JPH0265785A - 光学活性2‐アリールプロピオン酸の製造方法 - Google Patents
光学活性2‐アリールプロピオン酸の製造方法Info
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
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-
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野〕
本発明は、光学活性の非ステロイド系抗炎症剤ナプロキ
セン[S−2−(6−、z !−キシー2−すフチル)
プロピオン酸〕、並びにその医薬上許容しうる塩類およ
びエステル類の製造に関するものである。
セン[S−2−(6−、z !−キシー2−すフチル)
プロピオン酸〕、並びにその医薬上許容しうる塩類およ
びエステル類の製造に関するものである。
公知のナブロキサンの製造方法はラセミ型の2(6−メ
トキシ−2−ナフチル)プロピオン酸をMmしかつ次い
でこれを分割することからなっており、たとえばヨーロ
ンバ特許出願第143371号明細書に記載されている
。ラセミ型酸の50%は望ましくないR−エナンチオマ
であるため、この方法の最大理論収率は50%である。
トキシ−2−ナフチル)プロピオン酸をMmしかつ次い
でこれを分割することからなっており、たとえばヨーロ
ンバ特許出願第143371号明細書に記載されている
。ラセミ型酸の50%は望ましくないR−エナンチオマ
であるため、この方法の最大理論収率は50%である。
〔発明の要点]
驚くことに今回、望ましくないR−エナンチオマを成る
種の微生物により所望のS−エナンチオマに変換しうろ
ことが突き止められた。
種の微生物により所望のS−エナンチオマに変換しうろ
ことが突き止められた。
本発明によれば、R−2−(6−ノドキシ−2ナフチル
)プロピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もしくは
エステルを、R−エナンチオマを対応のS−エナンチオ
マに変換しうる立体特異性の反転酵素系を有する微生物
にまたはこの酵素系を含有する微生物の抽出物に供給す
ることを特徴とする5−2−(6−メトキシ−2−ナフ
チル)プロピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もし
くはエステルの製造方法が提供される。
)プロピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もしくは
エステルを、R−エナンチオマを対応のS−エナンチオ
マに変換しうる立体特異性の反転酵素系を有する微生物
にまたはこの酵素系を含有する微生物の抽出物に供給す
ることを特徴とする5−2−(6−メトキシ−2−ナフ
チル)プロピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もし
くはエステルの製造方法が提供される。
好ましくは、R−酸を微生物に供給する。これは、実質
的にS−エナンチオマを含有せずに或いはS−エナンチ
オマとの混合物(たとえばラセミ混合物)として微生物
に供給することができる。
的にS−エナンチオマを含有せずに或いはS−エナンチ
オマとの混合物(たとえばラセミ混合物)として微生物
に供給することができる。
成る種の微生物は2−(6−メトキシ−2−ナフチル)
プロピオン酸のエステルを加水分解しうることが判るで
あろう、したがって、R−酸のエステルをこの種の微生
物に供給すれば、この方法の生成物はS−酸となり、S
−エステルとはならない。
プロピオン酸のエステルを加水分解しうることが判るで
あろう、したがって、R−酸のエステルをこの種の微生
物に供給すれば、この方法の生成物はS−酸となり、S
−エステルとはならない。
生成物が遊離酸であれば、所望に応しこれを当業界で周
知された方法により医薬上許容しうる塩もしくはエステ
ルに変換することができる。
知された方法により医薬上許容しうる塩もしくはエステ
ルに変換することができる。
本発明による方法に使用される微生物は真菌類または細
菌類とすることができる。
菌類とすることができる。
この方法を実施するのに適した真菌類はポツリチス属(
Botrytis)、ペニシリウム属(Penecil
lium)または好ましくはコルジセプス属(Cord
yceps)、ビウベリア属(Beauveria)、
クラドスポリウム属(Cladosporium)また
はエキソフイアラ属(Exophiala)の−員、た
とえばコルジセプス・ミリタリス(Cordyceps
m1litaris)、ビウベリア・パンアナ(Be
auveria bassiana) 、クラスポリウ
ム゛レジナエ(Cladosporium resin
ae) 、エキソフィアラ・ジーンセルメイ(Exop
hiala jeanselmei)およびエキソフィ
アラ・ウイルパンシイ(Exoph ia Iawil
hXinsii)の菌種を包含する。この方法を実施す
るの適した細菌類はノルカルシア属(Norcardi
a)、バチルス属(Bachillus)、シェードモ
ナス属(Pseudomonas)、ミコバクテリウム
属(Myc。
Botrytis)、ペニシリウム属(Penecil
lium)または好ましくはコルジセプス属(Cord
yceps)、ビウベリア属(Beauveria)、
クラドスポリウム属(Cladosporium)また
はエキソフイアラ属(Exophiala)の−員、た
とえばコルジセプス・ミリタリス(Cordyceps
m1litaris)、ビウベリア・パンアナ(Be
auveria bassiana) 、クラスポリウ
ム゛レジナエ(Cladosporium resin
ae) 、エキソフィアラ・ジーンセルメイ(Exop
hiala jeanselmei)およびエキソフィ
アラ・ウイルパンシイ(Exoph ia Iawil
hXinsii)の菌種を包含する。この方法を実施す
るの適した細菌類はノルカルシア属(Norcardi
a)、バチルス属(Bachillus)、シェードモ
ナス属(Pseudomonas)、ミコバクテリウム
属(Myc。
bac、terium)、アースロバフタ−属(^rt
hrobacter)、ロイコノストック属(Lcuc
onOstoc)、プロテウス属(Protcus)ま
たはストレプトミセス属(SLreptomyces)
、成し料よ々rましくはロドコッカス属Rhodoco
ccus) 、たとえば菌種ロドコッカス ロドクラウ
ス(Rh+:+dococcus rhodochro
us)を包含すこれら菌種の例は次の通りである;コル
ジセプス・ミリクリスCBS 267.85およびエキ
ソフイアラ・ジーンセルメイCBS 258.86
(19B 5年6月7日付1すでオランダ国、ザ・セン
トラールヒ゛ウロー・プール・シンメルカルチャー(C
BS)に寄託(CBS 267.85)および1986
年5月15日イ寸けで同機関に寄託(CBS 258.
