JP6802342B2 - 腎症を処置する方法 - Google Patents
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Description
本出願は、2013年11月28日に出願された、表題「Method of treating nephropathy」のオーストラリア特許出願第2013904595号からの優先権を主張する。この出願の内容全体が参照により援用される。
本出願を電子形式の配列表と共に出願する。これにより、この配列表の内容全体が参照によって援用される。
本出願は、腎症を処置する又は予防する方法に関する。
腎症とは腎臓への損傷を特徴とする障害の一クラスであり、この腎症には腎炎(炎症性腎疾患)及びネフローゼ(非炎症性腎疾患)が包含される。腎症の原因として、慢性疾患[全身性エリテマトーデス、糖尿病及び高血圧症(高血圧)等]、糸球体におけるIgA抗体の沈着、鎮痛剤の投与、キサンチンオキシダーゼ欠乏、化学療法剤の毒性、並びに鉛又はその塩への長期曝露が挙げられる。
VEGFファミリの増殖因子は、3種の受容体チロシンキナーゼ(VEGFR-1、VEGFR-2及びVEGFR-3)並びにセマフォリン受容体(ニューロピリン1及びニューロピリン2)に別々に結合することができる5種のリガンド{VEGF-A、VEGF-B、VEGF-C、VEGF-D及び胎盤増殖因子(PIGF)}を包含する。VEGFファミリの増殖因子は、正常な及び病的な血管形成及びリンパ管形成に関与する。VEGF-AはVEGFR-1、VEGFR-2、NP-1及びNP-2に結合し、VEGF-BはVEGFR-1及びNP-1に結合する。VEGF-C及びVEGF-Dはリンパ管形成に主に関与し、VEGFR-2、VEGFR-3及びNP-2に結合する。
・ 高血圧を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体硬化症及び/若しくは尿細管硬化症を軽減させる、若しくは予防する、
・ メサンギウムの細胞外基質沈着及び/若しくは糸球体基底膜の異常肥厚を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のメサンギウム増殖を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体血管の再構成を軽減させる、若しくは予防する、
・ 腎臓の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のコラーゲン沈着及び/若しくは硝子様細動脈硬化(arteriolar hyaliosis)を軽減させる、若しくは予防する、
並びに/又は
・ 顕性アルブミン尿症を軽減させる若しくは予防する
のうちの1つ又は複数を得るのに効果的な量で投与する。
(i)単鎖Fv断片(scFv)、
(ii)二量体scFv(ジscFv)若しくは
(iv)ダイアボディ、
(v)トリアボディ、
(vi)テトラボディ、
(vii)Fab、
(viii)F(ab')2、
(ix)Fv、又は
(x)抗体の定常領域、Fc若しくは重鎖定常ドメイン(CH)2及び/若しくはCH3に連結されている(i)から(ix)のうちの1つ
から成る群から選択される。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号3のアミノ酸25〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号3のアミノ酸49〜65に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号3のアミノ酸98〜108に記載した配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号4のアミノ酸23〜33に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号4のアミノ酸49〜55に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号4のアミノ酸88〜96に記載した配列を含むCDR3
を含む。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号3のアミノ酸25〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号3のアミノ酸49〜65に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号3のアミノ酸98〜108に記載した配列を含むCDR3、
並びに
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号4のアミノ酸23〜33に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号4のアミノ酸49〜55に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号4のアミノ酸88〜96に記載した配列を含むCDR3
を含む。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号11を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号17のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号12を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号18のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号13を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号19のアミノ酸配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号14を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号20のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号15を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号21のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号16を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号22のアミノ酸配列を含むCDR3
