JP7577336B2 - 分離ペプチド - Google Patents
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Description
(1)アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATL、またはその機能的同等配列を含むペプチド。
(2)アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATL、またはその機能的同等配列からなるペプチド。
(3)配列番号4に記載のアミノ酸配列またはその自己凝集性を有する改変配列および断片を有するポリペプチドの自己凝集を崩壊させる機能を有する上記項目のいずれかに記載のペプチド。
(4)配列番号4に示すアミノ酸配列もしくはその改変配列またはその断片を含むポリペプチドを発現する細胞の凝集を崩壊させる機能を有する、上記項目のいずれかに記載のペプチド。
(4B)(1)アシネトバクター属微生物由来のオートトランスポーターアドヘシン、例えば、配列番号4に示すアミノ酸配列もしくはその改変配列、またはその断片をコードするDNAが導入されることによって非特異的付着性が付与又は増強された微生物を担体に接触させ、該微生物を該担体に付着させる工程;(2)上記項目のいずれかに記載のペプチドの存在下で該微生物が付着した該担体を洗浄し、該担体から該微生物を脱離させる工程を含む、微生物の着脱方法。
(5)配列番号1に示すアミノ酸配列もしくはその改変配列またはその断片を含むポリペプチド、または該ポリペプチドと他のアミノ酸配列との融合体もしくは複合体と、他の対象との間の結合を分離させる機能を有する上記項目のいずれかに記載のペプチド。
(6)配列番号4に記載のアミノ酸配列またはその自己凝集性を有する改変配列および断片を有するポリペプチドの自己凝集を崩壊させるための、上記項目のいずれかに記載のペプチドを含む組成物。
(7)配列番号1に示すアミノ酸配列もしくはその改変配列またはその断片を含むポリペプチド、または該ポリペプチドと他のアミノ酸配列との融合体もしくは複合体と、他の対象との間の結合を分離させるための、上記項目のいずれかに記載のペプチドまたは類似ペプチドを含む組成物。
(8)前記対象は機能性付与実体である、上記項目のいずれかに記載の組成物。
(9)前記対象はストレプトアビジン、中性アビジンまたはそれらの改変体である、上記項目のいずれかに記載の組成物。
(10)前記機能性付与実体は細胞である、上記項目のいずれかに記載の組成物。
(11)上記項目のいずれかに記載のペプチドと、機能性付与実体との融合体または複合体。
(12)上記項目のいずれかに記載のペプチドの、配列番号4に記載のアミノ酸配列またはその自己凝集性を有する改変配列および断片を有するポリペプチドの自己凝集を崩壊させるための使用。
(13)上記項目のいずれかに記載のペプチドまたは類似ペプチドの、配列番号1に示すアミノ酸配列もしくはその改変配列またはその断片を含むポリペプチド、または該ポリペプチドと他のアミノ酸配列との融合体もしくは複合体と、他の対象との間の結合を分離させるための使用。
(14)前記対象は機能性付与実体である、上記項目のいずれかに記載の使用。
(15)前記対象はストレプトアビジン、中性アビジンまたはそれらの改変体である、上記項目のいずれかに記載の使用。
本明細書において、「接着(adhere,adhesion)」または「固定(immobilize,immobilization)」とは、互換可能に使用され、本技術分野において通常使用される意味で使用され、「接着」または「固定」の対象の少なくとも一部を、接着または固定される目的物における一定の位置から少なくとも相対的に動かなくさせることを意味する。
以下に本開示の好ましい実施形態を説明する。以下に提供される実施形態は、本開示のよりよい理解のために提供されるものであり、本開示の範囲は以下の記載に限定されるべきでないことが理解される。従って、当業者は、本明細書中の記載を参酌して、本開示の範囲内で適宜改変を行うことができることは明らかである。また、以下の実施形態は単独でも使用されあるいはそれらを組み合わせて使用することができることが理解される。
1つの局面において、本開示は、アミノ酸配列AVL、SVLまたはATLまたはその改変配列(特に、機能的同等配列)を含むペプチドを提供する。ここで、「機能的同等配列」とは、AVL、SVLまたはATLペプチドが有するAtaAの自己凝集を崩壊させる能力、またはAtaA断片と他の対象(例えば、ストレプトアビジンおよび中性アビジンなどの機能性付与分子等)との結合を分離させる能力を有する任意の配列を有するペプチドが含まれることが理解される。好ましくは、本開示のペプチドは、AVL、SVLまたはATLのアミノ酸配列を含む。より好ましくは、本開示のペプチドは、AVL、SVLまたはATLのアミノ酸配列からなる。
