}Cl_{2}/ MeOH
98:2-90:10). En la zona principal se obtienen 0,06 g
(52%) de una sustancia incolora, vítrea, solidificada.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH =
9:1): R_{f} = 0,25
UV \lambda_{máx} (\varepsilon) = 235,
325.
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 3,21; 3,27 (2s, N
(CH_{3})_{2}); 3,55 (m, H_{2}-5'), 4,00
(m, H-4'); 4,31 (m, H-3'); 4,87 (m,
H-2'); 4,96 (t, HO-5'); 5,32 (d,
HO-3'); 5,60 (d, HO-2'); 6,19 (d, J
= 4,7 Hz, H-1'); 8,57 (s, H-5); 9,06
(s, N = CH).
Se mezclan 500 mg (1,86 mmol) de 9 en 10 ml de
metanol p.a. con 0,91 ml (5,59 mmol) de dimetilacetal de
N,N-dimetilcetamida. Se deja la suspensión bajo
agitación durante 14 horas a temperatura ambiente. La disolución que
se produce se libera del disolvente en el evaporador rotativo y se
coevapora con tolueno. El residuo se mezcla nuevamente con 10 ml de
metanol y se agita durante dos horas a temperatura ambiente. Después
de separar el disolvente, se cromatografía el residuo en gel de
sílice (columna 4 x 20 cm, eluyente CH_{2}Cl_{2}/ MeOH
98:2-90:10). Rendimiento: 0,48 g (76%) de una espuma
incolora.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2} / MeOH =
9:1): R_{f} = 0,35
UV (metanol) UV \lambda_{máx} (\varepsilon)
= 233 (9300), 270 (3600), 324 (26100).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 2,28 (s, N =
C-CH_{3}); 3,20 (s,
N(CH_{3})_{2}); 3,55 (m,
H_{2}-5'); 4,00 (m, H-4'); 4,30
(m, H-3'); 4,86 (m, H-2'); 4,98 (t,
HO-5'); 5,29 (d, J = 5,2 Hz, HO-3');
5,57 (d, J = 5,9 Hz, HO-2'), 6,18 (d, J = 5,2 Hz,
H-1'); 8,54 (s, H-5).
\newpage
C_{13}H_{19}N_{7}O_{4} | Calc. C 46,28 H 5,69 N 29,07. |
Exp. C 46,45 H 5,63 N 28,97. |
Para secar se evaporan 0,34 g (1,00 mmol) de 12
dos veces en piridina seca. La sustancia se disuelve en 4 ml de
piridina seca, se mezcla con 0,41 g (1,20 mmol) de cloruro de
4,4'-dimetoxitritilo y se agita durante dos horas a
40ºC. Tras enfriar hasta temperatura ambiente, se añaden 5 ml de
metanol p.a. y se agita durante otros 30 minutos. La disolución de
reacción se concentra hasta aproximadamente la mitad de su volumen.
Luego se mezcla con 8 ml de disolución saturada de
hidrógeno-carbonato de sodio y se extrae cuatro
veces con 10 ml de cloruro de metileno por vez. Las fases orgánicas
combinadas se agitan con 15 ml de disolución saturada de cloruro de
sodio, se seca sobre sulfato de sodio, y se evapora. El residuo
(0,73 g de espuma de color amarillo pálido) se sigue purificando por
cromatografía en columna (columna: 2 x 20 cm, gel de sílice,
CH_{2}Cl_{2}/ MeOH 95:5). Rendimiento: 0,52 g (81%) de espuma
incolora.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH =
9:1): R_{f} = 0,45
UV (metanol) UV \lambda_{máx} (\varepsilon)
= 234 (29900), 275 (13800), 324 (24800).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 2,24 (s, N = CCH_{3});
3,10 (m, H_{2}-5'); 3,19 (s,
N(CH_{3})_{2}); 3,69 (s,
(OCH_{3})_{2}); 4,14 (m, H-4'); 4,51 (m,
H-3'); 4,86 (m, H-2'); 5,28 (d, J =
6,2 Hz, HO-3'); 5,68 (d, J = 5,1 Hz,
HO-2'); 6,25 (d, H-1');
6,71-7,26 (m, 13 H arom.); 8,54 (s,
H-5).
C_{34}H_{37}N_{7}O_{6} | Calc. C 63,83 H 5,84 N 15,33. |
Exp. C 63,64 H 5,84 N 15,31. |
Se disponen 0,35 g (0,55 mmol) del compuesto seco
de tritilo 13 en 4 ml de piridina seca. A esta disolución se añaden
140 mg (0,82 mmol) de nitrato de plata y bajo argón 145 \mul (0,69
mmol) de cloruro de triisopropilo que antes se había disuelto en 5
ml de tetrahidrofurano. Excluyendo la luz, se deja la mezcla bajo
agitación a temperatura ambiente. Al cabo de 24 horas se añaden
otros 120 \mul (0,55 mmol) de cloruro de triisopropilsililo y se
agita nuevamente durante 48 horas a temperatura ambiente. El cloruro
de plata producido se filtra, se lava con un poco de
tetrahidrofurano y el filtrado se mezcla con 10 ml de disolución de
carbonato de hidrógeno saturado. Se extrae cuatro veces con 10 ml de
diclorometano por vez y las fases orgánicas combinadas se secan
sobre sulfato de sodio. Después de evaporar hasta sequedad, se
obtienen 0,60 g de un aceite ligeramente amarillento. La
purificación y separación de los productos de reacción se realiza
por medio de cromatografía en columna (columna 3 x 20 cm, gel de
sílice, eluyente acetato de etilo / éter de petróleo 8:2). De la
zona principal de más rápida migración se obtienen 0,31 g (71%) de
una espuma incolora.
CCD (gel de sílice, acetato de etilo / éter de
petróleo 9:1): R_{f} = 0,30
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
234 (29600), 274 (6800), 325 (25900).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 0,83-0,97
(m, Si-[CH(CH_{3})_{2}]); 2,24 (s, N = CCH_{3}),
3,10 (m, H_{2}-5'); 3,19 (s,
N(CH_{3})_{2}); 3,70 (s,
(O-CH_{3})_{2}); 4,19 (m,
H-4'); 4,43 (m, H_{3}'); 5,21 (t, J = 4,4 Hz,
H-2'); 5,27 (d, J= 6,3 Hz, HO-3');
6,30 (d, J = 4,3 Hz, H-1');
6,75-7,35 (m, 13 H arom.); 8,53 (s,
H-5).
