[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

RU2533619C2 - Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови - Google Patents

Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови Download PDF

Info

Publication number
RU2533619C2
RU2533619C2 RU2012106654/04A RU2012106654A RU2533619C2 RU 2533619 C2 RU2533619 C2 RU 2533619C2 RU 2012106654/04 A RU2012106654/04 A RU 2012106654/04A RU 2012106654 A RU2012106654 A RU 2012106654A RU 2533619 C2 RU2533619 C2 RU 2533619C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
psa
mpsa
glycoprotein
oxidized
aminooxy
Prior art date
Application number
RU2012106654/04A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2012106654A (ru
Inventor
Санджай Джаин
Грегори ГРЕГОРИАДИС
Арчана ДВИВЕДИ
Сриджит НАТ
Юрген Зикманн
Штефан Хайдер
Ханспетер Роттенштайнер
Петер Турецек
Original Assignee
Лайпоксен Текнолоджиз Лимитед
Бакстер Интернэшнл Инк.
Бакстер Хелткэр С.А.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Лайпоксен Текнолоджиз Лимитед, Бакстер Интернэшнл Инк., Бакстер Хелткэр С.А. filed Critical Лайпоксен Текнолоджиз Лимитед
Publication of RU2012106654A publication Critical patent/RU2012106654A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2533619C2 publication Critical patent/RU2533619C2/ru

Links

Images

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/17—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • A61K38/36—Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/62—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being a protein, peptide or polyamino acid
    • A61K47/64—Drug-peptide, drug-protein or drug-polyamino acid conjugates, i.e. the modifying agent being a peptide, protein or polyamino acid which is covalently bonded or complexed to a therapeutically active agent
    • A61K47/645—Polycationic or polyanionic oligopeptides, polypeptides or polyamino acids, e.g. polylysine, polyarginine, polyglutamic acid or peptide TAT
    • A61K47/6455—Polycationic oligopeptides, polypeptides or polyamino acids, e.g. for complexing nucleic acids
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/61—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule the organic macromolecular compound being a polysaccharide or a derivative thereof
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/62—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being a protein, peptide or polyamino acid
    • A61K47/65—Peptidic linkers, binders or spacers, e.g. peptidic enzyme-labile linkers

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Изобретение относится к способу конъюгации полисиаловой кислоты (PSA) или модифицированной PSA (mPSA) с окисленной углеводной частью гликопротеина, отличного от белка свертывания крови, содержащего углеводную группу, путем контактирования окисленной углеводной части с PSA или mPSA, где указанная PSA или mPSA содержит аминооксигруппу, и между окисленной углеводной частью и аминооксигруппой на PSA или mPSA образуется оксимная связь. Способ позволяет получить высокий выход конъюгата, высокое сохранение активности конъюгированного гликопротеина по сравнению с неконъюгированным белком и высокую эффективность конъюгации. 3 н. и 11 з.п. ф-лы, 2 ил., 27 пр.