本開示のペプチドは、配列番号4に記載のアミノ酸配列からなる全長のAtaAポリペプチド、またはその自己凝集性を有する改変配列および断片を有するポリペプチドの自己凝集の崩壊に有用である。
本開示のタンパク質およびペプチドは、微生物を使用する発現系または化学合成によって生産することができる。
一つの局面において、本開示のペプチドは、材料工学プロセスに有用である。他の局面では、本開示の崩壊ペプチドおよび分離ペプチドは、バイオプロセスを使用する工業に有用である。ある実施形態では、本開示の崩壊ペプチドおよび分離ペプチドは、AtaAポリペプチドの自己凝集を崩壊させてタンパク質、ペプチドまたは微生物を高密度に密集させて固定することによって、表面改質、材料設計等の材料工学プロセス、発酵工業、医薬品工業、化成品工業、再生医療、細胞工学、医用工学、バイオセンサー等の技術分野におけるバイオプロセスを効率的に実施することができる。加えて、本開示のペプチドは、支持体に固定された、AtaAポリペプチドを発現する細胞(微生物およびバイオフィルムを含む)を、支持体から分離させることが可能であり、バイオフィルムリアクターのバイオフィルムの厚みの調整や、接着または固定状態から分離させることによって、細胞または担体を再利用することを可能にする。
1つの実施形態では、本開示の接着性ポリペプチドおよび融合ポリペプチドは、微生物を使用する発現系によって生産される。本開示の接着性ポリペプチド、またはその融合ポリペプチドは、大腸菌に組換えタンパク質として、通常、実験室でよく行われている通りの方法で生産させることができる。すなわち、AtaAの断片または該断片にペプチドを融合した融合ペプチドをコードする遺伝子を、pETシステムなど適切な大腸菌発現ベクターの適切な位置に挿入し、大腸菌を形質転換し、誘導物質を加えて遺伝子発現を誘導するか、恒常発現プロモーター化で恒常発現させる。該タンパク質は、細胞質内に生産させることが多いが、ペリプラズム中に分泌生産させることも可能である。後者の場合、AtaAタンパク質が本来有しているシグナルペプチドあるいは、大腸菌発現ベクターに組み込まれているシグナルペプチドをコードする遺伝子配列を、該タンパク質をコードする5’末端側につなぐことで、該タンパク質のアミノ末端側にシグナルペプチドが付加される形式で該タンパク質が生産される。なお、シグナルペプチドは、生産された該タンパク質がペリプラズムに分泌されると切断除去されるので、得られるAtaA断片またはその融合タンパク質は、シグナルペプチドを含んでいない。細胞内に生産された該タンパク質は、可溶化成分から分離精製することが通常であるが、インクルージョンボディから分離したのち、巻き戻しによって活性を有するタンパク質として得てもよい。なお、生産されたタンパク質は、あらかじめ該タンパク質に融合したHisタグやストレプトタグなどを利用して、通常用いられるアフィニティ精製法によって分離精製することができる。さらに、SNAPタグなどが融合されている場合は、ベンジルグアニル基を有する分子を利用して、分離精製してもよい。さらに精製度をあげる場合、イオン交換クロマトグラフィーやゲルろ過などを併用してもよい。この微生物を使用する接着性ポリペプチドの生産方法において、接着性ポリペプチドを発現させる方法、接着性ポリペプチドを発現させる宿主、宿主から分泌された接着性ポリペプチドの精製方法等の詳細な条件は、当業者によって適宜調整される。さらに、本開示の接着性ポリペプチドは、微生物の菌体内発現系以外にも、分泌生産系、無細胞発現系等の種々の発現系を使用して発現させることもできる。
本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Sambrook J. et al.(1989).Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harborおよびその4th Ed.(2012)、岡田雅人、宮崎香、2011年、「タンパク質実験ノート 改訂第4版」上巻および下巻、羊土社などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分(全部であり得る)が参考として援用される。
本明細書において「または」は、文章中に列挙されている事項の「少なくとも1つ以上」を採用できるときに使用される。「もしくは」も同様である。本明細書において「2つの値の範囲内」と明記した場合、その範囲には2つの値自体も含む。
(製造例)
