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WO2017170230A1 - バイオセンサ及びバイオチップ - Google Patents

バイオセンサ及びバイオチップ Download PDF

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Publication number
WO2017170230A1
WO2017170230A1 PCT/JP2017/012027 JP2017012027W WO2017170230A1 WO 2017170230 A1 WO2017170230 A1 WO 2017170230A1 JP 2017012027 W JP2017012027 W JP 2017012027W WO 2017170230 A1 WO2017170230 A1 WO 2017170230A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
region
protective film
film
group
biosensor
Prior art date
Application number
PCT/JP2017/012027
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
進 原谷
祥生 坪池
北川　寿美子
菊川　隆
春希 柚賀
Original Assignee
Tdk株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tdk株式会社 filed Critical Tdk株式会社
Priority to CN201780019868.8A priority Critical patent/CN108780067A/zh
Priority to US16/089,122 priority patent/US10948395B2/en
Priority to JP2018509243A priority patent/JPWO2017170230A1/ja
Publication of WO2017170230A1 publication Critical patent/WO2017170230A1/ja

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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
    • G01N15/06—Investigating concentration of particle suspensions
    • G01N15/0656—Investigating concentration of particle suspensions using electric, e.g. electrostatic methods or magnetic methods
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
    • G01N15/06—Investigating concentration of particle suspensions
    • G01N15/0606—Investigating concentration of particle suspensions by collecting particles on a support
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/72—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating magnetic variables
    • G01N27/74—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating magnetic variables of fluids
    • G01N27/745—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating magnetic variables of fluids for detecting magnetic beads used in biochemical assays
    • G—PHYSICS
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    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54386—Analytical elements
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
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    • G01N15/00—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials
    • G01N15/01—Investigating characteristics of particles; Investigating permeability, pore-volume or surface-area of porous materials specially adapted for biological cells, e.g. blood cells

Definitions

  • the present invention relates to a biosensor and a biochip.
  • This application claims priority based on Japanese Patent Application No. 2016-063490 filed in Japan on March 28, 2016 and Japanese Patent Application No. 2016-104468 filed on Japan on May 25, 2016. , The contents of which are incorporated herein.
  • a magnetoresistive effect element such as a giant magnetoresistive effect (GMR) element, a magnetic tunnel junction (TMR) element, or an anisotropic magnetoresistive effect (AMR) is often used (see, for example, Patent Document 1).
  • GMR giant magnetoresistive effect
  • TMR magnetic tunnel junction
  • AMR anisotropic magnetoresistive effect
  • a magnetoresistive element is an element in which a resistance value output according to an input magnetic field changes, and a change in the detected magnetic field can be measured based on the output resistance value.
  • FIG. 5 and 6 are diagrams illustrating a conventional biosensor 500.
  • the biosensor 500 includes a substrate 101, a magnetoresistive effect element 102, a protective film 107, and a biomolecule capturing layer 109 that captures a target biomolecule in this order.
  • the biomolecule in the sample is captured by the biomolecule capturing layer 109, and the magnetic beads having affinity for the biomolecule are captured on the biomolecule capturing layer 109 via the biomolecule, and then the magnetic field is turned sideways.
  • a stray magnetic field 111 is generated from the magnetic beads 104, and the stray magnetic field 111 is input to the magnetoresistive effect element 102.
  • FIG. 6 is a diagram showing details of a conventional magnetoresistive element 102 used in the conventional biosensor 500. As shown in FIG. 6, the magnetoresistive effect element 102 has a set of three meander structures.
  • the application direction of the external magnetic field coincides with the magnetosensitive direction of the magnetoresistive effect element 102, so that the external magnetic field is increased in order to increase the stray magnetic field 111 from the magnetic beads 104.
  • the applied magnetic field 105 is increased, the magnetization of the magnetosensitive layer of the magnetoresistive effect element is saturated, and a necessary output cannot be obtained.
  • the magnetic beads 104 are arranged on the magnetoresistive effect element 102 and a case where they are arranged between the magnetoresistive effect elements 102. Due to the difference in arrangement, that is, the output fluctuates depending on the relative position between the magnetoresistive effect element 102 and the magnetic bead 104, the measured value of the number or concentration of the magnetic beads varies, and sufficient accuracy cannot be obtained. There was a problem.
  • the present inventors have developed a biosensor capable of calculating the number of biomolecules contained in a sample and ensuring the quantification of the biomolecules in the sample with high accuracy and high sensitivity. did.
  • FIG. 7 is a graph showing the result of simulating the GMR output according to the position of the magnetic bead from the measured values of the GMR output at the points P, Q, R, and S in the biosensor developed by the present inventors and the position of the magnetic bead. It is sectional drawing of the biosensor showing a certain P, Q, R, S point.
  • reference numeral 10 is a biosensor
  • reference numeral 2 is a magnetoresistive effect element
  • reference numeral 3 is a soft magnetic thin film
  • reference numeral 4 is a magnetic bead.
  • the GMR output fluctuates depending on the position of the magnetic beads on the biosensor developed by the present inventors.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and provides a biosensor that can detect a biomolecule in a sample with high accuracy and high sensitivity while suppressing fluctuations in GMR output.
  • the biosensor according to the first aspect of the present invention is a biosensor for detecting a biomolecule in a sample, and includes a first region and a second region disposed adjacent to the first region.
  • a substrate having a surface on which a region is formed, a magnetoresistive element disposed on the first region and having a resistance value that is detected according to an input magnetic field;
  • the soft magnetic thin film disposed on the second region, and the soft magnetic thin film disposed on both the first region and the second region, covering the surface of the soft magnetic thin film, and the second
  • a protective film having an affinity substance that recognizes the biomolecule on the outer surface only on the second region, and disposed on the uppermost portion at least on the first region;
  • An MR cover film disposed on the protective film above the magnetoresistive element and substantially free of the affinity substance, wherein the soft magnetic thin film is integrated on the soft magnetic thin film
  • the in-plane direction component of the stray magnetic field of the magnetic beads is transmitted to the magnetoresistive element, and the protective
  • the biosensor according to the above aspect may further include a substance that suppresses nonspecific adsorption of the biomolecule on the outer surface of the MR cover film.
  • the material constituting the protective film may be a noble metal, and the material constituting the MR cover film may be an oxide.
  • the material constituting the protective film may be an oxide, and the material constituting the MR cover film may be a noble metal.
  • the noble metal may be at least one selected from the group consisting of gold, silver, platinum, rhodium, ruthenium and palladium.
  • the oxide may be at least one selected from the group consisting of alumina, silica, titanium oxide, zirconium oxide, indium oxide, tartar oxide, zinc oxide, gallium oxide, and tin oxide.
  • the substance that suppresses nonspecific adsorption may have at least one selected from the group consisting of a thiol group, an isothiocyanate group, and a disulfide group.
  • the substance that suppresses nonspecific adsorption may have at least one of an alkoxysilane group and a phosphonic acid group.
  • the protective film may be composed of a plurality of films.
  • the MR cover film may be disposed in any of the first region and the second region on a film other than the uppermost film among the plurality of films constituting the protective film.
  • the MR cover film may be disposed only in the first region on a film other than the uppermost film among the plurality of films constituting the protective film.
  • a biochip according to the second aspect of the present invention includes the biosensor according to the first aspect.
  • Biosensor A biosensor includes a substrate, a magnetoresistive element, a protective film, and an MR cover film.
  • the substrate has a surface on which a first region and a second region disposed adjacent to the first region are formed.
  • the magnetoresistive effect element is arranged on the first region, and is configured such that a detected resistance value is changed according to an input magnetic field.
  • the soft magnetic thin film is disposed on the second region, and is configured to transmit the in-plane direction component of the stray magnetic field of the magnetic beads integrated on the soft magnetic thin film to the magnetoresistive element. Has been.
  • the protective film is disposed on both the first region and the second region, covers the surface of the soft magnetic thin film, and is disposed on the uppermost portion of the second region, and
  • the affinity substance that recognizes the biomolecule is provided on the outer surface only on the region of 2.
  • the MR cover film is disposed on the uppermost portion at least on the first region, is disposed on the protective film above the magnetoresistive effect element, and does not substantially include the affinity substance.
  • the protective film and the MR cover film are made of different materials.
  • biosensor refers to biological materials (naturally-derived) such as enzymes, antigens, antibodies, and nucleic acids (including not only DNA and RNA, but also artificial nucleic acids such as LNA). Or a chemically synthesized sensor).
  • MR cover film means a film for protecting a magnetoresistive effect device (Magneto Resistive effect Device).
  • the biosensor of the present embodiment includes an MR cover film that is substantially free of an affinity substance, thereby suppressing fluctuations in GMR output and detecting biomolecules in a sample with high accuracy and high sensitivity. .
  • substantially free of an affinity substance means that the substance does not contain an affinity substance at all, or, for example, when the affinity substance is adsorbed nonspecifically on the MR cover film, It means a state having an amount that cannot capture molecules.
  • FIG. 1 is a cross-sectional view schematically showing a biosensor according to the first embodiment of the present invention.
  • the first area, the second area, the first plane, the second plane, the third plane, and the fourth plane described below are virtual areas or planes, and members on the areas or planes. Introduced for convenience to define the positional relationship.
  • the first region and the second region exist alternately and repeatedly, and in the biosensor 100 shown in FIG. One of the two areas is extracted and shown.
  • the biosensor 100 of this embodiment detects a biomolecule in a sample.
  • the substrate 11 has a first region A and a second region B on its surface.
  • the magnetoresistive effect element 12 is disposed on the first region A, and the detected resistance value changes according to the input magnetic field.
  • the magnetic thin film 13 is disposed on the second region B.
  • the protective film 17 is disposed on both the first region A and the second region B, and covers the surface of the soft magnetic thin film 13.
  • the protective film 17 includes an affinity substance (first affinity substance) 19.
  • the affinity substance 19 recognizes a biomolecule on the outer surface only on the second region B.
  • the MR cover film 16 is disposed on the uppermost portion at least on the first region A, is disposed on the protective film 17 above the magnetoresistive effect element 12, and does not substantially include the affinity substance 19. Thereby, adsorption
  • the magnetic beads 14 include a second affinity substance (not shown) that recognizes a site different from the biomolecule recognition site of the first affinity substance 19.
  • the magnetic beads 14 are accumulated on the protective film 17 via the first affinity substance-biomolecule-second affinity substance complex, and a magnetic field (applied magnetic field) intersects the soft magnetic thin film 13.
  • the detection magnetic field 18 leakage magnetic field
  • a magnetoresistive effect element 12 is disposed on a first plane a that is spaced apart from the main surface of the substrate 11 and substantially parallel to the main surface of the substrate 11.
  • the soft magnetic thin film 13 is disposed on the second plane b located farther from the main surface of the substrate 11 than the first plane a. That is, in the present embodiment, the main surface of the magnetoresistive effect element 2 facing the substrate 11 and the main surface of the soft magnetic thin film 13 facing the substrate 1 are arranged at different positions in the normal direction to the substrate 11. Has been.
  • the surface of the soft magnetic thin film 13 is covered with a protective film 17, and the outer surface of the protective film 17 includes a first affinity substance 19 that captures a biomolecule to be detected.
  • the magnetic beads 14 also include a second affinity substance (not shown) that captures biomolecules.
  • the first affinity substance 19 and the second affinity substance recognize different sites in the biomolecule. That is, it is possible to form a first affinity substance-biomolecule-second affinity substance complex.
  • an unillustrated electrode terminal is arranged on a third plane (not shown) that is located farther from the main surface of the substrate 1 than the first plane and the second plane. The electrode terminal is connected to the magnetoresistive element 12 via an internal wiring (not shown).
  • FIG. 2 is a cross-sectional view schematically showing a biosensor according to a second embodiment of the present invention.
  • the same components as those shown in the already explained figures are given the same reference numerals as those in the already explained figures, and their detailed explanations are omitted.
  • the biosensor 200 is the same as the biosensor 100 shown in FIG. 1 except that the protective film is composed of a plurality of films. That is, in the biosensor 200, the second protective film 20 is laminated on one surface of the substrate 11. In addition, the magnetoresistive effect element 12 is disposed on the first plane a in the second protective film 20, and the soft magnetic thin film 13 is disposed on the second plane b in the second protective film 20. A second protective film 20 is laminated on the third plane c which is the surface of the soft magnetic thin film 13. Further, the protective film 17 is laminated on both the first region A and the second region B on the surface of the second protective film 20. Further, the MR cover film 16 is laminated on the surface of the protective film 17 on the first region A. In addition, the protective film 17 on the second region B includes an affinity substance 19 on the surface thereof. In other words, the second protective film 20 and the protective film 17 are laminated in this order on both the first region A and the second region B on the soft magnetic thin film 13.
  • the MR cover film does not substantially include the affinity substance 19, and the MR cover film 16, the protective film 17, and the second protective film 20 are made of different materials.
  • the biosensor 200 shown in FIG. 2 is used to detect biomolecules in a sample based on the same principle as the biosensor 100 shown in FIG.
  • FIG. 3 is a cross-sectional view schematically showing a biosensor according to a third embodiment of the present invention.
  • the biosensor 300 is the same as the biosensor 200 shown in FIG. 2 except that the MR cover layer is disposed on both the first region A and the second region B. That is, in the biosensor 300, the second protective film 20 is laminated on one surface of the substrate 11.
  • the magnetoresistive element 12 is disposed on the first plane a in the second protective film 20.
  • the soft magnetic thin film 13 is disposed on the second plane b in the second protective film 20.
  • a second protective film 20 is laminated on the third plane c which is the surface of the soft magnetic thin film 13.
  • the MR cover film 16 is laminated on both the first region A and the second region B on the surface of the second protective film 20.
  • a protective film 17 is laminated on the surface of the MR cover film 16 on the second region B.
  • the protective film 17 on the second region B includes an affinity substance 19 on the surface thereof. In other words, in the second region B, the MR cover film 16 is disposed between the second protective film 20 and the protective film 17.
  • the MR cover film does not substantially include the affinity substance 19, and the MR cover film 16, the protective film 17, and the second protective film 20 are made of different materials.
  • the biosensor 300 shown in FIG. 3 is used to detect biomolecules in a sample based on the same principle as the biosensor 100 shown in FIG.
  • FIG. 4 is a cross-sectional view schematically showing a biosensor according to a fourth embodiment of the present invention.
  • the biosensor 400 is the same as that shown in FIG. 2 except that the MR cover film 16 is disposed at the uppermost position on the first region A and the protective film 17 is disposed at the uppermost position on the second region B.
