[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

SU1084299A1 - Способ получени комплекса внеклеточных ферментов - Google Patents

Способ получени комплекса внеклеточных ферментов Download PDF

Info

Publication number
SU1084299A1
SU1084299A1 SU823520061A SU3520061A SU1084299A1 SU 1084299 A1 SU1084299 A1 SU 1084299A1 SU 823520061 A SU823520061 A SU 823520061A SU 3520061 A SU3520061 A SU 3520061A SU 1084299 A1 SU1084299 A1 SU 1084299A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
agrimus
cultivation
complex
carried out
carbon source
Prior art date
Application number
SU823520061A
Other languages
English (en)
Inventor
Валерий Дмитриевич Семичаевский
Николай Ильич Даниляк
Ирина Анатольевна Трутнева
Original Assignee
Институт Ботаники Им.Н.Г.Холодного
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Ботаники Им.Н.Г.Холодного filed Critical Институт Ботаники Им.Н.Г.Холодного
Priority to SU823520061A priority Critical patent/SU1084299A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1084299A1 publication Critical patent/SU1084299A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

,VCnOCOB ПОЛУЧЕНИЯ КОМПЛЕКСА ;ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ФЕРМЕНТОВ, предусматривающий культивирование продуцентовгрибов базидиомицетов на питательной среде, содержащей лигнинсодержащие отходы в качестве источника углерода , минеральные соли и воду с последуннцим отделением грибного мицелр  от культуральной жидкости, содержащей внеклеточные ферменты, о т л ичающийс  тем, что, с целью повьшени  активности комплекса, а также упрощени  и удешевлени  способа , в качестве источника углерода используют агримус - отход производства фурфурола, содержащий целлолигнин и свободный фурфурол в соотношении 42:1, в количестве 0,55 ,0%. 2.Способ по п. 1, отлича ющ и и с   тем, что, с целью получени  преимущественно фермента пероксидазы , культивирование провод т путем образовани  поверхностной пленки при использовании агримуса в концентрации 1,0-2,5%. 3.Способ по пп. 1 и 2, о т л ичающийс  тем, что, с целью (Л получени  преимущественно фермента t монофенол-монооксигеназы, культивирование провод т путем образовани  поверхностной пленки при использовании агримуса в концентрации 4,05 ,0%.

