RU2206976C2 - Method for multiplying of normalized potato plants - Google Patents
Method for multiplying of normalized potato plants Download PDFInfo
- Publication number
- RU2206976C2 RU2206976C2 RU2001123454/13A RU2001123454A RU2206976C2 RU 2206976 C2 RU2206976 C2 RU 2206976C2 RU 2001123454/13 A RU2001123454/13 A RU 2001123454/13A RU 2001123454 A RU2001123454 A RU 2001123454A RU 2206976 C2 RU2206976 C2 RU 2206976C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- solution
- plants
- cuttings
- bacterial
- preparation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Cultivation Of Plants (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано в семеноводстве и селекции картофеля, в фермерских семеноводческих хозяйствах. The invention relates to agriculture and can be used in seed production and selection of potatoes, in seed farms.
Известен способ черенкования маточных тепличных растений, включающий высаживание растений из пробирок в теплицы на хорошо удобренном фоне. Как только растения достигнут высоты 20-25 см, на каждом стебле срезают верхушку с 3-4-мя настоящими листьями. Через 2 недели из каждой пазухи листа маточного растения вырастает побег. По мере роста маточных растений и отрастания новых пазушных побегов проводят их повторные съемы. До высадки в грунт черенки укореняют в рассадных ящиках (1). A known method of grafting uterine greenhouse plants, including planting plants from test tubes in greenhouses on a well-fertilized background. As soon as the plants reach a height of 20-25 cm, the top with 3-4 real leaves is cut off on each stem. After 2 weeks, an shoot grows from each sinus of the leaf of the uterine plant. With the growth of uterine plants and the growth of new axillary shoots, they are re-harvested. Before planting in the ground, cuttings are rooted in seedlings (1).
Известен способ размножения сортов картофеля, включающий подготовку пробирочных растений, высадку ростковых черенков на влажную фильтровальную бумагу в кюветы с укрытием стеклом, а после появления зачаточных корней проросшие черенки высаживают в закрытый грунт или выращивают из них рассаду, которую в дальнейшем можно высаживать в открытый грунт (2). A known method of propagation of potato varieties, including the preparation of test plants, planting sprout cuttings on a damp filter paper in a glass ditch, and after the emergence of embryonic roots, the sprouted cuttings are planted in closed ground or grown seedlings from them, which can later be planted in open ground ( 2).
Недостатком указанных способов является большая длительность процесса, требование большого количества пробирок, низкая производительность труда. The disadvantage of these methods is the long duration of the process, the requirement of a large number of tubes, low labor productivity.
Целью настоящего изобретения является снижение трудозатрат, создание более благоприятных условий для развития картофеля, повышение производительности по размножению оздоровленных растений. The aim of the present invention is to reduce labor costs, create more favorable conditions for the development of potatoes, increase productivity for propagating healthy plants.
Поставленная цель достигается тем, что способ размножения оздоровленных растений картофеля включает подготовку пробирочных растений, высадку ростковых черенков в кюветы на влажную фильтровальную бумагу, укоренение их с получением рассады. Подготовленные растения в виде укоренившихся черенков или кусочков клубней с проросшими глазками или проросшими миниклубнями перед проращиванием обрабатывают 1%-ным раствором бактериального препарата Экстрасол и/или неметодно-бактериальным комплексом при титре 1000 инвазионных личинок энтомопатогенных нематод в 1 мл препарата, а в качестве питательного раствора используют 1-3%-ный раствор минеральных удобрений, 0,01-0,05%-ный раствор микроэлементов и 1%-ный раствор биоудобрений, а после проращивания в кюветах на влажной фильтровальной бумаге и появления корешков и ростков их высаживают в бумажные стаканчики емкостью 40-80 см3 или выращивание растений осуществляют в полиэтиленовой пленке с комочком питательного субстрата на основе цеолита или торфа, или почвенного агара. При выращивании освещенность - (4-5)•1000 лк в течение 16-18 ч в сутки, при температуре воздуха 20 - 25oС, влажность субстрата 70-80% от полной влажности, относительная влажность воздуха 80-85%.This goal is achieved by the fact that the method of propagation of healthy potato plants includes the preparation of test plants, planting sprout cuttings in ditches on damp filter paper, rooting them to obtain seedlings. Prepared plants in the form of rooted cuttings or slices of tubers with sprouted eyes or sprouted mini-tubers before germination are treated with a 1% solution of the bacterial preparation Extrasol and / or non-method-bacterial complex at a titer of 1000 invasive larvae of entomopathogenic nematodes in 1 ml of the drug, and as a nutrient solution use a 1-3% solution of mineral fertilizers, 0.01-0.05% solution of trace elements and a 1% solution of biofertilizers, and after germination in ditches on wet filter paper and the emergence of roots and sprouts, they are planted in paper cups with a capacity of 40-80 cm 3 or growing plants is carried out in a plastic film with a lump of nutrient substrate based on zeolite or peat, or soil agar. When growing, the illumination is (4-5) • 1000 lux for 16-18 hours a day, at an air temperature of 20 - 25 o C, the humidity of the substrate is 70-80% of the total humidity, the relative humidity of the air is 80-85%.