C_{43}H_{57}N_{7}O_{6} | Calc. C 64,87 H 7,23 N 12,23. |
Exp. C 64,94 H 7,37 N 12,13. |
De la zona de curso más lento de la cromatografía
en columna descrita más arriba para el compuesto 14 se obtienen 0,08
g (18%) de una espuma incolora.
CCD (gel de sílice, acetato de etilo / éter de
petróleo 9:1): R_{f} = 0,15.
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
234 (29800), 274 (7400), 327 (24700).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 0,98 (s,
Si[CH(CH_{3})_{2}]_{3}); 2,19 (s,
N =CCH_{3}); 3,10 (m, H_{2}-5'); 3,18 (s,
N(CH_{3})_{2}); 3,68 (s,
(OCH_{3})_{2}), 4,17 (m, H-4'); 4,92 (m,
H-3', H-2'); 5,64 (d, J= 5,1 Hz,
HO-2'); 6,27 (d, J= 6,0 Hz, H-1');
6,70-7,20 (m, 13 H arom.); 8,55 (s,
H-5).
A una disolución de 114 \mul (1,3 mmol) de
tricloruro de fósforo y 1,43 ml (13,0 mmol) de
N-metilmorfolina en 10 ml de diclorometano seco se
añaden 0,67 g (9,75 mmol) de 1,2,4-triazol bajo una
atmósfera de argón. Después de agitar durante 30 min a temperatura
ambiente, se enfría la mezcla de reacción hasta 0ºC y en un lapso de
10 min se añade gota a gota el compuesto de sililo (14), disuelto en
2,5 ml de diclorometano seco. La mezcla de reacción se agita durante
otros 20 min a 0ºC y luego se hidroliza con tampón de TBK 1 M. La
fase acuosa se extrae tres veces con 20 ml de diclorometano por vez.
Las fases orgánicas combinadas se secan sobre sulfato de sodio, y se
evaporan hasta sequedad. El residuo se cromatografía en una columna
de gel de sílice (3 x 10 cm, CH_{2}Cl_{2}, MeOH / TEA 88:10:2).
Las fracciones que contienen el producto se evaporan juntas, se
toman en 20 ml de diclorometano, se agitan cuatro veces con 5 ml de
tampón de TBK 0,1 M por vez, se secan sobre sulfato de sodio y se
liberan del disolvente. Rendimiento 0,21 g (83%) de una espuma
incolora.
CCD (gel de sílice, CH_{2}Cl_{2}/ MeOH / TEA
88:10:2): R_{f} = 0,6.
UV (metanol) \lambda_{máx} (\varepsilon) =
234 (27300), 274 (11700), 325 (16400).
^{1}H-RMN
(D_{6}-DMSO) \delta: 0,75-0,95
(m, Si[CH(CH_{3})_{2}]_{3}); 1,15;
2,99 (m, (CH_{3}CH_{2})_{3}N); 2,24 (s, N = CCH_{3});
3,20 (s, N(CH_{3})_{2});
(H_{2}-5' cubierto); 3,69 (s,
(O-CH_{3})_{2}); 4,40 (m,
H-4'); 4,79 (m, H-3'); 5,44 (m,
H-2'); 5,50 y 7,91 (d, ^{1}J = 602 Hz,
P-H); 6,27 (d, J = 6,0 Hz, H-1');
6,76-7,40 (m, 13 H arom.); 8,50 (s,
H-5); 10,90 (s, br, N^{+}-H).
^{31}P-RMN \delta: 2,55 (dd,
^{1}P_{PH} = 602 H_{2}, ^{3}J_{PH} = 9,5 H_{2}).
La síntesis de los oligorribonucleótidos se
prepara en escala de 1 \mumol por aplicación de la técnica del
fosfonato en un sintetizador de ADN de la empresa Applied
Biosystems, Weiterstadt. La oxidación final se realiza de forma
manual.
- 1.
- La separación de los oligorribonucleótidos del portador de CPG se logra por 16 horas de acción de amoníaco (disolución acuosa al 25% / etanol 3:11) en la columna portadora.
- 2.
- Separación de los grupos de protección de bases
- La disolución amoniacal de oligómeros se calienta durante 16 horas a 55ºC en baño de agua en el caso de la secuencia (AU)_{6} no modificada y se calienta durante 3 horas hasta 40ºC en el caso de los dodecámeros que contienen 8-azaadenosina. Las disoluciones se evaporan hasta sequedad en temperatura ambiente y se coevaporan con etanol absoluto.
- 3.
- Los grupos protectores de 2'-sililo se separaron por acción de la disolución 1 M de TBAF/THF durante 16 horas a temperatura ambiente.
El 3'-fosfonato de la
8-azaadenosina se emplea para la síntesis del
oligorribonucleótido
5'-(z^{8}A-U)_{6}-3'
(17). En este caso, se emplean el compuesto (16) junto con
3'-fosfonatos protegidos con
5'-(MeO)_{2}Tr,2'-t-BuMe_{2}Si
de la uridina. Los oligonucleótidos se sintetizan en un Controlled
Pore Glass (CPG) en dirección 3' a 5', en donde el nucleósido
protegido 3'-terminal se une covalentemente a través
de un espaciador de succinilo a la fase sólida. Al comienzo se
separa el grupo 5'Dmt del nucleósido unido al soporte con ácido
dicloroacético al 2,5% en diclorometano. Luego se produce el
acoplamiento con el fosfonato activado con cloruro de pivaloílo.
Para evitar secuencias erróneas, se hacen reaccionar grupos
5'-OH que no reaccionaron con fosfito de
isopropilo.
Con ayuda de columnas de intercambio aniónico
Qiagen tipo 500. Se equilibra una columna ®Qiagen con 5 ml de tampón
de TBK 0,1 M, se carga con la disolución oligomérica y se lava con 5
ml de tampón de TBK 0,1 M. Luego se eluyen los oligómeros con tampón
de TBK 1 M de la columna. La detección de las fracciones de producto
se logra por medio de placas UV/CCD. Las fracciones que contienen el
oligómero se liberan de las disoluciones tamponadas con una
centrífuga ®Speed Vac al vacío.