Description

ОБЛАСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Настоящее изобретение относится к материалам и способам для конъюгации растворимых в воде полимеров, в частности, полисиаловой кислоты, с содержащими углеводы соединениями, в частности гликопротеинами, отличными от белков свертывания крови, и к полученным конъюгатам.
УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Конъюгация полипептидных лекарственных средств, например, путем пегилирования или полисиалирования, защищает их от деградации в кровотоке и, таким образом, улучшает их фармакодинамические и фармакокинетические профили (Harris and Chess, Nat Rev Drug Discov. 2003;2:214-21; S. Jain, D. Hreczuk-Hirst, P. Laing and G. Gregoriadis, Drug Delivery Systems and Sciences, 4 (No 1): 3-9, 2004.). Процесс пегилирования присоединяет повторяющиеся звенья этиленгликоля (полиэтиленгликоль (PEG)) к полипептидному лекарственному средству. Молекулы PEG имеют большой гидродинамический объем (в 5-10 раз превышающий размер глобулярных белков), являются высокорастворимыми в воде и гидратированными, нетоксичными, неиммуногенными и быстро выводятся из организма. Пегилирование молекул может приводить к увеличенной устойчивости лекарственных средств к ферментативной деградации, увеличению времени полужизни in vivo, снижению частоты дозирования, снижению иммуногенности, увеличению физической и термической стабильности, увеличению растворимости, увеличению стабильности в жидкости и снижению агрегации. Первые пегилированные лекарственные средства были одобрены FDA в ранние 1990. С тех пор FDA одобрило несколько пегилированных лекарственных средств для перорального, инъекционного и местного введения.
Сиаловые кислоты (также называемые N-ацетилнейраминовыми кислотами) и полисиаловые кислоты широко распространены в тканях животных и в меньшей степени в других видах в диапазоне от растений и грибов до дрожжей и бактерий, главным образом, в гликопротеинах и ганглиозидах.
Сокращение "PSA", используемое в настоящем документе, относится к термину "полисиаловая кислота". Аналогично, термин "mPSA", используемый в настоящем документе, относится к термину "модифицированная полисиаловая кислота".
PSA состоят из полимеров (главным образом, гомополимеров) N-ацетилнейраминовой кислоты. Вторичная аминогруппа обычно несет ацетильную группу, но вместо этого она может нести гликолильную группу. Возможные заместители на гидроксильных группах включают ацетильную, лактильную, этильную, сульфатную и фосфатную группы.
Figure 00000001
N-ацетилнейраминовая кислота
Neu5Ac
Структура сиаловой кислоты (N-ацетилнейраминовая кислота)
PSA и mPSA, главным образом, включают линейные полимеры, состоящие в основном из частей N-ацетилнейраминовой кислоты, связанных 2,8- или 2,9-гликозидными связями или их комбинациями (например, чередование 2,8- и 2,9-связей). В особенно предпочтительных PSA и mPSA гликозидные связи представляют собой α-2,8. Является пригодным, когда такие PSA и mPSA происходят из коломиновых кислот, и их обозначают в настоящем документе как "CA" и "mCA". Типичные PSA и mPSA содержат по меньшей мере 2, предпочтительно по меньшей мере 5, более предпочтительно по меньшей мере 10 и наиболее предпочтительно по меньшей мере 20 частей N-ацетилнейраминовой кислоты. Таким образом, они могут содержать от 5 до 500 частей N-ацетилнейраминовой кислоты, предпочтительно от 10 до 300 частей N-ацетилнейраминовой кислоты. PSA и CA могут представлять собой полимеры, содержащие различные группы сахаров. Они могут представлять собой сополимеры. Предпочтительно PSA и CA свободны от частей сахаров, отличных от N-ацетилнейраминовой кислоты. PSA и CA предпочтительно содержат по меньшей мере 90%, более предпочтительно по меньшей мере 95% и наиболее предпочтительно по меньшей мере 98% частей N-ацетилнейраминовой кислоты.
Когда PSA и CA содержат части, отличные от N-ацетилнейраминовой кислоты (как, например, в mPSA и mCA), они предпочтительно расположены на одном или обоих концах полимерной цепи. Такие "другие" группы могут, например, представлять собой группы, образованные из концевых групп N-ацетилнейраминовой кислоты путем окисления или восстановления.
Например, в WO-A-0187922 описаны такие mPSA и mCA, в которых невосстанавливающее концевое звено N-ацетилнейраминовой кислоты превращено в альдегидную группу путем реакции с перйодатом натрия. Кроме того, в WO 2005/016974 описаны такие mPSA и mCA, в которых восстанавливающее концевое звено N-ацетилнейраминовой кислоты подвергнуто восстановлению для восстановительного размыкания кольца на восстанавливающем концевом звене N-ацетилнейраминовой кислоты, посредством чего образуются соседняя диольная группа, с последующим окислением для превращения соседней диольной группы в альдегидную группу.
Гликопротеины, обогащенные сиаловыми кислотами, связывают селектин у человека и других организмов. Они играют важную роль в инфекциях вирусом гриппа человека. Например, сиаловая кислота может скрывать антигены маннозы на поверхности клеток-хозяев или бактерий от связывающего маннозу лектина. Это предотвращает активацию комплемента. Сиаловые кислоты также скрывают предпоследний остаток галактозы, таким образом препятствуя быстрому выведению гликопротеина посредством рецептора галактозы на клетках паренхимы печени.
Figure 00000002
Структура коломиновой кислоты (гомополимер N-ацетилнейраминовой кислоты)
CA продуцируются, среди прочих, определенными штаммами Escherichia coli, обладающими антигеном K1. CA обладают множеством физиологических функций. Они являются важными в качестве сырья для лекарственных и косметических средств.
Сравнительные исследования in vivo с полисиалированной и немодифицированной аспарагиназой показали, что полисиалирование увеличивало время полужизни фермента (Fernandes and Gregoriadis, Biochimica Biophysica Acta 1341: 26-34, 1997).
Получение конъюгатов путем образования ковалентной связи между растворимым в воде полимером и терапевтическим белком можно проводить множеством химических способов. Одним подходом для присоединения PSA к терапевтическим белкам является конъюгация полимеров через углеводные части белка. Соседние гидроксильные (OH) группы углеводов в белках можно легко окислять перйодатом натрия (NaIO4) с образованием активных альдегидных групп (Rothfus and Smith, J Biol Chem 1963; 238: 1402-10; van Lenten and Ashwell, J Biol Chem 1971; 246: 1889-94). Затем полимер можно присоединять к альдегидным группам углеводов с использованием реагентов, содержащих, например, активную гидразидную группу (Wilchek M and Bayer EA, Methods Enzymol 1987; 138:429-42). Более поздней технологией является применение реагентов, содержащих аминооксигруппы, которые реагируют с альдегидами с образованием оксимных связей (WO 96/40662, WO2008/025856).
Дополнительные примеры, описывающие конъюгацию PSA с терапевтическим белком, описаны в публикации US 2009/0076237, в которой описано окисление rFVIII и последующее связывание с PSA и другими растворимыми в воде полимерами (например, PEG, HES, декстран) с использованием химии гидразидов; в WO 2008/025856, в которой описано окисление различных факторов свертывания, например, rFIX, FVIII и FVIIa, и последующее связывание с полимером, например, PEG.
Недавно был описан усовершенствованный способ, включающий мягкое окисление перйодатом сиаловых кислот с образованием альдегидов с последующей реакцией с содержащим аминооксигруппу реагентом в присутствии каталитических количеств анилина (Dirksen A and Dawson PE, Bioconjugate Chem. 2008; 19,2543-8; и Zeng Y et al., Nature Methods 2009; 6:207-9). Анилиновые катализаторы значительно ускоряют сшивание оксимов, позволяя применять очень низкие концентрации реагентов.
Несмотря на то что доступны способы конъюгации растворимых в воде полимеров с терапевтическими белками, остается потребность в разработке материалов и способов для конъюгации растворимых в воде полимеров с содержащими углеводы соединениями, отличными от белков свертывания крови, которые улучшают фармакодинамические и/или фармакокинетические свойства при одновременной минимизации затрат, ассоциированных с различными реагентами.
СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Настоящее изобретение относится к материалам и способам для конъюгации растворимого в воде полимера с содержащим углевод соединением, отличным от белка свертывания крови, которое улучшает фармакодинамические и/или фармакокинетические свойства белка при одновременной минимизации затрат, связанных с различными реагентами.
В одном варианте осуществления изобретения предусмотрен способ конъюгации растворимого в воде полимера с окисленной углеводной группой содержащего углевод соединения, отличного от белка свертывания крови, включающий контактирование окисленной углеводной группы с растворимым в воде полимером в условиях, которые обеспечивают конъюгацию, где указанный растворимый в воде полимер содержит аминооксигруппу, и между окисленной углеводной группой и аминооксигруппой на растворимом в воде полимере образуется оксимная связь, или где указанный растворимый в воде полимер содержит гидразидную группу, и между окисленной углеводной группой и гидразидной группой растворимого в воде полимера образуется гидразоновая связь. Соединение может представлять собой (1) гликопротеин, отличный от белка свертывания крови, (2) ганглиозид или (3) систему для доставки лекарственного средства, содержащую углеводную группу.
Углеводную часть можно окислять с использованием специфичного к сахарам окисляющего фермента (например, галактоза- или глюкозаоксидаза) или путем инкубации с буфером, содержащим окислитель, выбранный из перйодата натрия (NaIO4), тетраацетата свинца (Pb(OAc)4) и перрутената калия (KRuO4).
Углеводную часть можно окислять по остатку сиаловой кислоты, маннозы, галактозы или глюкозы.
Растворимый в воде полимер, используемый в изобретении, может представлять собой, но не ограничиваться ими, полиэтиленгликоль (PEG), разветвленный PEG, производное PEG, PSA, mPSA, CA, mCA, гидроксиэтилцеллюлозу (HEC), декстрин, полиоксазолин, углевод, полисахариды, пуллулан, хитозан, гиалуроновую кислоту, хондроитинсульфат, дерматансульфат, крахмал, декстран, карбоксиметил-декстран, полиалкиленоксид (PAO), полиалкиленгликоль (PAG), полипропиленгликоль (PPG) полиоксазолин, полиакрилоилморфолин, поливиниловый спирт (PVA), поликарбоксилат, поливинилпирролидон, полифосфазен, полиоксазолин, сополимер полиэтилен-ангидрид малеиновой кислоты, сополимер полистирол-ангидрид малеиновой кислоты, поли(1-гидроксиметилэтиленгидроксиметилформальдегид) (PHF), фосфат 2-метакрилоилокси-2'-этилтриметиламмония (MPC).
В конкретных вариантах осуществления изобретения, проиллюстрированных в примерах ниже, растворимый в воде полимер представляет собой PEG или разветвленный PEG.
В следующих конкретных вариантах осуществления изобретения, проиллюстрированных в примерах ниже, растворимый в воде полимер представляет собой полисиаловую кислоту (PSA) или модифицированную PSA (mPSA). PSA или mPSA могут обладать диапазоном молекулярной массы от 350 Да до 120000 Да, от 500 Да до 100000 Да, от 1000 Да до 80000 Да, от 1500 Да до 60000 Да, от 2000 Да до 45000 Да или от 3000 Да до 35000 Да.
PSA или mPSA могут представлять собой коломиновую кислоту или модифицированную коломиновую кислоту.
В другом варианте осуществления изобретения PSA или mPSA содержат приблизительно 2-500 или 10-300 звеньев сиаловой кислоты. В другом варианте осуществления предусмотрен указанный выше способ, где окислитель представляет собой перйодат натрия (NaIO4).
Способ по изобретению может включать окисление растворимого в воде полимера с образованием альдегидной группы на концевом звене сиаловой кислоты на растворимом в воде полимере и реакцию окисленного растворимого в воде полимера с аминооксилинкером.
В другом варианте осуществления изобретения предусмотрен указанный выше способ, где растворимый в воде полимер получают путем реакции активированного аминооксилинкера с окисленным растворимым в воде полимером, где линкер представляет собой гомобифункциональный или гетеробифункциональный линкер. Гомобифункциональный линкер может иметь общую формулу NH2[OCH2CH2]nONH2, где n=1-50, предпочтительно 1-11, более предпочтительно 1-6. В частности, линкер может быть выбран из:
3-оксапентан-1,5-диоксиминового линкера формулы:
Figure 00000003
и
3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиаминового линкера формулы:
Figure 00000004
PSA или mPSA можно окислять путем инкубации с окислителем с образованием концевой альдегидной группы на невосстанавливающем конце PSA.
Способ может включать окисление растворимого в воде полимера с образованием альдегидной группы на концевом звене растворимого в воде полимера, например, на концевом звене сиаловой кислоты в PSA или mPSA, и реакцию окисленного растворимого в воде полимера с аминооксилинкером. В другом варианте осуществления предусмотрен указанный выше способ, где аминооксилинкер представляет собой 3-оксапентан-1,5-диоксиамин. В родственном варианте осуществления окислитель представляет собой NaIO4.
В другом варианте осуществления изобретения предусмотрен указанный выше способ, где контактирование окисленной углеводной группы с активированным растворимым в воде полимером происходит в буфере, содержащем нуклеофильный катализатор, выбранный из группы, состоящей из анилина и производных анилина.
Гидразидная группа может быть образована на растворимом в воде полимере путем реакции окисленного растворимого в воде полимера с гидразидным линкером. Гидразидный линкер может соответственно представлять собой дигидразид адипиновой кислоты или гидразин.
В другом варианте осуществления изобретения предусмотрен указанный выше способ, кроме того, включающий стадию восстановления оксимной или гидразоновой связи в конъюгированном белке, например, путем инкубации конъюгированного белка в буфере, содержащем восстанавливающее соединение, выбранное из группы, состоящей из цианоборгидрида натрия (NaCNBH3) и аскорбиновой кислоты (витамин C). В родственном варианте осуществления восстанавливающее соединение представляет собой цианоборгидрид натрия (NaCNBH3).
В другом варианте осуществления изобретения предусмотрен конъюгированный гликопротеин, продуцированный любым из описанных выше способов. В другом варианте осуществления изобретения конъюгированный гликопротеин, отличный от белка свертывания крови, ганглиозид или система для доставки лекарственных средств содержит (a) указанный гликопротеин, ганглиозид или систему для доставки лекарственных средств; и (b) по меньшей мере один растворимый в воде аминооксиполимер, связанный с гликопротеином (a), где указанный растворимый в воде аминооксиполимер связан с гликопротеином, ганглиозидом или системой для доставки лекарственных средств через одну или несколько углеводных частей. В следующем варианте осуществления изобретения конъюгированный гликопротеин, отличный от белка свертывания крови, ганглиозид или система для доставки лекарственного средства содержит (a) указанный гликопротеин, ганглиозид или систему для доставки лекарственного средства; и (b) по меньшей мере один гидразидный растворимый в воде полимер, связанный с гликопротеином (a), где указанный гидразидный растворимый в воде полимер связан с ганглиозидом гликопротеина или системой для доставки лекарственного средства через одну или несколько углеводных частей.
ФИГУРЫ
На фиг.1 представлен синтез растворимых в воде диаминоксилинкеров: 3-окса-пентан-1,5-диоксиамина и 3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиамина.
На фиг.2 представлено получение аминоокси-PSA.
ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Фармакологические и иммунологические свойства углеводсодержащих соединений, таких как гликопротеины, отличные от белков свертывания крови, можно улучшать путем химической модификации и конъюгации с растворимым в воде полимером, в частности, PEG или PSA или mPSA. Свойства полученных конъюгатов, как правило, строго зависят от структуры и размера полимера. Таким образом, обычно являются предпочтительными полимеры с определенным и узким распределением размеров. PSA и mPSA, используемые в конкретных примерах, можно очищать так, чтобы получать конечный препарат PSA с узким распределением размеров.
ГЛИКОПРОТЕИНЫ
Как описано в настоящем документе, главным образом, изобретением предусматриваются гликопротеины, отличные от белков свертывания крови, включая, но не ограничиваясь ими, цитокины такие как интерлейкины, альфа-, бета- и гамма-интерфероны, колониестимулирующие факторы, включая гранулоцитарные колониестимулирующие факторы, фибробластные факторы роста, тромбоцитарные факторы роста, активирующий фосфолипазу белок (PUP), инсулин, растительные белки, такие как лектины и рицины, факторы некроза опухоли и родственные аллельные формы, растворимые формы рецепторов фактора некроза опухоли, рецепторы интерлейкинов и растворимые формы рецепторов интерлейкинов, факторы роста, тканевые факторы роста, трансформирующие факторы роста, такие как TGFα или TGFβ и эпидермальные факторы роста, гормоны, соматомедины, пигментарные гормоны, гипоталамические рилизинг-факторы, антидиуретические гормоны, пролактин, хорионический гонадотропин, фоликулостимулирующий гормон, тиреотропный гормон, тканевой активатор плазминогена и иммуноглобулины, такие как IgG, IgE, IgM, IgA и IgD, моноклональные антитела, эритропоэтин (EPO), факторы крови, отличные от белков свертывания крови, галактозидазы, α-галактозидазы, β-галактозидазы, ДНКазы, фетуин, их фрагменты и любые слитые белки, содержащие любой из упомянутых выше белков или их фрагментов вместе с терапевтическими гликопротеинами. В одном варианте осуществления гликопротеин представляет собой EPO. В следующем варианте осуществления гликопротеин представляет собой галактозидазу. В следующем варианте осуществления гликопротеин представляет собой ДНКазу. В следующем варианте осуществления гликопротеин представляет собой фетуин. Наконец, в следующем варианте осуществления гликопротеин представляет собой гранулоцитарный колониестимулирующий фактор.