Nhead組換えタンパク質のコンストラクト設計を配列番号5に示す。このように設計されたNhead組換えタンパク質は、AtaAの配列の59~325位のアミノ酸断片:配列番号1の2~268位のアミノ酸断片に対応する組換えポリペプチドを発現する。このコンストラクトを作製するため、pIBA-GCN4tri-Hisベクターの制限酵素XbaI/BsaI消化断片に、配列番号1のアミノ酸1~268位をコードする遺伝子断片を挿入し、pIBA::Nhead組換えDNA(pIBA-GCN4tri-His::ataA59-325)を作製した。
BL21 star(DE3;pIBA-GCN4tri-His::ataA59-325)を終夜培養した培養物を、LB培地中で1:100に希釈し、37℃で3時間インキュベートした。インキュベート後、培地中に0.2μg/mlの無水テトラサイクリン(AHTC)を添加し、さらに28℃で6時間インキュベートした。細胞を4℃において5,000×gで15分間遠心分離を行うことによって回収し、溶解バッファー(20mM Tris-HCl、150mM NaClおよび20mM イミダゾール、pH9.0)に再懸濁し、高圧ホモジナイザー(LAB 2000、株式会社エスエムテー)を使用して、1,000barで10分間溶解した。4℃において10,000×gで15分間遠心分離後、上清をNi-NTA Superflowカラム(Qiagen NV)にロードし、溶解バッファーで2回洗浄することによって、未結合のタンパク質を除去した。結合したタンパク質を溶出バッファー(20mM Tris-HCl、150mM NaClおよび400mM イミダゾール、pH9.0)により溶出した。溶出されたタンパク質を、陰イオン交換カラム(HiTrap Q HP、GE Healthcare)にロードし、組換えタンパク質を含むフロースルー画分を、50mMリン酸緩衝液(pH6.0)に対して透析した。次いで、組換えタンパク質を陽イオン交換カラム(HiTrap SP HP、GE Healthcare)を使用して、リン酸緩衝液(pH6.0)中、0~1,000mM NaClの直線的な濃度勾配により精製した。組換えタンパク質を含むピーク画分を、遠心式フィルターデバイス(Amicon ultra、EMD Millipore)を使用した限外ろ過によって濃縮し、25mM Tris-HCl (pH9.0)で平衡化したゲルろ過カラム(HiLoad 26/60 Superdex 200pg、GE Healthcare)上にロードして、ゲルろ過精製した。
上記手順で作製されたものを、以下の実施例において使用した。
本実施例では、Acinetobacter sp. Tol5株の凝集塊の顕微鏡観察を行った。
(フローセルの作製)
本開示において構築したフローセルシステムの基本構造は、細胞懸濁物または流体を送液するためのシリコーンチューブに細胞を観察するためにガラスチューブを連結したものである。直方体のフローセルシステムを構築するために、長さが300mmであり、内径が1mmであり、外径が2mmであるシリコーンチューブを、長さが50mmであり、各内径寸法が1mmである直方体ガラス(Vitrocom)の両端に連結し、その連結部をパラフィンフィルムでシールした。入口のシリコーンチューブを、三方活栓(テルモ株式会社)を介してシリンジポンプ(Legato 200、KD Scientific)に連結し、直方体のガラスチューブの細胞観察部(フローセル)に送液した。
実施例1において使用されるBS-N培地の組成については、論文(S.Ishii,J.Koki,H.Unno,K.Hori;Two Morphological Types of Cell Appendages on a Strongly Adhesive Bacterium, Acinetobacter sp. Strain Tol5,Appl.Environ.Microbiol.70,(2004)5026-5029)と論文(H.Watanabe,Y.Tanji,H.Unno,K.Hori;Rapid Conversion of Toluene by an Acinetobacter sp.Tol5 Mutant Showing Monolayer Adsorption to Water-Oil Interface,J.Biosci.Bioeng.106 (2008)226-230 )に記されている。
結果を図1に示す。Acinetobacter sp. Tol5株は、コントロールのペプチドを含まない培地を流した場合は、菌体の凝集塊に変化がなかったのに対して、AVLペプチド、ATLペプチドまたはSVLペプチドを添加すると、Acinetobacter sp. Tol5株の菌体の凝集の迅速(10秒以内)な崩壊が認められた。このことから、AVLペプチド、ATLペプチドまたはSVLペプチドは、AtaAタンパク質同士の自己凝集を崩壊させる因子であることが確認された。
本実施例では、大腸菌組換えNheadとストレプトアビジンとの間の結合が、AVLペプチド、ATLペプチドおよびSVLペプチドによって分離されることを示す。