86)) ;エキソフイアラウィルハンシイ(CBS5
47.88> CI’988年9月6日付けでオラン
ダ国、ザ・セントラールビウロー・シンメルカルチャー
(CBS)に寄託〕; ロドコッカス・ロドクラウスM
Cl812566 (1987年10月16日付けで
英国、ザ・ナショナル・コレクションス・オブ・インダ
ストリアル・アンド・マリーン・バクテリアに寄託);
ビウベリア・パンアナDSM 875 、ATCC13
144[1988年6月13日付レナでし旧32542
9として英国、ザ・コモンウエルスマイコロジカル・イ
ンスティチェートに再寄託〕;クラドスポリウム・レジ
ナエCBS 177.62 (1988年6月13日付
けで寄託番号325430として英国、ザ・コモンウェ
ルス・マイコロジカル・インスティチュートにホルモコ
ニス・レジナエ()Iormoconisresina
e)として再寄託〕:並びにその変種もしくは突然変異
種。
hrobacter)、ロイコノストック属(Lcuc
onOstoc)、プロテウス属(Protcus)ま
たはストレプトミセス属(SLreptomyces)
、成し料よ々rましくはロドコッカス属Rhodoco
ccus) 、たとえば菌種ロドコッカス ロドクラウ
ス(Rh+:+dococcus rhodochro
us)を包含すこれら菌種の例は次の通りである;コル
ジセプス・ミリクリスCBS 267.85およびエキ
ソフイアラ・ジーンセルメイCBS 258.86
(19B 5年6月7日付1すでオランダ国、ザ・セン
トラールヒ゛ウロー・プール・シンメルカルチャー(C
BS)に寄託(CBS 267.85)および1986
年5月15日イ寸けで同機関に寄託(CBS 258.
86)) ;エキソフイアラウィルハンシイ(CBS5
47.88> CI’988年9月6日付けでオラン
ダ国、ザ・セントラールビウロー・シンメルカルチャー
(CBS)に寄託〕; ロドコッカス・ロドクラウスM
Cl812566 (1987年10月16日付けで
英国、ザ・ナショナル・コレクションス・オブ・インダ
ストリアル・アンド・マリーン・バクテリアに寄託);
ビウベリア・パンアナDSM 875 、ATCC13
144[1988年6月13日付レナでし旧32542
9として英国、ザ・コモンウエルスマイコロジカル・イ
ンスティチェートに再寄託〕;クラドスポリウム・レジ
ナエCBS 177.62 (1988年6月13日付
けで寄託番号325430として英国、ザ・コモンウェ
ルス・マイコロジカル・インスティチュートにホルモコ
ニス・レジナエ()Iormoconisresina
e)として再寄託〕:並びにその変種もしくは突然変異
種。
立体特異的反転は一般に全菌体の存在下に行われるが、
立体特異性の反転酵素系を本発明の実施前に微生物から
完全に或いは部分的に抽出することもできる。不必要な
分離、酵素の精製および酵素の固定化工程を避けるため
、一般に酵素は菌体成分の少なくとも幾分かと一緒に存
在する。菌体に関連してこれらは往存もしくは死滅した
もの、完全なもの、何らかの方法で処理したもの、或い
はそれ自身で固定化されかつ、必要に応じホモゲナイズ
されたものとすることができ、ただし酵素成分自身は反
転を進行させうるように活性かつ安定な形態で保持され
るものとする。酵素または菌体の固定化は酵素反転活性
が完全に保持される限り、当業界で知られた任意の方法
により行うことができる。
立体特異性の反転酵素系を本発明の実施前に微生物から
完全に或いは部分的に抽出することもできる。不必要な
分離、酵素の精製および酵素の固定化工程を避けるため
、一般に酵素は菌体成分の少なくとも幾分かと一緒に存
在する。菌体に関連してこれらは往存もしくは死滅した
もの、完全なもの、何らかの方法で処理したもの、或い
はそれ自身で固定化されかつ、必要に応じホモゲナイズ
されたものとすることができ、ただし酵素成分自身は反
転を進行させうるように活性かつ安定な形態で保持され
るものとする。酵素または菌体の固定化は酵素反転活性
が完全に保持される限り、当業界で知られた任意の方法
により行うことができる。
好ましくは微生物は立体特異的反転に使用する前に約1
〜10日間培養され、次いで菌体を液体栄養培地(好ま
しくは最小液体培養地)に懸濁し、かつ2−(6−メト
キシ−2−ナフチル)−プロピオン酸を菌体の作用にか
ける。上記培養の後、菌体を培地から分離した後、これ
ら菌体を最小液体培地に懸濁することができる。立体特
異性につき使用する微生物を増殖させるには、資化性炭
素源(たとえばグルコース、ラクテート、シェークロー
スなど)と窒素源(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸ア
ンモニウム、塩化アンモニウムなど)を有機栄養a(た
とえば酵母抽出物、麦芽抽出物、ペプトン、内袖出物な
ど)および無機栄養a(たとえば@量の燐酸塩、マグネ
シウム、カリウム、亜鉛、鉄およびその他の金属)のた
