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JPH11507824A - How to inhibit phagocytosis - Google Patents

How to inhibit phagocytosis

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JPH11507824A
JPH11507824A JP9502301A JP50230197A JPH11507824A JP H11507824 A JPH11507824 A JP H11507824A JP 9502301 A JP9502301 A JP 9502301A JP 50230197 A JP50230197 A JP 50230197A JP H11507824 A JPH11507824 A JP H11507824A
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JP
Japan
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receptor
sequence
syk
cell
cells
Prior art date
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Application number
JP9502301A
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Japanese (ja)
Inventor
シュライバー、アラン・ディー
パーク、ジョン−グ
Original Assignee
ユニバーシティー・オブ・ペンシルバニア
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Publication date
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Abstract

(57)【要約】 本発明は、一般に、免疫複合体とFcレセプターとの間の相互作用から生じる疾患を治療する方法に関する。特に、本発明は、食作用を阻害することによって、循環系からの抗体被覆細胞のクリアランスを調節する方法と、免疫複合体と組織Fcレセプターとの相互作用を調節する方法に関する。更に、本発明は、抗体-抗原/レセプターの相互作用から生じるFcレセプターの活性化に媒介された、免疫学的プロセスの活性化を調節する方法に関する。   (57) [Summary] The present invention generally relates to a method of treating a disease resulting from an interaction between an immune complex and an Fc receptor. In particular, the present invention relates to a method for regulating the clearance of antibody-coated cells from the circulatory system by inhibiting phagocytosis, and a method for regulating the interaction between an immune complex and a tissue Fc receptor. Furthermore, the present invention relates to a method of modulating the activation of an immunological process mediated by the activation of an Fc receptor resulting from an antibody-antigen / receptor interaction.

Description

【発明の詳細な説明】 食作用を阻害する方法 この出願は、1995年6月7日に出願された出願番号08/483,530の一部継続出願 であり、この親出願は1994年9月30日に出願された出願番号08/316,425の一部継 続出願であり、これは更に、1993年9月30日に出願された出願番号08/129,381の 一部継続出願である。これら出願の内容は、ここでの引用により本明細書中の一 部とされる。 〔技術分野〕 本発明は、一般に、免疫複合体とFcレセプター間の相互作用から生じる疾病の 治療法に関する。特に、本発明は、食作用阻害により抗体で被覆された細胞(ant ibody-coated cells)、ウィルス、もしくは可溶性抗体のクリアランスを調節す る方法、及び、免疫複合体と細胞または組織のFcレセプターの相互作用を調節す る方法に関する。本発明は、また、抗原-抗体複合体とFcレセプターとの反応が 重要な開始段階であるような免疫反応の調節に関する。 〔発明の背景〕 ある種の免疫学的な疾患は、単球もしくはマクロファージFc(IgG)レセプター の発現が乱されることを特徴とする。Fcレセプター数の増加は、ガンマーインタ ーフェロンのようなFcレセプターメディエーターのレベルの上昇、感染または細 菌性産物の分泌から生じ得る。IgGを結合できるFcレセプター数の減少は、機能 的レセプター(functional receptors)の実数の減少だけでなく、Fcレセプターが 免疫複合体によって飽和された結果として生じ得る。全身性紅斑性狼瘡のような ある種の自己免疫性疾病では、循環している免疫複合体のレベルが高くなり、そ のためレセプターの飽和が生じ得る。 自己免疫性疾病では、自己自身と外来侵入者を区別するための身体機構が正常 に機能しない。典型的には、身体は自己のある部分に対する抗体を作り始める; これらの抗体は免疫システムを誘発し、該免疫システムは、この異常な抗体によ って認識された組織を破壊する。 自己免疫性疾病は、攻撃の標的(focal points)を変更してきた。自己免疫性溶 血性貧血は、個々の疾患がそれら自身の赤血球膜抗原の1つもしくはそれ以上に 対する抗体を生成するような疾患のグループの代表例である。異常な抗体によっ て赤血球が被覆されると、次にその赤血球が脾臓のマクロファージにより循環系 からクリアランス(clearance)され、引き続いて脾臓内で破壊される。このク ラスの典型的な疾病としては、免疫性溶血性貧血、免疫性血小板減少性紫斑病及 び自己免疫性好中球減少症があげられる。別の種類の自己免疫性疾病には、全身 性紅斑性狼瘡やリウマチ様関節炎により代表されるタイプのものがある。これら の疾病では、関節、腱、腎臓、肺、心臓そして他の器官に慢性炎症を生じる。例 えば、リウマチ様関節炎では、関節軟骨の関節の滑液への分解が、疾病の後期の 段階で生じる。しかしながら、全身性紅斑性狼瘡では、軟骨もしくは骨の分解は 通常見られない。全身性紅斑性狼瘡やリウマチ様関節炎は、しばしば別のタイプ の自己免疫性疾病と関連して起こる。全身性紅斑性狼瘡およびリウマチ様関節炎 では、組織破壊は循環中のIgG含有複合体の有無に関連している。Fcレセプター を有する細胞によって組織内でこれらの複合体が識別されると、マクロファージ 及びおそらくこれらの組織内の多形核白血球のような他の細胞による組織破壊が 開始されるか、もしくは増加すると信じられている。これらのFcレセプターによ る反応は、ある一定範囲の免疫関連反応を引き起こし、Fcレセプターを有する細 胞の近接した体組織を傷つける可能性がある。 IgG含有の免疫複合体とマクロファージのFcレセプターとの相互作用を伴う疾 病は、副腎皮質ホルモンもしくは免疫抑制剤で治療される事が多い。これらの治 療では多様かつ重篤な副作用がおこりうる。本発明は、単独で用いるか、もしく は従来の薬物治療との組み合わせで用いることができる代替の治療方法を提供す る。 〔発明の概要〕 本発明の一般的な目的は、例えば、Fcレセプターを担時する細胞の食作用能力 を阻害することにより、抗体で被覆された細胞もしくは免疫複合体のクリアラン スを調節する方法を提供することである。 本発明の具体的な目的は、哺乳動物由来の免疫複合体のクリアランスを調節す る方法を提供することである。加えて、本発明の具体的な目的は、膜結合Fcレセ プターへの免疫複合体の結合を阻害する(及び/またはそのような複合体の取り 込みを阻害する)ことにより、好ましくない組織損傷の続発症を阻害する方法を 提供することである。 本発明のさらなる目的は、上記の方法で用いられる適切な構築物および化合物 を提供することである。 ひとつの態様では、本発明は、免疫複合体(例えばIgG含有免疫複合体)の食作 用、および/または、免疫複合体と相互作用する細胞による細胞内生化学的活性 産物の分泌を防止する方法に関する。この方法の例として、免疫複合体(例えばI gG含有免疫複合体)と接触している哺乳動物の食細胞内へ、該細胞膜上に存在す るFcレセプターを活性化する細胞に内在的なキナーゼの阻害剤を導入することを からなる方法があげられる。 もうひとつの態様では、本発明は、哺乳動物由来の免疫複合体(例えばIgG含有 免疫複合体)のクリアランスを防止する方法に関する。この方法は、免疫複合体 と接触している哺乳動物の造血細胞(例えば、食作用細胞)内へ、細胞膜上のFc レセプターの発現を特異的に阻害する分子を導入することを含む。 さらに別の態様では、本発明は、哺乳動物に存在する免疫複合体(例えばIgG含 有免疫複合体)が、膜結合性のFcレセプターに結合するのを阻害する方法に関す る。この方法は、その哺乳動物中に、免疫複合体への結合について膜結合性Fcレ セプターと競合する可溶性Fcレセプターを導入することからなる。この導入は、 膜結合性Fcレセプターへの免疫複合体の結合が阻害されるような条件下でなされ る。 また、さらに別の態様では、本発明は、Fcレセプターを有する哺乳動物細胞の 食作用能力を阻害する方法に関する。この方法は、5´末端から3´末端への転 写方向で、 i) 細胞内で機能的なプロモーター、 ii) 2本鎖DNAのセグメント、その転写された一本鎖がFcレセプター をコードする内在的なmRNAに相補的な配列を含むもの、および、 iii)細胞内で機能的な終止配列(ポリアデニレーション信号) を具備する構築物を細胞へ導入することを含む。この構築物は、相補鎖が転写さ れかつ内在的なmRNAに結合することによりFcレセプターの発現を減少させ、細胞 の食作用能力を阻害するような条件下で導入される。 本発明のさらなる目的または利点は、以下の説明から明らかになるであろう。 この開示は、Fcγレセプターの3つのクラス(Fc γ RI,Fc γ RIIおよびFc γ RIII)の単離およびクローニングに関する技術で得られる教示を考慮して読むこ とが好ましいであろう。例えば、Allen and Seed,Science 243:378(1989);Hibb s et al,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85:2240(1988); J.Exp.Med.166:1668 (1987);van de Winkle et al,FASEB J.,5:A964(1991); Brooks et al,J.,Ex p.Med.170:369(1989); Stuart et al,EMBO J.8:3657(1989); Qui et al,Scie nce 248:732(1990); Simmons and Seed,Nature 333:568(1988)を参照のこと;S chreiber et al,Clin.Immunol.Immunopath.62:S66(1992)も参照のこと。 〔図面の簡単な説明〕 図1は、Fc γ RIIIA γ野生型および突然変異体の概略図を示す。シグナル配 列(S)、外来ペプチド(E),トランスメンブレンドメイン(TM)、及び細胞質ドメイ ン(CY)をγ鎖の概略図の上に記す。拡大された領域は、保存されたモチーフを含 むγ鎖のヌクレオチド配列の領域を示す。この図には、ネズミγ鎖が示されてい る。γ鎖及びζ鎖遺伝子の遺伝子ファミリーの保存されているアミノ酸配列は、 下線で示されている。ヌクレオチド235-237のTACコドンによりコードされている N末端に近接したチロシン(Ra et al,J.Biol.Chem.264:15323(1989))は、TTC によりコードされたフェニルアラニンで保存的に置換された(クローン M1A及び クローンM1B)。同様に、TAT(168-270)によりコードされているC末端に近接した チロシンは、TTTによりコードされたフェニルアラニンで置換された(クローンM 2A及びクローンM2B)。チロシン二重置換変異体については、N末端側及びC末端側 の両方のチロシンがフェニルアラニンで置換された(クローン DMA及びクローンD MB)。変異体の実線は、野生型γ遺伝子の配列と同一の配列を示す。 図2Aおよび図2Bは、トランスフェクトされたCOS-1細胞によりIgG感受性化され たRBCs(EA)の結合および食作用を示す。トランスフェクションされたCOS-1細胞 によるEAの結合(左図;A,C,E及びG)。トランスフェクションされたCOS-1細胞に よるEAの食作用(右図;B,D,F,及びH)。(A)及び(B):Fc γ RIIIA α及び野生型 γをトランスフェクトされたCOS-1細胞の結合及び食作用。野生型γを用いて示 された3つの貧食されたBCs(phagocytosed RBCs)を、図(B),(C),及び(D)中で 矢印により示した:α及びγを含有するトランスフェクタント(transfectants)( MIA)。(E)及び(F):α及びγを含有するトランスフェクタント(M2A)。(G)び(H): α及びγを含有するトランスフェクタント(DMA)。EAの食作用はD,F及びHでは見 られない。写真は1000倍の拡大像を示す。 図3は、生体外(in vitro)でのキナーゼアッセイによる野生型および変異体 γ鎖のチロシンのリン酸化を示す。このγ鎖を、COS-1トランスフェクタントの 溶解物由来の抗-γ抗血清を用いて免疫沈降させた。生体外でリン酸化された試 料を、12.5%還元化(reducing)SDS-PAGEゲルで泳動させた。このゲルは、フォス フォセリンおよびスレオニンを除去するために、1NのKOHで処理され、乾燥され 、4日後にオートラジオグラムが検査された。レーン1:Fc γ RIIIA-αとγ c DNAを挿入していないpSVL ベクターを用いた擬似トランスフェクタント(Shamtra nsfectants)。レーン2:Fc γ RIIIA α+野生型ヒトγ。レーン3:Fc γ RIIIA α+野生型マウスγ。レーン4:Fc γ RIIIA α+M1A。レーン5:Fc γ RIIIA α +M2A。レーン6:Fc γ RIIIA α+DMA。リン酸化されたγ鎖を矢印により示す( 右下側に示す)。星印を付けた矢印(右上部に示す)は、約4OKDaの特異的なチロ シンリンタンパク質のバンドを示している。 図4A-4Dは、Fc γ RIIIA刺激に引き続いて起こるCa2+の可動化(mobilization) を示す。それぞれの細胞内での[Ca 2+]iの計測は、Fc γ RIIIAの架橋(crossli nking)の間に行われた。抗Fc γ RIIImAb、エピネフリン(ポジティブコントロー ル)及びカルシウムイオノフォアが添加された時点は、それぞれの図中に矢印に より示されている。像は340nmもしくは380nm励起のいずれかで得られた(発光(em isson)=510nm)。340/380比は、Fura-2を用いた補正に基き、[Ca2+]iに転換され た。M1A、M2A及びDMAトランスフェクタントの反応は、WTトランスフェ クタントと比較して大きく低下した。 図5は、ステムループアンチセンスODNについてのターゲット配列(ターゲ ットIII)の選択を示す。全Syk mRNA配列は、二次構造のない配列を見出すために 、3回、RNA二次構造予報プログラム(RNA secondary structure predict ion program)によってスキャンされた。個々のスキャニングは、99ヌクレオ チドフレーム(フレームA,B,およびCと呼称する)中で33塩基離して連続 して行なわれた。三回のスタガード(staggered)スキャニングでもっともオープ ンな配列が標的配列として選ばれた。点線の施してある上部の長方形は、ヒトSy k mRNAのcDNA配列を示す(Law et al,J.Biol.Chem.269;12310(1994))。ス テムループSykアンチセンスODNについて3つの標的部位が、Syk mRNA配 列線の上方に、3本の短い実線(I,II,III)として示される。標的部位I,II ,およびIIIは、ヌクレオチド番号159から173(転写開始コドンを囲む領 域)、ヌクレオチド番号451から463、および802から816に夫々対応 する。標的IIIがこの図では例として示される。ターゲットI,II,も同じように 選択された。標的III配列を含むSyk mRNA領域にある推定される二次構造が、夫 々99ヌクレオチドからなる三つのスタッガード(staggered)フレーム、フレー ムA,B,およびCに示される。三つのスタッガード(staggered)フレーム中、 円になったヌクレオチドは、最小の二次構造を持つ標的IIIの共通配列である。 図6は、ステムループSykアンチセンスODNの二次構造を示す。該7ヌクレ オチド長のステムドメインが、その5´および3´末端に、GおよびCのみから なるヌクレオチドを含む相補的終止配列によって形成される。ループドメインは 、3つのアンチセンス配列; 四角で示される5´-CTGTCAGCCATGCCG-3´配列 は、Syk mRNA(図5参照)中の標的Iに対して相補的であり、また三角形で示さ れる5´-GCTTCTTGAGGAG-3´配列は、標的IIと相補的であり、また、丸印を施 された5´-TGTCTTGTCTTTGTC-3´配列は、図5中でも丸印を施されて示された 標的IIITと相補的である。該三つの異なるアンチセンス配列は、標的I、III、II の夫々について5´から3´の順に、縦列に連結されている。●Sは、ホスホロ チオレート(phosphorothiorate)の修飾を示し、5´末端はホスホロチオレート の修飾が一つ及び3´末端は二つ担時する。 図7は、単核球における食作用に対するSykアンチセンスODNsの阻害を示す。 単核球(1 x 105細胞/ml)は、リポフェクタミン(LIPOFECTAMINE)4μg /mlとODNs(線形コントロールまたは線形SykアンチセンスODNsの夫々は1.0μ M、ステムループコントロールまたはステムループSykアンチセンスODNは夫々2. 0μM)の複合体を2日間インキュベートし、IgG感受性化した赤血球(EA)の 食作用を調べた。食作用指標(PI)=100細胞につき取り込まれたRBCsの 数。各バーは三つの個別実験の平均±SEMを示す。 図8:単核球におけるSykアンチセンスODNsのSyk mRNAへの影響 全RNAは、4μg/mlのリポフェクタミン(LIPOFECTAMINE)およびODNs(線形 コントロールまたは線形SykアンチセンスODNsの夫々は1.0μM、ステムループコ ントロールまたはステムループSykアンチセンスODNは夫々2.0μM)の複合体2 日間処理した単核球(1 x 105細胞/ml)から単離され、cDNAが任意の6ヌ クレオチド・プライマーによって全RNAから合成された。PCRをSyk DNAをテンプ レートとして、二つのSkyプライマー(Syk−HおよびSyk−M)によって実施された 。PCR産物は、サザンハイブリデイゼーションによって分析され、ハイブリダイ ズされたバンドは、化学蛍光検査試薬によって視覚化された。 図9:ラットおよびヒトSykアンチセンスの比較 図10:RBL−2H3細胞におけるSykキナーゼ発現のステムループ・ラットSykア ンチセンス・オリゴヌクレオチド(ODN)による阻害。 A.ラットSykプラーマーを使用したRT−PCRによるSyk発現の調査。レーン1:S ykアンチセンスODNで処理された細胞、レーン2:SykセンスODNで処理された 細胞、レーン3:試薬コントロール、レーン4:無処理、レーン5:分子量マー カー。 B.ラットβアクチン・プライマーを使用したRT−PCRによるβアクチン発現 の調査。レーン1:SykアンチセンスODNで処理された細胞、レーン2:Sykセ ンスODNで処理された細胞、レーン3:試薬コントロール、レーン4:無処理、 レーン5:分子量マーカー。→=βアクチン。 C.ラットSykアンチセンスODNで処理されたRBL−2H3細胞におけるγ鎖プ ライマーを使用したRT−PCRによるFcεRIγ鎖発現の調査。レーン1: SykアンチセンスODNで処理された細胞、レーン2:SykセンスODNで処理され た細胞、レーン3:試薬コントロール、レーン4:無処理、レーン5:分子量マ ーカー。→=γ鎖。 図11:ヒトSyk/ZAP−70キメラの構造 〔発明の詳細な説明〕 本発明は、少なくとも部分的には、抗体で被覆された細胞を哺乳動物から(例 えば、哺乳動物の循環系からの)クリアランスを調節する方法に関する。従って 本発明は、Fcレセプター(例えばマクロファージの表層に存在するもの)と免疫複 合体(例えばIgG含有免疫複合体)との相互作用により特徴づけられる自己免疫性 疾病といった免疫学的な疾患、および喘息のような免疫媒介性疾病を治療する方 法を提供する。本発明の方法は、結果として、IgG抗体で被覆された細胞の食作 用を減少させるように、Fcレセプターの発現及びまたは機能を変化させることに なる(紅斑性狼瘡やリウマチ様関節炎のような免疫複合体疾病(immune complex diseases)罹患者が、肝臓や脾臓内に循環している免疫複合体のクリアランスが 増強され、それにより、腎臓のような組織中および関節内での免疫複合体の沈着 を防ぐように設計された手順により恩恵をうけ得ることは、当業者により評価さ れるだろう。この免疫複合体のクリアランスの増強は、本願と同時に出願された 「食作用を刺激する方法」と題する同一人の所有になる出願に記載のレセプター をコードする配列を導入するための手順を用いて、肝臓および脾臓のマクロファ ージを刺激することによりもたらされうる。その別途出願の開示内容の全ては、 引用によりこの明細書中に取り込まれる。 より具体的には、本発明は、食細胞の信号伝達に際して必要とされるFcレセプ ター構成成分および会合された分子のリン酸化を阻害し、免疫複合体(例えばIgG 含有免疫複合体)の結合用の膜結合性レセプターと競合する可溶性Fcレセプター を循環内に導入することにより、Fcレセプターの機能を阻害する方法を提供する 。また本発明は、レセプター生成細胞内にFcレセプターアンチセンス構築物を導 入することにより、Fcレセプターの発現を阻害する方法を提供する。また、本発 明は、例えばリボザイムを用いてFcレセプターRNAを分解する方法を提供する。Fc レセプター媒介性信号伝達の阻害: 一つの態様においては、本発明は、Fcレセプターの細胞質ドメイン内のコア配 列(core sequence)のリン酸化を阻害することにより、免疫複合体(例えばIgGで 被覆された細胞)の取り込み(例えば食作用)を防止する方法に関する。Fc γ RII Aの細胞質残基及びFc γ RIIIAのγサブユニットのリン酸化は、食作用に関係し た信号伝達事象には不可欠であることがわかっている(Indik et al,Trans.Ass .Amer.Phys.105:214(1992);Park et al,Clin.Res.41:324A(1993);Darby e t al,Blood 79:352A(1992);Mitchell et al,Clin.Res.41:189A(1993);Huang et al,J.Biol.Chem.267:5467(1992);Hunter et al,Clin.Res.41:244A(1 993);Park et al,J.Clin.Invest.92:2073(1993))。より具体的には、Fc γ R IIAの細胞質ドメインに存在するモチーフE-X8-D-X2-Y-X2-L-X12-Y-X2-L及びFcRI IIAのγ及びζ鎖の細胞質ドメインに存在するモチーフ D/E-X2,7-D/E-Y-X2-L-X 7-Y-X2-L内に存在するチロシン残基のリン酸化は、食作用の信号伝達に必要であ る(文字Xの後の数字は、その位置でのアミノ酸の数を示す;Xはいかなるアミノ 酸でもよいが、Y-X2-L内のX2はFc γ RIIAの細胞質ドメインあるいはFc γ RIII のγ鎖のY-X2-L配列内に存在するアミノ酸であることが好ましい)。これらのコ ア配列(モチーフ)の2番目のY-X2-Lが、食作用に特に重要であるようだ。本発明 は、リン酸化に関与するキナーゼの阻害剤を標的細胞中に導入することを意図す る。具体的な態様では、阻害剤は、少なくともチロシン含有モチーフの機能的な 部分と、同一でない場合でも類似の配列を含むペプチド(例えば、先に示した一 連のモチーフの下線の部分に注目のこと)であり、そのためキナーゼの拮抗的な 阻害剤として作用する。一例として、阻害剤は、細胞外ドメインが欠けたFcレセ プター、もしくは細胞外ドメイン及びトランスメンブレンドメインが欠けたFcレ セプターの形態をとることができる。代わりに、阻害剤は、上記のモチーフ、あ るいはその機能的な部分と構造的に異なっても良く、それらは、拮抗的もしくは 非拮抗的にリン酸化を阻害しても良い(例えば、活性ペプチドの結合部位と同様 な構造形態を有する擬似活性ペプチドを用いることができる)。マスト(肥満) 細胞、またはFcεレセプターを持つ細胞では、メディエーター(例えば、ヒスタ ミン、サイトカインまたはロイコトリエン)の分泌に必要なFcεRIのγ鎖の配列 は、こ の方策を用いて阻害され得る。 本発明のペプチド阻害剤もしくはその擬似物(mimetic)は、例えばリポソー ムを用いて標的細胞中に直接導入され得る(Science 26:1877(1993)に記載された 、細胞の脂質膜を横切ることが可能なように修飾されたペプチドを投与する方法 も参照のこと)。または、ペプチド阻害剤をコードするDNA配列を、このペプチド が細胞内で生成されるように、遺伝子療法の手順を用いて導入することができる 。 この阻害剤もしくは阻害剤をコードする配列は、マクロファージを含む肺の細 胞にエアロゾルの形態で投与され得る。阻害剤もしくは阻害剤をコードする配列 は、肺のマクロファージにより貧食される粒子(例えばリポソーム、もしくは、 もし阻害剤をコードする配列の場合には例えばリステリア(Listeria)のような 非感染性細菌)としてエアロゾル中に存在させることも可能である。食作用の結 果、阻害剤もしくは阻害剤をコードする配列は、マクロファージへ導入される。 ウィルス性ベクターもまた本発明のペプチド阻害剤をコードする配列を、肺の樹 状(pulmonary tree)細胞中へ導入するのに用いることができる。ベクターは、エ アロゾルとして導入することもでき、複製不良のヘルペスもしくはアデノウィル スベクターの形態をとることもできる。レトロウィルスベクターも使用すること ができる(概略としては、バジョッキーら(Bajocchi et al),Nat.Genet.3:22 9(1993); レマーチャンドら(Lemarchand et al),Circ.Res.,72:1132(1993); ラムら(Ram et al),Cancer Res.53:83(1993);クリスタル(Crystal),Am.J.Me d.92:445(1992); ヨシムラら(Yoshimura et al),Nucl.Acids Res.20:3233(1 992);モレッキーら(Morecki et al),Cancer Immunol.Immunother.32:342(199 1); カルバーら(Culver et al),Hum,Gene Ther.1:399(1990); カルバーら(Cu lver et al),Transplant.proc.,23:170(1991)を参照のこと)。 血液単核球は、本発明のペプチド阻害剤をコードする配列を用いて生体外(ex vivo)で形質転換され、その後、阻害剤が生体内で生成されるように患者に再導 入されてもよい。 リン酸化阻害のもう一つのアプローチには、Fcレセプターリン酸化部位(例え ばFc γ RIIA中及び/またはFc γ RIIIAのγサブユニット中)を特定するRNA配 列および酵素活性部位を特定するRNA配列を認識するリボザイムの利用が包含さ れる。リボザイムの導入は、IgGで被覆されたリポソームのような担体を用いて 、Fc γレセプターを有する細胞に直接挿入させるように実行される。または、I gEで被覆されたリポソームは、マスト細胞もしくは好塩基細胞または会合したγ サブユニットを持つIgEレセプターFcεRIを有する他の細胞に向けられる。この 方法は、アレルギー性疾患の治療での利用に際し、適切なアプローチであること が当業者に評価されるだろう。IgEレセプターのγサブユニットは、マスト細胞 のようなFcεRIレセプターを有する細胞によって細胞内メディエーターの分泌を 誘導するシグナルの伝達に関与する。γ鎖RNAの破壊により、これらの生物活性 産物の分泌は阻害されることが予測される。 上記のアプローチに従って、上記の通りに投与されたリボザイムは、幾つかの 選ばれた配列(例えば、Fc γ RIIAもしくはFc γ RIIIA γ鎖RNAにおいて特異的 なRNAスプライシング配列または5´末端の未翻訳配列)に結合し、リボザイムに 関わる酵素活性により、食作用の信号伝達に必要なレセプターの機能的な配列を 特定するRNAが消化されて除去されこととなる。メディエーター(例えばヒスタミ ン、サイトカインまたはロイコトリエン)の分泌に必要なFcεRIのγ鎖の配列を 特定するRNA配列は、このストラテジーを用いて除去することができる。 この方法の有利な点は、リボザイムの生体内での連続的な生産が、生体外で構 築されたパッケージング細胞(例えばPsi2様細胞;ミラーとロスマン(Miller and Rosman),Biotechnique 7:980,1989および分子生物学における最近の手法(Curr ent protocols in Molecular Biology),III:9.1 1992(supp.17)を参照のこと) を用いて実行できることである。リボザイムの生産を停止させるように、それら の細胞中には自殺遺伝子を含ませることが可能な点は、当業者に評価されるだろ う。 レセプターのリン酸化を阻害するためのさらなるアプローチには、SyKをコー ドしている配列(実施例5参照)を標的とするアンチセンス構築物またはリボザ イムの使用が含まれる。SykキナーゼファミリーのZAP-70の遺伝子産物以外のSyk 遺伝子産物は、γ鎖とζ鎖の両方により媒介されたFc γ RIおよびFcRIIIAの食 作用を刺激することが明らかにされている。(ある種のSrc関連チロシンキナー ゼ存在下ZAP-70は、Fc γ RIおよびFcRIIIAの食作用を刺激することができる。 ) すなわち、Syk配列を標的とすることにより、Syk発現の阻害および従属したリン 酸化の阻害を実行できる。この方法での利用に適した構築物とリボザイムは、当 業者により容易に選択されうる(Syk遺伝子配列に関しては、ヤギら(Yagi et al) ,Biochem.Biophys.Res.Comm.200:28(1994)、Law et al,J.Biol.Chem.26 9:12310(1994)を参照のこと)。 SykおよびZAP-70のキメラは、SykとZAP-70間のシグナリングにおける相違に関 わる配列を決定するために使用されてきた。ZAP-70変異体は、ZAP-70SH2ドメイ ンおよび第二SH2ドメインおよび触媒ドメインの間にあるZAP-70中間領域がSykSH 2ドメインおよび中間領域(図11)によって置換されている。該研究によって 、本キメラが、Fc γレセプターに媒介される食作用のシグナリングを高める点 でSyk様に作用する事が示される。平行して、SykSH2ドメイン及びSyk中間領域が ZAP-70SHドメイン及び中間領域で置換されたSyk変異体が構築された。該キメラ は、Fc γレセプターに媒介されるシグナリングを高めない点で、ZAP-70様に作 用する(COS-1細胞トランスフェクタントおよび食作用シグナリングを除く)。 さらに、SykおよびZAP-70のキメラが生成された。Syk変異体は、そのSH2ドメ インがZAP-70のSH2ドメインで置換されて構築された。本キメラは、Sykキナーゼ 様に作用する。同様に、ZAP-70変異体が、そのSH2ドメインをSykキナーゼのSH2 ドメインで置換されて構築された。本キメラは、ZAP-70様に作用する。 Syk変異体は、第二SH2ドメインおよび触媒(キナーゼ)ドメインの間にある中間 領域がZAP-70および中間領域によって置換されて構築された。本キメラは、ZAP- 70様に作用する。同様に、ZAP-70変異体が、ZAP-70の中間領域をSykキナーゼの 中間領域と置換されて構築された。本キメラは、Syk様に作用する。SykおよびZA P-70のキメラによるこれらの実験から、第二SH2ドメインおよび触媒(キナーゼ) ドメインの間にある中間領域にある配列がFc γレセプターのシグナリングと相 互作用するSykの能力に関与することが分かった(Park and Schreiber,Proc.N atl.Acad.Sci.USA 92: 7381(1995)および領域/ドメインの記述についてのそ こに引用された参考文献を参照の事)。キメラ類は、野生型SykおよびZAP−7 0を使用したオーバーラップPCRを使用して生成された。 Sykキナーゼの中間配列が、食作用に関与するものも含めた信号伝達事象に関 係している確認する事によって、このようなトランスダクション事象を選択的に 阻害する能力による化合物(ペプチドまたは模擬物)テストを可能にするスクリ ーニング(篩い分け)ができる。 たとえば、テスト化合物を、Syk中間領域もしくは少なくとも3、5、7、ま たはそれより大きなアミノ酸、例えば、少なくとも20、30、50、または100アミ ノ酸からなるSyk中間領域の一部(例えば、ZAP−70SH2ドメインおよびキナーゼ ドメインとSyk中間配列とからなるキメラ)からなるポリペプチド、およびZAP− 70中間領域配列(例えば、SykSH2ドメインおよびキナーゼドメインおよびZAP−7 0中間領域配列)からなるポリペプチドと接触させてもよい。後者ではなく前者 のポリペプチドと結合する化合物類は、Syk中間配列によって媒介されるシグナ リング事象(食作用および肥満細胞およびFcεレセプターを担時する細胞から のメデイエーター分泌を含めたもの)の選択的阻害剤と推定される。このような 化合物はまたSyk欠損の食作用細胞と思われる細胞(例えば、Fc γレセプターを 担時するCOS細胞等のFc γレセプターを担時する細胞)中に、Syk中間配列から なるポリペプチドをコードする構築物(例えば、上記記載のキメラをコードする 構築物)を導入し、その細胞をテスト化合物と接触させ、細胞の食作用を遂行す る能力について分析することによって、食作用がSykキナーゼによるシグナリン グが解読される。食作用を阻害する化合物は、Syk中間領域配列によって媒介さ れる他のシグナリング事象を阻害するものと予想される。そこで、Syk中間領域 を発現する細胞の食作用能力を阻害する化合物が、安定性、毒性等について標準 手順に従ってテストされても良い。