JPS63264426A - B型肝炎ワクチン - Google Patents
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Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、B型肝炎ウィルス(I(BV)に対す有効な
ワクチンに関するものであり、詳しくはB型肝炎ウィル
スの感染機作に関する新たな知見にもとづいて、その感
染を防止するための新しいタイプのワクチンを提供する
ものである。
ワクチンに関するものであり、詳しくはB型肝炎ウィル
スの感染機作に関する新たな知見にもとづいて、その感
染を防止するための新しいタイプのワクチンを提供する
ものである。
B型肝炎は主として血液を介して感染するウィルス性疾
患である。
患である。
B型肝炎ウィルスは、1970年にDaneらによって
、オーストラリア抗原(へU抗原、HBs抗原)陽性皿
内に確言′7Jされたものであって、二重構造をした球
形DNAウィルスである。
、オーストラリア抗原(へU抗原、HBs抗原)陽性皿
内に確言′7Jされたものであって、二重構造をした球
形DNAウィルスである。
HBVに感染したヒトの血清を遠心して電子顕微鏡下で
観察すると、直径42n+aの大型球形粒子(Dane
粒子)、直径22nmの小型球形粒子および管状粒子が
見出される。
観察すると、直径42n+aの大型球形粒子(Dane
粒子)、直径22nmの小型球形粒子および管状粒子が
見出される。
Dane粒子は、中心に直径27nmの内部粒子(co
re粒子)を有し、また表面には外殻がある。 eor
e粒子内には、分子量約1.6X106の2本鎖DNA
とDNAポリメラーゼが含まれている。
re粒子)を有し、また表面には外殻がある。 eor
e粒子内には、分子量約1.6X106の2本鎖DNA
とDNAポリメラーゼが含まれている。
Dane粒子の外殻は、HBs抗原(HBcAg)活性
を有し、これとは別にeore粒子表面にはHBe抗原
(HBcAg)活性がある。またeore粒子には分子
量約19.000 (P2O)の単位核蛋白が存在する
が、P2Oの一部はeore粒子の表面に露出して、そ
のN末端側の部分はHBe抗原([iBeAg)活性を
もつ。HBcAgは血中に出現することがある。
を有し、これとは別にeore粒子表面にはHBe抗原
(HBcAg)活性がある。またeore粒子には分子
量約19.000 (P2O)の単位核蛋白が存在する
が、P2Oの一部はeore粒子の表面に露出して、そ
のN末端側の部分はHBe抗原([iBeAg)活性を
もつ。HBcAgは血中に出現することがある。
したがって、HBV関連抗原としては、HBcAg、l
lBsAg、 HBeAg、の三種類が現在知られてい
る。
lBsAg、 HBeAg、の三種類が現在知られてい
る。
また、HB s A gには共通抗原としてraJがあ
るが、さらに抗原性の違イからadr、 adw、 a
yw、 ayrの4種のサブタイプが知られている。こ
れらサブタイプは、I(BV株の違いによって、産生さ
れろHBsAgのアミノ酸配列に多少の違いが生じたも
のと考えられろ。
るが、さらに抗原性の違イからadr、 adw、 a
yw、 ayrの4種のサブタイプが知られている。こ
れらサブタイプは、I(BV株の違いによって、産生さ
れろHBsAgのアミノ酸配列に多少の違いが生じたも
のと考えられろ。
B型肝炎は1(BVキャリアの血液が輸注されろことに
より、受血者に高率に発生するほか、注射針やカミソリ
の刃についた微量の血液によって感染することがありう
る。
より、受血者に高率に発生するほか、注射針やカミソリ
の刃についた微量の血液によって感染することがありう
る。
日本において、年間激痛肝炎4,400例、急性肝炎1
8万例、慢性肝炎30万例、肝硬変12万例が存在する
と推定される肝疾思のうち、各30%程度が、また原発
性肝癌8.400例のうち約50%がB型肝炎ウィルス
によって発生すると推定されている。
8万例、慢性肝炎30万例、肝硬変12万例が存在する
と推定される肝疾思のうち、各30%程度が、また原発
性肝癌8.400例のうち約50%がB型肝炎ウィルス
によって発生すると推定されている。
さらに無症候の1τBV千ヤリア(HBV保有者)は世
界で約2億人、わが国では約300万人も存在すると推
定され、全人口に対するキャリアの割合は日本が先進国
中最高の値を示している。したがって、HBVキャリア
の血液を介してB型肝炎が感染する危険が大きい。
界で約2億人、わが国では約300万人も存在すると推
定され、全人口に対するキャリアの割合は日本が先進国
中最高の値を示している。したがって、HBVキャリア
の血液を介してB型肝炎が感染する危険が大きい。
そのため、B型肝炎ウィルスに対して、ワクチネーショ
ンが望まれ、とくに有効でかつ副作用の少ないワクチン
の研究と開発が切望されていた。
ンが望まれ、とくに有効でかつ副作用の少ないワクチン
の研究と開発が切望されていた。
現在供用されているB型肝炎ワクチンは、ItBV陽性
血からHBs抗原を分離精製し、不活性化したものであ
るが、HBVが現在培養増殖できず、原料であるHBV
陽性血を大量に確保することが回軸であるとともに、コ
ストが高いこと、異物蛋白や未知のウィルス等が混入す
ることによる危険を完全に免れない欠点があった。
血からHBs抗原を分離精製し、不活性化したものであ
るが、HBVが現在培養増殖できず、原料であるHBV
陽性血を大量に確保することが回軸であるとともに、コ
ストが高いこと、異物蛋白や未知のウィルス等が混入す
ることによる危険を完全に免れない欠点があった。
したがって、+IBVに対する合成ワクチンの必要性が
示唆されてきたが、本願の発明者らは、B型肝炎ウィル
スに対して有効であり、かつ安全性に侵れたポリペプタ
イドワクチンを発明した。
示唆されてきたが、本願の発明者らは、B型肝炎ウィル
スに対して有効であり、かつ安全性に侵れたポリペプタ
イドワクチンを発明した。
本願は本願発明者らによる、B型肝炎ウィルスとヒl−
肝細胞の付着に関する新たな知見に基礎を置(ものであ
る。すなわち、B型肝炎ウィルスが、肝細胞表面のPo