を含む。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号23を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号29のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号24を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号30のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号25を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号31のアミノ酸配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号26を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号32のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号27を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号33のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号28を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号34のアミノ酸配列を含むCDR3
を含む。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号35を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号41のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号36を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号42のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号37を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号43のアミノ酸配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号38を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号44のアミノ酸配列を含むCDR1、
(b)配列番号39を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号45のアミノ酸配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号40を含む核酸によりコードされた配列若しくは配列番号46のアミノ酸配列を含むCDR3
を含む。
配列番号1は、21個のアミノ酸のN末端シグナル配列を含むヒトVEGF-B186アイソフォームのアミノ酸配列である。
配列番号2は、21個のアミノ酸のN末端シグナル配列を含むヒトVEGF-B167アイソフォームのアミノ酸配列である。
配列番号3は、抗体2H10のVHからのアミノ酸配列である。
配列番号4は、抗体2H10のVLからのアミノ酸配列である。
配列番号5は、ヒト化型の抗体2H10のVHからのアミノ酸配列である。
配列番号6は、ヒト化型の抗体2H10のVLのアミノ酸配列である。
配列番号7は、抗体4E12のVHからのアミノ酸配列である。
配列番号8は、抗体4E12のVLのアミノ酸配列である。
配列番号9は、抗体2F5のVHからのアミノ酸配列である。
配列番号10は、抗体2F5のVLのアミノ酸配列である。
配列番号11は、抗体2H10のVL CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号12は、抗体2H10のVL CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号13は、抗体2H10のVL CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号14は、抗体2H10のVH CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号15は、抗体2H10のVH CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号16は、抗体2H10のVH CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号17は、抗体2H10のVL CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号18は、抗体2H10のVL CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号19は、抗体2H10のVL CDR3からのアミノ酸配列である。
配列番号20は、抗体2H10のVH CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号21は、抗体2H10のVH CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号22は、抗体2H10のVH CDR3からのアミノ酸配列である。
配列番号23は、抗体2F5のVL CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号24は、抗体2F5のVL CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号25は、抗体2F5のVL CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号26は、抗体2F5のVH CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号27は、抗体2F5のVH CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号28は、抗体2F5のVH CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号29は、抗体2F5のVL CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号30は、抗体2F5のVL CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号31は、抗体2F5のVL CDR3からのアミノ酸配列である。
