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WO2014175177A1 - ポリペプチドヒドロゲル及びその製造方法 - Google Patents

ポリペプチドヒドロゲル及びその製造方法 Download PDF

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Publication number
WO2014175177A1
WO2014175177A1 PCT/JP2014/061041 JP2014061041W WO2014175177A1 WO 2014175177 A1 WO2014175177 A1 WO 2014175177A1 JP 2014061041 W JP2014061041 W JP 2014061041W WO 2014175177 A1 WO2014175177 A1 WO 2014175177A1
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WO
WIPO (PCT)
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polypeptide
solution
hydrogel
water
solvent
Prior art date
Application number
PCT/JP2014/061041
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English (en)
French (fr)
Inventor
大澤利昭
森田啓介
Original Assignee
スパイバー株式会社
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Filing date
Publication date
Application filed by スパイバー株式会社 filed Critical スパイバー株式会社
Priority to US14/764,455 priority Critical patent/US9968682B2/en
Priority to CN201480005729.6A priority patent/CN104936625A/zh
Priority to JP2015513725A priority patent/JP5782580B2/ja
Priority to EP14788691.5A priority patent/EP2990062B1/en
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    • A61L2430/06—Materials or treatment for tissue regeneration for cartilage reconstruction, e.g. meniscus

Definitions

  • the present invention relates to a polypeptide hydrogel using a polypeptide derived from spider silk protein as a raw material and a method for producing the same.
  • the present invention provides a polypeptide hydrogel excellent in water retention and also provides a polypeptide hydrogel excellent in application to a living body and a method for producing the same.
  • a polypeptide derived from spider silk protein is dissolved in at least one dissolving solvent selected from the group consisting of the following (A) to (C) to prepare a polypeptide solution.
  • A) Dimethyl sulfoxide B) Dimethyl sulfoxide added with inorganic salt
  • substitution step of replacing the solution produced in the solution producing step with a water-soluble solvent It is characterized by including.
  • dissolving a polypeptide in a solvent for dissolution means that the polypeptide is completely dissolved in the solvent for dissolution and the fine particles of the polypeptide are dispersed in the solvent for dissolution. And a form in which the fine particles are substantially dissolved in a dissolving solvent.
  • solvent for dissolution means that the polypeptide is completely dissolved in the solvent for dissolution and the fine particles of the polypeptide are dispersed in the solvent for dissolution. And a form in which the fine particles are substantially dissolved in a dissolving solvent.
  • FIG. 1 is a photograph of a hydrogel according to an embodiment of the present invention.
  • Examples of the large sputum bookmark thread protein include large bottle-shaped wire spidroins MaSp1 and MaSp2 derived from Nephila clavipes, and ADF3 and ADF4 derived from two-banded spider (Araneus diadematus).
  • polypeptide derived from the large sputum dragline protein examples include a polypeptide comprising 2 or more, preferably 4 or more, more preferably 6 or more amino acid sequence units represented by Formula 1: REP1-REP2 (1).
  • the unit of the amino acid sequence represented by the formula (1): REP1-REP2 (1) may be the same or different.
  • REP1 means polyalanine.
  • alanine arranged continuously is preferably 2 residues or more, more preferably 3 residues or more, still more preferably 4 residues or more, particularly preferably 5 residues or more. It is. In the REP1, alanine continuously arranged is preferably 20 residues or less, more preferably 16 residues or less, still more preferably 14 residues or less, and particularly preferably 12 residues. Below the group.
  • REP2 is an amino acid sequence consisting of 10 to 200 amino acids, and the total number of residues of glycine, serine, glutamine, proline and alanine contained in the amino acid sequence is the total number of amino acid residues. Is 40% or more, preferably 50% or more, more preferably 60% or more.
  • the REP1 corresponds to a crystalline region that forms a crystalline ⁇ -sheet in the fiber
  • the REP2 is an amorphous region that is more flexible in the fiber and largely lacks a regular structure.
  • [REP1-REP2] corresponds to a repetitive region (repetitive sequence) composed of a crystal region and an amorphous region, and is a characteristic sequence of a bookmark thread protein.
  • Examples of the polypeptide containing two or more amino acid sequence units represented by Formula 1: REP1-REP2 (1) are shown in any of SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 consists of a partial amino acid sequence of ADF3 obtained from the NCBI database (NCBI Genebank accession number: AAC47010, GI: 1263287) at the N-terminus with a start codon, His10 tag and HRV3C.
  • SEQ ID NO: 5 corresponds to the amino acid sequence from the first residue to the 631st residue of the amino acid sequence to which an amino acid sequence (SEQ ID NO: 5) consisting of a protease (Human rhinovirus 3C protease) recognition site is added.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 is the amino acid sequence of ADF3 (NCBI Genebank's amino acid sequence), to which an amino acid sequence (SEQ ID NO: 5) consisting of a recognition site for initiation codon, His10 tag and HRV3C protease (Human rhinovirus 3C protease) is added.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 consists of a partial amino acid sequence of ADF3 obtained from the NCBI database (NCBI Genebank accession number: AAC47010, GI: 1263287) at the N-terminus with a start codon, His10 tag and HRV3C. It is an amino acid sequence to which an amino acid sequence (SEQ ID NO: 5) consisting of a protease (Human rhinovirus 3C protease) recognition site is added.
  • the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 is an amino acid sequence of ADF3 (NCBI Genebank's amino acid sequence) with an amino acid sequence (SEQ ID NO: 5) consisting of a recognition site for initiation codon, His10 tag and HRV3C protease (Human rhinovirus 3C protease) at the N-terminus.
  • the accession number: AAC47010, GI: 1263287) the first to thirteenth repetitive regions are increased to be approximately doubled.
  • the polypeptide containing two or more units of the amino acid sequence represented by Formula 1: REP1-REP2 (1) is an amino acid represented by any one of SEQ ID NO: 1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO: 3 and SEQ ID NO: 4.
  • a polypeptide having an amino acid sequence in which one or more amino acids are substituted, deleted, inserted and / or added in the sequence and having a repetitive region consisting of a crystalline region and an amorphous region may be used.
