JPS6112296A - L−フエニルアラニンの製造法 - Google Patents
L−フエニルアラニンの製造法Info
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- JPS6112296A JPS6112296A JP13280184A JP13280184A JPS6112296A JP S6112296 A JPS6112296 A JP S6112296A JP 13280184 A JP13280184 A JP 13280184A JP 13280184 A JP13280184 A JP 13280184A JP S6112296 A JPS6112296 A JP S6112296A
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- phenylalanine
- benzylhydantoin
- flavobacterium
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
(産業上の利用分野J
本発明ID−、L−又はDL−5−ベンジルヒダントイ
ンより1.−7エニルアラニンを製造する方法に関する
。
ンより1.−7エニルアラニンを製造する方法に関する
。
【従来技術1
L −’フェニルアラニンは必須アミノ酸の一つであり
、栄養上ちるいは医薬上重要な物質である。 本発明方法の原料である5−ベンジルヒダントインは有
機合成化学的に容易に合成される物質であり、従来、5
−ペンジルヒグントインからL−フェニルアラニンの製
造法として畦、フラボバクテリウIa・アミ/ゲネス[
Flavobacterium amino −−ge
nes ) F ERM −P 3133を5−ベンジ
ルヒf 7 ’j−インに作用させてL−フェニルアラ
ニンを製造するが法が知られている(特公昭54−22
74)。 (発明の目的) 本発明は酵素法によすD−、L−又はDL−5−ベンジ
ルヒダントインからし一フェニルアラニンを効率よく製
造する方法を提供するものである。 (発明の構成及び効果) 本発明者らしよ、0−0L−又はDL−5−ベンジルヒ
ダントインを極めて効率よ(L−フェニルアラニンに転
換する酵素を有する新菌種、フラボバクテリウth・エ
フ、ピーI−3(Flavobacteriumllp
I−33’i土壌から分離することに成功し1本発明を
完成するに至った。 即し1本発明はD−、L−又はDL−5−ペンジルヒグ
ントインからL−フェニルアラニンを生成せしめる能力
を有するフラボバクテリウム・エスピーI−3閑の培養
液1、亥培養液から採取した菌体又は該菌体処1事物を
、D−0L−又はDL −5−ペンジルヒグントインに
作用させ、生成したL−7ヱニルYラニンを採取するこ
とからなるL−7ヱニル了ラニンの製造法である。 木発明に使用される7ラボバグテリウム・エスピー1−
:3菌は木発明&らにより、新たに分離された新菌種で
あり、その菌学的諸性質は以下の通りである。尚1本新
隋種フラボバクテリウム・エスピー1ニー31idl′
gRM−P6901 (微工研菌寄第6901号)とし
て寄託されている。 lal 形 態 細胞の形および大きさ:桿菌、0.4〜0.9 X 1
゜0〜2.0μ 細胞のA形性:なし 運動性:あり0周鞭毛 1泡子:形成しない ダラム染色性:陰性 抗酸性:なし fbl 各培地における生育状態 (1)肉汁寒天下板培養: 生育は適度、金縁、わずかに隆起0表面は消らか、不透