このアプローチはまた肥満細胞もしくは他の Fcεレセプターを担時する細胞、メデイエーター分泌(例えば、ヒスタミン分泌) を阻害する化合物(ペプチドおよび模擬物)をスクリーニングするためにも使用 できる。 上記のスクリーニングを使用して同定された、もしくは他の方法で同定された ペプチドおよび模擬物は、薬剤組成として製剤化され、例えば全身的にまたは直 接肺に(例えば、エアゾールで)投与してもよい。デリバリーは、本明細書に記 載の技術を使用して実行され得る。至適投与量は容易に決定することができる。 (例えば、第二SH2ドメインと触媒(キナーゼ)ドメイン(例えば精製形態また は単離形態にあるもの))の間のSky中間配列、もしくは少なくとも5あるいは 6のアミノ酸からなるその一部またはその模擬物は、本願の範疇にあり、製剤化 されて上記に記載のように使用され得る。 下記記載のように、本発明は、肥満細胞等(実施例VI参照)のFcεレセプタ ー担持する細胞からのメデイエーター(例えばヒスタミン)分泌を阻害するため にSykアンチセンス構築物の使用をも意図している。ヒスタミン(肥満細胞メデ イデータ)分泌の阻害は、例えば、喘息治療において治療学的重要性を持つ。 Sykアンチセンス構築物の好ましい標的は、下記に記載される(実施例VおよびV Iも参照)。該構築物は、全身的または直接肺(例えば、エアゾール投与)に投 与されることが可能である。デリバリーは、本明細書に記載の技術(リポソーム 製剤化を含む)を使用して実行され得る。至適投与量は患者、構築物および使用 する投与形態に依存しよう。可溶性Fcレセプター さらなる態様では、本発明は、免疫複合体(例えばIgG含有免疫複合体)と膜会 合性Fcレセプター間の相互作用を阻害することにより、食作用によるそれらの複 合体のクリアランス(または、細胞内のメディエーターの分泌を引き起こす事に なるFcレセプターを介したシグナリング)を阻害する方法に関する。この方法に は、免疫複合体結合に関して、膜に結合した形態のFcレセプターと競合する、可 溶な形態のFcレセプターを循環中に導入することが含まれる。ある可溶な形態の 転写物(transcripts)が、巨大核細胞および単球/脊髄系統の細胞において同定 されている(ラパポートら(Rappaport et al),Exp.Hemotol.21:689(1993);ワー マーダムら(Warmerdam et al),J.Exp.Med.172:19(1990))。これらの転写物 は、トランスメンブレンレセプター領域をコードする配列を欠いているが、細胞 質のドメインをコードする配列は保持している。本発明は、細胞外ドメイン単独 もしくは細胞質ドメインとの組み合わせを含む可溶性Fcレセプターの生産と使用 を意図する。IgGで被覆された細胞との結合に関して膜結合性Fcレセプターと競 合できるレセプターがふさわしい。 本発明の可溶性レセプターは、Fc γ RI、Fc γ RIIもしくはFc γ RIII細胞 外 ドメイン単独か、それらの結合部分の形態をとることができる(または、細胞外 ドメイン単独かもしくはそれらの結合部分の形態をとるFcεRIの可溶性レセプタ ーが供される)。すでに指摘したように、細胞質ドメインもしくはそれらの一部 分が存在していてもよい。次に可能な可溶性レセプターの例を示す。ここで″I ″及び″IIA″はFc γ RI及びFcR γ IIAにそれぞれ相当する。また、αとγはF c γ RIIIのα鎖およびγ鎖に相当する。初めの記号は、細胞外ドメインの起源 を示しており、2番目の記号は、細胞質ドメインの起源を示している:I:I,I,I IA,IIA:IIA,I:IIA,α:γ,α,α:IIA、I:γ。 可溶性レセプターは、それらの特性に依存して、化学的にもしくは組み換え技 術を応用して調製できる(ホートンら(Horton et al),Biotechniques 8:528(19 90))。可溶性レセプターは、レセプターのリン酸化阻害剤に関して上記に述べた ように、全身的にもしくは肺に投与することができる。同じのものをコードして いる配列からの可溶性レセプターの合成が生体内でなされる場合、そのような配 列は適切なベクター(上記参照のこと)中に挿入され、標的細胞内の機能的な調節 配列にリンクする操作が可能である。アンチセンス構築物: さらなる態様として、本発明は、哺乳類宿主細胞中におけるFcレセプターの発 現を阻害する方法であって、i)細胞内で機能的なプロモーターと、ii)2本鎖DN Aの断片(その転写された一本鎖は、発現が阻害されるべきFcレセプターの内在 的なmRNAに対して相補的な配列を含む)と、iii)宿主細胞内で機能的な終止配列 からなるアンチセンス構築物とを5´末端から3´末端への転写方向で具備して いるアンチセンス構築物を、該細胞中に導入する方法に関する。この本発明の態 様により、多くのクラスのレセプターを産生する細胞内において、特定のFcレセ プターの発現を調節することが可能となる。この特異性は、内在的なFcレセプタ ーのmRNAに特有の配列を、DNAセグメント(上記の(ii))中への封入のために選択 することにより達成される。 上に示したように、本発明はまた、Sykキナーゼをコードする配列をターゲッ トとするアンチセンス構築物に関する。このような構築物において、上記(ii) は二本鎖DNAのセグメントであり、その転写された一本鎖には、Sykキナーゼ の内在的なmRNAと相補的な配列が含まれる。 アンチセンス・オリゴヌクレオチドの有効性に影響する因子には、アンチセン スオリゴヌクレオチドの安定性、細胞の細胞原形質へのデリバリー、および目的 とするmRNAへの接近の容易さがあげられる。本発明のSykアンチセンス・オリゴ ヌクレオチドは、これらの課題を達成するために三段階で変更される。まず、5 ´または3´末端、好ましくは両末端におけるホスホジエステル連結が、例えば 、ホスホロチオエートで修飾される。第二に、ステムループ構造を使用して、ヌ クレアーゼからのループドメイン内のアンチセンス配列を保護する。該ステムは 、例えばGおよびCのみからなる相補的終止配列である。ループドメインは、例 えば、Syk mRNAの異なる部位をターゲットする3つのアンチセンス配列を担持す る。mRNAは、分子内ハイブリデイゼーションにより二次構造を形成しており、mR NAの二次構造が、アンチセンス・オリゴヌクレオチドの標的への接近を阻害する のかもしれない。アンチセンス・オリゴヌクレオチドへ接近をしやすくする開放 “open”構造を持つ配列を同定するために、全Syk mRNA配列がRNA二次構造予 測プログラムで走査(scan)された。Syk mRNAは、3つのずらし枠内(staggered frame)で走査(scan)され、最小の二次構造を持つ、もっとも開放された(“open ”)構造が選ばれた。ループ・アンチセンス・オリゴヌクレオチドは、3つの線 形アンチセンス。オリゴヌクレオチドの混合物よりも食作用信号が劇的に減少し た。ステムループSykアンチセンス・オリゴヌクレオチドがの効率が高いのは、 ヌクレアーゼ消化からの安定性が良好であることに起因するのかもしれない。第 三に、Sykアンチセンス・オリゴヌクレオチドはまた、細胞へのデリバーを改善 するため例えばカチオン性リポソームと複合化された。リポソームと複合化され ると、ステムループSykアンチセンス・オリゴヌクレオチドの安定性は著しく改 善した。Fc γ RIIIA γサブユニットmRNAに向けられるステムループ・アンチセ ンス・オリゴヌクレオチドもまた使用された。末梢血単核球およびステムループ γ鎖アンチセンス・オリゴヌクレオチドの使用と共に、RT−PCRによって評価さ れる単核球のγ鎖のメッセージは>80%減少した。リポソームは、単核球/マク ロファージが主要な在住細胞集団である細網内皮細胞系にデリバーされる。リポ ソームと ステムループSykアンチセンス・オリゴヌクレオチドの複合体は、単核球/マク ロファージ中でFc γレセプターが媒介する作用のダウンレギュレートが必要な 免疫性疾病用治療剤として使用することが有益である。Syk キナーゼはまた、Fcε RIおよびB細胞抗原レセプターに連結している。ステムループSykアンチセン ス・オリゴヌクレオチドはまたこれらのレセプターを通じての細胞内シグナリン グ事象の調査およびこれらのレセプターによって媒介されるシグナルを調整する ための治療剤を開発するために有用である。 本願のアンチセンスの態様によると、内在的なmRNAターゲットに相補的な配列 は、長さにして少なくとも15ヌクレオチド、好ましくは、少なくとも30ヌクレオ チド、より好ましくは、少なくとも50ヌクレオチドのものである。この配列は典 型的には5000ヌクレオチド未満の長さ、好ましくは2000未満、またより望ましく は1000未満の長さのものである。この配列は、目的のmRNAの転写された領域もし くは未転写領域に相補的でありうる(例えば、マッケンジーら(McKenzie et al) ,Molec.Immunol.29:1165(1992),Mastuda et al,Mol.Biol.Cell 7: in pr ess,July(1996)を参照のこと)。アンチセンス配列の長さもアンチセンス配列が 結合するmRNAの部位はいずれも、アンチセンス配列の性質、mRNA部位、求められ る阻害の程度に依存して変わり得る。これらのパラメーターの最適化は余計な( undue)実験をしなくても実行可能である。 適当な調節配列やベクターが、当該技術分野で公知のものから選択可能である 。例えば肺や脾臓へのアンチセンス構築物の投与は、上述の通り、生体内と生体 外の両方での形質転換手順を用いて実行可能である。アンチセンス転写物自体を 、上記の方法を含めた当該技術分野で公知の方法を用いて標的細胞中に直接導入 しうることは、当業者に評価されるだろう(実施例5− ホスホロチオレート修 飾された線形、ステムループ(stem loop)Sykアンチセンスオリゴヌクレオチ ド(ODNs)は、血清ヌクレアーゼに対する部分的な抵抗を示す−も参照のこ と)。リポソームにより複合化されると、5´末端−3´末端でホスホロチオレ ート修飾されたアンチセンスODNsは、よりいっそう安定である。ホスホロチ オレート修飾されたステムループSykアンチセンスODNは、血清中で非常に 安定性を示す。 食作用を阻害する上記アプローチに加えて、本発明は、Fc γ RIIA(Hunter e t al,FASEB J.June 1996,New Orleans,LA)を含めた、Fc γレセプターの作 用を阻害する事ができる食作用のポテンシャルを有するFc γ RIIB(例えばFc γ RIIB2)を持つ細胞を導入することによって阻害を行う方法にも関与する。 Fc γ RIIBの導入は、阻害に影響するFc γ IIBをコードする配列もしくはその 一部分を包含する構築物を用いて、標的細胞をトランスフェクション/形質転換 (transfecting/transforming)することにより達成される(ブルックスら(Brooks et al),J.Exp.Med.170:1369(1989); インデックら(Indik et al),Blood 83 :2072(1994))。適当な構築物が当業者により選択可能である。 以下の例は、本発明のある態様をさらに詳細に示すが、本発明を限定するもの ではない。 実施例1: 組み換え可溶性Fc γ RIIIの生産 組み換え可溶性Fc γ RIIIのタンパク質は、以下に示すような発現ベクターを 用いて生産することができる。該可溶性タンパク質は、トランスメンブレン・ド メインが除かれたFc γ RIIIに相当する。この構築物は、レセプターをコードし ている配列の発現が生じるような条件下で哺乳動物細胞に導入される。このよう にして生産された組み換えタンパク質は、細胞溶解物及びその上清の両方から単 離される。付着細胞もしくは懸濁液中の細胞のトランスフェクション: 付着細胞(例えばCHO細胞もしくはCOS細胞)、または、適切な懸濁細胞系のト ランスフェクションを行うことができる。可溶な形態のFc γレセプターを発現 する永続性のトランスフェクタント(permanent transfectant)は、エレクトロポ レーション、リン酸カルシウム法もしくは他のすでに確立された方法により達成 されうる。形質移入された細胞は48時間培養され、2mg/mlのジェネティシン(Gen eticin)(Gibco BRL,Gaithersburg,Maryland)もしくは他の選択薬剤を含む培地 中で選抜されうる。約12週間後、ポジティブコロニーが単離され、クローンをさ らに特徴づけるために増殖される。単離されたクローンは、可溶性レセプタ ーを最も多量に発現させているトランスフェクタント細胞系を選抜するために、 ELISAプレート(Dynatech,Alexandria,Virginia)を用いて酵素を固相免疫定量 法(ELISA)により調べられる。付着感染体(adherent transfectants)の大量培養 は、中空繊維組織培養系を用いることにより達成される。 実施例2: 可溶性Fc γ RIIIの機能 可溶性Fc γ RIIIタンパク質の機能は、生体外と生体内の両方で評価される。 細胞膜結合性レセプターへのIgG免疫複合体の結合に及ぼす可溶性Fcレセプター の影響は、リガンドと可溶性レセプターの局在的濃度、膜結合性レセプターの表 面密度、リガンドの結合価、及び、2つの形態のレセプターのリガンドに対する 相対的親和性等の幾つかの因子に依存している。可溶性Fc γ RIIIレセプターと リガンドおよび細胞膜との相互作用における制限因子は、入手可能なモデル系を 用いて解読することができる。 生体外でのアッセイシステムは、標識されたIgGリガンドとIgGで被覆された赤 血球(EA)に対する可溶性レセプターと細胞膜レセプターとの競合を基にしている 。Fc γレセプターをもたない細胞(Fc γ receptor-negative cells)には、IgG 含有免疫複合体および抗体で被覆された細胞と結合し取り込む機能的能力を保持 するトランスメンブレンFc γ RIII分子が形質移入させられている(ルイズとシ ュレイバー(Ruiz and Schreiber),J.Clin.Invest 88:149(1991))。これらの アッセイを使用して、可溶性レセプターの機能及び可溶性レセプターが膜レセプ ターによるEAおよびIgGのオリゴマー体の検出を妨げる能力が調べられる。可溶 性Fc γ RIIIの機能はまた生体内においても調べられる。これらの研究では、確 立された実験動物モデルを使用して、生体内で投与された可溶性Fc γ RIIIが抗 体で被覆された細胞のクリアランスに変化をもたらすかどうかが調べられる(ル イズおよびシュレイバー(Ruiz and Schreiber),J.Clin.Invest 88:149(1991)) 。 可溶性Fc γ RIIIの免疫調整能が同様な方法で調べられる。 実施例3: 食作用のシグナルメディエーションに必要な細胞質チロシン残基実験の手順: プラスミド構築とポイント変異の導入: pSVL真核発現ベクター(Pharmacia LKB,Piscataway,NJ)が、COS-1細胞内での Fc γ RIIIAの発現に用いられた。huFc γ RIIIA α cDNAが、pSVLのXbaIおよび BamHIクローニング部位にクローニングされた。同様に、muFc γ RIIIA γ cDNA が、XhoIおよびBamHIクローニング部位にクローニングされた。TCR/Fc γ RIIIA ζは、pSVLのXbaIおよびBamHIクローニング部位にクローニングされた。γ鎖の 細胞質チロシンのフェニルアラニンによる保存型置換は、2段階重複伸張ポリメ ラーゼチェインリアクション(PCR)(ホートンら(Horton et al),Biotechniques 8:528(1990))を用いて行われた。二重チロシン置換変異体(double tyrosine sub stitution mutants)は、N末端のチロシン残基の置換に続いてC末端のチロシン残 基を置換することにより、連続的に構築された。それぞれの突然変異体から6つ のクローンが単離され、DNAシークエンシングにかけられた。正しいDNA配列をも つ幾つかのクローンのうち、さらに研究を進めるためにそれぞれのチロシン置換 (体)から2つのクローンが無作為に選択された。 一過性トランスフェクション(transient transfection): Fc γ RIIIAイソ型(isoform)、Fc γ RIIIA-γγ、Fc γ RIIIA ζζは、Cos- 1細胞へのγもしくはζのcDNA及びαのcDNAを同時トランスフェクション(cotran sfection)することにより生成された。cDNAのトランスフェクションは改良 DEAE -デキストラン(DEAE-Dextran)法を用いて行われた。すなわち、300,000個のCOS- 1細胞がトランスフェクションの24時間前に35mmウエルプレートに接種された。7 0-80%の集密(confluence)プレートは二度洗浄され、トランスフェクションに先 だってダルベッコ改良イーグル培地(Dulbeco's Modification of Eagles's Medi um)(DMEM,Gibco BRL,Grand Island,NY)中で30分間インキュベートされた。4 μgのプラスミドDNA(0.5μg/μl)がNu培地(10%のNu血清[Collaborative Biomedi cal,Two oak Park,Bedford,MA]、1mg/mlのDEAEデキストランと100μMのクロ ロクイン(Chloroquine)を加えたDMEM)を含む1mlのトランスフェクション緩衝液 にゆっくりと加えられた。DNAを含むトランスフェクション緩衝液がCOS-1細胞に 加えられ、37℃で4時間インキュベートされた。 細胞はその後、リン酸緩衝食塩水(PBS)中で10% DMSOにより2分間ショックを与 えられ、DMEMで2度洗浄され、Nu血清が補われたDMEM中で生育された。細胞はト ランスフェクション後48時間で調べられた。 免疫蛍光染色とフローサイトメトリー: トランスフェクションさせた細胞は転移ピペットを用い染色緩衝液(0.02%の窒 化ナトリウムと0.1%のBSAを含むPBS)中に回収された。細胞は遠心分離され、60 μlの染色緩衝液中に再懸濁され、抗-Fc γ RIIIA mAb,3G8(アンケレスら(Unk eless et al),Annu.Rev.Immunol.6:251(1988))、もしくはイソ型対照(isoty pe control)のいずれかとともに4℃で30分間インキュベートされた。細胞は洗 浄され、フルオレセインと結合させたヤギ抗マウスIgG(Tago Inc.Burlingame, CA)を用いて染色された。染色された細胞はファックスター(FACstar)フローサイ トメーター(Becton Dickinson Co.,Mountain View,CA)を使用して測定された 。 IgG感受性化させたRBCs(EA)の結合と食作用: カルシウムとマグネシウムを含まないPBS中の滅菌ヒツジ赤血球細胞(109/ml) は亜凝集する(subagglutinating)力価と等量のウサギ抗ヒツジRBS抗体(Cappel L aboratories,Cochranville,PA)とともにインキュベートすることにより、感受 性化させられた。IgG感受性化させたRBCs(EA)はPBSで二度洗浄され、トランスフ ェクションさせたCOS-1細胞を覆う(overlaying)ために最終濃度109/mlになるよ う再懸濁された。細胞は以前に示されたように(インディックら(Indik et al), J.Clin.Invest.88:A66(1991))、ロセッティング(COS-1細胞あたり>10EA)と 食作用について調べられた。食作用の分析のために、EAと結合したCOS-1細胞(3 度の洗浄後)は表面に結合したEAを除くために、低浸透圧性PBSを用いた短時間の 低浸透圧ショック(35秒)を与えられた。その後、細胞はライトーギムザ染色溶液 で染色され、食作用(摂取されたEA)が光学顕微鏡にて検査された。得られた結果 はスチューデントのT-検定により解析された。 生体外でのキナーゼ分析: トランスフェクションさせた細胞(2x107細胞)はPBSで一度洗浄され、5μg/ml の抗-Fc γ RIIIA mAbとヤギ抗マウスIgGのそれぞれとともに10分間氷上で連続 してインキュベートされた。細胞はPBSで一度洗浄され、フォスファターゼとプ ロテアーゼの阻害剤を含む溶菌緩衝液(150mM塩化ナトリウム、25mM ヘペス[pH 7.4]と1%ポリオキシエチレン10オレイルエーテル[BRIJ-96; Sigma,St.Louis MO ])を1.5ml添加する前に、室温で3分間インキューベートされた。フォスファタ ーゼとプロテアーゼの阻害剤(1mM EGTA,1mMオルソバナジン酸ナトリウム(Naorth ovanadate),1mM PMSF,10μg/mlのアプロチニン、50μg/ml ロイペプチンと10 0μg/mlの大豆トリプシン阻害剤)が溶菌緩衝液に新たに加えられた。氷上で15分 間溶菌(反応)させた後、細胞溶解物は清浄化するために4℃で30分間遠心分離 された。Fc γ RIIIA-γ鎖は溶菌緩衝液中で抗ヒトγ抗血清(ジーン-ピエール キネット(Jean-Pierre Kinet)提供,NIAID-NIH,Rockville,MD)とタンパク質 A-セファロースCL4B(Sigma,St.Louis,MO)を用いて免疫沈降させられた。ペレ ットは溶菌緩衝液中で三度洗浄され、低塩緩衝液(100mM塩化ナトリウム,25mMヘ ペス,pH7.4と5mM塩化マンガン)中で一度洗浄された。ペレットは25mMヘペス,p H7.4,5mM塩化マンガン,5mMリン酸p-ニトロフェニル,1μM寒冷(cold)ATP(Boe hringer Mannheim,Indianapolis,IN)と5μCi γ-[32p]ATP(6000 Ciもしくは 222 TBq/mmol; Dupont NEN,Boston,MA)を含む30μlの混合物とともにインキ ュベート(20℃、10分間)された。還元化(reducing)SDS-PAGE試料緩衝液を添加す ることにより反応は停止させられ、標識されたタンパク質は12.5%の還元化(redu cing)SDS-PAGEゲルで分離された。そのゲルはメタノール/酢酸溶液中で固定さ れ、フォスフォセリンとスレオニンを除くために1N水酸化カリウムで処理され (55℃で2時間)、乾燥され、4日間オートラジオグラフィーにかけられた。 [Ca2+]iの可動化(Mobilization): カバーグラスにのせられた COS-1細胞は2μM Fura-2/AM(Calbiochem.San Di ego,CA)とともに30分間インキュベートされ、二度洗浄された。その後、そのカ バーグラスは[Ca2+]iの単一細胞多重測定(multiple single-cell measurements)のためレイデム細胞チャンバー(Leidem cell chamber)(Medical S ystems,Greenville,NY)に移された。Fc γ RIIIAレセプターはビオチニル化さ れた抗-Fc γ RIIIでクロスリンクされストレプトアビジンを添加されるか、も しくは抗-Fc γ RIII mAB 3G8全IgGでクロスリンクされた。正の対照として、10 μMのエピネフリンがCOS細胞上で発現したエピネフリンレセプターをクロスリン クするために添加された。カルシウムイメージングは、イメージ1AT定量蛍光シ ステム(Universal Imaging,West Chester,PA)を用い、ニコン ダイアフォト マイクロスコープ(Nikon Diaphot microscope)上で4Ox蛍光対物レンズを使用し て行われた。像は340nmもしくは380nm励起のいずれかで得られた(発光(emission )=510nm)。340/380比の像は1画素x1画素(の大きさ)を基準にして計算され、 それぞれの細胞内での平均340/380比が各時間ごとに決定された。340/380比は遊 離Fura-2酸を用いた溶液補正に基づき[Ca2+]iに転換された。Fc γ RIIIAαおよび会合するγおよびζ鎖により媒介される食作用 Fc γ RIIIAの野生型γおよびζcDNAは,Fc γ RIIIAα鎖と共にCOS−1細胞に 同時トランスクションされ、EA(感作RBC)の食作用を誘導する能力が測定 された。Fc γ RIIIAの表面発現は、フロー血球計算により求められ、γまたは ζのいずれでコトランスフェクションを行なっても効果は等しかった(表1)。 抗Fc γ RIIIAmABで染色された被コトランスフェクト細胞についての平均蛍光強 度(EMI)は、IgGイソ型コントロールで染色された細胞と比較して、ある いは、抗γ RIIIA mABで染色された擬似被トランスフェクト細胞に比較して、15 倍だけ増加した(表1)。トランスフェクタントは、IgG感作RBCs(EA)を結 合し、食作用を示す能力について調査された。約50%のCOS−1トランスフェクタ ントがEAを食作用によって結合した(表1)。野生型γによってトランスフェク トされたCOS−1細胞の顕微鏡観察では、EAの取り込みが一貫して被検査細胞の2 0±5%を示した(p<0.02)。このように、EAの食作用は、EAに結合したCOS−1細 胞トランスフェクタントの約40%において検出された。対照的に、ζ鎖を含むコ トランスフェクタントでは、EAが取り込まれた細胞が3.8%であった(p<0. 02)(表1)。さらに、食作用を示したζ含有細胞においては、細胞当たり の取り込まれたEAの平均数は減少し、γで観察されたレベルの半分に満たなかっ た。3つのcDNA,α、γおよびζが全てトランスフェクトされたCOS−1細胞では 、EAを取り込んだ細胞は16%を示し、食作用を一貫して減衰させることが分かっ た(表1)。対照的に、EAを担持する擬似トランスフェクタントも、E(非感作R BC)を担持するトランスフェクタントも何の結合も食作用も示さなかった。 トランスフェクションの効率はフロー血球計算で決定された。平均蛍光強度( MFI)は、同様の結果を示した3つの実験の内の一つについて示した。内在化し たPBCsは顕微鏡で観察した(1000x)。結果は、EAの食作用および結合(ロ ゼット形成)についての平均SEMとして示される。各クローンについて少なくと 3つの別個の実験が遂行された。各実験につき、1500細胞が5つの無作為に選択 された部位で計測された。*平均蛍光強度。§-PI(食作用指標):COS−1細 胞100個当たりの内在化RBCsの数。2つのγ鎖の細胞質チロシンは食作用に必要とされる 2つの保存γ鎖チロシンのFc γ RIIIAに媒介される食作用への影響を研究す るため、N末端(クローンM1AおよびM1B)近傍もしくはC末端(クローンM2Aお よびM2B)近傍チロシンを夫々フェニールアラニンで置換した。2チロシン置換 を持つ変異体については、両チロシンをフェニールアラニンで置換した(DMAお よ びDMB)(図1)。 フロー細胞蛍光測定法により測定されたMFIおよびロゼット形成陽性細胞のパ ーセントによって、γ変異体および野生型γを担持するすべてのトランスフェク タントにおいてレセプター複合体の表面発現は類似している事が実証された(表 2)。これらの発現のレベルを比較して、γ鎖の細胞質内尾部中のチロシン残基 は、表面発現に必要なFc γ RIIIAレセプター複合体の形成に必要のないことが 分かった。表2に要約された結果は次の通りである。M1 γ変異体は、食作用指 標(PI)で表されたように、99%を超える食作用活性減少を示した(食作用細 胞当たりの取り込まれたEAおよび最小の取り込まれたEAを担持するトランフェク タントの≦1%)(p<0.02)。M2およびDM γの変異体は、実質的に食作用 を示さなかった(調査細胞5000中1)(表2、図2) チロホスチン23による食作用阻害 食作用がチロシン残基のりん酸化を必要とするかを調査するために、Fc γ RIIIAと野生型γでコトランスフェクトされたCOS−1細胞をチロホスチン(tyroph ostin)23(tyr23)、つまりチロシンキナーゼの阻害剤の濃度を上げながら インキュベートした(Yaish et al,Science 242:933(1988)).Tyr23は、投与量 に応じて食作用を減少させ、25μMでは50%阻害および200−400μMでは完全な 阻害を示した(p<0.01)(表3)。対照的に、tyr23は、EAの結合に影響しなか った。tyr23(400μM)で前処理された後洗浄されたトランスフェクタント食作 用活性を部分的に、もしくは完全に、回復したので、食作用の阻害は生存率の減 少とは関連していなかった。(一晩洗浄、データ表示せず)。 γサブユニットのチロシン残基は生体外でリン酸化される γ鎖のチロシン残基がリン酸化される可能性をCOS-1 トランスフェクタントを 使用した生体外キナーゼ分析によって調べた。表4に示した結果は、野生型γ鎖 のチロシン残基は生体外でリン酸化される事を実証している。対照的に、変異体 γ鎖トランスフェクタントおよび擬似トランスフェクタントは、検出可能なリン 酸化を示さなかった。単一チロシン置換変異体(M1AおよびM2A)では、残りのチ ロシン残基にリン酸化が生じなかったので、この2つのチロシン残基のうちどち らか一つのリン酸化は他の一つのチロシン残基が完全であることを要するようだ (表3)。これらのリン酸化データは、二つのチロシン残基のどちらか一つの代 替によって食作用が大幅にクリアランスされるので、食作用シグナルを誘導する γ鎖の能力とよく相関している(表2、図2)。 生体外キナーゼ分析では、擬似トランスフェクタントを除いたすべてのレーン で約40kDaの明瞭なバンドを示した。このバンドは、γと共沈殿する結合リン酸 蛋白を示すのかもしれない。γの細胞質チロシンは、Ca2+の可動化に必要である γ鎖チロシンがカルシウムの可動化に必要かどうかを調べるため、個々のトラ ンスフェクト細胞(WT,M1A、M2A、または DMA)で、デジタルビデオ顕微鏡を使 用してFc γ RIIIA架橋の後カルシウム応答を測定した(表4)。COS細胞で Ca2+シグナルを惹起するエピネフリンがすべての実験で陽性コントロールとし て使用された。WTレセプター複合体を持つトランスフェクタントは、ビオチニ ル化された抗FcγmRIIIで架橋し、ストレプトアビジンを添加した後、あるいは 抗Fc γ RIII全IgGで架橋した後、典型的な一過性のカルシウム上昇を示した 。5つの連続した実験(169細胞)で、58%の細胞が、10μMエピネフリンで誘導 されるものの少なくとも50%カルシウムシグナルによって、抗Fc γ mRIIIに 応答した(表4、図4)。対照的に、M1A、M2A、あるいはDMAのいずれかでトラ ンスフェクトされたCOS細胞は、抗Fc γ RIIIに対するカルシウム応答を著しく 減少させたが、4つの実験のうち一つにおいて、M1AトランスフェクトCOS-1細胞 では著しいカルシウムの可動化が起こった。 実施例IV: マクロファージFC γ RIIIシグナリングは 蛋白チロシンキナーゼ活性化を誘導する 細胞内FC γ RIII γサブユニット内の特定のチロシン残基は、信号伝達およ び引き続くエフェクター作用に必要である事が、キメラまたは変異レセプターで トランスフェクトされたNK細胞およびリンパ球または繊維芽細胞を用いて確認さ れている(Darby et al.Blood 79: 352A Nov(1992))。マクロファージ信号伝 達中に生理学的関わる蛋白チロシンキナーゼ(PTK)およびホスホチロシンを含有 する基質を研究するために、肺のマクロファージまたは培養された単核球(M) 上の自然状態でのFc γ RIIIが調べられた。Fc γ RIIIがFab抗体と架橋した後 数秒以内のウエスタンブロットでは、ホスホチロシン基質の特徴的なパターンが 現れた。この応答は一過性で、多くの基質では5分目にピーク、10−20分後には 減少する。ホスホチロシンのパターンは新しいマクロファージおよび培養された 単核球では区別できなかった。これによって、後者が有用な生体外モデルとして 実証された。GAP自身ではないけれどp120rasGAPと結合している蛋白であ るP62は、これらホスホチロシン基質の一つとして特異的免疫沈殿によって確 認された。第二の基質は、造血発癌性産物であるp95vavであり、p95vavは 、TCR、slgおよびFcεRI活性化の後リン酸化されたチロシンでもあることが分か った。キナーゼPTK72/Syk、は今までB細胞Slgおよび肥満細胞FcεRIシグナリ ン グにおいてのみ確認されてきたが、マクロファージFc γ RIII活性化後の主要な ホスホチロシン基質でもある。抗Syk免疫複合体の生体外キナーゼ分析では、レ セプター連結後5−10分でSyk自動リン酸化に、3−4倍の増加が示された。Skyは またγ鎖Fc γ RIIIAの免疫沈殿物中に存在しているのが発見されている。この 事から、Skyがリン酸化されたγ鎖と結合している事が示唆される。 実施例V: アンチセンス・オリグヌクレオチド ヒトSyk mRNA用に2つのアンチセンス・オリグヌクレオチド(ODN)がデザイ ンされた。転写開始コドンを囲む領域をターゲットする線形アンチセンスODNを 使用した。他のアンチセンスODNは、ヒトSky mRNAの3つの異なる部位とハイブ リダイスできるステムループ構造を持つようにデザインされた。これらのSkyア ンチセンスODNsは、培養された単核球中でのFc γレセプターに媒介される食作 用信号中でのSykチロシンキナーセの作用を調査するために使用された。アンチセンス・オリゴデオキシヌクレオチドの構築: アンチセンスまたは交差(スクランブル)ODNsは、これをヌクレアーゼから保 護するために修飾された。5´末端にある一つのホスホジエステルのバックボー ン、3´末端にある二つホスホジエステルのバックボーンを、ホスホロチオエー トを用いて修飾した。Syk mRNAおよびODNsの二次構造(Law et al.J.Biol.Che m.269:12310(1994))の予測が、マキントッシュコンピューター上でのMacD NASISプログラム(Hitachi,Software,San Bruno,CA)を用いて実施された 。5´−CGCTGTCAGCCATGCCG-3´の配列を有する線形の17mer Sykアンチセン スODNは、Syk mRNAの転写開始コドンを囲む領域をターゲットする。ステムル ープ・アンチセンスODNは、Syk mRNA3つの異なるターゲット部位: ターゲッ トI(転写開始領域、ヌクレオチド番号159から173)、ターゲットII(4 51から463)、およびターゲット III(802から816)に対して相補的 な配列を含む57merである(Law et al.J.Biol.Chem.269:12310(1994))( 表5)。ステムループSykアンチセンスODNは、それ自身で茎(ステム)と輪(ル ープ)構造を形成し、ループドメイン中で最小の分子内二次構造を含むよう にデザインされている(図6)。ステムループSykアンチセンスODNは、5´-GGG GGGGCTGTCAGCCATGCCGTGTCTTGTCTTTGTCGCTTCTTGAGGAGCCCCCCC-3´である。線形 17mer SykアンチセンスODNは任意の配列5´-GCCCAAGATGATTCCAG-3´を持 つ。ステムループ61merコントロールODNは、ループドメイン内に任意の配列5 ´-ATGGAATCATCTTGGGCATTCATTCGTTCCTCAAAGAAGAATATGAA-3´を持つ。該線形お よびステムループコントロールODNもまた5´末端および3´末端をホスホロチ オエートで修飾された。