1y−ISA(重合したと1・血清アルブミン)を介し
て、ヒトの肝細胞に特異的に付着することを突き止め、
さらにB型肝炎つィルス粒子上のPo1y−HS人受容
体が、[(BsAgの如何なる部位に位置するかの探索
をつづけた。
肝細胞の付着に関する新たな知見に基礎を置(ものであ
る。すなわち、B型肝炎ウィルスが、肝細胞表面のPo
1y−ISA(重合したと1・血清アルブミン)を介し
て、ヒトの肝細胞に特異的に付着することを突き止め、
さらにB型肝炎つィルス粒子上のPo1y−HS人受容
体が、[(BsAgの如何なる部位に位置するかの探索
をつづけた。
その結果、HBe人g陽性血漿由来のHBsAg粒子か
ら精製したP31ポリペブタイド上に、Po1y−II
S人に対する受容体が存在することを解明した。これに
対し、HBsλg粒子から精製したP22ポリペブタイ
ドはPo1y−ISAにイ寸着せず、したがってP22
上にはPo1y−ISAに対する受容体が存在しないこ
とを見出した。
ら精製したP31ポリペブタイド上に、Po1y−II
S人に対する受容体が存在することを解明した。これに
対し、HBsλg粒子から精製したP22ポリペブタイ
ドはPo1y−ISAにイ寸着せず、したがってP22
上にはPo1y−ISAに対する受容体が存在しないこ
とを見出した。
さらにP31ポリペプクィドとB型肝炎ウィルスの遺伝
情報との関係を探索した結果、P31はHBV−DNA
のS領域によりコードされる226残基のアミノ酸から
なるP22とその上流に存在するPre−S隣接領域に
よってコードされる55個のアミノ酸によって構成され
ることを解明した(図1)。
情報との関係を探索した結果、P31はHBV−DNA
のS領域によりコードされる226残基のアミノ酸から
なるP22とその上流に存在するPre−S隣接領域に
よってコードされる55個のアミノ酸によって構成され
ることを解明した(図1)。
したがって上記55個のアミノ酸からなる部分にPo
I y−HS人受容体が存在する事が推測された。事実
P31をCNBrで切断する事により単離した上記55
個のアミノ酸からなるベプタイドはPo1y−ISAと
結合する事が解明された。
I y−HS人受容体が存在する事が推測された。事実
P31をCNBrで切断する事により単離した上記55
個のアミノ酸からなるベプタイドはPo1y−ISAと
結合する事が解明された。
以上の知見にもとづき、本願の発明者らは、B型肝炎ウ
ィルスに対する新しいワクチン、ポリペプタイドワクチ
ンP31を発明した。
ィルスに対する新しいワクチン、ポリペプタイドワクチ
ンP31を発明した。
本発明のポリペプタイドワクチンP31はB型肝炎ウィ
ルスのPo1y−Is人受容体をブロックすることによ
りHBVがヒト肝細胞に付着するのを防止するワクチン
である。
ルスのPo1y−Is人受容体をブロックすることによ
りHBVがヒト肝細胞に付着するのを防止するワクチン
である。
さらに、本発明のポリペプタイドワクチンP31は、そ
のPre−3領域DNAによりコードされるペプタイド
部分(N末端より第4番目アミノ酸残基Asn)に多糖
類が結合している状態(P35)においても、t(BV
に対するワクチンとして使用することができるものであ
る。
のPre−3領域DNAによりコードされるペプタイド
部分(N末端より第4番目アミノ酸残基Asn)に多糖
類が結合している状態(P35)においても、t(BV
に対するワクチンとして使用することができるものであ
る。
ポリペプタイドワクチンP31の製造方法は次のとお9
である。
である。
HBeAgが陽性で、かツHBs人g価(R−PHA価
)の高い血漿を遠心して、Dane粒子を除去して得ら
れた上清中の小型粒子を浮上遠心と庶糖によるレート遠
心によって得ろ。
)の高い血漿を遠心して、Dane粒子を除去して得ら
れた上清中の小型粒子を浮上遠心と庶糖によるレート遠
心によって得ろ。
精製した小型粒子(HBsAg粒子)を1%(、/v)
ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)および1%(v/v
) 2−メルカプトエタ/−ル(2−ME)を含むトリ
ス−塩酸緩衝液中でインキユペートシ、構成ペプタイド
に分解する。
ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)および1%(v/v
) 2−メルカプトエタ/−ル(2−ME)を含むトリ
ス−塩酸緩衝液中でインキユペートシ、構成ペプタイド
に分解する。
ポリペブタイドはMa i ze lの方法により、ポ
リアクリルアミドゲル電気泳動によ吻、分画し、P31
31ポリペブタイドを得ろ。セファデックスG25 (
ファルマシア:スウェーデン)を用い水を溶媒として上
記分画をゲル濾過し、遊離のSDSや電気泳動緩衝液に
用いた試薬を除く。ボイドボリュームに溶出したP31
は、凍結乾燥する。
リアクリルアミドゲル電気泳動によ吻、分画し、P31
31ポリペブタイドを得ろ。セファデックスG25 (
ファルマシア:スウェーデン)を用い水を溶媒として上
記分画をゲル濾過し、遊離のSDSや電気泳動緩衝液に
用いた試薬を除く。ボイドボリュームに溶出したP31
は、凍結乾燥する。
ポリペブタイドP31の物理化学的性質は次のとおりで
ある。
ある。
アミノ酸残基。 10μgのP31を6N−HCIで
減圧下110℃で24.48.72時間加水分解し、日
立アミノ酸分析計835で測定シた。ロイシン、イソロ
イシン、バリンは最高値を、スレオニンとセリンは0時
間に内そうした値を用いた。
減圧下110℃で24.48.72時間加水分解し、日
立アミノ酸分析計835で測定シた。ロイシン、イソロ
イシン、バリンは最高値を、スレオニンとセリンは0時
間に内そうした値を用いた。
(近似値)
アスパラギン酸 5
アスパラギン 9
スレオニン 24
セリン 31
グルタミン酸 2
グルタミン 8
グリシン 18
アラニン 9
バリン 14
メチオニン フ
イソロイシン 16
0インン 38
チロシン 6
フェニルアラニン 20
リジン 2
ヒスチジン 2
アルギニン 10
プロリン 32
トリプトフアン 14
システイン 14