明、うずい衆牙色、光沢あり(2)肉汁寒天斜面培養二 生育は適度、糸状、貨色、光沢あシ (3)肉汁液体培養: 皮膜形成しない、沈殿生成、内層混濁、管壁に沿う輪形
成 (4)肉汁ゼラチン穿刺培蟇: 液化する。 (5) リ ト マ ス ・ ミ ル り :
+I トマス金還元する。液化する ial 生理学的性質 (1)硝酸塩の還元:還元する。・ (2)脱窒反応:陰性 +31 M Rテスト:陰性 141VPテスト:陰性 (5)インドールの生成:陰性 :6)硫化水素の生成:陰性 (7)デンプンの加水分解:陰性 (8)クエン酸の利用: コ−f −培地、シモン培地、クリステンセン培池の(
ハずれでも利用する。 19)無機窒素源の利用: 6t[塩及びアンモニウム塩金利用する。 (11色色素生成:水溶性色素を生成しない11.11
ウレアーゼ:陰・性 ・1zオキシダーゼ:弱陽性 )13)カタラーゼ:陽性 (14)lt * ノ範囲:’pH6−937℃では′
を育しない セ15)酸素に対する態度:血性、嫌気性+161 t
J −Fテスト二オキシデイテイブ117)afflか
ら酸及びガスの生成:以上、■−3菌の菌学的、渚性質
の特徴として(1)桿菌12)運動性、(3)ダラム陰
性、(4)集落は黄色、(5)カタラーゼ陽性、(6)
嫌気性・通性、(7)グルコースを酸化的に徐々に分解
する。などがめげられる。これらの諸性状を基準として
B er g @ 7’B Man u alof D
eterminative Bacteriology
第8版に基づき検索すると、I−3菌はフラボバクテリ
ウムCFlavobactsrium ) 1fi4に
属する細菌であると判断される。しかし7ラボバクテリ
ウム属に含まれる種について史に検索しても上記Ber
gθy′s mnual 第8版には1−3菌と一致
する菌種の記載を見出せない。 Bergey’s Manual K 8版の記載によ
ると、7ラボバグテリウム属に属する12m種のうち、
運動性のあるのはフラボバクテリウム・リゲンゼ(F・
rigen+ie + 、フラボバクテリウム・インド
ルセチカム(It’ −indoltheticum
) + 7ラボバクテリウム・チレニカム(F 1 t
irrenicum )及び7ラボバクテリウムeデボ
ランス(F −dsvorans ] の4菌種であ
る。しかし、■−3閑は37℃で生育しないので明らか
に7ラボバクテリウム・リゲンセトは相違する。7ラボ
バクテリウム・インドルセチカムとは、デンプンの加水
分解性、シヨ糖及(D 還元性の点で相違する。フラボ
バクテリウム・チレニカムとはゼラチン液化性、D−グ
ルコースる。又、フラボバクテリウム・デボランスとは
ショ糖と麦芽糖からの酸の生成性及び硝酸塩の遺児性の
点で相違する。更にBergey’s Manual第
8版には記載されていないが、特公昭54−2274に
5−ベンジルヒダノドインよりL−7エニルアラニンを
生成する酵素を有すると記載されているフラボバクテリ
ウム・アミノゲ′ネス(F・amino8sneg l
i’ E RM −P 3133とは、運動性、コー
ヂー培地でのクエン酸の利用性及び瀾機窒票源の利用性
の点で相違する。 以上のことがらI−3菌を7ラボバクテリウム・4に属
する新m4ftと認め、7ラボバクテリウム・エスピー
■−3(F’lavobacterium 8p I
−3)と命名した。 本発明で使用する微生物を培養する培地としては、炭素
源、窒素源、無機塩類、更に必要ならば5−ベンジルヒ
ダントイン等のアミノ酸ヒダントイン化合物を含有する
通常の培地が使用できる。 炭素源としてはI−3菌の利用可能なものであればいず