Los oligómeros se aislaron con ayuda de HPLC en
fase inversa en una columna RP 18 ®LiChrosorb. Para ello se toma el
oligómero en 400 \mul de una disolución acuosa al 1% de
dietilpirocarbonato (DEPC), se calienta la muestra durante
2-3 min hasta 95ºC y se enfría rápidamente hasta 0ºC
para impedir la formación de estructuras secundarias. DEPC es un
inhibidor de Rnasa. Luego se rocía una muestra (10 \mul) para
calcular los tiempos de retención. A continuación se vierte la
disolución en porciones de 50 - 100 \mul en una columna
RP-18, se separa el pico principal y se concentran
las fracciones combinadas hasta un volumen de aproximadamente 5
ml.
- A: TEAA 0,1 M (estéril, pH 7,5) / CH_{3}CN 95:5
- B: CH_{3}CN
- Sistema I: 20 min 0-20% de B en A
- Sistema II: 30 min 0-20% de B en A
- Tiempos de retención del oligómero 17
Oligómero | Tiempo de retención (min) | Sistema |
(z^{8}A-U)_{6} | 28,6 | II |
- Velocidad de flujo: 1 ml/min
Los 5 ml de disolución oligomérica se colocan en
la columna previamente sometida a autoclave y equilibrada con 5 ml
de CH_{3}CN, 5 ml de tampón de TEAA 0,05 M (pH 7,0)/CH_{3}CN
1:1, así como con 5 ml de tampón de TEAA 0,05 M (Millipore,
Eschborn), se lavan con 5 ml de disolución de TEAA 0,05 M y los
oligonucleótidos se eluyen con una mezcla de
MeOH/CH_{3}CN/H_{2}O 1:1:1 en porciones de 1 ml nuevamente de la
columna. Las fracciones que contienen los oligómeros se calculan con
HPLC. Después de liofilizar en el concentrador ®Speed Vac, se
conservan los oligorribonucleótidos a -25ºC.
Se disuelven 0,2 unidades de A_{260} de
oligómeros en 200 \mul de tampón de tris-HCl (pH
8,3), se mezclan con 4 \mug (2 \mul) de fosfordiesterasa de
veneno de víbora (Boehringer Mannheim) y se incuban durante 30 min a
37ºC. Después de añadir 3 \mug (5 \mul) de fosfatasa alcalina,
la disolución se mantiene a 37ºC durante otros 15 min. La
composición de nucleósido de la disolución de reacción se determina
luego por HPLC (columna RP-18, fase móvil: tampón de
TEAA 0,1 M / CH_{3}CN 95:5. Velocidad de flujo 1 ml/min).
Tiempos de retención de los nucleósidos:
- A = 11,4 min z^{8}A = 10,0 min I = 4,8 min U = 3,6 min
Las superficies de los picos de HPLC se dividen
por medio de los correspondientes coeficientes de extinción y se
relacionan entre sí.
\newpage
Coeficientes de extinción a 260 nm:
- \varepsilon (A) = 15300, \varepsilon (z^{8}A) = 7100, \varepsilon (U) = 10200, \varepsilon (I) = 7400
A una disolución del
3'-O-succinato (6) del Ejemplo 6 (30
mg, 0,04 mmol) y 1,4-dioxano/5% piridina (1 ml) se
añadieron p-nitrofenol (7 mg, 0,05 mmol) y
N,N-diciclohexilcarbodiimida (10 mg, 0,048 mmol). Al
cabo de 2 horas de agitación a temperatura ambiente, se vertió el
filtrado de la disolución en una suspensión de Fractosil 200® (80
mg, 450 \mumol/g; Merck) en DMF (1 ml). Después de añadir
trietilamina (100 \mul) se agitó la mezcla durante 4 horas,
realizándose intercaladamente una adición de anhídrido de ácido
acético (20 \mul). El portador polimérico se filtró, se lavó con
30 ml de DMF, etanol y éter por vez y se secó al vacío. Para
determinar el rendimiento del nucleósido unido a polímero, se tomó
la sustancia con ácido p-toluensulfónico 0,1 M (5
ml) en MeCN. De la extinción a 498 nm se pudo calcular la carga del
portador por espectrofotometría UV (Dmt = 70000) con 64 \mumol de
8-aza-2'-desoxiguanosina
/ g de Fractosil®.
Las síntesis de los oligodesoxirribonucleótidos
se realizaron en escala de 1 \mumol por medio de la técnica del
fosfonato en un sintetizador automatizado de ADN modelo 380 B
(Applied Biosystems, Weiterstadt) en fase sólida (CPG: ®Controlled
Pore Glass), en donde se sintetizó el fragmento de ADN en dirección
3'-5'. El ciclo de oxidación (destritilación,
acoplamiento, capeado y oxidación) siguió en este caso un programa
desarrollado para la química de los fosfonatos (H. Köster. K.
Kulikowsky, T. Liese, W. Heikens, V. Kohli, Tetrahedron 1981, 37,
363). El oligonucleótido protegido con bases y Dmt en el grupo
5'-hidroxilo se separó del soporte por medio de
amoníaco acuoso al 25% en un lapso de 30 min. Después de seguir
añadiendo amoníaco acuoso (1 ml, 25%), se separaron los grupos
protectores en los heterociclos en un lapso de 24 horas a 60ºC. Las
muestras se concentraron con adición de una gota de trietilamina (se
evita la separación prematura del grupo protector
5'-OH) en un concentrador Speed-Vac®
hasta aproximadamente 200 \mul. Así se pueden conservar a -25ºC
durante algunos meses.
Las síntesis de oligodesoxirribonucleótidos en
escala de 1 \mumol por medio de la técnica de la fosforamidita en
fase sólida en un sintetizador automatizado de ADN modelo 380 B
(Applied Biosystems, Weiterstadt) se llevó a cabo con la ayuda de
®CPG (Controlled Pore Glass) o ®Fractosil, que mantiene unida la
primera unidad de nucleósido a través del extremo 3'. En este caso,
se llevaron a cabo las siguientes etapas:
- 1.
- Lavado con acetonitrilo abs.
- 2.
- Tratamiento con ácido tricloroacético al 3% en diclorometano
- 3.
- Lavado con acetonitrilo abs.
- 4.
- Condensación con 10 \mumol de 5'-O-dimetoxitritinucleósido-3'-ácido fosfórico-\beta-cianoetiléster-diisopropilamidita y 50 \mumol de tetrazol en 0,3 ml de acetonitrilo abs.
- 5.
- Lavado con acetonitrilo
- 6.
- Capeo con 20% de acetanhídrido en THF con 40% de lutidina y 10% de dimetilaminopiridina
- 7.
- Lavado con acetonitrilo
- 8.