末端アミノ酸。N末端アミノ酸は手動エドマン分解法に
より調べた。C*端アミノ酸配列は0.2M、エチル・
モルフォリン−酢酸(PI(、8,5)中で25℃、1
5分、30分間カルボキシペプチダーゼAを作用させた
後、アミノ酸分析により決定した。N末端アミノ酸はメ
チオニン、C末端アミノ酸配列ハーバリン−チロシン−
イソロイシンであった。
より調べた。C*端アミノ酸配列は0.2M、エチル・
モルフォリン−酢酸(PI(、8,5)中で25℃、1
5分、30分間カルボキシペプチダーゼAを作用させた
後、アミノ酸分析により決定した。N末端アミノ酸はメ
チオニン、C末端アミノ酸配列ハーバリン−チロシン−
イソロイシンであった。
九ヱfi 31,000ダルトン(測定法 5
DS−PAGE) 屋LLt3; 100℃ 20 min 5t
able吸収特性 280nm λmaχ2 9
0 H5houlder 本願の発明者らはさらにP31のPre−S領域のアミ
ノ酸配列のうち、親水性部位で各サブタイプ間に共通の
部分を選び、これを化学的に合成してそのPo1y−U
SAとの反応性と免疫冷性を調べた。その結果、^Sp
−Pro−Arg−Va I −Ar g−G I y
−Leu−Tyr−Phe (or−Leu) −Pr
o−A I a−Gly−Gly−Ser−Ser−S
er−Gly−Thr−Valのンーケンスを含有する
合成ポリペブタイド(Aspペプクィド)とPo1y−
ISA受容体を持たないflBsAg小型粒子との結合
物は人spペプタイドを介してPo1y−USAと結合
する事が明らかになっtこ(表1)。 まtここの人s
pペプタイドは免疫原性をも有することを見出し、これ
をB型肝炎ウィルスに対するワクチンとすることを発明
した。即ち、この人spペプタイドをモルモットに免疫
して得られた抗血清ば、HBeAg陽性血清から精製し
たffBsAgと結合したが、 HBeAb陽性血清か
ら精製したHBsA4とは殆ど結合しなかった。このこ
とにより、とのAspペプタイドに対する抗体がB型肝
炎つィルス上のPo1y−■SA受容体をブロックしB
型肝炎ウィルスがPo1y−USAを介してヒト肝細胞
に付着するのを阻止できろ効率の高いワクチンであるこ
とが明らかになった。
DS−PAGE) 屋LLt3; 100℃ 20 min 5t
able吸収特性 280nm λmaχ2 9
0 H5houlder 本願の発明者らはさらにP31のPre−S領域のアミ
ノ酸配列のうち、親水性部位で各サブタイプ間に共通の
部分を選び、これを化学的に合成してそのPo1y−U
SAとの反応性と免疫冷性を調べた。その結果、^Sp
−Pro−Arg−Va I −Ar g−G I y
−Leu−Tyr−Phe (or−Leu) −Pr
o−A I a−Gly−Gly−Ser−Ser−S
er−Gly−Thr−Valのンーケンスを含有する
合成ポリペブタイド(Aspペプクィド)とPo1y−
ISA受容体を持たないflBsAg小型粒子との結合
物は人spペプタイドを介してPo1y−USAと結合
する事が明らかになっtこ(表1)。 まtここの人s
pペプタイドは免疫原性をも有することを見出し、これ
をB型肝炎ウィルスに対するワクチンとすることを発明
した。即ち、この人spペプタイドをモルモットに免疫
して得られた抗血清ば、HBeAg陽性血清から精製し
たffBsAgと結合したが、 HBeAb陽性血清か
ら精製したHBsA4とは殆ど結合しなかった。このこ
とにより、とのAspペプタイドに対する抗体がB型肝
炎つィルス上のPo1y−■SA受容体をブロックしB
型肝炎ウィルスがPo1y−USAを介してヒト肝細胞
に付着するのを阻止できろ効率の高いワクチンであるこ
とが明らかになった。
更に、Aspペプタイド、精製P31、SDS+2ME
処理したHBsAgを免疫して得られたモノクローナル
抗体のうちAspペプタイドに対する抗体は金側Po1
y−HS人とHBsAHの結合を阻止した(表2)。即
ち、^spペブクイドは非常に効率の高い合成ワクチン
であることが明らかになった。なお特許請求の範囲第1
項記載のベプタイドのうち、第9番目のアミノ酸残基は
ロイシンに置き換えることができる。
処理したHBsAgを免疫して得られたモノクローナル
抗体のうちAspペプタイドに対する抗体は金側Po1
y−HS人とHBsAHの結合を阻止した(表2)。即
ち、^spペブクイドは非常に効率の高い合成ワクチン
であることが明らかになった。なお特許請求の範囲第1
項記載のベプタイドのうち、第9番目のアミノ酸残基は
ロイシンに置き換えることができる。
これはPre−5領域のアミノ酸配列がサブタイプ間で
異なり、adrでフェニルアラニンであるのに対しad
wではロイシンであることに基づく。シカし、19残基
のアミノ酸からなル合成ペプタイドを免疫して冑られる
抗体ハ、&dw型HBsAgとも結合し、サブタイプ共
通のものであることがわかった。特許請求範囲第1項の
ベプタイドはMerrifieldらの方法(Merr
ifield RB Adv、Enzy+me。
異なり、adrでフェニルアラニンであるのに対しad
wではロイシンであることに基づく。シカし、19残基
のアミノ酸からなル合成ペプタイドを免疫して冑られる
抗体ハ、&dw型HBsAgとも結合し、サブタイプ共
通のものであることがわかった。特許請求範囲第1項の
ベプタイドはMerrifieldらの方法(Merr
ifield RB Adv、Enzy+me。
1ヱ 221−296,1969)によろ固相法で合成
され、合成後、6N−IC+、110℃、24時間、減
圧下で加水分解後、アミノ酸組成を確認したものである
。
され、合成後、6N−IC+、110℃、24時間、減
圧下で加水分解後、アミノ酸組成を確認したものである
。
以下、本発明にかかる各ペプクィドについて製造及び免
疫学的検定の実施例を述べる。
疫学的検定の実施例を述べる。
実施例1
本発明のポリペブタイドP31. P35を次の方法に
よって製造した。
よって製造した。
tll ’HBsAg粒子の精製
[(BeAg陽性で、サブタイプがadrのj(Bs抗
原価(R−PHA価)が高い血漿をプールし、37.
Go。
原価(R−PHA価)が高い血漿をプールし、37.