リポソームの調製 コントロールのスクランブルホスホジエステルODNs、線形およびステムループ SykアンチセンスODNs各1μgを、PBS50μl中で、4μg(2μl)の リポフェクタミン(LIPOFECTAMINETM(GIBCO BRL、Life Technologies Inc.Gai thersburg,MD)と共にインキュベートした。該ODNリポソーム複合体を室温で4 5分間で形成させた。単核球の単離および培養: 健康な個人からの末梢血単核球細胞が標準付着手法(standard adherence pro cedure)(Darby et al.J.Immunol.152;5429(1994))によって単離された.す なわち、ヘパリン化血をフィコールーハイパーク法(Lymphocyte Separation Med ium; Organon Teknika,Durham,NC)で遠心分離し、界面細胞を二回PBSで洗 浄した。単核球細胞を10%の熱失活されたFCSおよび2mM Lグルタミンと共にRP MI1640(GIBCO、Life Technologies Inc.Gaithersburg,MD)を含む完全培地中 に再懸濁させた。細胞を37℃で、予めFCSで被覆した組織培養フラスコ上に 付着させた。45−90分後、非付着細胞をHBSS中で粗放洗浄によって除去 した。激しく攪拌することによって細胞を収穫した。単核球の収量は、2−6x 107細胞/500ml血であった。単核球は、常にトリパンブルークリアラン ス法によって判定されたところ98%を超える生存であった。単離された単核球 は、L−グルタミン(2mM)及び10%熱失活されたFCSを補給されたRPMI 1640中で37度5%CO2で保持した。細胞のオリゴデオキシヌクレオチド処理 1x105単核球を、2μg/mlのリポフェクタミン、0.5μMの線形コントー ル、0.5μMの線形SykアンチセンスODNまたは0.1μMのステムループコント ロール、0.1μMステムループSykアンチセンスODNを含むODN-リポソーム複合体 と共に、24ウエルプレート(Falcon; Becton Dickinson Labware、Lincoln Pa rk,NJ)中無FCS0.3mlRPMT1640培地中で37℃4時間インキュベートした。同 量のODNリポソーム混合物もまた各ウエルに二日目に添加した。培地を、10% FCSを含むRPMI1640と共に最終容量1mlとなるように加えて、細胞を37℃ 2日間インキュベートした。これにより、1x 105単核球は、4μg/mlのリ ポフェクタミンおよび1.0μMの線形コントロール、1.0μMの線形Sykアン チセンスODNまたは0.2μMのステムループコントロールまたは0.2μM Skyステ ムループアンテセンスODNを含むODNリポソーム複合体と共に2日間インキュ ベートされたことなる。IgG感作された赤血球細胞(EA)の調製: 1x 109 シープ赤血球細胞(RBCs)/ml(Rockland Inc.,Gilbertville,P A)を同量のラビットの抗シープRBC抗体(Cappel Laboratories,West Chest er PA)の最高サブ凝集濃度(subagglutinating concentration)で37℃30分 感作した。IgG感作されたRBCsを二回洗浄し、先に記載のようにPBS中 に最終濃度1x 109RBCs/ml(Schreiber et al,J.Clin.Invest.56:1 18981975))となるように再懸濁した。IgG 感作されたRBCs(EA)の食作用: アンチセンスODNsで処理された単核球を37℃30分EA(EA対単核球の比率100 :1)と共にインキュベートした。細胞を低張液PBSに短時間接触させ、付着 性EAを除去した。次に該細胞をライトギムザ染色し、食作用で取り込まれたRB Csを顕微鏡で計測した(x1000)。100の単核球を無作為に選択し、内在化された EAを食作用指標として表した。フローサイトメトリー分析: 単核球を抗Fc γ RI(32.2)Indik et al,Blood 83:2072(1994))または抗Fc γ RII(IV.3)(Indik et al,Blood 83:2072(1994))もしくは抗Fc γ RIII (3G8)moAb(Park et al,J.Clin.Invest.92:1967(1993)),Park et al,J. Clin.Invest.92:2073(1993))で4℃30分でインキュベートし、0.1%子牛血清ア ルブミン(BSA)および0.02%窒化ナトリウムを含む無カルシウム・マグネシ ウムPBSで二回洗浄し、FITC抱合ゴート抗マウスF(ab´)2IgG(Tago Burlingamne,CA)で4℃30分で標識を施した。次に細胞を洗浄し、1%のパラフ ォルムアルデヒドで固定した。蛍光をFACSar(Becton Dickinson,Mountain View ,CA)および平均蛍光強度データおよび概略プロットをコンソート(Consort)30 ソフトウェアを使用して得た。すべてのサンプルに対して10、000事象が対数蛍 光スケール上に記録された。逆転写されるポリメラーゼ・チェイン反応(RT−PCR): 全RNAをスクランブル・コントロールおよびSykアンチセンスODNsで処理さ れた単核球から単離した。c DNAを任意の6ヌクレオチド・プライマー(Boehri nger Mannheim,Indianapolis,IN)によって全RNA から合成した。PCRを、 合成されたcDNAをテンプレートとして、下記の二つのプライマー: Syk mRNA(Law et al,J.Biol.Chem.269:12310(1994))のヌクレオチド 番号122から139に対応するSyk−Hプライマー: 5´−GGTGTGTGCCCTCCGGCC− 3´、および Syk−Mプライマー: 5´−CTGCAGGTTCCATGT−3´(ヌクレオチド番号 550−564) を使用して実施した。PCR産物は、サザン・ハイブリデイゼーションによって 分析された。サザン・ハイブリデイゼーション RT−PCR産物は、1.5%アガロースゲル上で電気泳動された。DNAはナイロ ン膜(NEN Research Products,Boston,MA)上に移植された。移植された膜は 、6 X SSPE及び50%のフォルムアミド中、ビオチン化された内部プローブ(Sy k-pS:5´-GGGAGTGGTAGTGGCAGAGG-3´、ヌクレオチド番号408−427)でハイ ブリダイズされた。0.1xSSC中50℃で膜を洗浄した後、ハイブリダイズし たバンドは、化学蛍光検出試薬(PROTOGENETM,Nucleic Acid Detection System ,GIBCO BRL Life Technologies Inc.Gaithersburg,MD)で視覚化された。結果 線形SykアンチセンスODN(1μM)でインキュベートされた単核球は、 食作用のレベルの低下が見られた。食作用は、食作用指標(PI、220±8.8から 113±12.3へ)に見られるように49%だけ低下した。単核球をステムループSyk アンチセンスODN(0.2μM)でインキュベートすると、食作用が更に大きく89% も減少した(PI、220±8.8から24±4.2へ)(図7)。スクランブルド・コン トロールODNs、線形またはステムループ(0.2μM)ODNもどちらもFc γ RIIAに 媒介される食作用に重篤な影響を与えなかった。同様に、リポソーム単独でも、 Fc γ RIIAに媒介される食作用を減少させはしなかった。Fc γ RIIA発現は、培 養された単核球におけるフローサイトメトリー分析によって測定されたように、 いかなる処理によっても変化しなかった。この結果によって、Syk チロシンキナ ーゼは、単核球におけるFc γ RIIAに媒介される食作用についての主要なシグナ ル・トランスデューサーであることが実証され、またIgG被覆細胞の食作用にお いて、Fc γ RIIAとSyk キナーゼ(チロシンリン酸化も同様に)間の関わり合い が重要である事が示された。 次に、単核球中で減少した食作用は、Syk mRNAレベルと相関しているかどうか が決定された。定量的RT−PCR(逆転写されたポリメラーゼ・チェイン反応 )を使用し、単核球中でのSyk mRNAの細胞質内レベルを決定した。全RNAをSykア ンチセンスODNsで処理された単核球(1x 105細胞/ml)より単離し、第一鎖 cDNAを合成するのに使用した。図8に示すように、線形SykアンチセンスODN (1.0μM)は、実質的にSyk mRMAを減少させた。ステムループSykアンチセンス ODN(0.2μM)によって、Syk mRMA(図8)は完全に除去された。対照的に、 二つのスクランブルドコントロールODNs(1.0μMの線形コントロール、ま たは0.2μMステム・ループコントロール)およびリポソーム単独でもSyk mRMA を減らなかった。これらの結果によって、SykアンチセンスODNsは、線形もステ ムループも共に、単核球中で配列特異的なマナーでSyk mRMAを分解することがで きる事が分かった。更に、ステムループSykアンチセンスODNは、mRNAをター ゲットするについて線形アンチセンス分子よりも有効性を示した。 実施例VI: ステムループSykアンチセンスオリゴヌクレオチド(ODNs) によるヒスタミン分泌の阻害 実験デザイン細胞培養 : RBL−2H3細胞(ヒスタミン配合ラット肥満細胞)は、17% 子牛胎児血清、100Uのペニシリンおよびml当たり100μgのストレプト マイシン、および4mMのグルタミンを補給した最小必須培地中で、37℃5% CO2中で育生させた。細胞を分析の24時間前に1.6cmプレート上または24 ウエルプレートに1x105細胞/ウエルの濃度で播種した。アンチセンスODNsの構築 : ヌクレアーゼ消化から保護するために、アンチセン ス及びセンス、コントロールODNsは、ホスホジエステルバックボーンの5´ 末端にホスホロチオエート一つを、二3´末端に二つを付加することによって修 飾した。3つの線形SykアンチセンスODNS:ターゲットI線形SykアンチセンスO DN(5´ATTGCCCGCCATCTCT3´,Syk mRNAの翻訳開始コドンを含むヌクレオチ ド319から333)、ターゲットII(5´GATTTGATTCTTGAG3´,ヌクレオチド1175-11 89)、ターゲットIII(5´ATTTGGTAGTATCCCT3´、ヌクレオチド1465から1479) がデザインされた。ステムループSykアンチセンスODNは、該3つのターゲッ ト部位と相補的な配列からなる60merである(図9)(上記実施例Vも参照)。細胞のODN処理 : リポフェクション項目(details)の前に、5 x 104また は 1x 105RBL−2H3細胞が、24ウエルプレートの各ウエルに播種された 。二日目に一回三日目に一回の二回、ODNリポソーム複合体を添加した。毎回 、4μlのDOTAP(リポフェクタミン)(1μg/μlストック)及び2 μl ODN(1μg/μl)の複合体を、EMEM(75μl全量)中で形成させた。 ODNリポソーム複合体は、175μlの無血清培養培地を含む各ウエルに添加 された。該細胞は37℃24時間インキュベートされた。二回目のODNリポソ ーム複合体(75μl)を添加し、培養培地を5%FCS(最終容量 1.0ml)に 調整し、トランスフェクトされたRBL−2H3細胞は37℃で、ヒスタミン分 泌分析の前に、もう一日インキュベートされた。逆転写されるたポリメラーゼ・チェイン反応(RT−PCR): 全RNAをSykセンスコントロールまたはSykアンチセンスODNで処理された RBL−2H3から単離した。cDNAを任意の6ヌクレオチド・プライマー及び オリゴ(d)Tによって全RNAから合成した。PCRを合成されたcDNAをテンプ レートとして二つのプライマー: ラットー5Syk 5´−TTTGGCAACA TCACCCGC−3´(ヌクレオチド番号368−386)及びラット−3Sy kプライマー:5´−ACTTATGATGGCTTGCTC−3′(ヌクレオ チド番号748−762)を使用して実施した。γ鎖及びβアクチンプライマーをコン トロールとして使用した。ヒスタミン分泌分析 : ヒスタミン分泌分析を下記記載のようにラットRBL− 2H3細胞IgEレセピターFcεRIを架橋し、酵素免疫分析キット(immunote ch,France)を使用してヒスタミンの分泌を測定するにより遂行した。ウエル当 たり1x 105RBL−2H3細胞を含む24ウエルプレートを1.0mlEMEM中で 一晩37℃でインキュベートした。該細胞をPBS で一度洗浄し、氷上で1.0m lのPAGCM(標準ヒスタミン分泌緩衝液)及び100μlのFcεRI抗体と共に30分 間インキュベートした。PBSで一回静かに洗浄した後、RBL−2H3細胞を次の様に 、つまり、1.0mlのPAGCM緩衝液単独(ネガテイブコントロール)、10μlのカル シウムイオノフォア(50μg/ml ストック)を含有する1.0mlのPAGCM緩衝液(ポ ジテイブコントロール)、または10μlのゴート抗マウス抗体(1mg/ml)含有す る1.0mlのPAGCMで30分37℃で、インキュベートした。ヒスタミンを含有するPA GCM緩衝液を該細胞から除去し、酵素分析よって分析した。標準カーブを作成す るために100μlの標準を含めた。 結果 図10Aに提示した結果によって、RBL−2H3細胞におけるSyk発現が、Syk センスODNの存在ではなくアンチセンスODNの存在によって著しく阻害される 事が実証される。RBL−2H3細胞をSykアンチセンスODNで処理してもβアク チン発現には影響を与えない(図10B)。同じく、RBL−2H3細胞をSyk アンチセンスODNで処理してもγ鎖の発現には影響を与えない。 FcεRI及びゴート抗マウス抗体を架橋した後、ステムーループSyk アンチセン スODNsで処理したRBL−2H3細胞は、センスDNAで処理したコントロー ル細胞と比較して、74%も少なくヒスタミンを分泌した。 アンチFcεRI及びゴートアンチマウス抗体 センスDNA 1.9ngのヒスタミン分泌 アンチセンス 0.5ngヒスタミン分泌(74%阻害) 上記に引用したすべての文献は、参照によりこの明細書に取り込まれている。 本発明は最も実践的でかつ好ましい態様であると目下考えられるものと関連して 記載されているが、本発明を開示された態様に限定するものではない。しかしな がら反対に添付された請求の範囲の精神及び範疇内に包含される様々な変形例及 び等価な脚色は、カバーされるものと意図される。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                           How to inhibit phagocytosis   This application is a continuation-in-part of application no. 08 / 483,530 filed on June 7, 1995. This parent application is a continuation-in-part of application no. 08 / 316,425 filed on September 30, 1994. Is a continuation-in-part application, which is further described in application Ser. No. 08 / 129,381, filed on Sep. 30, 1993. Partial continuation application. The contents of these applications are incorporated herein by reference. Department. 〔Technical field〕   The present invention generally relates to diseases resulting from the interaction between the immune complex and the Fc receptor. Regarding treatment. In particular, the present invention relates to cells coated with antibodies by phagocytosis inhibition (ant regulates clearance of ibody-coated cells), viruses, or soluble antibodies Modulating the interaction of immune complexes with cell or tissue Fc receptors How to do. The present invention also relates to the reaction between the antigen-antibody complex and the Fc receptor. It concerns the regulation of the immune response as an important starting step. [Background of the Invention]   Certain immunological disorders include monocyte or macrophage Fc (IgG) receptors. Is characterized by being disturbed. The increase in the number of Fc receptors -Elevated levels of Fc receptor mediators such as It can result from the secretion of fungal products. Decrease in the number of Fc receptors that can bind IgG Not only does the actual number of functional receptors decrease, It can result from being saturated by immune complexes. Like systemic lupus erythematosus In certain autoimmune diseases, the level of circulating immune complexes is elevated, Can cause receptor saturation.   In an autoimmune disease, the body's mechanisms for distinguishing itself from foreign invaders are normal. Does not work. Typically, the body begins to make antibodies to certain parts of itself; These antibodies elicit the immune system, which is caused by this abnormal antibody. Destroy the recognized tissue.   Autoimmune diseases have changed the focal points of an attack. Autoimmune lysis Blood anemia is a disease in which individual diseases cause one or more of their own red blood cell membrane antigens. Representative examples of a group of diseases that produce antibodies to them. Abnormal antibodies Once the red blood cells are coated, the red blood cells are then circulated by the macrophages of the spleen. From which it is subsequently destroyed in the spleen. This Typical lass diseases include immune hemolytic anemia, immune thrombocytopenic purpura and And autoimmune neutropenia. Another type of autoimmune disease is systemic There are types represented by lupus erythematosus and rheumatoid arthritis. these The disease causes chronic inflammation of joints, tendons, kidneys, lungs, heart and other organs. An example For example, in rheumatoid arthritis, the breakdown of articular cartilage into synovial fluid occurs later in the disease. Occurs in stages. However, in systemic lupus erythematosus, cartilage or bone degradation is Usually not seen. Systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis are often another type Occurs in association with autoimmune diseases of the Systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis In, tissue destruction is associated with the presence or absence of circulating IgG-containing complexes. Fc receptor When these complexes are identified in the tissue by cells having And possibly tissue destruction by other cells such as polymorphonuclear leukocytes in these tissues. It is believed to be started or increased. By these Fc receptors Reactions that elicit a range of immune-related reactions and have Fc receptors May damage the nearby body tissue of the vesicle.   Diseases involving interaction of IgG-containing immune complexes with macrophage Fc receptors The disease is often treated with corticosteroids or immunosuppressants. These cures Treatment can have a variety of serious side effects. The invention may be used alone or Offers alternative treatments that can be used in combination with conventional drug treatments You. [Summary of the Invention]   A general object of the present invention is to provide, for example, the phagocytic ability of cells bearing Fc receptors. Inhibits the clearance of antibody-coated cells or immune complexes To provide a way to adjust the   A specific object of the present invention is to modulate the clearance of an immune complex from a mammal. Is to provide a way to In addition, a specific object of the present invention is to provide a membrane-bound Fc receptor. Inhibits the binding of the immune complex to the receptor (and / or removes such a complex). To inhibit the sequelae of undesired tissue damage. To provide.   It is a further object of the present invention to provide suitable constructs and compounds for use in the above methods. It is to provide.   In one embodiment, the present invention provides a method for phagocytosing an immune complex (e.g., an IgG-containing immune complex). And / or intracellular biochemical activity by cells interacting with the immune complex A method for preventing secretion of a product. Examples of this method include immunocomplexes (e.g., I (gG-containing immune complex) into mammalian phagocytes in contact with Introducing endogenous kinase inhibitors into cells that activate Fc receptors The method consists of:   In another embodiment, the present invention relates to a mammal-derived immune complex (e.g., an IgG-containing (Immune complex). This method uses an immune complex Fc on the cell membrane into mammalian hematopoietic cells (eg, phagocytic cells) in contact with And introducing a molecule that specifically inhibits the expression of the receptor.   In yet another aspect, the invention relates to an immune complex (e.g., containing IgG) present in a mammal. Immunocomplexes) to bind to membrane-bound Fc receptors. You. This method involves the use of a membrane-bound Fc receptor for binding to the immune complex in the mammal. Introducing a soluble Fc receptor that competes with the sceptor. This introduction Under conditions that inhibit the binding of the immune complex to the membrane-bound Fc receptor. You.   In still another aspect, the present invention relates to a method for producing a mammalian cell having an Fc receptor. A method of inhibiting phagocytic ability. This method converts the 5 'end to the 3' end. In the shooting direction,           i) a promoter that is functional in the cell,           ii) Double-stranded DNA segment whose transcribed single strand is Fc receptor One containing a sequence complementary to the endogenous mRNA encoding           iii) Intracellular termination sequence (polyadenylation signal) Introducing into the cell a construct comprising In this construct, the complementary strand is transcribed. Reduces Fc receptor expression by binding to endogenous mRNA It is introduced under conditions that inhibit the phagocytic capacity of the plant.   Further objects or advantages of the present invention will become clear from the description hereinafter. This disclosure describes three classes of Fcγ receptors (FcγRI, FcγRII and Fcγ RIII) should be read in light of the teachings available in the art for isolation and cloning. Would be preferred. For example, Allen and Seed, Science 243: 378 (1989); Hibb s et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85: 2240 (1988); Exp. Med. 166: 1668 (1987); van de Winkle et al, FASEB J., 5: A964 (1991); Brooks et al, J., Ex. p.Med. 170: 369 (1989); Stuart et al., EMBO J. p. 8: 3657 (1989); Qui et al, Scie nce 248: 732 (1990); Simmons and Seed, Nature 333: 568 (1988); S chreiber et al, Clin. Immunol. Immunopath. 62: See also S66 (1992). [Brief description of drawings]   FIG. 1 shows a schematic of FcγRIIIAγ wild-type and mutant. Signal distribution Row (S), foreign peptide (E), transmembrane domain (TM), and cytoplasmic domain (CY) is shown above the schematic diagram of the γ chain. The enlarged area contains the conserved motif. 2 shows the region of the nucleotide sequence of the γ chain. In this figure, the murine gamma chain is shown. You. The conserved amino acid sequences of the γ and ζ chain gene families are It is underlined. Encoded by the TAC codon at nucleotides 235-237 Tyrosine close to the N-terminus (Ra et al, J. Biol. Chem. 264: 15323 (1989)) is Conservatively replaced by phenylalanine encoded by (clone M1A and Clone M1B). Similarly, close to the C-terminus encoded by TAT (168-270) Tyrosine was replaced with phenylalanine encoded by TTT (clone M 2A and clone M2B). For tyrosine double substitution mutants, N-terminal and C-terminal Were replaced with phenylalanine (clone DMA and clone D). MB). The solid line of the mutant shows the same sequence as that of the wild-type γ gene.   2A and 2B show IgG sensitization by transfected COS-1 cells. 2 shows binding and phagocytosis of RBCs (EA). Transfected COS-1 cells By EA (left figure; A, C, E and G). For transfected COS-1 cells EA phagocytosis (right figure; B, D, F, and H). (A) and (B): FcγRIIIAα and wild type Binding and phagocytosis of γ-transfected COS-1 cells. Shown using wild-type γ The three poorly eaten BCs (phagocytosed RBCs) were identified in Figures (B), (C), and (D). Indicated by arrows: transfectants containing α and γ ( MIA). (E) and (F): transfectants containing α and γ (M2A). (G) and (H): Transfectants containing α and γ (DMA). The phagocytosis of EA is not seen in D, F and H. I can't. The photo shows a 1000x magnification.   