  • “one or more” means, for example, 1 to 40, 1 to 35, 1 to 30, 1 to 25, 1 to 20, 1 to 15, 1 to 10, Or one or several.
  • “one or several” means 1 to 9, 1 to 8, 1 to 7, 1 to 6, 1 to 5, 1 to 4, 1 to 3, Means 2 or 1.
  • Examples of the recombinant spider silk protein derived from the above-mentioned small splint bookmark silk protein include a polypeptide comprising the amino acid sequence represented by Formula 2: REP3 (2).
  • REP3 means an amino acid sequence composed of (Gly-Gly-Z) m (Gly-Ala) l (A) r, and Z means any one amino acid, especially Ala,
  • M is preferably from 1 to 4
  • l is preferably from 0 to 4
  • r is preferably from 1 to 6.
  • small splint bookmark yarn is spirally wound from the center of the spider's web, and is used as a reinforcing material for the web or as a yarn that wraps the captured prey. It is known that the tensile strength is inferior to that of the large splint bookmark yarn, but the stretchability is high. This is because in the small spout bookmark thread, many crystal regions are formed from regions in which glycine and alanine are alternately arranged, so that the crystal region is larger than the large spout bookmark yarn in which the crystal region is formed only with alanine. This is thought to be because the hydrogen bond of the sulfite tends to be weak.
  • Examples of the recombinant spider silk protein derived from the above-described weft protein include a polypeptide comprising an amino acid sequence represented by Formula 3: REP4 (3).
  • REP4 means an amino acid sequence composed of (Gly-Pro-Gly-Gly-X) n
  • X means any one amino acid, especially from Ala, Ser, Tyr and Val. It is preferably one amino acid selected from the group consisting of N represents a number of 4 or more, preferably 10 or more, and more preferably 20 or more.
  • a great feature of spider silk is that the weft does not have a crystal region but has a repeating region consisting of an amorphous region. It is presumed that the large splint bookmark yarn has both high stress and stretchability because it has a repetitive region consisting of a crystal region and an amorphous region. On the other hand, the weft yarn is inferior in stress to the large splint guide yarn, but has high stretchability. This is considered to be because most of the weft is composed of amorphous regions.
  • the polypeptide can be produced using a host transformed with an expression vector containing a gene encoding the polypeptide.
  • the gene production method is not particularly limited, and a gene encoding a natural spider silk protein is cloned from a spider-derived cell by polymerase chain reaction (PCR) or the like, or chemically synthesized.
  • the method of chemical synthesis of the gene is not particularly limited.
  • AKTA oligopilot plus 10/100 GE Healthcare Japan Co., Ltd.
  • Oligonucleotides automatically synthesized by a company can be synthesized by ligation by PCR or the like.
  • a gene encoding a protein consisting of an amino acid sequence in which an amino acid sequence consisting of a start codon and a His10 tag is added to the N-terminus of the amino acid sequence may be synthesized.
  • a plasmid, phage, virus or the like capable of expressing a protein from a DNA sequence can be used.
  • the plasmid type expression vector is not particularly limited as long as it can express the target gene in the host cell and can amplify the gene itself.
  • a pET22b (+) plasmid vector when Escherichia coli Rosetta (DE3) is used as a host, a pET22b (+) plasmid vector, a pCold plasmid vector, or the like can be used. Among these, it is preferable to use a pET22b (+) plasmid vector from the viewpoint of protein productivity.
  • the host examples include animal cells, plant cells, and microorganisms.
  • polypeptide a polypeptide having a characteristic (easy aggregation property) that easily aggregates when the solution generated in the solution generation step is replaced with a water-soluble solvent is preferably used. This facilitates gel production regardless of the polypeptide concentration of the solution. Even if the polypeptide does not have easy aggregation properties, for example, if the polypeptide concentration of the solution generated in the solution generation step is increased, the polypeptide aggregates when the solution is replaced with a water-soluble solvent, A gel will be easily manufactured. Polypeptide aggregation can also occur by lowering the temperature from a high temperature state to a low temperature state.
  • polypeptide hydrogel is produced by substituting the solution produced in the solution production step with a water-soluble solvent to aggregate the polypeptides.
  • polypeptide hydrogels polypeptides that can aggregate to form a gel upon contact with a water-soluble solvent are used.
  • the gel of the present invention contains 85.0 to 99.9% by mass of water with respect to 100% by mass of the polypeptide hydrogel.
  • the content is preferably 90.0 to 99.7% by mass, and more preferably 92.0 to 99.5% by mass.
  • the water here is liquid water.
  • the gel of the present invention comprises a solution generation step of obtaining a polypeptide solution by dissolving a polypeptide derived from spider silk protein in at least one dissolution solvent selected from the group consisting of the following (A) to (C): , (A) Dimethyl sulfoxide (B) Dimethyl sulfoxide added with inorganic salt (C) N, N-dimethylformamide added with inorganic salt By replacing the solution produced in the solution producing step with a water-soluble solvent Can be created.
  • the water-soluble solvent refers to a solvent containing water, and examples thereof include water, a water-soluble buffer solution, and physiological saline.
  • the water-soluble solvent is preferably water from the viewpoint of high adaptability to the human body. Although it does not specifically limit as said water, Pure water, distilled water, ultrapure water, etc. can be used.
  • the solution viscosity after the solution generation step is preferably 5 to 80 cP (centipoise), more preferably 10 to 50 cP. If it is the said range, it is easy to handle and is convenient.
  • the remaining amount of the solvent: dimethyl sulfoxide (DMSO) or N, N-dimethylformamide (DMF) in the polypeptide after the water-soluble solvent substitution step can be measured with a nuclear magnetic resonance spectrometer (NMR).
  • NMR nuclear magnetic resonance spectrometer
  • a 1,2-dichloroethane-formic acid solution can be used.
  • the H-NMR integrated intensity of the internal standard sample 1,2-dichloroethane was compared with the H-NMR integrated intensity of DMSO.