  • the second protective film 20 is laminated on one surface of the substrate 11.
  • the magnetoresistive element 12 is disposed on the first plane a in the second protective film 20.
  • the soft magnetic thin film 13 is disposed on the second plane b in the second protective film 20.
  • a second protective film 20 is laminated on the third plane c which is the surface of the soft magnetic thin film 13. Further, the MR cover film 16 is laminated on the surface of the second protective film 20 on the first region A. Further, the protective film 17 is laminated on the surface of the second protective film 20 on the second region B. In addition, the protective film 17 on the second region B includes an affinity substance 19 on the surface thereof. In other words, the MR cover film 16 is disposed on the uppermost portion in the first region A, and the protective film 17 is disposed on the uppermost portion in the second region.
  • the MR cover film 16 does not substantially include the affinity substance 19, and the MR cover film 16, the protective film 17, and the second protective film 20 are made of different materials.
  • the biosensor according to the present embodiment is not limited to the one shown in FIGS. 1 to 4, and within a range that does not impair the effect, a part of the configuration shown in FIGS. 1 to 4 is changed or deleted, Another configuration may be added to what has been described so far.
  • Substrates of the material of the substrate include semiconductors and conductors such as silicon and AlTiC (Altic), and insulators such as alumina and glass, and the form is not particularly limited. .
  • the thickness of the substrate is not particularly limited, but may be, for example, 400 ⁇ m or more and 2000 ⁇ m or less. When the thickness of the substrate is within such a range, it is possible to obtain a biosensor that has an appropriate strength and is reduced in thickness and weight.
  • the thickness of the substrate means the thickness of the entire substrate.
  • the thickness of the substrate composed of a plurality of layers means the total thickness of all the layers constituting the substrate.
  • the magnetoresistive effect element is a type of element including a magnetization fixed layer having a magnetization direction fixed in a certain direction in a laminated surface, and a magnetization free layer whose magnetization direction changes according to an external magnetic field. preferable.
  • the magnetization fixed direction of the magnetization fixed layer is substantially parallel or substantially antiparallel to a leakage magnetic field that is a magnetic field input from an end face of the soft magnetic thin film, and the magnetoresistive effect The direction of the film surface of the element is preferable.
  • the term “substantially parallel” or “anti-parallel” may be approximately parallel or anti-parallel, and may be shifted within a range of 0.1 ° to 10 °.
  • the magnetoresistive effect element includes a magnetization fixed layer, an intermediate layer made of a non-magnetic conductor or insulator, and a magnetization free layer, and the stacked body sandwiching the intermediate layer between the magnetization fixed layer and the magnetization free layer It is more preferable to have.
  • the magnetoresistive effect element When the intermediate layer is a non-magnetic conductor, the magnetoresistive effect element is generally called a GMR (giant magnetoresistive effect element), and when it is an insulator, it is called a TMR (tunnel magnetoresistive effect element).
  • GMR giant magnetoresistive effect element
  • TMR tunnel magnetoresistive effect element
  • the resistance of the magnetoresistive element changes according to the angle between the magnetization direction of the magnetization fixed layer and the average magnetization direction of the magnetization free layer.
  • the magnetization direction of the magnetization fixed layer is defined as a magnetosensitive direction.
  • the magnetization free layer is composed of a soft magnetic film such as NiFe, for example.
  • the intermediate layer is made of, for example, a conductor film such as Cu or an insulator film such as alumina-magnesium oxide.
  • the magnetization fixed layer includes an antiferromagnetic film and a magnetization fixed film, and the magnetization fixed film is in contact with the intermediate layer.
  • the antiferromagnetic film is made of, for example, an antiferromagnetic Mn alloy such as IrMn or PtMn.
  • the magnetization fixed film may be made of a ferromagnetic material such as CoFe or NiFe, or may have a structure in which a thin film layer of Ru is sandwiched between CoFe and the like.
  • the soft magnetic thin film has the following two functions. (1) The direction of a magnetic field (applied magnetic field) applied in a substantially normal direction of the laminated surface is changed, and a leakage magnetic field (detected magnetic field) is applied to the end of the laminated surface of the soft magnetic thin film as a magnetic sensitive direction of the magnetoresistive effect element. Function to generate the magnetic field component of (2) A function of transmitting the in-plane direction component of the stray magnetic field of the magnetic beads integrated on the soft magnetic thin film to the magnetoresistive element.
  • the soft magnetic thin film is preferably disposed on the same straight line along the magnetization fixed direction of the magnetoresistive effect element 2 when viewed from the direction of application of the magnetic field applied to the soft magnetic thin film.
  • the projection surface in the normal direction of the main surface of the substrate of the soft magnetic thin film is close to the projection surface in the normal direction of the main surface of the substrate of the magnetoresistive effect element. Moreover, you may overlap partially.
  • permalloy is preferable as the soft magnetic thin film.
  • the size of the soft magnetic thin film is appropriately selected depending on the number and size of the magnetic beads to be captured, but is preferably 0.1 ⁇ m or more and 1000 ⁇ m or less, more preferably 0.5 ⁇ m or more and 500 ⁇ m or less, and more preferably 50 ⁇ m or more and 200 ⁇ m. The following four are particularly preferred.
  • the thickness of the soft magnetic thin film is preferably 0.01 ⁇ m or more and 100 ⁇ m or less, more preferably 0.1 ⁇ m or more and 50 ⁇ m or less, and particularly preferably 0.5 ⁇ m or more and 5 ⁇ m or less.
  • the magnetic beads are not particularly limited as long as they are magnetic particles, and examples thereof include iron oxide particles.
  • the diameter of the magnetic beads depends on the area of the protective film, but is preferably 0.01 ⁇ m or more and 100 ⁇ m or less, more preferably 0.05 ⁇ m or more and 50 ⁇ m or less, and particularly preferably 0.1 ⁇ m or more and 5 ⁇ m or less.
  • the magnetic bead includes a second affinity substance that specifically binds to the biomolecule, and captures the biomolecule via the second affinity substance.
  • the magnetic beads may be ones to which a second affinity substance is added by a coating process or the like, or may be composed of the second affinity substance itself.
  • the surface of the magnetic beads is preferably coated with a polymer or silica matrix depending on the biomolecule to be captured.
  • the surface of the magnetic bead is preferably hydrophilic.
  • the surface of the magnetic bead is preferably hydrophobic.
  • the protective film is not particularly limited as long as it can protect the soft magnetic thin film.
  • the material of the protective film include oxides such as alumina, silica, titanium oxide, zirconium oxide, indium oxide, tartar, zinc oxide, gallium oxide, and tin oxide; noble metals such as gold, silver, platinum, rhodium, ruthenium, and palladium.
  • An inorganic material such as aluminum nitride or silicon nitride, or an organic material such as polyimide.
  • the protective film may be composed of one layer (single layer) or may be composed of two or more layers. Moreover, when a protective film consists of multiple layers, these multiple layers may be the same or different from each other, and the combination of these multiple layers is not particularly limited.
  • the thickness of the protective film is preferably 1 nm or more and 1000 nm or less, more preferably 1 nm or more and 100 nm or less, and particularly preferably 1 nm or more and 15 nm or less.
  • thickness of the protective film means the thickness of the entire protective film.
  • the thickness of the protective film composed of a plurality of layers means the total thickness of all the layers constituting the protective film. means.
  • the outer surface of the protective film is a surface that comes into contact with a biomolecule in the sample.
  • the outer surface includes a first affinity substance that specifically binds to a biomolecule to be detected.
  • the magnetic beads also include a second affinity substance that specifically binds to the biomolecule.
  • biomolecules to be detected include nucleic acids (naturally-derived, chemical, etc.) such as DNA, mRNA, miRNA, siRNA, artificial nucleic acid (for example, LNA (Locked Nucleic Acid), BNA (Bridged Nucleic Acid)), and the like. Synthesized peptides); peptides such as ligands, cytokines, hormones; proteins such as receptors, enzymes, antigens, antibodies; cells, viruses, bacteria, fungi and the like.
  • Samples containing biomolecules to be detected include blood, serum, plasma, urine, puffy coat, saliva, semen, chest exudate, cerebrospinal fluid, tears, sputum, mucus, lymph, ascites, pleural effusion, amniotic fluid, bladder Examples include a washing solution, bronchoalveolar washing solution, cell extract, and cell culture supernatant.
  • the biomolecule to be detected may be a biomolecule to be detected complexed with another biomolecule, or a biomolecule to be detected converted to another biomolecule. Good.
  • RNA-DNA-biotin complex RNA-DNA-biotin complex
  • RNA-DNA-biotin complex By adding biotin to RNA by complexing, it becomes possible to specifically bind to streptavidin. Therefore, for example, by using RNA or DNA capable of hybridizing to RNA or DNA contained in the RNA-DNA-biotin complex as a first affinity substance, The RNA-DNA-biotin complex can be specifically detected by capturing on the biosensor of the embodiment and further using streptavidin as the second affinity substance.
  • Examples of the first affinity substance and the second affinity substance that specifically bind to a biomolecule include a nucleic acid complementary to the nucleic acid when the biomolecule to be detected is a nucleic acid.
  • the biomolecule to be detected is an antigen
  • an antibody having affinity for the antigen can be used.
  • the biomolecule to be detected is a primary antibody
  • an antigen having a affinity for the primary antibody and a secondary antibody can be mentioned.
  • the biomolecule to be detected is a cell, virus, bacterium, fungus, or the like, an antibody that recognizes an antigen presented on the surface thereof can be mentioned.
  • examples of the first affinity substance include a first nucleic acid complementary to the 10 ′ base at the 5 ′ end of the miRNA, and a second affinity.
  • examples of the sex substance include a second nucleic acid complementary to 10 bases at the 3 ′ end of this miRNA.
  • examples of the first affinity substance include a first antibody that recognizes the antigen protein, and the second affinity substance includes A second antibody that recognizes this antigen protein and has an epitope different from that of the first antibody can be mentioned.
  • the antibody can be produced, for example, by immunizing a rodent animal such as a mouse with a labeled peptide as an antigen. Further, for example, it can be prepared by screening a phage library.
  • the antibody may be an antibody fragment, and examples of the antibody fragment include Fv, Fab, scFv and the like.
  • a magnetic bead is bonded to a biomolecule fixed on the surface of the protective film.
  • the present invention is not limited to this, and a biomolecule to be detected is previously bonded to the magnetic bead.
  • the sample may be brought into contact with the surface of the protective film.
  • any conventional or future technology to be developed can be applied.
  • the biomolecules to be detected are indirectly detected. Any method may be used as long as it can be detected.
  • the affinity substance is immobilized via a silane coupling agent or a phosphonic acid derivative having a functional group capable of binding to the affinity substance.
  • the functional group is not particularly limited as long as it is a group capable of covalent bonding or non-covalent bonding with an affinity substance.
  • the functional group is chemically active (that is, the reactivity with the first affinity substance is increased). Activated groups), receptor groups, ligand groups and the like.
  • the affinity substance may be modified to allow covalent or non-covalent bonding with a functional group.
  • activated carboxyl derivative groups include activated carboxyl derivative groups, carboxyl groups, aldehyde groups, epoxy groups, vinyl sulfone groups, biotinyl groups, thiol groups, amino groups, isocyanate groups, isothiocyanate groups, hydroxyl groups, acrylate groups, Examples thereof include, but are not limited to, a maleimide group, a hydrazide group, an aminooxy group, an azide group, an amide group, a sulfonate group, avidin, streptavidin, and a metal chelate.
  • the affinity substances since many of the affinity substances generally have an amino group, an aldehyde group, an activated carboxyl derivative group, an epoxy group, and a vinyl sulfone group are preferable from the viewpoint of reactivity with the amino group.
  • a biotinyl group having a high binding constant is also preferred.
  • an activated carboxyl derivative group is preferable from the balance of reactivity with the amino group and storage stability.
  • an aminooxy group or a hydrazide group is preferable because of high reactivity.
  • Examples of the phosphonic acid derivative include alkylphosphonic acid, alkenylphosphonic acid, and phenylphosphonic acid.
  • Examples of the phosphonic acid derivative having a functional group include 2,5-dicarboxyphenylphosphonic acid, 3,5-dicarboxyphenylphosphonic acid, 2,5-bisphosphonoterephthalic acid, and the like.
  • silane coupling agent having a functional group examples include trimethoxysilylbenzoic acid, ⁇ -methacryloxypropyltrimethoxysilane, vinyltriacetoxysilane, vinyltrimethoxysilane, ⁇ -isocyanatopropyltriethoxysilane, ⁇ - Glycidoxypropyltrimethoxysilane, ⁇ - (3,4-epoxycyclohexyl) ethyltrimethoxysilane, tris- (3-trimethoxysilylpropyl) isocyanurate, methacryloxypropyldimethylmethoxysilane, methacryloxypropyldimethylethoxysilane, Methacryloxypropylmethyldimethoxysilane, methacryloxypropylmethyldiethoxysilane, methacryloxypropyltrimethoxysilane, methacryloxypropyltriethoxysilane, -Mercaptopropyltri
  • a more specific method for immobilizing an affinity substance on the surface of the protective film can be determined by a person skilled in the art according to a known method according to the type of the affinity substance. For example, a method in which a solution containing an affinity substance is brought into contact with the protective film together with a silane coupling agent or a phosphonic acid derivative having a functional group covalently bonded to the affinity substance, and the like.
  • a silane coupling agent or a phosphonic acid derivative having a functional group covalently bonded to the affinity substance and the like.
  • the material constituting the protective film is an oxide and an affinity substance having an amino group is immobilized via a silane coupling agent having a carboxyl group
  • the surface of the protective film has a first affinity.
  • the amino group of the affinity substance and the silane coupling by incubating for a predetermined time in contact with a solution obtained by mixing the active substance and the silane coupling agent with a general buffer solution having a pH of 7.0 or more and 10.0 or less. Fix the affinity substance on the outer surface of the protective film by reacting with the carboxyl group of the agent to form an amide bond and then reacting the silane coupling agent with the surface of the protective film to form an ether bond.
  • the buffer solution include a phosphate buffer solution and a Tris buffer solution.
  • the MR cover film is not particularly limited as long as it can protect the magnetoresistive effect element.
  • Examples of the material of the MR cover film include oxides such as alumina, silica, titanium oxide, zirconium oxide, indium oxide, tartar, zinc oxide, gallium oxide, and tin oxide; gold, silver, platinum, rhodium, ruthenium, palladium, and the like. Inorganic substances such as noble metals are listed.