Go。
×g、16時間の遠心を行い、Dane粒子をベレット
として除去した。上清中の小型粒子を、KBrによる浮
上超遠心と蔗糖のよるレート(rate)超遠心によっ
て得た。
として除去した。上清中の小型粒子を、KBrによる浮
上超遠心と蔗糖のよるレート(rate)超遠心によっ
て得た。
(2) アクリルアミドゲル電気泳動600mgの精
製HBs抗原粒子を1%(、/V)SOSおよび1%(
v/v) 2 MEを含む0.01Mトリス−塩酸m衝
液(PH8、0)で90m1にして37℃30分インキ
ュベートして構成ポリペブタイドに分解した。そのポリ
ペブタイドをMaizelの方法に従ってMaero
Pageの装置を用い、直径9cm高さ9e+oのポ
リアクリルアミドカラムによる調製用ゲル電気泳動にか
けた。サンプルを9%ポリアクリルアミドゲルで作った
分離用ゲルの上に作製した濃縮ゲル(3%)上にアプラ
イした。50V定電圧で2℃で泳動し、30分毎に分画
した。HBsAgポリペブタイドはセファデックスG−
25で脱塩後、凍結乾燥した。分析用ゲル電気泳動は5
DS−ポリアクリルアミドゲルにより、Hoeffer
社スラブゲル電気泳動装置を用いて行った。
製HBs抗原粒子を1%(、/V)SOSおよび1%(
v/v) 2 MEを含む0.01Mトリス−塩酸m衝
液(PH8、0)で90m1にして37℃30分インキ
ュベートして構成ポリペブタイドに分解した。そのポリ
ペブタイドをMaizelの方法に従ってMaero
Pageの装置を用い、直径9cm高さ9e+oのポ
リアクリルアミドカラムによる調製用ゲル電気泳動にか
けた。サンプルを9%ポリアクリルアミドゲルで作った
分離用ゲルの上に作製した濃縮ゲル(3%)上にアプラ
イした。50V定電圧で2℃で泳動し、30分毎に分画
した。HBsAgポリペブタイドはセファデックスG−
25で脱塩後、凍結乾燥した。分析用ゲル電気泳動は5
DS−ポリアクリルアミドゲルにより、Hoeffer
社スラブゲル電気泳動装置を用いて行った。
(即ち、サンプルに指示薬としてブロモフェノールブル
ーを加え、その指示薬が濃縮ゲル(3%)内を通過して
いる間は15mAで、また分離用ゲル(10%)に入っ
てからは30+nAで泳動した。泳動後、蛋白質は、0
05%(w/v)クーマンンーブリリアントブルー染色
し、糖はZaehariusらの方法によるPAS染色
により染色した。これにより構成ポリペブタイドの1つ
としてP31. P35を得た(第2図)。構成ポリペ
ブタイド量は蛋白染色したゲルをAuto 5can
ner (ヘレナ社)を用い550nmの波長でスキャ
ンして求めた。不純物除去ののち精製した。
ーを加え、その指示薬が濃縮ゲル(3%)内を通過して
いる間は15mAで、また分離用ゲル(10%)に入っ
てからは30+nAで泳動した。泳動後、蛋白質は、0
05%(w/v)クーマンンーブリリアントブルー染色
し、糖はZaehariusらの方法によるPAS染色
により染色した。これにより構成ポリペブタイドの1つ
としてP31. P35を得た(第2図)。構成ポリペ
ブタイド量は蛋白染色したゲルをAuto 5can
ner (ヘレナ社)を用い550nmの波長でスキャ
ンして求めた。不純物除去ののち精製した。
実施例2
Aspペプタイドを
次の方法によって製造した。
Merrifieldの固相法に基づき、ベプタイドの
C末端のアミノ酸をまず架橋ポリスチレンに縮合させて
おき、ついでN末端の方向に向かって、t−ブトキシカ
ルボニルアミノ酸を1個ずっ1:に次縮むさせていき、
Asp−Pro−人rg−Vat−Arg−Gly−L
eu−Tyr−Phe−Pro−Ala−Gly−Gl
y−Ser−Set−Ser−Gly−Thr−Val
のシーケンスからなるポリペブタイド(人spペプタイ
ド)を合成した。
C末端のアミノ酸をまず架橋ポリスチレンに縮合させて
おき、ついでN末端の方向に向かって、t−ブトキシカ
ルボニルアミノ酸を1個ずっ1:に次縮むさせていき、
Asp−Pro−人rg−Vat−Arg−Gly−L
eu−Tyr−Phe−Pro−Ala−Gly−Gl
y−Ser−Set−Ser−Gly−Thr−Val
のシーケンスからなるポリペブタイド(人spペプタイ
ド)を合成した。
またAspペプタイドの第9アミノ酸残基をLeuに置
換えしたポリペブタイドを合成した。
換えしたポリペブタイドを合成した。
合成後、6N−[(CI、110℃、24時間、減圧下
で加水分解後、アミノ酸組成を確認した。
で加水分解後、アミノ酸組成を確認した。
実施例3
ポリペブタイドP31. P35の免疫原性(ワクチン
効果)を次の方法により確認した。
効果)を次の方法により確認した。
(1)本発明のポリペブタイドP31のPo1y−41
S八に対する反応性をHBeAg陽性の血漿から分離し
たHBsAg粒子、P35(ポリペブタイドP31に糖
が結合したもの) 、P22 (第2図参照) 、P2
7 (P22に糖が結合したもの)のPo1y−Is人
に対する反応性と比較した。固相としてPo1y H5
A、ラベル第2抗体として抗HBs抗体を用いてサンミ
ニウィッチ法により調べた。
S八に対する反応性をHBeAg陽性の血漿から分離し
たHBsAg粒子、P35(ポリペブタイドP31に糖
が結合したもの) 、P22 (第2図参照) 、P2
7 (P22に糖が結合したもの)のPo1y−Is人
に対する反応性と比較した。固相としてPo1y H5
A、ラベル第2抗体として抗HBs抗体を用いてサンミ
ニウィッチ法により調べた。
その結果、P31. P35の滴定曲線はHBeAg陽
性血から得た[(B s A g粒子のものと同一であ
って、Po1y−HS人に対する反応性が認められた。
性血から得た[(B s A g粒子のものと同一であ
って、Po1y−HS人に対する反応性が認められた。
他方1P22. P27は、いずれもPo1y−HS人
と反応しなかった(第3図)。
と反応しなかった(第3図)。
また、HBsAg粒子および上記各ポリペブタイト;ヨ
モノメリツクな血清アルブミンとは結合しなかった。
モノメリツクな血清アルブミンとは結合しなかった。
(2)種特異性
ヒトおよびチンパンジーのみがB型肝炎ウィルス(HB
V)に感受性を有し、その他の動物はHBVに対する感
受性を有しない。
V)に感受性を有し、その他の動物はHBVに対する感
受性を有しない。
そこで、本発明のP31の種特異性を調査した。
種々の動物の重合アルブミンをマイクロタイタープレー
トの穴にツー1−シてP31との反応性を検査したとこ
ろヒトおよびチンパンジーの重合アルブミンはP31と
結合したが、ウサギ、牛、マウス、馬、卵白、ウッドチ
ャックの重合アルブミンはP31と結合しなかった(第
4図)。
トの穴にツー1−シてP31との反応性を検査したとこ