Отличительными признаками заявляемого способа является то, что подготовленные растения в виде укоренившихся черенков или кусочков клубней с проросшими глазками или проросшие миниклубни перед проращиванием обрабатывают 1%-ным раствором бактериального препарата Экстрасол и/или нематодно-бактериальным комплексом при титре 1000 инвазионных личинок энтомопатогенных нематод в 1 мл препарата, а в качестве питательного раствора используют 1-3%-ный раствор минеральных удобрений, 0,01-0,05%-ный раствор микроэлементов (содержащих бор, марганец, медь) и 1%-ный раствор биоудобрений, а после проращивания растений и появления корешков и ростков их высаживают в бумажные стаканчики емкостью 40-80 см3 или выращивание растений осуществляют в полиэтиленовой пленке с комочком питательного субстрата на основе цеолита или торфа, или почвенного агара. Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого способа размножения оздоровленных растений картофеля критерию "новизны".Distinctive features of the proposed method is that the prepared plants in the form of rooted cuttings or pieces of tubers with sprouted eyes or sprouted minitubers before germination are treated with a 1% solution of the bacterial preparation Extrasol and / or nematode-bacterial complex with a titer of 1000 invasive larvae of entomopathogenic nematodes in 1 ml of the drug, and as a nutrient solution using 1-3% solution of mineral fertilizers, 0.01-0.05% solution of trace elements (containing boron, manganese, copper) and A 1% solution of biofertilizers, and after germination of the plants and the emergence of roots and sprouts, they are planted in paper cups with a capacity of 40-80 cm 3 or the plants are grown in a plastic film with a lump of nutrient substrate based on zeolite or peat, or soil agar. These differences allow us to conclude that the proposed method of propagation of healthy potato plants to the criterion of "novelty".
Сопоставительный анализ с известными техническими решениями и прототипом показывает, что предлагаемый способ отличается наличием новых технологических приемов - подготовки пробирочных растений или кусочков клубней с проросшими глазками, или проросших миниклубней, или укоренившихся черенков - путем обработки 1%-ным раствором препарата Экстрасол и/или нематодно-бактериальным комплексом, высадку растений в бумажные стаканчики емкостью 40-80 см3, заполненные питательным субстратом на основе цеолита или торфа с добавками 1-3%-ного раствора минеральных удобрений, 0,01-0,05%-ного раствора микроэлементов (содержащих бор, марганец, медь), и 1%-ный раствор биоудобрений, или выращивание размножаемых растений в почвенном агаре с вышеперечисленными добавками. Дальнейшее культивирование растений с поливом, минеральными и биоподкормками осуществляют до получения очередных черенков и их последующего укоренения в стаканчиках или в полиэтилене, причем культивирование осуществляют при освещенности (4-5)•1000 лк в течение 16-18 ч в сутки при температуре воздуха 20 - 25oС, влажности субстрата 70-80% от полной влажности и относительной влажности воздуха 80-85%.A comparative analysis with known technical solutions and a prototype shows that the proposed method is characterized by the presence of new technological methods - preparation of test plants or pieces of tubers with sprouted eyes, or sprouted minicubers, or rooted cuttings - by treating with a 1% solution of Extrasol and / or non-fashionable -bacterial complex, planting plants in paper cups with a capacity of 40-80 cm 3 , filled with a nutrient substrate based on zeolite or peat with additives of 1-3% solution of m ineral fertilizers, 0.01-0.05% solution of microelements (containing boron, manganese, copper), and 1% solution of biofertilizers, or growing propagated plants in soil agar with the above additives. Further cultivation of plants with irrigation, mineral and bio-nutrition is carried out until the next cuttings are obtained and their subsequent rooting in cups or in polyethylene, and the cultivation is carried out under illumination (4-5) • 1000 lux for 16-18 hours a day at an air temperature of 20 - 25 o C, substrate humidity 70-80% of total humidity and relative humidity 80-85%.