めの試薬と共に含有する通常の培地を使用することがで
きる。
〜10日間培養され、次いで菌体を液体栄養培地(好ま
しくは最小液体培養地)に懸濁し、かつ2−(6−メト
キシ−2−ナフチル)−プロピオン酸を菌体の作用にか
ける。上記培養の後、菌体を培地から分離した後、これ
ら菌体を最小液体培地に懸濁することができる。立体特
異性につき使用する微生物を増殖させるには、資化性炭
素源(たとえばグルコース、ラクテート、シェークロー
スなど)と窒素源(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸ア
ンモニウム、塩化アンモニウムなど)を有機栄養a(た
とえば酵母抽出物、麦芽抽出物、ペプトン、内袖出物な
ど)および無機栄養a(たとえば@量の燐酸塩、マグネ
シウム、カリウム、亜鉛、鉄およびその他の金属)のた
めの試薬と共に含有する通常の培地を使用することがで
きる。
代案の培地としては、必要に応じ1種もしくはそれ以上
の成分を添加したツアペック−ドックス培地が使用され
る。@生物の増殖に際し、0〜45°Cの温度および3
.5〜8の範囲のPHを維持する。
の成分を添加したツアペック−ドックス培地が使用され
る。@生物の増殖に際し、0〜45°Cの温度および3
.5〜8の範囲のPHを維持する。
好ましくは、微生物を20〜37℃の温度かつ4〜7の
pHにて増殖させる。
pHにて増殖させる。
微生物の増殖に際し必要とされる好気的条件は充分確立
された任意の方法にしたがって与えることができ、ただ
し酸素の供給は微生物の代謝要求を満たすのに充分な量
とする。これは特に便利には、気体酸素を好ましくは空
気として供給することにより達成される。立体特異的反
転の間微生物は通常の上記培地を用いて増殖段階となる
。
された任意の方法にしたがって与えることができ、ただ
し酸素の供給は微生物の代謝要求を満たすのに充分な量
とする。これは特に便利には、気体酸素を好ましくは空
気として供給することにより達成される。立体特異的反
転の間微生物は通常の上記培地を用いて増殖段階となる
。
好ましくは立体特異的反転の間、微生物は最小培地(m
inimal culture medium)を用い
てほぼ非増殖段階に保つことができる。最小培地として
は、必要に応じ資化性炭素′a(たとえばグルコース、
ラフテース、シェークロースなど)と必要に応じ窒素源
(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化
アンモニウムなど)とを必要に応じ有機栄養#(たとえ
ば酵母抽出物、麦芽抽出物、ペプトン、内袖出物など)
および必要に応し無機栄養a(たとえば微量の燐酸塩、
マグネシウム、カリウム、亜鉛、鉄およびその他の金属
)のためのjA′薬と共に含有する通常の培地を使用す
ることができる。微生物は、たとえば資化性炭素源を除
いて或いは窒素源を除いて非増殖段階に保つことができ
る。この段階では、0〜45°Cの温度および3.5〜
8のpHが維持される。好ましくは、微生物は20〜3
7°Cの温度かつ4〜7のPHに保持される。この段階
に必要とされる好気的条件は上記方法にしたがって与え
ることができ、ただし酸素の供給は微生物の代謝要求を
満たすのに充分とするが、さらにR−エナンチオマを対
応のSエナンチオマに変換するのに充分な量とする。
inimal culture medium)を用い
てほぼ非増殖段階に保つことができる。最小培地として
は、必要に応じ資化性炭素′a(たとえばグルコース、
ラフテース、シェークロースなど)と必要に応じ窒素源
(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化
アンモニウムなど)とを必要に応じ有機栄養#(たとえ
ば酵母抽出物、麦芽抽出物、ペプトン、内袖出物など)
および必要に応し無機栄養a(たとえば微量の燐酸塩、
マグネシウム、カリウム、亜鉛、鉄およびその他の金属
)のためのjA′薬と共に含有する通常の培地を使用す
ることができる。微生物は、たとえば資化性炭素源を除
いて或いは窒素源を除いて非増殖段階に保つことができ
る。この段階では、0〜45°Cの温度および3.5〜
8のpHが維持される。好ましくは、微生物は20〜3
7°Cの温度かつ4〜7のPHに保持される。この段階
に必要とされる好気的条件は上記方法にしたがって与え
ることができ、ただし酸素の供給は微生物の代謝要求を
満たすのに充分とするが、さらにR−エナンチオマを対
応のSエナンチオマに変換するのに充分な量とする。
上記微生物により生成されるS−エナンチオマは、この
種の生成物につきそれ自体公知の任意の方法にしたがっ
て回収しかつ精製することができる。
種の生成物につきそれ自体公知の任意の方法にしたがっ
て回収しかつ精製することができる。
本発明の方法に使用する微生物はR−エナンチオマをS
−エナンチオマに変換しうるが、S−エナンチオマをR