- Oxidación con yodo (1,3 g en THF/agua/piridina; 70:20:5 = v:v:v)
Las etapas 1 a 8, denominadas de ahora en más
ciclo de reacción de ADN, se repiten según la secuencia por
sintetizar para la formación del oligonucleótido, en donde en la
etapa 4 se empleó
5'-O-dimetoxitritil(nucleobase)-3'-ácido
fosfórico-\beta-cianoetiléster-diisopropilamidita
correspondiente a la secuencia. Una vez finalizada la síntesis, se
produce la elaboración tal como se describió en el Ejemplo 8.
La síntesis se realizó tal como se describió en
el Ejemplo 25, partiendo de
5'-O-dimetoxitritil-2'-desoxiguanosina
unida a CPG. Los primeros tres nucleótidos se realizaron con
5'-O-dimetoxitritil(nucleobase)-3'-Hfosfosfonatos
que se obtienen en el comercio. Para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina,
se empleó en el cuarto ciclo de condensación la
3-{2-desoxi-5-O-(4,4'dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil}-5-{[(dimetilamino)metiliden]amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 28, en donde para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina
en el segundo y cuarto ciclo de condensación, se empleó en cada caso
la
3-[2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil}-5-{[(dimetilamino)metiliden]-amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]-pirimidin-7-(6H)-ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 29, partiendo de un portador de CPG cargado con
citidina, en donde para introducir la
8-aza-2'desoxiguanosina en el tercer
ciclo de condensación se empleó la
3-(2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil]-5-{{(dimetilamino)metiliden]amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 28, partiendo de
5'-O-dimetoxitritil-timidina
unida a CPG, en donde para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina
en el cuarto ciclo de condensación se usó la
3-[2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil]-5-{[(dimetilamino)metiliden]amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 30, partiendo de
5'-O-dimetoxitritil-timidina
unida a CPG, en donde para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina
en el tercer ciclo de condensación se empleó la
3-[2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil]-5-{[(dimetilamino)metiliden)amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)-ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 30, partiendo de
5'-O-dimetoxitritil-timidina
unida a CPG, en donde para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina
en el ciclo de condensación uno a cuatro se usó en cada caso la
3-(2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil]-5-{[(dimetilamino)metiliden]-amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)ona
3'[fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
La síntesis se realizó análogamente a lo descrito
en el Ejemplo 26, partiendo de
5'-O-dimetoxitritil-2'-desoxiguanosina
unida a CPG. Para introducir la
8-aza-2'-desoxiguanosina
se empleó en el octavo ciclo de condensación la
3-[2-desoxi-5-O-(4,4'-dimetoxitritil)-\beta-D-eritro-pentofuranosil]-5-{[(dimetilamino)metiliden]-amino}-3H-1,2,3-triazolo[4,5-d]pirimidin-7-(6H)ona
3'(fosfonato de trietilamonio) (4) del Ejemplo 4.
Los oligómeros protegidos con Dmt se purificaron
en una primera etapa de purificación a través de HPLC en una columna
RP-18 con gel de sílice [sistema de eluyentes I) y
se evaporaron hasta sequedad al vacío a 40ºC. El posterior
tratamiento de 20 minutos con 250 \mul de ácido acético al 80%
llevó a la separación del grupo 5'-tritilo. En una
segunda etapa de purificación, se purificaron los oligómeros
totalmente desprotegidos una segunda vez a través de
RP-18 HPLC (sistema de eluyentes II). Las zonas
principales reunidas se evaporaron, el residuo se disolvió en
aproximadamente 500 \mul de agua y se desalinizaron a través de
una columna corta RP-18 (sistema de eluyentes III).
Después de la liofilización se extrajeron los oligómeros
(5-20 unidades A_{260}) en 100 \mul de agua y se
almacenaron a -25ºC.
Se usaron los siguientes sistemas de eluyentes,
compuestos por:
- -
- acetato de trietilamonio 0,1 M, pH 7,0 / 5% de acetonitrilo (A)
- -
- acetonitrilo (B)
- -
- agua (C)
- -
- metanol / agua (3:2)
- I:
- 20 min (0-20% de B) en A
- II:
- 20 min (15-40% de B) en A
- III:
- 15 min de C, 10 min de D
- IV:
- 100% de A
- V:
- 100% de B
Se observaron los siguientes tiempos de retención
de los oligómeros:
Oligómero | Ejemplo | Tiempo de retención [min] | Eluyente |
d(Cz^{8}GCGCG) | 10 | 15,1 (12,5) | I (II) |
d(Cz^{8}GCz^{8}GCG) | 11 | 15,8 (12,9) | I (II) |
d(GCz^{8}GCGC) | 12 | 15,5 (12,5) | I (II) |
d(Tz^{8}GGGGT) | 13 | 13,4 (12,2) | I (II) |
d(TGz^{8}GGGT) | 14 | 13,5 (12,1) | I (II) |
d(Tz^{8}Gz^{8}Gz^{8}Gz^{8}GT) | 15 | 13,6 (12,4) | I (II) |
d(GTAz^{8}GAATTCTAG) | 16 | 15,0 (12,4) | I (II) |
0,2 unidades A_{260} de los oligómeros se
disolvieron en tampón de tris/HCl 0,1 M (pH 8,3, 200 \mul) y se
incubaron con fosfodiesterasa de veneno de víbora (EC 3.1.4.1,
Crotallus durissus, Boehringer Mannheim; 6 \mug) a 37ºC
durante 45 min y con fosfatasa alcalina (EC 3.1.3.1, hígado de
ternero, Boehringer Mannheim; 2 \mug) durante 30 min a 37ºC. Los
productos de hidrólisis se detectaron por medio de HPLC en fase
inversa (RP-18, eluyente IV) a 260 nm. En base a las
superficies de los picos y los coeficientes de extinción de los
nucleótidos (260: dA 15400, dC 7300, dG 11700, dT 8800,
z^{8}G_{d} 12000) se pudo cuantificar la composición de los
oligodesoxirribonucleótidos.