Как используют в настоящем документе, "биологически активное производное" или "биологически активный вариант" включает любое производное или вариант молекулы, имеющие по существу те же функциональные и/или биологические свойства, что и указанная молекула, такие как свойства связывания, и/или ту же структурную основу, такую как пептидная основная цепь или основное полимерное звено.
"Аналог", "вариант" или "производное" представляет собой соединение, по существу сходное по структуре и имеющее ту же биологическую активность, хотя в определенных случаях в отличной степени, что и встречающаяся в природе молекула. Например, полипептидный вариант относится к полипептиду, обладающему по существу сходной структурой и имеющему ту же биологическую активность, что и эталонный полипептид. Варианты или аналоги отличаются составом их аминокислотных последовательностей по сравнению со встречающимся в природе полипептидом, из которого происходит аналог, на основании одной или нескольких мутаций, вовлекающих (i) делецию одного или нескольких аминокислотных остатков на одном или нескольких концах полипептида и/или в одной или нескольких внутренних областях встречающейся в природе полипептидной последовательности (например, фрагменты), (ii) инсерцию или добавление одной или нескольких аминокислот на одном или нескольких концах (как правило, "добавление" или "слияние") полипептида и/или в одной или нескольких внутренних областях (как правило, "инсерция") встречающейся в природе полипептидной последовательности, или (iii) замену одной или несколькими аминокислотами других аминокислот во встречающейся в природе полипептидной последовательности. В качестве примера, "производное" относится к полипептиду, обладающему той же или существенно сходной структурой по сравнению с полипептидом, который был модифицирован, например, химически.
Полипептиды вариантов или аналогов включают варианты с инсерцией, где к аминокислотной последовательности белка по изобретению добавлены один или несколько аминокислотных остатков. Инсерции могут быть расположены на любом или обоих концах белка и/или они могут быть расположены во внутренних областях аминокислотной последовательности белка. Варианты с инсерцией с дополнительными остатками на любом или обоих концах, включают, например, слитые белки и белки, включающие маркерные аминокислоты или другие аминокислотные метки. В одном аспекте молекула белка необязательно содержит N-концевой Met, особенно когда молекула экспрессируется рекомбинантно в бактериальной клетке, такой как E. coli.
В вариантах с делецией один или несколько аминокислотных остатков в белке или полипептиде, как описано в настоящем документе, удалены. Делеции могут быть проведены на одном или обоих концах белка или полипептида и/или с удалением одного или нескольких остатков в аминокислотной последовательности белка. Варианты с делецией, таким образом, включают фрагменты белковой или полипептидной последовательности.
В вариантах с заменой один или несколько аминокислотных остатков белка или полипептида удалены и заменены альтернативными остатками. В одном аспекте замены являются консервативными в природе и консервативные замены этого типа хорошо известны в данной области. Альтернативно изобретение охватывает замены, которые также являются неконсервативными. Иллюстративные консервативные замены описаны в Lehninger, [Biochemistry, 2nd Edition; Worth Publishers, Inc., New York (1975), pp.71-77] и представлены непосредственно ниже.
КОНСЕРВАТИВНЫЕ ЗАМЕНЫ
ХАРАКТЕРИСТИКА БОКОВОЙ ЦЕПИ АМИНОКИСЛОТА
Неполярная (гидрофобная):  
A. Алифатическая A L I V P
B. Ароматическая F W
С. Серосодержащая M
D. Промежуточная G
Незаряженная полярная:  
A. Гидроксильная S T Y
B. Амиды N Q
С. Сульфгидрильная C
D. Промежуточная G
Положительно заряженная (основная) K R H
Отрицательно заряженная (кислотная) D E
Альтернативно, иллюстративные консервативные замены указаны непосредственно ниже.
КОНСЕРВАТИВНЫЕ ЗАМЕНЫ II
ИСХОДНЫЙ ОСТАТОК ИЛЛЮСТРАТИВНАЯ ЗАМЕНА
Ala (A) Val, Leu, Ile
Arg (R) Lys, Gln, Asn
Asn (N) Gln, His, Lys, Arg
Asp (D) Glu
Cys (C) Ser
Gln (Q) Asn
Glu (E) Asp
His (H) Asn, Gln, Lys, Arg
Ile (I) Leu, Val, Met, Ala, Phe
Leu (L) Ile, Val, Met, Ala, Phe
Lys (K) Arg, Gln, Asn
Met (M) Leu, Phe, Ile
Phe (F) Leu, Val, Ile, Ala
Pro (P) Gly
Ser (S) Thr
Thr (T) Ser
Trp (W) Tyr
Tyr (Y) Trp, Phe, Thr, Ser
Val (V) Ile, Leu, Met, Phe, Ala
ГАНГЛИОЗИДЫ
В вариантах осуществления изобретения ганглиозиды конъюгируют с растворимыми в воде полимерами, например, PEG или PSA или mPSA. Известно, что ганглиозиды обеспечивают клетки с отличающимися поверхностными маркерами, которые участвуют в распознавании клеток и межклеточной коммуникации. Они пригодны в качестве лекарственных средств.
Конъюгаты по изобретению могут содержать ганглиозид и растворимый в воде полимер, в котором ганглиозид содержит гликосфинголипид (церамид и олигосахарид) с одной или несколькими сиаловыми кислотами, присоединенными к цепи сахаров. Ганглиозиды можно классифицировать согласно тому, сколько звеньев сиаловых кислот присутствуют на молекуле. Примерами ганглиозидов являются GM1, GM2 и GM3 (моносиалоганглиозиды), GD1a, GD1b, GD2 и GD3 (дисиалоганглиозиды), GT1b (трисиалоганглиозид) и GQ1 (тетрасиалоганглиозид).
Для применения в настоящем изобретении предпочтительные ганглиозиды содержат церамид, связанный с глюкозой, которая связана с первой галактозой, которая связана с N-ацетилгалактозамином, который связан со второй галактозой. Эта вторая галактоза может быть связана с одной сиаловой кислотой. Первая галактоза может быть связана с одной, двумя, тремя или четырьмя сиаловыми кислотами. Сиаловые кислоты могут быть присоединены либо в качестве мономеров (по одной на каждой из молекул галактозы), либо в качестве олигосиаловых кислот (2-4 сиаловых кислоты) к первой галактозе.
При введении терапевтические ганглиозиды должны циркулировать в крови в течение длительных периодов. Чтобы действие ганглиозидов на ткани-мишени было более эффективным, их можно подвергать полисиалированию, например, способом по изобретению.
СИСТЕМЫ ДЛЯ ДОСТАВКИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ
В следующих вариантах осуществления изобретения системы для доставки лекарственных средств конъюгируют с растворимым в воде полимером, например, PEG или PSA или mPSA. Как правило, система для доставки лекарственного средства (DDS) представляет собой молекулярную структуру или структуру в виде частиц, которая может контролировать судьбу и эффект лекарственных средств, связанных с этой структурой. DDS можно подразделить на два основных типа. Первый тип включает макромолекулы (MDDS), например, антитела, неогликопротеины, а также синтетические полимеры, такие как поли(гидроксипропилметакриламид), полилизин и полимеризованные алкилцианоакрилаты. Связывание лекарственных средств с различными типами макромолекулярных носителей, включая моноклональные антитела, для нацеливания лекарственного средства в желаемые области, описано, например, Gregoriadis в Nature 265, 407-411 (1977). Вторым типом являются DDS в форме частиц (PDDS), которые содержат, например, наносферы или микросферы, которые содержат биодеградируемые материалы, такие как альбумин, или полубиодеградируемые материалы, такие как декстран и алкилцианоакрилатные полимеры, или носители, образованные из неионных поверхностно-активных веществ, или липосомы - для подробного описания которых см., например, Gregoriadis в NIPS, 4, 146-151 (1989).
Лекарственные средства можно либо ковалентно связывать с, либо пассивно заключать в DDS. Например, PDDS, содержащие везикулы или липосомы из поверхностно-активного вещества, могут заключать в себе гидрофильные или гидрофобные фармацевтически активные соединения вследствие формирования соответствующей комбинации слоев поверхностно-активного вещества или липидных молекул. Фармацевтически активные соединения обычно ковалентно связывают с MDDS связью, которая может расщепляться или может не расщепляться в организме, например, до или после того, как активное соединение выполняет его функцию.
Многие из MDDS обладают присущей (например, антитела) или приобретенной (например, неогликопротеины) способностью быть распознанными клетками-мишенями или тканями-мишенями через рецепторы на их поверхности. Как правило, такие DDS захватываются специфично мишенью при инъекции. Однако специфичный захват ограничен объемом DDS, захватываемого другими, не имеющими отношения (к терапии) тканями. Причиной этому является то, что антитела и другие белки DDS (независимо от их специфичности к мишени) должны, подобно другим белкам, быть катаболизированы в конце их биологической жизни.
Синтетические полимеры, используемые в MDDS макромолекулярного типа представляют собой, например, поли(гидроксипропилметакриламид)полилизин и полимеризованные алкилцианоакрилаты. Они могут катаболизироваться в ретикулоэндотелиальной системе (RES) или другими тканями с помощью соответствующих лизосомальных ферментов. Может быть желательным снижение скорости катаболизма таких биодеградируемых DDS макромолекулярного типа различными способами, например, путем снижения захвата DDS RES или другими тканями, или путем снижения деградации лизосомальными ферментами после захватывания RES.
DDS в форме частиц (PDDS), как правило, удаляются из кровотока посредством RES. Вследствие их преимущественного удаления RES, PDDS часто используют для доставки лекарственных средств в эти ткани. Однако часто желательно, чтобы PDDS были направлены в ткани, отличные от тканей RES. Для достижения этой цели необходимо блокировать или замедлять перехват PDDS посредством RES.
DDS для применения в изобретения могут исходно не содержать гликоны. Возможно добавление или иное включение гликона в структуру DDS. Примерами таких случаев являются липосомы, включающие маннозилированный или галактозилированный липид. Эти гликолипосомы нацеливают активные средства в ткани, которые экспрессируют рецептор маннозы или галактозы, соответственно.
Когда DDS должны циркулировать в крови в течение длительных периодов, так чтобы, например, захват тканями был более эффективным (как в случае паренхимных клеток печени), их преимущественно полисиалируют способами по изобретению.
ВВЕДЕНИЕ
В одном варианте осуществления конъюгированное соединение по настоящему изобретению можно вводить путем инъекции, такой как внутривенная, внутримышечная или внутрибрюшинная инъекция. Композиции могут быть пригодны в качестве терапевтических, диагностических и/или сходных средств.
Для введения композиций, содержащих конъюгированное соединение по настоящему изобретению человеку или тестируемым животным, в одном аспекте композиции содержат один или несколько фармацевтически приемлемых носителей. Термины "фармацевтически" или "фармакологически приемлемый" относятся к молекулярным структурам и композициям, которые являются стабильными, ингибируют деградацию белка, такую как агрегация и продукты расщепления и, кроме того, не вызывают аллергических или иных неблагоприятных реакций при введении с использованием путей, хорошо известных в данной области, как описано ниже. "Фармацевтически приемлемые носители" включают любые и все клинически пригодные растворители, дисперсионные среды, покрытия, антибактериальные и противогрибковые средства, обеспечивающие изотоничность и замедляющие всасывание средства и т.п., включая средства, описанные выше.
Как используют в настоящем документе, "эффективное количество" включает дозу, пригодную для лечения млекопитающего, имеющего клинически установленное нарушение.
Композиции можно вводить перорально, местно, трансдермально, парентерально, с помощью ингалируемого спрея, вагинально, ректально или путем внутричерепной инъекции. Термин "парентеральный", как используют в настоящем документе, включает подкожные инъекции, внутривенную, внутримышечную, интрацистернальную инъекцию или способы инфузии. Также предусмотрено введение путем внутривенной, внутрикожной, внутримышечный, внутригрудной, внутрибрюшинной, интратекальной, ретробульбарной, внутрилегочной инъекции и/или хирургической имплантации в конкретную область. Как правило, композиции по существу не содержат пирогенов, а также других примесей, которые могут быть вредоносными для реципиента.
Однократное или многократные введения композиции можно проводить с уровнями и расписанием введения доз, выбираемыми лечащим врачом. Для профилактики или лечения заболевания соответствующая дозировка будет зависеть от типа заболевания, подлежащего лечению, как описано выше, тяжести или течения заболевания, введения лекарственного средства в профилактических или терапевтических целях, предшествующей терапии, клинического анамнеза пациента и ответа на лекарственное средство, и мнения лечащего врача.
Также настоящее изобретение относится к фармацевтической композиции, содержащей эффективное количество конъюгированного соединения или белка, как определено в настоящем документе. Фармацевтическая композиция, кроме того, может содержать фармацевтически приемлемый носитель, разбавитель, соль, буфер или эксципиент. Фармацевтическую композицию можно применять для лечения клинически установленных нарушений. Фармацевтическая композиция по изобретению может представлять собой раствор или лиофилизированный продукт. Растворы фармацевтической композиции можно подвергать любому пригодному способу лиофилизации.
В качестве дополнительного аспекта изобретение относится к наборам, которые содержат композицию по изобретению, упакованную так, чтобы облегчить ее применение для введения индивидуумам. В одном варианте осуществления такой набор включает соединение или композицию, описанные в настоящем документе (например, композицию, содержащую конъюгированный белок), упакованные в контейнер, такой как закрытая бутыль или емкость, с ярлыком, прикрепленным к контейнеру или включенным в упаковку, на котором описано использование соединения или композиции в способе применения. В одном варианте осуществления набор содержит первый контейнер, имеющий композицию, содержащую конъюгированный белок, и второй контейнер, имеющий физиологически приемлемый раствор для разбавления композиции в первом контейнере. В одном аспекте соединение или композиция упакованы в виде единичной дозированной формы. Кроме того, набор может включать устройство, пригодное для введения композиции согласно конкретному пути введения. Предпочтительно, набор содержит ярлык, на котором описано применение композиции терапевтического белка или пептида.
В одном варианте осуществления производное сохраняет полную функциональную активность исходных терапевтических соединений и обеспечивает увеличенное время полужизни in vivo по сравнению с исходными терапевтическими соединениями. В другом варианте осуществления производное сохраняет по меньшей мере 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44. 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99, 100, 110, 120, 130, 140 или 150 процентов (%) биологической активности относительно исходного соединения.
СИАЛОВАЯ КИСЛОТА И PSA
Как используют в настоящем документе "части сиаловых кислот" включают мономеры или полимеры ("полисахариды") сиаловых кислот, которые растворимы в водном растворе или суспензии и имеют небольшое отрицательное влияние, такое как побочные эффекты, или не имеют его, у млекопитающих при введении конъюгата PSA-белок в фармацевтически эффективном количестве. В одном аспекте PSA и mPSA характеризуются как имеющие 1, 2, 3, 4, 5, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100, 200, 300, 400 или 500 звеньев сиаловых кислот. В некоторых аспектах различные звенья сиаловых кислот объединены в цепь.
В одном варианте осуществления изобретения часть сиаловых кислот в PSA или mPSA является высоко гидрофильной, и в другом варианте осуществления все соединение является высоко гидрофильным. Гидрофильность обеспечивается, главным образом, выступающими карбоксильными группами звеньев сиаловых кислот, а также гидроксильными группами. Сахаридное звено может содержать другие функциональные группы, такие как амино, гидроксильную или сульфатную группу или их комбинации. Эти группы могут присутствовать на встречающихся в природе сахаридных соединениях или могут быть внесены в производные полисахаридные соединения. PSA и mPSA, используемые в способах и конъюгатах по изобретению, можно далее охарактеризовывать, как описано выше в разделе "Уровень техники изобретения".
Встречающийся в природе полимер PSA доступен в качестве полидисперсного препарата, демонстрирующего широкое распределение размеров (например, Sigma C-5762) и высокую полидисперсность (PD). Поскольку полисахариды обычно продуцируются в бактериях, несущих в себе присущий им риск совместно очищающихся эндотоксинов, очистка длинных цепей полимеров сиаловых кислот может привести к вероятности увеличенного содержания эндотоксинов. Короткие молекулы PSA с 1-4 звеньями сиаловых кислот также можно получать синтетически (Kang SH et al., Chem Commun. 2000; 227-8; Ress D and Linhardt RJ, Current Organic Synthesis. 2004; 1:31-46), таким образом минимизируя риск высоких уровней эндотоксинов. Однако также можно изготавливать препараты PSA с узким распределением размеров и низкой полидисперсностью, которые не содержат эндотоксинов. Полисахаридные соединения, особенно пригодные для изобретения, представляют собой, в одном аспекте, соединения, продуцируемые бактериями. Некоторые из этих встречающихся в природе полисахаридов известны в качестве гликолипидов. В одном варианте осуществления полисахаридные соединения по существу не содержат концевых галактозных звеньев.
В различных вариантах осуществления соединение связано или ассоциировано с соединением PSA или mPSA в стехиометрических количествах (например, 1:1, 1:2, 1:3, 1:4, 1:5, 1:6, 1:7, 1:7, 1:8, 1:9 или 1:10 и т.д.). В различных вариантах осуществления с соединением связаны 1-6, 7-12 или 13-20 единиц PSA и/или mPSA. В других вариантах осуществления с соединением связаны 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20 или более единиц PSA и/или mPSA.