  • the material constituting the MR cover film is preferably an oxide.
  • the material constituting the MR cover film is preferably a noble metal.
  • the materials constituting the protective film and the MR cover film are different from each other, and the combination described above allows the affinity substance to be selectively immobilized only on the protective film. Further, the MR cover layer is substantially free of an affinity substance, and nonspecific adsorption of biomolecules or magnetic beads to the MR cover film is suppressed. Therefore, fluctuations in GMR output are suppressed, and biomolecules in the sample can be detected with high accuracy and high sensitivity.
  • the MR cover film may be composed of one layer (single layer) or may be composed of two or more layers.
  • the MR cover layer includes a plurality of layers, the plurality of layers may be the same as or different from each other, and the combination of these layers is not particularly limited.
  • the thickness of the MR cover film is preferably 1 nm or more and 1000 nm or less, more preferably 1 nm or more and 100 nm or less, and particularly preferably 1 nm or more and 15 nm or less.
  • the thickness of the MR cover film means the thickness of the entire MR cover film.
  • the thickness of the MR cover film composed of a plurality of layers is the sum of all the layers constituting the MR cover film. Means the thickness.
  • the MR cover film preferably includes a substance that suppresses nonspecific adsorption of biomolecules (nonspecific adsorption suppressing substance) on the outer surface.
  • the MR cover film can more effectively suppress nonspecific adsorption of biomolecules or magnetic beads by including a nonspecific adsorption inhibiting substance.
  • non-specific adsorption inhibitor As a non-specific adsorption inhibitor, as long as it has an immobilization group on the MR cover film at the terminal and a bioaffinity group in the other terminal or compound, even if it is a monomer, It may be a polymer.
  • Examples of the immobilizing group include a thiol group, an isothiocyanate group, and a disulfide group when the material constituting the MR cover film is a noble metal.
  • examples of the immobilizing group include an alkoxysilane group and a phosphonic acid group when the material constituting the MR cover film is an oxide.
  • the bioaffinity group has an excellent non-specific adsorption suppressing effect.
  • the biocompatible group include a phosphorylcholine group, a (poly) alkylene glycol residue, and a sulfoalkylamino group.
  • a polymer compound having a bioaffinity group may be produced and used by polymerizing monomers having these bioaffinity groups.
  • the non-specific adsorption inhibiting substance is molecular self-assembled (MSA) to form a monomolecular film.
  • MSA molecular self-assembled
  • “molecular self-organization” means that a structure or structure is naturally built by a molecule itself without being controlled by an external factor.
  • the non-specific adsorption inhibiting substance uses weak intermolecular bonds such as van der Waals bonds, and the non-specific adsorption inhibiting substances are aligned and bonded to form a single molecular film (self-assembled).
  • Monolayers SAMs: Self-Assembled Monolayers
  • Examples of the monomer having a phosphorylcholine group include (meth) acryloyloxyalkylphosphorylcholines such as 2-methacryloyloxyethyl phosphorylcholine and 6-methacryloyloxyhexylphosphorylcholine; 2-methacryloyloxyethoxyethylphosphorylcholine and 10-methacryloyloxyethoxynonylphosphorylcholine (Meth) acryloyloxyalkoxyalkylphosphorylcholine such as alkenylphosphorylcholine such as allylphosphorylcholine, butenylphosphorylcholine, hexenylphosphorylcholine, octenylphosphorylcholine, decenylphosphorylcholine and the like.
  • the immobilization group may be introduced at the end opposite to the phosphocholine group.
  • alkylene glycol residue refers to an alkylene glycol (HO—R—OH, where R is an alkylene group) an alkylene group that remains after a hydroxyl group at one or both ends thereof undergoes a condensation reaction with another compound.
  • An oxy group (—R—O—, where R is an alkylene group).
  • the alkylene glycol residue in the case of methylene glycol (HO—CH 2 —OH) is a methyleneoxy group (—CH 2 —O—)
  • the glycol residue is an ethyleneoxy group (—CH 2 CH 2 —O—).
  • the “polyalkylene glycol residue” means a structure in which a plurality of alkyleneoxy groups are repeated.
  • Examples of the monomer having an alkylene glycol residue include methoxypolyethylene glycol (meth) acrylate, ethoxypolyethylene glycol (meth) acrylate, 2-hydroxyethyl (meth) acrylate and monosubstituted esters of the hydroxyl group thereof, 2-hydroxypropyl (Meth) acrylate and monosubstituted ester of hydroxyl group thereof, 2-hydroxybutyl (meth) acrylate and monosubstituted ester of hydroxyl group thereof, glycerol mono (meth) acrylate, (meth) acrylate having polypropylene glycol as a side chain, 2-methoxy Ethyl (meth) acrylate, 2-ethoxyethyl (meth) acrylate, methoxydiethylene glycol (meth) acrylate, ethoxydiethylene glycol (meth) acrylate, ethoxypoly Examples include ethylene glycol (meth) acrylate.
  • the average number of repeating alkylene glycol residues is preferably 5 or more and 90 or less. When the average number of repeating alkylene glycol residues is within the above range, the operability (handling) is excellent during synthesis.
  • the immobilizing group may be introduced at any terminal of the monomer having an alkylene glycol residue.
  • Examples of the monomer having a sulfoalkylamino group include N-methyl-N- (3-sulfopropyl) acrylamide, 3- (N, N-dimethylmyristylammonio) propanesulfonic acid (3- (N, N -Dimethylmyristylammonio) propanesulfonate, SB3-14, myristylsulfobetaine) and the like.
  • the immobilization group may be introduced at the end opposite to the sulfo group.
  • a known method may be used according to the type of immobilization to be introduced.
  • the immobilization group is a thiol group
  • at least one of hydrogen bonded to carbon to which the immobilization group is to be introduced is a halogen atom (for example, chlorine , Bromine, iodine, etc.) and then reacting with hydrogen sulfide in the presence of an alkali, a thiol group can be introduced.
  • the bioaffinity group may be introduced into the silane coupling agent or phosphocholine derivative exemplified in the above ⁇ Method for immobilizing an affinity substance in a protective film >> using a known method. Good.
  • examples of the non-specific adsorption-inhibiting substance of the present embodiment include 3-[(11-Mercaptoundecyl) -N, N-dimethylamino] propanesulfonate, which is a sulfobetaine type alkanethiol.
  • a method for immobilizing a non-specific adsorption inhibiting substance on the MR cover film surface for example, when the constituent material of the MR cover film is a noble metal, a non-specific compound having a thiol group, an isothiocyanate group or a disulfide group as an immobilizing group An adsorption inhibitor may be used, and the immobilization group and the noble metal surface form a thiolate bond, and the nonspecific adsorption inhibitor can be immobilized.
  • a nonspecific adsorption inhibitor having an alkoxysilane group or a phosphonic acid group as an immobilization group may be used, and the immobilization group and the oxide surface are ether. A bond can be formed and a non-specific adsorption inhibitor can be immobilized.
  • a more specific method for immobilizing a non-specific adsorption inhibiting substance on the surface of the MR cover film can be determined by a person skilled in the art according to a known method depending on the constituent material of the MR cover film. For example, a method of bringing a solution containing a nonspecific adsorption inhibiting substance into contact with the MR cover film can be used.
  • the material constituting the protective film is an oxide and the non-specific adsorption inhibiting substance having an alkoxysilane group is immobilized, the MR cover film surface has a non-specific adsorption inhibiting substance at pH 7.0 or higher.
  • a non-specific adsorption inhibitor By incubating for a predetermined time in contact with a solution mixed with a general buffer solution of 10.0 or less, a non-specific adsorption inhibitor can be immobilized on the MR cover layer surface via an ether bond.
  • the buffer solution include a phosphate buffer solution and a Tris buffer solution.
  • the electrode terminal is arranged on a fourth plane which is a plane different from the magnetoresistive effect element and the soft magnetic thin film. Further, the electrode terminal is connected to the magnetoresistive effect element via the internal wiring, and the resistance change of the magnetoresistive effect element can be taken out as an output.
  • a conductive metal such as Au, Al, Ag, or Cu, or an alloy thereof is preferable.
  • Insulating layer The magnetoresistive effect element, the soft magnetic thin film, and the electrode terminal are separated by an insulating layer, and an electrical short circuit between each part can be prevented.
  • the substrate is made of a conductive material
  • an insulating layer is formed on the main surface of the substrate, and an electrical short circuit via the substrate can be prevented.
  • the insulating layer for example, inorganic materials such as alumina, aluminum nitride, silicon oxide, and silicon nitride, and organic materials such as polyimide are preferable.
  • the detected magnetic field is magnetoresistive. It is input to the effect element.
  • the direction of the applied magnetic field is preferably perpendicular to the main surface of the magnetoresistive element. Although it does not specifically limit as an applied magnetic field, 0.1 m Tesla or more and 100 m Tesla or less are preferable, and 1 m Tesla or more and 10 m Tesla or less are more preferable.
  • the leakage magnetic field is preferably 1 n Tesla or more and 10 m Tesla or less, more preferably 10 ⁇ Tes or more and 5 m Tesla or less, and particularly preferably 50 ⁇ Tes or more and 1 m Tesla or less.
  • the detection magnetic field is affected by the proportion of the magnetic beads that occupy the main surface of the magnetoresistive effect element via the protective film.
  • the greater the number of magnetic beads integrated in the protective film the greater the detected resistance value.
  • the number of magnetic beads accumulated in the protective film and the resistance value detected through the leakage magnetic field are linearly correlated.
  • the total number of biomolecules accumulated on the protective film Can be calculated. That is, according to the biosensor of this embodiment, the number of biomolecules contained in the sample can be calculated.
  • the biosensor of this embodiment the quantitative property of the biomolecule in the sample can be ensured with high accuracy.
  • the biosensor of this embodiment is highly sensitive and can detect up to several tens of nanotesla. Specifically, 10 increases / decreases can be detected for 1500 magnetic beads. That is, a change of about 0.5% can be detected.
  • the biosensor of this embodiment uses magnetic beads, it has higher sensitivity and longer life than fluorescence. Therefore, it is far superior to detection means such as ELISA.
  • Biosensor manufacturing method The biosensor according to the present embodiment can be manufactured by sequentially stacking the above-described components using a known method so as to have a corresponding positional relationship.
  • the method for immobilizing the affinity substance in the protective film is as described in ⁇ Method for immobilizing the affinity substance in the protective film >>.
  • the immobilization method of the non-specific adsorption inhibiting substance in the MR cover film is as described in the above ⁇ immobilization method of non-specific adsorption inhibiting substance in the MR cover film >>.
  • the biosensor of the present embodiment can be used, for example, in the following method of detecting a biomolecule.
  • a sample containing a biomolecule is brought into contact with a protective film, and the biomolecule is accumulated on the protective film via the first affinity substance (step 1).
  • the magnetic beads are brought into contact with the protective film and accumulated on the protective film via the biomolecule (step 2).
  • a magnetic field is applied in a direction intersecting with the soft magnetic thin film, a detection magnetic field is input to the magnetoresistive element, and a resistance value is detected (step 3).
  • Step 1 is a step in which a sample containing a biomolecule is brought into contact with the protective film, and the biomolecule is accumulated on the protective film via the first affinity substance.
  • the biosensor is preferably used in a microfluidic device.
  • step 1 first, a sample containing a biomolecule is flowed into the microchannel.
  • the sample is not particularly limited as long as it contains a biomolecule to be detected.
  • the method for detecting a biomolecule of the present embodiment is used for diagnosis of a disease, the onset of the disease, the suspected onset of the disease, or the treatment for the disease
  • a sample derived from a subject such as a patient who has undergone treatment.
  • examples of the sample include those similar to those exemplified in the above-mentioned “ ⁇ protective film”.
  • the sample may be allowed to flow through the microchannel.
  • miRNA has been reported to be involved in the onset and progression of cancer, cardiovascular diseases, neurodegenerative diseases, psychiatric diseases, chronic inflammatory diseases and the like.
  • nucleic acids such as miRNA, genomic DNA, cDNA, total RNA, mRNA, and rRNA are to be detected, it is preferable to extract the nucleic acid from the biological sample.
  • the extraction method is appropriately selected from conventional methods depending on the type of nucleic acid.
  • the biomolecule in the sample flowing in the microchannel is captured by the first affinity substance on the protective film and accumulated on the protective film.
  • the first affinity substance include nucleic acids and antibodies as described above.
  • the biomolecule forms a complex with the first affinity substance on the protective film by hybridization, antigen-antibody reaction, or the like.
  • the protective film is preferably washed using a buffer solution or the like. By washing, impurities that are non-specifically bound on the protective film can be removed, and the detection accuracy of the biomolecule can be improved.
  • the buffer solution include a phosphate buffer solution and a Tris buffer solution.
  • Step 2 is a step in which the magnetic beads are brought into contact with the protective film and accumulated on the protective film via biomolecules.
  • the magnetic beads include a second affinity substance that captures biomolecules. For example, when the magnetic beads flow through the microchannel and come into contact with the protective film, the biomolecule in the first affinity substance-biomolecule complex formed on the protective film and the second affinity substance Join through.
  • a first affinity substance-biomolecule-second affinity substance complex is formed on the protective film. That is, the magnetic beads having the second affinity substance are accumulated on the protective film.
  • the protective film is preferably washed with a buffer solution or the like in the same manner as in Step 1. By washing, the magnetic beads that are non-specifically bound on the protective film can be removed, and the detection accuracy of biomolecules can be improved.
  • the buffer include those similar to those exemplified in [Step 1].
  • Step 3 is a step of detecting a resistance value by applying a magnetic field in a direction crossing the soft magnetic thin film and inputting a detected magnetic field to the magnetoresistive element.
  • the detection magnetic field (leakage magnetic field) is affected by the proportion of the magnetic beads that occupy the main surface of the magnetoresistive element through the protective film. The greater the number of magnetic beads integrated in the protective film, the greater the detected resistance value.
  • the number of magnetic beads accumulated on the protective film can be accurately quantified. Then, based on the titer of the second affinity substance that the magnetic beads have (for example, the number of biomolecules captured by the second affinity substance), the total number of biomolecules accumulated on the protective film Can be calculated.
  • the number of biomolecules contained in the sample can be calculated. Therefore, when there is a positive correlation between the number of biomolecules in the sample and the disease state, the disease state can be monitored by sequentially calculating the number of biomolecules in the sample. Thus, in the detection method of this embodiment, the quantitative property of the biomolecule in the sample can be ensured.