La absorción UV a 260 nm de aproximadamente 0,2
unidades A_{260} de los oligómeros se determinó en tampón de
tris/HCl 0,1 M (pH 8,3, 200 \mul) antes y después de la adición de
fosfodiesterasa de veneno de víbora (10 \mug). Teniendo en cuenta
la absorción enzimática, resulta la hipocromicidad de acuerdo con la
relación:
H_{enzim}. =
[(_{monómero} - _{oligómero}) (_{monómero})^{-1}]
\times
100
El cálculo de los valores T_{m} de los
oligómeros se realizó en un espectrofotómetro Cary 1
UV-Vis (Varian, Melbourne, Australia). La
temperatura se modificó linealmente con 0,5ºC o bien 1,0ºC por
minuto. Para ensayar la temperatura de fusión, se usaron
concentraciones de oligómeros de entre 0,2-0,8
unidades A_{260} en 1 ml de tampón 60 mM de cacodilato de sodio
(pH 7,5, NaCl 1 M, 100 mM de MgCl_{2}). La concentración
monocatenaria era de 0,2-0,6 DO en los experimentos
con oligonucleótidos no autocomplementarios. La hipocromicidad de
fusión en % resulta de la modificación de la absorción antes y
después de la fusión, de acuerdo con la siguiente ecuación:
H_{f} =
[(A_{e}-A_{t})A_{e}^{-1}) \times
100
El análisis de las curvas de fusión se realizó
con un programa partiendo de un modelo de dos estados
("stacked/unstacked") de acuerdo con la ecuación:
In \ K = In \
[(E^{S} - E)/(E^{U} - E)] = S/R -
H/RT
con E = absorción en la
correspondiente longitud de onda, S "stacked" y U =
"unstacked"). Los espectros DC dependientes de la temperatura
se registraron en el espectropolarímetro Jasco 600 con una cubeta de
cuarzo atemperable en un intervalo de longitudes de onda de
200-350 nm. El aumento de la temperatura se realizó
a intervalos de 5-10ºC en un intervalo de 5 - 80ºC
en concentraciones de 3 - 15 \muM en 60 mM de tampón de cacodilato
de sodio, así como en NaCl 0,1 M, 1 y 4
M.
Oligómero | T_{m} [ºC] | Hipocromicidad [%] |
d(CGCGCG) | 45 | 22 |
d(GCGCGC) | 45 | 29 |
d(Cz^{8}GCGCG) | 49 | 23 |
d(Cz^{8}GCz^{8}GCG) | 52 | 21 |
d(GCz^{8}GCGC) | 47 | 27 |
a) Medido en NaCl 1 M, 100 mM de MgCl_{2}, 60 mM de tampón de cacodilato, pH 7,0. |
Se disuelven 10 nmol del oligonucleótido por
ensayar en 450 \mul de suero fetal de ternero al 20% en medio RPMI
y 50 ml de agua bidestilada, y se incuban a 37ºC. Luego se extraen,
inmediatamente y al cabo de 1, 2, 4, 7 y 24 horas, muestras de 10
\mul para la electroforesis en gel o muestras de 20 \mul para
HPLC, se mezclan con 5 \mul o 10 \mul de formamida para iniciar
la reacción y se calientan durante 5 minutos a 95ºC. Para la
electroforesis en gel se aplican las muestras sobre un gel de
poliacrilamida al 15% (2% BIS) y se deja evolucionar durante
aproximadamente 3000 horas completas. Las bandas se hacen visibles
por coloración plateada. Para el análisis de HPLC se rocían las
muestras en una columna de HPLC Gen-Pak Fax
(Waters/Millipore) y se cromatografían a 1 ml/min con 5 a 50% de
tampón A en B (tampón A: 10 mM de
dihidrógeno-fosfato de sodio, NaCl 0,1 M en
acetonitrilo/agua 1:4 (v:v) pH 6,8; tampón B: como A, pero NaCl 1,5
M).
La actividad antiviral de las sustancias de
ensayo contra distintos herpesvirus patógenos humanos se ensaya en
el sistema de ensayo de cultivos celulares. Para el ensayo se
siembran células de riñón de mono (Vero, 2 x 10^{5} ml) en MEM de
Dulbecco con contenido de suero (suero fetal de ternero al 5% FCS)
en placas de microtitulación de 96 pocillos y se incuban durante 24
h a 37ºC y 5% de CO_{2}. El medio que contiene suero se extrae
luego por filtración y las células se enjuagan dos veces con MEM de
Dulbecco sin suero (-FCS). Las sustancias de ensayo se diluyen
previamente en H_{2}O hasta una concentración de 600 \muM y se
conservan a 18ºC. Para el ensayo se realizan otras etapas de
dilución en medio esencial mínimo de Dulbecco (MEM). Cada 100 \mul
de cada una de las diluciones de sustancia de ensayo se vierten
junto con 100 \mul de MEM de Dulbecco sin suero (-FCS) a las
células enjuagadas. Al cabo de 3 h de incubación a 37ºC y 5% de
CO_{2}, se infectan las células con Herpes simplex Virus tipo 1
(ATCC VR733, HSV-1 cepa F) o con Herpes simplex
Virus tipo 2 (ATCC VR734, HSV-2 cepa G) en
concentraciones en las que el cultivo celular se destruye por
completo en un lapso de 3 días. En el caso de HSV-1,
la potencia de la infección es de 500 unidades formadoras de placa
(PFU) por cavidad. En el caso de HSV-2, 350
PFU/cavidad. Las tandas de ensayo contienen sustancia de ensayo en
concentraciones de 80 \muM a 0,04 \muM en MEM, suplementado con
100 U/ml de penicilina G y 100 mg/l de estreptomicina. Todos los
ensayos se realizan como determinación doble, a excepción de los
controles que se efectúan ocho veces por placa. Las tandas de ensayo
se incuban durantes 17 h a 37ºC y 5% de CO_{2}. La citoto-
xicidad de las sustancias de ensayo se determina a las 20 h de tiempo de incubación total por dictamen microscópico de los cultivos celulares. Como dosis máxima tolerada (DTM) se designa la máxima concentración del preparado que no provoca daños celulares detectables microscópicamente en las condiciones de ensayo mencionadas. Después se produce la adición de FCS hasta una concentración final de 4% con posterior incubación durante 55 h a 37ºC y 5% de CO_{2}.
Los controles no tratados de infección muestran un efecto citopático completo (CPE). Después del dictamen microscópico de los cultivos celulares, se colorean con rojo neutro de acuerdo con el procedimiento de coloración vital según
Finter (1966). La actividad antiviral de una sustancia de ensayo se define como la concentración mínima de inhi-
bición (MHK) que se necesita para proteger el 30-60% de las células del efecto citopatógeno originado por los virus.
xicidad de las sustancias de ensayo se determina a las 20 h de tiempo de incubación total por dictamen microscópico de los cultivos celulares. Como dosis máxima tolerada (DTM) se designa la máxima concentración del preparado que no provoca daños celulares detectables microscópicamente en las condiciones de ensayo mencionadas. Después se produce la adición de FCS hasta una concentración final de 4% con posterior incubación durante 55 h a 37ºC y 5% de CO_{2}.