Необязательно, соединение модифицировано путем внесения участков гликозилирования (т.е. участков, отличных от природных участков гликозилирования). Такую модификацию можно проводить с использованием стандартных молекулярно-биологических способов, известных в данной области. Более того, соединение перед конъюгацией через одну или несколько углеводных групп можно гликолизировать in vivo или in vitro.
АМИНООКСИ-СВЯЗЬ
В одном варианте осуществления изобретения для получения конъюгатов соединения применяют реакцию гидроксиламина или производных гидроксиламина с альдегидами (например, на углеводной части с последующим окислением перйодатом натрия) с образованием группы оксима. Например, гликопротеин сначала окисляют окислителем, таким как перйодат натрия (NaIO4) (Rothfus JA et Smith EL., J Biol Chem 1963, 238, 1402-10; и Van Lenten L and Ashwell G., J Biol Chem 1971, 246, 1889-94). Окисление перйодатом, например, гликопротеинов, основано на классической реакции Малапраде, описанной в 1928 году, окислении соседних диолов перйодатом с образованием активной альдегидной группы (Malaprade L., Analytical application, Bull Soc Chim France, 1928, 43, 683-96). Дополнительными примерами такого окислителя являются тетраацетат свинца (Pb(OAc)4), ацетат марганца (MnO(Ac)3), ацетат кобальта (Co(OAc)2), ацетат таллия (TlOAc), сульфат церия (Ce(SO4)2) (US 4367309) или перрутенат калия (KRuO4) (Marko et al., J Am Chem Soc 1997,1 19, 12661-2) Под "окислителем" понимают мягко окисляющее соединение, которое способно окислять соседние диолы в углеводах, тем самым образуя активные альдегидные группы в физиологических условиях реакции.
Второй стадией является присоединение полимера, содержащего аминооксигруппу, к окисленной углеводной части, с образованием оксимной связи. В одном варианте осуществления изобретения эту стадию можно проводить в присутствии каталитических количеств нуклеофильного катализатора анилина или производных анилина (Dirksen A et Dawson PE, Bioconjugate Chem. 2008; Zeng Y et al., Nature Methods 2009; 6:207-9). Катализ анилином значительно ускоряет сшивание оксимов, позволяя использовать очень низкие концентрации реагентов, в другом варианте осуществления изобретения оксимную связь стабилизируют восстановлением NaCNBH3 с образованием алкоксиаминовой связи.
В одном варианте осуществления изобретения стадии реакции для конъюгации PSA или mPSA с белком проводят по отдельности или последовательно (т.е. исходные материалы (например, белок, полимер и т.д.), реагенты (например, окислители, анилин и т.д.) и продукты реакции (например, окисленный углевод на белке, активированный аминооксиполимер и т.д.) разделяют между отдельными стадиями реакции).
Дополнительная информация по аминоокси-технологии может быть найдена в следующих ссылках, каждая из которых включена в полном объеме: EP 1681303A1 (HAS-модифицированный эритропоэтин); WO 2005/014024 (конъюгаты полимера и белка, связанные оксимной линкерной группой); WO96/40662 (аминоокси-содержащие линкерные соединения и их применение в конъюгатах); WO 2008/025856 (модифицированные белки); Peri F et al., Tetrahedron 1998, 54, 12269-78; Kubler-Kielb J and Pozsgay V., J Org Chem 2005, 70, 6987-90; Lees A et al., Vaccine 2006, 24(6), 716-29; и Heredia L et al., Macromolecules 2007, 40(14), 4772-9.
Преимущества изобретения включают высокий выход конъюгата, высокое сохранение активности конъюгированного гликопротеина по сравнению с неконъюгированным белком и высокую эффективность конъюгации.
Далее изобретение проиллюстрировано с помощью следующих примеров. Примеры 1-3, 9 и 11-27 иллюстрируют конкретные варианты осуществления изобретения. Примеры 4-8 и 10 включены в качестве справочных примеров вследствие их важности для получения соответствующих конъюгатов по изобретению.
ПРИМЕРЫ
Пример 1
Получение гомобифункционального линкера NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 2 ONH 2
Гомобифункциональный линкер NH2[OCH2CH2]2ONH2
Figure 00000005
(3-оксапентан-1,5-диоксиамин), содержащий две активных аминооксигруппы, синтезировали согласно Boturyn et al. (Tetrahedron 1997; 53:5485-92) посредством двухстадийной органической реакции с использованием модифицированного синтеза первичных аминов Габриэля. На первой стадии одну молекулу 2,2-хлордиэтилового эфира подвергали реакции с двумя молекулами эндо-N-гидрокси-5-норборнен-2,3-дикарбоксиимида в диметилформамиде (DMF). Желаемый гомобифункциональный продукт получали из полученного промежуточного соединения путем гидразинолиза в этаноле. Если нет иных указаний, в примерах ниже его называют диаминоксилинкером.
Пример 2
Получение гомобифункционального линкера NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 4 ONH 2
Гомобифункциональный линкер NH2[OCH2CH2]4ONH2
Figure 00000006
(3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиамин), содержащий две активных аминооксигруппы, синтезировали согласно Boturyn et al. (Tetrahedron 1997;53:5485-92) посредством двухстадийной органической реакции с использованием модифицированного синтеза первичных аминов Габриэля. На первой стадии одну молекулу бис-(2-2-хлорэтокси)этилового эфира подвергали реакции с двумя молекулами эндо-N-гидрокси-5-норборнен-2,3-дикарбоксимида в DMF. Желаемый гомобифункциональный продукт получали из полученного промежуточного соединения гидразинолизом в этаноле.
Пример 3
Получение аминоокси-PSA
500 мг окисленной PSA (MМ=18,8 кДа), полученной из Serum Institute of India (Pune, Индия) растворяли в 8 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 5,5. Затем добавляли 100 мг 3-оксапентан-1,5-диоксиамина. После встряхивания в течение 2 ч при комнатной температуре добавляли 44 мг цианоборгидрида натрия. После встряхивания в течение дополнительных 4 ч при 4°C реакционную смесь помещали в картридж для диализа Slide-A-Lyzer (Pierce, Rockford, IL) (3,5-кДа мембрана, регенерированная целлюлоза) и подвергали диализу против PBS, pH 7,2, в течение 4 суток. Продукт замораживали при -80°C. Получение аминоокси-PSA этим способом проиллюстрировано на фигуре 2.
Пример 4
Присоединение аминоокси-PSA к rFIX и очистка конъюгата
К 12,6 мг rFIX, растворенного в 6,3 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 6,0, добавляли 289 мкл водного раствора перйодата натрия (10 мМ). Смесь встряхивали в темноте в течение 1 ч при 4°C и гасили в течение 15 мин при комнатной температуре путем добавления 6,5 мкл 1 M глицерина. Низкомолекулярные примеси удаляли ультрафильтрацией/диафильтрацией (UF/DF) с использованием концентраторов Vivaspin (Sartorius, Goettingen, Германия) (30-кДа мембрана, регенерированная целлюлоза). Далее к UF/DF-ретентату добавляли 43 мг аминоокси-PSA, и смесь встряхивали в течение 18 ч при 4°C. Избыток реагента PSA удаляли хроматографией гидрофобного взаимодействия (HIC). Проводимость охлажденной реакционной смеси увеличивалась до 180 мС/см, и смесь помещали в 5-мл колонку HiTrap Butyl FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) HIC (1,6×2,5 см), предварительно уравновешенную 50 мМ HEPES, 3 М хлоридом натрия, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,01% Tween 80, pH 6,9. Конъюгат элюировали 2,4 объемами колонки (CV) с 50 мМ HEPES, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,005% Tween 80, pH 7,4 при скорости потока 5 мл/мин. Препарат аналитически охарактеризовали путем измерения количества общего белка (BCA) и хромогенной активности FIX. Для конъюгата PSA-rFIX была определена удельная активность 80,2 МЕ/мг белка (56,4% по сравнению с исходным rFIX). Результаты обобщенно представлены в таблице 1.
Таблица 1
Элемент ВСА [мг/мл] FIX:Chrom МЕ/мл Удельная активность [МЕ FIX:Chrom/мг BCA] Удельная активность [%]
rFIX 8,58 1221 142,3 100
PSA-rFIX 1,15 92,2 80,2 56,4
Пример 5
Присоединение аминоокси-PSA к rFIX в присутствии анилина в качестве нуклеофильного катализатора
К 3,0 мг rFIX, растворенного в 1,4 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 6,0, добавляли 14,1 мкл водного раствора перйодата натрия (10 мМ). Смесь встряхивали в темноте в течение 1 ч при 4°C и гасили в течение 15 мин при комнатной температуре добавлением 1,5 мкл 1 M глицерина. Примеси с низкой молекулярной массой удаляли эксклюзионной хроматографией (SEC) с использованием колонок для обессоливания PD-10 (GE Healthcare, Fairfield, CT). 1,2 мг окисленного rFIX, растворенного в 1,33 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 6,0, смешивали с 70 мкл анилина (200 мМ исходный водный раствор) и встряхивали в течение 45 мин при комнатной температуре. Затем добавляли 4,0 мг аминоокси-PSA, и смесь встряхивали в течение 2 ч при комнатной температуре и в течение других 16 ч при 4°C. Образцы отбирали через 1 ч, через 2 ч и в конце реакции через 18 ч. Далее избыток реагента PSA и свободный rFIX удаляли посредством HIC. Проводимость охлажденной реакционной смеси увеличивалась до 180 мС/см, и ее наносили в 5-мл колонку HiTrap Butyl FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) HIC (1,6×2,5 см), предварительно уравновешенную 50 мМ HEPES, 3 M хлоридом натрия, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,01% Tween 80, pH 6,9. Конъюгат элюировали с помощью линейного градиента до 50 мМ HEPES, 6,7 мМ хлорида кальция, 0,005% Tween 80, pH 7,4 в 20 CV со скоростью потока 5 мл/мин.
Пример 6
Присоединение аминоокси-PSA к rFIX и восстановление с помощью NaCNBH 3
К 10,5 мг rFIX, растворенного в 5,25 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 6,0, добавляли 53 мкл водного раствора перйодата натрия (10 мМ). Смесь встряхивали в темноте в течение 1 ч при 4°C и гасили в течение 15 мин при комнатной температуре путем добавления 5,3 мкл 1 M глицерина. Низкомолекулярные примеси удаляли ультрафильтрацией/диафильтрацией (UF/DF) с использованием концентраторов Vivaspin (Sartorius, Goettingen, Германия) (30-кДа мембрана, регенерированная целлюлоза). Далее к UF/DF-ретентату добавляли 35,9 мг аминоокси-PSA, и смесь встряхивали в течение 2 ч при комнатной температуре. Затем добавляли 53 мкл водного раствора цианоборгидрида натрия (5 M), и реакции позволяли протекать в течение дополнительных 16 ч. Затем избыток реагента PSA удаляли с помощью HIC. Проводимость охлажденной реакционной смеси увеличивалась до 180 мС/см, и смесь помещали в 5-мл колонку HiTrap Butyl FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) HIC (1,6×2,5 см), предварительно уравновешенную 50 мМ HEPES, 3 М хлоридом натрия, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,01% Tween 80, pH 6,9. Конъюгат элюировали 2,4 объемами колонки (CV) с 50 мМ HEPES, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,005% Tween 80, pH 7,4 при скорости потока 5 мл/мин.
Пример 7
Присоединение аминоокси-PSA (линкер: NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 4 ONH 2 ) к rFIX и очистка конъюгата
К 5,6 мг rFIX, растворенного в 2,8 мл 50 мМ натрий-ацетатного буфера, pH 6,0, добавляли 102 мкл водного раствора перйодата натрия (10 мМ). Смесь встряхивали в темноте в течение 1 ч при 4°C и гасили в течение 15 мин при комнатной температуре добавлением 2,9 мкл 1 M глицерина. Низкомолекулярные примеси удаляли ультрафильтрацией/диафильтрацией (UF/DF) с использованием концентраторов Vivaspin (Sartorius, Goettingen, Германия) (30-кДа мембрана, регенерированная целлюлоза). Далее к UF/DF-ретентату добавляли 19 мг аминоокси-PSA, и смесь встряхивали в течение 18 ч при 4°С. Избыток реагента PSA удаляли с помощью HIC. Проводимость охлажденной реакционной смеси увеличивалась до 180 мС/см, и смесь помещали в 5-мл колонку HiTrap Butyl FF (GE Healthcare, Fairfield, CT) HIC (1,6×2,5 см), предварительно уравновешенную 50 мМ HEPES, 3 М хлоридом натрия, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,01% Tween 80, pH 6,9. Конъюгат элюировали 2,4 CV с 50 мМ HEPES, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,005% Tween 80, pH 7,4 при скорости потока 5 мл/мин.
Пример 8
Присоединение аминоокси-PSA к rFVIII
К 11 мг rFVIII, растворенного в 11 мл буфера Hepes, pH 6 (50 мМ Hepes, 5 мМ CaCl2, 150 мМ NaCl, 0,01% Tween) добавляли 57 мкл 10 мМ перйодата натрия. Смесь встряхивали в темноте в течение 30 мин при 4°C и гасили в течение 30 мин при 4°C добавлением 107 мкл 1 M водного раствора глицерина. Затем добавляли 19,8 мг аминоокси-PSA (18,8 кДа), и смесь встряхивали в течение ночи при 4°C. Ионную силу увеличивали добавлением буфера, содержащего 8 M ацетат аммония (8 M ацетат аммония, 50 мМ Hepes, 5 мМ CaCl2, 350 мМ NaCl, 0,01% Tween 80, pH 6,9), с получением конечной концентрации ацетата аммония 2,5 M. Далее реакционную смесь наносили на колонку HiTrap Butyl FF (GE Healthcare, Fairfield, CT), которая была уравновешена буфером для уравновешивания (2,5 M ацетат аммония, 50 мМ Hepes, 5 мМ CaCl2, 350 мМ NaCl, 0,01% Tween 80, pH 6,9). Продукт элюировали буфером для элюирования (50 мМ Hepes, 5 мМ CaCl2, 0,01% Tween 80, pH 7,4), и элюат концентрировали фильтрованием на центрифуге с использованием устройства Vivaspin (Sartorius, Goettingen, Germany) с 30000 MWCO.
Пример 9
Получение гомобифункционального линкера NH 2 [OCH 2 CH 2 ] 6 ONH 2
Гомобифункциональный линкер NH2[OCH2CH2]6ONH2
Figure 00000007
(3,6,9,12,15-пентаоксагептадекан-1,17-диоксиамин), содержащий две активных аминооксигруппы, синтезировали согласно Boturyn et al. (Tetrahedron 1997; 53: 5485-92) с помощью двухстадийной органической реакции с использованием модифицированного синтеза первичных аминов Габриэля. На первой стадии одну молекулу дихлорида гексаэтиленгликоля подвергали реакции с двумя молекулами эндо-N-гидрокси-5-норборнен-2,3-дикарбоксимида в DMF. Желаемый гомобифункциональный продукт получали из полученного промежуточного соединения гидразинолизом в этаноле.
Пример 10
Полисиалирование rFIX с использованием малеимидо/аминоокси-линкерой системы
A. Получение модифицирующего реагента
Аминоокси-PSA реагент получают с использованием малеимидо/аминоокси-линкерной системы (Toyokuni et al., Bioconjugate Chem 2003; 14, 1253-9). PSA-SH (20 кДа), содержащей свободную концевую SH-группу, и с использованием двухстадийного процесса: a) получение PSA-NH2 восстановительным аминированием окисленной PSA с помощью NH4Cl согласно WO05016973A1, и b) внесение сульфгидрильной группы путем реакции концевой первичной аминогруппы с 2-иминотиоланом (реагент Трота/Pierce, Rockford, IL), как описано в US7645860. PSA-SH присоединяют к малеимидогруппе линкера при pH 7,5 в буфере PBS с использованием 10-кратного молярного избытка линкера и концентрации PSA-SH 50 мг/мл. Реакционную смесь инкубируют в течение 2 часов при осторожном встряхивании при комнатной температуре. Затем избыток линкерного реагента удаляют, и буфер для аминоокси-PSA заменяют на буфер для окисления (50 мМ фосфат натрия, pH 6,0) путем диафильтрации. Буфер заменяют 25 раз с использованием регенерированной целлюлозной мембраны Pellicon XL5kD (Millipore, Billerica, MA).
B. Модификация rFIX после предшествующего окисления с помощью NaIO4
rFIX окисляли в 50-мМ натрий-фосфатном буфере, pH 6,0, с использованием 100-мкМ перйодата натрия в буфере. Смесь встряхивали в темноте в течение 1 ч при 4°C и гасили в течение 15 мин при комнатной температуре добавлением глицерина до конечной концентрации 5 мМ. Низкомолекулярные примеси удаляли с помощью эксклюзионной хроматографии (SEC) с использованием колонок для обессоливания PD-10 (GE Healthcare, Fairfield, CT). Затем к окисленному rFIX добавляли анилин до конечной концентрации 10 мМ и смешивали с реагентом аминоокси-PSA для обеспечения 5-кратного молярного избытка PSA. Реакционную смесь инкубировали в течение 2 часов при осторожном встряхивании в темноте при комнатной температуре.
C. Очистка конъюгатов
Избыток свободного реагента PSA и свободный rFIX удаляют с помощью HIC. Проводимость реакционной смеси увеличивается до 180 мС/см, и ее наносят на колонку, заполненную 48 мл Butyl-Sepharose FF (GE Healthcare, Fairfield, CT), предварительно уравновешенной 50 мМ Hepes, 3 M хлоридом натрия, 6,7 мМ хлоридом кальция, 0,01% Tween 80, pH 6,9. Затем конъюгат элюируют линейным градиентом 60% буфера для элюирования (50 мМ Hepes, 6,7 мМ хлорид кальция, pH 7,4) в 40 CV. Наконец, содержащие PSA-rFIX фракции собирают и подвергают UF/DF с использованием 30-кДа мембраны, изготовленной из регенерированной целлюлозы (Millipore). Препарат аналитически охарактеризовывают путем измерения общего количества белка (BCA) и хромогенной активности FIX. Для конъюгатов PSA-rFIX, полученных с обоими вариантами, определили удельную активность >50% по сравнению с исходным rFIX.
Пример 11
Получение реагента аминоокси-PSA
Реагент аминоокси-PSA получали согласно примеру 3. Конечный продукт подвергали диафильтрации против буфера, pH 7,2 (50 мМ Hepes) с использованием 5-кДа мембраны (регенерированная целлюлоза, Millipore), замораживали при -80°C и лиофилизировали. После лиофилизации реагент растворяли в соответствующем объеме воды и использовали для получения конъюгатов PSA-белок путем модификации углеводов.
Пример 12
Подробное описание синтеза реагента аминоокси-PSA
3-Оксапентан-1,5-диоксиамин синтезировали согласно Botyryn et al (Tetrahedron 1997; 53:5485-92) с помощью двухстадийного органического синтеза, описанного в примере 1.
Стадия 1:
К раствору эндо-N-гидрокси-5-норборнен-2,3-дикарбоксиимида (59,0 г; 1,00 экв.) в 700 мл безводного N,N-диметилформамида добавляли безводный K2CO3 (45,51 г; 1,00 экв.) и 2,2-дихлордиэтиловый эфир (15,84 мл; 0,41 экв.). Реакционную смесь перемешивали в течение 22 часов при 50°C. Смесь упаривали до сухого состояния при пониженном давлении. Остаток суспендировали в 2 л дихлорметана и экстрагировали два раза насыщенным водным раствором NaCl (каждый раз по 1 л). Слой дихлорметана сушили над Na2SO4, а затем упаривали до сухого состояния при пониженном давлении и сушили в высоком вакууме с получением 64,5 г 3-оксапентан-1,5-диоксиэндо-2',3'-дикарбоксидиимиднорборнена в виде беловато-желтого твердого вещества (промежуточное соединение 1).
Стадия 2:
К раствору промежуточного соединения 1 (64,25 г; 1,00 экв.) в 800 мл безводного этанола добавляли 31,0 мл гидрата гидразина (4,26 экв.). Затем реакционную смесь кипятили с обратным холодильником в течение 2 часов. Смесь концентрировали до половины исходного объема путем выпаривания растворителя при пониженном давлении. Появляющийся осадок отфильтровывали. Оставшийся слой этанола упаривали до сухого состояния при пониженном давлении. Остаток, содержавший неочищенный продукт 3-оксапентан-1,5-диоксиамин, сушили в вакууме с получением 46,3 г. Неочищенный продукт далее очищали колоночной хроматографией (Silicagel 60; изократическое элюирование смесью дихлорметан/метанол, 9+1) с получением 11,7 г чистого конечного продукта 3-оксапентан-1,5-диоксиамина.
Пример 13
Получение полимера аминоокси-PSA
1,3 г окисленной коломиновой кислоты (23 кДа) растворяли в 18 мл 50 мМ ацетата натрия pH 5,5±0,02. 20-кратный молярный избыток 1,11-диамино-3,6,9-триоксаундекана (также называемого 3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиамином) растворяли в минимальном количестве 50 мМ ацетата натрия (pH 5,5±0,02) и добавляли к раствору PSA. Конечная концентрация коломиновой кислоты составляла 62,5 мг/мл. Эту реакционную смесь инкубировали в течение 2±0,1 ч при 22±1,0°C на мягком смесителе (22 колебания в минуту). После этого к указанной выше реакционной смеси добавляли 0,65 мл раствора NaCNBH3 в концентрации 160 мг/мл до конечной концентрации 5,00 мг/мл. Его инкубировали в течение 3,0±0,20 часов при 4,0±1,0°C на устройстве для встряхивания (22 колебания в минуту) в воздухонепроницаемом не содержащем эндотоксинов контейнере с достаточным количеством свободного пространства для перемешивания. Для очистки образец разбавляли 2 мМ триэтаноламином, pH 8,0±0,02, до конечной концентрации коломиновой кислоты 20 мг/мл. Реакционную смесь обессоливали для удаления избытка 1,11-диамино-3,6,9-триоксаундекана, NaCNBH3 и побочных продуктов реакции. После этого проводили обессоливание на колонке Sephadex G25 с использованием 20 мМ триэтаноламинового буфера (pH 8,0±0,02). pH обессоленного образца доводили до pH 7,8-8,0 и подвергали ультрафильтрации/диафильтрации посредством 20 мМ TEA pH 8,0 один раз и 2 мМ триэтаноламина (TEA) pH 8,0 два раза. Образец лиофилизировали и хранили при -80°C.
Альтернативно, очистку проводили в присутствии высокого содержания соли в ходе стадий обессоливания и ультрафильтрации/диафильтрации (UF/DF). Также использовали анионообменную хроматографию в высоком содержании соли для получения высокочистого аминоокси-PSA. По аналогии синтезировали аминоокси-PSA с различной молекулярной массой.
Пример 14
Присоединение диаминоокси-(3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиамин)-PSA к β-галактозидазе
Для окисления β-галактозидазы (β-Gal) использовали различные концентрации NaIO4 (в диапазоне от 0,157 мМ до 2 мМ). 0,5 мг β-Gal окисляли при кислом pH 5,75 при 4°C в течение 30 минут в темноте. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного β-Gal с полимером диаминоокси-PSA (22 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 1,25 мМ, в то время как концентрация β-Gal находилась в диапазоне от 0,125 мг/мл до 0,76 мг/мл. Все реакции проводили при pH 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C, и образцы собирали с временными интервалами 1, 2 и 24 часов. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и он также подтверждался вестерн-блоттингом.
Исходя из наилучших условий реакций, 1,9 мг β-Gal окисляли 1,5 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного β-Gal с полимером диаминоокси-PSA. Конечные концентрации полимера и белка в реакционной смеси составляли 1,25 мМ и 0,76 мг/мл, соответственно. Конечное значение pH реакционной смеси составляло приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение 2 часов. Очищенные и неочищенные конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и он также подтверждался вестерн-блоттингом с использованием антитела против PSA. Активность конъюгатов PSA-βGal in vitro была сравнима с исходным белком при использовании универсального набора для βGal анализа (All in one βGal assay kit) (Pierce). В сравнимых конъюгатах наблюдали менее чем 50% активность при использовании химии альдегидных линкеров. Кроме того, процесс в целом масштабировали вплоть до 3 раз.
Пример 15
Присоединение диаминоокси-PSA к фетуину
Фетуин окисляли 10 мМ NaIO4 в течение 60 минут при 4°C в темноте, и окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 10 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного фетуина с полимером диаминоокси-PSA (23 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 2,5 мМ при pH 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Конечная концентрация белка в реакционной смеси составляла 0,714 мг/мл, и реакцию проводили при 4°C в течение 2 часов. Эти конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгатов при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и он также подтверждался вестерн-блоттингом.
Для масштабирования реакции 5 мг фетуина окисляли 10 мМ NaIO4 в течение 60 минут при 4°C в темноте, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 10 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного фетуина с полимером диаминоокси-PSA (23 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 2,5 мМ при pH 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C, и через 2 часа отбирали образец. Очищенные и неочищенные конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгатов при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и он также подтверждался вестерн-блоттингом.
Пример 16
Присоединение диаминоокси-PSA к фетуину с анилином для действия в качестве нуклеофильного катализатора
0,2 мг фетуина окисляли 10 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C в темноте, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного фетуина с полимером диаминоокси-PSA (23 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 1,25 мМ. Конечное значение pH реакционной смеси составляло 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Конечная концентрация белка в реакционной смеси составляла 0,125 мг/мл. К 1,6 мл реакционной смеси добавляли 84,21 мкл 200 мМ раствора анилина. Реакцию проводили при 4°C в течение ночи.
Пример 17
Присоединение диаминоокси-PSA к эритропоэтину (ΕΡΟ)
0,2 мг EPO окисляли с помощью 10 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного EPO с диаминоокси-полимером размером 23 кДа. Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 1,25 мМ. Конечная концентрация EPO в реакционной смеси составляла 0,125 мг/мл. Конечное значение pH реакционной смеси составляло приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение 24 часов. Неочищенный конъюгат охарактеризовывали с использованием SDS PAGE. Для конъюгатов при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы.
Пример 18
Присоединение диаминоокси-PSA к EPO с анилином для действия в качестве нуклеофильного катализатора
0,2 мг EPO окисляли 10 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного EPO с полимером диаминоокси-PSA (22 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 1,25 мМ. Конечное значение pH реакционной смеси составляло 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Конечная концентрация белка в реакционной смеси составляла 0,125 мг/мл. К 1,6 мл реакционной смеси добавляли 84,21 мкл 200 мМ раствора анилина. Реакцию проводили при 4°C в течение ночи. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE. Для конъюгатов при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы. В отношении активности конъюгатов не наблюдали неблагоприятного эффекта.
Пример 19
Присоединение диаминоокси-PSA к ДНКазе
Для гликополисиалирования ДНКазы для реакции конъюгации использовали ДНКазу бычьей поджелудочной железы. Этот источник ДНКазы поставляли в качестве лиофилизированного порошка, который хранили при -20°C. Перед реакцией этот лиофилизированный порошок растворяли в натрий-ацетатном буфере (pH 5,75). Полимер, использованный для гликополисиалирования, имеет массу в диапазоне от 10 кДа до 22 кДа. Для окисления гликонной части на ДНКазе, в качестве окислителя использовали NaIO4 до конечной концентрации 1 мМ. ДНКазу окисляли при кислом pH 5,75 при 4°C в течение 30 минут. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 2 мМ. После завершения окисления реакцию конъюгации проводили добавлением полимера диаминоокси-PSA до конечной концентрации 1,25 мМ. К реакционной смеси добавляли NaCNBH3 до конечной концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл, и полисиалирование ДНКазы проводили при 4,0±1,0°C в течение по меньшей мере 2 часов. Реакцию останавливали 25-кратным молярным избытком Tris относительно полимера. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга. Активность измеряли в качестве 95% (по сравнению с менее чем 50%, наблюдаемыми в сравнимых конъюгатах, полученных с использованием химии альдегидных линкеров).
Пример 20
Присоединение диаминоокси (3-оксапентан-1,5-диоксиаминового линкера)-PSA к β-галактозидазе
Для окисления β-галактозидазы использовали NaIO4 в концентрации 2 мМ. 3 мг β-галактозидазы окисляли при кислом pH, равном 5,75, при 4°C в течение 30 минут, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 2 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленной β-галактозидазы с полимером диаминоокси-PSA (23 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 1,5 мМ. Конечная концентрация β-галактозидазы в реакционной смеси составляла 0,867 мг/мл. Конечное значение pH реакционной смеси составляло приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение 2 часов. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга.
Пример 21
Получение гидразид-коломиновой кислоты
Авторы настоящего изобретения использовали следующий протокол для получения PSA-гидразида (коломиновая кислота-гидразид) с использованием дигидразида адипиновой кислоты. Аналогичные способы использовали для получения других PSA-гидразидов.
1. Растворить 1 г активированной коломиновой кислоты в ~10 мл 20 мМ ацетата натрия pH 5,5±0,02. Конечная концентрация коломиновой кислоты должна составлять 62,5 мг/мл.
2. Растворить 25-кратный молярный избыток (относительно окисленной коломиновой кислоты "CAO") дигидразида адипиновой кислоты (ММ=174,2 г) в минимальном количестве 20 мМ ацетата натрия (pH 5,5 ±0,02) и добавить к раствору из 1.
3. Количество дигидразида адипиновой кислоты, подлежащее применению = (масса CAO в граммах × 25 × ММ дигидразида адипиновой кислоты в г)/ММ CAO в дальтонах = (1×25×174,2)/15×103=0,290 г
4. После добавления раствора дигидразида адипиновой кислоты довести объем коломиновой кислоты ацетатом натрия до конечной концентрации 62,5 мг/мл. Таким образом, общий объем реакции составляет 16 мл.
5. Инкубировать реакционную смесь в течение 2±0,1 ч при 22,0±1,0°C на устройстве для встряхивания (22 колебаний в минуту).
6. Приготовить концентрированный раствор NaCNBH3 (165 мг/мл) и добавить 0,5 мл к раствору из 1 так, чтобы конечная концентрация этого раствора в конечной реакционной смеси составила 5,0 мг/мл. Инкубировать реакционную смесь в течение 3,0±0,20 часов при 4,0±1,0°C на устройстве для встряхивания (22 колебаний в минуту).
7. Поддерживать реакционную смесь в не содержащем эндотоксинов воздухонепроницаемом контейнере с избытком свободного пространства 50 мл для надлежащего перемешивания (должно быть достаточно пространства, чтобы реакционная смесь не касалась крышки контейнера).
8. После реакции в течение 3 часов при 4°C разбавить образец 2 мМ триэтаноламином (довести объем до 50 мл) при pH 8,0±0,02 для получения конечной концентрации коломиновой кислоты 20 мг/мл.
9. Обессолить реакционную смесь для удаления избытка необработанного дигидразида адипиновой кислоты, NaCNBH3 и т.д. из полимера. Это можно осуществлять с помощью GPC (с использованием матрицы носителя XK 50 Sephadex G-25; ≤1,8 мг CA/мл матрицы; высота слоя 35 см; объем колонки = 687 мл) путем наблюдения при УФ 224 нм и проводимости. Обессоливание проводят с помощью 20 мМ триэтаноламинового (pH 8,0±0,02) буфера.
10. После обессоливания коломиновую кислоту-гидразид подвергают 1 циклу ультрафильтрации, 1 цикл диафильтрации с использованием 20 мМ TEA, pH 8,0±0,02 и по меньшей мере 3 циклов диафильтрации с использованием 2 мМ TEA, pH 8,0±0,02. Это можно осуществлять с использованием 3-кДа кассет vivaflow.
11. Довести pH обессоленного образца до pH 7,8-8,0. Необязательно высушить сублимацией образец, а затем поддерживать его для вторичного высушивания для удаления избытка влаги.
Пример 22
Присоединение гидразид-PSA к эритропоэтину
Для окисления эритропоэтина (EPO) использовали NaIO4 в концентрации 10 мМ. EPO (1 мг) окисляли при pH 5,75 при 4°C в течение 30 минут, затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного EPO с полимером гидразид-PSA. Молекулярная масса гидразид-PSA, использованного для конъюгации, составляла 24,34 кДа. Конечная концентрация гидразид-PSA в реакционной смеси составила 1,25 мМ. Конечная концентрация EPO в реакционной смеси составила 0,125 мг/мл. Конечное значение pH реакционной смеси составило приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение 24 часов. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга.
Пример 23
Присоединение гидразид-PSA к β-галактозидазе
β-Галактозидазу (0,5-4,5 мг) окисляли с помощью от 0,625 до 2 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленной β-галактозидазы с гидразид-PSA в диапазоне от 24,34 кДа до 27,9 кДа. Конечная концентрация гидразид-PSA в реакционной смеси составила 1,25 мМ. Конечная концентрация β-галактозидазы в реакционной смеси находилась в диапазоне от 0,125 мг/мл до 0,76 мг/мл. Конечное значение pH реакционной смеси должно составлять приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C, и образцы собирали через 1, 2 и 24 часа. Очищенный и неочищенный конъюгат охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга. Измеренная активность составила 84%. В сравнимых конъюгатах, полученных с использованием химии альдегидных линкеров, наблюдали менее чем 50% активность.
Пример 24
Присоединение гидразид-PSA к фетуину
Фетуин (0,25 мг) окисляли с помощью NaIO4 (5 или 10 мМ) в течение 30 или 60 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 или 10 мМ соответствующим образом для соответствия концентрации NaIO4, использованного для окисления. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного фетуина с полимером дигидразид адипиновой кислоты-PSA. Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составила от 1,25 до 2,5 мМ. Конечное значение pH реакционной смеси должно составлять приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение от 1 до 4 часов. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга.
Проводили масштабированную реакцию для 5 мг фетуина с последующей очисткой полученного конъюгата. 5 мг фетуина окисляли 10 мМ NaIO4 в течение 60 минут при 4°C, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 10 мМ. Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного фетуина с полимером адипиновая кислота дигидразид-PSA. Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составляла 2,5 мМ. Конечное значение pH реакционной смеси составляло приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C, и образцы собирали через 2 часа. Очищенный и неочищенный конъюгат охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга.
Пример 25
Присоединение гидразид-PSA к ДНКазе
ДНКазу окисляли с помощью NaIO4 в конечной концентрации в диапазоне от 0,2 мМ до 2 мМ в течение 30 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 2 и 5 мМ, в зависимости от концентрации NaIO4, использованной для окисления. Гликополисиалирование окисленной ДНКазы проводили добавлением к окисленной ДНКазе полимера гидразид-PSA до конечной концентрации 1,25 мМ. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл, и гликополисиалирование ДНКазы проводили при 4°С в течение периода времени в диапазоне от 1 часа до 2 часов. Реакцию останавливали 25-кратным молярным избытком Tris относительно полимера. Конъюгаты охарактеризовывали с использованием SDS PAGE и вестерн-блоттинга. Для конъюгатов при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы, и положительный результат получали с помощью вестерн-блоттинга. Измеренная активность составила 49%.
Пример 26
Пегилирование β-галактозидазы с использованием аминооксилинкера (3-оксапентан-1,5-диоксиамин)
β-Галактозидазу (1 мг) окисляли 1,5 мМ NaIO4 в течение 30 минут при 4°C. Окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 1,5 мМ.
Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленной β-галактозидазы с полимером диаминоокси-PEG (20 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составила 1,25 мМ. Конечная концентрация β-галактозидазы в реакционной смеси составила 1 мг/мл. Конечное значение pH реакционной смеси должно составлять приблизительно 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Реакцию проводили при 4°C в течение 2 часов. Неочищенный конъюгат охарактеризовывали с использованием SDS PAGE, и для конъюгата при SDS PAGE наблюдали сдвиг полосы. Измеренная активность составила 59%.
Пример 27
Пегилирование эритропоэтина с использованием аминооксилинкера
Эритропоэтин (EPO; 0,2 мг) окисляли 5 или 10 мМ NaIO4 в 50 мМ ацетате натрия при pH 5,75 в течение 45 минут при 4°C, а затем окисление останавливали добавлением NaHSO3 до конечной концентрации 5 или 10 мМ (для соответствия концентрации NaIO4, использованной для окисления). Реакцию конъюгации проводили с использованием окисленного EPO с полимером диаминоокси-PEG (20 кДа). Конечная концентрация полимера в реакционной смеси составила 1,5 мМ. Конечное значение pH реакционной смеси должно было составлять 5,75. К реакционной смеси добавляли цианоборгидрид натрия до концентрации 50 мМ или 3,17 мг/мл. Конечная концентрация белка в реакционной смеси составила 0,4 мг/мл. Реакцию конъюгации проводили в течение ночи при 4°C.
Таким образом, изобретение относится к конъюгатам соединений, отличных от белков свертывания крови, с растворимыми в воде полимерами, в частности PSA и mPSA.