  • a calibration curve was prepared by preparing a DMSO-formic acid solution of 3 ppm to 3000 ppm and according to the above protocol. From the comparison with the calibration curve, the DMSO concentration in the protein solution was determined. DMSO concentration measurement was performed using a nuclear magnetic resonance apparatus (NMR) manufactured by JEOL. (2) Viscosity An EMS device manufactured by KEM was used. (3) Moisture content
  • W1 and the mass of the dried body obtained by completely drying the hydrogel: W2 are measured, and the measured values are substituted into the following formula 1 to obtain. It was.
  • Moisture content [(W1-W2) x 100] / W1 ... Formula 1
  • Example 1 Preparation of polypeptide ⁇ Synthesis of ADF3Kai-A gene> A partial amino acid sequence of ADF3, which is one of the two main dragline proteins of Niwaonigamo, was obtained from the NCBI web database (NCBI accession numbers: AAC47010, GI: 1263287), and the start codon at the N-terminus of the same sequence.
  • amino acid sequence consisting of a His10 tag and an HRV 3C protease (Human rhinovirus 3C protease) recognition site, and an amino acid sequence from the first to 631 residues at the N-terminal of the sequence (SEQ ID NO: 5)
  • a gene encoding a polypeptide consisting of 1) was synthesized.
  • a pUC57 vector (with an Nde I site immediately upstream of the 5 ′ end and an Xba I site immediately downstream of the 5 ′ end) into which the ADF3Kai-A gene having the base sequence shown in SEQ ID NO: 6 was introduced was obtained. did.
  • the gene was subjected to restriction enzyme treatment with Nde I and EcoR I, recombined into the pET22b (+) expression vector, and a pET22b (+) vector into which the ADF3Kai-A gene was introduced was obtained.
  • pET22b (+) expression vector containing the ADF3Kai-A gene sequence obtained above was transformed into Escherichia coli Rosetta (DE3). After culturing the obtained single colony in 2 mL of LB medium containing ampicillin for 15 hours, 1.4 ml of the same culture solution was added to 140 mL of LB medium containing ampicillin and cultured at 37 ° C. and 200 rpm. The culture was continued until the OD 600 was 3.5. Then, OD 600 of the culture broth of 3.5, added with 50% glucose 140mL in 2 ⁇ YT medium 7L containing ampicillin, and further cultured until an OD 600 of 4.0.
  • IPTG isopropyl- ⁇ -thiogalactopyranoside
  • ⁇ Purification> (1) About 50 g of E. coli cells expressing ADF3Kai-A protein and 300 ml of buffer AI (20 mM Tris-HCl, pH 7.4) are added to a centrifuge tube (1000 ml), and a mixer (manufactured by IKA) is added. Disperse the cells with “T18 Basic Ultra Thalax”, level 2), and then centrifuge (11,000 g, 10 minutes, room temperature) with a centrifuge (“Model 7000” manufactured by Kubota Corporation) Abandoned.
  • the mixture was stirred with a shaker (manufactured by Taitec Corporation, 200 rpm, 37 ° C.) for 60 minutes. Thereafter, the mixture was centrifuged (11,000 g, 30 minutes, room temperature) with the centrifuge manufactured by Kubota Corporation, and the supernatant was discarded to obtain SDS-washed granules (precipitate).
  • the SDS washed granules were suspended in a DMSO solution containing 1M lithium chloride so as to have a concentration of 100 mg / mL, and heat-treated at 80 ° C. for 1 hour.
  • the mixture was centrifuged (11,000 g, 30 minutes, room temperature) with the centrifuge manufactured by Kubota, and the supernatant was collected.
  • the mixture was centrifuged (11,000 g, 30 minutes, room temperature) with the centrifuge manufactured by Kubota, and the aggregated protein was recovered.
  • the process of washing the aggregated protein with pure water and collecting the aggregated protein by centrifugation was repeated three times, and then the water was removed with a freeze dryer and the lyophilized powder was collected.
  • the degree of purification of the target protein ADF3Kai-A (about 56.1 kDa) in the obtained lyophilized powder is analyzed by image analysis of the results of polyacrylamide gel electrophoresis (CBB staining) of the powder using Totallab (nonlinear dynamics ltd.). Was confirmed. As a result, the purity of ADF3Kai-A was about 85%.
  • Example 2 Using the same polypeptide as in Example 1, the following gel was prepared in the same manner. As a thin gel, a 20 mg / ml dope (DMSO + 1M LiCl) was prepared using 0.4 g of polypeptide powder to prepare a gel. The dope viscosity was 13.9 cP. The moisture content of the obtained gel was 98.8% by mass.
  • DMSO + 1M LiCl 20 mg / ml dope
  • the dope viscosity was 13.9 cP.
  • the moisture content of the obtained gel was 98.8% by mass.
  • Example 3 Using the same polypeptide as in Example 1, the following gel was prepared in the same manner. A gel was prepared by preparing a 20 mg / ml dope (DMSO without salt) using 0.4 g of the polypeptide powder. The moisture content of the obtained gel was 97.4% by mass.
  • the hydrogel of the present invention is useful for biological cartilage, cushioning material and the like.