Los controles no tratados de infección muestran un efecto citopático completo (CPE). Después del dictamen microscópico de los cultivos celulares, se colorean con rojo neutro de acuerdo con el procedimiento de coloración vital según
Finter (1966). La actividad antiviral de una sustancia de ensayo se define como la concentración mínima de inhi-
bición (MHK) que se necesita para proteger el 30-60% de las células del efecto citopatógeno originado por los virus.
- A
- adenosina
- bz
- benzoílo
- br
- amplio
- calc.
- calculado
- DC
- dicroísmo circular
- d
- duplete
- CCD
- cromatografía en capa delgada
- dG
- 2'-desoxiguanosina
- dA
- 2'-desoxiadenosina
- dC
- 2'-desoxicitidina
- dT
- 2'-desoxitimidina
- DEPC
- dietilpirocarbonato
- DMA
- dimetilacetamidina
- (D_{6})DMSO
- dimetilsulfóxido, 6 veces deuterado
- DMF
- dimetilformamida
- ADN
- ácido desoxirribonucleico
- Dmt
- 4,4'-dimetoxitritilo (4,4'-dimetoxitrifenilmetilo)
- EDTA
- etilendiamintetraacetato
- EtOAc
- acetato de etilo
- Et_{3}N
- trietilamina
- CF
- cromatografía flash
- G
- entalpía libre
- exp.
- experimental
- sec.
- secado
- h
- hora
- H
- entalpía de la formación en dúplex
- HPLC
- cromatografía líquida de alta presión
- Hip.
- hipocromicidad
- I
- inosina
- ibu
- isobuturilo
- J
- constante de acoplamiento
- K_{m}
- constante de Michaelis-Menten
- RMN
- resonancia magnética nuclear
- PAGE
- electroforesis en gel de poliacrilamida
- PCR
- reacción de polimerasa en cadena
- ppm
- partes por millón
- 2-PrOH
- isopropanol
- R_{f}
- retención en la CCD respecto del frente de eluyente
- ARN
- ácido ribonucleico
- RP
- fase inversa
- TA
- temperatura ambiente
- s
- singulete
- S
- entropía de la formación en dúplex
- Pf
- punto de fusión
- SVPD
- fosfodiesterasa de veneno de víbora
- t
- triplete
- TBAF
- fluoruro de tetrabutilamonio
- TBK
- bicarbonato de trietilamonio
- TEP
- fosfonato de trietilamonio
- Tms
- tris (1-metiletil)sililo
- Tris
- tris(hidroximetil)aminometano
- T_{m}
- temperatura de fusión en oligómeros
- U
- uridina
- UV
- ultravioleta
- v_{máx}
- velocidad máxima de reacción
- z^{8}A
- 8-azaadenosina
- z^{8}G
- 8-aza-2'-desoxiguanosina
- \lambda
- longitud de onda
- \varepsilon
- coeficiente molar de extinción.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: Hoechst Aktiengesellschaft
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: -
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- LUGAR: Francfurt del Meno
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ESTADO FEDERADO: -
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: Alemania
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL: 65926
\vskip0.500000\baselineskip
- (G)
- TELÉFONO: 069-305-6031
\vskip0.500000\baselineskip
- (H)
- TELEFAX: 069-35 7175
\vskip0.500000\baselineskip
- (I)
- TELEX: 41234700 hod
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA SOLICITUD: Oligonucleótidos modificados, su preparación, así como su uso
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- CANTIDAD DE SECUENCIAS: 30
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- FORMA LEGIBLE POR COMPUTADORA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- SOPORTE DE DATOS: Disquete
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- COMPUTADORA: IBM compatible con PC
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: PatentIn Release #1.0, Versión #1,25 (EPA)
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 1:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipACACCCAATT CTGAAAATGG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 2:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAGGTCCCTGT TCGGGGCGCCA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 28 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..28
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 3:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTCGACACCC AATTCTGAAA ATGGATAA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 25 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..25
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 4:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTATGTCGA CACCCAATTC TGAAA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 5:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 31 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..31
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 5:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTCGTCGCTGT CTCCGCTTCT TCTTCCTGCC A
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 6:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 31 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..31
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 6:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTGTCTCCGC TTCTTCTTCC TGCCATAGGA G
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 7:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: VIH-1
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 7:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCGGGGCTCC ATGGGGGTCG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 8:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..15
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-Ha-ras"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 8:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCAGCTGCAAC CCAGC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 9:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..21
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-myc"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 9:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGCTGCTGGA GCGGGGCACA C
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 10:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..15
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-myc"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 10:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAACGTTGAGG GGCAT
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 11:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 15 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..15
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-myb"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 11:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCACGTTGAGG GGCAT
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 12:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-myb"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 12:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTGCCGGGGT CTTCGGGC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 13:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: ratón
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-myb"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 13:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTGTCGGGGT CTCCGGGC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 14:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..21
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-fos"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 14:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGAGAACATC ATGGTCGAAA G
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 15:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 22 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..22
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-fos"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 15:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCCCGAGAACA TCATGGTCGA AG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 16:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "c-fos"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 16:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGGGAAAGCC CGGCAAGGGG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 17:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "p-120"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 17:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCACCCGCCTT GGCCTCCCAC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 18:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "receptor EGF"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 18:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGGACTCCGG CGCAGCGC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 19:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "receptor EGF"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 19:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGCAAACTTT CTTTTCCTCC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 20:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 19 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..19
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "supersor tumoral p53"
\newpage
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 20:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGGAAGGAGG AGGATGAGG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 21:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..21