Description

1 Изобретение относитс  к микробиологической промышленности, в частности к способам получени  ферментов , продуцируемых базидиомицетами . Известен способ культивировани  базидиомицетов на питательной среде , содержащей источник углерода и минеральные соли, а также отходы производства jl . Однако данный способ не позвол е получить широкий спектр продуцируем ферментов. Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту к предлагаемому  вл етс  способ получени  комплекса внеклеточных ферментов, предусматривающий культи вирование продуцентов-грибов бази- диомицетов на питательной среде, содержащей лигнинсодержащие отходы в качестве источника углерода, минеральные соли и воду с последующим отделением грибного мицели  от куль туральной жидкости, содержащего вне клеточные ферменты . К недостаткам этого способа относ тс  сложность технологии его. осуществлени  и значительные затрат времени и средств. Кроме того, спос ограничиваетс  использованием единственного штамма дереворазрушающего гриба. В нем использован недостаточ но широкий ассортимент лигнинсодержащих отходов и получаемых при этом продуктов биосинтеза микроорганизмо в частности внеклеточных ферментов, обладающих недостаточно высокой активностью. Цель изобретени  - повышение активности комплекса ферментов, а также упрощение и удешевление- способа . I.. Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу получени  комплекса внеклеточных ферментов, предусматривающему культивирование продуцентов-грибов базидиомицетов на питательной среде, содержащей лигнинсодержащие отходы в качестве источника углерода, минеральные сол и воду с последующим отделением гри ного мицели  от культуральной жидкости , содержащей внеклеточные ферменты , в качестве источника углерода использзтот агримус-отход произ водства фурфурола, содержащий целлолигнин и свободный фурфурол в 99 соотношении 42:1, в количестве 0,55 ,0%. Кроме того, с целью получени  преимущественно фермента пероксидазы культивирование провод т путем образовани  поверхностной пленки при использовании агримуса в концентрации 1,0-2,5%. С целью получени  преимущественно фермента монофенол-монооксигеназы, культивирование провод т путем образовани  поверхностной пленки при ис.пользовании агримуса в концентрации 4,0-5,0%. Агримус представл ет собой многотоннажньй отход, полученный при производстве фурфурола из стержней початков кукурузы, который частично используют как лигноцеллюлозное удобрение в сельском хоз йстве. Пример 1. Готов т питательную среду следующего состава N 2,0 КН2Р040,6 К НР040,4 МрЗрф0,5 Агримус5,0 Водопроводна  вода 1 л. Приготовленную таким образом среду автоклавируют, охлаждают и засевают чистыми культурами базидиомицетов Pfeurotus ostreatus (Fr.) Kumm. HMBF1300 .или CorioZus versicofor (Fr.) Que2.087. Культивирование провод т в глубинных услови х на качалке в колбах Эрленмейера в течение 7 сут. при 28°С. Дл  сравнени  в качестве контрол  выращивание указанных базидиомицетов провод т также в аналогичных услови х на питательной среде, содержащей вместо агримуса целлюлозу (фильтровальную :бумагу) в количестве 15,0 г/л. В табл. 1 и 2 приведены результаты измерений активностей внеклегточных пероксидазы (КФ 1.11.1.7), монофенол-монооксигеназы (КФ 1.14. 18.1), Эндо-1,4-/3-глюканазы (КФ.3.2. 1.4), полигалактуроназы (КФ 3.1.1.15), экзополигалактуроназы (КФ 3.2.1.67) и пектинэстеразы (КФ 3.1111) в культуральных фильтратах указанных продуцентов, полученных после отделени  мицели  и остатков твердого субстрата. По сравнению с контролем среда с агримусом более эффективна дл  получени  большинства 3 ,; 10 исследуемых ферментов. Так, при выращивании PJeurotus ostreatus на среде с агримусом достигнуто увеличение активности пероксидазы .и монофенол-монооксигеназы , более чем в 12 раз по сравнению с контролем. П р и,м е р. 2. Готов т питательную среду по примеру 1, которую засевают чистыми культурами базидиомицетов Pieurotus ostreatus (Fr.) Kurara. HMBF-1300, Funalia trogii (Berk.) Bond et. Sing БИН-2 или Oxyporus obducens (Fr.) Donk.HBK-85. В отличие от примера 1 культивировав ние провод т в стационарных уелоВИЯХ методом поверхностной пленки в течение 10 сут при 28 С. Дл  сравнени  в качестве контрол  выращивание указанных базидирмицетов провод т также в аналогичных услови х на питательных средах, содержащих вместо агримуса .целлюлозу (фильтровальную бумагу) в количестве 15,0 г/л или экстракт из свекловичного жома в количестве 100 мл/л. В табл. 3 приведены результаты измерений активностей внеклеточных пероксидазы и монофенол-моноксигеназы в культуральных фильтратах указанных продуцентов, полученных после отделени  -мицели  и остатков твердого субстрата. На среде с агримусом активность обоих ферментов згачитель но выше, чем в контрольном варианте. Так, дл  культуры Pjeurotus ostreatus активность пероксидазы на среде с агримусом составл ет 18,6 ед/л. Активность внеклеточных HMBF-1300 при глубинном ферментов Fleurotus ostreatus (Fr.) Kunnn выращивании на агримусе и целлюлозе 9 тогда как в контроле с целлюлозой обнаружены следы активности этого фермента, на среде с экстрактом из свекловичного жома активность пероксидазы составл ет 14,2 ед/л. П р и м е .р 3. Готов т питательную среду по примеру 1, в которую в качестве единственного источника углерода ввод т агримус в количествах 5,0-50,0 г/л. Указанные среды засевают чистой культурой базидиомицета PJeurotus ostreatus (Fr.) Kumm. HMBF-1300. Культивирование провод т в стационарных услови х методом поверхностной пленки в течение 10 сут при 28°С. В табл. 4 приведены результаты измерений активностей внеклеточной пероксидазы и монофенолмонооксигеназы- в культуральных.фильтратах , полученных после отделени  мицели  и остатков твердого субстрата . Из табл, 4 видно, что наибольша  активность пероксидазы культуры гриба Pleurotus ostreatus -56,2 ед/л при концентрации агримуса 1,0%, а наибольша  активность монофенол-монооксигеназы - 56,0 ед/л при концентрации агримуса в среде 4,0%. Таким образом, предлагаемый способ по сравнению с известным позвол ет повысить активность ферментов получаемого комплекса в 12 раз, а также упростить и удешевить способ за счет использовани  отходов производства . Та б л л. ц а
ед/л
Пероксидаза Бензидин
-
Вензидин
% депоНатриева  соль карболимеризации ксиметилцеллюлозы
1244
0,9
11,2
1285
0,7
9,0
203,5
19,9
40,5
силированный ед/мл 0,05
Продолжение табл. 1
125,0
0,04 Активность внеклеточных ферментов базидиомицетов при выращивании
методом поверхностной пленки на агримусе, целлюлозе и экстракте из жома .
Pteurotus ostreatus (Fr.) Kumra HMBF-1300 Перексидаза Бензидин ед/л 18,6 Следы
||
Funalia trogli (Berk) Bond. et. Sing БИН-2 - 14,0 Следы МонофенолмонооксигеOxyporus Пероксидаза - Монофенолмонооксигеназа
Активность внеклеточных ферментов Pteurotus ostreatus (Fr) Kumm ИШР-1300 при выращивании методом поверхностной пленки в зависимости от содержани  arpimyca в питательной среде
Таблица 3
14,2
18,0 Следы
13,0
г
8,0
5,0
Следы
Следы
Таблица 4 otducens (Fr.) Donk ИБК-85 14,6 Следы 10,0 Следы