По известным технологиям выращивание растений в пробирках - громоздкий, трудоемкий процесс, который проходит в стерильных условиях, в результате чего растения после высадки в грунт требуют особых условий и наблюдений для адаптации к нестерильным условиям. Применение по предлагаемому способу бумажных стаканчиков емкостью 40-80 см3 или полиэтиленовой пленки, вместо дорогих пробирок с ватными пробками, резко снижает себестоимость оздоровленных растений, позволяет повысить производительность размножения оздоровленных растений, упрощает способ размножения. Применение в качестве субстрата цеолита или торфа, или почвенного агара позволяет создать благоприятные условия для развития оздоровленных растений.According to well-known technologies, growing plants in test tubes is a cumbersome, time-consuming process that takes place under sterile conditions, as a result of which plants after planting in the ground require special conditions and observations to adapt to non-sterile conditions. The use of the proposed method of paper cups with a capacity of 40-80 cm 3 or plastic film, instead of expensive test tubes with cotton plugs, dramatically reduces the cost of healthy plants, improves the productivity of propagation of healthy plants, simplifies the method of propagation. The use of zeolite or peat or soil agar as a substrate allows you to create favorable conditions for the development of healthy plants.
Используемый бактериальный препарат в качестве регулятора роста разработан во Всероссийском НИИ сельскохозяйственной микробиологии (ВНИИСХМ) и рекомендован для применения под торговой маркой Экстрасол. В состав препарата входят живые клетки бактерий, активно заселяющие ризосферу сельскохозяйственных растений, а также продукты их метаболизма, стимулирующие рост растений и ингибирующие развитие фитопатогенных микроорганизмов. Препарат используется для предпосевной бактеризации семян, корней рассады и клубней, а также для внекорневой подкормки растений, улучшения их питания и защиты от болезней. The bacterial preparation used as a growth regulator was developed at the All-Russian Research Institute of Agricultural Microbiology (VNIISCHM) and is recommended for use under the brand name Extrasol. The composition of the drug includes live bacterial cells that actively populate the rhizosphere of agricultural plants, as well as their metabolic products, which stimulate plant growth and inhibit the development of phytopathogenic microorganisms. The drug is used for pre-sowing bacterization of seeds, roots of seedlings and tubers, as well as for foliar feeding of plants, improving their nutrition and protection against diseases.
Используемые нематодно-бактериальные биопрепараты разработаны во Всероссийском НИИ картофельного хозяйства (ВНИИКХ) совместно с Всероссийским институтом гельминтологии им. К.И. Скрябина, Университетом Дружбы народов (УДН) им. П. Лумумбы и ООО "Дом природы" Всероссийского общества охраны Природы (ВООП). Биопрепарат Немабакт разработан Всероссийским институтом защиты растений (ВИЗР) и нарабатывается Московской фирмой "БИОРАНТА". Used nematode-bacterial biological products developed at the All-Russian Research Institute of Potato (VNIIKH) in conjunction with the All-Russian Institute of Helminthology named after K.I. Scriabin, University of Friendship of Peoples (UDN) them. P. Lumumba and LLC "House of Nature" of the All-Russian Society for the Protection of Nature (VOOP). Nemabact biological product was developed by the All-Russian Institute for Plant Protection (VIZR) and is being developed by the Moscow company "BIORANTA".