ろヒトおよびチンパンジーの重合アルブミンはP31と
結合したが、ウサギ、牛、マウス、馬、卵白、ウッドチ
ャックの重合アルブミンはP31と結合しなかった(第
4図)。
実施例4
A s pペプタイドの免疫
原性(ワクチン効果)を次の方法により確認した。
(1)卵白アルブミ:/ (OVA ovalbun
+in)とベプタイドのカップリング ペブクィドはカップリング試薬として1−エチル−3(
3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(Sig
ma chemical U、S、A、)を用いて
、キャリアープロティンである卵白アルブミン(Sig
ma chemical U、S、A、)に結合させた
。
+in)とベプタイドのカップリング ペブクィドはカップリング試薬として1−エチル−3(
3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド(Sig
ma chemical U、S、A、)を用いて
、キャリアープロティンである卵白アルブミン(Sig
ma chemical U、S、A、)に結合させた
。
即ち合成ペプタイド5mgとOVA1 、5 mgを0
5m1の生理的食塩水に溶がし、15mgのカップリン
グ試薬を加えた後、室温で、1晩反応させた後、生理的
食塩水に対し2日間透析した。
5m1の生理的食塩水に溶がし、15mgのカップリン
グ試薬を加えた後、室温で、1晩反応させた後、生理的
食塩水に対し2日間透析した。
(2)免疫
メスのHartley系のモルモジ1・に1mgペプク
イドー卵白卵白アルブミン物0.1mlを0 、2 m
lフロイントの完全アジュバントとのエマルジョンとし
て皮下に接種した。4週間後に同様に追加免疫を行い、
更にその1週間後に心臓穿刺により採血し、血液を凝固
させ遠心分離により血清を得た。
イドー卵白卵白アルブミン物0.1mlを0 、2 m
lフロイントの完全アジュバントとのエマルジョンとし
て皮下に接種した。4週間後に同様に追加免疫を行い、
更にその1週間後に心臓穿刺により採血し、血液を凝固
させ遠心分離により血清を得た。
(31検定(ラジオイムノアッセイ)
ポリビニルマイクロタイタープレートを用いサンドウィ
ッチ法去、インヒビジョン法でアッセイした。
ッチ法去、インヒビジョン法でアッセイした。
即ち、サンドウィッチ法では固相として重合ヒトアルブ
ミン、マウス抗Pre−sモノクローナル抗体、精製+
(BsAg (adr、 flBelBe人血陽性血清
(Re A b陽性血清由来)精製t(BsAg(ad
w、 HBeAg陽性血清)、プロナーゼ処理!(Bs
Ag (adr)、f[BsAgポリペブタイドP31
、P22、合成ペプクイドを各々につき、100μg/
mlの濃度の溶液100μmをウェルに入れ室温1時間
吸着させたものを用いた。
ミン、マウス抗Pre−sモノクローナル抗体、精製+
(BsAg (adr、 flBelBe人血陽性血清
(Re A b陽性血清由来)精製t(BsAg(ad
w、 HBeAg陽性血清)、プロナーゼ処理!(Bs
Ag (adr)、f[BsAgポリペブタイドP31
、P22、合成ペプクイドを各々につき、100μg/
mlの濃度の溶液100μmをウェルに入れ室温1時間
吸着させたものを用いた。
テストサンプル50μlを穴に入れ、37℃90分イン
キュベート後125■ラベル抗HBs抗体、抗Pre−
Sモノクローナル抗体あるいはP31を各72につき1
00μl入れ、37℃、90分、インキュベートした。
キュベート後125■ラベル抗HBs抗体、抗Pre−
Sモノクローナル抗体あるいはP31を各72につき1
00μl入れ、37℃、90分、インキュベートした。
ウェルを切り取りその放射活性を測定した。
各ステップの間は生理的食塩水で5回洗浄した。
インヒビジョン法では、テストサンプル50μlと12
5Iラベル抗Pre−Sモノクロナール抗体50μmを
37℃、90分インキュベートし、その混合物50μl
をP31でコートシたウェルに入れ37℃、90分、イ
ンキュベートした。サンプルのかわりに、緩衝液を用い
た0%インヒビジョンをもとにテストサンプルの結果を
%インヒビシランで示した。尚、ヨード(1)ラベルは
クロラミンT法(Green*ood、F、C,(19
63)Biochen+1ca1. J、 89 。
5Iラベル抗Pre−Sモノクロナール抗体50μmを
37℃、90分インキュベートし、その混合物50μl
をP31でコートシたウェルに入れ37℃、90分、イ
ンキュベートした。サンプルのかわりに、緩衝液を用い
た0%インヒビジョンをもとにテストサンプルの結果を
%インヒビシランで示した。尚、ヨード(1)ラベルは
クロラミンT法(Green*ood、F、C,(19
63)Biochen+1ca1. J、 89 。
114−123)により行い、得られた放射ラベル物質
の比活性は5μCi/μgであった。
の比活性は5μCi/μgであった。
(4) モノクローナル抗体の作成
りalb/cマウス(雌)の腹腔に、Aspペブタ、イ
ド、P31、SDS+2ME処理HBs人gを各々、7
” インド(7)完全アジュバントとのエマルジョン
として注入した。3週後人spペプタイド他各々で追加
免疫し3日後に牌鐵細胞(spleen cell)を
得た。
ド、P31、SDS+2ME処理HBs人gを各々、7
” インド(7)完全アジュバントとのエマルジョン
として注入した。3週後人spペプタイド他各々で追加
免疫し3日後に牌鐵細胞(spleen cell)を
得た。
融合(+(ybridization) 、クロ“ニン
グ、およびそれに続く培養はOi and Herze
nbergの方法(Oi、V、Tら Immunogl
obulin producing hybrid
cell 1ines、 In 5elec
ted methodsin cellular
Immunology、 Freeman an
dCo、 San Francisco 351−
372.1980)に従って行っt二。
グ、およびそれに続く培養はOi and Herze
nbergの方法(Oi、V、Tら Immunogl
obulin producing hybrid
cell 1ines、 In 5elec
ted methodsin cellular
Immunology、 Freeman an
dCo、 San Francisco 351−
372.1980)に従って行っt二。
各々の抗体の選択は、例えばP31ではHBeAg陽性
血漿から精製した11 B s A g粒子とそれをプ
ロナーゼE(科研科学!!りて軽く処理しP31とP3
5を消失させたHBsAg粒子をヒツジ赤血球に結合さ