配列番号32は、抗体2F5のVH CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号33は、抗体2F5のVH CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号34は、抗体2F5のVH CDR3からのアミノ酸配列である。
配列番号35は、抗体4E12のVL CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号36は、抗体4E12のVL CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号37は、抗体4E12のVL CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号38は、抗体4E12のVH CDR1からのヌクレオチド配列である。
配列番号39は、抗体4E12のVH CDR2からのヌクレオチド配列である。
配列番号40は、抗体4E12のVH CDR3からのヌクレオチド配列である。
配列番号41は、抗体4E12のVL CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号42は、抗体4E12のVL CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号43は、抗体4E12のVL CDR3からのアミノ酸配列である。
配列番号44は、抗体4E12のVH CDR1からのアミノ酸配列である。
配列番号45は、抗体4E12のVH CDR2からのアミノ酸配列である。
配列番号46は、抗体4E12のVH CDR3からのアミノ酸配列である。
本明細書全体を通して、別途具体的に述べていない限り又は文脈による別途の要求がない限り、単一の工程、物質からなる組成物、諸工程、又は物質からなる諸組成物への言及は、これらの工程、物質からなる組成物、諸工程の群又は物質からなる諸組成物の群の1つ及び複数(即ち1つ又は複数)を包含するように解釈されるものとする。
VEGF-Bは2種の主要なアイソフォームで存在することが知られており、VEGF-B186及びVEGF-B167と称される。命名のみを目的として限定を目的とせず、ヒトVEGF-B186の例示的配列が、NCBI参照配列:NP_003368.1に、NCBIタンパク質受託番号NP_003368、P49765及びAAL79001に、並びに配列番号1に示されている。本開示との関連では、VEGF-B186の配列は、(例えば配列番号1のアミノ酸1〜21に示されているような)21個のアミノ酸のN末端シグナル配列を欠くことができる。命名のみを目的として限定を目的とせず、ヒトVEGF-B167の例示的配列が、NCBI参照配列:NP_001230662.1に、NCBIタンパク質受託番号AAL79000及びAAB06274に、並びに配列番号2に示されている。本開示との関連では、VEGF-B167の配列は、(例えば配列番号2のアミノ酸1〜21に示されているような)21個のアミノ酸のN末端シグナル配列を欠くことができる。VEGF-Bの追加の配列を、本明細書及び/若しくは公開されているデータベースに記載されている配列を使用して決定することができる、並びに/又は{例えば、Ausubel他(編)、Current Protocols in Molecular Biology、Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience(1988、現在までの全ての改訂を含む)若しくはSambrook他、Molecular Cloning: A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)に記載されているような}標準的な技法を使用して決定することができる。ヒトVEGF-Bへの言及をhVEGF-Bと省略することができる。一例では、本明細書でのVEGF-Bへの言及はVEGF-B167アイソフォームへの言及である。
ポリペプチドリンカーにより共有的に連結されている抗体の可変領域断片(Fv)を含む組換え分子である。
本明細書の開示は、例えば、対象の腎症を処置する又は予防する方法であって、VEGF-Bシグナル伝達を阻害する化合物を対象に投与する工程を含む方法を提供する。
・ 7nmol/L以上の又は126mg/dl以上の空腹時血漿中グルコース、
・ 糖尿病の症状を伴う11.1nmol/L以上の又は200mg/dl以上の(1日のうちの任意の時間で取得した)随時血漿中グルコース、
・ 2時間のインターバルで測定した11.1nmol/L以上の又は200mg/dl以上の経口グルコース負荷試験(OGTT)値、このOGTTは2時間又は3時間の期間にわたり与えられる、
を有する。
抗体可変領域を含むタンパク質
例示的なVEGF-Bシグナル伝達阻害剤は例えば抗体可変領域を含み、VEGF-Bに結合してVEGF-Bシグナル伝達を中和する抗体又は抗体断片である。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号7のアミノ酸25〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号7のアミノ酸49〜65に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号7のアミノ酸98〜105に記載した配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号8のアミノ酸24〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号8のアミノ酸50〜56に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号8のアミノ酸89〜97に記載した配列を含むCDR3
を含む。
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号9のアミノ酸25〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号9のアミノ酸49〜65に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号9のアミノ酸98〜107に記載した配列を含むCDR3、
並びに/又は
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号10のアミノ酸24〜34に記載した配列を含むCDR1、