Энтомопатогенные нематоды и ассоциированные с ними бактерии являются антагонистами фитопатогенных нематод, способны поражать насекомых, останавливать развитие болезнетворных организмов (фитофтора, бактериальные и грибные гнили), чем защищают проростки картофеля от возбудителей болезней и от золотистой картофельной цистообразующей нематоды, а вырабатываемые ими вещества стимулируют рост и развитие растений. Ростовые вещества, выделяемые этой группой микроорганизмов, способствуют ускорению корнеобразования. Entomopathogenic nematodes and bacteria associated with them are antagonists of phytopathogenic nematodes, capable of infecting insects, stop the development of pathogens (phytophthora, bacterial and fungal rot), which protects potato seedlings from pathogens and from golden potato cyst-forming nematodes, and the substances produced by them stimulate growth and plant development. The growth substances secreted by this group of microorganisms contribute to the acceleration of root formation.
Наличие новых технологических приемов в предлагаемом способе размножения оздоровленных растений картофеля и их сочетание с известными позволяет ускорить размножение растений, повысить качество продукции, создать более благоприятные условия для развития картофеля. Это позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию "существенные отличия". The presence of new technological methods in the proposed method of propagation of healthy potato plants and their combination with the known ones allows to accelerate plant propagation, improve product quality, create more favorable conditions for the development of potatoes. This allows us to conclude that the claimed technical solution meets the criterion of "significant differences".
Способ осуществляют следующим образом. The method is as follows.
Пример 1. Использование пробирочных растений. В элитном семеноводстве в условиях лаборатории оздоровленные растения выращивают из верхушечных меристем в пробирках in vitro, получая микроклубни размером 0,8-1,8 см в диаметре. При достижении микроклубнями указанных размеров и отмирания ботвы их извлекают из пробирок, отмывают от агара и хранят в целлофановой бумаге в холодильнике при температуре 2-4oС. После прохождения периода покоя (2-3 месяца) перед посадкой микроклубни обрабатывают 1%-ным раствором Экстрасола и/или нематодно-бактериальным комплексом.Example 1. The use of test plants. In elite seed production in the laboratory, healthy plants are grown from apical meristems in vitro tubes, getting micro-tubers 0.8-1.8 cm in diameter. When the micro-tubers reach the indicated sizes and die, the tops are removed from the tubes, washed from agar and stored in cellophane paper in a refrigerator at a temperature of 2-4 o C. After a dormant period (2-3 months), the micro-tubers are treated with a 1% solution before planting Extrasol and / or nematode-bacterial complex.
Для обработки микроклубней растворами биопрепаратов и удобрений используют универсальный ультрамалообъемный протравитель ПУМ-30-МИП. В качестве рабочих органов в протравителе используют вращающиеся дисковые распылители, которые обеспечивают диспергирование рабочей жидкости на капли диаметром 40-60 мкм. Протравитель состоит из двух дисковых распылителей, камеры протравливания, насоса-дозатора, привода дозатора, электронной схемы управления дозирования рабочей жидкости, а также емкости для препарата с системой коммуникаций для подачи препарата в рабочие органы. Протравитель работает от сети напряжением 220 В. В семеноводческих хозяйствах в зависимости от объема работ по протравливанию используют также, например, ручной универсальный ультрамалообъемный опрыскиватель марки ДЭР-ИНВЭЛ. Он состоит из распыливающей головки с несущей штангой с крепежным узлом удлинительной штанги. Распыливающая головка обеспечивает диспергирование рабочей жидкости. С помощью ручного опрыскивателя производят весь комплекс работ как по обработке микроклубней перед проращиванием, так и в период вегетации растений. For the treatment of micro-tubers with solutions of biological products and fertilizers, the universal ultra-low-volume protectant PUM-30-MIP is used. As working bodies in the treating agent, rotating disk sprayers are used, which provide dispersion of the working fluid into droplets with a diameter of 40-60 microns. The treating agent consists of two disk sprayers, an etching chamber, a metering pump, a metering drive, an electronic control circuit for dosing the working fluid, and also a drug container with a communications system for delivering the drug to the working bodies. Protravitel works from a network with a voltage of 220 V. In seed farms, depending on the amount of etching, they also use, for example, a hand-held universal ultra-low-volume sprayer of the DER-INVEL brand. It consists of a spray head with a supporting rod with a mounting unit for an extension rod. The spray head provides dispersion of the working fluid. Using a manual sprayer, the whole complex of work is performed both on processing micro-tubers before germination, and during the growing season of plants.