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "supresor tumoral p53"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 21:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGCAGTCATC CAGCTTCGGA G
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 22:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "cdc2-quinasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 22:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTCTTCCATA GTTACTCA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 23:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "PCNA (antígeno nuclear de células proliferativas)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 23:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGATCAGGCGT GCCTCAAA
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 24:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 18 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..18
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "VLA-4"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 24:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCAGTAAGCA TCCATATC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 25:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "ICAM"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 25:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCCCCCACCAC TTCCCCTCTC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 26:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 20 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..20
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "ICAM"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 26:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTCCCCCACC ACTTCCCCTC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 27:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 19 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..19
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "ICAM"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 27:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGCTGGGAGCC ATAGCGAGG
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 28:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 21 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..21
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "ELAM-1"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 28:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipACTGCTGCCT CTTGTCTCAG G
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 29:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 22 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: NO
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (vi)
- PRIMER ORIGEN:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- ORGANISMO: humano
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: exon
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..22
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "ELAM-1"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 29:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCAATCAATGA CTTCAAGAGT TC
\hfill
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN ACERCA DE LA SEQ ID NO: 30:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 12 pares de bases
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- FORMA DE CADENA: monocatenario
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNS (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- HIPOTÉTICO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- ANTISENTIDO: SÍ
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: -
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- UBICACIÓN: 1..12
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTROS DATOS: / nota= "N = 8-azaguanina"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEQ ID NO: 30:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTANAATTCT AG
\hfill
Claims (16)
1. Oligonucleótido de la fórmula I
así como sus sales fisiológicamente
tolerables, en la que
significan
- R^{1}
- hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{18}, alquenilo C_{2}-C_{18}, alquinilo C_{2}-C_{18}, alquilcarbonilo C_{2}-C_{18}, alquenilcarbonilo C_{3}-C_{19}, alquinilcarbonilo C_{3}-C_{19}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), un grupo protector usual en la química de los nucleótidos o un radical de la fórmula IIa
(IIa)Z ---
\melm{\delm{\dpara}{W}}{P}{\para}--- Z'
- R^{1a}
- hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{18}, alquenilo C_{2}-C_{18}, alquinilo C_{2}-C_{18}, alquilcarbonilo C_{2}-C_{18}, alquenilcarbonilo C_{3}-C_{19}, alquinilcarbonilo C_{3}-C_{19}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}) o un radical de la fórmula IIb
(IIb)Z ---
\melm{\delm{\dpara}{W}}{P}{\para}--- X
- R^{2}
- hidrógeno, hidroxi, alcoxi C_{1}-C_{18}, alqueniloxi C_{1}-C_{6}, halógeno, azido o -NH_{2};
- a
- oxi o metileno;
- n
- un número entero de 3 a 99;
- W
- oxo, tioxo o selenoxo;
- V
- oxi, sulfandiílo o imino;
- Y
- oxi, sulfandiílo, imino o metileno;
- Y'
- oxi, sulfandiílo, imino, (CH_{2})_{m} o V(CH_{2})_{m}, en donde significan
- m
- un número entero de 1 a 18;
- X
- hidroxi o mercapto;
- U
- hidroxi, mercapto, SeH, alcoxi C_{1}-C_{8}, alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), NHR^{3}, NR^{3}R^{4} o un radical de la fórmula III
(III),(OCH_{2}CH_{2})_{p}O(CH_{2})_{q}CH_{2}R^{5}
en la que
significan
- R^{3}
- alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), 2-(CH_{2})_{c}-[NH(CH_{2})_{c}]_{d}-NR^{6}R^{6}, en donde c es un número entero de 2 a 6 y d es un número entero de 0 a 6, y R^{6} es, de modo independiente entre sí, hidrógeno o alquilo C_{1}-C_{6} o alcoxi C_{1}-C_{4}-alquilo C_{1}-C_{6};
- R^{4}
- alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20} o aril (C_{6}-C_{10})-alquilo (C_{1}-C_{8}) o, en el caso de NR^{3}R^{4} junto con R^{3} y el átomo de nitrógeno que llevan, un anillo heterocíclico de 5-6 miembros que adicionalmente puede contener otro heteroátomo de la serie de O, S, N,
- p
- un número entero de 1 a 100,
- q
- un número entero de 0 a 22,
- R^{5}
- hidrógeno o hidroxi, amino, alquilamino C_{1}-C_{18}, COOH, CONH_{2}, COO-alquilo (C_{1}-C_{4}) o halógeno;
Z y Z' de modo independiente entre
sí,
- \quad
- hidroxi, mercapto, SeH, alcoxi C_{1}-C_{22}, -O-(CH_{2})_{b}-NR^{6}R^{7}, en donde b es un número entero de 1 a 6, y R^{7} es alquilo C_{1}-C_{6} o R^{6} y R^{7} junto con el átomo de nitrógeno que llevan forman un anillo de 3-6 miembros, alquilo C_{1}-C_{18}, arilo C_{6}-C_{20}, aril (C_{6}-C_{14})-alquilo (C_{1}-C_{8}), aril (C_{6}-C_{14})-alcoxi (C_{1}-C_{8}), en donde arilo también significa heteroarilo y arilo está eventualmente sustituido con 1, 2 ó 3 radicales iguales o diferentes de la serie de carboxi, amino, nitro, alquilamino C_{1}-C_{4}, alcoxi C_{1}-C_{6}, hidroxi, halógeno y ciano, alquilmercapto C_{1}-C_{18}, NHR^{3}, NR^{3}R^{4}, un radical de la fórmula III o un grupo que
a) favorece la absorción intracelular, es decir,
radicales lipofílicos tales como
-O-(CH_{2})_{x}-CH_{3}, en donde x es
un número entero de 6 a 18,
-O-(CH_{2})_{n}-CH=CH-(CH_{2})_{m}-CH_{3},
en donde n y m son, de modo independiente entre sí, un número entero
de 6 a 12,
-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{4}-(CH_{2})_{9}-CH_{3},
O-(CH_{2}CH_{2}O)_{8}-(CH_{2})_{13}-CH_{3}
y
-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{7}-(CH_{2})_{15}-CH_{3},
radicales esteroides tales como colesterilo o radicales de vitaminas
tales como vitamina E, vitamina A o vitamina D y otros conjugados
que aprovechan los sistemas de portadores naturales tales como ácido
biliar, ácido fólico, 2-(N-alquil,
N-alcoxi)-aminoantraquinona y
conjugados de manosa y péptidos de los correspondientes receptores
que llevan a la endocitosis de los oligonucleótidos mediada por
receptores como EGF (factor de crecimiento epidérmico), bradiquinina
y PDGF (factor de crecimiento plaquetario), o
b) sirve como marcación de una sonda de ADN, es
decir, grupos fluorescentes, por ejemplo de
dansil-(=N-dimetil-1-aminonaftil-5-sulfonil-),
derivados de fluoresceína o cumarina o grupos quimioluminiscentes,
preferentemente derivados de acridina, el sistema de digoxigenina,
el grupo biotina o también brazos de ligadores con grupos
funcionales que permiten una derivación posterior con grupos
informantes detectables, preferentemente un ligador de aminoalquilo
que se hace reaccionar con un éster activado de acridinio para la
prueba de quimioluminiscencia, o
c) en la hibridación del análogo de
oligonucleótido en el ácido nucleico blanco lo ataca bajo unión,
reticulación con enlaces cruzados o separación, es decir, conjugados
de acridina, psoraleno, fenantridina, naftoquinona, daunomicina o
cloroetilaminoarilo,
en donde cada nucleótido puede estar presente en
su configuración D o L y la base B se puede hallar en posición
\alpha o \beta, en donde B es, de modo independiente entre sí,
una base usual en la química de los nucleótidos, en donde al menos
una B significa una base de la fórmula IV
en la que E y F significan, de modo
independiente entre sí, H, OH o
NH_{2}.