  • the biosensor may be used in the following biomolecule detection method.
  • a sample containing biomolecules and magnetic beads are mixed, and the biomolecules are captured by the magnetic beads via the second affinity substance (step 4).
  • the magnetic beads capturing the biomolecule are brought into contact with a protective film, and the magnetic beads are accumulated on the protective film via the biomolecule (step 5).
  • a magnetic field is applied in a direction intersecting with the soft magnetic thin film, a detection magnetic field is input to the magnetoresistive effect element, and a resistance value is detected (step 3).
  • Step 1 described above, except that when the first affinity substance-biomolecule-second affinity substance complex is formed, the biomolecule-second affinity substance complex is first formed. Since this is the same as the biomolecule detection method comprising [Step 3], description thereof is omitted.
  • Biochip The biosensor of this embodiment can be applied to a biochip.
  • the biochip of this embodiment can comprehensively analyze the properties of the sample by providing a plurality of biosensors having different first affinity substances on the protective film.
  • Examples of the biochip include a cancer diagnosis biochip, a cancer tumor diagnosis biochip, and an influenza virus detection biochip.
  • the first affinity substance provided on the protective film includes a nucleic acid complementary to a nucleic acid derived from an oncogene or a tumor suppressor gene.
  • a nucleic acid complementary to the nucleic acid containing the mutation is preferred.
  • Oncogenes include a gene group encoding a growth factor such as sis; a gene group encoding a receptor tyrosine kinase such as erbB, fms, ret; a gene group encoding a non-receptor tyrosine kinase such as ves; A gene group encoding a GTP / GDP-binding protein of Gr; a gene group encoding a serine / threonine kinase such as src, mos, raf; a gene group encoding a nuclear protein such as myc, myb, fos, jun, erbA; crk A group of genes encoding a signal transduction adapter molecule such as Bcr-Abl; Furthermore, as oncogenes, Ras-MAP kinase pathway-related genes such as Shc, Grb2, Sos, MEK, Rho, and Rac genes; phospholipase C gam
  • tumor suppressor genes include RB, p53, WT1, NF1, APC, VHL, NF2, p16, p19, BRCA1, BRCA2, PTEN, and E-cadherin gene.
  • the first affinity substance may be a substance that captures a protein that is a genetic product of the above-described gene, such as an antibody (including an antibody fragment), an aptamer, a ligand, or a receptor.
  • the first affinity substance provided on the protective film is a nucleic acid complementary to a plurality of nucleic acids extracted from one type of cancer. There may be. That is, the biochip of this embodiment may be a biochip for diagnosis by type of cancer.
  • the target cancer is not particularly limited.
  • breast cancer for example, invasive breast cancer, non-invasive breast cancer, inflammatory breast cancer, etc.
  • prostate cancer for example, hormone-dependent prostate) Cancer, hormone-independent prostate cancer, etc.
  • pancreatic cancer eg, pancreatic duct cancer, etc.
  • stomach cancer eg, papillary adenocarcinoma, mucinous adenocarcinoma, adenosquamous carcinoma, etc.
  • lung cancer eg, Non-small cell lung cancer, small cell lung cancer, malignant mesothelioma, etc.
  • colon cancer eg, gastrointestinal stromal tumor, etc.
  • rectal cancer eg, gastrointestinal stromal tumor, etc.
  • colon cancer eg, Familial colorectal cancer, hereditary nonpolyposis colorectal cancer, gastrointestinal stromal tumor, etc.
  • small intestine cancer eg, non-Hodgkin lymphoma, gastrointestinal strom
  • the sensitivity / resistance of an anticancer agent can be predicted.
  • gefitinib which is an EGFR inhibitor
  • these mutations showing resistance to gefitinib are detected more frequently as the stage progresses. Since the biochip of this embodiment can easily quantify the EGRF gene showing resistance mutation, according to the biochip of this embodiment, the degree of progression of cancer can also be examined.
  • a nucleic acid complementary to an influenza virus-derived nucleic acid or an influenza virus specifically binds. It may be a sugar chain. That is, the biochip of this embodiment may be an influenza virus detection biochip.
  • the biochip of this embodiment examples include those in which a nucleic acid that recognizes any mutation site including a reported mutation is immobilized on a protective film in each of the genomes of A type, B type, and C type. It is done.
  • the first affinity substance may be an antibody capable of specifically recognizing each of A-type, B-type, and C-type viruses.
  • influenza viruses are known to bind to sialic acid residues when infecting cells, and the type of binding between sialic acid and sugar that can be bound by the virus differs depending on the type of virus.
  • One affinity substance may be a sialic acid-containing sugar chain to which each of A-type, B-type, and C-type viruses binds.
  • sialic acid means a generic name for substances in which the amino group or hydroxy group of neuraminic acid, which is a 9-carbon sugar, is substituted. Examples thereof include N-acetylneuraminic acid (Neu5Ac) whose position is acetylated and N-glycolylneuraminic acid (Neu5Gc) modified with glycolic acid.
  • influenza virus infection can be detected early. Furthermore, by using the biochip of this embodiment over time, it is possible to observe the progress of the disease state after virus infection.

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Abstract

バイオセンサが、第１の領域、及び第１の領域に隣接して配設される第２の領域が形成される面を有する基板と、第１の領域上に配置され、入力される磁界に応じて検出される抵抗値が変化する磁気抵抗効果素子と、第２の領域上に配置された軟磁性体薄膜と、第１の領域上及び第２の領域上の両方に配置され、軟磁性体薄膜の表面を覆うと共に、第２の領域上において最上部に配置され、第２の領域上においてのみ外表面に前記生体分子を認識する親和性物質を有する保護膜と、少なくとも第１の領域上において最上部に配置され、磁気抵抗効果素子の上方の、保護膜上に配置され、親和性物質を実質的に備えないＭＲカバー膜と、を備え、軟磁性体薄膜は、前記軟磁性体薄膜上に集積される磁気ビーズの浮遊磁界の積層面内方向成分を前記磁気抵抗効果素子へ伝達するように構成され、保護膜及びＭＲカバー膜は互いに異なる材料から構成されている。

Description

バイオセンサ及びバイオチップ
　本発明は、バイオセンサ及びバイオチップに関する。
　本願は、２０１６年３月２８日に、日本に出願された特願２０１６－０６３４９０号、及び２０１６年５月２５日に、日本に出願された特願２０１６－１０４４６８号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　磁気センサとしては、巨大磁気抵抗効果（ＧＭＲ）素子や磁気トンネル接合（ＴＭＲ）素子や異方性磁気抵抗効果（ＡＭＲ）等の磁気抵抗効果素子を用いることが多い（例えば、特許文献１参照。）。磁気抵抗効果素子は、入力される磁界に応じて出力される抵抗値が変化する素子であり、この出力される抵抗値に基づいて、検出された磁界の変化を計測することができる。
　図５及び図６は、従来のバイオセンサ５００を説明する図である。図５に示すように、バイオセンサ５００は、基板１０１と、磁気抵抗効果素子１０２と、保護膜１０７と、標的とする生体分子を捕捉する生体分子捕捉層１０９とを、この順に備えている。試料中の生体分子が、生体分子捕捉層１０９に捕捉され、前記生体分子に親和性を有する磁気ビーズが、前記生体分子を介して生体分子捕捉層１０９上に捕捉された後に、磁界を横向きに印加すると（印加磁界１０５）、磁気ビーズ１０４から浮遊磁界１１１が発生し、浮遊磁界１１１が磁気抵抗効果素子１０２に入力される。