Claims (14)

1. Способ конъюгации полисиаловой кислоты (PSA) или модифицированной PSA (mPSA) с окисленной углеводной частью гликопротеина, отличного от белка свертывания крови, содержащего углеводную группу, включающий контактирование окисленной углеводной части с PSA или mPSA в условиях, которые обеспечивают конъюгацию,
где указанная PSA или mPSA содержит аминооксигруппу, и между окисленной углеводной частью и аминооксигруппой на PSA или mPSA образуется оксимная связь.
2. Способ по п.1, где PSA или mPSA представляет собой коломиновую кислоту или модифицированную коломиновую кислоту.
3. Способ по п.1 или 2, где PSA или mPSA содержит 2-500 звеньев сиаловой кислоты.
4. Способ по п.1 или 2, где гликопротеин выбран из цитокинов, таких как интерлейкины, альфа-, бета- и гамма-интерфероны, колониестимулирующих факторов, включая гранулоцитарные колониестимулирующие факторы, фибробластных факторов роста, тромбоцитарных факторов роста, активирующего фосфолипазу белка (PUP), инсулина, растительных белков, таких как лектины и рицины, факторов некроза опухоли и родственных аллельных форм, растворимых форм рецепторов фактора некроза опухоли, рецепторов интерлейкинов и растворимых форм рецепторов интерлейкинов, факторов роста, тканевых факторов роста, трансформирующих факторов роста, таких как TGFα или TGFβ, и эпидермальных факторов роста, гормонов, соматомединов, пигментарных гормонов, гипоталамических рилизинг-факторов, антидиуретических гормонов, пролактина, хорионического гонадотропина, фоликулостимулирующего гормона, тиреотропного гормона, тканевого активатора плазминогена и иммуноглобулинов, таких как IgG, IgE, IgM, IgA и IgD, моноклональных антител, эритропоэтина (ЕРО), факторов крови, отличных от белков свертывания крови, галактозидаз, α-галактозидаз, β-галактозидаз, ДНКаз, фетуина, их фрагментов и любых слитых белков, содержащих любой из упомянутых выше белков или их фрагментов.
5. Способ по п.1 или 2, включающий окисление углеводной части путем инкубации гликопротеина с перйодатом натрия (NaIO4).
6. Способ по п.1 или 2, включающий окисление PSA или mPSA с образованием альдегидной группы на концевом звене PSA или mPSA и реакцию окисленного PSA или mPSA с аминооксилинкером.
7. Способ согласно п.6, включающий окисление PSA или mPSA с использованием NaIO4.
8. Способ по п.1 или 2, включающий контактирование окисленной углеводной части с PSA или mPSA в буфере, содержащем нуклеофильный катализатор, выбранный из анилина или производных анилина.
9. Способ по п.1 или 2, где указанный PSA или mPSA содержит аминооксигруппу, и между окисленной углеводной частью и аминооксигруппой на PSA или mPSA образуется оксимная связь.
10. Способ по п.9, где аминооксигруппа образуется путем реакции окисленного PSA или mPSA с аминооксилинкером, и аминооксилинкер представляет собой 3-оксапентан-1,5-диоксиамин или 3,6,9-триоксаундекан-1,11-диоксиамин.
11. Способ по п.1 или 2, дополнительно включающий восстановление оксимной связи в конъюгированном гликопротеине путем инкубации в присутствии восстановителя.
12. Способ по п.11, где восстанавливающее соединение представляет собой цианоборгидрид натрия (NaCNBH3) или аскорбиновую кислоту (витамин С).
13. Конъюгированный гликопротеин, получаемый способом по любому из предшествующих пунктов.
14. Конъюгированный гликопротеин, отличный от белка свертывания крови, включающий:
(a) гликопротеин и
(b) по меньшей мере один аминоокси-PSA или аминоокси-mPSA, связанный с гликопротеином согласно (а), где указанный аминоокси-PSA или аминоокси-mPSA присоединен к гликопротеину через одну или несколько углеводных частей.
RU2012106654/04A 2009-07-27 2010-07-26 Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови RU2533619C2 (ru)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US22882809P 2009-07-27 2009-07-27
US61/228,828 2009-07-27
US34713610P 2010-05-21 2010-05-21
US61/347,136 2010-05-21
PCT/GB2010/001422 WO2011012850A2 (en) 2009-07-27 2010-07-26 Glycopolysialylation of non-blood coagulation proteins