7Lも使用することができ8例えばグルコース、7ラク
トース、シュクロース、マルトース。 デ゛+ストリン、グIIセリン、ソルビトールなどのむ
、曙もしくrtI唐アルコール どの汀餞酸が好適に使用できる。窒素源としては、m化
=ンモニ・7ム、blEe−rン亡ニウム、リン酸アン
モニウl” − /i1M11アンモニウム、炭酸アン
モニウム等の無(浸酸アンモニウム塩,フマル酸アンモ
ニウム、クエン酸アンモニウム等の有機酸アンモニウム
塩等を使用することができる。史には.肉エキス、酵母
工←ス.コー システィープリカー。カゼイン加水分解
物IJどの天然有■窒素源を使用することもCきるっ 尚.尺然有(幾窒素源は多くの場合.窒素源であるとと
もVC炭素源にもなシうる。又,無機塩類としては.例
えば゛硝酸第一鉄.硫設マグネシウム、硫酸マンノメン
。リン酸ーカリウム.リン酸二ナトリウム.塩化ナトリ
ウム、塩化力+1ウムなどを適宜(史用することができ
る。咀にDL−5−ベンジルヒダノドイン.DL’75
−(インドール−3−イル−メチル)ヒダントイン等の
アミノ酸ヒダントイン化合物を培地に生殖添加すること
により,よシ高い活性を得ることができる。 培養は.常法により実施すればよく.例えば培地のpH
を5〜8.好ましくは6〜7.5に調整し。 菌株を接種し;kC.後20〜33℃.好ましくは26
〜30°Cで.曲気.攪拌ト16〜72時間行なう。 この様にして得られる培養液は.そのま壕酵累源として
, 、D − 、L−又はDI,−5−ベンジルヒダノ
ドイン;’)h ラLー7℃ニルアラニンへの転換反応
に使用してtよいが.゛また粗酵累標品.精製酵素標品
はもちろん.該培養液から採取した菌体又は該菌体の処
理物【例えば、凍結乾燥菌体,アセトン乾燥菌体,アセ
トン乾燥菌体.菌体磨砕物。 洗浄菌体.菌体の自己消化物.菌体の超音波処理物.菌
体抽出物など】を酵素源として用^ることもできる。更
に.菌体J)るいは歯体処理物?.例えばカラギーナン
ゲル法.ポリアクリルアミド法などの公知方法によF)
4定化して使用することもできる。 D−、L −又!、−f DL−5−ベンジルヒダント
インf I、 −71ニルrラニンに転換する反応は、
D−、L−’、7−はDL−5−ベンジフレヒダントイ
ンと上記:1i¥′A源のいff−1−かとを用い水性
媒体中で実施することができる。該反応は温度20〜6
0℃。 好ましくは30〜45°C、PH6〜10、好ましくは
8〜9に味って行なう。l) −、I、−又、まDL−
5−ベンジルヒダントインの濃Jild、io、t%〜
30幅で実舟することができる。基質を高濃度で用いる
Q&には、該、:に′〆が完全1で溶媒に溶解せず不溶
物となっていCも本反応の;f上行には何ら支障はない
。更に酵素源とじ−C1!■定化した菌体を用いる場合
は、同市化菌体をカラムに充填し7た後、基質含り溶液
に流ドさせる連続法により実施することもできろ。 又1本発明方法においては1反応液中に、適宜界面活性
剤(例えば、臭化セチルI−IJメチルアンモニウム、
トリトンx−iooなど]、有1幾溶媒1Tjtば、ジ
メチルスルホキシドなど】、補酵累
、栄養上ちるいは医薬上重要な物質である。 本発明方法の原料である5−ベンジルヒダントインは有
機合成化学的に容易に合成される物質であり、従来、5
−ペンジルヒグントインからL−フェニルアラニンの製
造法として畦、フラボバクテリウIa・アミ/ゲネス[
Flavobacterium amino −−ge
nes ) F ERM −P 3133を5−ベンジ
ルヒf 7 ’j−インに作用させてL−フェニルアラ