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Abstract

　本発明のポリペプチドヒドロゲルは、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドのヒドロゲルであって、前記ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して、水分率が８５．０～９９．９質量％である。このヒドロゲルの製造方法は、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを、下記（Ａ）～（Ｃ）からなる群から選ばれる少なくとも一つの溶解用溶媒に溶解させてポリペプチドの溶液を得る溶液生成工程と、前記溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換する置換工程を含む。（Ａ）ジメチルスルホキシド、（Ｂ）ジメチルスルホキシドに無機塩を加えたもの、（Ｃ）Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドに無機塩を加えたもの。これにより、保水性に優れたポリペプチドヒドロゲルを提供すると共に、生体への適用に優れたポリペプチドヒドロゲルを提供する。

Description

ポリペプチドヒドロゲル及びその製造方法
　本発明は、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを原料とするポリペプチドヒドロゲル及びその製造方法に関する。
　ポリペプチドヒドロゲルは人工軟骨などの生体材料等に使用される。特許文献１にはシルクフィブロインをポリエチレングリコール等の吸湿ポリマーに溶解したヒドロゲルが提案されている。特許文献２にはスパイダーシルクを原料とし、光架橋させたゲルが開示されている。
特表２００７－５１５３９１号公報 特表２００８－５０６４０９号公報
　しかし、従来法で提案されている溶媒のウレア水溶液はクモ糸タンパク質を溶解する力が弱く、グアニジン水溶液やヘキサフルオロイソパノール（ＨＦＩＰ）等は高価であり、かつ溶媒が残存すると人体へ適用するには問題があった。また、従来のシルクフィブロインのヒドロゲルは、十分な保水性を有するものであるとは言い難いものであった。
　本発明は前記従来の問題を解決するため、保水性に優れたポリペプチドヒドロゲルを提供すると共に、生体への適用に優れたポリペプチドヒドロゲル及びその製造方法を提供する。
　本発明のポリペプチドヒドロゲルは、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドのヒドロゲルであって、前記ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して、水分率が８５．０～９９．９質量％であることを特徴とする。
　本発明のポリペプチドヒドロゲルの製造方法は、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを、下記（Ａ）～（Ｃ）からなる群から選ばれる少なくとも一つの溶解用溶媒に溶解させてポリペプチドの溶液を得る溶液生成工程と、
（Ａ）ジメチルスルホキシド
（Ｂ）ジメチルスルホキシドに無機塩を加えたもの
（Ｃ）Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドに無機塩を加えたもの
　前記溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換する置換工程を含むことを特徴とする。なお、ここで言う「ポリペプチドを溶解用溶媒に溶解させる」とは、ポリペプチドを溶解用溶媒に完全に溶解させることと、ポリペプチドの微粒子を溶解用溶媒中に分散させることで、ポリペプチドの微粒子を溶解用溶媒に実質的に溶解させた形態と為すことの両方を含む。以下、同一の意味において使用する。
　本発明のポリペプチドヒドロゲルは、前記ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して、８５．０～９９．９質量％の水分を含んでいることで、より高い保水性を発揮することができる。それにより、人工軟骨や人工皮膚、創傷治癒剤、ドラッグデリバリーシステムにおける薬物封入キャリアー等として有利に適用され得る。また、本発明は、ポリペプチド溶液を作成する際に特定の溶媒を使用し、水溶性溶媒と置換することにより、残存溶媒をほとんど含まないか或いは残存溶液が十分に少ないポリペプチドヒドロゲルを提供できる。加えて、本発明で使用する溶媒はアクリル系繊維やポリイミド樹脂の製造に使用されている溶媒であり、コストが安い利点もある。
図１は本発明の一実施例のヒドロゲルの写真である。
　本発明のタンパク質は、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを使用する。クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドとは、天然型クモ糸タンパク質に由来又は類似するものであればよく、特に限定されない。例えば天然型クモ糸タンパク質の変異体、類似体又は誘導体などを含む。上記組換えクモ糸タンパク質は、強靭性に優れるという観点からクモの大瓶状線で産生される大吐糸管しおり糸タンパク質に由来する組換えクモ糸タンパク質であることが好ましい。上記大吐糸管しおり糸タンパク質としては、アメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する大瓶状線スピドロインＭａＳｐ１やＭａＳｐ２、二ワオニグモ（Ａｒａｎｅｕｓ　ｄｉａｄｅｍａｔｕｓ）に由来するＡＤＦ３やＡＤＦ４などが挙げられる。
　上記組換えクモ糸タンパク質は、クモの小瓶状線で産生される小吐糸管しおり糸に由来する組換えクモ糸タンパク質であってもよい。上記小吐糸管しおり糸タンパク質としては、アメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する小瓶状線スピドロインＭｉＳｐ１やＭｉＳｐ２が挙げられる。
　その他にも、上記組換えクモ糸タンパク質は、クモの鞭毛状線（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ　ｇｌａｎｄ）で産生される横糸タンパク質に由来する組換えクモ糸タンパク質であってもよい。上記横糸タンパク質としては、例えばアメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する鞭毛状絹タンパク質（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ）などが挙げられる。