FIG. 3 shows wild-type and mutant by kinase assay in vitro. Fig. 7 shows the phosphorylation of tyrosine in the γ chain. This gamma chain is converted to the COS-1 transfectant Immunoprecipitation was performed using an anti-γ antiserum from the lysate. In vitro phosphorylated test The material was run on a 12.5% reducing SDS-PAGE gel. This gel is Treated with 1N KOH and dried to remove foserine and threonine After 4 days, the autoradiogram was examined. Lane 1: Fc γ RIIIA-α and γ c Pseudo-transfectants using pSVL vector without DNA inserted (Shamtra nsfectants). Lane 2: FcγRIIIAα + wild-type human γ. Lane 3: Fc γ RIIIA α + wild type mouse γ. Lane 4: FcγRIIIAα + M1A. Lane 5: FcγRIIIAα + M2A. Lane 6: FcγRIIIAα + DMA. The phosphorylated γ chain is indicated by an arrow ( (Shown on the bottom right). The arrow with an asterisk (shown in the upper right) indicates a specific tyro of about 4OKDa. Shown is the band of the Singlin protein.   FIGS.4A-4D show that Ca following FcγRIIIA stimulation2+Mobilization Is shown. [Ca in each cell2+] i is measured by cross-linking of FcγRIIIA nking). Anti-FcγRIII mAb, epinephrine (positive control () And the calcium ionophore are indicated by arrows in the respective figures. More shown. Images were obtained with either 340 nm or 380 nm excitation (emission (em isson) = 510nm). The 340/380 ratio is based on the correction using Fura-2, [Ca2+] i Was. The reaction of M1A, M2A and DMA transfectants It was significantly lower than that of Cactant.   FIG. 5 shows the target sequence (target sequence) for stem loop antisense ODN. Indicate option III). All Syk mRNA sequences are used to find sequences without secondary structure 3 times, RNA secondary structure predict program ion program). Each scanning is 99 nucleos Consecutive 33 bases apart in a pseudoframe (referred to as frames A, B, and C) It was done. Most open with three staggered scannings Unique sequence was selected as the target sequence. The upper rectangle with dotted line is human Sy The cDNA sequence of k mRNA is shown (Law et al, J. Biol. Chem. 269; 12310 (1994)). S Three target sites for the Semuk Syk antisense ODN are Above the column lines are shown as three short solid lines (I, II, III). Target site I, II , And III correspond to nucleotides 159 to 173 (the region surrounding the transcription initiation codon). Region), corresponding to nucleotide numbers 451 to 463 and 802 to 816, respectively I do. Target III is shown in this figure as an example. Targets I and II are the same chosen. The putative secondary structure in the Syk mRNA region containing the target III sequence is Three staggered frames of 99 nucleotides each Shown in schemes A, B, and C. In three staggered frames, The circled nucleotides are the consensus sequence of Target III with minimal secondary structure.   FIG. 6 shows the secondary structure of the stem-loop Syk antisense ODN. The 7 nuclei Otide-length stem domains at their 5 'and 3' ends from G and C only Formed by a complementary termination sequence comprising the following nucleotides: The loop domain is 3 antisense sequences; 5'-CTGTCAGCCATGCCG-3 'sequence indicated by a square Is complementary to target I in Syk mRNA (see FIG. 5) and is indicated by a triangle. The 5'-GCTTCTTGAGGAG-3 'sequence is complementary to target II and is marked with a circle. The 5'-TGTCTTGTCTTTGTC-3 'sequence shown is also indicated by a circle in FIG. Complementary to target IIIT. The three different antisense sequences correspond to targets I, III, II Are connected in tandem in the order of 5 ′ to 3 ′. ● S is phosphoro Shows modification of thiolate (phosphorothiorate), 5 'end is phosphorothiolate 1 and 2 at the 3 'end.   FIG. 7 shows inhibition of Syk antisense ODNs on phagocytosis in monocytes. Mononuclear cells (1 x 10FiveCells / ml) is 4μg of Lipofectamine (LIPOFECTAMINE) / Ml and ODNs (linear control or linear Syk antisense ODNs are each 1.0μ M, stem loop control or stem loop Syk antisense ODN are 2. 0 μM) of the complex was incubated for 2 days, and IgG-sensitized red blood cells (EA) were Phagocytosis was examined. Phagocytosis index (PI) = RBCs taken up per 100 cells number. Each bar represents the mean ± SEM of three independent experiments.   Figure 8: Effect of Syk antisense ODNs on Syk mRNA in monocytes. Total RNA was 4 μg / ml lipofectamine (LIPOFECTAMINE) and ODNs (linear 1.0 μM each of control or linear Syk antisense ODNs Control 2 or Syloop antisense ODN 2.0 μM each) Mononuclear cells treated for 1 day (1 x 10FiveCells / ml) and the cDNA is Synthesized from total RNA by nucleotide primers. PCR to Syk DNA The rates were performed with two Sky primers (Syk-H and Syk-M) . The PCR products are analyzed by Southern hybridization and hybridized. The shifted bands were visualized by chemifluorescence reagents.   Figure 9: Comparison of rat and human Syk antisense   Figure 10: Stem-loop rat Syk kinase expression of Syk kinase expression in RBL-2H3 cells. Inhibition by antisense oligonucleotides (ODN). A. Investigation of Syk expression by RT-PCR using rat Syk primer. Lane 1: S Cells treated with yk antisense ODN, lane 2: treated with Syk sense ODN Cells, lane 3: reagent control, lane 4: no treatment, lane 5: molecular weight mer car. B. β-actin expression by RT-PCR using rat β-actin primer Survey. Lane 1: cells treated with Syk antisense ODN, Lane 2: Syk cell. ODN treated cells, lane 3: reagent control, lane 4: no treatment, Lane 5: molecular weight marker. → = β-actin. C. Γ chain promoter in RBL-2H3 cells treated with rat Syk antisense ODN Fc by RT-PCR using primerεInvestigation of RI gamma chain expression. Lane 1: Cells treated with Syk antisense ODN, lane 2: treated with Syk sense ODN Cells, lane 3: reagent control, lane 4: no treatment, lane 5: molecular weight Car. → = γ chain.   Figure 11: Structure of human Syk / ZAP-70 chimera [Detailed description of the invention]   The present invention provides, at least in part, cells from a mammal (e.g., For example, to methods of regulating clearance (from the mammalian circulatory system). Therefore The present invention relates to immunocomplexes with Fc receptors (e.g., those present on the surface of Autoimmunity characterized by interaction with coalescence (e.g., an IgG-containing immune complex) Those who treat immunological diseases such as diseases and immune-mediated diseases such as asthma Provide the law. The method of the invention results in the phagocytosis of cells coated with IgG antibodies. Altering the expression and / or function of the Fc receptor to reduce (Immune complex diseases such as lupus erythematosus and rheumatoid arthritis disease) The clearance of immune complexes circulating in the liver and spleen Enhanced, thereby depositing immune complexes in tissues such as the kidney and in joints It will be appreciated by those skilled in the art that procedures designed to prevent Will be. This enhancement of immune complex clearance was filed at the same time as the present application. Receptor described in co-owned application entitled "Method of stimulating phagocytosis" Liver and spleen macrophages using procedures for introducing sequences encoding Can be brought about by stimulating the page. All of the disclosure content of that separate application is Incorporated by reference in this specification.   More specifically, the present invention relates to Fc receptors required for phagocyte signaling. Inhibits the phosphorylation of protein components and associated molecules, resulting in immune complexes (e.g., IgG Soluble Fc receptor competes with membrane-bound receptor for binding of (containing immune complex) To provide a method to inhibit the function of Fc receptor by introducing into the circulation . The present invention also provides for the introduction of Fc receptor antisense constructs into receptor-producing cells. The present invention provides a method for inhibiting the expression of an Fc receptor. In addition, Akira provides a method for degrading Fc receptor RNA using, for example, ribozymes.Fc Inhibition of receptor-mediated signaling:   In one embodiment, the present invention provides a core arrangement within the cytoplasmic domain of an Fc receptor. By inhibiting the phosphorylation of the core sequence, immune complexes (e.g., IgG A method of preventing the uptake (eg, phagocytosis) of coated cells. Fc γ RII Phosphorylation of A cytoplasmic residues and the γ subunit of FcγRIIIA are involved in phagocytosis. Have been shown to be essential for signal transduction events (Indik et al, Trans. Ass. . Amer. Phys. 105: 214 (1992); Park et al, Clin. Res. 41: 324A (1993); Darby e t al, Blood 79: 352A (1992); Mitchell et al, Clin. Res. 41: 189A (1993); Huang  et al. Biol. Chem. 267: 5467 (1992); Hunter et al, Clin. Res. 41: 244A (1 993); Park et al, J. Clin. Invest. 92: 2073 (1993)). More specifically, FcγR Motif E-X8-D-X2-Y-X2-L-X12-Y-X2-L and FcRI present in the cytoplasmic domain of IIA D / E-X2, 7-D / E-Y-X2-L-X motifs present in the cytoplasmic domains of IIA γ and ζ chains Phosphorylation of tyrosine residues present within 7-Y-X2-L is required for phagocytic signaling. (The number after the letter X indicates the number of amino acids at that position; X is any amino acid X2 in Y-X2-L may be an acid, but the cytoplasmic domain of FcγRIIA or FcγRIII It is preferably an amino acid present in the Y-X2-L sequence of the γ chain of the above). These The second Y-X2-L in the sequence (motif) appears to be particularly important for phagocytosis. The present invention Intends to introduce inhibitors of kinases involved in phosphorylation into target cells. You. In specific aspects, the inhibitor is at least a functional tyrosine-containing motif. A peptide containing a similar sequence even if it is not the same as the portion (e.g., (Note the underlined part of the ream motif.) Acts as an inhibitor. In one example, the inhibitor is an Fc receptor lacking the extracellular domain. Fc receptor lacking the extracellular domain or transmembrane domain It can take the form of a scepter. Instead, the inhibitor is Or they may be structurally different from their functional parts, which are antagonistic or Phosphorylation may be inhibited non-antagonistically (for example, similar to the binding site of the active peptide). Pseudo-active peptides having various structural forms can be used). Mast (obesity) Cells, or FcεIn cells with receptors, mediators (e.g., Fc required for secretion of min, cytokine or leukotriene)εSequence of the γ chain of RI Hako Can be inhibited by using the above method.   The peptide inhibitor of the present invention or a mimetic thereof is, for example, a liposome. Can be directly introduced into target cells using a system (described in Science 26: 1877 (1993)). For administering a peptide modified to be capable of crossing a lipid membrane of a cell See also). Alternatively, the DNA sequence encoding the peptide inhibitor Can be introduced using gene therapy procedures so that it is produced intracellularly .   The inhibitor or the sequence encoding the inhibitor may be found in lung cells, including macrophages. The vesicle may be administered in the form of an aerosol. Inhibitor or inhibitor-encoding sequence Are particles that are phagocytosed by lung macrophages (e.g., liposomes, or If the sequence encodes an inhibitor, for example, Listeria It can also be present in the aerosol as a non-infectious bacterium). Phagocytosis As a result, the inhibitor or the sequence encoding the inhibitor is introduced into macrophages. Viral vectors also contain sequences encoding the peptide inhibitors of the present invention in the lung tree. It can be used to introduce into pulmonary tree cells. Vector is d Herpes or adenovirus with poor replication can also be introduced as an aerosol It can also be in the form of a vector. Also use retroviral vectors (In brief, Bajocchi et al., Nat. Genet. 3:22). 9 (1993); Lemarchand et al., Circ. Res., 72: 1132 (1993); Ram et al, Cancer Res. 53:83 (1993); Crystal, Am. J. Me d. 92: 445 (1992); Yoshimura et al., Nucl. Acids Res. 20: 3233 (1 992); Morecki et al., Cancer Immunol. Immunother. 32: 342 (199 1); Culver et al, Hum, Gene Ther. 1: 399 (1990); Culver et al. (Cu lver et al), Transplant. proc., 23: 170 (1991)).   Blood mononuclear cells can be ex vivo (ex) using sequences encoding the peptide inhibitors of the invention. (in vivo) and then redirect the patient to produce the inhibitor in vivo. May be entered.   Another approach to phosphorylation inhibition involves Fc receptor phosphorylation sites (e.g., For example, in FcγRIIA and / or in the γ subunit of FcγRIIIA). Includes the Use of Ribozymes Recognizing RNA Sequences That Identify Sequences and Enzyme Active Sites It is. The ribozyme is introduced using a carrier such as a liposome coated with IgG. , Directly into cells having the Fcγ receptor. Or I Liposomes coated with gE can be used for mast cells or basophils or associated γ IgE receptor Fc with subunitεDirected to other cells with RI. this The method should be an appropriate approach for use in treating allergic diseases Will be appreciated by those skilled in the art. The gamma subunit of the IgE receptor is a mast cell Fc likeεSecretion of intracellular mediators by cells with RI receptor Involved in the transmission of induced signals. Destruction of γ-strand RNA causes these biological activities The secretion of the product is expected to be inhibited.   According to the above approach, ribozymes administered as described above may have some Selected sequences (e.g., specific for FcγRIIA or FcγRIIIA RNA splicing sequence or 5 'untranslated sequence) The functional sequence of the receptor required for phagocytic signal transduction The RNA to be specified is digested and removed. Mediators (e.g. histami Fc required for secretion of cytokines, cytokines or leukotrienes)εThe sequence of the RI gamma chain The RNA sequence specified can be removed using this strategy.   The advantage of this method is that continuous production of the ribozyme in vivo can be achieved in vitro. Built packaging cells (e.g., Psi2-like cells; Miller and Rossman) Rosman), Biotechnique 7: 980, 1989 and recent techniques in molecular biology (Curr ent protocols in Molecular Biology), III: 9.1 1992 (supp. 17)). Can be performed using Like stopping ribozyme production, It will be appreciated by those skilled in the art that suicide genes can be contained in U.   For additional approaches to inhibiting receptor phosphorylation, use SyK Antisense constructs or ribosas targeting targeting sequences (see Example 5) Im use of implications. Syk other than ZAP-70 gene product of Syk kinase family The gene product is a diet of FcγRI and FcRIIIA mediated by both γ and ζ chains. It has been shown to stimulate action. (Certain Src-related tyrosine kinases ZAP-70 in the presence of ze can stimulate the phagocytosis of FcγRI and FcRIIIA. ) That is, by targeting the Syk sequence, inhibition of Syk expression and dependent phosphorus Inhibition of oxidation can be performed. Constructs and ribozymes suitable for use in this method are (Syk gene sequences, see Goat et al.) Biochem. Biophys. Res. Comm. 200: 28 (1994); Law et al. Biol. Chem. 26 9: 12310 (1994)).   