ニンを製造するが法が知られている(特公昭54−22
74)。 (発明の目的) 本発明は酵素法によすD−、L−又はDL−5−ベンジ
ルヒダントインからし一フェニルアラニンを効率よく製
造する方法を提供するものである。 (発明の構成及び効果) 本発明者らしよ、0−0L−又はDL−5−ベンジルヒ
ダントインを極めて効率よ(L−フェニルアラニンに転
換する酵素を有する新菌種、フラボバクテリウth・エ
フ、ピーI−3(Flavobacteriumllp
I−33’i土壌から分離することに成功し1本発明を
完成するに至った。 即し1本発明はD−、L−又はDL−5−ペンジルヒグ
ントインからL−フェニルアラニンを生成せしめる能力
を有するフラボバクテリウム・エスピーI−3閑の培養
液1、亥培養液から採取した菌体又は該菌体処1事物を
、D−0L−又はDL −5−ペンジルヒグントインに
作用させ、生成したL−7ヱニルYラニンを採取するこ
とからなるL−7ヱニル了ラニンの製造法である。 木発明に使用される7ラボバグテリウム・エスピー1−
:3菌は木発明&らにより、新たに分離された新菌種で
あり、その菌学的諸性質は以下の通りである。尚1本新
隋種フラボバクテリウム・エスピー1ニー31idl′
gRM−P6901 (微工研菌寄第6901号)とし
て寄託されている。 lal 形 態 細胞の形および大きさ:桿菌、0.4〜0.9 X 1
゜0〜2.0μ 細胞のA形性:なし 運動性:あり0周鞭毛 1泡子:形成しない ダラム染色性:陰性 抗酸性:なし fbl 各培地における生育状態 (1)肉汁寒天下板培養: 生育は適度、金縁、わずかに隆起0表面は消らか、不透
明、うずい衆牙色、光沢あり(2)肉汁寒天斜面培養二 生育は適度、糸状、貨色、光沢あシ (3)肉汁液体培養: 皮膜形成しない、沈殿生成、内層混濁、管壁に沿う輪形
成 (4)肉汁ゼラチン穿刺培蟇: 液化する。 (5) リ ト マ ス ・ ミ ル り :
+I トマス金還元する。液化する ial 生理学的性質 (1)硝酸塩の還元:還元する。・ (2)脱窒反応:陰性 +31 M Rテスト:陰性 141VPテスト:陰性 (5)インドールの生成:陰性 :6)硫化水素の生成:陰性 (7)デンプンの加水分解:陰性 (8)クエン酸の利用: コ−f −培地、シモン培地、クリステンセン培池の(
ハずれでも利用する。 19)無機窒素源の利用: 6t[塩及びアンモニウム塩金利用する。 (11色色素生成:水溶性色素を生成しない11.11
ウレアーゼ:陰・性 ・1zオキシダーゼ:弱陽性 )13)カタラーゼ:陽性 (14)lt * ノ範囲:’pH6−937℃では′
を育しない セ15)酸素に対する態度:血性、嫌気性+161 t
J −Fテスト二オキシデイテイブ117)afflか
ら酸及びガスの生成:以上、■−3菌の菌学的、渚性質
の特徴として(1)桿菌12)運動性、(3)ダラム陰
性、(4)集落は黄色、(5)カタラーゼ陽性、(6)
嫌気性・通性、(7)グルコースを酸化的に徐々に分解
する。などがめげられる。これらの諸性状を基準として
B er g @ 7’B Man u alof D
eterminative Bacteriology
第8版に基づき検索すると、I−3菌はフラボバクテリ
ウムCFlavobactsrium ) 1fi4に
属する細菌であると判断される。しかし7ラボバクテリ
ウム属に含まれる種について史に検索しても上記Ber
gθy′s mnual 第8版には1−3菌と一致
する菌種の記載を見出せない。 Bergey’s Manual K 8版の記載によ