После обработки препаратами микроклубни раскладывают в кюветы на влажную фильтровальную бумагу и закрывают листом стекла. Кюветы время от времени проветривают, снимая стекло на 1 ч в сутки. Фильтровальную бумагу увлажняют 1%-ным раствором Экстрасола, 1-3%-ным раствором минеральных, и 0,01-0,05%-ным раствором микроэлементов (содержащих бор, марганец, медь), и 1%-ным раствором биоудобрений. Для вегетативного размножения картофеля используют конвейерную установку, состоящую из последовательно подаваемых на транспортер (с интервалом 3-4 суток) 100-клеточных кюветов, расположенных в камерах с дозированным поливом, регулируемой температурой в пределах 20-25oС, относительной влажностью воздуха в пределах 80-85%, освещенностью (4-5)•1000 лк и фотопериодом 16-18 ч в сутки. Установка снабжена подсветкой ультрафиолетового излучения для стимулирования роста растений и стерилизации используемого питательного субстрата (торф или почвенный агар).After treatment with the preparations, the micro-tubers are laid out in ditches on wet filter paper and covered with a sheet of glass. The ditches are occasionally ventilated by removing the glass for 1 hour per day. The filter paper is moistened with a 1% solution of Extrasol, 1-3% solution of mineral, and 0.01-0.05% solution of trace elements (containing boron, manganese, copper), and 1% solution of bio-fertilizers. For vegetative propagation of potatoes, a conveyor system is used, consisting of 100-cell cuvettes arranged sequentially to the conveyor (with an interval of 3-4 days), located in chambers with dosed irrigation, adjustable temperature within 20-25 o C, relative humidity within 80 -85%, illumination (4-5) • 1000 lux and a photoperiod of 16-18 hours per day. The unit is equipped with ultraviolet light to stimulate plant growth and sterilize the nutrient substrate used (peat or soil agar).
В качестве удобрений используют комплексное удобрение - нитроаммофоску, в качестве микроудобрений - раствор медного купороса. Использование ионов меди активизирует фотосинтез, ускоряет клубнеобразование, дезинфицирует глазки. Марганцевые удобрения вносят в виде сернокислого марганца. В качестве биорегулятора роста используют бактериальный препарат Экстрасол, разработанный на основе бактерий из родов Agrobacterium, Flavobacterium, Pseudomonas, Azomonas, которые обладают высокой динамичностью роста, способны поселяться на корнях и в ризосфере культивируемых растений и/или культуральные жидкости энтомопатогенных нематод: Neoaplectana (=Steinernema); Carpocapsae Var. Agriotos W (Немабакт); Pristionchus Uniformis Var. Oz. (Диприн-03); Steinernema Feltia (Нематол-Ф); при титре 1000 особей в 1 мл и разведении в 1000 раз. As fertilizers, a complex fertilizer is used - nitroammofosku, as microfertilizers - a solution of copper sulfate. The use of copper ions activates photosynthesis, accelerates tuberization, and disinfects the eyes. Manganese fertilizers are introduced in the form of manganese sulfate. The bacterial preparation Extrasol, developed on the basis of bacteria from the genera Agrobacterium, Flavobacterium, Pseudomonas, Azomonas, which have high growth dynamics, is able to settle on the roots and in the rhizosphere of cultivated plants and / or culture fluids of entomopathogenic nematodes: Neoaplectana (= Steinerna ); Carpocapsae Var. Agriotos W (Nemabact); Pristionchus Uniformis Var. Oz. (Diprin-03); Steinernema Feltia (Nematol-F); at a titer of 1000 individuals per 1 ml and dilution 1000 times.