Syk and ZAP-70 chimeras are related to differences in signaling between Syk and ZAP-70. Have been used to determine alternative sequences. The ZAP-70 mutant is a ZAP-70SH2 domain And the ZAP-70 intermediate region between the second SH2 domain and the catalytic domain It has been replaced by two domains and an intermediate region (FIG. 11). By the study This chimera enhances signaling of phagocytosis mediated by Fcγ receptors Indicates that it acts like Syk. In parallel, the SykSH2 domain and the Syk intermediate region Syk variants substituted with the ZAP-70SH domain and intermediate region were constructed. The chimera Works like ZAP-70 in not enhancing Fcγ receptor-mediated signaling. (Excluding COS-1 cell transfectants and phagocytic signaling). In addition, chimeras of Syk and ZAP-70 were generated. The Syk mutant has its SHTwoDome Inn is ZAP-70 SHTwoBuilt with domains replaced. This chimera is Syk kinase Works in a similar manner. Similarly, the ZAP-70 variant has its SHTwoSH domain of Syk kinaseTwo Built with domains replaced. This chimera acts like ZAP-70. The Syk variant is an intermediate between the second SH2 domain and the catalytic (kinase) domain. The region was constructed with the ZAP-70 and the middle region replaced. This chimera is ZAP- Acts like 70. Similarly, a ZAP-70 mutant binds the middle region of ZAP-70 to Syk kinase. It was constructed to replace the middle region. This chimera acts like Syk. Syk and ZA From these experiments with P-70 chimeras, the second SH2 domain and the catalytic (kinase) Sequences in the intermediate region between the domains correlate with Fcγ receptor signaling. It was found to be involved in the ability of Syk to interact (Park and Schreiber, Proc. N atl. Acad. Sci. USA 92: 7381 (1995) and its description of region / domain descriptions. See references cited here). Chimeras were wild-type Syk and ZAP-7. Generated using overlap PCR using 0.   The intermediate sequence of Syk kinase is involved in signaling events, including those involved in phagocytosis. Confirmation that such transduction events are selectively occurring. Script to test compounds (peptides or mimetics) by their ability to inhibit Cleaning (sieving).   For example, a test compound may be administered in the Syk intermediate region or at least 3, 5, 7, or Or larger amino acids, e.g., at least 20, 30, 50, or 100 amino acids. A portion of the Syk intermediate region consisting of succinic acid (eg, ZAP-70SH2 domain and kinase A chimera comprising a domain and a Syk intermediate sequence), and ZAP- 70 intermediate region sequences (eg, SykSH2 domain and kinase domain and ZAP-7 0 intermediate region sequence). The former, not the latter Compounds that bind to a polypeptide of the invention are signal mediated by the Syk intermediate sequence. Ring events (phagocytosis and mast cells and FcεFrom the cells that carry the receptor (Including mediator secretion). like this The compound may also be a cell that appears to be a Syk-deficient phagocytic cell (eg, Cells that carry the Fcγ receptor, such as COS cells, which carry the Syk intermediate sequence Construct encoding a polypeptide (e.g., encoding a chimera as described above) Construct), contacting the cells with a test compound to effect phagocytosis of the cells Phagocytosis by signaling with Syk kinase Is decrypted. Compounds that inhibit phagocytosis are mediated by the Syk intermediate region sequence. It is expected to inhibit other signaling events. So, Syk intermediate area Compounds that inhibit the phagocytic ability of cells expressing It may be tested according to the procedure. This approach also involves mast cells or other FcεReceptor-bearing cells, mediator secretion (e.g., histamine secretion) Also used to screen for compounds (peptides and mimetics) that inhibit DNA it can.   Identified using the above screen or identified by other methods Peptides and mimetics can be formulated as pharmaceutical compositions, for example, systemically or directly. It may be administered to the lungs (eg, by aerosol). Delivery is described here. It can be performed using the techniques described. Optimal dosages can be readily determined. (Eg, a second SH2 domain and a catalytic (kinase) domain (eg, purified form or Is in isolated form)) the Sky intermediate sequence between), or at least 5 or Part of the six amino acids or a mimetic thereof is within the scope of the present application, Can be used as described above.   As described below, the present invention relates to the Fc of mast cells and the like (see Example VI).εReceptor -To inhibit the secretion of mediators (eg histamine) from cells carrying them The use of Syk antisense constructs is also contemplated. Histamine (mast cell Ideta) Inhibition of secretion has therapeutic significance, for example, in the treatment of asthma. Preferred targets for the Syk antisense construct are described below (Examples V and V I). The construct can be administered systemically or directly to the lung (eg, by aerosol administration). Can be given. Delivery can be performed using the techniques described herein (liposomes). Including formulation). Optimal dosage depends on patient, construct and use Will depend on the mode of administration.Soluble Fc receptor   In a further aspect, the invention relates to the use of an immune complex (e.g., an IgG-containing immune complex) with a membrane association. By inhibiting the interaction between soluble Fc receptors, their phagocytosis To cause clearance of coalescence (or to cause secretion of mediators in the cell) (Fc receptor-mediated signaling). This way Competes with the membrane-bound form of the Fc receptor for immune complex binding. Introducing a soluble form of the Fc receptor into the circulation is involved. In a soluble form Transcripts are identified in megakaryocytes and cells of the monocyte / spinal cord lineage (Rappaport et al., Exp. Hemotol. 21: 689 (1993); Warmerdam et al. Exp. Med. 172: 19 (1990)). These transcripts Lacks the sequence encoding the transmembrane receptor region, but The sequence encoding the quality domain is retained. The present invention provides an extracellular domain alone And use of soluble Fc receptors containing combinations with cytoplasmic domains Intended. Competes with membrane-bound Fc receptor for binding to cells coated with IgG A suitable receptor is suitable.   The soluble receptor of the present invention may be an FcγRI, FcγRII or FcγRIII cell Outside Can take the form of domains alone or their binding moieties (or extracellular Fc in the form of domains alone or their binding partsεRI soluble receptor Is provided). As noted above, cytoplasmic domains or parts thereof Minutes may be present. The following are examples of possible soluble receptors. Where "I "" And "IIA" correspond to FcγRI and FcRγIIA, respectively. c Corresponds to α and γ chains of γ RIII. The first symbol is the origin of the extracellular domain And the second symbol indicates the origin of the cytoplasmic domain: I: I, I, I IA, IIA: IIA, I: IIA, α: γ, α, α: IIA, I: γ.   Soluble receptors may be chemically or recombinantly engineered, depending on their properties. (Horton et al., Biotechniques 8: 528 (19 90)). Soluble receptors are described above with respect to receptor phosphorylation inhibitors. As such, it can be administered systemically or pulmonary. Code the same thing When the synthesis of soluble receptors from existing sequences is performed in vivo, such The sequence is inserted into a suitable vector (see above) and functionally regulated in the target cell. You can link to an array.Antisense construct:   In a further aspect, the invention relates to the expression of an Fc receptor in a mammalian host cell. A method for inhibiting expression, comprising: i) a promoter functional in cells; ii) a double-stranded DN. Fragment of A (the transcribed single strand of which is the endogenous Fc receptor whose expression is to be inhibited) Iii) a termination sequence that is functional in the host cell. Comprising an antisense construct comprising in the direction of transcription from the 5 'end to the 3' end An antisense construct is introduced into said cell. This aspect of the present invention Depending on the specific Fc receptor in cells that produce many classes of receptors. It becomes possible to regulate the expression of the puter. This specificity is due to the intrinsic Fc receptor A sequence specific to the mRNA of interest for inclusion in the DNA segment ((ii) above). It is achieved by doing.   As indicated above, the present invention also targets sequences encoding Syk kinase. Antisense constructs. In such a construct, (ii) Is a segment of double-stranded DNA, and the transcribed single strand contains Syk kinase And a sequence complementary to the endogenous mRNA.   Factors affecting the effectiveness of antisense oligonucleotides include antisense oligonucleotides. Stability of oligonucleotides, delivery of cells to cytoplasm and purpose Ease of access to the mRNA. Syk antisense oligo of the present invention Nucleotides are changed in three steps to achieve these tasks. First, 5 The phosphodiester linkage at the 'or 3' end, preferably at both ends, is for example , Modified with phosphorothioates. Second, using a stem-loop structure, Protects the antisense sequence in the loop domain from creatase. The stem is , For example, a complementary termination sequence consisting only of G and C. Loop domain is an example For example, it carries three antisense sequences targeting different sites of Syk mRNA. You. mRNA forms a secondary structure by intramolecular hybridization, Secondary structure of NA prevents access of antisense oligonucleotides to target Maybe. Opening for easy access to antisense oligonucleotides To identify sequences with an “open” structure, the entire Syk mRNA sequence must have an RNA secondary structure predictor. Scanned by the measurement program. Syk mRNA is in three staggered frames (staggered  frame) and is the most open (“open ") The structure was chosen. The loop antisense oligonucleotide has three lines Shape antisense. Dramatically reduced phagocytic signal than mixtures of oligonucleotides Was. The high efficiency of stem-loop Syk antisense oligonucleotides This may be due to good stability from nuclease digestion. No. Third, Syk antisense oligonucleotides also improve cell delivery For example, it was complexed with a cationic liposome. Complexed with liposomes The stability of the stem-loop Syk antisense oligonucleotide was significantly altered Good. Fc γ RIIIA Stem-loop antiserum directed to γ subunit mRNA Sense oligonucleotides were also used. Peripheral blood mononuclear cells and stem loop Assessed by RT-PCR with the use of gamma chain antisense oligonucleotides. The mononuclear gamma chain message was reduced by> 80%. Liposomes are mononuclear cells / mac Lophage is delivered to the reticuloendothelial cell line, the main resident cell population. Lipo With thesome The complex of stem-loop Syk antisense oligonucleotides is a mononuclear cell / mac Down-regulation of Fc gamma receptor-mediated effects in lophages is required Useful as a therapeutic for immune diseases. Syk kinase alsoε It is linked to RI and B cell antigen receptors. Stemloop Syk Antisen Oligonucleotides also activate intracellular signalling through these receptors. Investigating signaling events and modulating signals mediated by these receptors It is useful for developing therapeutic agents.   According to an antisense embodiment of the present application, a sequence complementary to an endogenous mRNA target Is at least 15 nucleotides in length, preferably at least 30 nucleobases And more preferably at least 50 nucleotides. This array is Typically less than 5000 nucleotides in length, preferably less than 2000, and more desirably Is less than 1000 in length. This sequence is the transcribed region of the mRNA of interest. Or can be complementary to an untranscribed region (e.g., McKenzie et al.) , Molec. Immunol. 29: 1165 (1992), Mastuda et al, Mol. Biol. Cell 7: in pr ess, July (1996)). The length of the antisense sequence is The binding site of the mRNA depends on the nature of the antisense sequence, the mRNA site, May vary depending on the degree of inhibition. Optimization of these parameters is superfluous ( undue) It can be performed without experiment.   Suitable regulatory sequences and vectors can be selected from those known in the art. . For example, administration of an antisense construct to the lungs and spleen can be administered in vivo and It can be performed using transformation procedures both outside. Antisense transcript itself Directly into target cells using methods known in the art, including those described above. What can be done will be appreciated by those skilled in the art (Example 5-Modification of phosphorothiolate). Decorated Linear, Stem Loop Syk Antisense Oligonucleotide (ODNs) show partial resistance to serum nucleases-see also When). When complexed by liposome, phosphorothiole The antisense ODNs modified with the salt are more stable. Phosphoroty Olate-modified stem-loop Syk antisense ODNs are highly resistant in serum. Shows stability.   In addition to the above approach of inhibiting phagocytosis, the present invention provides FcγRIIA (Hunter e t al, FASEB J. June 1996, New Orleans, LA) Fc γ RIIB (e.g., Fc γ  It is also involved in the method of performing inhibition by introducing cells having RIIB2). The introduction of FcγRIIB is dependent on the sequence encoding FcγIIB or its Transfection / transformation of target cells with a partially encompassing construct (Transfecting / transforming) (Brooks et al. et al). Exp. Med. 170: 1369 (1989); Indik et al., Blood 83. : 2072 (1994)). Suitable constructs can be selected by those skilled in the art.   The following examples further illustrate certain aspects of the present invention, but are not limiting. is not. Example 1: Production of recombinant soluble FcγRIII   For the recombinant soluble FcγRIII protein, an expression vector as shown below is used. Can be produced using The soluble protein is a transmembrane protein. This corresponds to FcγRIII without the main. This construct encodes the receptor The sequence is introduced into mammalian cells under such conditions that expression of the sequence occurs. like this The recombinant protein produced in this manner was isolated from both the cell lysate and the supernatant. Separated.Transfection of adherent cells or cells in suspension:   Adherent cells (eg, CHO or COS cells) or a suitable suspension cell line Transfection can be performed. Express soluble form of Fcγ receptor Permanent transfectants that develop Achieved by filtration, calcium phosphate method or other established methods Can be done. Transfected cells were cultured for 48 hours and 2 mg / ml Geneticin (Gen eticin) (Gibco BRL, Gaithersburg, Maryland) or media containing other selective agents Can be selected in After about 12 weeks, positive colonies were isolated and cloned. Propagated for further characterization. The isolated clone is a soluble receptor To select the transfectant cell line that expresses the most Solid-phase immunoassay for enzymes using ELISA plates (Dynatech, Alexandria, Virginia) Checked by ELISA. Mass culture of adherent transfectants Is achieved by using a hollow fiber tissue culture system. Example 2: Function of soluble FcγRIII   The function of the soluble FcγRIII protein is evaluated both in vitro and in vivo. Soluble Fc receptor on binding of IgG immune complexes to cell membrane-bound receptors Influences local concentrations of ligands and soluble receptors, a table of membrane-bound receptors Areal density, valency of the ligand, and ligands for the two forms of receptor It depends on several factors, such as relative affinity. With soluble FcγRIII receptor Limiting factors in the interaction with ligands and cell membranes will make available model systems Can be used to decipher it.   