Claims (3)

  1. Д.СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КОМПЛЕКСА ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ФЕРМЕНТОВ, предусматривающий культивирование продуцентовгрибов базидиомицетов на питательной среде, содержащей лигнинсодержащие отходы в качестве источника углерода, минеральные соли и воду с последующим отделением грибного мицелия от культуральной жидкости, содержащей внеклеточные ферменты, о т лича ю щ и й с я тем, что, с целью повышения активности комплекса, а также упрощения и удешевления способа, в качестве источника углерода используют агримус - отход производства фурфурола, содержащий целлолигнин и свободный фурфурол в соотношении 42:1, в количестве 0,55,0%.
  2. 2. Способ поп. 1, отлича ю-о щ и й с я тем, что, с целью получения преимущественно фермента пероксидазы, культивирование проводят путем образования поверхностной пленки при использовании агримуса в концентрации 1,0-2,5%.
  3. 3. Способ по пп. 1 и 2, отличающийся тем, что, с целью получения преимущественно фермента монофенол-монооксигеназы, культивирование проводят путем образования поверхностной пленки при использовании агримуса в концентрации 4,05,0%.
    >
SU823520061A 1982-12-08 1982-12-08 Способ получени комплекса внеклеточных ферментов SU1084299A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823520061A SU1084299A1 (ru) 1982-12-08 1982-12-08 Способ получени комплекса внеклеточных ферментов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823520061A SU1084299A1 (ru) 1982-12-08 1982-12-08 Способ получени комплекса внеклеточных ферментов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1084299A1 true SU1084299A1 (ru) 1984-04-07

Family

ID=21038574

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823520061A SU1084299A1 (ru) 1982-12-08 1982-12-08 Способ получени комплекса внеклеточных ферментов

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1084299A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Авторское свидетельство СССР Р 654679, кл. С 12 N 1/16, 1979. 2. Авторское свидетельство СССР К 747886, кл. С 12 N 1/00. 1%0. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fang et al. Submerged fermentation of higher fungus Ganoderma lucidum for production of valuable bioactive metabolites—ganoderic acid and polysaccharide
EP0051637A1 (en) Liquid culturing of sporulating, ectomycorrhizal fungi
Reusser et al. Protein and fat content of some mushrooms grown in submerged culture
US3622463A (en) Production of extracellular glucose isomerase by streptomyces
SU1084299A1 (ru) Способ получени комплекса внеклеточных ферментов
US3806421A (en) Amylase inhibitor and method of producing the same
Hailei et al. A novel membrane-surface liquid co-culture to improve the production of laccase from Ganoderma lucidum
US5128261A (en) Natural delta-lactones and process of the production thereof
ELEGADO et al. Selection of raw-starch digestive glucoamylase-producing Rhizopus strain
Abdulameer et al. Optimum conditions for Inulinase production by Aspergillus niger using solid state fermentation
Fermor Agaricus macrosporus: an edible fungus with commercial potential
Adejoye et al. Effect of cultural conditions on biomass and laccase production in submerged medium by Schizophyllum commune (Fries), a Nigerian edible mushroom.
JPH02501030A (ja) “天然”のメチルアントラニレートの調製方法
Jönsson et al. Protease production by Alternaria tenuissima
CN1974755B (zh) 生产赤藓糖醇的酵母菌株
RU2001949C1 (ru) Штамм гриба TRICHODERMA REESEI - продуцент целлюлолитических ферментов
RU2814594C1 (ru) Питательная среда для выращивания продуцента молокосвертывающего фермента Piptoporus betulinus - продуцента молокосвертывающего фермента
JPS59198987A (ja) セルロ−ス系材料の有効利用方法
Gradišnik-Grapulin et al. Comparison of specific metabolic characteristics playing a role in citric acid excretion between some strains of the genus Aspergillus
SU810180A1 (ru) Питательна среда дл выращивани
SU535347A1 (ru) Штамм -67продуцент комплекса пектолитических ферментов
NO134260B (ru)
SU963274A1 (ru) Способ получени биомассы микроорганизмов
SU1068477A1 (ru) Способ получени комплекса ферментов
SU1097673A1 (ru) Способ получени глюкоамилазы и белкового корма