−エナンチオマに変換しえないことが判明した。したが
って、本発明による方法を用いて、R−エナンチオマを
実質的に含有しないS−エナンチオマをその後の分割の
必要性なしにイ」!)jノ 製造することができる。これは驚異的であると共に有利
である。
−エナンチオマに変換しうるが、S−エナンチオマをR
−エナンチオマに変換しえないことが判明した。したが
って、本発明による方法を用いて、R−エナンチオマを
実質的に含有しないS−エナンチオマをその後の分割の
必要性なしにイ」!)jノ 製造することができる。これは驚異的であると共に有利
である。
さらに、2−(6−メトキシ−2−ナフチル)プロピオ
ン酸に構造上返信したアリールプロピオン酸のR−エナ
ンチオマ、特に2−(4−イソブチルフェニル)プロパ
ン酸(イブプロフェン)および2−(2−フルオロ−4
−ビフェニル)プロパン酸(フリルビプロフェン)は、
本発明の方法により対応のS−エナンチオマに変換され
ないことが判明した。したがって、2−(6−メトキシ
−2−ナフチル)プロピオン酸のR−エナンチオマをS
−エナンチオマに変換しうるという事実は、特に驚異的
である。
ン酸に構造上返信したアリールプロピオン酸のR−エナ
ンチオマ、特に2−(4−イソブチルフェニル)プロパ
ン酸(イブプロフェン)および2−(2−フルオロ−4
−ビフェニル)プロパン酸(フリルビプロフェン)は、
本発明の方法により対応のS−エナンチオマに変換され
ないことが判明した。したがって、2−(6−メトキシ
−2−ナフチル)プロピオン酸のR−エナンチオマをS
−エナンチオマに変換しうるという事実は、特に驚異的
である。
以下、実施例により本発明をさらに説明する。
使用した培地は次の通りである:
二ンー二トベ クー゛ ス
使用@(g/ff1)
硝酸ナトリウム 3.00塩化カリうム
0.50グリセロ燐酸マグ不ンウム
0.50硫酸第一鉄 0.01硫酸カ
リウム 0.35シエークロース
30 添加物二0.1%(W/V)の麦芽抽出物および0.1
%(W/V) ノ酵母抽出物。PHを5.5に調整。
0.50グリセロ燐酸マグ不ンウム
0.50硫酸第一鉄 0.01硫酸カ
リウム 0.35シエークロース
30 添加物二0.1%(W/V)の麦芽抽出物および0.1
%(W/V) ノ酵母抽出物。PHを5.5に調整。
募直温府辿(ハ豆
盪(gZl
燐酸二水素カリウム 8゜92燐酸水素二ナト
リウム 2.84燐酸水素二アンモニウム
1.0 硫酸アンモニウム 0.2 塩化カリウム 0.2 クエン酸三ナトリウム 0.294硫酸カルシウ
ム・2H□OO,005 硫酸マグネシウム・7H!OO,2 PS 2 T/E I O,Od/1且
呈Lエフ旦 (NHa)zSO,−Fe50.−6H!OO,25g
Z n S Oa ・7 Hz O MnC+ ・4HzO CuSO4・5H−O CoC1z ・6HzO Hx B Os NazMOO4+ HzO 12の蒸留水に熔解 、[且泣適廼 噛(gZg) 硝酸アンモニウム 硫酸アンモニウム 燐酸二水素カリウム 燐酸水素二ナトリウム 硫酸カリウム 硫酸マグネノウム・78.0 硫酸第−銖 塩化カルシウム・28.0 硫酸亜鉛・7H20 硫酸マンガン・411 、0 0.05g 0、03 g 0.015g 0.015g 0、005 g O,OO55g 0.01g 1.2 2.0 1.5 1.5 0.5 0.4 0、1 0、066 0、0 1 07 0、 OO66 硫酸銅・5HtOO,0031 硼酸 0.000 /1モリ
ブデン酸ナトリウム・2H,OO,0012塩化コバル
ト−6H,OO,0007 ニトリロ三酢酸三ナトリウム塩 0.2p H5,5に
調整。
リウム 2.84燐酸水素二アンモニウム
1.0 硫酸アンモニウム 0.2 塩化カリウム 0.2 クエン酸三ナトリウム 0.294硫酸カルシウ
ム・2H□OO,005 硫酸マグネシウム・7H!OO,2 PS 2 T/E I O,Od/1且
呈Lエフ旦 (NHa)zSO,−Fe50.−6H!OO,25g
Z n S Oa ・7 Hz O MnC+ ・4HzO CuSO4・5H−O CoC1z ・6HzO Hx B Os NazMOO4+ HzO 12の蒸留水に熔解 、[且泣適廼 噛(gZg) 硝酸アンモニウム 硫酸アンモニウム 燐酸二水素カリウム 燐酸水素二ナトリウム 硫酸カリウム 硫酸マグネノウム・78.0 硫酸第−銖 塩化カルシウム・28.0 硫酸亜鉛・7H20 硫酸マンガン・411 、0 0.05g 0、03 g 0.015g 0.015g 0、005 g O,OO55g 0.01g 1.2 2.0 1.5 1.5 0.5 0.4 0、1 0、066 0、0 1 07 0、 OO66 硫酸銅・5HtOO,0031 硼酸 0.000 /1モリ
ブデン酸ナトリウム・2H,OO,0012塩化コバル
ト−6H,OO,0007 ニトリロ三酢酸三ナトリウム塩 0.2p H5,5に
調整。
ハ 土立量 PSIII H7,OKH!