The in vitro assay system consists of a labeled IgG ligand and an IgG-coated red Based on competition between soluble and cell membrane receptors for blood cells (EA) . Cells without Fc γ receptors (Fc γ receptor-negative cells) Retains functional ability to bind and take up cells containing immune complexes and antibodies Transmembrane FcγRIII molecules have been transfected Ruiz and Schreiber, J. et al. Clin. Invest 88: 149 (1991)). these Using the assay, the function of the soluble receptor and the The ability to interfere with the detection of oligomers of EA and IgG by a protein is examined. soluble The function of sex FcγRIII can also be examined in vivo. In these studies, Using an established experimental animal model, soluble FcγRIII administered in vivo It is examined whether it changes the clearance of cells covered by the body (see Ruiz and Schreiber, J. Clin. Invest 88: 149 (1991)) . The immunomodulatory capacity of soluble FcγRIII is examined in a similar manner. Example 3: Cytoplasmic tyrosine residues required for phagocytic signal mediationExperimental procedure:   Plasmid construction and introduction of point mutations:   pSVL eukaryotic expression vector (Pharmacia LKB, Piscataway, NJ) is used in COS-1 cells FcγRIIIA was used for expression. huFc γ RIIIA α cDNA is derived from pSVL XbaI and It was cloned into the BamHI cloning site. Similarly, muFc γ RIIIA γ cDNA Was cloned into the XhoI and BamHI cloning sites. TCR / Fc γ RIIIA ζ was cloned into the XbaI and BamHI cloning sites of pSVL. gamma chain Conservative substitution of cytoplasmic tyrosine with phenylalanine is a two-step overlapping extension polymer. Rase chain reaction (PCR) (Horton et al, Biotechniques 8: 528 (1990)). The double tyrosine sub mutant Institution mutants) were replaced with N-terminal tyrosine residues followed by C-terminal tyrosine residues. Constructed sequentially by substituting groups. 6 from each mutant Clones were isolated and subjected to DNA sequencing. The correct DNA sequence Of several clones, each with tyrosine substitutions for further study Two clones from (body) were randomly selected.   Transient transfection:   FcγRIIIA isoform, FcγRIIIA-γγ, FcγRIIIAζζ Cotransfection of 1 cell with γ or c cDNA and α cDNA (cotran sfection). Transfection of cDNA is improved DEAE -Performed using the dextran (DEAE-Dextran) method. That is, 300,000 COS- One cell was seeded in a 35 mm well plate 24 hours before transfection. 7 0-80% confluence plates are washed twice, prior to transfection. Because Dulbecco's Modified of Eagles's Medi um) (DMEM, Gibco BRL, Grand Island, NY) for 30 minutes. 4 μg of plasmid DNA (0.5 μg / μl) in Nu medium (10% Nu serum [Collaborative Biomedi cal, Two oak Park, Bedford, MA], 1 mg / ml DEAE dextran and 100 μM 1 ml of transfection buffer containing DMEM with Roquine (Chloroquine) Was added slowly. Transfection buffer containing DNA in COS-1 cells And incubated for 4 hours at 37 ° C. Cells are then shocked with 10% DMSO in phosphate buffered saline (PBS) for 2 minutes. They were then washed twice with DMEM and grown in DMEM supplemented with Nu serum. Cells They were examined 48 hours after transfection.   Immunofluorescence staining and flow cytometry:   Transfected cells were stained with a transfer pipette using staining buffer (0.02% nitric acid). (PBS containing sodium chloride and 0.1% BSA). Cells are centrifuged and 60 Resuspended in μl staining buffer, anti-FcγRIIIA mAb, 3G8 (Ankeres et al. eless et al), Annu. Rev. Immunol. 6: 251 (1988)) or an isotype control (isoty pe control) for 30 minutes at 4 ° C. Wash cells Goat anti-mouse IgG purified and conjugated with fluorescein (Tago Inc. Burlingame, (CA). Stained cells are from FACstar flow cytometer. Measured using a tomometer (Becton Dickinson Co., Mountain View, CA) .   Binding and phagocytosis of IgG-sensitized RBCs (EA):   Sterilized sheep red blood cells in PBS without calcium and magnesium (109 / ml) Is a rabbit anti-sheep RBS antibody (Cappel L) equivalent to the subagglutinating titer aboratories, Cochranville, PA) Sexualized. IgG-sensitized RBCs (EA) are washed twice with PBS, and Final concentration to overlay the affected COS-1 cells.9/ ml Was resuspended. Cells were expressed as previously shown (Indik et al., J. Clin. Invest. 88: A66 (1991)), setting (> 10EA per COS-1 cell) Phagocytosis was examined. For analysis of phagocytosis, COS-1 cells bound to EA (3 Short wash) with hypotonic PBS to remove EA bound to the surface. A hypotonic shock (35 seconds) was given. The cells are then stained with a light-Giemsa staining solution. And phagocytosis (EA ingested) was examined under a light microscope. Result obtained Was analyzed by Student's T-test.   In vitro kinase analysis:   Transfected cells (2x107Cells) are washed once with PBS, 5 μg / ml 10 min on ice with anti-FcγRIIIA mAb and goat anti-mouse IgG And incubated. Cells are washed once with PBS and phosphatase and plate Lysis buffer containing a protease inhibitor (150 mM sodium chloride, 25 mM Hepes [pH 7.4] and 1% polyoxyethylene 10 oleyl ether [BRIJ-96; Sigma, St. Louis MO ]) Was incubated at room temperature for 3 minutes before adding 1.5 ml. Phosphata Protease and protease inhibitors (1 mM EGTA, 1 mM sodium orthovanadate (Naorth ovanadate), 1 mM PMSF, 10 μg / ml aprotinin, 50 μg / ml leupeptin and 10 0 μg / ml soybean trypsin inhibitor) was added fresh to the lysis buffer. 15 minutes on ice After lysis (reaction), the cell lysate is centrifuged at 4 ° C for 30 minutes to clean Was done. FcγRIIIA-γ chain is used as anti-human γ antiserum (Gene-Pierre) in lysis buffer. Kinet (Jean-Pierre Kinet), NIAID-NIH, Rockville, MD) and protein Immunoprecipitated using A-Sepharose CL4B (Sigma, St. Louis, MO). Pele The wells are washed three times in lysis buffer and mixed with low salt buffer (100 mM sodium chloride, 25 mM (Pes, pH 7.4 and 5 mM manganese chloride). Pellet is 25 mM Hepes, p H7.4, 5 mM manganese chloride, 5 mM p-nitrophenyl phosphate, 1 μM cold ATP (Boe hringer Mannheim, Indianapolis, IN) and 5μCi γ- [32p] ATP (6000 Ci or Ink with 30 μl of the mixture containing 222 TBq / mmol; Dupont NEN, Boston, MA) (20 ° C, 10 minutes). Add reducing SDS-PAGE sample buffer This stops the reaction and the labeled protein is reduced to 12.5% cing) Separated on SDS-PAGE gel. The gel is fixed in a methanol / acetic acid solution. Treated with 1N potassium hydroxide to remove phosphoserine and threonine. (2 hours at 55 ° C.), dried and autoradiographed for 4 days.   [Ca2+] iMobilization:   COS-1 cells placed on a cover glass were 2 μM Fura-2 / AM (Calbiochem. San Di ego, CA) for 30 minutes and washed twice. After that, Bargrass was used for multiple single-cell measurements of [Ca2 +] i. measurements) for the Leidem cell chamber (Medical S ystems, Greenville, NY). FcγRIIIA receptor is biotinylated Streptavidin was added with anti-FcγRIII Alternatively, it was cross-linked with anti-FcγRIII mAB 3G8 whole IgG. 10 as positive control μM epinephrine crosslinks epinephrine receptor expressed on COS cells Added to remove Calcium imaging was performed using the Image 1AT quantitative fluorescence system. Nikon Diaphoto using stem (Universal Imaging, West Chester, PA) Use a 4Ox fluorescent objective on a microscope (Nikon Diaphot microscope). Was done. Images were obtained with either 340 nm or 380 nm excitation (emission ) = 510 nm). The 340/380 ratio image is calculated based on (the size of) 1 pixel x 1 pixel, The average 340/380 ratio in each cell was determined each hour. 340/380 ratio is play [Ca based on solution correction using isolated Fura-2 acid2+] i was converted.Fc Phagocytosis mediated by γ RIIIAα and associated γ and ζ chains   The wild-type γ and ζ cDNAs of Fc γ RIIIA are transferred to COS-1 cells together with the Fc γ RIIIA α chain. Measures the ability of EA (sensitized RBC) to induce phagocytosis when co-transfected Was done. The surface expression of FcγRIIIA is determined by flow cytometry, The effect was the same when co-transfection was performed in any of (1) and (2) (Table 1). Mean fluorescence intensity for co-transfected cells stained with anti-FcγRIIIAmAB Degree (EMI) is somewhere in comparison to cells stained with the IgG isotype control Compared to mock transfected cells stained with anti-γ RIIIA mAB. By a factor of two (Table 1). Transfectants have linked IgG sensitized RBCs (EA) And were examined for their ability to exert phagocytosis. About 50% COS-1 transfector Phagocytosed EA (Table 1). Transfected by wild-type gamma In microscopic observation of the isolated COS-1 cells, the uptake of EA was consistently It showed 0 ± 5% (p <0.02). Thus, phagocytosis of EA is dependent on COS-1 cells bound to EA. It was detected in about 40% of the vesicle transfectants. In contrast, those containing 含 む chains In transfectants, 3.8% of the cells had EA incorporated (p <0. 02) (Table 1). Furthermore, in ζ-containing cells that showed phagocytosis, Average number of incorporated EAs decreased in less than half of the levels observed for γ Was. In COS-1 cells in which all three cDNAs, α, γ and ζ, were transfected, Show that cells that take up EA show 16%, consistently attenuating phagocytosis (Table 1). In contrast, a pseudotransfectant carrying EA was also identified as E (non-sensitized R). Transfectants carrying BC) also showed no binding or phagocytosis.   Transfection efficiency was determined by flow cytometry. Average fluorescence intensity ( MFI) showed for one of three experiments that showed similar results. Internalized The PBCs were observed under a microscope (1000x). The results indicate the phagocytosis and binding of EA (b) (Zet formation) is shown as the average SEM. At least for each clone Three separate experiments were performed. 5 randomly selected 1500 cells for each experiment It was measured at the site where it was performed. * Average fluorescence intensity.§-PI (phagocytosis index): COS-1 fine Number of internalized RBCs per 100 cells.Two gamma-chain cytoplasmic tyrosines are required for phagocytosis   Study the effect of two conserved γ-chain tyrosine on FcγRIIIA-mediated phagocytosis Therefore, the N-terminus (clone M1A and M1B) or near the C-terminus (clone M2A and M1A) And M2B) nearby tyrosine were each replaced with phenylalanine. 2-tyrosine substitution For variants with, both tyrosines were replaced with phenylalanine (DMA and Yo And DMB) (Fig. 1).   MFI and rosette formation positive cells measured by flow cytometry. All transfectants carrying γ mutant and wild-type γ Surface expression of the receptor complex was demonstrated to be similar in Tanto (Table 2). Comparing these levels of expression, tyrosine residues in the cytoplasmic tail of the gamma chain Is not required for the formation of the FcγRIIIA receptor complex required for surface expression. Do you get it. The results summarized in Table 2 are as follows. M1γ mutants have phagocytic fingers Showed a decrease in phagocytic activity of more than 99% as represented by the Transfectants carrying EA and minimal EA per cell <1% of Tanto) (p <0.02). Mutants of M2 and DMγ are substantially phagocytic (1 out of 5000 cells examined) (Table 2, FIG. 2) Inhibition of phagocytosis by tyrphostin 23   To investigate whether phagocytosis requires phosphorylation of tyrosine residues, Fcγ COS-1 cells cotransfected with RIIIA and wild-type gamma were ostin) 23 (tyr23), that is, increasing the concentration of tyrosine kinase inhibitor Incubation was performed (Yaish et al, Science 242: 933 (1988)). Tyr23, dosage Phagocytosis, with 50% inhibition at 25 μM and complete inhibition at 200-400 μM Inhibition was shown (p <0.01) (Table 3). In contrast, tyr23 does not affect EA binding Was. Transfectant diet washed after pretreatment with tyr23 (400 μM) Inhibition of phagocytosis reduces survival, as the activity of the drug has been partially or completely restored. It was not related to small numbers. (Washed overnight, no data displayed). Tyrosine residue of γ subunit is phosphorylated in vitro   Potential phosphorylation of gamma-chain tyrosine residues with COS-1 transfectants It was determined by the in vitro kinase assay used. The results shown in Table 4 indicate that the wild-type γ chain Has been demonstrated to be phosphorylated in vitro. In contrast, the mutant γ-chain transfectants and pseudo-transfectants Showed no oxidation. For single tyrosine substitution mutants (M1A and M2A), Since no phosphorylation occurred at the rosin residue, either of the two tyrosine residues was Apparently one phosphorylation appears to require the completion of another tyrosine residue (Table 3). These phosphorylation data show the substitution of one of the two tyrosine residues. Induces a phagocytosis signal because phagocytosis is greatly cleared by the exchange It correlates well with the ability of the γ chain (Table 2, FIG. 2).   For in vitro kinase analysis, all lanes except for the mock transfectants Showed a clear band of about 40 kDa. This band is bound phosphate that co-precipitates with γ May indicate protein.γ cytoplasmic tyrosine is required for Ca 2+ mobilization   To determine if γ-chain tyrosine is required for calcium mobilization, Transfected cells (WT, M1A, M2A, or DMA) using a digital video microscope. Calcium response was measured after FcγRIIIA crosslinking (Table 4). In COS cells Ca2+Epinephrine, which elicits a signal, serves as a positive control in all experiments. Used. Transfectants with the WT receptor complex are biotin After cross-linking with stabilized anti-FcγmRIII and adding streptavidin, or Anti-FcγRIII showed typical transient calcium rise after cross-linking with whole IgG . In 5 consecutive experiments (169 cells), 58% of cells were induced with 10 μM epinephrine The anti-FcγmRIII by at least 50% calcium signal Responded (Table 4, FIG. 4). In contrast, traffic with either M1A, M2A, or DMA Transfected COS cells markedly increase the calcium response to anti-FcγRIII Although reduced, in one of four experiments, M1A transfected COS-1 cells Marked calcium mobilization occurred. Example IV:                Macrophage FC γ RIII signaling                Induces protein tyrosine kinase activation   Certain tyrosine residues within the intracellular FC γ RIII γ subunit What is required for subsequent effector action is that chimeric or mutant receptors Confirmed using transfected NK cells and lymphocytes or fibroblasts (Darby et al. Blood 79: 352A Nov (1992)). Macrophage signaling Contains protein-related tyrosine kinases (PTK) and phosphotyrosine Lung macrophages or cultured mononuclear cells (M) to study The above natural FcγRIII was examined. After Fc γ RIII cross-links with Fab antibody Within a few seconds, Western blots reveal a characteristic pattern of phosphotyrosine substrates. Appeared. This response is transient, peaking at 5 minutes for many substrates, and 10-20 minutes later. Decrease. Phosphotyrosine patterns are new macrophages and cultured Mononuclear cells could not be distinguished. This makes the latter a useful in vitro model Proven. It is not GAP itself but p120rasA protein that binds to GAP P62 is identified as one of these phosphotyrosine substrates by specific immunoprecipitation. It has been certified. The second substrate is the hematopoietic carcinogenic product p95vavAnd p95vavIs , TCR, slg and FcεWe know that it is also tyrosine phosphorylated after RI activation Was. The kinase PTK72 / Syk has been used to date for B cell Slg and mast cell FcεRI Signal N However, the primary role of macrophage FcγRIII after activation was It is also a phosphotyrosine substrate. In vitro kinase analysis of anti-Syk immune complexes Syk autophosphorylation showed a 3-4 fold increase 5-10 minutes after scepter ligation. Sky is It has also been discovered that γ-chain FcγRIIIA is present in immunoprecipitates. this This suggests that Sky is linked to the phosphorylated γ chain. Example V: Antisense oligonucleotides   Two antisense oligonucleotides (ODNs) for human Syk mRNA Was done. A linear antisense ODN targeting the region surrounding the transcription initiation codon used. Other antisense ODNs hybridize with three different sites in human Sky mRNA. Designed to have a stem loop structure that can be rediscovered. These Sky Apps Antisense ODNs inhibit Fcγ receptor-mediated phagocytosis in cultured mononuclear cells. It was used to investigate the effect of Syk tyrosine kinase in the application signal.Construction of antisense oligodeoxynucleotides:   Antisense or cross-over (scramble) ODNs protect this from nucleases. Qualified to protect. One phosphodiester backbone at the 5 'end The backbone of two phosphodiesters at the 3 'end is And modified using Secondary structure of Syk mRNA and ODNs (Law et al. J. Biol. Che m. 269: 12310 (1994)) is based on MacD on a Macintosh computer. Implemented using NASIS program (Hitachi, Software, San Bruno, CA) . 