ると、7ラボバグテリウム属に属する12m種のうち、
運動性のあるのはフラボバクテリウム・リゲンゼ(F・
rigen+ie + 、フラボバクテリウム・インド
ルセチカム(It’ −indoltheticum
) + 7ラボバクテリウム・チレニカム(F 1 t
irrenicum )及び7ラボバクテリウムeデボ
ランス(F −dsvorans ] の4菌種であ
る。しかし、■−3閑は37℃で生育しないので明らか
に7ラボバクテリウム・リゲンセトは相違する。7ラボ
バクテリウム・インドルセチカムとは、デンプンの加水
分解性、シヨ糖及(D 還元性の点で相違する。フラボ
バクテリウム・チレニカムとはゼラチン液化性、D−グ
ルコースる。又、フラボバクテリウム・デボランスとは
ショ糖と麦芽糖からの酸の生成性及び硝酸塩の遺児性の
点で相違する。更にBergey’s Manual第
8版には記載されていないが、特公昭54−2274に
5−ベンジルヒダノドインよりL−7エニルアラニンを
生成する酵素を有すると記載されているフラボバクテリ
ウム・アミノゲ′ネス(F・amino8sneg l
i’ E RM −P 3133とは、運動性、コー
ヂー培地でのクエン酸の利用性及び瀾機窒票源の利用性
の点で相違する。 以上のことがらI−3菌を7ラボバクテリウム・4に属
する新m4ftと認め、7ラボバクテリウム・エスピー
■−3(F’lavobacterium 8p I
−3)と命名した。 本発明で使用する微生物を培養する培地としては、炭素
源、窒素源、無機塩類、更に必要ならば5−ベンジルヒ
ダントイン等のアミノ酸ヒダントイン化合物を含有する
通常の培地が使用できる。 炭素源としてはI−3菌の利用可能なものであればいず
7Lも使用することができ8例えばグルコース、7ラク
トース、シュクロース、マルトース。 デ゛+ストリン、グIIセリン、ソルビトールなどのむ
、曙もしくrtI唐アルコール どの汀餞酸が好適に使用できる。窒素源としては、m化
=ンモニ・7ム、blEe−rン亡ニウム、リン酸アン
モニウl” − /i1M11アンモニウム、炭酸アン
モニウム等の無(浸酸アンモニウム塩,フマル酸アンモ
ニウム、クエン酸アンモニウム等の有機酸アンモニウム
塩等を使用することができる。史には.肉エキス、酵母
工←ス.コー システィープリカー。カゼイン加水分解
物IJどの天然有■窒素源を使用することもCきるっ 尚.尺然有(幾窒素源は多くの場合.窒素源であるとと
もVC炭素源にもなシうる。又,無機塩類としては.例
えば゛硝酸第一鉄.硫設マグネシウム、硫酸マンノメン
。リン酸ーカリウム.リン酸二ナトリウム.塩化ナトリ
ウム、塩化力+1ウムなどを適宜(史用することができ
る。咀にDL−5−ベンジルヒダノドイン.DL’75
−(インドール−3−イル−メチル)ヒダントイン等の
アミノ酸ヒダントイン化合物を培地に生殖添加すること
により,よシ高い活性を得ることができる。 培養は.常法により実施すればよく.例えば培地のpH
を5〜8.好ましくは6〜7.5に調整し。 菌株を接種し;kC.後20〜33℃.好ましくは26
〜30°Cで.曲気.攪拌ト16〜72時間行なう。 この様にして得られる培養液は.そのま壕酵累源として
, 、D − 、L−又はDI,−5−ベンジルヒダノ
ドイン;’)h ラLー7℃ニルアラニンへの転換反応
に使用してtよいが.゛また粗酵累標品.精製酵素標品
はもちろん.該培養液から採取した菌体又は該菌体の処
理物【例えば、凍結乾燥菌体,アセトン乾燥菌体,アセ
トン乾燥菌体.菌体磨砕物。 洗浄菌体.菌体の自己消化物.菌体の超音波処理物.菌