Related Child Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014123260A Division RU2662807C2 (ru) 2009-07-27 2014-06-06 Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2012106654A RU2012106654A (ru) 2013-09-10
RU2533619C2 true RU2533619C2 (ru) 2014-11-20

Family

ID=46582461

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012106654/04A RU2533619C2 (ru) 2009-07-27 2010-07-26 Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови

Country Status (12)

Country Link
US (1) US9795683B2 (ru)
EP (2) EP2459226B1 (ru)
JP (1) JP5909755B2 (ru)
KR (1) KR101912335B1 (ru)
CN (1) CN102573920B (ru)
AU (3) AU2010277438B2 (ru)
CA (1) CA2769244A1 (ru)
ES (1) ES2590679T3 (ru)
NZ (1) NZ597600A (ru)
RU (1) RU2533619C2 (ru)
SG (1) SG178051A1 (ru)
WO (1) WO2011012850A2 (ru)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2101821B1 (en) 2006-12-15 2014-08-13 Baxter International Inc. Factor viia- (poly) sialic acid conjugate having prolonged in vivo half-life
US8642737B2 (en) 2010-07-26 2014-02-04 Baxter International Inc. Nucleophilic catalysts for oxime linkage
US8809501B2 (en) 2009-07-27 2014-08-19 Baxter International Inc. Nucleophilic catalysts for oxime linkage
CA2769244A1 (en) 2009-07-27 2011-02-03 Lipoxen Technologies Limited Glycopolysialylation of non-blood coagulation proteins
NZ598056A (en) 2009-07-27 2014-01-31 Baxter Int Blood coagulation protein conjugates
EP3093029A1 (en) * 2009-07-27 2016-11-16 Baxalta GmbH Blood coagulation protein conjugates
AU2011282571C1 (en) * 2010-07-30 2018-04-05 Takeda Pharmaceutical Company Limited Nucleophilic catalysts for oxime linkage
AU2015275284C1 (en) * 2010-07-30 2018-04-05 Takeda Pharmaceutical Company Limited Nucleophilic Catalysts for Oxime Linkage
EP3517956B1 (en) 2011-05-18 2021-09-08 Takeda Pharmaceutical Company Limited Modification-dependent activity assays
CA2836478A1 (en) 2011-05-27 2012-12-06 Baxter International Inc. Therapeutic protein conjugated to water-soluble polymers via reduced cysteine sulfhydryl group
KR20130049671A (ko) 2011-11-04 2013-05-14 한미사이언스 주식회사 생리활성 폴리펩타이드 결합체 제조 방법
AR090281A1 (es) 2012-03-08 2014-10-29 Hanmi Science Co Ltd Proceso mejorado para la preparacion de un complejo polipeptidico fisiologicamente activo
AU2013204754C1 (en) * 2012-05-16 2018-10-11 Takeda Pharmaceutical Company Limited Nucleophilic Catalysts for Oxime Linkage
US20150259665A1 (en) 2012-10-15 2015-09-17 Novo Nordisk Health Care Ag Factor vii conjugates
CZ2014150A3 (cs) * 2014-03-11 2015-05-20 Contipro Biotech S.R.O. Konjugáty oligomeru kyseliny hyaluronové nebo její soli, způsob jejich přípravy a použití
UA124182C2 (uk) * 2014-03-31 2021-08-04 Ханмі Фарм. Ко., Лтд. Спосіб покращення розчинності фізіологічно активного білка або пептиду
MA45473A (fr) 2016-04-04 2019-02-13 Shire Human Genetic Therapies Inhibiteur de c1 estérase conjugué et ses utilisations
US11845989B2 (en) 2019-01-23 2023-12-19 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Treatment of ophthalmic conditions with angiopoietin-like 7 (ANGPTL7) inhibitors
SG11202107497XA (en) 2019-01-23 2021-08-30 Regeneron Pharma Treatment of ophthalmic conditions with angiopoietin-like 7 (angptl7) inhibitors
CN112129946A (zh) * 2020-08-16 2020-12-25 陆修委 无糖链型惰性蛋白封闭剂的制备方法及应用
EP4298219A1 (en) 2021-02-26 2024-01-03 Regeneron Pharmaceuticals, Inc. Treatment of inflammation with glucocorticoids and angiopoietin-like 7 (angptl7) inhibitors

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1992016555A1 (en) * 1991-03-18 1992-10-01 Enzon, Inc. Hydrazine containing conjugates of polypeptides and glycopolypeptides with polymers
EP0605963A2 (en) * 1992-12-09 1994-07-13 Ortho Pharmaceutical Corporation Peg hydrazone and peg oxime linkage forming reagents and protein derivatives thereof
WO1994028024A1 (en) * 1993-06-01 1994-12-08 Enzon, Inc. Carbohydrate-modified polymer conjugates with erythropoietic activity
US20060019877A1 (en) * 2002-09-11 2006-01-26 Conradt Harald S Hasylated polypeptides
WO2008012540A1 (en) * 2006-07-25 2008-01-31 Lipoxen Technologies Limited N-terminal polysialylation