5'-CGCTGTCAGCCATGCCG-3 'Linear 17mer Syk antisense SODN targets the region surrounding the transcription start codon of Syk mRNA. Stemle Antisense ODN contains three different target sites for Syk mRNA: target I (transcription initiation region, nucleotide numbers 159 to 173), target II (4 51-463), and complementary to target III (802-816) (Law et al. J. Biol. Chem. 269: 12310 (1994)). Table 5). Stem-loop Syk antisense ODNs are themselves stalks and stems. Loop) to form a structure and include the smallest intramolecular secondary structure in the loop domain (Figure 6). Stem loop Syk antisense ODN is 5'-GGG GGGGCTGTCAGCCATGCCGTGTCTTGTCTTTGTCGCTTCTTGAGGAGCCCCCCC-3 ′. linear 17mer Syk antisense ODN has an arbitrary sequence 5'-GCCCAAGATGATTCCAG-3 ' One. The stem loop 61mer control ODN contains any sequence 5 in the loop domain. '-ATGGAATCATCTTGGGCATTCATTCGTTCCTCAAAGAAGAATATGAA-3'. The linear And the stem-loop control ODN also have phosphorylation at the 5 'and 3' ends. Oet qualified.Preparation of liposomes   Control scrambled phosphodiester ODNs, linear and stem loop 1 μg of each Syk antisense ODNs was added to 4 μg (2 μl) in 50 μl of PBS. Lipofectamine (LIPOFECTAMINE)TM(GIBCO BRL, Life Technologies Inc. Gai thersburg, MD). The ODN liposome complex was added at room temperature for 4 hours. Formed in 5 minutes.Mononuclear cell isolation and culture:   Peripheral blood mononuclear cells from healthy individuals are collected using standard adherence pro cedure) (Darby et al. J. Immunol. 152; 5429 (1994)). You In other words, heparinized blood was subjected to the Ficoll-Hypaque method (Lymphocyte Separation Med). ium; Organon Teknika, Durham, NC), and wash the interface cells twice with PBS. Was cleaned. Mononuclear cells were RP with 10% heat inactivated FCS and 2 mM L-glutamine. In complete medium containing MI1640 (GIBCO, Life Technologies Inc. Gaithersburg, MD) Was resuspended. Cells are plated at 37 ° C. on tissue culture flasks previously coated with FCS. Attached. After 45-90 minutes, non-adherent cells are removed by a crude wash in HBSS did. Cells were harvested by vigorous shaking. The yield of monocytes is 2-6x 107Cells / 500 ml blood. Monocytes are always trypan blue clear orchid More than 98% of the animals were alive as determined by the method. Isolated mononuclear cells Shows RPMI supplemented with L-glutamine (2 mM) and 10% heat inactivated FCS. 37 degrees 5% CO in 1640TwoHeld in.Oligodeoxynucleotide treatment of cells   1x10FiveMononuclear cells were treated with 2 μg / ml lipofectamine, 0.5 μM linear control. 0.5 μM linear Syk antisense ODN or 0.1 μM stem loop controller Roll, ODN-liposome complex containing 0.1 μM stem-loop Syk antisense ODN With 24 well plates (Falcon; Becton Dickinson Labware, Lincoln Pa.) (rk, NJ) in a FCS-free 0.3 ml RPMT1640 medium at 37 ° C. for 4 hours. same A quantity of the ODN liposome mixture was also added to each well on the second day. Medium 10% The cells were added to a final volume of 1 ml with RPMI1640 containing FCS and the cells were incubated at 37 ° C. Incubated for 2 days. This gives 1x10FiveFor mononuclear cells, 4 μg / ml Pofectamine and 1.0 μM linear control, 1.0 μM linear Syk en Chicken ODN or 0.2 μM stem loop control or 0.2 μM Sky Incubate for 2 days with ODN liposome complex containing Muroop Antisense ODN You have been beatted.Preparation of IgG sensitized red blood cells (EA):   1x109  Sheep red blood cells (RBCs) / ml (Rockland Inc., Gilbertville, P. A) with the same amount of rabbit anti-sheep RBC antibody (Cappel Laboratories, West Chest er PA) at 37 ° C for 30 minutes at the highest subagglutinating concentration I was sensitized. The IgG-sensitized RBCs are washed twice and in PBS as described above. Final concentration 1x109RBCs / ml (Schreiber et al, J. Clin. Invest. 56: 1 18981975)).IgG Phagocytosis of sensitized RBCs (EA):   Mononuclear cells treated with antisense ODNs were incubated at 37 ° C for 30 minutes with EA (100 ratio of EA to mononuclear cells : 1). Briefly contact cells with hypotonic solution PBS and attach The sex EA was removed. Next, the cells were stained with Light Giemsa, and phagocytosed RB Cs was measured with a microscope (x1000). 100 monocytes randomly selected and internalized EA was expressed as an indicator of phagocytosis.Flow cytometry analysis:   Mononuclear cells were treated with anti-FcγRI (32.2) Indik et al, Blood 83: 2072 (1994)) or anti-Fc  γ RII (IV.3) (Indik et al, Blood 83: 2072 (1994)) or anti-Fc γ RIII (3G8) moAb (Park et al, J. Clin. Invest. 92: 1967 (1993)), Park et al. Clin. Invest. 92: 2073 (1993)) at 30 ° C. for 30 minutes. Calcium-free magnesium containing albumin (BSA) and 0.02% sodium nitride Washed twice with PBS and FITC-conjugated goat anti-mouse F (ab ') 2 IgG (Tago (Bullingamne, CA) at 4 ° C. for 30 minutes. The cells are then washed and 1% paraffin Fixed with formaldehyde. Fluorescence was measured using FACSar (Becton Dickinson, Mountain View , CA) and average fluorescence intensity data and summary plots (Consort) 30 Obtained using software. 10,000 events are logarithmic for all samples Recorded on light scale.Reverse transcribed polymerase chain reaction (RT-PCR):   Total RNA treated with scrambled control and Syk antisense ODNs From isolated monocytes. The cDNA is ligated to any 6 nucleotide primer (Boehri nger Mannheim, Indianapolis, IN). PCR Using the synthesized cDNA as a template, the following two primers:       Nucleotide of Syk mRNA (Law et al, J. Biol. Chem. 269: 12310 (1994)) Syk-H primers corresponding to numbers 122 to 139:             5′-GGTGTGTGCCCTCCGGCC-3 ′, and       Syk-M primer:             5'-CTGCAGGTTCCATGT-3 '(nucleotide number 550-564) Was performed using The PCR product is obtained by Southern hybridization. Was analyzed.Southern Hybridization   RT-PCR products were electrophoresed on a 1.5% agarose gel. DNA is Niro Implanted on membranes (NEN Research Products, Boston, MA). The implanted membrane , 6X SSPE and 50% formamide in a biotinylated internal probe (Sy k-pS: high at 5'-GGGAGTGGTAGTGGCAGAGG-3 ', nucleotide numbers 408-427) It was bridged. After washing the membrane in 0.1 × SSC at 50 ° C., it was hybridized. Band is a chemifluorescence detection reagent (PROTOGENETM, Nucleic Acid Detection System , GIBCO BRL Life Technologies Inc. Gaithersburg, MD).result   Mononuclear cells incubated with linear Syk antisense ODN (1 μM) There was a reduction in the level of phagocytosis. Phagocytosis is calculated from the phagocytosis index (PI, 220 ± 8.8) To 113 ± 12.3), a decrease of 49%. Mononuclear stem loop Syk Incubation with antisense ODN (0.2 μM) increased phagocytosis to 89% Was also reduced (PI, from 220 ± 8.8 to 24 ± 4.2) (FIG. 7). Scrambled Kong Both trawl ODNs and linear or stem-loop (0.2 μM) ODNs are available for FcγRIIA It did not seriously affect mediated phagocytosis. Similarly, even with liposomes alone, It did not reduce phagocytosis mediated by FcγRIIA. Expression of FcγRIIA As measured by flow cytometry analysis on cultured mononuclear cells, It did not change with any treatment. This result shows that Syk tyrosine quina Is a major signal for FcγRIIA-mediated phagocytosis in monocytes. Transducer has been shown to be And the interaction between FcγRIIA and Syk kinase (as well as tyrosine phosphorylation) Was shown to be important.   Next, is reduced phagocytosis in monocytes correlated with Syk mRNA levels? Was decided. Quantitative RT-PCR (reverse transcribed polymerase chain reaction) ) Was used to determine cytoplasmic levels of Syk mRNA in monocytes. Syk total RNA Mononuclear cells treated with antisense ODNs (1x10FiveCells / ml) and the first strand Used to synthesize cDNA. As shown in FIG. 8, the linear Syk antisense ODN (1.0 μM) substantially reduced Syk mRMA. Stem loop Syk antisense Syk mRMA (FIG. 8) was completely removed by ODN (0.2 μM). In contrast, Two scrambled control ODNs (1.0 μM linear control, Or 0.2 μM stem-loop control) and Syk mRMA alone Did not decrease. These results show that Syk antisense ODNs have a linear Both mulops can degrade Syk mRMA in mononuclear cells with sequence-specific manners. I knew it would work. Furthermore, stem-loop Syk antisense ODN targets mRNA. It was more effective than the linear antisense molecule for getting. Example VI: Stem-loop Syk antisense oligonucleotides (ODNs)               Inhibits histamine secretion   Experimental designCell culture : 17% of RBL-2H3 cells (rat mast cells containing histamine) Fetal calf serum, 100 U penicillin and 100 μg strept per ml 5% at 37 ° C. in minimal essential medium supplemented with mycin and 4 mM glutamine COTwoGrew up in. Cells are placed on a 1.6 cm plate or 24 hours prior to analysis. 1x10 on well plateFiveSeeded at a cell / well concentration.Construction of antisense ODNs : Antisense to protect against nuclease digestion And ODNs are 5 'of the phosphodiester backbone. Repair by adding one phosphorothioate at the end and two at the 2 3 'end. Decorated. Three linear Syk antisense ODNS: target I linear Syk antisense ODNS DN (5'ATTGCCCGCCATCTCT3 ', nucleotide containing the translation initiation codon of Syk mRNA 319 to 333), target II (5'GATTTGATTCTTGAG3 ', nucleotide 1175-11) 89), target III (5'ATTTGGTAGTATCCCT3 ', nucleotides 1465 to 1479) Was designed. Stem-loop Syk antisense ODN has three targets. (See FIG. 9) (see also Example V above).ODN treatment of cells : 5 x 10 before lipofection detailsFourAlso Is 1x10FiveRBL-2H3 cells were seeded in each well of a 24-well plate . ODN liposome complexes were added twice, once on the second day and once on the third day. every time 4 μl of DOTAP (Lipofectamine) (1 μg / μl stock) and 2 Complexes of μl ODN (1 μg / μl) were formed in EMEM (75 μl total volume). ODN liposome complex is added to each well containing 175 μl of serum-free culture medium Was done. The cells were incubated at 37 ° C. for 24 hours. The second ODN liposo Medium complex (75 μl) was added and the culture medium was added to 5% FCS (final volume 1.0 ml). Conditioned and transfected RBL-2H3 cells were incubated at 37 ° C. with histamine Incubated for another day before ligation analysis.Reverse transcribed polymerase chain reaction (RT-PCR):   Total RNA was treated with Syk sense control or Syk antisense ODN Isolated from RBL-2H3. The cDNA is combined with any 6 nucleotide primers and Synthesized from total RNA by oligo (d) T. PCR synthesized cDNA Two primers as rate: rat-5Syk 5'-TTTGGCAACA TCACCCGC-3 '(nucleotide numbers 368-386) and rat-3Sy k primer: 5'-ACTTATGATGGCTTGCTC-3 '(nucleo (748-762). Connect gamma and beta actin primers Used as a troll.Histamine secretion analysis : Histamine secretion analysis was performed using rat RBL- as described below. 2H3 cell IgE receptor FcεCrosslink RI and use an enzyme immunoassay kit (immunote ch, France) using histamine secretion. Well 1x10Five24 well plates containing RBL-2H3 cells in 1.0 ml EMEM Incubated overnight at 37 ° C. The cells are washed once with PBS and 1.0 m on ice. 1 PAGCM (standard histamine secretion buffer) and 100 μl Fcε30 minutes with RI antibody For a while. After gently washing once with PBS, RBL-2H3 cells are washed as follows. That is, 1.0 ml of PAGCM buffer alone (negative control), 10 μl of cal 1.0 ml of PAGCM buffer (podium containing 50 μg / ml stock) Active control) or 10 μl of goat anti-mouse antibody (1 mg / ml) Incubate with 1.0 ml of PAGCM for 30 minutes at 37 ° C. PA containing histamine GCM buffer was removed from the cells and analyzed by enzyme analysis. Create a standard curve 100 μl of standard was included for this purpose.   result   The results presented in FIG. 10A show that Syk expression in RBL-2H3 cells Significantly inhibited by the presence of antisense ODN but not by sense ODN The thing is proved. RBL-2H3 cells treated with Syk antisense ODN It does not affect tin expression (FIG. 10B). Similarly, replace RBL-2H3 cells with Syk Treatment with antisense ODN has no effect on gamma chain expression. FcεAfter cross-linking the RI and goat anti-mouse antibodies, the stem-loop Syk antisense RBL-2H3 cells treated with SODNs were treated with control DNA-treated control DNA. Secreted histamine as much as 74% less than histamine.                        Anti FcεRI and goat anti-mouse antibodies     Histamine secretion of 1.9ng sense DNA     Antisense 0.5ng histamine secretion (74% inhibition)   All documents cited above are incorporated herein by reference. The present invention relates to what is presently considered to be the most practical and preferred embodiment. Although described, it is not intended to limit the invention to the disclosed embodiments. But On the contrary, various modifications and variations are included within the spirit and scope of the appended claims. And equivalent adaptations are intended to be covered.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI A61K 48/00 ABG C12P 21/02 C C12N 5/10 C12Q 1/68 A C12P 21/02 C12N 5/00 B C12Q 1/68 A61K 37/02 ACD (72)発明者 パーク、ジョン−グ アメリカ合衆国、ペンシルバニア州 19026、ドレクセル・ヒル、ドレクセルブ ルック・ドライブ 6813──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI A61K 48/00 ABG C12P 21/02 C C12N 5/10 C12Q 1/68 A C12P 21/02 C12N 5/00 B C12Q 1/68 A61K 37/02 ACD (72) Inventor Park, Jong-gu, Drexel Hill, Drexel Brook Drive 19013, Pennsylvania, USA 6813