2. Oligonucleótido de acuerdo con la
reivindicación 1, caracterizado porque la base B se halla en
posición \beta, los nucleótidos están en la configuración D,
R^{2} se halla en la posición 2' y a es oxi.
3. Oligonucleótido de acuerdo con la
reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque
- R^{1}
- es hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{6} o un radical de la fórmula IIa;
- R^{1a}
- es hidrógeno, alquilo C_{1}-C_{6} o un radical de la fórmula IIb;
- R^{2}
- es hidrógeno, alcoxi C_{1}-C_{6}, alqueniloxi C_{1}-C_{6} o hidroxi;
- n
- es un número entero de 4 a 39;
- m
- es un número entero de 1 a 6;
- U
- es hidroxi, mercapto, alcoxi C_{1}-C_{6}, alquilo C_{1}-C_{6}, NR^{3}R^{4} o NHR^{3}, en donde
- R^{3}
- es alquilo C_{1}-C_{8} o metoxietilo;
- \quad
- y B, W, V, Y, Y', X y Z tienen el significado mencionado en la reivindicación 1.
4. Oligonucleótido de acuerdo con una o varias de
las reivindicaciones 1, 2 ó 3, caracterizado porque V, Y e Y'
tienen el significado de oxi, sulfandiílo o imino.
5. Oligonucleótido de acuerdo con una o varias de
las reivindicaciones 1-4, caracterizado
porque W tiene el significado de oxo o tioxo.
6. Oligonucleótido de acuerdo con una o varias de
las reivindicaciones 1-5, caracterizado
porque U tiene el significado de hidroxi, metilo o mercapto.
7. Oligonucleótido de acuerdo con una o varias de
las reivindicaciones 1-6, caracterizado
porque R^{1} y/o R^{1a} son hidrógeno.
8. Procedimiento para la preparación de
oligonucleótidos de la fórmula I, así como sus sales
fisiológicamente tolerables de acuerdo con una de las
reivindicaciones 1-7, caracterizado porque se
condensa sucesivamente un nucleótido con una nucleobase en un
portador derivado correspondiente o una cadena oligomérica
creciente.
9. Uso de los oligonucleótidos de acuerdo con una
de las reivindicaciones 1-7 para la preparación de
un medicamento o agente de diagnóstico.
10. Procedimiento para la preparación de un
medicamento o agente de diagnóstico, caracterizado porque se
mezcla al menos un oligonucleótido de acuerdo con una de las
reivindicaciones 1-7 con un portador
fisiológicamente aceptable, así como eventualmente aditivos y/o
coadyuvantes apropiados.
11. Medicamento o agente de diagnóstico, que
contiene uno o varios compuestos de acuerdo con una de las
reivindicaciones 1-7, eventualmente junto con
portadores y/o coadyuvantes fisiológicamente aceptables.
12. Monómero de nucleótidos de la fórmula V
en la que Y y R^{2} se definen
como en la reivindicación
1;
- V
- es oxi, sulfandiílo o imino;
- a
- es oxi o metileno;
- R^{1}
- es un grupo protector usual en la química de los nucleótidos;
- R^{1b}
- es un radical de la fórmula IIc o IId
U ---
\uelm{P}{\para}--- Q
\hskip1cm(IIc)
\hskip3cmO
\biequal
\melm{\delm{\para}{H}}{P}{\para}--- O^{\ominus}
\hskip1cm(IId)
en las que
significan
- U
- O-R^{7} o S-R^{7};
- Q
- un radical -NR^{8}R^{9};
- R^{7}
- -(CH_{2})_{2}-CN;
R^{8} y R^{9} son iguales o
diferentes y son alquilo C_{1}-C_{6}, en
especial isopropilo o etilo o, juntos con el átomo de nitrógeno que
llevan, significan un anillo heterocíclico de 5-9
miembros que adicionalmente puede contener otro heteroátomo de la
serie de O, S, N, en
especial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
E' y F' son, de modo independiente
entre sí, H, OH o
NR^{10}R^{11};
R^{10} y R^{11} son iguales o
diferentes y son hidrógeno o un grupo protector de amino usual en la
química de los nucleótidos o R^{10} y R^{11} forman juntos un
grupo protector de amino usual en la química de los
nucleótidos;
- R^{12}
- es un grupo protector de hidroxilo usual en la química de los nucleótidos.
13. Procedimiento para la preparación de un
monómero de nucleótidos de la fórmula V de acuerdo con la
reivindicación 12, caracterizado porque los correspondientes
monómeros de nucleósidos de la fórmula V se convierten, después de
la introducción de grupos protectores de amino o grupos protectores
de hidroxilo apropiados, en los correspondientes derivados de
fosfonato o fosforamidita.
14. Uso de un monómero de nucleótidos de acuerdo
con la reivindicación 12 para la preparación de oligonucleótidos,
que forman híbridos estables junto con sus ácidos nucleicos
blanco.
15. Compuesto de la fórmula VI
\vskip1.000000\baselineskip
en la que, de modo independiente
entre
sí,
U' = U'' = U''' es igual a
hidroxilo o
mercapto;
e y f son 0 ó
1;
- R^{13}
- es hidrógeno u OH y
E y F son H, OH o
NH_{2},
en donde se excluyen compuestos de
la fórmula VI, en los
que
U', U'', U''', R^{13} y F
significan OH, E es igual a NH_{2} y e y f significan
1.
16. Uso de un oligonucleótido de la fórmula I de
acuerdo con una o varias de las reivindicaciones 1-7
como cebadores en el diagnóstico del ADN.
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