(b)配列番号10のアミノ酸50〜56に記載した配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号10のアミノ酸89〜96に記載した配列を含むCDR3
を含む。
抗体を生成するために、任意の好適な又は所望のアジュバント及び/又は薬学的に許容される担体と任意選択で配合されているVEGF-B又はこの断片若しくは一部を有するエピトープ又はこれらの改変形態又はこれらをコードする核酸(免疫原)を、注入用組成物の形態で対象(例えば非ヒト動物対象、例えばマウス、ラット、ニワトリ等)に投与する。例示的な非ヒト動物は、ネズミ科の動物(例えばラット又はマウス)等の哺乳動物である。注入は、鼻腔内、筋肉内、皮下、静脈内、皮内、腹腔内又はその他の既知の経路であってよい。任意選択で免疫原を何度も投与する。抗体を調製するための手段及び抗体の特徴を明らかにするための手段は当分野で既知である(例えばAntibodies: A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratory、1988を参照されたい)。マウス中で抗VEGF-B抗体を産生する方法はWO2006/012688に記載されている。
本開示はまた、抗体又はこの抗原結合ドメインを含む(例えばこの可変領域を含む)タンパク質のライブラリをスクリーニングして、VEGF-B結合抗体又はこの可変領域を含むタンパク質を同定することも包含する。
本開示のタンパク質はヒト化タンパク質であってよい。
本開示はまた、抗体の可変領域又は抗原結合ドメインを含むその他のタンパク質、例えば
(i)抗体のVH又はVLの全て又は一部を含む単一のポリペプチド鎖である単一ドメイン抗体(例えばUS6248516を参照されたい)、
(ii)例えばUS5844094及び/又はUS2008152586に記載されているようなダイアボディ、トリアボディ、及びテトラボディ、
(iii)例えばUS5260203に記載されているようなscFv、
(iv)例えばUS5837821に記載されているようなミニボディ、
(v)US5731168に記載されているような「鍵及び鍵穴(key and hole)」二重特異性タンパク質、
(vi)例えばUS4676980に記載されているようなヘテロ結合タンパク質、
(vii)例えばUS4676980に記載されているような化学架橋剤を使用して製造したヘテロ結合タンパク質、
(viii)例えばShalaby他、J. Exp. Med.、175: 217〜225、1992に記載されているようなFab'-SH断片、又は
(ix)(例えばEP19930302894に記載されているような)Fab3
も考慮する。
本開示は、抗体の可変領域と定常領域又はFc又はそのドメイン、例えばCH2ドメイン及び/又はCH3ドメインとを含むタンパク質を包含する。好適な定常領域及び/又は定常ドメインは当業者に明らかであるだろう、及び/又はそのようなポリペプチドの配列は公的に利用可能なデータベースから容易に入手可能である。Kabat他は、いくつかの好適な定常領域/定常ドメインの説明も行っている。
本開示の中和タンパク質は、IgG4定常領域又は安定化したIgG4定常領域を含むことができる。用語「安定化したIgG4定常領域」は、Fabアーム交換若しくはFabアーム交換を受ける傾向又は半抗体の形成若しくは半抗体を形成する傾向を低減するように改変されているIgG4定常領域を意味すると理解することができる。「Fabアーム交換」は、IgG4重鎖及び結合した軽鎖(半分子)が別のIgG4分子からの重鎖-軽鎖対と交換される、ヒトIgG4のタンパク質改変の一種を意味する。そのため、IgG4分子は、(結果として二重特異性分子を生じる)2種の別々の抗原を認識する2種の別々のFabアームを獲得することができる。Fabアーム交換はインビボで自然に起こり、精製した血液細胞又は還元グルタチオン等の還元剤によりインビトロで誘発され得る。「半抗体」は、IgG4抗体が解離して単一の重鎖及び単一の軽鎖をそれぞれ含む2種の分子が形成される場合に生じる。
VEGF-Bとその受容体との、シグナルを生ずる相互作用(productive interaction)を妨げることができるその他のタンパク質として、変異体VEGF-Bタンパク質が挙げられる。
本開示の化合物の一例は、T細胞受容体等の免疫グロブリンの可変領域を含むタンパク質又は重鎖免疫グロブリン(例えば、IgNAR、ラクダ抗体)である。
重鎖免疫グロブリンは、この重鎖免疫グロブリンが重鎖を含むが軽鎖を含まないという点で、多くのその他の形態の免疫グロブリン(例えば抗体)とは構造的に異なる。従って、これらの免疫グロブリンは「重鎖のみの抗体」とも称される。重鎖免疫グロブリンは例えばラクダ類及び軟骨魚類で見出される(IgNARとも呼ばれる)。
本開示の化合物の一例はT細胞受容体である。T細胞受容体は、組み合わさって抗体のFvモジュールに類似する構造になる2種のVドメインを有する。Novotny他、Proc Natl Acad Sci USA 88: 8646-8650、1991には、どのようにしてT細胞受容体の2種のVドメイン(アルファ及びベータと命名する)を融合させ、単鎖ポリペプチドとして発現させることができるかが記載されており、更に、表面残基を変更して、抗体scFvと類似する疎水性を直接低減する方法が記載されている。単鎖T細胞受容体、又は2種のV-アルファドメイン及びV-ベータドメインを含む多量体T細胞受容体の製造が記載されているその他の刊行物として、WO1999/045110又はWO2011/107595が挙げられる。
一例では、本開示の化合物はアドネクチンである。アドネクチンは、ループ領域が抗原結合を付与するように変更されているヒトフィブロネクチンの第10フィブロネクチンIII型(10Fn3)ドメインをベースとする。例えば、10Fn3ドメインのβ-サンドウィッチの一端での3個のループを、アドネクチンが抗原を特異的に認識することができるように操作することができる。更なる詳細に関してUS20080139791又はWO2005/056764を参照されたい。
更なる例では、本開示の化合物はアンチカリンである。アンチカリンはリポカリンに由来し、リポカリンは、ステロイド、ビリン、レチノイド及び脂質等の小さい疎水性分子を輸送する細胞外タンパク質のファミリである。リポカリンは、ある抗原に結合するように操作され得る円錐構造の開口端で複数のループを有する硬いβシート二次構造を有する。このように操作されたリポカリンは、アンチカリンとして知られている。アンチカリンの更なる説明に関してUS7250297B1又はUS20070224633を参照されたい。
更なる例では、本開示の化合物はアフィボディである。アフィボディは、抗原に結合するように操作され得る黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)のプロテインAのZドメイン(抗原結合ドメイン)に由来する骨格である。このZドメインは、約58個のアミノ酸の3本のヘリックスの束から成る。ライブラリは、表面残基のランダム化により生成されている。更なる詳細に関してEP1641818を参照されたい。