体抽出物など】を酵素源として用^ることもできる。更
に.菌体J)るいは歯体処理物?.例えばカラギーナン
ゲル法.ポリアクリルアミド法などの公知方法によF)
4定化して使用することもできる。 D−、L −又!、−f DL−5−ベンジルヒダント
インf I、 −71ニルrラニンに転換する反応は、
D−、L−’、7−はDL−5−ベンジフレヒダントイ
ンと上記:1i¥′A源のいff−1−かとを用い水性
媒体中で実施することができる。該反応は温度20〜6
0℃。 好ましくは30〜45°C、PH6〜10、好ましくは
8〜9に味って行なう。l) −、I、−又、まDL−
5−ベンジルヒダントインの濃Jild、io、t%〜
30幅で実舟することができる。基質を高濃度で用いる
Q&には、該、:に′〆が完全1で溶媒に溶解せず不溶
物となっていCも本反応の;f上行には何ら支障はない
。更に酵素源とじ−C1!■定化した菌体を用いる場合
は、同市化菌体をカラムに充填し7た後、基質含り溶液
に流ドさせる連続法により実施することもできろ。 又1本発明方法においては1反応液中に、適宜界面活性
剤(例えば、臭化セチルI−IJメチルアンモニウム、
トリトンx−iooなど]、有1幾溶媒1Tjtば、ジ
メチルスルホキシドなど】、補酵累
【例工ば、ピリドキ
サールリン酸など茅、無機イオン(m)えば、マンガン
イtン、マグネシウムイオンなど】を1憬加することに
より反応時間の短縮あるいシまL−フェニルアラニンの
蓄積量の増加に有効な場合がある。 かくして反応開始後1〜100時間で、供したD−、L
−又1dDL〜5−ベンジルヒダントインは完全KL−
フェニルアラニンに転換され1反応液中に蓄積される。 生成したL−フェニルアラニン(徒1通常の結晶化法、
イオン交換(支)脂性その他公知方法全適宜使用するこ
とにより容勿知分離精製することがで与る。。 以下、実施例をあげて本発明方法全具体的に説明する。 尚、実施例中のL−フェニルアラニンの定置ハ液体りロ
マトグラフィー及ヒロイコ/ストック・メツセンチロイ
デスp−60に用いタハイオアフセイ法により行なった
。又L−フェニルアラニンの確認は1反応液からi得し
た結晶L−元元素分析値化比旋光度NMR,IRスペク
トル等と標品のそれと全比較することによジ行なった。 実施例11 11)種菌の培養 グルコース5%、7マル酸アンモニウム0.1%、リン
酸−カリウム0.3<、リン酸二カリウム0゜7呪、硫
胃マグネシウム・7水和物o、oi%、DL−5−+(
ノド−ルー3−イルーメチル]ヒダントイン0.2%を
含りする培地をpH7,0に調整し。 該培地50Wtを50〇−容坂ロフラスコに入れ。 120℃で10分間減菌した。これにfめ肉汁塞天斜面
培池に充分生育させたフラボバクテリウム・エスピー1
−3菌(微工研菌寄第69o1号]を一白金耳接種し、
30℃で24時時間上り(14Q rpm 、振幅7C
1+3培養した。 (2)本培養 デキストリン2%、塩化アンモニウム0.4%。 イーストエキス0.1%、ペプトン0.1%、リン酸−
カリウム0.3%、リン酸二カリウム0.7%、硫酸マ
グネシウム・7′水和物0.01%、@酸第−鉄・7水
和物0.001%、硫酸マンガンo、ooi鴫、DL−
5−(インドール−3−イルーメチル]ヒダントイン0
.5%を含有する培地をPH7,0に調整し、該培地5
0−を50〇−容坂ロフラスコに入れ、120℃で10
分間滅菌した。こ几に(1)で得られた種培養液0.5
4を接種し、30℃で24時時間上う培養した。 (3)酵素反応 (2)の培養液に0L−5−ベンジルヒダントイン1.