せたものを用いPHA法 (Vyas G、Nら 5c
ience170 332−333 1970)で行っ
た。
血漿から精製した11 B s A g粒子とそれをプ
ロナーゼE(科研科学!!りて軽く処理しP31とP3
5を消失させたHBsAg粒子をヒツジ赤血球に結合さ
せたものを用いPHA法 (Vyas G、Nら 5c
ience170 332−333 1970)で行っ
た。
抗体の特異性はP31あるいはP22を固相化し125
Iラヘルの抗マウスIgG (Rabbit)を2次抗
体としたラジオイムノアッセイにより調べた。
Iラヘルの抗マウスIgG (Rabbit)を2次抗
体としたラジオイムノアッセイにより調べた。
各々の抗体を分泌するクローンはマウスの復腔で増殖さ
せた。腹水を得、133M 硫安で塩析後セフアゾ・マウスG200 (ファルマ
シア社製)のゲル濾過を行った。
せた。腹水を得、133M 硫安で塩析後セフアゾ・マウスG200 (ファルマ
シア社製)のゲル濾過を行った。
(5) モノクローナル抗体と各ペブタイドとの反応
入spベプタイドと反応をよくするモノクローナル抗体
IgGクラスの8種類を使って、PO131−HS人と
HBsAgの反応を阻害するかをラジオイムノアッセイ
、サンドイツチ法て調べt:ところ全鋼が結合を阻止し
た(表2)。
IgGクラスの8種類を使って、PO131−HS人と
HBsAgの反応を阻害するかをラジオイムノアッセイ
、サンドイツチ法て調べt:ところ全鋼が結合を阻止し
た(表2)。
強力なワクチン効果が得られtこ。
(6) ペブクイドの免疫原性特性
ペプタイドの免疫原性特性(immunogenici
ty)を調べるために、ペプクイドをOVAに結合させ
た結合物(1+H)をフロイントの完全アジュバントと
の懸濁液として、3匹のモルモットの皮下に免疫した。
ty)を調べるために、ペプクイドをOVAに結合させ
た結合物(1+H)をフロイントの完全アジュバントと
の懸濁液として、3匹のモルモットの皮下に免疫した。
4週間後に追加免疫しその1週間後、採血した。 凝塊
(clot)後、得られた血清について、サンドウィッ
チ法によるラジオイムノアッセイにより、抗体の検定(
assay)を行った。
(clot)後、得られた血清について、サンドウィッ
チ法によるラジオイムノアッセイにより、抗体の検定(
assay)を行った。
即ち、固相に、HBe人g陽性血から精製したHBsA
g(adr、 adw)そのHBsAg (adr)を
プロナーゼ処理したもの、HBeAg陽性血から精製し
たHBs (adr)、およびrf B s A gポ
リペブタイドP31. P22を用いて、サンプルをイ
ンキュベーション後、”’I−P31と反応させ、放射
活性を測定した(表3)。
g(adr、 adw)そのHBsAg (adr)を
プロナーゼ処理したもの、HBeAg陽性血から精製し
たHBs (adr)、およびrf B s A gポ
リペブタイドP31. P22を用いて、サンプルをイ
ンキュベーション後、”’I−P31と反応させ、放射
活性を測定した(表3)。
ペプクィドを免疫された3匹のモルモットがら得られた
血lnはいずれも合成ペプタイドと反応した。更にP3
1 (adr)およびHBe八gへ性血から精製したH
BsAg (adr、 ads) とも結合した。
血lnはいずれも合成ペプタイドと反応した。更にP3
1 (adr)およびHBe八gへ性血から精製したH
BsAg (adr、 ads) とも結合した。
しかし、一方Pronase処理する事によりP31と
P35が消失したHBsAg (adr) 、t[Be
Ab陽性血から精製したH B s A gおよびP2
2との反応性は低かった。この結果から、このペプタイ
ドはモルモットに主としてポリペブタイドP3+、P3
5含量の多いHBeAg陽性1「[中のIT B sA
tと結合し、しかもadrとadwの共通部分と反応す
る抗体を作らせろことが解った。
P35が消失したHBsAg (adr) 、t[Be
Ab陽性血から精製したH B s A gおよびP2
2との反応性は低かった。この結果から、このペプタイ
ドはモルモットに主としてポリペブタイドP3+、P3
5含量の多いHBeAg陽性1「[中のIT B sA
tと結合し、しかもadrとadwの共通部分と反応す
る抗体を作らせろことが解った。
第9アミノ酸残基をLeuとしたAspペゴタイドにつ
いても検査し、その免疫原性を確認した。
いても検査し、その免疫原性を確認した。
実施例5
P r e Svt域ペプタイドの反応性について調べ
た。
た。
(11P31のPreS領域に対するモノクローナル抗
体nyt+44osの特異性を(表4)に示した。この
抗体はP31との反応性は高いがP22との反応性は低
い事からPreS領域に特異的であることがtr? っ
を二。
体nyt+44osの特異性を(表4)に示した。この
抗体はP31との反応性は高いがP22との反応性は低
い事からPreS領域に特異的であることがtr? っ
を二。
(21P31からのPre−s領域ペブクイドの分離。
P3]はP22のN末端アミノ酸Metの上流に55残
基のアミノ酸からなるペプタイドが結合したものと推測
され、また、Pre−S領域にはMetはN末端にのみ
存在するので、P31をCNBrで開裂することにより
Pre−S領域のベプタイドを単離した。ここでHBs
Ag粒子およびP31を70%ギ酸、0 、1 NHC
lで処理するとPo1y−IISA受容体は完全に失活
するのでSDS溶液中でCNBr開裂を行った。このペ
プタイドのアミノ酸分析値から、アラニンを4残基とし
て他のアミノ酸残基数を計算した。
基のアミノ酸からなるペプタイドが結合したものと推測
され、また、Pre−S領域にはMetはN末端にのみ
存在するので、P31をCNBrで開裂することにより
Pre−S領域のベプタイドを単離した。ここでHBs
Ag粒子およびP31を70%ギ酸、0 、1 NHC
lで処理するとPo1y−IISA受容体は完全に失活
するのでSDS溶液中でCNBr開裂を行った。このペ
プタイドのアミノ酸分析値から、アラニンを4残基とし
て他のアミノ酸残基数を計算した。
その結果、HBV−DN人塩基配列から推定されるPr
eS領域のアミノ酸組成(adr)とよく一致した。
eS領域のアミノ酸組成(adr)とよく一致した。
(3) 抗preSモ/クローナル抗体とP31のP
reSペプクイドとの反応。
reSペプクイドとの反応。
単離したPreSベプタイドとP31を免疫して得たモ
ノクローナル抗体Hyb−4408との反応をインヒビ
ジョンテストによって調べた。即ち、種々の濃度のPr
e−Sベプタイドと125IラベルHyb−4408を
予めインキュベートしておき、この混合物をP31を固
相したウェルに入れ、インキュベート後カウントを測定