PO42,1g#2 (NH4)2HPO* 1.0
gZ1(NH,)、H2O,0,9gZe KCI 0.2 g/
eCaSO= ・2HzOO,005g/lMgSO4
・7H,OO,2gZl (N Hz) S O−・F e S O−・6 Hz
O2,5mg/ lZnSO4・7HzOO,51g
/l MnC1x ・4H!OO,3118/ lCuS 0
4 ・5Hzo 0.15 mg/
lCoC1z・6HzOO,1,511g#HiBOi
0.05 ■/iNatM
oO,・2Hz0 0.055■/lK1 0.1 11Ig/e p H6,8に調整。
PO42,1g#2 (NH4)2HPO* 1.0
gZ1(NH,)、H2O,0,9gZe KCI 0.2 g/
eCaSO= ・2HzOO,005g/lMgSO4
・7H,OO,2gZl (N Hz) S O−・F e S O−・6 Hz
O2,5mg/ lZnSO4・7HzOO,51g
/l MnC1x ・4H!OO,3118/ lCuS 0
4 ・5Hzo 0.15 mg/
lCoC1z・6HzOO,1,511g#HiBOi
0.05 ■/iNatM
oO,・2Hz0 0.055■/lK1 0.1 11Ig/e p H6,8に調整。
コルジセプス・ミリタリスCB S 267.85 ヲ
ツアベックードノクス寒天スラント上に保ち、かつ使用
するためツアペック−ドックス培地に接種し、50−の
培地を含有する2 50 alの三角フラスコにて振と
うしなから好気的条件を維持して増殖させた。
ツアベックードノクス寒天スラント上に保ち、かつ使用
するためツアペック−ドックス培地に接種し、50−の
培地を含有する2 50 alの三角フラスコにて振と
うしなから好気的条件を維持して増殖させた。
菌糸を回収しかつ上記したように最小増殖培地50d中
にて振とうおよび好気的条件を維持しながら再び培養し
た。この培養物にR−2−(6−メトキシ−2−ナフチ
ル)プロピオン酸(20+++g)を添加し、これをさ
らに25゛Cにて4日間培養した。
にて振とうおよび好気的条件を維持しながら再び培養し
た。この培養物にR−2−(6−メトキシ−2−ナフチ
ル)プロピオン酸(20+++g)を添加し、これをさ
らに25゛Cにて4日間培養した。
培養物を5N塩酸によりp H2,0まで酸性化し、か
つ混合物をジクロルメタンで抽出した。
つ混合物をジクロルメタンで抽出した。
回収した酸の量を、HPLC(ギルソン・イソクラチッ
ク系)により次の条件で測定した;UV検出:254n
m カラム =スフエリソルダ350 DS2(250X
4.9mn+) 移動相 ;燐酸によりp H3,7に調整された50m
Mの燐酸二水素カリウム、シ アン化メチル中35%(ν/v) 流速 :1.5組^1n 注入 :5μP 温度 :室温 滞留時間:約3.in+1n iW211化およびキラルHP I−C分析は次のよう
に行った; ナフタレンメチルアミドへの誘導化;ジクロルメタン抽
出物(3Id)を200μeの沃化ブロモメチルピリジ
ニウム(ジメチルホルムアミド中5%−/ v )およ
び200ujl!の1−ナフタレンメチルアミンン容液
(ジクロルメタン中10%V/ν)と反応させた。この
混合物を回動させかつ60°Cにて10分間加熱し、次
いで窒素下に乾燥すると共にイソオクタン/ジクロルメ
タン(2: 1.v/ν)(3d)および0.5M硫酸
(2d)で抽出した。
ク系)により次の条件で測定した;UV検出:254n
m カラム =スフエリソルダ350 DS2(250X
4.9mn+) 移動相 ;燐酸によりp H3,7に調整された50m
Mの燐酸二水素カリウム、シ アン化メチル中35%(ν/v) 流速 :1.5組^1n 注入 :5μP 温度 :室温 滞留時間:約3.in+1n iW211化およびキラルHP I−C分析は次のよう
に行った; ナフタレンメチルアミドへの誘導化;ジクロルメタン抽
出物(3Id)を200μeの沃化ブロモメチルピリジ
ニウム(ジメチルホルムアミド中5%−/ v )およ
び200ujl!の1−ナフタレンメチルアミンン容液
(ジクロルメタン中10%V/ν)と反応させた。この
混合物を回動させかつ60°Cにて10分間加熱し、次
いで窒素下に乾燥すると共にイソオクタン/ジクロルメ
タン(2: 1.v/ν)(3d)および0.5M硫酸
(2d)で抽出した。
キラルHP L C条件:
UV検出:280nm
カラム :ベーカー結合DNPG
(250X 4.9mm)
移動相 :イソオクタン/メタノール/クロロホルム(
90:3 : 7.ν/V)流速 : 2 IR1/
a+in 注入 :20IP 温度 二室温 滞留時間:S−エナンチオマ、約24m1nR−エリン
チオマ、約26閘in 。
90:3 : 7.ν/V)流速 : 2 IR1/
a+in 注入 :20IP 温度 二室温 滞留時間:S−エナンチオマ、約24m1nR−エリン
チオマ、約26閘in 。
R−エナンチオマからS−エナンチオマへの反転を観察
した1回収された酸は全部(7,8■、31]%)がS
−型であった。
した1回収された酸は全部(7,8■、31]%)がS
−型であった。
微生物にS−エナンチオマを供給物として用いた比較実
験は、対応のR−エナンチすマを蓄積しなかった。
験は、対応のR−エナンチすマを蓄積しなかった。
実施例1の手順を反復したが、ただし基質として2にの
ラセミ型2−(6−メトキシ−2−ナフチル)−プロピ
オン酸を使用した。菌体を含む基質の培養を24時間行
い、次いで実施例1に記載したように抽出および分析を
行って、酸生成物(11,6mg、58%)を得た。回
収した酸におけるS−エナンチオマの比率は88%であ
ると判明した。
ラセミ型2−(6−メトキシ−2−ナフチル)−プロピ
オン酸を使用した。菌体を含む基質の培養を24時間行
い、次いで実施例1に記載したように抽出および分析を