　前記大吐糸管しおり糸タンパク質に由来するポリペプチドとしては、式１：ＲＥＰ１－ＲＥＰ２（１）で示されるアミノ酸配列の単位を２以上、好ましくは４以上、より好ましくは６以上含むポリペプチドが挙げられる。なお、前記大吐糸管しおり糸タンパク質に由来する組ポリペプチドにおいて、式（１）：ＲＥＰ１－ＲＥＰ２（１）で示されるアミノ酸配列の単位は、同一であってもよく、異なっていてもよい。前記式（１）において、ＲＥＰ１はポリアラニンを意味している。
　前記ＲＥＰ１において、連続して並んでいるアラニンは、２残基以上であることが好ましく、より好ましくは３残基以上であり、さらに好ましくは４残基以上であり、特に好ましくは５残基以上である。また、前記ＲＥＰ１において、連続して並んでいるアラニンは、２０残基以下であることが好ましく、より好ましくは１６残基以下であり、さらに好ましくは１４残基以下であり、特に好ましくは１２残基以下である。前記式（１）において、ＲＥＰ２は１０～２００残基のアミノ酸からなるアミノ酸配列であり、前記アミノ酸配列中に含まれるグリシン、セリン、グルタミン、プロリン及びアラニンの合計残基数がアミノ酸残基数全体に対して４０％以上、好ましくは５０％以上、より好ましくは６０％以上である。
　大吐糸管しおり糸において、前記ＲＥＰ１は繊維内で結晶βシートを形成する結晶領域に該当し、前記ＲＥＰ２は繊維内でより柔軟性があり大部分が規則正しい構造を欠いている無定型領域に該当する。そして、前記［ＲＥＰ１－ＲＥＰ２］は、結晶領域と無定型領域からなる繰り返し領域（反復配列）に該当し、しおり糸タンパク質の特徴的配列である。
　前記式１：ＲＥＰ１－ＲＥＰ２（１）で示されるアミノ酸配列の単位を２以上含むポリペプチドとしては、例えば、配列番号１、配列番号２、配列番号３及び配列番号４のいずれかに示されているアミノ酸配列を有するＡＤＦ３由来の組換えクモ糸タンパク質が挙げられる。配列番号１に示されているアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したＡＤＦ３の部分的なアミノ酸配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号：ＡＡＣ４７０１０、ＧＩ：１２６３２８７）のＮ末端に開始コドン、Ｈｉｓ１０タグ及びＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（Ｈｕｍａｎ　ｒｈｉｎｏｖｉｒｕｓ　３Ｃプロテアーゼ）認識サイトからなるアミノ酸配列（配列番号５）を付加したアミノ酸配列の１残基目から６３１残基目までのアミノ酸配列に該当する。配列番号２に示されるアミノ酸配列は、Ｎ末端に開始コドン、Ｈｉｓ１０タグ及びＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（Human rhinovirus 3Cプロテアーゼ）認識サイトからなるアミノ酸配列（配列番号５）を付加したＡＤＦ３のアミノ酸配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号：ＡＡＣ４７０１０、ＧＩ：１２６３２８７）において、第１～１３番目の反復領域をおよそ２倍になるように増やすとともに、翻訳が第１１５４番目アミノ酸残基で終止するように変異させたものである。配列番号３に示されているアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したＡＤＦ３の部分的なアミノ酸配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号：ＡＡＣ４７０１０、ＧＩ：１２６３２８７）のＮ末端に開始コドン、Ｈｉｓ１０タグ及びＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（Ｈｕｍａｎ　ｒｈｉｎｏｖｉｒｕｓ　３Ｃプロテアーゼ）認識サイトからなるアミノ酸配列（配列番号５）を付加したアミノ酸配列である。配列番号４に示されるアミノ酸配列は、Ｎ末端に開始コドン、Ｈｉｓ１０タグ及びＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（Human rhinovirus 3Cプロテアーゼ）認識サイトからなるアミノ酸配列（配列番号５）を付加したＡＤＦ３のアミノ酸配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｅｂａｎｋのアクセッション番号：ＡＡＣ４７０１０、ＧＩ：１２６３２８７）において、第１～１３番目の反復領域をおよそ２倍になるように増やしたものである。また、前記式１：ＲＥＰ１－ＲＥＰ２（１）で示されるアミノ酸配列の単位を２以上含むポリペプチドとしては、配列番号１、配列番号２、配列番号３及び配列番号４のいずれかに示されるアミノ酸配列において１若しくは複数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入及び／又は付加されたアミノ酸配列からなり、結晶領域と無定型領域からなる繰り返し領域を有するポリペプチドを用いてもよい。
　本発明において、「１若しくは複数個」とは、例えば、１～４０個、１～３５個、１～３０個、１～２５個、１～２０個、１～１５個、１～１０個、又は１若しくは数個を意味する。また、本発明において、「１若しくは数個」は、１～９個、１～８個、１～７個、１～６個、１～５個、１～４個、１～３個、１～２個、又は１個を意味する。
　上記小吐糸管しおり糸タンパク質に由来する組換えクモ糸タンパク質としては、式２：ＲＥＰ３（２）で示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドが挙げられる。上記式２において、ＲＥＰ３は（Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｚ）ｍ（Ｇｌｙ－Ａｌａ）ｌ（Ａ）rから構成されるアミノ酸配列を意味し、Ｚは任意の一つのアミノ酸を意味するが、特にＡｌａ、Ｔｙｒ及びＧｌｎからなる群から選ばれる一つのアミノ酸であることが好ましい。またｍは１～４であることが好ましく、ｌは０～４であることが好ましく、rは１～６であることが好ましい。
　クモ糸において、小吐糸管しおり糸はクモの巣の中心から螺旋状に巻かれ、巣の補強材として使われたり、捉えた獲物を包む糸として利用されたりする。大吐糸管しおり糸と比べると引っ張り強度は劣るが、伸縮性は高いことが知られている。これは小吐糸管しおり糸において、多くの結晶領域がグリシンとアラニンが交互に連なる領域から形成されているため、アラニンのみで結晶領域が形成されている大吐糸管しおり糸よりも結晶領域の水素結合が弱くなり易いためと考えられている。