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1. 哺乳類における免疫複合体の食作用を防止する方法であって、該免疫複 合体と接触している哺乳類の食細胞中に、該細胞の膜に存在するFcレセプター と会合た該細胞に内在するキナーゼの阻害剤を導入することを具備し、該導入は 食作用能力が阻害されるような条件下で実行される方法。 2. 請求項1に記載の方法であって、該免疫複合体はIgG含有免疫複合体 である方法。 3. 請求項1に記載の方法であって、該阻害剤は、ペプチドもしくは擬似物 デアル方法。 4. 請求項3に記載の方法であって、該ペプチドは、該細胞中に直接導入さ れる方法。 5. 請求項3に記載の方法であって、該ペプチドは、該細胞中への導入に先 立ち、リポソーム中に取り入れられる方法。 6. 請求項3に記載の方法であって、該ペプチドをコードするDNA配列が、 該DNA配列が発現されることにより該ペプチドが産生されるような条件下で該 細胞中に導入される方法。 7. 請求項3に記載の方法であって、該ペプチドは、細胞質ドメイン Fc γ RIIAまたはFc γ RIIIAもしくはFCεRIのγ鎖のチロシン含有モチーフに対応す る配列を含んでいる方法。 8. 請求項3に記載の方法であって、該ペプチドは、配列Y−X2−L(X 2 が任意の2つのアミノ酸である)を含んでいる方法。 9. 請求項8に記載の方法であって、X2が、Fc γ RIIAまたはFc γ RIIIA しくはFCεRIのγ鎖の細胞質ドメインのY−X2−Lのアミノ酸類を示す方法。 10. 哺乳類から免疫複合体のクリアランスを防ぐ方法であって、免疫複合 体と接触している該哺乳類の食細胞中に、該細胞の膜に存在するFcレセプターを コードしている転写物を特異的に分解する分子を導入することを具備する方法。 11. 請求項10に記載の方法であって、該免疫複合体はIgG含有免疫複 合体である方法。 12. 請求項10に記載の方法であって、該分子は、リボザイムである方法 。 13. 哺乳類に存在する免疫複合体の膜結合Fcレセプターに対する結合を 阻害する方法であって、該哺乳類に、該免疫複合体への結合に対して膜結合Fc レセプターと競合する可溶性Fcレセプターを導入することを具備し、該導入は、 該膜結Fcレセプターに対する免疫複合体の結合が阻止される条件下で実行され る方法。 14. 請求項13に記載の方法であって、該免疫複合体はIgG含有免疫複 合体である方法。 15. 請求項13に記載の方法であって、該可溶性レセプターは、本質的に Fcγレセプターもしくはその結合部分の細胞外ドメインからなることを特徴とす る方法。 16. 請求項13に記載の方法であって、該可溶性レセプターは、第一Fcγ レセプター型もしくはFcεレセプター型由来の細胞外ドメイン及び第二のFc γ レセプター型由来の細胞質ドメインからなることを特徴とし、該第一及び第二レ セプター型の少なくとも一つがFC γ RIまたはFc γ RIIIのα鎖もしくはγ鎖で ある方法。 17. Fcレセプターを発現する哺乳類細胞の食作用能力を阻害する方法であ って、該細胞中に、5´末端から3´末端への転写方向で、 i) 該細胞内で機能的なプロモーターと、 ii) 2本鎖DNAのセグメントであって、その転写された一本鎖がFcレ セプターをコードする内在的なmRNAに対して相補的な配列を含むものと、 iii)細胞内で機能的な終止配列 とを含んだ構築物を導入することを具備し、 該構築物は、該相補的鎖が転写されて該内在的mRNAに結合し、これによ り該Fcレセプターの発現を減少させ、該細胞の食作用能力を阻害するような条件 下で導入される方法。 18. 請求項17に記載の方法であって、前記内在的mRNAと相補的である 配列が、該mRNAの未翻訳領域と相補的である方法。 19. Fcレセプターを発現する哺乳類細胞の食ポテンシャルを阻害する方 法であって、該細胞中に、5´末端から3´末端への転写方向で、 i) 該細胞内で機能的なプロモーターと、 ii) 2本鎖DNAのセグメントであって、その転写された一本鎖がSy kキナーゼをコードする内在的なmRNAと相補的な配列を含むものと、 iii)該細胞内で機能的な終止配列 とを有する構築物を導入することを具備し、 該構築物は、該相補的鎖が転写されて該内在的mRNAに結合し、これによ って該Skyキナーゼの発現を減少させて、該細胞のシグナルリングポテンシャル を阻害されるような条件下で導入される方法。 20. 請求項19に記載の方法であって、該方法は、該FcレセプターはFc γ RI、Fc γ RIIAまたはFc γ RIIIAである方法。 21. Fcレセプターを発現する哺乳類細胞の食作用のポテンシャルを阻害 する方法であって、該細胞中にSykキナーゼをコードする内在的mRNAと相補的で ある核酸を導入することを具備し、該核酸は、該mRNAと結合しそれによって該mR NAのSykキナーゼへの転写を阻害するような条件下で導入される方法。 22. 請求項21に記載の方法であって、該Fcレセプターは、Fc γ RI、Fc γ RIIAまたはFc γ RIIIAである方法。 23. 請求項19記載の方法であって、該配列は、二次構造を持たない該内在 的mRNAの領域と相補的である方法。 24. 請求項21に記載の方法であって、該核酸は、二次構造を持たない該mR NA領域と相補的である方法。 25. 請求項21に記載の方法であって、該核酸はステムループ構造を有して いる方法。 26. 請求項21に記載の方法であって、該核酸は、図5及び6に示された配 列を有している方法。 27. Fcレセプターを発現する哺乳類細胞の食作用能力を阻害する方法で あって、該細胞に、Fcレセプターをコードする内在的mRNAと相補的な核酸を導 入することを具備し、該核酸は、該核酸が該mRNAと結合し、それによって該 mRNAの該FCレセプターへの転写を阻害するような条件下で導入される方法。 28. 請求項27に記載の方法であって、該核酸はRNA分子である方法。 29. 請求項27に記載の方法であって、該核酸は該mRNAの未翻訳領域と相補 的である方法。 30. IgEレセプターFcεRIのγサブユニットの信号伝達を阻害する方法 であって、該レセプターを担時する細胞中に、該FcεRIレセプターもしくはその γサブユニットの信号伝達を活性化させる該細胞の内在的なキナーゼの阻害剤を 導入することを具備し、該導入は、該信号伝達が阻害されるような条件下で実行 される方法。 31. 請求項30に記載の方法であって、該阻害剤は、ペプチドまたはその擬 似物である方法。 32. 請求項31に記載の方法であって、該ペプチドは、配列Y−2X−L(X 2が任意のアミノ酸を示す)を含んでなる方法。 33. 請求項32に記載の方法であって、X2が、γ鎖FCεRIの細胞質ドメイ ンのY−X2−L配列のアミノ酸を示す方法。 34. i) プロモーターと、 ii) 2本鎖DNAのセグメントであって、その転写された一本鎖がFc レセプターmRNAと相補的な配列を含むセグメントと、 iii)終止配列 とを、5´末端から3´末端への転写方向で具備する構築物であって、 該プロモータ、二本鎖DNA及び終始配列は機能可能に連結されている 構築物。 35. 請求項34に記載の構築物を含む細胞であって、該プロモータ及び該終 始配列は該細胞中で機能的である構築物。 36. 本質的に、FcγまたはFcεのレセプターまたはその結合部位の細胞外 ドメインからなる可溶性Fcレセプター。 37. 第一Fcγレセプター型由来の細胞外ドメイン及び第二のFcγレセプタ ー型由来の細胞質ドメインからなる可溶性レセプターであって、該第一第二レセ プター型の少なくとも一つは、FcγRIまたはFcγRIIIのαもしくはγ鎖で ある可溶性レセプター。 38. 請求項36に記載の可溶性レセプターをコードするDNA分子。 39. 請求項37の可溶性レセプターをコードするDNA分子。 40. 本質的に、Fc γ RIIAまたは、Fc γ RIIIAもしくはFcεRIのγ鎖の 細胞質ドメインあるいはその機能的部分のチロシン含有モチーフからなるペプチ ド。 41. 請求項40に記載のペプチドをコードするDNA分子。 42. 請求項40に記載のペプチドを含む細胞。 43. 食作用もしくは肥満細胞から分泌されるメデイエータを阻害するペプ チドであって、配列Y−X2−L(X2は、Fc γ RIIAもしくはFc γ RIIIAあるいはF cεRIのγ鎖の細胞質ドメインの−X2−L配列の二つのアミノ酸を示す)を含むFc γ RIIAもしくはFc γ RIIIAあるいはFcεRIのγ鎖の細胞質ドメインの部分を 含んでなるペプチド。 44. 請求項1に記載の方法であって、該阻害は、単核球または好中球活性 から生じる局部的組織損傷を減らすかまたは防止する方法。 45. Syk産生細胞の食作用を阻害する方法であって、該細胞に、該細胞に 存在するsykをコードする配列をターゲットとするアンチセンス構築物またはリ ボザイムを、Sykの産生を阻止するような条件下で導入することを含んでなる方 法。 46. 細胞の食作用能力を阻害する方法であって、該方法は、該細胞中に、 該阻害が実行されるような条件下でFc γ RIIBを導入することを含んでなる方法 。 47. 請求項30に記載の方法であって、該キナーゼはSykキナーゼである方 法。 48. IgEレセプターFcεRIのγサブユニットの信号伝達を阻害する方法で あって、該レセプターを担時する細胞中に、該細胞中に存在するSykをコードす る配列をターゲットするアンチセンス構築物を、信号伝達が阻害されるような条 件下で導入することを含んでなる方法。 49. 請求項48に記載の方法であって、該細胞は喘息患者の肺に存在する方 法。 50. 請求項49に記載の方法であって、該導入は、該構築物を該患者の肺に エアゾールまたは全身的投与によって投与することによって実行される方法。 51. 請求項47に記載の方法であって、該阻害剤は、Sykキナーゼの第二S Hドメイン及び触媒(キナーゼ)ドメインの間の中間領域をターゲットする方法 。 52. Sykキナーゼの中間領域によって媒介される信号伝達を選択的に阻害 する能力についてのテスト化合物をスクリーニング(篩い分ける)する方法であ って、該化合物を、Syk中間配列からなるポリペプチド及びZAP70中間配列からな るポリペプチドと接触させることと、該化合物が該Syk中間配列またはZap70中間 領域と結合するかどうかを決定することを具備し、ここで、該Zap70中間領域配 列ではなく該Syk中間領域と結合する化合物が選択的阻害能力を有するものであ る方法。 53. Syk産生細胞からのメデイエータの分泌を阻害する方法であって、該 細胞に、該細胞中に存在するSykをコードする配列をターゲットするアンチセン ス構築物またはリボザイム、もしくはSyk中間領域配列によって媒介される信号 伝達を選択的に阻害する薬剤を、該阻害が実行されるような条件下で導入するこ とを特徴とする方法。 54. 請求項第53項に記載の方法であって、該細胞は喘息患者の肺に存在す る方法。 55. 図5または図6に記載した配列を担持する核酸。 56. i) プロモーターと、 ii) 2本鎖DNAのセグメントであって、その転写された一本鎖が、 機能可能に該プロモータに結合されたSykキナーゼmRNAと相補的な配列 とを、5´末端から3´末端への転写方向に含んでなるアンチセンス構築物。 57. 請求項56に記載の構築物であって、SykキナーゼmRNAと相補的である 該配列は、転写開始コドンを囲むかまたは包むSykキナーゼmRNAの領域と相 補的である構築物。 58. 請求項56に記載の構築物であって、SykキナーゼmRNAと相補的である 該配列は、最小の二次構造を持つSykキナーゼmRNAの領域と相補的である 構築物。 59. Sykキナーゼ中間領域または少なくとも6アミノ酸からなるその一部 もしくは擬似物と、薬学的に許容可能なキャリアとを含有する薬学的組成物。[Claims] 1. A method for preventing the phagocytosis of an immune complex in a mammal, comprising the step of: providing a kinase endogenous to the cell associated with an Fc receptor present on a membrane of the cell in a phagocyte of the mammal in contact with the immune complex. Wherein the introduction is carried out under conditions such that phagocytic ability is inhibited. 2. 2. The method of claim 1, wherein said immune complex is an IgG-containing immune complex. 3. 2. The method of claim 1, wherein the inhibitor is a peptide or mimetic Deal method. 4. 4. The method according to claim 3, wherein the peptide is introduced directly into the cell. 5. 4. The method of claim 3, wherein said peptide is incorporated into liposomes prior to introduction into said cells. 6. 4. The method of claim 3, wherein the DNA sequence encoding the peptide is introduced into the cell under conditions such that expression of the DNA sequence produces the peptide. 7. The method of claim 3, the peptide, the methods include a sequence corresponding to the tyrosine-containing motif gamma chain of the cytoplasmic domain Fc gamma RIIA or Fc gamma RIIIA or FC epsilon RI. 8. 4. The method according to claim 3, wherein said peptide comprises the sequence Y-X2-L, wherein X2 is any two amino acids. 9. The method according to claim 8, X2 is a method Fc gamma RIIA or Fc gamma RIIIA properly is showing the amino acids Y-X2-L of the cytoplasmic domain of gamma chain of FC epsilon RI. 10. A method for preventing the clearance of an immune complex from a mammal, comprising specifically locating a transcript encoding an Fc receptor present on the membrane of the mammal in contact with the immune complex in phagocytes of the mammal. A method comprising introducing a molecule that degrades. 11. 11. The method of claim 10, wherein the immune complex is an IgG-containing immune complex. 12. 11. The method according to claim 10, wherein said molecule is a ribozyme. 13. A method of inhibiting the binding of an immune complex present in a mammal to a membrane-bound Fc receptor, comprising introducing into said mammal a soluble Fc receptor that competes with the membrane-bound Fc receptor for binding to said immune complex. And wherein the introduction is performed under conditions where binding of an immune complex to the membrane-bound Fc receptor is prevented. 14. 14. The method of claim 13, wherein said immune complex is an IgG-containing immune complex. 15. 14. The method of claim 13, wherein the soluble receptor consists essentially of the extracellular domain of an Fcγ receptor or a binding portion thereof. 16. The method of claim 13, said soluble receptor is characterized by consisting of the extracellular domain and the second Fc gamma receptor type from the cytoplasmic domain from a first Fcγ-receptor or Fc epsilon receptor type, A method wherein at least one of said first and second receptor types is an α or γ chain of FCγRI or FcγRIII. 17. A method for inhibiting the phagocytic ability of a mammalian cell that expresses an Fc receptor, comprising: in the cell, in the direction of transcription from the 5 'end to the 3' end, i) a promoter functional in the cell; A) segments of double-stranded DNA whose transcribed single-strand comprises a sequence complementary to the endogenous mRNA encoding the Fc receptor; iii) a termination sequence functional in the cell. And wherein the construct comprises the complementary strand being transcribed and binding to the endogenous mRNA, thereby reducing expression of the Fc receptor, and enhancing the phagocytic capacity of the cell. A method introduced under conditions that inhibit the activity. 18. 18. The method of claim 17, wherein the sequence that is complementary to the endogenous mRNA is complementary to an untranslated region of the mRNA. 19. A method of inhibiting the phagocytic potential of a mammalian cell that expresses an Fc receptor, wherein the promoter is functional in the cell in the direction of transcription from the 5 'end to the 3' end, ii) A segment of double-stranded DNA whose transcribed single strand contains a sequence complementary to the endogenous mRNA encoding Syk kinase; iii) a termination sequence functional in the cell. Introducing a construct having the formula: wherein the complementary strand is transcribed and binds to the endogenous mRNA, thereby reducing the expression of the Sky kinase and increasing the signaling potential of the cell. A method that is introduced under conditions that are inhibited. 20. 20. The method of claim 19, wherein said Fc receptor is FcγRI, FcγRIIA or FcγRIIIA. 21. A method of inhibiting the phagocytic potential of a mammalian cell that expresses an Fc receptor, comprising introducing into the cell a nucleic acid that is complementary to an endogenous mRNA encoding Syk kinase, wherein the nucleic acid comprises: A method wherein the method is introduced under conditions such that it binds to the mRNA and thereby inhibits transcription of the mRNA to Syk kinase. 22. 22. The method of claim 21, wherein said Fc receptor is Fc [gamma] RI, Fc [gamma] RIIA, or Fc [gamma] RIIIA. 23. 20. The method of claim 19, wherein the sequence is complementary to a region of the endogenous mRNA that has no secondary structure. 24. 22. The method of claim 21, wherein said nucleic acid is complementary to said mRNA region without secondary structure. 25. 22. The method according to claim 21, wherein the nucleic acid has a stem-loop structure. 26. 22. The method according to claim 21, wherein the nucleic acid has the sequence shown in Figs. 27. A method of inhibiting the phagocytic ability of a mammalian cell that expresses an Fc receptor, comprising introducing a nucleic acid complementary to an endogenous mRNA encoding an Fc receptor into the cell, wherein the nucleic acid comprises the nucleic acid. Is introduced under conditions such that it binds to the mRNA, thereby inhibiting transcription of the mRNA to the FC receptor. 28. 28. The method according to claim 27, wherein said nucleic acid is an RNA molecule. 29. 28. The method of claim 27, wherein said nucleic acid is complementary to an untranslated region of said mRNA. 30. A method of inhibiting the signal transduction of γ-subunit of IgE receptor Fc epsilon RI, the cells that担時the receptor, of the cells that activate signal transduction of the Fc epsilon RI receptors or a γ subunit A method comprising introducing an inhibitor of an endogenous kinase, wherein said introduction is performed under conditions such that said signaling is inhibited. 31. 31. The method according to claim 30, wherein said inhibitor is a peptide or a mimetic thereof. 32. 32. The method of claim 31, wherein said peptide comprises the sequence Y-2XL (where X2 represents any amino acid). 33. 33. The method according to claim 32, wherein X2 represents an amino acid of the Y-X2-L sequence of the cytoplasmic domain of γ-chain FCεRI . 34. i) a promoter, ii) a segment of double-stranded DNA whose transcribed single strand contains a sequence complementary to Fc receptor mRNA, and iii) a termination sequence, A construct provided in the direction of transcription to the 'end, wherein the promoter, double-stranded DNA and termination sequence are operably linked. 35. 35. A cell comprising the construct of claim 34, wherein said promoter and said termination sequence are functional in said cell. 36. Essentially, Fc.gamma. Or Fc epsilon receptor or soluble Fc receptor consisting of the extracellular domain of the binding site. 37. A soluble receptor comprising an extracellular domain from a first Fcγ receptor type and a cytoplasmic domain from a second Fcγ receptor type, wherein at least one of the first and second receptor types is an α or γ chain of FcγRI or FcγRIII. Is a soluble receptor. 38. A DNA molecule encoding the soluble receptor according to claim 36. 39. A DNA molecule encoding the soluble receptor of claim 37. 40. Essentially, Fc gamma RIIA or peptide consisting of a tyrosine comprising motif of the cytoplasmic domain or a functional part of the gamma chain of Fc gamma RIIIA or Fc epsilon RI. 41. A DNA molecule encoding the peptide of claim 40. 42. A cell comprising the peptide of claim 40. 43. A peptide that inhibits Medeieta secreted from phagocytosis or mast cells, sequence Y-X2-L (X2 is the gamma chain of Fc gamma RIIA or Fc gamma RIIIA or F c epsilon RI cytoplasmic domain -X2- two shows the amino acid) peptide comprising a portion of the Fc gamma RIIA or Fc gamma RIIIA or the gamma chain of Fc epsilon RI cytoplasmic domain containing the L sequence. 44. 2. The method of claim 1, wherein said inhibiting reduces or prevents local tissue damage resulting from monocyte or neutrophil activity. 45. A method for inhibiting phagocytosis of a Syk-producing cell, wherein the cell comprises an antisense construct or ribozyme targeting a syk-encoding sequence present in the cell, under conditions that inhibit Syk production. A method comprising introducing. 46. A method of inhibiting phagocytic ability of the cells, the method, in the cells, the method comprising introducing the Fc gamma RIIB under conditions such that the inhibition is executed. 47. 31. The method according to claim 30, wherein said kinase is Syk kinase. 48. A method of inhibiting the signal transduction of γ-subunit of IgE receptor Fc epsilon RI, the cells that担時the receptor, an antisense construct which targets a sequence encoding a Syk present in the cell, the signal A method comprising introducing under conditions such that transmission is inhibited. 49. 49. The method of claim 48, wherein said cells are present in the lungs of an asthmatic patient. 50. 50. The method of claim 49, wherein the introducing is performed by administering the construct to the lungs of the patient by aerosol or systemic administration. 51. 50. The method of claim 47, wherein the inhibitor targets an intermediate region between the second SH domain and the catalytic (kinase) domain of Syk kinase. 52. A method for screening (sieving) a test compound for the ability to selectively inhibit signaling mediated by the Syk kinase intermediate region, comprising the steps of: isolating a compound comprising a Syk intermediate sequence and a ZAP70 intermediate sequence; And determining whether the compound binds to the Syk intermediate sequence or Zap70 intermediate region, wherein the compound binds to the Syk intermediate region but not to the Zap70 intermediate region sequence. The method wherein the compound has selective inhibitory ability. 53. A method of inhibiting secretion of a mediator from a Syk producing cell, the method comprising the steps of: A method comprising introducing an agent that selectively inhibits transmission under conditions such that the inhibition is effected. 54. 54. The method of claim 53, wherein said cells are present in the lungs of an asthmatic patient. 55. A nucleic acid carrying the sequence described in FIG. 5 or FIG. 56. i) a promoter and ii) a segment of double-stranded DNA whose transcribed single strand is complementary to Syk kinase mRNA operably linked to the promoter, from the 5 'end. An antisense construct comprising in the direction of transcription to the 3 'end. 57. 57. The construct of claim 56, wherein the sequence that is complementary to Syk kinase mRNA is complementary to a region of Syk kinase mRNA that surrounds or encloses the transcription initiation codon. 58. 57. The construct of claim 56, wherein the sequence that is complementary to Syk kinase mRNA is complementary to a region of Syk kinase mRNA that has minimal secondary structure. 59. A pharmaceutical composition comprising a Syk kinase intermediate region or a part or mimetic consisting of at least 6 amino acids, and a pharmaceutically acceptable carrier.
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