5yを加え、水酸化す) IIウムで液性をpH8,5
に調整した後、37℃で16時間反応させた。反応終丁
後1反応液中にはL−フェニルアラニン1゜3y−が生
成蓄積していた(転換率:98%ン。該反応液を遠心分
離により除菌した後、濃縮してL−フェニルアラニンの
粗結晶1.39’i得た。該粗結晶を少曖のアンモニア
水に溶解し、酢酸で中和して結晶化さぜ、−夜冷蔵庫に
放置した後、結晶をろ取することによりL−7エニルア
ラニンの結晶1.1りを取得した。 収率:84呪〔α
)D=−33,8°(C=2.水〕実施例 2 実施例1− (11、(21と同様にして得た本培養液
5゜−から遠心分離にて菌体を採集し、水でけん濁して
104とした。一方、DL−5−ベンジルヒダントイン
57及ヒ臭化七チルトリメチルアンモニウム5m9i2
N 7に酸化ナトリウム約15−に溶解し、2N塩酸
で液性をpH8,5に調整した後、水を加えて40−と
した。両者を混合し、液性をpH8゜5に保持して、3
7℃で16時間反応させた。反応終了後0反応液中には
L−フェニルアラニンが4.37生成蓄積していた(転
換率=97%)。 実施例 3 DL−5−1インドール−3−イル−メチル】ヒダント
イン’1DL−5−ベンジルヒダントインに代える以外
は実施例1−tl)及び(2)と同じ組成の培地を用い
て実施例1− +11 、 +21と同様に培養した。 該培a液200TrJと火施−2と同様に調整したD[
、−5−ベンジルヒダントイン液40−とを混合し、液
性をPH8,5に保持したまま37℃で16時間反応さ
せた。反応終了後0反応液中にはL−フェニルアラニン
4.159が生成蓄積していた(転換率=93呪]。
サールリン酸など茅、無機イオン(m)えば、マンガン
イtン、マグネシウムイオンなど】を1憬加することに
より反応時間の短縮あるいシまL−フェニルアラニンの
蓄積量の増加に有効な場合がある。 かくして反応開始後1〜100時間で、供したD−、L
−又1dDL〜5−ベンジルヒダントインは完全KL−
フェニルアラニンに転換され1反応液中に蓄積される。 生成したL−フェニルアラニン(徒1通常の結晶化法、
イオン交換(支)脂性その他公知方法全適宜使用するこ
とにより容勿知分離精製することがで与る。。 以下、実施例をあげて本発明方法全具体的に説明する。 尚、実施例中のL−フェニルアラニンの定置ハ液体りロ
マトグラフィー及ヒロイコ/ストック・メツセンチロイ
デスp−60に用いタハイオアフセイ法により行なった
。又L−フェニルアラニンの確認は1反応液からi得し
た結晶L−元元素分析値化比旋光度NMR,IRスペク
トル等と標品のそれと全比較することによジ行なった。 実施例11 11)種菌の培養 グルコース5%、7マル酸アンモニウム0.1%、リン
酸−カリウム0.3<、リン酸二カリウム0゜7呪、硫
胃マグネシウム・7水和物o、oi%、DL−5−+(
ノド−ルー3−イルーメチル]ヒダントイン0.2%を
含りする培地をpH7,0に調整し。 該培地50Wtを50〇−容坂ロフラスコに入れ。 120℃で10分間減菌した。これにfめ肉汁塞天斜面
培池に充分生育させたフラボバクテリウム・エスピー1
−3菌(微工研菌寄第69o1号]を一白金耳接種し、
30℃で24時時間上り(14Q rpm 、振幅7C
1+3培養した。 (2)本培養 デキストリン2%、塩化アンモニウム0.4%。 イーストエキス0.1%、ペプトン0.1%、リン酸−
カリウム0.3%、リン酸二カリウム0.7%、硫酸マ
グネシウム・7′水和物0.01%、@酸第−鉄・7水
和物0.001%、硫酸マンガンo、ooi鴫、DL−
5−(インドール−3−イルーメチル]ヒダントイン0
.5%を含有する培地をPH7,0に調整し、該培地5
0−を50〇−容坂ロフラスコに入れ、120℃で10
分間滅菌した。こ几に(1)で得られた種培養液0.5
4を接種し、30℃で24時時間上う培養した。 (3)酵素反応 (2)の培養液に0L−5−ベンジルヒダントイン1.