行って、酸生成物(11,6mg、58%)を得た。回
収した酸におけるS−エナンチオマの比率は88%であ
ると判明した。
下記第1表により示した微生物を用いて実施例1の手順
を反復することにより、表中に示した比−ドの生成物中
のS−エナンチオマを得た。微生物R,ロドクラウスN
CI 812566を上記のFSX培地にてセンターウ
ェルから蒸気として供給されたヘプタンの上で30°C
にて増殖させた。
を反復することにより、表中に示した比−ドの生成物中
のS−エナンチオマを得た。微生物R,ロドクラウスN
CI 812566を上記のFSX培地にてセンターウ
ェルから蒸気として供給されたヘプタンの上で30°C
にて増殖させた。
B、バシアナDSM875を用いる場合は50■のW’
dを使用したのに対し、残余の実験では20ll1gの
基質を用いた。
dを使用したのに対し、残余の実験では20ll1gの
基質を用いた。
S−エナンチオマから出発した比較実験は、対応のR−
エナンチオマを蓄積しなかった。
エナンチオマを蓄積しなかった。
エキソフィアラ・ウィルファンシイ(CBS547.8
8)を使用するため酵母抽出物(0,0111/ν%)
とグリセリン(0,5w/v%)とが補充された最小塩
培地(PS[lI)に接種し、かつ100m2の培地を
入れた5 00 telのパンフル付きフラスコにて攪
拌しなから30’Cで48時間増殖させた。
8)を使用するため酵母抽出物(0,0111/ν%)
とグリセリン(0,5w/v%)とが補充された最小塩
培地(PS[lI)に接種し、かつ100m2の培地を
入れた5 00 telのパンフル付きフラスコにて攪
拌しなから30’Cで48時間増殖させた。
培N物を新鮮培地で20倍希釈し、かつ30°Cで24
時間増殖させた。菌体を遠心分離により集め、かつグリ
セリンを含まない同じ培地に再懸濁させた。懸濁物の菌
体濃度はld当りlO〜15■の乾燥菌体であった。
時間増殖させた。菌体を遠心分離により集め、かつグリ
セリンを含まない同じ培地に再懸濁させた。懸濁物の菌
体濃度はld当りlO〜15■の乾燥菌体であった。
2−の大豆油もしくは2rnlの7.5%・ンイーン8
0(登録商標)または5■の2−(6−メトキシ−2−
ナフチル)プロパンfil (R/SもしくはR)を自
存する培地を、10−の懸濁物に添加した。これら混合
物を125111のパンフル付きフラスコ中で30°C
にて下表に示す時間にわたり振とうした。
0(登録商標)または5■の2−(6−メトキシ−2−
ナフチル)プロパンfil (R/SもしくはR)を自
存する培地を、10−の懸濁物に添加した。これら混合
物を125111のパンフル付きフラスコ中で30°C
にて下表に示す時間にわたり振とうした。
P!濁物を85%燐酸によりP H2,0に酸性化し、
次いでジクロルメタンで抽出した。
次いでジクロルメタンで抽出した。
回収した酸の址を、下記するようにHPLCで測定した
。酸のエナンチオマ比を、誘導化の後にキラルHPLC
により下記するように決定した。
。酸のエナンチオマ比を、誘導化の後にキラルHPLC
により下記するように決定した。
これらの結果を第2表(R/S酸出発物質)および第3
表(R酸出発物質)に示す。
表(R酸出発物質)に示す。
−メ キシ−フ ル ロピオン の
淀」t
2−の抽出物を、窒素下で60°Cにて蒸発させること
により4縮した。残留物を2dのアセトニトリル/水(
2: 1.v/ν)に溶解し、かつクロムバンクボリゴ
シル60DIOCNカラム(250償鴫、直径4.6−
−)を用いるHPLCによりアセトニトリル10.03
MのNaHzPO−(36,64,v/v)(pH5゜
0)で溶出させて分析した。酸を254nmにて分光光
度法で検出した。
により4縮した。残留物を2dのアセトニトリル/水(
2: 1.v/ν)に溶解し、かつクロムバンクボリゴ
シル60DIOCNカラム(250償鴫、直径4.6−
−)を用いるHPLCによりアセトニトリル10.03
MのNaHzPO−(36,64,v/v)(pH5゜
0)で溶出させて分析した。酸を254nmにて分光光
度法で検出した。
を添加した後に抽出した。有機層を脱水し、かつベーカ
ーのアミノプロピル共有DNBPGカラム(250nm
、直径4.6av+)を用いるHPLCによリイオクタ
ン/クロロホルム/メタノール(90ニア;3.ν/V
/V)で溶出させて分析した。化合物を280nmにて
分光光度法により検出した。
ーのアミノプロピル共有DNBPGカラム(250nm
、直径4.6av+)を用いるHPLCによリイオクタ
ン/クロロホルム/メタノール(90ニア;3.ν/V
/V)で溶出させて分析した。化合物を280nmにて
分光光度法により検出した。
8〜12dの抽出物を、60°Cにおける窒素下での蒸
発によって濃縮した。乾燥残留物を21d、のジクロル
メタンに熔解し、かつジメチルホルムアミドにおける沃
化2−ブロモ−1−メチル−ピリジニウムの溶液(50
iIg/d) 200μPおよびジクロルメタンにおけ
るl−ナフタレンメチルアミンの溶液(l OO1g#
り 200μiと反応させた0反応混合物を窒素下で
60゛cにて乾燥した。
発によって濃縮した。乾燥残留物を21d、のジクロル
メタンに熔解し、かつジメチルホルムアミドにおける沃
化2−ブロモ−1−メチル−ピリジニウムの溶液(50
iIg/d) 200μPおよびジクロルメタンにおけ
るl−ナフタレンメチルアミンの溶液(l OO1g#
り 200μiと反応させた0反応混合物を窒素下で
60゛cにて乾燥した。
残留物を2dのイソオクタン/ジクロルメタン(2:
I 、v/v)に?8解し、かツ2 mlのINHcI
イブプロフェンのいずれかのエナンチオマの反転を、実
施例1に示したように増殖させた次の微生物を用いて試
験した。基質を培地50−当りl10ll1で使用した
。生成物の単離および特性化を、比較化合物としての単