После прогревания в теплой влажной камере в лабораторных условиях растения быстро прорастают, на них появляются молодые ростки и корни. При достижении корешками величины 0,5 см и ростков до 1 см (через 10-12 дней) осуществляют высадку растений в бумажные стаканчики емкостью 40-80 см3 или в комочки питательного субстрата, завернутые в полиэтиленовую пленку. Питательный раствор на основе цеолита или торфа с добавками 1-3%-ного раствора минеральных удобрений, 0,01-0,05%-ного раствора микроэлементов (содержащих бор, марганец, медь), 1%-ного раствора биоудобрений в виде продукта переработки навоза и растительных остатков нематодно-бактериальным комплексом или для выращивания растений используют почвенный агар в виде 1%-ного расплавленного агара, смешанного с 99% гумусной почвы или торфа.After warming in a warm, humid chamber under laboratory conditions, plants germinate quickly, young sprouts and roots appear on them. When the roots reach a value of 0.5 cm and sprouts up to 1 cm (after 10-12 days), plants are planted in paper cups with a capacity of 40-80 cm 3 or in lumps of nutrient substrate, wrapped in plastic film. A nutrient solution based on zeolite or peat with additives of 1-3% solution of mineral fertilizers, 0.01-0.05% solution of trace elements (containing boron, manganese, copper), 1% solution of bio-fertilizers in the form of a processing product of manure and plant residues with the nematode-bacterial complex or for growing plants, soil agar is used in the form of 1% molten agar mixed with 99% humus soil or peat.
Растения культивируют с периодическим поливом, минеральными и биоподкормками до получения очередных черенков и их последующего укоренения в стаканчиках или же выращиваемые растения помещают в полиэтиленовую пленку с комочком питательного субстрата, причем культивирование осуществляют при освещенности (4-5)•1000 лк в течение 16-18 ч в сутки при температуре воздуха 20-25oС, влажности субстрата 70-80% от полной влажности и относительной влажности воздуха 80-85%.Plants are cultivated with periodic watering, mineral and bio-nutrition until the next cuttings are obtained and then rooted in cups, or the grown plants are placed in a plastic film with a lump of nutrient substrate, and cultivation is carried out under illumination (4-5) • 1000 lux for 16-18 h per day at an air temperature of 20-25 o C, substrate humidity of 70-80% of total humidity and relative humidity of 80-85%.
Пример 2. При использовании кусочков клубней с проросшими глазками их замачивают в течение 10-12 мин в растворе минерального удобрения (как в примере 1), растворе микроэлементов, биорегулятора раста Экстрасол или нематодно-бактериального комплекса, биоудобрений. Затем кусочки клубней высаживают в бумажные стаканчики или помещают в полиэтиленовую пленку с комочком питательного субстрата. Глубина посадки, температура, освещенность, влажность аналогичны способу выращивания пробирочных растений. Example 2. When using pieces of tubers with sprouted eyes, they are soaked for 10-12 minutes in a solution of mineral fertilizer (as in example 1), a solution of microelements, a bioregulator of rast Extrasol or a nematode-bacterial complex, bio-fertilizers. Then pieces of tubers are planted in paper cups or placed in a plastic film with a lump of nutrient substrate. Planting depth, temperature, lighting, humidity are similar to the method of growing test plants.
Пример 3. Использование проросших миниклубней. Миниклубни получают при уменьшении площади питания, например, 6•6 см. Предварительно миниклубни моют, опрыскивают раствором минеральных удобрений (как в примере 1), растворе микроэлементов, биорегуляторов роста, биоудобрений. Затем кусочки клубней высаживают в бумажные стаканчики или помещают в полиэтиленовую пленку с комочком питательного субстрата. Глубина посадки, температура, освещенность, влажность аналогичны способу выращивания пробирочных растений (пример 1). Example 3. The use of sprouted minicubers. Minicubers are obtained by reducing the feeding area, for example, 6 • 6 cm. Pre-minicubers are washed, sprayed with a solution of mineral fertilizers (as in Example 1), a solution of microelements, bioregulators of growth, bio-fertilizers. Then pieces of tubers are planted in paper cups or placed in a plastic film with a lump of nutrient substrate. Planting depth, temperature, illumination, humidity are similar to the method of growing test plants (example 1).