図６は、従来のバイオセンサ５００に用いられる、従来の磁気抵抗素子１０２の詳細を示した図である。図６に示すように、磁気抵抗効果素子１０２は、三本一組のミアンダ構造を有している。
日本国特表２００５－５１３４７５号公報
　図５に示すように、従来のバイオセンサ５００では、外部磁界の印加方向が磁気抵抗効果素子１０２の感磁方向と一致しているため、磁気ビーズ１０４からの浮遊磁界１１１を増やすために外部磁界として印加磁界１０５を強めると、磁気抵抗効果素子の感磁層の磁化が飽和してしまい、必要な出力が得られなくなってしまう問題点があった。
　図６に示すように、ミアンダ構造では、磁気ビーズ１０４が磁気抵抗効果素子１０２上に配置される場合と、磁気抵抗効果素子１０２間に配置される場合とがある。係る配置の違いにより、即ち、磁気抵抗効果素子１０２と磁気ビーズ１０４との相対位置により出力が変動するため、磁気ビーズの数量又は濃度の測定値にバラツキが生じて、十分な精度が得られない問題点があった。
　本発明者らは上記問題点を解決すべく、試料中に含まれている生体分子の分子数を算出でき、試料中の生体分子の定量性を高精度かつ高感度に確保できるバイオセンサを開発した。
　図７は、本発明者らが開発したバイオセンサにおけるＰ、Ｑ、Ｒ、Ｓ地点でのＧＭＲ出力の計測値から磁気ビーズの位置によるＧＭＲ出力をシミュレーションした結果を示すグラフ及び磁気ビーズの位置であるＰ、Ｑ、Ｒ、Ｓ地点を表すバイオセンサの断面図である。図７に示すバイオセンサの断面図において、符号１０はバイオセンサであり、符号２は磁気抵抗効果素子であり、符号３は軟磁性体薄膜であり、符号４は磁気ビーズである。
図７に示すように、本発明者らが開発したバイオセンサ上での磁気ビーズの位置によって、ＧＭＲ出力が変動することが課題であった。
　本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出するバイオセンサを提供する。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、磁気抵抗効果素子の上方に、カバー膜を配置することにより、ＧＭＲ出力の変動を抑制できることを見出し、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は、以下の態様を含む。
本発明の第１態様に係るバイオセンサは、試料中の生体分子を検出するためのバイオセンサであって、第１の領域、及び前記第１の領域に隣接して配設される第２の領域が形成される面を有する基板と、前記第１の領域上に配置され、入力される磁界に応じて検出される抵抗値が変化する磁気抵抗効果素子と、
　前記第２の領域上に配置された軟磁性体薄膜と、前記第１の領域上及び前記第２の領域上の両方に配置され、前記軟磁性体薄膜の表面を覆うと共に、前記第２の領域上において最上部に配置され、前記第２の領域上においてのみ外表面に前記生体分子を認識する親和性物質を有する保護膜と、少なくとも前記第１の領域上において最上部に配置され、前記磁気抵抗効果素子の上方の、前記保護膜上に配置され、前記親和性物質を実質的に備えないＭＲカバー膜と、を備え、前記軟磁性体薄膜は、前記軟磁性体薄膜上に集積される磁気ビーズの浮遊磁界の積層面内方向成分を前記磁気抵抗効果素子へ伝達するように構成され、前記保護膜及び前記ＭＲカバー膜は互いに異なる材料から構成されている。
上記態様に係るバイオセンサは、前記ＭＲカバー膜の外表面に前記生体分子の非特異的吸着を抑制する物質をさらに備えてもよい。
前記保護膜を構成する材料が貴金属であり、前記ＭＲカバー膜を構成する材料が酸化物であってもよい。
前記保護膜を構成する材料が酸化物であり、前記ＭＲカバー膜を構成する材料が貴金属であってもよい。
前記貴金属が、金、銀、白金、ロジウム、ルテニウム及びパラジウムのうちからなる群から選ばれる少なくとも１種であってもよい。
前記酸化物が、アルミナ、シリカ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化インジウム、酸化タルタル、酸化亜鉛、酸化ガリウム及び酸化スズからなる群から選ばれる少なくとも１種であってもよい。
前記非特異的吸着を抑制する物質がチオール基、イソチオシアネート基及びジスルフィド基からなる群から選ばれる少なくとも１つを有してもよい。
前記非特異的吸着を抑制する物質がアルコキシシラン基及びホスホン酸基のうち少なくともいずれかを有してもよい。
前記保護膜が複数の膜からなってもよい。
前記ＭＲカバー膜が、前記保護膜を構成する複数の膜のうちの最上部の膜以外の膜上の、前記第１の領域及び第２の領域のいずれにも配置されていてもよい。
前記ＭＲカバー膜が、前記保護膜を構成する複数の膜のうちの最上部の膜以外の膜上の、前記第１の領域にのみ配置されていてもよい。
本発明の第２態様に係るバイオチップは、上記第１態様に係るバイオセンサを備える。
　本発明の上記態様によれば、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出することができる。
本発明の第１実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。 本発明の第２実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。 本発明の第３実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。 本発明の第４実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。 従来の磁気検出型バイオセンサの断面図である。 従来の磁気検出型バイオセンサの斜視図である。 バイオセンサにおけるＰ、Ｑ、Ｒ、Ｓ地点でのＧＭＲ出力の計測値から磁気ビーズの位置によるＧＭＲ出力をシミュレーションした結果を示すグラフ及び磁気ビーズの位置であるＰ、Ｑ、Ｒ、Ｓ地点を表すバイオセンサの断面図である。
◇バイオセンサ
　本発明の一実施形態に係るバイオセンサは、基板と、磁気抵抗効果素子と、保護膜と、ＭＲカバー膜と、を備える。
　前記基板は、第１の領域、及び前記第１の領域に隣接して配設される第２の領域が形成される面を有する。
前記磁気抵抗効果素子は、前記第１の領域上に配置され、入力される磁界に応じて検出される抵抗値が変化するように構成されている。
　前記軟磁性体薄膜は、前記第２の領域上に配置され、前記軟磁性体薄膜上に集積される磁気ビーズの浮遊磁界の積層面内方向成分を前記磁気抵抗効果素子へ伝達するように構成されている。
　前記保護膜は、前記第１の領域上及び前記第２の領域上の両方に配置され、前記軟磁性体薄膜の表面を覆うと共に、前記第２の領域上において最上部に配置され、前記第２の領域上においてのみ外表面に前記生体分子を認識する親和性物質を有する。
前記ＭＲカバー膜は、少なくとも前記第１の領域上において最上部に配置され、前記磁気抵抗効果素子の上方の、前記保護膜上に配置され、前記親和性物質を実質的に備えない。
前記保護膜及び前記ＭＲカバー膜は互いに異なる材料から構成されている。
　なお、本明細書において、「バイオセンサ」とは、酵素、抗原、抗体、核酸（ＤＮＡ，ＲＮＡ等に限らず、例えば、ＬＮＡ等の人工核酸も含む。）等の生体材料（天然由来であってもよく、化学合成したものであってもよい。）を感知するセンサを意味する。
また、「ＭＲカバー膜」とは、磁気抵抗効果素子（Ｍａｇｎｅｔｏ　Ｒｅｓｉｓｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ　Ｄｅｖｉｃｅ）を保護するための膜を意味する。
　本実施形態のバイオセンサは、親和性物質を実質的に備えないＭＲカバー膜を備えることにより、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出することができる。
　本明細書において、「親和性物質を実質的に備えない」とは、親和性物質を全く含まない、又は、例えば、ＭＲカバー膜上に非特異的に親和性物質が吸着した場合において、生体分子を捕捉することができない程度の量しか備えていない状態を意味する。
◎バイオセンサの構造
　本実施形態のバイオセンサを構造の違いごとに、以下、図面を参照しながら説明する。なお、以下の説明で用いる図は、本発明の特徴を分かり易くするために、便宜上、要部となる部分を拡大して示している場合があり、各構成要素の寸法比率等が実際と同じであるとは限らない。
＜第１実施形態＞
　図１は、本発明の第１実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。
　以下にて記述する、第１の領域、第２の領域、第１の平面、第２の平面、第３の平面、第４の平面は仮想的な領域又は平面で、領域又は平面上の部材の位置関係を定義するために便宜的に導入される。なお、以下に示す実施形態のバイオセンサ上において、第１の領域及び第２の領域は、交互に繰り返し存在しており、図１に示すバイオセンサ１００においては複数存在する第１の領域及び第２の領域のうちの一つを抜き出して示している。
　本実施形態のバイオセンサ１００は、試料中の生体分子を検出する。
　基板１１は、その表面に第１の領域Ａ及び第２の領域Ｂを有する。磁気抵抗効果素子１２は、第１の領域Ａ上に配置され、入力される磁界に応じて検出される抵抗値が変化する。磁性体薄膜１３は、第２の領域Ｂ上に配置される。保護膜１７は、第１の領域Ａ上及び第２の領域Ｂ上の両方に配置され、軟磁性体薄膜１３の表面を覆う。また、保護膜１７は、親和性物質（第１の親和性物質）１９を有する。親和性物質１９は、第２の領域Ｂ上においてのみ外表面に生体分子を認識する。ＭＲカバー膜１６は、少なくとも第１の領域Ａ上において最上部に配置され、磁気抵抗効果素子１２の上方の、保護膜１７上に配置され、親和性物質１９を実質的に備えない。
これにより、生体分子又は磁気ビーズ１４のＭＲカバー層への吸着を抑制することができ、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出することができる。
　さらに、本実施形態において、磁気ビーズ１４は、前記第１の親和性物質１９の前記生体分子認識部位とは異なる部位を認識する第２の親和性物質（図示せず）を備える。磁気ビーズ１４は、前記保護膜１７上に、第１の親和性物質－生体分子－第２の親和性物質複合体を介して集積し、軟磁性体薄膜１３と交差する方向に磁界（印加磁界１５）を印加したときに、検出磁界１８（漏れ磁界）が磁気抵抗効果素子１２に入力される。
　図１に示すように、基板１１の主面から離間して位置し、基板１１の主面と略平行な第一の平面ａには、磁気抵抗効果素子１２が配置される。また、第１の平面ａよりも基板１１の主面から離間して位置する第２の平面ｂには、軟磁性体薄膜１３が配置される。すなわち、本実施形態においては、基板１１に対向する磁気抵抗効果素子２の主面と、基板１に対向する軟磁性体薄膜１３の主面とが、基板１１に対する法線方向において異なる位置に配置されている。
　軟磁性体薄膜１３の表面は、保護膜１７で覆われており、保護膜１７の外表面は、検出対象の生体分子を捕捉する第１の親和性物質１９を備えている。磁気ビーズ１４も生体分子を捕捉する第２の親和性物質（図示せず）を備えている。第１の親和性物質１９と第２の親和性物質は、互いに生体分子中の異なる部位を認識する。即ち、第１の親和性物質－生体分子－第２の親和性物質複合体の形成を可能とする。
　さらに、第１の平面及び第２の平面よりも基板１の主面から離間して位置する図示略の第三の平面には、図示略の電極端子が配置される。電極端子は、図示略の内部配線を経由して磁気抵抗効果素子１２と接続される。
＜第２実施形態＞
図２は、本発明の第２実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。なお、図２以降の図において、既に説明済みの図に示すものと同じ構成要素には、その説明済みの図の場合と同じ符号を付し、その詳細な説明は省略する。
　バイオセンサ２００は、保護膜が複数の膜からなる点以外は、図１に示すバイオセンサ１００と同じものである。すなわち、バイオセンサ２００においては、基板１１の一方の表面に第２の保護膜２０が積層される。また、第２の保護膜２０内の第１の平面aに磁気抵抗効果素子１２が配置され、第２の保護膜２０内の第２の平面ｂに軟磁性体薄膜１３が配置される。また、軟磁性体薄膜１３の表面である第３の平面ｃ上に第２の保護膜２０が積層される。また、第２の保護膜２０の表面に第１の領域Ａ上及び第２の領域Ｂ上の両方に保護膜１７が積層される。さらに、第１の領域Ａ上における保護膜１７の表面にＭＲカバー膜１６が積層される。また、第２の領域Ｂ上における保護膜１７は、その表面に親和性物質１９を備える。換言すると、軟磁性体薄膜１３上に第１の領域Ａ上及び第２の領域Ｂ上の両方に、第２の保護膜２０と保護膜１７とがこの順で積層されている。
　バイオセンサ２００において、ＭＲカバー膜は親和性物質１９を実質的に備えず、ＭＲカバー膜１６と保護膜１７及び第２の保護膜２０とは、異なる材料から構成されている。
　図２に示すバイオセンサ２００は、図１に示すバイオセンサ１００と同様の原理に基づき、試料中の生体分子の検出に使用される。
＜第３実施形態＞
　図３は、本発明の第３実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。
　バイオセンサ３００は、ＭＲカバー層が第１の領域Ａ上及び第２の領域Ｂ上の両方に配置されている点以外は、図２に示すバイオセンサ２００と同じものである。すなわち、バイオセンサ３００においては、基板１１の一方の表面に第２の保護膜２０が積層される。また、第２の保護膜２０内の第１の平面aに磁気抵抗効果素子１２が配置される。また、第２の保護膜２０内の第２の平面ｂに軟磁性体薄膜１３が配置される。また、軟磁性体薄膜１３の表面である第３の平面ｃ上に第２の保護膜２０が積層される。また、第２の保護膜２０の表面に第１の領域Ａ上及び第２の領域Ｂ上の両方にＭＲカバー膜１６が積層される。また、第２の領域Ｂ上におけるＭＲカバー膜１６の表面に保護膜１７が積層される。また、第２の領域Ｂ上における保護膜１７は、その表面に親和性物質１９を備える。換言すると、第２の領域Ｂにおいて、ＭＲカバー膜１６は、第２の保護膜２０と保護膜１７とにはさまれた状態で配置されている。
　バイオセンサ３００において、ＭＲカバー膜は親和性物質１９を実質的に備えず、ＭＲカバー膜１６と保護膜１７及び第２の保護膜２０とは、異なる材料から構成されている。
　図３に示すバイオセンサ３００は、図１に示すバイオセンサ１００と同様の原理に基づき、試料中の生体分子の検出に使用される。
＜第４実施形態＞
　図４は、本発明の第４実施形態に係るバイオセンサを模式的に示す断面図である。
　バイオセンサ４００は、ＭＲカバー膜１６が第１の領域Ａ上において最上部に配置されており、保護膜１７が第２の領域Ｂ上において最上部に配置されている点以外は、図２に示すバイオセンサ２００と同じものである。すなわち、バイオセンサ４００においては、基板１１の一方の表面に第２の保護膜２０が積層される。また、第２の保護膜２０内の第１の平面aに磁気抵抗効果素子１２が配置される。また、第２の保護膜２０内の第２の平面ｂに軟磁性体薄膜１３が配置される。また、軟磁性体薄膜１３の表面である第３の平面ｃ上に第２の保護膜２０が積層される。また、第１の領域Ａ上において第２の保護膜２０の表面にＭＲカバー膜１６が積層される。また、第２の領域Ｂ上において第２の保護膜２０の表面に保護膜１７が積層される。また、第２の領域Ｂ上における保護膜１７は、その表面に親和性物質１９を備える。換言すると、第１の領域Ａにおける最上部にＭＲカバー膜１６が配置され、第２の領域における最上部に保護膜１７が配置されている。