大腸菌組換えNhead(AtaAポリペプチドの断片)を、(製造例)に記載の方法にしたがって作製した。0.2mg/mlのNheadの組換えタンパク質(配列番号5)と、0.2mg/mlのストレプトアビジンとを等量混合して、5分間静置した。上記混合物40μLを石英セルに入れ、He-Neレーザー(波長633nm)を装着したDLS測定装置(Zetasizer Nano ZSP、Malvern Instruments,UK)にて粒形を測定し、Nheadの組換えタンパク質とストレプトアビジンとが結合して複合体を形成していることを確認した。その後、混合物に0.2μg/mlとなるようにAVLペプチドを添加し、混合して5分間静置して、再度DLS測定を行った。DLS測定は、温度は25℃、平衡時間120秒、散乱角173°の条件で測定した。
結果を図2A~2Cに示す。Nheadとストレプトアビジンとの複合体は、約1000nmの粒子径に直径のピークが認められたのに対し、Nheadとストレプトアビジンとの複合体にAVLペプチド(図2A)、ATLペプチド(図2B)およびSVLペプチド(図2C)を添加した場合には、約5~10nmの粒子径に直径のピークが認められた。この結果から、AVLペプチド、ATLペプチドおよびSVLペプチドの添加によって、Nheadとストレプトアビジンとの結合が分離したと考えられた。
本実施例では、Nheadとストレプトアビジンとの間の結合を使用したビオチン化分子の可逆的な固定化を示す。
大腸菌組換えNheadタンパク質、ストレプトアビジン、ビオチン化蛍光ペプチド(ペプチドGGSGGSK(配列番号6)のN末をフルオレセインで、C末をビオチンで修飾したもの)を1μMになるようにPBS緩衝液に個別に溶解した3種類の溶液を調製した。
まず、蛍光測定用の黒色96穴ポリスチレンプレートに、100μlのPBS緩衝液をアプライした。その後下記の(1)の操作を行い、Nheadタンパク質を固定する前のネガティブコントロール値(該プレートに吸着したストレプトアビジンによるブランク蛍光値)を測定した。次に、100μlのNheadタンパク質溶液をアプライした。37℃で1時間静置することで、プレートにNheadタンパク質を接着させた。その後、下記の操作を(1)→(2)→(1)→(2)→(1)の順に繰り返した。
(1)ストレプトアビジンの結合操作
(1-1).溶液を除き、100μlのストレプトアビジン溶液をアプライした。
(1-2).28℃で30分置くことで、ストレプトアビジンをプレートに固定されたNheadタンパク質に結合させた。
(1-3).溶液を除き、100μlのビオチン化蛍光ペプチドをアプライした。
(1-4).28℃で30分置くことで、ビオチン化蛍光ペプチドをストレプトアビジンに結合させた。
(1-5).200μlのPBS緩衝液で5回洗浄した。
(1-6).100μlのPBS緩衝液をアプライして、プレートリーダー(パーキンエルマー製ARVO X3)で蛍光測定(励起波長:485nm、蛍光波長:535nm)を行った。
(1-7).緩衝液を除いた。
(2)ストレプトアビジンの分離操作
(2-1).100μMのAVLペプチド溶液200μlで2回、PBS緩衝液200μlで1回洗浄(アプライしてそのまま除く)した。
(2-2).100μlのPBS緩衝液をアプライしてプレートリーダーで蛍光値を再測定することで、残存蛍光を求めた。
結果を図3に示す。1回目のビオチン化蛍光ペプチドの結合反応後に行った蛍光測定において、蛍光値の増大が認められた。この結果は、ポリスチレンプレートに接着させたNheadとストレプトアビジンとの複合体に、ビオチン化蛍光ペプチドが結合したことを示す。AVLペプチドの添加後に行った蛍光測定においては、蛍光値の低減が認められ、Nheadとストレプトアビジンとの結合が分離されたことが示された。2回目の結合反応および分離反応後、および3回目の結合反応後にも同様の結果が認められ、Nheadとストレプトアビジンとの結合が可逆的に結合および分離されることが示された。
以上のように、本開示の好ましい実施形態を用いて本開示を例示してきたが、上述の説明および実施例は、例示の目的のみに提供され、本開示を限定する目的で提供したのではない。従って、本発明は、本明細書に具体的に記載された実施形態にも実施例にも限定されず、請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。本願は、日本国特許庁に2019年7月18日に出願された特願2019-132490号に対して優先権主張を伴うものであり、その内容は全体が参考として本願において援用される。
配列番号2:シグナルペプチドを除き、開始位置にメチオニンを含むAtaA断片の核酸配列
配列番号3:AtaAの全長の核酸配列
配列番号4:AtaAの全長のアミノ酸配列
配列番号5:AtaAのNheadドメインの組換えタンパク質のアミノ酸配列