Пример 4. Использование укоренившихся черенков. Для получения черенков с осени отбирают здоровые клубни выбранных сортов и закладывают на длительное проращивание, предварительно обработав от грибных инфекций 1%-ным раствором борной кислоты. При отрастании ростков до длины 10-20 см и более их обламывают у основания маточных клубней и приступают к черенкованию. Ростки лезвием бритвы разрезают на кусочки длиной 1,5-2 см по числу зачаточных почек. Черенки раскладывают на влажную фильтровальную бумагу в кюветы, которые закрывают листом стекла или используют конвейерную установку, состоящую из последовательно подаваемых на транспортер (с интервалом 3-4 суток) 100-клеточных кюветов, расположенных в камере с дозированным поливом, регулируемой температурой, влажностью и фотопериодом (как в примере 1). Example 4. The use of rooted cuttings. To obtain cuttings, healthy tubers of selected varieties are selected from the fall and laid for long-term germination, having previously been treated with a 1% solution of boric acid from fungal infections. When the sprouts grow to a length of 10-20 cm or more, they break off at the base of the uterine tubers and begin to cuttings. Sprouts with a razor blade are cut into pieces 1.5-2 cm long by the number of rudimentary buds. The cuttings are laid out on wet filter paper in cuvettes, which are closed with a sheet of glass or use a conveyor system consisting of 100-cell cuvettes arranged in series with a conveyor (with an interval of 3-4 days) located in a chamber with dosed irrigation, adjustable temperature, humidity and photoperiod (as in example 1).
Пример 5. Использование почвенного агара в качестве субстрата для воспроизводства черенков картофеля. Миниклубни с проросшими глазками замачивают в течение 10-12 мин последовательно в растворе минеральных удобрений (как в примере 1), растворе микроэлементов, биорегуляторов роста, минеральных удобрений, биоудобрений и биофунгицидов, затем миниклубни высаживают в бумажные стаканчики или помещают в полиэтиленовую пленку с комочком питательного субстрата, причем в качестве питательного субстрата используют почвенный агар, который получают путем смешивания 1%-ного расплавленного агара с 99% гумусной почвы или торфа, который в дальнейшем смешивают с 0,01% смеси микроэлементов, минеральных и биологических удобрений. Глубина посадки, температура, освещенность, влажность аналогичны способу выращивания пробирочных растений (пример 1). Example 5. The use of soil agar as a substrate for the reproduction of cuttings of potatoes. The minicubers with sprouted eyes are soaked for 10-12 min sequentially in a solution of mineral fertilizers (as in example 1), a solution of microelements, bioregulators of growth, mineral fertilizers, biofertilizers and biofungicides, then the minicubers are planted in paper cups or placed in a plastic film with a lump of nutrient substrate, and as a nutrient substrate, soil agar is used, which is obtained by mixing 1% molten agar with 99% humus soil or peat, which is further mixed ayut with 0.01% of a mixture of trace elements, mineral and biological fertilizers. Planting depth, temperature, illumination, humidity are similar to the method of growing test plants (example 1).
Источники информации
1. Замотаев А.И., Трофимцев Л.Н. и др. - Методы ускоренного размножения в первичном семеноводстве картофеля. Издательство МСХ СССР, ВДНХ, 1981. Буклет.Sources of information
1. Zamotaev A.I., Trofimtsev L.N. and others. - Methods of accelerated reproduction in the primary seed production of potatoes. Publishing House of the Ministry of Agriculture of the USSR, VDNH, 1981. Booklet.