　上記横糸タンパク質に由来する組換えクモ糸タンパク質としては、式３：ＲＥＰ４（３）で示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドが挙げられる。前記式３において、ＲＥＰ４は（Ｇｌｙ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｘ）ｎから構成されるアミノ酸配列を意味し、Ｘは任意の一つのアミノ酸を意味するが、特にＡｌａ、Ｓｅｒ、Ｔｙｒ及びＶａｌからなる群から選ばれる一つのアミノ酸であることが好ましい。またｎは少なくとも４以上の数字を表し、好ましくは１０以上、より好ましくは２０以上である。
　クモ糸において、横糸は結晶領域を持たず、無定形領域からなる繰り返し領域を持つことが大きな特徴である。大吐糸管しおり糸などにおいては結晶領域と無定形領域からなる繰り返し領域を持つため、高い応力と伸縮性を併せ持つと推測される。一方、横糸については、大吐糸管しおり糸に比べると応力は劣るが、高い伸縮性を持つ。これは横糸の大部分が無定形領域によって構成されているためだと考えられている。
　前記ポリペプチドは、ポリペプチドをコードする遺伝子を含有する発現ベクターで形質転換した宿主を用いて製造することができる。遺伝子の製造方法は特に制限されず、天然型クモ糸タンパク質をコードする遺伝子をクモ由来の細胞からポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などで増幅してクローニングするか、若しくは化学的に合成する。遺伝子の化学的な合成方法も特に制限されず、例えば、ＮＣＢＩのウェブデータベースなどより入手した天然型クモ糸タンパク質のアミノ酸配列情報をもとに、ＡＫＴＡ　ｏｌｉｇｏｐｉｌｏｔ　ｐｌｕｓ　１０／１００（ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社）などで自動合成したオリゴヌクレオチドをＰＣＲなどで連結して合成することができる。この際に、タンパク質の精製や確認を容易にするため、前記のアミノ酸配列のＮ末端に開始コドン及びＨｉｓ１０タグからなるアミノ酸配列を付加したアミノ酸配列からなるタンパク質をコードする遺伝子を合成してもよい。前記発現ベクターとしては、ＤＮＡ配列からタンパク質を発現し得るプラスミド、ファージ、ウイルスなどを用いることができる。前記プラスミド型発現ベクターとしては、宿主細胞内で目的の遺伝子が発現し、かつ自身が増幅することのできるものであればよく、特に限定されない。例えば宿主として大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）を用いる場合は、ｐＥＴ２２ｂ（＋）プラスミドベクター、ｐＣｏｌｄプラスミドベクターなどを用いることができる。中でも、タンパク質の生産性の観点から、ｐＥＴ２２ｂ（＋）プラスミドベクターを用いることが好ましい。前記宿主としては、例えば動物細胞、植物細胞、微生物などを用いることができる。
　また、前記ポリペプチドとしては、前記溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換した際に凝集し易い特性（易凝集性）を有するものが好適に用いられる。これによって、溶液のポリペプチド濃度に拘わらず、ゲルの製造が容易となる。なお、ポリペプチドが易凝集性を有していなくとも、例えば、溶液生成工程で生成した溶液のポリペプチド濃度を高くすれば、溶液を水溶性溶媒に置換した際にポリペプチドが凝集して、ゲルが容易に製造されることとなる。ポリペプチドの凝集は高温状態から低温状態に温度を下げることによっても起こり得る。すなわち、ポリペプチドヒドロゲルは、溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換して、ポリペプチドを凝集させることによって製造される。また、ポリペプチドヒドロゲルの製造には、水溶性溶媒との接触により凝集して、ゲルを形成可能なポリペプチドが用いられる。
　本発明のゲルは、ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して水分を８５．０～９９．９質量％含む。好ましくは９０．０～９９．７質量％、さらに好ましくは９２．０～９９．５質量％含む。ここでいう水分とは液体水である。水分を前記の範囲含むと、例えば生体の人工軟骨や人工皮膚、創傷治癒剤、ドラッグデリバリーシステムにおける薬物封入キャリアー等として適用できる。
　本発明のゲルは、クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを、下記（Ａ）～（Ｃ）からなる群から選ばれる少なくとも一つの溶解用溶媒に溶解させてポリペプチドの溶液を得る溶液生成工程と、
（Ａ）ジメチルスルホキシド
（Ｂ）ジメチルスルホキシドに無機塩を加えたもの
（Ｃ）Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドに無機塩を加えたもの
　前記溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換する工程により作成できる。前記溶液生成工程と前記溶解用溶媒を水溶性溶媒に置換する工程の間に、型枠に流し込み所定の形状に成形する工程を入れるか、あるいは前記溶解用溶媒を水溶性溶媒に置換する工程の後にカットすることにより所定の形状とすることができる。得られたポリペプチドヒドロゲルの内部にはジメチルスルホキシド及びＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミドからなる群から選ばれる少なくとも一つが存在していてもよい。前記溶解用溶媒の存在量は、特に限定されるものではなく、前記溶液生成工程で生成される溶液を前記水溶性溶媒に置換した後において意図せずに残存する程度の量である。
　溶解用溶媒は、前記（Ａ）～（Ｃ）に示す物質に加えて、アルコール及び／又は水を含んでもよい。前記溶解用溶媒は極性溶媒であり、空気中の水分を吸収しやすい性質があるため、通常販売されている溶媒は数％水を含む場合もある。この程度の水やアルコールは含んでいても良い。但し、溶解用溶媒として機能するのは前記（Ａ）～（Ｃ）に示す物質である。
　前記水溶性溶媒は、水を含む溶媒をいい、例えば、水、水溶性緩衝液、生理食塩水等が挙げられる。前記水溶性溶媒は、人体への適応性が高いという観点から水であることが好ましい。前記水としては、特に限定されないが、純水、蒸留水、超純水等を用いることができる。
　溶液生成工程後の溶液粘度は５～８０ｃＰ（センチポアズ）が好ましく、さらに好ましくは１０～５０ｃＰである。前記の範囲であれば取扱い性が良く便利である。