5yを加え、水酸化す) IIウムで液性をpH8,5
に調整した後、37℃で16時間反応させた。反応終丁
後1反応液中にはL−フェニルアラニン1゜3y−が生
成蓄積していた(転換率:98%ン。該反応液を遠心分
離により除菌した後、濃縮してL−フェニルアラニンの
粗結晶1.39’i得た。該粗結晶を少曖のアンモニア
水に溶解し、酢酸で中和して結晶化さぜ、−夜冷蔵庫に
放置した後、結晶をろ取することによりL−7エニルア
ラニンの結晶1.1りを取得した。 収率:84呪〔α
)D=−33,8°(C=2.水〕実施例 2 実施例1− (11、(21と同様にして得た本培養液
5゜−から遠心分離にて菌体を採集し、水でけん濁して
104とした。一方、DL−5−ベンジルヒダントイン
57及ヒ臭化七チルトリメチルアンモニウム5m9i2
N 7に酸化ナトリウム約15−に溶解し、2N塩酸
で液性をpH8,5に調整した後、水を加えて40−と
した。両者を混合し、液性をpH8゜5に保持して、3
7℃で16時間反応させた。反応終了後0反応液中には
L−フェニルアラニンが4.37生成蓄積していた(転
換率=97%)。 実施例 3 DL−5−1インドール−3−イル−メチル】ヒダント
イン’1DL−5−ベンジルヒダントインに代える以外
は実施例1−tl)及び(2)と同じ組成の培地を用い
て実施例1− +11 、 +21と同様に培養した。 該培a液200TrJと火施−2と同様に調整したD[
、−5−ベンジルヒダントイン液40−とを混合し、液
性をPH8,5に保持したまま37℃で16時間反応さ
せた。反応終了後0反応液中にはL−フェニルアラニン
4.159が生成蓄積していた(転換率=93呪]。
Claims (1)
- D−、L−又はDL−5−ベンジルヒダントインからL
−フェニルアラニンを生成せしめる能力を有するフラボ
バクテリウム・エスピー I −3(Flavobact
erium sp I −3)菌の培養液、該培養液か
ら採取した菌体又は該菌体の処理物を、D−、L−又は
DL−5−ベンジルヒダントインに作用させ、生成した
L−フェニルアラニンを採取することを特徴とするL−
フェニルアラニンの製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13280184A JPS6112296A (ja) | 1984-06-26 | 1984-06-26 | L−フエニルアラニンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13280184A JPS6112296A (ja) | 1984-06-26 | 1984-06-26 | L−フエニルアラニンの製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6112296A true JPS6112296A (ja) | 1986-01-20 |
JPH0362397B2 JPH0362397B2 (ja) | 1991-09-25 |
Family
ID=15089883
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP13280184A Granted JPS6112296A (ja) | 1984-06-26 | 1984-06-26 | L−フエニルアラニンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6112296A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02119796A (ja) * | 1988-10-28 | 1990-05-07 | Bio-Le Kk | L−ホモフエニルアラニンの製造法 |
CN103193664A (zh) * | 2013-05-08 | 2013-07-10 | 孟州市华兴有限责任公司 | 一种l-苯丙氨酸提纯方法 |
-
1984
- 1984-06-26 JP JP13280184A patent/JPS6112296A/ja active Granted
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02119796A (ja) * | 1988-10-28 | 1990-05-07 | Bio-Le Kk | L−ホモフエニルアラニンの製造法 |
CN103193664A (zh) * | 2013-05-08 | 2013-07-10 | 孟州市华兴有限责任公司 | 一种l-苯丙氨酸提纯方法 |
CN103193664B (zh) * | 2013-05-08 | 2015-04-22 | 孟州市华兴有限责任公司 | 一种l-苯丙氨酸提纯方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0362397B2 (ja) | 1991-09-25 |
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