2. Трофимец Л.Н., Бойко В.В. и др. Безвирусное семеноводство картофеля (Рекомендации). - М.: Агропромиздат, 1990, 16 с. 2. Trofimets L.N., Boyko V.V. et al. Virus-free potato seed production (Recommendations). - M.: Agropromizdat, 1990, 16 p.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2001123454/13A RU2206976C2 (en) | 2001-08-23 | 2001-08-23 | Method for multiplying of normalized potato plants |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2001123454/13A RU2206976C2 (en) | 2001-08-23 | 2001-08-23 | Method for multiplying of normalized potato plants |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2001123454A RU2001123454A (en) | 2003-04-20 |
| RU2206976C2 true RU2206976C2 (en) | 2003-06-27 |
Family
ID=29210272
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2001123454/13A RU2206976C2 (en) | 2001-08-23 | 2001-08-23 | Method for multiplying of normalized potato plants |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2206976C2 (en) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009025577A1 (en) * | 2007-08-15 | 2009-02-26 | Volovik Evgeny L Vovich | Method for growing potato minitubers |
| CN103858655A (en) * | 2014-03-31 | 2014-06-18 | 贵州省生物技术研究所 | Sweet potato seedling growing method suitable for center area of Guizhou |
| RU2558195C1 (en) * | 2014-04-24 | 2015-07-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Горский государственный аграрный университет" | Method of reproduction of selection samples of potatoes |
| RU2668153C2 (en) * | 2016-11-10 | 2018-09-26 | Светлана Алексеевна Данилова | Method of producing virus tested planting material of potato of appreciable variety |
| RU2773675C1 (en) * | 2021-04-01 | 2022-06-07 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр картофеля имени А.Г. Лорха" | Method for obtaining reproductive material |
-
2001
- 2001-08-23 RU RU2001123454/13A patent/RU2206976C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ТРОФИМЕЦ Л.Н. Безвирусное семеноводство картофеля (Рекомендации). - М.: Агропромиздат, 1990, с. 3-10. * |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009025577A1 (en) * | 2007-08-15 | 2009-02-26 | Volovik Evgeny L Vovich | Method for growing potato minitubers |
| CN103858655A (en) * | 2014-03-31 | 2014-06-18 | 贵州省生物技术研究所 | Sweet potato seedling growing method suitable for center area of Guizhou |
| RU2558195C1 (en) * | 2014-04-24 | 2015-07-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Горский государственный аграрный университет" | Method of reproduction of selection samples of potatoes |
| RU2668153C2 (en) * | 2016-11-10 | 2018-09-26 | Светлана Алексеевна Данилова | Method of producing virus tested planting material of potato of appreciable variety |
| RU2773675C1 (en) * | 2021-04-01 | 2022-06-07 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр картофеля имени А.Г. Лорха" | Method for obtaining reproductive material |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN101637092B (en) | Method for cultivating eucalyptus seedlings | |
| ES2784334T3 (en) | Composition based on mixotrophic Chlorella, and methods of its preparation and application to plants | |
| CN102919035A (en) | Industrialized cultivation method of sweet-scented osmanthus nursery stock | |
| CN106069218B (en) | A method of improving batch production greenhouse watermelon seedling graft seedling growth survival rate | |
| CN104082007A (en) | Cuttage breeding method for annona squamosa linn | |
| CN104255245B (en) | The ginger stem root and stem of certain plants is passed the winter breeding station propagation method | |
| CN103125386B (en) | Industrial horseradish planting method | |
| CN107926715A (en) | A kind of eggplant or/and the engrafting and cultivating method of capsicum or/and tomato | |
| Susaj et al. | Effect of different NAA and IBA concentrations on rooting of vegetative cuttings of two rose cultivars. | |
| CN105993956A (en) | Fast propagating method for atractylis lancea | |
| CN103858637A (en) | Method of recycling and cultivating pachira macrocarpa | |
| CN106258307A (en) | The dwarfing of the potted plant Moringa that a kind of growth retardant processes and fertilizing method | |
| CN103875515A (en) | Ex-vitro rooting method for tissue culture blueberry seedlings | |
| KR20070018769A (en) | Methods for improving growth and crop productivity of plants by adjusting plant hormone levels, ratios and/or co-factors | |
| CN103858771A (en) | Maize transgenic tissue culture seedling transplanting method | |
| Karagüzel | Effects of different growing media on the cut flower performances of oriental two Lilium varieties | |
| CN113951140B (en) | Method for promoting rapid propagation of seedlings of paris polyphylla young plants | |
| Gimenes et al. | Propagation of Cabralea canjerana by mini-cutting | |
| CN102144490A (en) | Propagation method of stenoloma chusana spores | |
| RU2206976C2 (en) | Method for multiplying of normalized potato plants | |
| Bala et al. | Effect of calcium nitrate on propagation of LA hybrid lilies through Scaling | |
| CN110622716A (en) | Tomato grafting and seedling raising method | |
| Waiba et al. | Study of growth parameters and germination of tomato seedlings in soil-less media under protected environment | |
| CN107535356A (en) | A kind of Hainan Huanghua Pear seeds seedling breeding method | |
| CN114342958A (en) | Seed dressing microbial inoculum for promoting germination of orchid seeds and seed dressing and culturing method |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20050824 |