配列番号6:人工ペプチドのアミノ酸配列
Claims (18)
- (1)配列番号4に記載のアミノ酸配列、または
(2)配列番号4の59~325位に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含み、自己凝集性を有する改変配列もしくは断片
を含むポリペプチドの自己凝集を崩壊させるための、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、またはこれらからなるペプチドを含む組成物。 - (1)配列番号1に示すアミノ酸配列、または
(2)配列番号1の2~268位のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含み、他の対象に対する接着性を有する改変配列もしくは断片
を含むポリペプチド、または該ポリペプチドと他のアミノ酸配列との融合体もしくは複合体と、該他の対象との間の結合を分離させるための、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、またはこれらからなるペプチドを含む組成物。 - 前記対象は機能性付与実体である、請求項2に記載の組成物。
- 前記対象はストレプトアビジン、中性アビジンまたはそれらの改変体である、請求項2に記載の組成物。
- 前記機能性付与実体が、酵素、抗体、蛍光分子、受容体、抗菌ペプチド、シグナル因子、誘導因子、核酸アプタマー、血清成分、または細胞である、請求項3に記載の組成物。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、請求項1~5のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLのN末端、C末端またはその両方に、0、1、2、3、4、5、6、または7個のアミノ酸が付加されたものである、請求項1~6のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLからなる、請求項1~7のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記改変配列またはその断片が、配列番号1の2~268位のアミノ酸配列に対して少なくとも95%または99%同一であるアミノ酸配列を含む、請求項1~8のいずれか一項に記載の組成物。
- アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、またはこれらからなるペプチドの、
(1)配列番号4に記載のアミノ酸配列、または
(2)配列番号4の59~325位に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含み、自己凝集性を有する改変配列もしくは断片
を含むポリペプチドの自己凝集を崩壊させるための使用。 - アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、またはこれらからなるペプチドの、
(1)配列番号1に示すアミノ酸配列、または
(2)配列番号1の2~268位のアミノ酸配列に対して少なくとも90%の配列同一性を有する配列を含み、他の対象に対する接着性を有する改変配列またはその断片
を含むポリペプチド、または該ポリペプチドと他のアミノ酸配列との融合体もしくは複合体と、他の対象との間の結合を分離させるための使用。 - 前記対象は機能性付与実体である、請求項11に記載の使用。
- 前記対象はストレプトアビジン、中性アビジンまたはそれらの改変体である、請求項11に記載の使用。
- 前記機能性付与実体が、酵素、抗体、蛍光分子、受容体、抗菌ペプチド、シグナル因子、誘導因子、核酸アプタマー、血清成分、または細胞である、請求項12に記載の使用。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLを含む、請求項10~14のいずれか一項に記載の使用。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLのN末端、C末端またはその両方に、0、1、2、3、4、5、6、7またはそれ以上の任意のアミノ酸が付加されたものである、請求項10~15のいずれか一項に記載の使用。
- 前記ペプチドが、アミノ酸配列AVL、SVLもしくはATLからなる、請求項10~16のいずれか一項に記載の使用。
- 前記改変配列またはその断片が、配列番号1の2~268位のアミノ酸配列に対して少なくとも95%または99%同一であるアミノ酸配列を含む、請求項10~17のいずれか一項に記載の使用。
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