バイオセンサ４００において、ＭＲカバー膜１６は親和性物質１９を実質的に備えず、ＭＲカバー膜１６と保護膜１７及び第２の保護膜２０とは、異なる材料から構成されている。
　図４に示すバイオセンサ４００は、図１に示すバイオセンサ１００と同様の原理に基づき、試料中の生体分子の検出に使用される。
　本実施形態に係るバイオセンサは、図１～４に示すものに限定されず、その効果を損なわない範囲内において、図１～４に示すものの一部の構成が変更又は削除されたものや、これまでに説明したものにさらに他の構成が追加されたものであってもよい。
◎バイオセンサの各構成
　以下、本実施形態に係るバイオセンサの各構成について、詳細に説明する。
○基板
　基板の材料としては、例えば、シリコンやＡｌＴｉＣ（アルティック）などの半導体や導電体、又はアルミナやガラス等の絶縁体から構成されるものが挙げられ、その形態は特に問われるものではない。
　基板の厚さは、特に限定はないが、例えば４００μｍ以上２０００μｍ以下であればよい。基板の厚さがこのような範囲であることで、適度な強度を有し、薄型化及び軽量化されたバイオセンサを得ることができる。
　ここで、「基板の厚さ」とは、基板全体の厚さを意味し、例えば、複数層からなる基板の厚さとは、基板を構成するすべての層の合計の厚さを意味する。
○磁気抵抗効果素子
　磁気抵抗効果素子は、磁界の影響を受けて電気抵抗が変わる現象を利用する素子であれば特に制限はない。磁気抵抗効果素子は、積層面内の一定方向に固着された磁化方向を有する磁化固定層と、外部磁界に応じて磁化方向が変化する磁化自由層と、を備えたタイプの素子であることが好ましい。また、磁気抵抗効果素子において、磁化固定層の磁化固定方向は、前記軟磁性体薄膜の端面から入力される磁界である漏れ磁界と、略平行又は略反平行であり、かつ、前記磁気抵抗効果素子の膜面方向であることが好ましい。
　本実施形態において、略平行又は略反平行とは、凡そ平行又は反平行であればよく、０．１°以上１０゜以下の範囲でずれていてもよい。
　さらに、磁気抵抗効果素子は、磁化固定層と、非磁性体の導体又は絶縁体からなる中間層と、磁化自由層と、を含み、磁化固定層と磁化自由層とで中間層を挟む積層体を有していることがより好ましい。
　なお、中間層が非磁性体の導体の場合、磁気抵抗効果素子は、一般にＧＭＲ（巨大磁気抵抗効果素子）と呼ばれ、絶縁体の場合、ＴＭＲ（トンネル型磁気抵抗効果素子）と呼ばれる。磁気抵抗効果素子の抵抗は、磁化固定層の磁化方向と磁化自由層の平均の磁化方向の角度に応じて変化する。一般に、磁化固定層の磁化方向を感磁方向と定義する。
　磁化自由層は、例えば、ＮｉＦｅ等の軟磁性膜から構成される。中間層は、例えば、Ｃｕなどの導電体膜、又は、アルミナ－酸化マグネシウム等の絶縁体膜から構成される。
磁化固定層は、反強磁性膜と磁化固定膜からなり、磁化固定膜が中間層と接する。反強磁性膜は、例えばＩｒＭｎやＰｔＭｎなどの反強磁性Ｍｎ合金などから構成される。磁化固定膜は、例えば、ＣｏＦｅやＮｉＦｅなどの強磁性体から構成されるか、或いは、Ｒｕの薄膜層をＣｏＦｅ等で挟む構成をとってもよい。
○軟磁性体薄膜
　軟磁性体薄膜は、以下の２つの機能を有する。
（１）積層面の略法線方向に印加された磁界（印加磁界）の方向を変え、軟磁性体薄膜の積層面端部に漏れ磁界（検出磁界）として、磁気抵抗効果素子の感磁方向の磁界成分を生成する機能、
（２）軟磁性体薄膜上に集積される磁気ビーズの浮遊磁界の積層面内方向成分を磁気抵抗効果素子へ伝達する機能。
　軟磁性体薄膜は、軟磁性体薄膜に印加される磁界の印加方向から見て、磁気抵抗効果素子２の磁化固定方向に沿って同一直線上に配置されていることが好ましい。軟磁性体薄膜の基板の主面の法線方向への投影面は、磁気抵抗効果素子の基板の主面の法線方向への投影面と近接している。また、一部重なっていてもよい。軟磁性体薄膜は例えば、パーマロイなどが好ましい。
　軟磁性体薄膜の大きさとしては、捕捉する磁気ビーズの数や大きさによって適宜選択されるが、０．１μｍ以上１０００μｍ以下四方が好ましく、０．５μｍ以上５００μｍ以下四方がより好ましく、５０μｍ以上２００μｍ以下四方が特に好ましい。
　軟磁性体薄膜の厚みとしては、０．０１μｍ以上１００μｍ以下が好ましく、０．１μｍ以上５０μｍ以下がより好ましく、０．５μｍ以上５μｍ以下が特に好ましい。
○磁気ビーズ
　磁気ビーズは、磁性を帯びている粒子であれば特に限定されず、例えば酸化鉄粒子が挙げられる。磁気ビーズの直径としては、保護膜の面積との兼ね合いによるが、例えば、０．０１μｍ以上１００μｍ以下が好ましく、０．０５μｍ以上５０μｍ以下がより好ましく、０．１μｍ以上５μｍ以下が特に好ましい。
　磁性ビーズは、生体分子と特異的に結合する第二の親和性物質を備え、第二の親和性物質を介して生体分子を捕捉する。磁性ビーズは、第二の親和性物質がコーティング処理等により付加されたものであってもよく、第二の親和性物質自体からなるものであってもよい。
　磁気ビーズの表面は、捕捉する生体分子に応じて、ポリマーやシリカマトリックスでコーティング処理されることが好ましい。生体分子としてリガンドを捕捉したい場合には、磁気ビーズの表面は親水性であることが好ましく、生体分子として抗体を捕捉したい場合には、磁気ビーズの表面は疎水性であることが好ましい。
○保護膜
　保護膜は、軟磁性体薄膜を保護可能であるものであれば特に限定されない。保護膜の材料は、例えばアルミナ、シリカ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化インジウム、酸化タルタル、酸化亜鉛、酸化ガリウム、酸化スズ等の酸化物；金、銀、白金、ロジウム、ルテニウム、パラジウム等の貴金属；窒化アルミ、窒化シリコン等の無機物や、ポリイミド等の有機物が挙げられる。
保護膜は１層（単層）からなるものでもよいし、２層以上の複数層からなるものでもよい。また、保護膜が複数層からなる場合、これら複数層は、互いに同一でも異なっていてもよく、これら複数層の組み合わせは特に限定されない。
　保護膜の厚さは、１ｎｍ以上１０００ｎｍ以下であることが好ましく、１ｎｍ以上１００ｎｍ以下であることがより好ましく、１ｎｍ以上１５ｎｍ以下であることが特に好ましい。
　ここで、「保護膜の厚さ」とは、保護膜全体の厚さを意味し、例えば、複数層からなる保護膜の厚さとは、保護膜を構成するすべての層の合計の厚さを意味する。
　保護膜の外表面は、試料中の生体分子と接触する表面である。この外表面は、検出対象の生体分子と特異的に結合する第１の親和性物質を備えている。また、磁気ビーズも生体分子と特異的に結合する第２の親和性物質を備えている。
　これら親和性物質を備えることにより、検出対象の生体分子が試料中（検体中）に存在する場合にのみ、生体分子が保護膜の外表面に第１の親和性物質を介して固定される。次いで、磁気ビーズが第２の親和性物質を介して生体分子と結合することにより、磁気ビーズが保護膜表面に固定される。
　検出対象の生体分子としては、例えば、ＤＮＡ、ｍＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、人工核酸（例えば、ＬＮＡ（Ｌｏｃｋｅｄ　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄ）、ＢＮＡ（Ｂｒｉｄｇｅｄ　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃｉｄ））等の核酸（天然由来であってもよく、化学合成したものであってもよい。）；リガンド、サイトカイン、ホルモン等のペプチド；受容体、酵素、抗原、抗体等のタンパク質；細胞、ウイルス、細菌、真菌等が挙げられる。
　検出対象の生体分子を含む試料としては、血液、血清、血漿、尿、パフィーコート、唾液、精液、胸部滲出液、脳脊髄液、涙液、痰、粘液、リンパ液、腹水、胸水、羊水、膀胱洗浄液、気管支肺胞洗浄液、細胞抽出液、細胞培養上清等が挙げられる。
　また、検出対象の生体分子としては、検出対象となる生体分子に別の生体分子を複合体化させたもの、又は、検出対象となる生体分子を別の生体分子に変換したものであってもよい。例えば、ＲＮＡに対して、ビオチンを末端に有するＤＮＡをハイブリダイゼーションにより複合体化させたもの（以下、「ＲＮＡ－ＤＮＡ－ビオチン複合体」と称する場合がある。）等が挙げられる。複合体化によりＲＮＡにビオチンが付加されたことにより、ストレプトアビジンと特異的に結合することが可能となる。よって、例えば、ＲＮＡ－ＤＮＡ－ビオチン複合体に含まれるＲＮＡ、又はＤＮＡがハイブリダイズしていない核酸部分に対し、ハイブリダイズし得るＲＮＡ、又はＤＮＡを第１の親和性物質として用いることで、本実施形態のバイオセンサ上に捕捉し、さらに、ストレプトアビジンを第２の親和性物質して用いることにより、前記ＲＮＡ－ＤＮＡ－ビオチン複合体を特異的に検出することができる。
　生体分子と特異的に結合する第１の親和性物質及び第２の親和性物質としては、検出対象の生体分子が核酸の場合には、この核酸に相補的な核酸が挙げられる。検出対象の生体分子が抗原の場合には、抗原に親和性を有する抗体が挙げられる。検出対象の生体分子が１次抗体の場合には、この１次抗体に親和性を有する抗原、２次抗体が挙げられる。検出対象の生体分子が細胞、ウイルス、細菌、真菌等の場合には、これらの表面に提示されている抗原を認識する抗体が挙げられる。
　検出対象の生体分子が、血液中に存在するｍｉＲＮＡの場合、第１の親和性物質としては、例えばこのｍｉＲＮＡの５’端１０塩基に相補的な第一の核酸が挙げられ、第２の親和性物質としては、このｍｉＲＮＡの３’端１０塩基に相補的な第２の核酸が挙げられる。
　検出対象の生体分子が、血液中に存在する抗原タンパク質の場合、第１の親和性物質としては、例えばこの抗原タンパク質を認識する第１の抗体が挙げられ、第２の親和性物質としては、この抗原タンパク質を認識し、第１の抗体とはエピトープが異なる第２の抗体が挙げられる。
　第１の親和性物質が抗体である場合、該抗体は、例えば、マウス等のげっ歯類の動物に標識ペプチドを抗原として免疫することによって作製することができる。また、例えば、ファージライブラリーのスクリーニングにより作製することができる。抗体は、抗体断片でもよく、該抗体断片としては、Ｆｖ、Ｆａｂ、ｓｃＦｖ等が挙げられる。
　上述の説明では保護膜表面に固定された生体分子に磁気ビーズが結合する例を挙げたが、本実施形態では、これに限定されず、予め磁気ビーズに検出対象の生体分子を結合させておき、これを試料として保護膜表面に接触させてもよい。
　軟磁性体薄膜を覆う保護膜表面への磁気ビーズの固定方法は、従来の又は今後開発されるべきあらゆる技術が適用可能であり、磁気ビーズを測定することで間接的に検出対象の生体分子の存在を検出できるように構成されるものであれば、いかなる手法であっても構わない。
＜＜保護膜における親和性物質の固定化方法＞＞
　保護膜表面における親和性物質の固定化方法としては、例えば、最上部に配置された保護膜の構成材料が貴金属である場合、親和性物質由来の、若しくは親和性物質に導入された、チオール基、イソチオシアネート基又はジスルフィド基と貴金属表面とがチオレート結合を形成し、親和性物質を固定化することができる。
　また、最上部に配置された保護膜の構成材料が酸化物である場合、親和性物質に結合可能な官能基を有するシランカップリング剤又はホスホン酸誘導体を介して、親和性物質を固定化することができる。
　前記官能基としては、親和性物質と共有結合又は非共有結合が可能な基であれば特に限定されず、例えば、化学的に活性な（つまり第１の親和性物質との反応性が高くなるように活性化された）基、受容体基、リガンド基等が挙げられる。親和性物質は、官能基と共有結合又は非共有結合が可能となるように修飾されていてもよい。
　具体的な例としては、活性化されたカルボキシル誘導基、カルボキシル基、アルデヒド基、エポキシ基、ビニルスルホン基、ビオチニル基、チオール基、アミノ基、イソシアネート基、イソチオシアネート基、ヒドロキシル基、アクリレート基、マレイミド基、ヒドラジド基、アミノオキシ基、アジド基、アミド基、スルホネート基、アビジン、ストレプトアビジン、金属キレート等が挙げられ、これらに限定されない。これらの中でも、一般的に親和性物質のうち多くがアミノ基を有するため、該アミノ基との反応性の点から、アルデヒド基、活性化されたカルボキシル誘導基、エポキシ基、ビニルスルホン基が好ましく、また結合定数が高いビオチニル基も好ましい。特に、第１の親和性物質がアミノ基を有し、該アミノ基を介して結合させる場合には、アミノ基との反応性と保存安定性のバランスから、活性化されたカルボキシル誘導基が好ましい。一方で、第１の親和性物質がアルデヒド基を有し、該アルデヒド基を介して結合させる場合には、反応性が高いため、アミノオキシ基又はヒドラジド基が好ましい。
　前記ホスホン酸誘導体としては、例えば、アルキルホスホン酸、アルケニルホスホン酸、フェニルホスホン酸等を挙げられる。前記ホスホン酸誘導体として、より具体的には、ビニルホスホン酸（ＣＨ２＝ＣＨ－ＰＯ３Ｈ２）、プロペン－１－ホスホン酸（ＣＨ３－ＣＨ＝ＣＨ－ＰＯ３Ｈ２）、プロペン－２－ホスホン酸（ＣＨ２＝ＣＨ（ＣＨ３）－ＰＯ３Ｈ２）等が挙げられ、これらに上記官能基が導入されたものであればよい。前記官能基を有するホスホン酸誘導体としては、例えば、２，５－ジカルボキシフェニルホスホン酸、３，５－ジカルボキシフェニルホスホン酸、２，５－ビスホスホノテレフタル酸等が挙げられる。
　前記官能基を有するシランカップリング剤としては、例えば、トリメトキシシリル安息香酸、γ－メタクリロキシプロピルトリメトキシシラン、ビニルトリアセトキシシラン、ビニルトリメトキシシラン、γ－イソシアナートプロピルトリエトキシシラン、γ－グリシドキシプロピルトリメトキシシラン、β－（３，４－エポキシシクロヘキシル）エチルトリメトキシシラン、トリス－（３－トリメトキシシリルプロピル）イソシアヌレート、メタクリロキシプロピルジメチルメトキシシラン、メタクリロキシプロピルジメチルエトキシシラン、メタクリロキシプロピルメチルジメトキシシラン、メタクリロキシプロピルメチルジエトキシシラン、メタクリロキシプロピルトリメトキシシラン、メタクリロキシプロピルトリエトキシシラン、３－メルカプトプロピルトリメトキシシラン、３－メルカプトプロピルトリエトキシシラン、３－メルカプトプロピルメチルジメトキシシラン、３－メルカプトプロピルメチルジエトキシシラン、３－メルカプトプロピルジメチルメトキシシラン、３－メルカプトプロピルジメチルエトキシシラン、メルカプトエチルトリエトキシシラン等が挙げられる。
　より具体的な保護膜表面への親和性物質の固定化方法については、親和性物質の種類に応じて、公知の方法に従って当業者が決定できる。例えば、親和性物質を含有する溶液を、親和性物質と共有結合する官能基を備えたシランカップリング剤又はホスホン酸誘導体とともに保護膜に接触させる方法等が挙げられる。