　本発明は、溶媒として、極性溶媒であるＤＭＳＯ及び／又はＤＭＦを含む溶媒を使用する。ＤＭＳＯは融点１８．４℃、沸点１８９℃、ＤＭＦは融点－６１℃、沸点１５３℃であり、従来法で使用されているヘキサフルオロイソプロパノール（ＨＦＩＰ）の沸点５９℃、ヘキサフルロアセトン（ＨＦＡｃ）の沸点－２６．５℃に比べると、沸点ははるかに高く、その分溶解性も良い。また、ＤＭＳＯ及びＤＭＦは、一般産業分野においてもアクリル繊維の重合、紡糸液として使用され、ポリイミドの重合溶媒としても使用されていることから、コストも安く安全性も確認されている物質である。
　ＤＭＳＯまたはＤＭＦに無機塩を加えると、さらに媒質の溶解度は上がる。無機塩としては、アルカリ金属ハロゲン化物（例えばＬｉＣｌ，ＬｉＢｒなど）、アルカリ土類金属ハロゲン化物（例えばＣａＣｌ2）、アルカリ土類金属硝酸塩（例えばＣａ（ＮＯ3）2など）、チオシアン酸ナトリウム（例えばＮａＳＣＮなど）から選ばれる少なくとも一つである。溶解成分を１００質量％としたとき、無機塩の割合は０．１～２０質量％の範囲が好ましい。
　前記ポリペプチドヒドロゲルは、溶媒を水溶性溶媒に置換して生成される。さらに、水溶性溶媒に置換する工程は、溶媒に溶解させたポリペプチド溶液を透析膜内に入れ、水溶性溶媒中に浸漬し、水溶性溶媒を１回以上入れ替える方法が好ましい。具体的には、溶媒を水溶性溶媒に置換する工程は、溶液生成工程後の溶液を透析膜に入れ、前記溶液の１００倍以上の水溶性溶媒（１回分）の中に３時間静置し、この水溶性溶媒入れ替えを計３回以上繰り返すことが好ましい。透析膜については、溶液中のポリペプチドが透過しないサイズであればよく、例えばセルロース透析膜等を用いることができる。水溶性溶媒の置換を繰り返せば溶媒をゼロに近づけることができる。脱溶媒工程の後半では透析膜は使用しなくても良い。このようにして水分率が８５．０～９９．９質量％のポリペプチドヒドロゲルを得ることができる。水分率が前記の範囲であれば、生体の人工軟骨や人工皮膚、創傷治癒剤、ドラッグデリバリーシステムにおける薬物封入キャリアー、緩衝材などに有用である。
　水溶性溶媒置換工程後のポリペプチド中の溶媒：ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）又はＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）の残量は核磁気共鳴分光装置（ＮＭＲ）で測定できる。内部標準としては１、２ジクロロエタンーギ酸溶液を用いることができる。
　以下実施例を用いて、本発明をさらに具体的に説明する。なお、本発明は下記の実施例に限定されるものではない。水溶性溶媒として水を用いた例を説明する。
＜各測定方法＞
（１）溶媒残量測定
　内部標準として１，２－ジクロロエタン－ギ酸溶液　濃度３，１００ｐｐｍ（０．００３１０ｍｇ／ｍｌ）を準備した。タンパク質溶液（１０ｍｌのギ酸に０．１ｇのポリペプチドヒドロゲルを溶解したもの）５００μｌと内部標準溶液５００μｌを混合した。さらに、Ｈ－ＮＭＲ測定のためアセトニトリル重溶媒を同量程度加え約２倍に希釈し、Ｈ－ＮＭＲ測定を行った（ＮＭＲの機種：ＪＥＯＬ社　ＪＮＭ－ＥＣＸ　１００）。内部標準試料１，２－ジクロロエタンのＨ－ＮＭＲ積分強度とＤＭＳＯのＨ－ＮＭＲ積分強度を比較した。検量線の作成は３ｐｐｍ～３０００ｐｐｍのＤＭＳＯ－ギ酸溶液を作成し、上記プロトコルにしたがって、検量線を作成した。検量線との比較から、タンパク質溶液中のＤＭＳＯ濃度を求めた。ＤＭＳＯ濃度測定は、ＪＥＯＬ社製、核磁気共鳴装置(ＮＭＲ)を用いた。
（２）粘度
　ＫＥＭ社製、ＥＭＳ装置を使用した。
（３）水分率
　本発明手法に従って製造されたヒドロゲルの質量：W１と、かかるヒドロゲルを完全乾燥させた乾燥体の質量：W2とを測定し、それらの測定値を下記式１に代入して求めた。
　水分率＝[(W1－W2)×100]／W1・・・式１
　（実施例１）
１．ポリペプチドの準備
　　＜ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａの遺伝子の合成＞
　ニワオニグモの２つの主要なしおり糸タンパク質の一つであるＡＤＦ３の部分的なアミノ酸配列をＮＣＢＩのウェブデータベース（ＮＣＢＩアクセッション番号：ＡＡＣ４７０１０、ＧＩ：１２６３２８７）より取得し、同配列のＮ末端に開始コドンと、Ｈｉｓ１０タグ及びＨＲＶ３Ｃプロテアーゼ（Ｈｕｍａｎ　ｒｈｉｎｏｖｉｒｕｓ　３Ｃプロテアーゼ）認識サイトからなるアミノ酸配列（配列番号５）を付加し、該配列のＮ末端の１残基目から６３１残基目までのアミノ酸配列（配列番号１）からなるポリペプチド（ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａ）をコードする遺伝子を合成した。その結果、配列番号６に示す塩基配列からなるＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａの遺伝子が導入されたｐＵＣ５７ベクター（遺伝子の５’末端直上流にＮｄｅ　Ｉサイト、及び５’末端直下流にＸｂａ　Ｉサイト有り）を取得した。その後、同遺伝子をＮｄｅ　Ｉ及びＥｃｏＲ　Ｉで制限酵素処理し、ｐＥＴ２２ｂ（＋）発現ベクターに組み換え、ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａの遺伝子が導入されたｐＥＴ２２ｂ（＋）ベクターを得た。
　＜タンパク質の発現＞
　前記で得られたＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａの遺伝子配列を含むｐＥＴ２２ｂ（＋）発現ベクターを、大腸菌Ｒｏｓｅｔｔａ（ＤＥ３）に形質転換した。得られたシングルコロニーを、アンピシリンを含む２ｍＬのＬＢ培地で１５時間培養後、同培養液１．４ｍｌを、アンピシリンを含む１４０ｍＬのＬＢ培地に添加し、３７℃、２００ｒｐｍの条件下で、培養液のＯＤ600が３．５になるまで培養した。次に、ＯＤ600が３．５の培養液を、アンピシリンを含む７Ｌの２×ＹＴ培地に５０％グルコース１４０ｍＬと共に加え、ＯＤ600が４．０になるまでさらに培養した。その後、得られたＯＤ600が４．０の培養液に、終濃度が０．５ｍＭになるようにイソプロピル－β－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を添加してタンパク質発現を誘導した。ＩＰＴＧ添加後２時間経過した時点で、培養液を遠心分離し、菌体を回収した。ＩＰＴＧ添加前とＩＰＴＧ添加後の培養液から調製したタンパク質溶液をポリアクリルアミドゲルに泳動させたところ、ＩＰＴＧ添加に依存して目的サイズ（約５６．１ｋＤａ）のバンドが観察され、目的とするタンパク質（ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａ）が発現していることを確認した。
　＜精製＞