Family Cites Families (133)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4179337A (en) * 1973-07-20 1979-12-18 Davis Frank F Non-immunogenic polypeptides
JPS54113492A (en) 1978-02-24 1979-09-05 Sanyo Chem Ind Ltd Preparation of glucoprotein derivative
US4757006A (en) 1983-10-28 1988-07-12 Genetics Institute, Inc. Human factor VIII:C gene and recombinant methods for production
US4970300A (en) 1985-02-01 1990-11-13 New York University Modified factor VIII
US5198349A (en) 1986-01-03 1993-03-30 Genetics Institute, Inc. Method for producing factor VIII:C and analogs
US5250421A (en) 1986-01-03 1993-10-05 Genetics Institute, Inc. Method for producing factor VIII:C-type proteins
JPH0387173A (ja) 1987-09-10 1991-04-11 Teijin Ltd ヒト活性化天然型ファクター８ｃの製造方法及びそれに用いる形質転換体
US4847325A (en) 1988-01-20 1989-07-11 Cetus Corporation Conjugation of polymer to colony stimulating factor-1
US5153265A (en) 1988-01-20 1992-10-06 Cetus Corporation Conjugation of polymer to colony stimulating factor-1
US4966999A (en) 1988-06-07 1990-10-30 Cytogen Corporation Radiohalogenated compounds for site specific labeling
US5122614A (en) * 1989-04-19 1992-06-16 Enzon, Inc. Active carbonates of polyalkylene oxides for modification of polypeptides
SE465222C5 (sv) 1989-12-15 1998-02-10 Pharmacia & Upjohn Ab Ett rekombinant, humant faktor VIII-derivat och förfarande för dess framställning
SE466754B (sv) 1990-09-13 1992-03-30 Berol Nobel Ab Saett att kovalent binda biopolymerer till hydrofila ytor
CA2073511A1 (en) 1990-11-14 1992-05-29 Matthew R. Callstrom Conjugates of poly(vinylsaccharide) with proteins for the stabilization of proteins
GB9112212D0 (en) * 1991-06-06 1991-07-24 Gregoriadis Gregory Pharmaceutical compositions
US6037452A (en) * 1992-04-10 2000-03-14 Alpha Therapeutic Corporation Poly(alkylene oxide)-Factor VIII or Factor IX conjugate
AU5098193A (en) 1992-09-01 1994-03-29 Berlex Laboratories, Inc. Glycolation of glycosylated macromolecules
DK0627924T3 (da) 1992-10-02 2001-04-30 Genetics Inst Sammensætning, der omfatter koagulationsfaktor VIII formulering, fremgangsmåde til dens fremstilling og anvendelse af et overfladeaktivt middel som stabilisator
FI935485A (fi) * 1992-12-09 1994-06-10 Ortho Pharma Corp PEG-hydratsoni- ja PEG-oksiimisidoksen muodostavat reagenssit ja niiden proteiinijohdannaiset
US5298643A (en) * 1992-12-22 1994-03-29 Enzon, Inc. Aryl imidate activated polyalkylene oxides
AU6029594A (en) 1993-01-15 1994-08-15 Enzon, Inc. Factor viii - polymeric conjugates
SE516173C2 (sv) * 1993-02-16 2001-11-26 Ericsson Telefon Ab L M Anordning för telekommunikation
US5621039A (en) 1993-06-08 1997-04-15 Hallahan; Terrence W. Factor IX- polymeric conjugates
SE504074C2 (sv) 1993-07-05 1996-11-04 Pharmacia Ab Proteinberedning för subkutan, intramuskulär eller intradermal administrering
CA2204726A1 (en) 1994-11-09 1996-12-27 Robin E. Offord Functionalized polymers for site-specific attachment
AU6255096A (en) 1995-06-07 1996-12-30 Mount Sinai School Of Medicine Of The City University Of New York, The Pegylated modified proteins
WO1996040662A2 (en) 1995-06-07 1996-12-19 Cellpro, Incorporated Aminooxy-containing linker compounds and their application in conjugates
SE9503380D0 (sv) 1995-09-29 1995-09-29 Pharmacia Ab Protein derivatives
WO1998049198A1 (en) 1997-04-30 1998-11-05 Enzon, Inc. Single-chain antigen-binding proteins capable of glycosylation, production and uses thereof
US6183738B1 (en) 1997-05-12 2001-02-06 Phoenix Pharamacologics, Inc. Modified arginine deiminase
NZ500633A (en) 1997-06-04 2002-10-25 Oxford Biomedica Ltd Vector
WO2001082943A2 (en) 2000-05-03 2001-11-08 Novo Nordisk A/S Subcutaneous administration of coagulation factor vii
AU2051899A (en) 1997-12-03 1999-06-16 Roche Diagnostics Gmbh Method for preparing polypeptides with appropriate glycosilation
US5985263A (en) 1997-12-19 1999-11-16 Enzon, Inc. Substantially pure histidine-linked protein polymer conjugates
KR20010085742A (ko) 1998-08-28 2001-09-07 추후제출 정밀한 길이의 폴리아미드 사슬, 그 제조방법 및 단백질결합체의 제조방법
SG110047A1 (en) 1998-10-16 2005-04-28 Biogen Inc Polymer conjugates of interferon beta-a1 and uses
DE19852729A1 (de) 1998-11-16 2000-05-18 Werner Reutter Rekombinante Glycoproteine, Verfahren zu ihrer Herstellung, sie enthaltende Arzneimittel und ihre Verwendung
EP2921180B1 (en) 1999-02-22 2019-08-14 University of Connecticut Albumin-free factor VIII formulations
US6531122B1 (en) 1999-08-27 2003-03-11 Maxygen Aps Interferon-β variants and conjugates
CN1309423C (zh) 1999-11-12 2007-04-11 马克西根控股公司 干扰素γ偶联物
CA2739933A1 (en) 2000-02-11 2001-08-16 Bayer Healthcare Llc Factor vii or viia-like molecules
US6586398B1 (en) 2000-04-07 2003-07-01 Amgen, Inc. Chemically modified novel erythropoietin stimulating protein compositions and methods
JP4455802B2 (ja) 2000-05-03 2010-04-21 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト ヒト第ｖｉｉ凝固因子変異型
EP1335931B1 (en) 2000-05-16 2005-12-21 Lipoxen Technologies Limited Derivatisation of proteins in aqueous solution
JP2003535208A (ja) 2000-06-08 2003-11-25 ラ ホヤ ファーマシューティカル カンパニー 高分子量ポリエチレン・オキシドを含む多価プラットホーム分子
US6423826B1 (en) 2000-06-30 2002-07-23 Regents Of The University Of Minnesota High molecular weight derivatives of vitamin K-dependent polypeptides
US7118737B2 (en) 2000-09-08 2006-10-10 Amylin Pharmaceuticals, Inc. Polymer-modified synthetic proteins
EP1319067A2 (en) 2000-09-13 2003-06-18 Novo Nordisk A/S Human coagulation factor vii variants
JP2004512835A (ja) 2000-10-02 2004-04-30 ノボ　ノルディスク　アクティーゼルスカブ 哺乳動物細胞における組換えｆｖｉｉの工業的規模の無血清製造法
US7001994B2 (en) * 2001-01-18 2006-02-21 Genzyme Corporation Methods for introducing mannose 6-phosphate and other oligosaccharides onto glycoproteins
WO2002077218A1 (en) 2001-03-22 2002-10-03 Novo Nordisk Health Care Ag Coagulation factor vii derivatives
US6913915B2 (en) 2001-08-02 2005-07-05 Phoenix Pharmacologics, Inc. PEG-modified uricase
US7214660B2 (en) 2001-10-10 2007-05-08 Neose Technologies, Inc. Erythropoietin: remodeling and glycoconjugation of erythropoietin
US7795210B2 (en) 2001-10-10 2010-09-14 Novo Nordisk A/S Protein remodeling methods and proteins/peptides produced by the methods
US7157277B2 (en) 2001-11-28 2007-01-02 Neose Technologies, Inc. Factor VIII remodeling and glycoconjugation of Factor VIII
US7265085B2 (en) 2001-10-10 2007-09-04 Neose Technologies, Inc. Glycoconjugation methods and proteins/peptides produced by the methods
SG159381A1 (en) 2001-10-10 2010-03-30 Novo Nordisk As Remodeling and glycoconjugation of peptides
KR100948532B1 (ko) 2001-11-07 2010-03-23 넥타르 테라퓨틱스 분지형 중합체 및 그의 공액체
WO2003046150A2 (en) 2001-11-28 2003-06-05 Neose Technologies, Inc. Glycoprotein remodeling using endoglycanases
AU2002351197A1 (en) 2001-11-28 2003-06-10 Neose Technologies, Inc. Glycopeptide remodeling using amidases
DK1517710T3 (da) 2002-06-21 2011-07-18 Novo Nordisk Healthcare Ag Pegylerede faktor VII-glycoformer
US7087229B2 (en) 2003-05-30 2006-08-08 Enzon Pharmaceuticals, Inc. Releasable polymeric conjugates based on aliphatic biodegradable linkers
US7122189B2 (en) 2002-08-13 2006-10-17 Enzon, Inc. Releasable polymeric conjugates based on aliphatic biodegradable linkers
DE02020425T1 (de) * 2002-09-11 2004-07-15 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Hasylierte Polypeptide, besonders hasyliertes Erythropoietin
EP1681303B1 (en) 2002-09-11 2013-09-04 Fresenius Kabi Deutschland GmbH HASylated polypeptides, especially HASylated erythropoietin
US20040062748A1 (en) 2002-09-30 2004-04-01 Mountain View Pharmaceuticals, Inc. Polymer conjugates with decreased antigenicity, methods of preparation and uses thereof
CA2509260C (en) 2002-12-31 2012-10-02 Nektar Therapeutics Al, Corporation Maleamic acid polymer derivatives and their bioconjugates
KR101025143B1 (ko) 2002-12-31 2011-04-01 넥타르 테라퓨틱스 가수분해상으로 안정한 말레이미드－종결 중합체
WO2004075923A2 (en) 2003-02-26 2004-09-10 Nektar Therapeutics Al, Corporation Polymer-factor viii moiety conjugates
AU2004228793B2 (en) 2003-04-08 2009-10-08 Yeda Research And Development Co. Ltd. Reversible pegylated drugs
EP1654004A2 (en) * 2003-08-08 2006-05-10 Novo Nordisk A/S Synthesis and application of new structural well defined branched polymers as conjugating agents for peptides
WO2005014655A2 (en) * 2003-08-08 2005-02-17 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Conjugates of hydroxyalkyl starch and a protein
JP2007501870A (ja) * 2003-08-08 2007-02-01 フレゼニウス・カビ・ドイチュラント・ゲゼルシャフト・ミット・ベシュレンクテル・ハフツング ヒドロキシアルキルデンプンとｇ−ｃｓｆの複合体
US20080206182A1 (en) 2003-08-08 2008-08-28 Fresenius Kabi Deutschland Gmbh Conjugates of a Polymer and a Protein Linked by an Oxime Group
CN1832762B (zh) * 2003-08-08 2012-09-05 弗雷泽纽斯卡比德国有限公司 羟烷基淀粉与g-csf的偶联物
WO2005016949A2 (en) * 2003-08-12 2005-02-24 Lipoxen Technologies Limited Sialic acid derivatives
WO2005016973A1 (en) 2003-08-12 2005-02-24 Lipoxen Technologies Limited Polysialic acid derivatives
MXPA06006023A (es) 2003-12-03 2006-08-23 Neose Technologies Inc Factor ix glicopegilado.
ZA200604869B (en) * 2003-12-04 2007-11-28 Univ Utah Res Found Modified macromolecules and methods of making and using thereof
JP5743368B2 (ja) 2004-01-08 2015-07-01 ラショファーム ゲーエムベーハー ペプチドのｏ結合型グリコシル化
WO2006020372A2 (en) 2004-07-23 2006-02-23 Neose Technologies, Inc. Enzymatic modification of glycopeptides
JP2008507990A (ja) 2004-08-02 2008-03-21 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト Ｆｖｉｉの抱合体
JP5197009B2 (ja) * 2004-08-12 2013-05-15 リポクセン テクノロジーズ リミテッド シアル酸誘導体
ES2593318T3 (es) 2004-08-12 2016-12-07 Lipoxen Technologies Limited Derivados de ácido siálico
US8652334B2 (en) * 2004-08-12 2014-02-18 Lipoxen Technologies Limited Fractionation of charged polysaccharide
HUE033776T2 (en) 2004-11-12 2018-01-29 Bayer Healthcare Llc FVIII site-specific modification
CA2591852A1 (en) 2004-12-27 2006-07-06 Baxter International Inc. Polymer-von willebrand factor-conjugates
US20100009902A1 (en) 2005-01-06 2010-01-14 Neose Technologies, Inc. Glycoconjugation Using Saccharyl Fragments
EP3138855A1 (en) * 2005-02-23 2017-03-08 Lipoxen Technologies Limited Activated sialic acid derivatives for protein derivatisation and conjugation
EP2975135A1 (en) 2005-05-25 2016-01-20 Novo Nordisk A/S Glycopegylated factor IX
JP5335422B2 (ja) 2005-06-17 2013-11-06 ノボ ノルディスク ヘルス ケア アクチェンゲゼルシャフト 少なくとも１つの非天然のシステインを含んでいる操作されたタンパク質の選択的な還元および誘導体化
US20070105755A1 (en) 2005-10-26 2007-05-10 Neose Technologies, Inc. One pot desialylation and glycopegylation of therapeutic peptides
US20090017007A1 (en) 2005-08-26 2009-01-15 Maxygen Holdings Ltd. Liquid factor vii composition
JP5405122B2 (ja) 2005-12-21 2014-02-05 ワイス・エルエルシー 低粘度のタンパク質製剤およびその用途
EP2010222A1 (en) 2006-03-31 2009-01-07 Baxter International Inc. Pegylated factor viii
US7645860B2 (en) * 2006-03-31 2010-01-12 Baxter Healthcare S.A. Factor VIII polymer conjugates
WO2007140282A1 (en) 2006-05-24 2007-12-06 Peg Biosciences Peg linker compounds and biologically active conjugates thereof
US7939632B2 (en) 2006-06-14 2011-05-10 Csl Behring Gmbh Proteolytically cleavable fusion proteins with high molar specific activity
HUE027178T2 (en) 2006-07-13 2016-10-28 Serum Inst India Ltd Process for producing high purity polysilic acid
EP2059527B1 (en) * 2006-09-01 2014-12-03 Novo Nordisk Health Care AG Modified glycoproteins
JP2010505874A (ja) 2006-10-03 2010-02-25 ノヴォ ノルディスク アー／エス ポリペプチドコンジュゲートの精製方法
EP2101821B1 (en) 2006-12-15 2014-08-13 Baxter International Inc. Factor viia- (poly) sialic acid conjugate having prolonged in vivo half-life
WO2008081024A1 (en) 2007-01-03 2008-07-10 Novo Nordisk Health Care Ag Subcutaneous administration of coagulation factor viia-related popypeptdes
EP2457920B1 (en) 2007-01-18 2017-10-25 Genzyme Corporation Oligosaccharides comprising an aminooxy group and conjugates thereof
WO2008119815A1 (en) 2007-04-02 2008-10-09 Novo Nordisk A/S Subcutaneous administration of coagulation factor ix
CN101778937A (zh) * 2007-06-04 2010-07-14 诺和诺德公司 使用n-乙酰葡糖胺转移酶的o-联糖基化
EP2173383B1 (en) 2007-06-26 2017-08-09 Baxalta GmbH Hydrolysable polymeric fmoc-linker
JP5702600B2 (ja) 2007-07-03 2015-04-15 チルドレンズ ホスピタル アンド リサーチ センター アット オークランド オリゴシアル酸誘導体、製造方法および免疫学的使用
WO2009047500A1 (en) 2007-10-09 2009-04-16 Polytherics Limited Novel conjugated proteins and peptides
JP5647899B2 (ja) 2008-01-08 2015-01-07 ラツィオファルム ゲーエムベーハーｒａｔｉｏｐｈａｒｍ ＧｍｂＨ オリゴサッカリルトランスフェラーゼを使用するポリペプチドの複合糖質化
EP2257311B1 (en) 2008-02-27 2014-04-16 Novo Nordisk A/S Conjugated factor viii molecules
MY158228A (en) 2008-04-24 2016-09-15 Cantab Biopharmaceuticals Patents Ltd Factor ix conjugates with extended half-lives
US20110104142A1 (en) 2008-05-23 2011-05-05 Novo Nordisk Health Care Ag Formulations of peg-functionalised serine proteases with high concentrations of an aromatic preservative
CN102083459A (zh) 2008-05-23 2011-06-01 诺沃-诺迪斯克保健股份有限公司 包括含有peg化的gla-结构域的蛋白质的低粘度组合物
BRPI0913374A2 (pt) 2008-06-04 2015-11-24 Bayer Healthcare Llc muteínas fviii para tratamento de doença de von willebrand
DK2326349T3 (en) 2008-07-21 2015-05-26 Polytherics Ltd Novel Reagents and Methods for Conjugation of Biological Molecules
WO2010062768A1 (en) 2008-11-03 2010-06-03 Bayer Healthcare Llc Method for the treatment of hemophilia
CA2748662A1 (en) 2009-01-19 2010-07-22 Bayer Healthcare Llc Protein conjugate having an endopeptidase-cleavable bioprotective moiety
US20110306551A1 (en) 2009-02-19 2011-12-15 Novo Nordisk A/S Modification of Factor VIII
WO2010100430A1 (en) 2009-03-04 2010-09-10 Polytherics Limited Conjugated proteins and peptides
WO2010120365A2 (en) 2009-04-16 2010-10-21 Wu Nian Protein-carrier conjugates
GB0908393D0 (en) 2009-05-15 2009-06-24 Almac Sciences Scotland Ltd Labelling method
CA2769244A1 (en) 2009-07-27 2011-02-03 Lipoxen Technologies Limited Glycopolysialylation of non-blood coagulation proteins
NZ598056A (en) 2009-07-27 2014-01-31 Baxter Int Blood coagulation protein conjugates
IN2012DN00908A (ru) 2009-07-31 2015-04-03 Bayer Healthcare Llc
DE102009028526A1 (de) 2009-08-13 2011-02-24 Leibniz-Institut Für Polymerforschung Dresden E.V. Verfahren zur Modifikation und Funktionalisierung von Sacchariden
WO2011037896A2 (en) 2009-09-25 2011-03-31 Vybion, Inc. Polypeptide modification
CN102639553A (zh) 2009-11-24 2012-08-15 诺沃—诺迪斯克保健股份有限公司 纯化聚乙二醇化蛋白质的方法
CN102770449B (zh) 2010-02-16 2016-02-24 诺沃—诺迪斯克有限公司 具有降低的vwf结合的因子viii分子
GB201007356D0 (en) 2010-04-30 2010-06-16 Leverton Licence Holdings Ltd Conjugated factor VIIa
GB201007357D0 (en) 2010-04-30 2010-06-16 Leverton Licence Holdings Ltd Conjugated factor VIII
US20130331554A1 (en) 2010-11-15 2013-12-12 Biogen Idec Inc. Enrichment and concentration of select product isoforms by overloaded bind and elute chromatography
KR102110736B1 (ko) 2011-07-08 2020-05-14 바이오버라티브 테라퓨틱스 인크. Viii 인자 키메라 및 하이브리드 폴리펩타이드, 그리고 이들의 사용 방법

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1992016555A1 (en) * 1991-03-18 1992-10-01 Enzon, Inc. Hydrazine containing conjugates of polypeptides and glycopolypeptides with polymers
EP0605963A2 (en) * 1992-12-09 1994-07-13 Ortho Pharmaceutical Corporation Peg hydrazone and peg oxime linkage forming reagents and protein derivatives thereof
WO1994028024A1 (en) * 1993-06-01 1994-12-08 Enzon, Inc. Carbohydrate-modified polymer conjugates with erythropoietic activity
US20060019877A1 (en) * 2002-09-11 2006-01-26 Conradt Harald S Hasylated polypeptides
WO2008012540A1 (en) * 2006-07-25 2008-01-31 Lipoxen Technologies Limited N-terminal polysialylation

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LEES A ET AL: "Versatile and efficient synthesis of protein-polysaccharide conjugate vaccines using aminooxy reagents and oxime chemistry" VACCINE, ELSEVIER LTD, 2006, vol. 24, no. 6, pages 716-729 *

Also Published As

Publication number Publication date
AU2017265005A1 (en) 2017-12-07
KR20170085606A (ko) 2017-07-24
EP2459226B1 (en) 2016-06-29
JP5909755B2 (ja) 2016-04-27
EP3081233A1 (en) 2016-10-19
EP3081233B1 (en) 2020-12-23
WO2011012850A9 (en) 2011-05-12
WO2011012850A2 (en) 2011-02-03
JP2013500375A (ja) 2013-01-07
SG178051A1 (en) 2012-03-29
CA2769244A1 (en) 2011-02-03
AU2010277438A1 (en) 2012-02-09
ES2590679T3 (es) 2016-11-23
US9795683B2 (en) 2017-10-24
EP2459226A2 (en) 2012-06-06
KR101912335B1 (ko) 2018-10-26
AU2015242970A1 (en) 2015-11-05
WO2011012850A3 (en) 2011-04-14
CN102573920B (zh) 2015-01-14
AU2015242970B2 (en) 2017-10-12
US20110027350A1 (en) 2011-02-03
RU2012106654A (ru) 2013-09-10
CN102573920A (zh) 2012-07-11
NZ597600A (en) 2014-05-30
AU2010277438B2 (en) 2015-08-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2533619C2 (ru) Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови
KR101759300B1 (ko) 비혈액 응고 단백질의 글리코폴리시알화
RU2662807C2 (ru) Гликополисиалирование белков, не являющихся белками свертывания крови
JP7054407B2 (ja) オキシム連結のための求核触媒
AU694919B2 (en) Conjugation-stabilized polypeptide compositions
US5006333A (en) Conjugates of superoxide dismutase coupled to high molecular weight polyalkylene glycols
JP6195611B2 (ja) オキシム連結のための求核触媒
KR20080065602A (ko) 티아졸리딘을 통하여 화학적 라이게이션으로 제조된,하이드록시알킬 전분과 활성 물질의 컨쥬게이트
US20030103934A1 (en) Drugs having long-term retention in target tissue
EP2924053B1 (en) Glycosylated linker, compound containing glycosylated linker moiety and physiologically active substance moiety or salt thereof, and methods for producing said compound or salt thereof
US20220023430A1 (en) Glycopolysialylation of blinatumomab
JPWO2003000278A1 (ja) 軟膏剤
EA047322B1 (ru) Способ получения модифицированного терапевтического белка (варианты)

Legal Events

Date Code Title Description
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20160512