一エナンチオマを用いて上記したように行った。
I 、v/v)に?8解し、かツ2 mlのINHcI
イブプロフェンのいずれかのエナンチオマの反転を、実
施例1に示したように増殖させた次の微生物を用いて試
験した。基質を培地50−当りl10ll1で使用した
。生成物の単離および特性化を、比較化合物としての単
一エナンチオマを用いて上記したように行った。
(以下余白)
第−二り一麦
1−」L−表
(S:R11
ATCC13144
CBS258.86
第4表に示した最初の4種の微生物はフルルビプロフェ
ンのR−もしくはS−エナンチオマを反転させなかった
。E、ウィルパンシイCBS547.88はR−エナン
チオマを反転させず、かつ100%の回収率を与えた。
ンのR−もしくはS−エナンチオマを反転させなかった
。E、ウィルパンシイCBS547.88はR−エナン
チオマを反転させず、かつ100%の回収率を与えた。
第6表
エキソフィアラ・ウィルパンシイCBS547.88を
用いる(R/5)−1(6−ノドキシ−2ナフチル)プ
ロピオン酸から(S)−1−(6−メトキシ−2−ナフ
チル)プロピオン酸への変換なし 24 3
2/68 74ツイーン 0/100 92±14傘 大豆油 0/100 *実験は3反復で行った。これらの結果は、この方法に
洗剤を使用すれば特に有利であることを示している。
用いる(R/5)−1(6−ノドキシ−2ナフチル)プ
ロピオン酸から(S)−1−(6−メトキシ−2−ナフ
チル)プロピオン酸への変換なし 24 3
2/68 74ツイーン 0/100 92±14傘 大豆油 0/100 *実験は3反復で行った。これらの結果は、この方法に
洗剤を使用すれば特に有利であることを示している。
1−ニし一表
エキソフィアラ・ウイルパンシイCBS547.88を
用いる2−(6−メトキシ−2−ナフチル)プロピオン
酸のR−エナンチオマの変換R−エナンチオマ 8
61/39 10016 0/100
80*基質は、上記したように7.5%ツイーン−
80(登録商標)における溶液として添加した。
用いる2−(6−メトキシ−2−ナフチル)プロピオン
酸のR−エナンチオマの変換R−エナンチオマ 8
61/39 10016 0/100
80*基質は、上記したように7.5%ツイーン−
80(登録商標)における溶液として添加した。
Claims (7)
- (1)R−2−(6−メトキシ−2−ナフチル)−プロ
ピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もしくはエステ
ルを、R−エナンチオマを対応のS−エナンチオマに変
換しうる立体特異性の反転酵素系を有する微生物にまた
はこの酵素系を含有する微生物の抽出物に供給すること
を特徴とするS−2−(6−メトキシ−2−ナフチル)
プロピオン酸またはその医薬上許容しうる塩もしくはエ
ステルの製造方法。 - (2)R−酸を微生物に供給する請求項1記載の方法。
- (3)R−酸をS−エナンチオマとのラセミ混合物とし
て微生物に供給する請求項2記載の方法。 - (4)微生物がコルジセプス属、ビウベリア属、クラド
スポリウム属もしくはエキソフィアラ属の真菌類である
請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。 - (5)微生物がコルジセプス・ミリタリス、ビウベリア
・バシアナ、クラドスポリウム・レジナエまたはエキソ
フィアラ・ジーンセルメイの菌種に属する請求項4記載
の方法。 - (6)微生物がコルジセプス・ミリタリスCBS267
.85、ビウベリア・バシアナDSM875(ATCC
13144)、クラドスポリウム・レジナエCBS17
7.62もしくはエキソフィアラ・ジーンセルメイCB
S258.86、またはその変種もしくは突然変位種で
ある請求項5記載の方法。 - (7)立体特異的反転の生成物が遊離酸の形態であり、
これをその後に医薬上許容しうる塩もしくはエステルに
変換する請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB888809434A GB8809434D0 (en) | 1988-04-21 | 1988-04-21 | Process for producing optically active 2-arylpropionic acids |
GB8809434.7 | 1988-04-21 | ||
GB8905378.9 | 1989-03-09 | ||
GB898905378A GB8905378D0 (en) | 1989-03-09 | 1989-03-09 | Process for producing optically active 2-arylpropionic acids |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0265785A true JPH0265785A (ja) | 1990-03-06 |
Family
ID=26293800
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1097707A Pending JPH0265785A (ja) | 1988-04-21 | 1989-04-19 | 光学活性2‐アリールプロピオン酸の製造方法 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5043274A (ja) |
EP (1) | EP0338645B1 (ja) |
JP (1) | JPH0265785A (ja) |
AT (1) | ATE138414T1 (ja) |
DE (1) | DE68926521T2 (ja) |