（１）遠沈管（１０００ｍｌ）にＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａのタンパク質を発現している大腸菌の菌体約５０ｇと、緩衝液ＡＩ（２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．４）３００ｍｌを添加し、ミキサー（ＩＫＡ社製「Ｔ１８ベーシック　ウルトラタラックス」、レベル２）で菌体を分散させた後、遠心分離機（クボタ社製の「Ｍｏｄｅｌ　７０００」）で遠心分離（１１，０００ｇ、１０分、室温）し、上清を捨てた。
（２）遠心分離で得られた沈殿物（菌体）に緩衝液ＡＩを３００ｍｌと、０．１ＭのＰＭＳＦ（イソプロパノールで溶解）を３ｍｌ添加し、前記ＩＫＡ社製のミキサー（レベル２）で３分間分散させた。その後、高圧ホモジナイザー（ＧＥＡ　Ｎｉｒｏ　Ｓａｏｖｉ社製の「Ｐａｎｄａ　Ｐｌｕｓ　２０００」）を用いて菌体を繰り返し３回破砕した。
（３）破砕された菌体に、３ｗ／ｖ％のＳＤＳを含む緩衝液Ｂ（５０ｍＭ　ＴｒｉｓーＨＣＬ、１００ｍＭ　ＮａＣｌ、ｐＨ７．０）３００ｍＬを加え、前記ＩＫＡ社製のミキサー（レベル２）で良く分散させた後、シェイカー（タイテック社製、２００ｒｐｍ、３７℃）で６０分間攪拌した。その後、前記クボタ社製の遠心分離機で遠心分離（１１，０００ｇ、３０分、室温）し、上清を捨て、ＳＤＳ洗浄顆粒（沈殿物）を得た。
（４）ＳＤＳ洗浄顆粒を１００ｍｇ／ｍＬの濃度になるよう１Ｍの塩化リチウムを含むＤＭＳＯ溶液で懸濁し、８０℃で１時間熱処理した。その後、前記クボタ社製の遠心分離機で遠心分離（１１，０００ｇ、３０分、室温）し、上清を回収した。
（５）回収した上清に対して３倍量のエタノールを準備し、エタノールに回収した上清を加え、室温で１時間静置した。その後、前記クボタ社製の遠心分離機で遠心分離（１１，０００ｇ、３０分、室温）し、凝集タンパク質を回収した。次に純水を用いて凝集タンパク質を洗浄し、遠心分離により凝集タンパク質を回収するという工程を３回繰り返した後、凍結乾燥機で水分を除き、凍結乾燥粉末を回収した。得られた凍結乾燥粉末における目的タンパク質ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａ（約５６．１ｋＤａ）の精製度は、粉末のポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＣＢＢ染色）の結果をＴｏｔａｌｌａｂ（ｎｏｎｌｉｎｅａｒ　ｄｙｎａｍｉｃｓ　ｌｔｄ．）を用いて画像解析することにより確認した。その結果、ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａの精製度は約８５％であった。
２．溶液の調整
　クモ糸タンパク質(ＡＤＦ３Ｋａｉ－Ａ)の粉末０．８ｇをＤＭＳＯ（１ＭのＬｉＣｌを含む）２０ｍｌに入れ、８０℃で３０分間溶解させた。その後、ゴミと泡を取り除いた。溶液の溶液粘度は３０．８ｃＰ（センチポアズ）であった。この溶液を透析チューブ（三光純薬株式会社セルロースチューブ３６／３２）に入れた。
３．水置換
　前記透析チューブを３リットルの純水で満たされたビーカーに入れた。その後３時間静置させた後、水を入れ替え、計６回この操作を行った。これにより、溶液中のクモ糸タンパク質が凝集して、ほぼ全てのDMSOが水に置換されたヒドロゲルが作成できた。
４．結果
（１）得られたヒドロゲルの溶媒残量はヒドロゲル１００ｇに対して、０．０９４ｇであった。
（２）得られたヒドロゲルの水分率は９５．３質量％であった。
（３）得られたヒドロゲルの側面写真を図１に示す。
　（実施例２）
　実施例１と同一のポリペプチドを用い、操作も同様にして次のゲルを作製した。濃度の薄いゲルとして、ポリペプチド粉末０．４ｇを用いて２０ｍｇ／ｍｌのドープ（ＤＭＳＯ＋１ＭのＬｉＣｌ）を準備し、ゲルを作製した。ドープ粘度は１３．９ｃＰであった。得られたゲルの水分率は９８．８質量％であった。
　（実施例３）
　実施例１と同一のポリペプチドを用い、操作も同様にして次のゲルを作製した。ポリペプチド粉末０．４ｇを用いて２０ｍｇ／ｍｌのドープ（塩なしのＤＭＳＯ）を準備し、ゲルを作製した。得られたゲルの水分率は９７．４質量％であった。
　（実施例４）
　実施例１と同一のポリペプチドを用い、操作も同様にして次のゲルを作製した。ポリペプチド粉末０．４ｇを用いて２０ｍｇ／ｍｌのドープ（ＤＭＦ＋１ＭのＬｉＣｌ）を準備し、ゲルを作製した。得られたゲルの水分率は９８．２質量％であった。
　なお上記実施例１～４においては置換工程で水を用いたが、他の水溶性溶媒でも同様の効果が得られる。
　本発明のヒドロゲルは生体用軟骨、緩衝材などに有用である。
　配列番号１～５　　アミノ酸配列
　配列番号６　　塩基配列

Claims (6)

  1. 　クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドのヒドロゲルであって、前記ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して、水分率が８５．０～９９．９質量％であることを特徴とするポリペプチドヒドロゲル。
  2. 　前記ポリペプチドヒドロゲルの内部にはジメチルスルホキシド及びＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミドからなる群から選ばれる少なくとも一つが存在している請求項１に記載のポリペプチドヒドロゲル。
  3. 　クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドを、下記（Ａ）～（Ｃ）からなる群から選ばれる少なくとも一つの溶解用溶媒に溶解させてポリペプチドの溶液を得る溶液生成工程と、
    （Ａ）ジメチルスルホキシド
    （Ｂ）ジメチルスルホキシドに無機塩を加えたもの
    （Ｃ）Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドに無機塩を加えたもの
    　前記溶液生成工程で生成した溶液を水溶性溶媒に置換する置換工程を含むことを特徴とするポリペプチドヒドロゲルの製造方法。
  4. 　前記置換工程は、前記ポリペプチドの溶液を水に置換する請求項３に記載のポリペプチドヒドロゲルの製造方法。
  5. 　前記置換工程は、前記溶解用溶媒に溶解させたポリペプチドの溶液を透析膜内に入れ、水溶性溶媒中に浸漬し、水溶性溶媒を１回以上入れ替える請求項３又は４に記載のポリペプチドヒドロゲルの製造方法。
  6. 　前記ポリペプチドヒドロゲルは、前記ポリペプチドヒドロゲル１００質量％に対して、水分率が８５．０～９９．９質量％である請求項３～５のいずれかに記載のポリペプチドヒドロゲルの製造方法。
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