した。Pre−Sペプタイドのかわりに生理的食塩水を
用いたものをθ%インヒビシミンコンl−o−ノνとし
、表5に示した。Pre−Sペプタイドの濃度が増加す
るにっれP31と1251 uyb44osとの反応の
阻害は大きくなり、3〜100μs/mgでははゾ直線
関係が見られた。この事により単離されたPreSペプ
タイドは抗Pre−Sモノクローナ、し抗体(Hyb4
40g)と結合することが解った。
ノクローナル抗体Hyb−4408との反応をインヒビ
ジョンテストによって調べた。即ち、種々の濃度のPr
e−Sベプタイドと125IラベルHyb−4408を
予めインキュベートしておき、この混合物をP31を固
相したウェルに入れ、インキュベート後カウントを測定
した。Pre−Sペプタイドのかわりに生理的食塩水を
用いたものをθ%インヒビシミンコンl−o−ノνとし
、表5に示した。Pre−Sペプタイドの濃度が増加す
るにっれP31と1251 uyb44osとの反応の
阻害は大きくなり、3〜100μs/mgでははゾ直線
関係が見られた。この事により単離されたPreSペプ
タイドは抗Pre−Sモノクローナ、し抗体(Hyb4
40g)と結合することが解った。
(41Po1yHSAとPre−Sペプタイドとの結合
。
。
単離したPreSペプタイドとPo1y)ISAの反応
性をpolyHsAを固相に、第2ラベル抗体として抗
Pre−Sモノクローナル抗体を用いtこサントイ・フ
チ法によるラジオイムノアッセイ法で調べた。
性をpolyHsAを固相に、第2ラベル抗体として抗
Pre−Sモノクローナル抗体を用いtこサントイ・フ
チ法によるラジオイムノアッセイ法で調べた。
(表6)に示したようにPreSペプタイドはPo l
y−ISAと結合することが明らかになり、P31の
Pre−3領域にPo1y−US人受容体が存在する乙
とが解った。
y−ISAと結合することが明らかになり、P31の
Pre−3領域にPo1y−US人受容体が存在する乙
とが解った。
表−1人spペプクイド−HBs、 HBs抗原(FA
レセプクーe)P31と重合アルブミンの反応 方法 固相に重合アルブミン、ラベル第2抗体に抗H
BS抗体(ウマ)を使っ たサンドイツチ法 抗体(ウマ) (epm) a: Asp−ペプタイドーHBs b= HBs抗原(PAL、セプター6) #80
e: HBs抗原(PAレセプター69)#122d=
P31 E:陰性コントロール 及二胆 抗Pre−Sモノクローナル抗体の性状方法 人3p。
レセプクーe)P31と重合アルブミンの反応 方法 固相に重合アルブミン、ラベル第2抗体に抗H
BS抗体(ウマ)を使っ たサンドイツチ法 抗体(ウマ) (epm) a: Asp−ペプタイドーHBs b= HBs抗原(PAL、セプター6) #80
e: HBs抗原(PAレセプター69)#122d=
P31 E:陰性コントロール 及二胆 抗Pre−Sモノクローナル抗体の性状方法 人3p。
固相に人spポリペブタイド、ラベル第2抗体に抗マウ
ス血清を用いたサンドイツチ法。
ス血清を用いたサンドイツチ法。
2人阻害
固相にp−Hs人(又はP−CSA) 、ラベル第2抗
体に抗HBs抗体を用い、P人しセプクーをもっHBs
Agを試料と混和した阻止法 (cpn) ※ Aspペプタイドを免疫して得られたモノクローナ
ル抗体 及ユ3 0VA結合ペプタイドの免疫原性抗 体
価 (cpIII) 表、14 F[BV・DNAのPre−S領域にコー
ドされろアミノ酸配列に対するモノクローナル抗体(N
。
体に抗HBs抗体を用い、P人しセプクーをもっHBs
Agを試料と混和した阻止法 (cpn) ※ Aspペプタイドを免疫して得られたモノクローナ
ル抗体 及ユ3 0VA結合ペプタイドの免疫原性抗 体
価 (cpIII) 表、14 F[BV・DNAのPre−S領域にコー
ドされろアミノ酸配列に対するモノクローナル抗体(N
。
4408)の特異性※1
※1 様々な材料から得たHBs抗原と[(Bs抗原ポ
リペブタイド(50μg/ml)をマイクロプレー1・
のウェルにツー1−シ、アイソト−プラベルシタPre
−Sアミノ酸配列に対するモノクロナル抗体(anti
−Pre−S No、4408: IX 10’cpm
)との反応性を調べた。
リペブタイド(50μg/ml)をマイクロプレー1・
のウェルにツー1−シ、アイソト−プラベルシタPre
−Sアミノ酸配列に対するモノクロナル抗体(anti
−Pre−S No、4408: IX 10’cpm
)との反応性を調べた。
※2 正常マウス血清のIgG分両
※3 プロナーゼ処理によりpoly−f(SAへのレ
セプターを失ったHBs抗原粒子 +1BV、DNA= B型肝炎ウィルスデオキシリボ核
酸 HBeAg = B型肝炎e抗原 !IBsへg =B型肝炎S抗原 TgG =免疫グロブリンG Lu 抗Pre−Sモ/クローナル抗体Hyb−44
08と★ 試料(50μl)と125I抗T’re−S
モノクロナル抗体(50μl)を37℃、90分で混合
、インキュベート後50μlをとり、P31で固相され
たウェルに入れ、37℃、90分の阻止反応によった。
セプターを失ったHBs抗原粒子 +1BV、DNA= B型肝炎ウィルスデオキシリボ核
酸 HBeAg = B型肝炎e抗原 !IBsへg =B型肝炎S抗原 TgG =免疫グロブリンG Lu 抗Pre−Sモ/クローナル抗体Hyb−44
08と★ 試料(50μl)と125I抗T’re−S
モノクロナル抗体(50μl)を37℃、90分で混合
、インキュベート後50μlをとり、P31で固相され
たウェルに入れ、37℃、90分の阻止反応によった。
友二6 Pre−Sペプタイド上にpoly−HS人
レセプターが存在する証明 ※ 50μlのサンプルをpoly−HS人でコートし
たウェルに入れた。アイソトープラベル抗PreSモノ
クローナル抗体(Hyb−4408)を第二抗体として
用い、ウェルの放射能活性を測定
レセプターが存在する証明 ※ 50μlのサンプルをpoly−HS人でコートし
たウェルに入れた。アイソトープラベル抗PreSモノ
クローナル抗体(Hyb−4408)を第二抗体として
用い、ウェルの放射能活性を測定
第1図は、ポリペブタイド(P22. P27)とPo
1y−)Is人への結合部位を持つポリペブタイド(P
31゜P35)の構成図(aaはアミノ酸残基)。 第2図は、HBs抗原ポリペブタイドのSDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動 構成ペプタイドに分解されたHBs抗原粒子(A)をP
35 (B) 、 P31 (C) と同様に分析用S
DSゲル電気泳動し、タンパクと炭水化物について染色
を行った。(A’、 B′、 C’)矢印はP35.