例えば、保護膜を構成する材料が酸化物であり、カルボキシル基を有するシランカップリング剤を介して、アミノ基を有する親和性物質を固定化する場合には、保護膜表面が、第１の親和性物質及びシランカップリング剤をｐＨ７．０以上１０．０以下の一般的な緩衝液に混合した溶液に接触する状態で所定時間インキュベートすることにより、親和性物質が有するアミノ基と、シランカップリング剤が有するカルボキシル基とを反応させてアミド結合を形成させ、さらにシランカップリング剤と保護膜表面とを反応させてエーテル結合を形成させることで、親和性物質を保護膜の外表面上に固定化することができる。該緩衝液としては、例えば、リン酸緩衝液、トリス緩衝液等が挙げられる。
○ＭＲカバー膜
　ＭＲカバー膜は、磁気抵抗効果素子を保護可能であるものであれば特に限定されない。ＭＲカバー膜の材料は、例えばアルミナ、シリカ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化インジウム、酸化タルタル、酸化亜鉛、酸化ガリウム、酸化スズ等の酸化物；金、銀、白金、ロジウム、ルテニウム、パラジウム等の貴金属等の無機物が挙げられる。
　また、前記保護膜を構成する材料が貴金属である場合、ＭＲカバー膜を構成する材料が酸化物であることが好ましい。一方、前記保護膜を構成する材料が酸化物である場合、ＭＲカバー膜を構成する材料が貴金属であることが好ましい。
　前記保護膜と前記ＭＲカバー膜とを構成する材料が異なり、さらに上記組み合わせであることにより、保護膜にのみ選択的に親和性物質が固定化される。また、ＭＲカバー層は親和性物質を実質的に備えず、ＭＲカバー膜への生体分子又は磁気ビーズの非特異的な吸着が抑制される。そのため、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出することができる。
ＭＲカバー膜は１層（単層）からなるものでもよいし、２層以上の複数層からなるものでもよい。ＭＲカバー層が複数層からなる場合、これら複数層は、互いに同一でも異なっていてもよく、これら複数層の組み合わせは特に限定されない。
　ＭＲカバー膜の厚さは、１ｎｍ以上１０００ｎｍ以下であることが好ましく、１ｎｍ以上１００ｎｍ以下であることがより好ましく、１ｎｍ以上１５ｎｍ以下であることが特に好ましい。
　ここで、「ＭＲカバー膜の厚さ」とは、ＭＲカバー膜全体の厚さを意味し、例えば、複数層からなるＭＲカバー膜の厚さとは、ＭＲカバー膜を構成するすべての層の合計の厚さを意味する。
　さらに、ＭＲカバー膜は、外表面に生体分子の非特異的吸着を抑制する物質（非特異的吸着抑制物質）を備えることが好ましい。ＭＲカバー膜は、非特異的吸着抑制物質を備えることにより、生体分子又は磁気ビーズの非特異的な吸着をより効果的に抑制することができる。
　非特異的吸着抑制物質としては、末端にＭＲカバー膜への固定化基と、もう一方の末端、又は化合物中に生体親和性基とを有するものであれば、単量体であっても、重合体であってもよい。
　前記固定化基としては、ＭＲカバー膜を構成する材料が貴金属である場合は、例えば、チオール基、イソチオシアネート基、ジスルフィド基等が挙げられる。一方、前記固定化基としては、ＭＲカバー膜を構成する材料が酸化物である場合は、例えば、アルコシキシラン基、ホスホン酸基等が挙げられる。
　前記生体親和性基は、優れた非特異吸着抑制効果を有する。前記生体親和性基として、具体的には、ホスホリルコリン基、（ポリ）アルキレングリコール残基、スルホアルキルアミノ基等が挙げられる。本実施形態における非特異的吸着抑制物質としては、例えば、これらの生体親和性基を有する単量体を重合することで、生体親和性基を有する高分子化合物を製造し、用いてもよい。
　前記非特異的吸着抑制物質が単量体である場合、前記非特異的吸着抑制物質は分子自己組織化（ＭＳＡ：ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｓｅｌｆａｓｓｅｍｂｌｙ）し、単分子膜を形成するものである。
　本明細書において、「分子自己組織化」とは、外的要因からの制御を受けずに、分子自身で自然に組織や構造を構築することを意味する。
　本実施形態における非特異的吸着抑制物質は、ファンデルワールス結合等の弱い分子間結合を利用して、非特異的吸着抑制物質同士が整列し、結合して１つの単分子膜（自己組織化単分子層（ＳＡＭｓ：Ｓｅｌｆ－Ａｓｓｅｍｂｌｅｄ　Ｍｏｎｏｌａｙｅｒｓ））を形成するものである。
　ホスホリルコリン基を有する単量体としては、例えば、２－メタクリロイルオキシエチルホスホリルコリン、６－メタクリロイルオキシヘキシルホスホリルコリン等の（メタ）アクリロイルオキシアルキルホスホリルコリン；２－メタクリロイルオキシエトキシエチルホスホリルコリン及び１０－メタクリロイルオキシエトキシノニルホスホリルコリン等の（メタ）アクリロイルオキシアルコキシアルキルホスホリルコリン；アリルホスホリルコリン、ブテニルホスホリルコリン、ヘキセニルホスホリルコリン、オクテニルホスホリルコリン、デセニルホスホリルコリン等のアルケニルホスホリルコリン等が挙げられる。本実施形態の非特異的吸着抑制物質としては、これらのホスホコリン基とは反対側の末端に前記固定化基を導入して用いればよい。
　本明細書において、「アルキレングリコール残基」とは、アルキレングリコール（ＨＯ－Ｒ－ＯＨ、ここでＲはアルキレン基）の片側末端又は両末端の水酸基が他の化合物と縮合反応した後に残る、アルキレンオキシ基（－Ｒ－Ｏ－、ここでＲはアルキレン基）を意味する。例えば、メチレングリコール（ＨＯ－ＣＨ２－ＯＨ）の場合のアルキレングリコール残基はメチレンオキシ基（－ＣＨ２－Ｏ－）であり、エチレングリコール（ＨＯ－ＣＨ２ＣＨ２－ＯＨ）の場合のアルキレングリコール残基はエチレンオキシ基（－ＣＨ２ＣＨ２－Ｏ－）である。また、「ポリアルキレングリコール残基」とは、アルキレンオキシ基が複数繰り替えされた構造を意味する。
　アルキレングリコール残基を有する単量体としては、例えば、メトキシポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシポリエチレングリコール（メタ）アクリレート、２－ヒドロキシエチル（メタ）アクリレート及びその水酸基の一置換エステル、２－ヒドロキシプロピル（メタ）アクリレート及びその水酸基の一置換エステル、２－ヒドロキシブチル（メタ）アクリレート及びその水酸基の一置換エステル、グリセロールモノ（メタ）アクリレート、ポリプロピレングリコールを側鎖とする（メタ）アクリレート、２－メトキシエチル（メタ）アクリレート、２－エトキシエチル（メタ）アクリレート、メトキシジエチレングリコール（メタ）アクリレート、エトキシジエチレングリコール （メタ）アクリレート、エトキシポリエチレングリコール（メタ）アクリレート等が挙げられる。また、アルキレングリコール残基の平均繰り返し数が５以上９０以下であることが好ましい。
アルキレングリコール残基の平均繰り返し数が上記範囲であることにより、合成時に優れた操作性（ハンドリング）を有する。
本実施形態の非特異的吸着抑制物質としては、上記アルキレングリコール残基を有するモノマーのいずれかの末端に、前記固定化基を導入して用いればよい。
　スルホアルキルアミノ基を有する単量体としては、例えば、Ｎ－メチル－Ｎ－（３－スルホプロピル）アクリルアミド、３－（Ｎ，Ｎ－ジメチルミリスチルアンモニオ）プロパンスルホン酸（３－（Ｎ，Ｎ－Ｄｉｍｅｔｈｙｌｍｙｒｉｓｔｙｌａｍｍｏｎｉｏ）ｐｒｏｐａｎｅｓｕｌｆｏｎａｔｅ、ＳＢ３－１４、ミリスチルスルホベタイン）等が挙げられる。本実施形態の非特異的吸着抑制物質としては、これらのスルホ基とは反対側の末端に前記固定化基を導入して用いればよい。
　前記生体親和性基を有する単量体に、前記固定化基を導入する方法としては、導入したい固定化の種類に応じて、公知の方法を用いて行えばよい。例えば、固定化基がチオール基である場合、前記生体親和性基を有する単量体のうち、固定化基を導入したい炭素に結合している水素のうち少なくとも一つをハロゲン原子（例えば、塩素、臭素、ヨウ素等）に置換し、次いでアルカリ存在下で硫化水素を反応させることにより、チオール基を導入することができる。
　又は、上述の＜＜保護膜における親和性物質の固定化方法＞＞で例示されたシランカップリング剤又はホスホコリン誘導体に、公知の方法を用いて、前記生体親和性基を導入して用いてもよい。
　本実施形態の非特異的吸着抑制物質としてより具体的には、例えば、スルホベタインタイプのアルカンチオールである３－［（１１－Ｍｅｒｃａｐｔｏｕｎｄｅｃｙｌ）－Ｎ，Ｎ－ｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｏ］　ｐｒｏｐａｎｅｓｕｌｆｏｎａｔｅ等が挙げられる。
＜＜ＭＲカバー膜における非特異的吸着抑制物質の固定化方法＞＞
　ＭＲカバー膜表面における非特異的吸着抑制物質の固定化方法としては、例えば、ＭＲカバー膜の構成材料が貴金属である場合、固定化基としてチオール基、イソチオシアネート基又はジスルフィド基を有する非特異的吸着抑制物質を用いればよく、該固定化基と貴金属表面とがチオレート結合を形成し、非特異的吸着抑制物質を固定化することができる。
　また、ＭＲカバー膜の構成材料が酸化物である場合、固定化基としてアルコキシシラン基又はホスホン酸基を有する非特異的吸着抑制物質を用いればよく、該固定化基と酸化物表面とがエーテル結合を形成し、非特異的吸着抑制物質を固定化することができる。
　より具体的なＭＲカバー膜表面への非特異的吸着抑制物質の固定化方法については、ＭＲカバー膜の構成材料によって、公知の方法に従って当業者が決定できる。例えば、非特異的吸着抑制物質を含有する溶液を、ＭＲカバー膜に接触させる方法等が挙げられる。
例えば、保護膜を構成する材料が酸化物であり、アルコキシシラン基を有する非特異的吸着抑制物質を固定化する場合には、ＭＲカバー膜表面が、非特異的吸着抑制物質をｐＨ７．０以上１０．０以下の一般的な緩衝液に混合した溶液に接触する状態で所定時間インキュベートすることにより、エーテル結合を介して、非特異的吸着抑制物質をＭＲカバー層表面に固定化することができる。該緩衝液としては、例えば、リン酸緩衝液、トリス緩衝液等が挙げられる。
○その他構成
・電極端子
電極端子は、磁気抵抗効果素子及び軟磁性体薄膜と異なる平面である第４の平面に配置される。また、電極端子は、内部配線を経て磁気抵抗効果素子と接続されており、磁気抵抗効果素子の抵抗変化を出力として外部に取り出すことができる。電極端子及び内部配線としては、例えばＡｕ、Ａｌ、Ａｇ、Ｃｕ等の導体金属やこれらの合金などが好ましい。
・絶縁層
　磁気抵抗効果素子と軟磁性体薄膜と電極端子とは、絶縁層で隔てられており、各部相互の電気的な短絡を防止できる。また、基板が導電性材料の場合、基板の主面には絶縁層が形成されており、基板を経由した電気的短絡を防止できる。絶縁層としては、例えばアルミナ、窒化アルミ、酸化シリコン、窒化シリコン等の無機物や、ポリイミド等の有機物が好ましい。
・印加磁界及び検出磁界
　生体分子を介して保護膜上に磁気ビーズが集積し、軟磁性体薄膜と交差する方向に磁界（印加磁界）を印加したときに、検出磁界（漏れ磁界）が磁気抵抗効果素子に入力される。印加磁界の方向としては、磁気抵抗効果素子の主面に対して垂直であることが好ましい。印加磁界としては、特に限定されないが、０．１ｍテスラ以上１００ｍテスラ以下が好ましく、１ｍテスラ以上１０ｍテスラ以下がより好ましい。
印加磁界が係る場合、漏れ磁界は、１ｎテスラ以上１０ｍテスラ以下が好ましく、１０μテスラ以上５ｍテスラ以下がより好ましく、５０μテスラ以上１ｍテスラ以下が特に好ましい。
　検出磁界（漏れ磁界）は、保護膜を介して磁気抵抗効果素子の主面上を占める磁気ビーズの割合によって影響を受ける。保護膜に集積する磁気ビーズの数が多いほど、検出される抵抗値が増加する。保護膜に集積する磁気ビーズの数と漏れ磁界を介して検出される抵抗値は、線形相関している。
　そして、磁気ビーズが備える第二の親和性物質の力価（例えば、第二の親和性物質が捕捉する生体分子の分子数）をもとに、保護膜上に集積した生体分子全体の分子数を算出することができる。
すなわち、本実施形態のバイオセンサによれば、試料中に含まれている生体分子の分子数を算出できる。このように、本実施形態のバイオセンサにおいては、試料中の生体分子の定量性を高精度に確保できる。
　また、本実施形態のバイオセンサは、高感度であり、数十ナノテスラまで検出可能である。具体的には、磁気ビーズ１５００個に対して１０個の増減を検出できる。すなわち約０．５％の変化を検出可能である。
　さらに、本実施形態のバイオセンサは、磁気ビーズを用いるため、蛍光と比べて高感度で寿命も長い。従って、ＥＬＩＳＡ等の検出手段と比較して格段に優れている。
◇バイオセンサの製造方法
　本実施形態のバイオセンサは、上述の各構成を対応する位置関係となるように、公知の方法を用いて、順次積層することで製造できる。
　また、保護膜における親和性物質の固定化方法については、上述の＜＜保護膜における親和性物質の固定化方法に＞＞に記載のとおりである。
また、ＭＲカバー膜における非特異的吸着抑制物質の固定化方法については、上述の＜＜ＭＲカバー膜における非特異的吸着抑制物質の固定化方法＞＞に記載のとおりである。
◇バイオセンサの使用方法
◎生体分子の検出方法
　本実施形態のバイオセンサは、例えば、以下に示す生体分子の検出方法に使用できる。
　まず、生体分子を含有する試料を保護膜に接触させて、前記生体分子を前記第一の親和性物質を介して前記保護膜上に集積させる（工程１）。次いで、磁気ビーズを前記保護膜に接触させて、前記生体分子を介して前記保護膜上に集積させる（工程２）。次いで、軟磁性体薄膜と交差する方向に磁界を印加して、検出磁界を前記磁気抵抗効果素子に入力させ、抵抗値を検出する（工程３）。
　各工程について詳細に説明する。
［工程１］
　工程１は、生体分子を含有する試料を保護膜に接触させて、生体分子を第一の親和性物質を介して前記保護膜上に集積させる工程である。簡便である等の観点から、バイオセンサはマイクロ流体デバイス中で用いられることが好ましい。工程１において、まずマイクロ流路中に生体分子を含有する試料を流す。試料としては、検出対象の生体分子を含有するものであれば、特に限定されない。試料としては、例えば、本実施形態の生体分子の検出方法を疾患の診断に用いる場合には、疾患の発症が確認されている者、若しくは疾患の発症が疑われている者、又は疾患に対する治療を受けている患者等の被検者由来の試料等が挙げられる。試料として、より具体的には、上述の「○保護膜」で例示されたものと同様のものが挙げられる。
　例えば、血中循環腫瘍細胞の表面に存在する抗原、受容体等のペプチド・タンパク質を検出対象にする場合には、マイクロ流路中に試料をそのまま流してもよい。例えば、ｍｉＲＮＡは、がん、心血管疾患、神経変性疾患、精神疾患、慢性炎症性疾患などの発症と進行に関わることが報告されている。ｍｉＲＮＡをはじめとして、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、Ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｒＲＮＡ等の核酸を検出対象とする場合には、前記生体試料から核酸を抽出することが好ましい。抽出方法は、核酸の種類に応じて定法から適宜選択される。