ES (1) | ES2090030T3 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1081228A2 (en) | 1999-08-09 | 2001-03-07 | Sumitomo Chemical Company, Limited | Process for producing carboxylic acid isomer |
Families Citing this family (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3919029A1 (de) * | 1989-06-10 | 1990-12-13 | Hoechst Ag | Verfahren zur enzymatischen spaltung von 2-arylpropionsaeure-vinylester |
US5457051A (en) * | 1993-03-09 | 1995-10-10 | Sepracor, Inc. | Enantioselective hydrolysis of ketoprofen esters by beauveria bassiana and enzymes derived therefrom |
US5580783A (en) * | 1994-10-12 | 1996-12-03 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Enzymatic process for the preparation of chiral α-tertiary carboxylic acid esters |
US5750764A (en) * | 1995-11-17 | 1998-05-12 | Aeci Limited | Synthesis and resolution of propionic acid derivatives |
AU2003900909A0 (en) | 2003-02-27 | 2003-03-13 | Goyen Controls Co. Pty Limited | Bladder valve |
CN104557521A (zh) * | 2013-10-28 | 2015-04-29 | 湖南理工学院 | 一种采用离心萃取器多级逆流萃取分离萘普生对映体的方法 |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA1215924A (en) * | 1983-07-27 | 1986-12-30 | David W. Bewick | Process for producing optically active aryloxypropionic acids and derivatives thereof useful as herbicides |
IT1208109B (it) * | 1983-11-23 | 1989-06-06 | Alfa Chem Ital | Procedimento per la risoluzione ottica di acidi arilpropionici |
GB8600245D0 (en) * | 1986-01-07 | 1986-02-12 | Shell Int Research | Preparation of 2-arylpropionic acids |
-
1989
- 1989-04-18 ES ES89200993T patent/ES2090030T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1989-04-18 DE DE68926521T patent/DE68926521T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1989-04-18 EP EP89200993A patent/EP0338645B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-04-18 AT AT89200993T patent/ATE138414T1/de not_active IP Right Cessation
- 1989-04-19 JP JP1097707A patent/JPH0265785A/ja active Pending
- 1989-04-20 US US07/340,830 patent/US5043274A/en not_active Expired - Fee Related
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP1081228A2 (en) | 1999-08-09 | 2001-03-07 | Sumitomo Chemical Company, Limited | Process for producing carboxylic acid isomer |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US5043274A (en) | 1991-08-27 |
EP0338645A3 (en) | 1991-07-31 |
ATE138414T1 (de) | 1996-06-15 |
DE68926521D1 (de) | 1996-06-27 |
DE68926521T2 (de) | 1996-09-26 |
EP0338645B1 (en) | 1996-05-22 |
EP0338645A2 (en) | 1989-10-25 |
ES2090030T3 (es) | 1996-10-16 |
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