P31. P27. P22の位置を示す。 第3図は、HBs抗原ポリペブタイドとヒト血清重合ア
ルブミンの反応性を示す。 HBe抗原陽性血漿より得た20nmのlIn5抗原粒
子と3種のHBs抗原ポリペブタイド(P31゜P35
. P22)をpoly−1(SAテ:2− トしたウ
ェル中でインキュベートした。結合したポリペブタイド
、および粒子はアイソI・−プラペル抗HBs抗体で検
出した。 黒丸(1)はP31.白丸(2)はP35.白三角(3
)はP22゜黒三角(4)はHBs抗原粒子を示す。 P27はP22と類似した結合曲線を示した。 第4図は、種々の動物種の重合アルブミンによるP31
のヒト血ii1重合アルブミンへの結合の阻害を示す。 P31はl震度を段階的に上げたヒト血清重合アルブミ
ン、チンパンジー重合アルブミンとインキュベートし、
Po1y−1(S人でコートシたウェルへ移した。ウェ
ルは洗浄し、結合したP31をアイソト−プラベル抗H
Bs抗体で検出した。 固定化したPo1y−[rS八とP31の結合阻害率(
%)で結果を示した。 黒丸Aはヒト重合アルブミン、白四角Bはチンパンジー
重合アルブミンを示す。 他の動物の重合アルブミンによる阻害は1濃度(1mg
7/+l)で行い矢印で示した。 Cはウサギ、Dはウシ、Eはマウス、Fはウマ、Gは卵
白、Hはウッドチャックを示す。 第3図 ↓ HBs杭)71μ3 々ぴ ポリペブタイドのメ訪 0
;y/sL)不牛図 6 補正の対象 特許庁長官 小 川 邦 夫 殴1 事件の表示 昭和62年特許願第268041号 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 東京都杉並区荻窪4−28−14−701中村 徹雄 4 代理人 東京都港区赤坂2丁目17番54号 パレロワイヤル赤坂1号館919号室 5 補正命令の日付 7 補正の内容 別紙添付の第2図のとおり 8 添付書類の目録 第2図
1y−)Is人への結合部位を持つポリペブタイド(P
31゜P35)の構成図(aaはアミノ酸残基)。 第2図は、HBs抗原ポリペブタイドのSDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動 構成ペプタイドに分解されたHBs抗原粒子(A)をP
35 (B) 、 P31 (C) と同様に分析用S
DSゲル電気泳動し、タンパクと炭水化物について染色
を行った。(A’、 B′、 C’)矢印はP35.
P31. P27. P22の位置を示す。 第3図は、HBs抗原ポリペブタイドとヒト血清重合ア
ルブミンの反応性を示す。 HBe抗原陽性血漿より得た20nmのlIn5抗原粒
子と3種のHBs抗原ポリペブタイド(P31゜P35
. P22)をpoly−1(SAテ:2− トしたウ
ェル中でインキュベートした。結合したポリペブタイド
、および粒子はアイソI・−プラペル抗HBs抗体で検
出した。 黒丸(1)はP31.白丸(2)はP35.白三角(3
)はP22゜黒三角(4)はHBs抗原粒子を示す。 P27はP22と類似した結合曲線を示した。 第4図は、種々の動物種の重合アルブミンによるP31
のヒト血ii1重合アルブミンへの結合の阻害を示す。 P31はl震度を段階的に上げたヒト血清重合アルブミ
ン、チンパンジー重合アルブミンとインキュベートし、
Po1y−1(S人でコートシたウェルへ移した。ウェ
ルは洗浄し、結合したP31をアイソト−プラベル抗H
Bs抗体で検出した。 固定化したPo1y−[rS八とP31の結合阻害率(
%)で結果を示した。 黒丸Aはヒト重合アルブミン、白四角Bはチンパンジー
重合アルブミンを示す。 他の動物の重合アルブミンによる阻害は1濃度(1mg
7/+l)で行い矢印で示した。 Cはウサギ、Dはウシ、Eはマウス、Fはウマ、Gは卵
白、Hはウッドチャックを示す。 第3図 ↓ HBs杭)71μ3 々ぴ ポリペブタイドのメ訪 0
;y/sL)不牛図 6 補正の対象 特許庁長官 小 川 邦 夫 殴1 事件の表示 昭和62年特許願第268041号 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 東京都杉並区荻窪4−28−14−701中村 徹雄 4 代理人 東京都港区赤坂2丁目17番54号 パレロワイヤル赤坂1号館919号室 5 補正命令の日付 7 補正の内容 別紙添付の第2図のとおり 8 添付書類の目録 第2図
Claims (2)
- (1)次の理化学的性質を有する、B型肝炎ポリペプタ
イドワクチンP31。 (i)作用 重合したヒト血清アルブミン(Polymeri−ze
d human serum albumin.pol
y−HSA)に対する受容体を有し、B型肝炎ウィルス
の肝細 胞に対する付着を阻止する。 (ii)DNAコード HBV−DNA上の表面蛋白質の主要ポリペプタイドで
あるP22をコードしているS領域(226残基のアミ
ノ酸をコードしている)と、その上流に位置するPre
−S領域(163残基のアミノ酸をコードしている)の
うちP22のN末端から上流に遡った55残基(P8)
のアミノ酸をコードしている領域。 (iii)構成アミノ酸; アスパラギン酸、アスパラギン、スレオ ニン、セリン、グルタミン酸、グルタミン、グリシン、
アラニン、バリン、メチオニン、イソロイシン、ロイシ
ン、チロシン、フェ ニルアラニン、リジン、ヒスチジン、アル ギニン、プロリン、トリプトファン、シス テイン; (iv)1モル中のアミノ酸モル数; アスパラギン酸、約5;アスパラギン、 約9;スレオニン、約24;セリン、 約31;グルタミン酸、約2;グルタ ミン、約8;グリシン、約18;アラ ニン、約9;バリン、約14;メチオ ニン、約7;イソロイシン、約16; ロイシン、約38;チロシン、約6; フェニルアラニン、約20;リジン、約 2;ヒスチジン、約2;アルギニン、 約10;プロリン、約32;トリプトフ ァン、約14;システイン、約14; (v)分子量;約31,000ダルトン(SDS−PA
GE) (vi)安定PH;中性 (vii)温度安定性;100℃、20min、sta
ble(viii)吸収特性;280nmにピーク29
0nmにショルダー - (2)特許請求の範囲第1項のポリペプタイドワクチン
において、N末端より第4番目アミノ酸残基(Asn)
に糖鎖が結合したポリペプタイドP35(分子量約35
,000ダルトン)。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26804187A JPS63264426A (ja) | 1987-10-23 | 1987-10-23 | B型肝炎ワクチン |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26804187A JPS63264426A (ja) | 1987-10-23 | 1987-10-23 | B型肝炎ワクチン |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP15912484A Division JPS6137738A (ja) | 1984-07-31 | 1984-07-31 | B型肝炎ワクチン |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63264426A true JPS63264426A (ja) | 1988-11-01 |
Family
ID=17453055
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP26804187A Pending JPS63264426A (ja) | 1987-10-23 | 1987-10-23 | B型肝炎ワクチン |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63264426A (ja) |
-
1987
- 1987-10-23 JP JP26804187A patent/JPS63264426A/ja active Pending
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