　マイクロ流路中を流れる試料中の生体分子は、保護膜上の第一の親和性物質に捕捉され、保護膜上に集積する。第一の親和性物質としては、上述した通り、核酸、抗体等が挙げられる。生体分子は、ハイブリダイゼーション、抗原抗体反応等により、保護膜上で、第一の親和性物質と複合体を形成する。
　保護膜上に第一の親和性物質－生体分子複合体が形成された後、保護膜を、緩衝液等を用いて洗浄することが好ましい。洗浄により、保護膜上に非特異的に結合している夾雑物を除去することができ、生体分子の検出精度を向上させることができる。該緩衝液としては、例えば、リン酸緩衝液、トリス緩衝液等が挙げられる。
［工程２］
　工程２は、磁気ビーズを保護膜に接触させて、生体分子を介して前記保護膜上に集積させる工程である。上述した通り、磁気ビーズは、生体分子を捕捉する第二の親和性物質を備えている。例えば、マイクロ流路中を磁気ビーズが流れ、保護膜と接触した場合、保護膜上に形成されている第一の親和性物質－生体分子複合体中の生体分子と、第二の親和性物質を介して結合する。工程２により、保護膜上に第一の親和性物質－生体分子－第二の親和性物質複合体が形成される。すなわち、第二の親和性物質を備えた磁気ビーズが保護膜上に集積する。
　保護膜上に第一の親和性物質－生体分子－第二の親和性物質複合体が形成された後、工程１と同様に保護膜を、緩衝液等を用いて洗浄することが好ましい。洗浄により、保護膜上に非特異的に結合している磁気ビーズを除去することができ、生体分子の検出精度を向上させることができる。該緩衝液としては、［工程１］において例示されたものと同様のものが挙げられる。
［工程３］
　工程３は、軟磁性体薄膜と交差する方向に磁界を印加して、検出磁界を前記磁気抵抗効果素子に入力させ、抵抗値を検出する工程である。
　検出磁界（漏れ磁界）は、保護膜を介して磁気抵抗効果素子の主面上を占める磁気ビーズの割合によって影響を受ける。保護膜に集積する磁気ビーズの数が多いほど、検出される抵抗値が増加する。
　工程３により、保護膜上に集積した磁気ビーズの数を正確に定量することができる。そして、磁気ビーズが備える第二の親和性物質の力価（例えば、第二の親和性物質が捕捉する生体分子の分子数）をもとに、保護膜上に集積した生体分子全体の分子数を算出することができる。すなわち、本実施形態の検出方法によれば、試料中に含まれている生体分子の分子数を算出できる。そのため、試料中の生体分子の分子数と病状に正の相関がみられる場合には、試料中の生体分子の分子数を遂次算出することにより、病状の経過観察をすることができる。
このように、本実施形態の検出方法においては、試料中の生体分子の定量性を確保できる。
　本実施形態のバイオセンサの他の使用例として、以下に示す生体分子の検出方法に使用してもよい。
まず、生体分子を含有する試料と磁気ビーズとを混合し、第二の親和性物質を介し磁気ビーズに生体分子を捕捉させる（工程４）。次いで、生体分子を捕捉した磁気ビーズを保護膜に接触させて、前記生体分子を介して、前記磁気ビーズを前記保護膜上に集積させる（工程５）。次いで、前記軟磁性体薄膜と交差する方向に磁界を印加して、検出磁界を前記磁気抵抗効果素子に入力させ、抵抗値を検出する（工程３）。
第一の親和性物質－生体分子－第二の親和性物質複合体を形成させる際に、生体分子－第二の親和性物質複合体を先に形成させること以外は、上述の［工程１］～［工程３］を備える生体分子の検出方法と同様であるため、説明を省略する。
◎バイオチップ
　本実施形態のバイオセンサは、バイオチップに応用することができる。
　本実施形態のバイオチップは、保護膜上に備える第一の親和性物質が異なるバイオセンサを複数備えることにより、試料の有する性質を網羅的に解析することができる。
前記バイオチップとしては、例えば、がん診断用バイオチップ、がん腫別診断用バイオチップ、インフルエンザウイルス検出用バイオチップ等が挙げられる。
○がん診断用バイオチップ
　保護膜上に備える第一の親和性物質としては、がん遺伝子又はがん抑制遺伝子由来の核酸に相補的な核酸が挙げられる。がん遺伝子又はがん抑制遺伝子に、がん患者特有の変異が存在する場合には、係る変異を含む核酸に相補的な核酸が好ましい。
　がん遺伝子としては、ｓｉｓ等の増殖因子をコードする遺伝子群；ｅｒｂＢ、ｆｍｓ、ｒｅｔ等のレセプター型チロシンキナーゼをコードする遺伝子群；ｆｅｓ等の非レセプター型チロシンキナーゼをコードする遺伝子群；ｒａｓ等のＧＴＰ／ＧＤＰ結合タンパク質をコードする遺伝子群；ｓｒｃ、ｍｏｓ、ｒａｆ等のセリン／スレオニンキナーゼをコードする遺伝子群；ｍｙｃ、ｍｙｂ、ｆｏｓ、ｊｕｎ、ｅｒｂＡ等の核内タンパク質をコードする遺伝子群；ｃｒｋ等のシグナル伝達アダプター分子をコードする遺伝子群；Ｂｃｒ－Ａｂｌ等の融合遺伝子が挙げられる。
　さらに、がん遺伝子として、Ｓｈｃ、Ｇｒｂ２、Ｓｏｓ、ＭＥＫ、Ｒｈｏ、Ｒａｃ遺伝子等のＲａｓ－ＭＡＰキナーゼ経路関連遺伝子；ＰＬＣγ、ＰＫＣ等のホスホリパーゼＣガンマ-プロテインキナーゼＣ経路関連遺伝子；ＰＩ３Ｋ、Ａｋt、Ｂａｄ等のＰＩ３Ｋ－Ａｋt経路関連遺伝子；ＪＡＫ、ＳＴＡＴ等のＪＡＫ－ＳＴＡＴ経路関連遺伝子；ＧＡＰ、ｐ１８０、ｐ６２等のＧＡＰ系経路関連遺伝子が挙げられる。
　がん抑制遺伝子としては、ＲＢ、ｐ５３、ＷＴ１、ＮＦ１、ＡＰＣ、ＶＨＬ、ＮＦ２、ｐ１６、ｐ１９、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２、ＰＴＥＮ、Ｅカドヘリン遺伝子等が挙げられる。
　また、第一の親和性物質として上述した遺伝子の遺伝産物であるタンパク質を捕捉するもの、例えば、抗体（抗体断片も含む）、アプタマー、リガンド、受容体等であってもよい。
○がんの種類別診断用バイオチップ
　本実施形態のバイオチップにおいて、保護膜上に備える第一の親和性物質としては、１種類のがんから抽出される複数の核酸に相補的な核酸であってもよい。すなわち、本実施形態のバイオチップはがんの種類別診断用バイオチップであってもよい。
　対象となるガンとしては、特別な限定はなく、例えば、乳がん（例えば、浸潤性乳管がん、非浸潤性乳管がん、炎症性乳がん等）、前立腺がん（例えば、ホルモン依存性前立腺がん、ホルモン非依存性前立腺がん等）、膵がん（例えば、膵管がん等）、胃がん（例えば、乳頭腺がん、粘液性腺がん、腺扁平上皮がん等）、肺がん（例えば、非小細胞肺がん、小細胞肺がん、悪性中皮腫等）、結腸がん（例えば、消化管間質腫瘍等）、直腸がん（例えば、消化管間質腫瘍等）、大腸がん（例えば、家族性大腸がん、遺伝性非ポリポーシス大腸がん、消化管間質腫瘍等）、小腸がん（例えば、非ホジキンリンパ腫、消化管間質腫瘍等）、食道がん、十二指腸がん、舌がん、咽頭がん（例えば、上咽頭がん、中咽頭がん、下咽頭がん等）、頭頚部がん、唾液腺がん、脳腫瘍（例えば、松果体星細胞腫瘍、毛様細胞性星細胞腫、びまん性星細胞腫、退形成性星細胞腫等）、神経鞘腫、肝臓がん（例えば、原発性肝がん、肝外胆管がん等）、腎臓がん（例えば、腎細胞がん、腎盂と尿管の移行上皮がん等）、胆嚢がん、胆管がん、膵臓がん、肝がん、子宮内膜がん、子宮頸がん、卵巣がん（例、上皮性卵巣がん、性腺外胚細胞腫瘍、卵巣性胚細胞腫瘍、卵巣低悪性度腫瘍等）、膀胱がん、尿道がん、皮膚がん（例えば、眼内（眼）黒色腫、メルケル細胞がん等）、血管腫、悪性リンパ腫（例えば、細網肉腫、リンパ肉腫、ホジキン病等）、メラノーマ（悪性黒色腫）、甲状腺がん（例えば、甲状腺髄様がん等）、副甲状腺がん、鼻腔がん、副鼻腔がん、骨腫瘍（例えば、骨肉腫、ユーイング腫瘍、子宮肉腫、軟部組織肉腫等）、転移性髄芽腫、血管線維腫、隆起性皮膚線維肉腫、網膜肉腫、陰茎癌、精巣腫瘍、小児固形がん（例えば、ウィルムス腫瘍、小児腎腫瘍等）、カポジ肉腫、ＡＩＤＳに起因するカポジ肉腫、上顎洞腫瘍、線維性組織球腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、慢性骨髄増殖性疾患、白血病（例えば、急性骨髄性白血病、急性リンパ芽球性白血病等）等が挙げられ、これらに限定されない。
　上述したがん遺伝子及びがん抑制遺伝子をはじめとして、がんの種類によって特異的な遺伝子の発現／変異パターンが存在することが報告されている。そのため、がんの種類ごとの遺伝子発現プロファイル等に基づいて、本実施形態のバイオチップを作製することにより、診断の精度を高めることができる。
　また、本実施形態のバイオチップを用いれば、抗がん剤の感受性／耐性の予測をすることができる。例えば、ＥＧＦＲ阻害剤であるゲフィニチブの場合、被検サンプル中のＥＧＦＲがＬ８５８Ｒ変異又はＧ７１９Ｘ変異を有している場合には、ゲフィニチブ感受性を示すことが報告されている。
　一方、被検サンプル中のＥＧＦＲがＴ７９０Ｍ変異及び／又はＤ７６１Ｙ変異を有している場合には、ゲフィニチブ耐性を示すことが報告されている。また、ゲフィニチブ耐性を示すこれらの変異は、病期が進むにつれて検出される頻度が高くなることが報告されている。本実施形態のバイオチップは、耐性変異を示すＥＧＲＦ遺伝子を容易に定量することができることから、本実施形態のバイオチップによれば、がんの進行度を調べることもできる。
○インフルエンザウイルス検出バイオチップ
　また、本実施形態のバイオチップにおいて、保護膜上に備える第一の親和性物質としては、インフルエンザウイルス由来の核酸に相補的な核酸、又はインフルエンザウイルスが特異的に結合する糖鎖であってもよい。すなわち、本実施形態のバイオチップはインフルエンザウイルス検出用バイオチップであってもよい。
　本実施形態のバイオチップとしては、例えば、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型それぞれのゲノムにおいて、報告されている変異をはじめとするあらゆる変異部位を認識する核酸を保護膜上に固定したものが挙げられる。また、第一の親和性物質としては、Ａ型、Ｂ型、及びＣ型ウイルスのそれぞれを特異的に認識可能な抗体であってもよい。また、インフルエンザウイルスは、細胞に感染する際にシアル酸残基に結合することが知られており、ウイルスの種類によって、ウイルスが結合し得るシアル酸と糖との結合の様式が異なるため、第一の親和性物質としては、Ａ型、Ｂ型、及びＣ型ウイルスのそれぞれが結合するシアル酸含有糖鎖であってもよい。
　なお、本明細書において、「「シアル酸（ｓｉａｌｉｃ　ａｃｉｄ）」とは、９炭糖であるノイラミン酸（ｎｅｕｒａｍｉｎｉｃ　ａｃｉｄ）のアミノ基やヒドロキシ基が置換された物質の総称を意味し、例えば、５位がアセチル化されたＮ－アセチルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ａｃ）や、グリコール酸で修飾されたＮ－グライコリルノイラミン酸（Ｎｅｕ５Ｇｃ）が挙げられる。
　本実施形態のバイオチップによれば、インフルエンザウイルスの感染を早期に発見することができる。
さらに、本実施形態のバイオチップを経時的に用いることにより、ウイルス感染後の病状の経過観察をすることができる。
　上述の実施形態によれば、ＧＭＲ出力の変動が抑制され、高精度かつ高感度に試料中の生体分子を検出することができる。また、本実施形態のバイオセンサをバイオチップとして利用することにより、簡便且つ迅速に診断することができ、例えば、がん診断、がんの種類別診断、がんの進行度診断、インフルエンザウイルスの検出、インフルエンザウイルスの種類の特定、インフルエンザの病状観察等に応用可能である。
　１０，１００，２００，３００，４００，５００…バイオセンサ、１１，１０１…基板、２，１２，１０２…磁気抵抗効果素子、３，１３…軟磁性体薄膜、４，１４，１０４…磁気ビーズ、１５，１０５…印加磁界、１６…ＭＲカバー膜、１７，１０７…保護膜、１８…検出磁界、１９…親和性物質、１０９…生体分子捕捉層、２０…第２の保護膜、１１１…浮遊磁界、１１２…電極、Ａ…第１の領域、Ｂ…第２の領域、ａ…第１の平面、ｂ…第２の平面、ｃ…第３の平面

Claims (12)

  1. 　試料中の生体分子を検出するためのバイオセンサであって、
    　第１の領域、及び前記第１の領域に隣接して配設される第２の領域が形成される面を有する基板と、
    　前記第１の領域上に配置され、入力される磁界に応じて検出される抵抗値が変化する磁気抵抗効果素子と、
    　前記第２の領域上に配置された軟磁性体薄膜と、
    　前記第１の領域上及び前記第２の領域上の両方に配置され、前記軟磁性体薄膜の表面を覆うと共に、前記第２の領域上において最上部に配置され、前記第２の領域上においてのみ外表面に前記生体分子を認識する親和性物質を有する保護膜と、
    　少なくとも前記第１の領域上において最上部に配置され、前記磁気抵抗効果素子の上方の、前記保護膜上に配置され、前記親和性物質を実質的に備えないＭＲカバー膜と、を備え、
    　前記軟磁性体薄膜は、前記軟磁性体薄膜上に集積される磁気ビーズの浮遊磁界の積層面内方向成分を前記磁気抵抗効果素子へ伝達するように構成され、
    　前記保護膜及び前記ＭＲカバー膜は互いに異なる材料から構成されているバイオセンサ。
  2. 　さらに、前記ＭＲカバー膜の外表面に前記生体分子の非特異的吸着を抑制する物質を備えた請求項１に記載のバイオセンサ。
  3. 　前記保護膜を構成する材料が貴金属であり、前記ＭＲカバー膜を構成する材料が酸化物である請求項１又は２に記載のバイオセンサ。
  4. 　前記保護膜を構成する材料が酸化物であり、前記ＭＲカバー膜を構成する材料が貴金属である請求項１又は２に記載のバイオセンサ。
  5. 　前記貴金属が、金、銀、白金、ロジウム、ルテニウム及びパラジウムのうちからなる群から選ばれる少なくとも１種である請求項３又は４に記載のバイオセンサ。
  6. 　前記酸化物が、アルミナ、シリカ、酸化チタン、酸化ジルコニウム、酸化インジウム、酸化タルタル、酸化亜鉛、酸化ガリウム及び酸化スズからなる群から選ばれる少なくとも１種である請求項３又は４に記載のバイオセンサ。
  7. 　前記非特異的吸着を抑制する物質がチオール基、イソチオシアネート基及びジスルフィド基からなる群から選ばれる少なくとも１つを有する請求項４～６のいずれか一項に記載のバイオセンサ。
  8. 　前記非特異的吸着を抑制する物質がアルコキシシラン基及びホスホン酸基のうち少なくともいずれかを有する請求項３、５、６のいずれか一項に記載のバイオセンサ。
  9. 　前記保護膜が複数の膜からなる請求項１～８のいずれか一項に記載のバイオセンサ。
  10. 　前記ＭＲカバー膜が、前記保護膜を構成する複数の膜のうちの最上部の膜以外の膜上の、前記第１の領域及び第２の領域のいずれにも配置されている請求項９に記載のバイオセンサ。
  11. 　前記ＭＲカバー膜が、前記保護膜を構成する複数の膜のうちの最上部の膜以外の膜上の、前記第１の領域にのみ配置されている請求項９に記載のバイオセンサ。
  12. 　請求項１～１１のいずれか一項に記載のバイオセンサを備えているバイオチップ。
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