更なる例では、本開示の化合物はアビマーである。アビマーは、Aドメイン骨格ファミリに由来する多ドメインタンパク質である。約35個のアミノ酸の天然ドメインは、定義されたジスルフィド結合構造を採用する。多様性は、Aドメインのファミリにより示される天然変異のシャッフルにより生じる。更なる詳細に関してWO2002088171を参照されたい。
更なる例では、本開示の化合物は、設計されたアンキリン反復タンパク質(Designed Ankyrin Repeat Protein)(DARPin)である。DARPinは、細胞骨格への完全な膜タンパク質の結合を媒介するタンパク質のファミリであるアンキリンに由来する。単一のアンキリン反復は、2個のαヘリクス及びβターンから成る33残基のモチーフである。DARPinを、各反復の第1のαヘリクス及びβターン中の残基のランダム化により、異なる標的抗原に結合するように操作することができる。DARPinの結合界面を、モジュールの数を増加させること(親和性成熟の方法)により増加させることができる。更なる詳細に関してUS20040132028を参照されたい。
組換え発現
組換えタンパク質の場合、このタンパク質をコードする核酸を発現ベクター中にクローニングすることができ、次いで、この発現ベクターを、宿主細胞、例えば大腸菌(E. coli)細胞、酵母細胞、昆虫細胞又は哺乳動物細胞、例えばサルCOS細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、ヒト胎児由来腎臓(HEK)細胞、若しくは別の方法では抗体を産生しない骨髄腫細胞に遺伝子導入する。本開示のタンパク質の発現に使用する例示的な細胞は、CHO細胞、骨髄腫細胞又はHEK細胞である。これらの目的を達成するための分子クローニング技法は当分野で既知であり、例えばAusubel他(編)、Current Protocols in Molecular Biology、Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience (1988、現在までの全ての改訂を含む)又はSambrook他、Molecular Cloning: A Laboratory Manual、Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)に記載されている。多種多様なクローニング方法及びインビトロでの増幅方法が組換え核酸の構築に好適である。組換え抗体の製造方法も当分野で既知である。US4816567又はUS5530101を参照されたい。
製造/発現後、本開示のタンパク質を、当分野で既知の方法を使用して精製する。そのような精製により、本開示のタンパク質は非特異的タンパク質、酸、脂質、炭水化物等を実質的に含まない。一例では、このタンパク質は、調製物中におけるタンパク質の約90%超(例えば95%、98%又は99%)が本開示のタンパク質である調製物として得られる。
本開示の一例では、本開示の任意の例に従って本明細書に記載したような治療法及び/又は予防法は、VEGF-Bの発現を低下させる工程を含む。例えば、そのような方法は、核酸の転写及び/又は翻訳を低減させる化合物を投与する工程を含む。一例では、この化合物は核酸であり、例えばアンチセンスポリヌクレオチド、リボザイム、PNA、干渉RNA、siRNA、マイクロRNAである。
用語「アンチセンス核酸」は、本開示の任意の例において本明細書に記載したようなポリペプチドをコードする特定のmRNA分子の少なくとも一部に対して相補的であり、mRNA翻訳等の転写後事象を妨げることができるDNA若しくはRNA又はこれらの誘導体(例えばLNA若しくはPNA)又はこれらの組み合わせを意味すると解釈されるものとする。アンチセンス法の使用は当分野で既知である{例えばHartmann及びEndres(編)、Manual of Antisense Methodology、Kluwer(1999)を参照されたい}。
用語「触媒的核酸」は、別々の基質を特異的に認識し、この基質の化学改変を触媒するDNA分子若しくはDNA含有分子(当分野では「デオキシリボザイム」若しくは「DNAザイム]としても知られている)又はRNA若しくはRNA含有分子(「リボザイム」又は「RNAザイム」としても知られている)を意味する。触媒的核酸中の核酸塩基は、塩基A、C、G、T(及びRNAの場合はU)であることがある。
RNA干渉(RNAi)は、特定のタンパク質の産生を特異的に阻害するのに有用である。理論により制限されるものではないが、この技法は、目的の遺伝子のmRNA(本場合はVEGF-BをコードするmRNA)又はこの一部と本質的には同一である配列を含むdsRNA分子の存在に依存する。好都合なことに、このdsRNAは、組換えベクター宿主細胞中の単一のプロモーターから製造することができる。ここでは、センス配列及びアンチセンス配列に、無関係な配列が隣接しており、この無関係な配列がループ構造を形成する形でセンス配列及びアンチセンス配列がハイブリダイズしてdsRNA分子を形成することが可能となる。本開示に適したdsRNA分子の設計及び製造は十分に当業者の能力内であり、特にWO99/32619、WO99/53050、WO99/49029及びWO01/34815を考慮すれば十分に当業者の能力内である。
VEGF-Bシグナル伝達を阻害する化合物を、例えば下記に記載するような当分野で既知の技法を使用して同定することができる。同様に、本明細書に記載した方法での使用に適したVEGF-Bシグナル伝達阻害剤の量を、例えば下記に記載するような当分野で既知の技法を使用して決定することができる、又は推定することができる。
VEGF-Bに結合してシグナル伝達を阻害する化合物の場合、中和アッセイを使用することができる。
VEGF-Bの発現を低減させる又は妨げる化合物を、細胞とこの化合物とを接触させ、VEGF-Bの発現の程度を測定することにより同定する。核酸レベルで遺伝子発現を測定するのに適した方法は当分野で既知であり、この方法として、例えば定量的ポリメラーゼ連鎖反応(qPCR)又はマイクロアレイアッセイが挙げられる。タンパク質レベルで発現を測定するのに適した方法も当分野で既知であり、この方法として、例えば酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)、蛍光結合免疫吸着アッセイ(FLISA)、免疫蛍光又はウェスタンブロッティングが挙げられる。
本明細書に記載した化合物を、動物モデルにおける活性に関して試験することができる。II型糖尿病及び肥満の動物のモデルの例として、Ob/Obマウス(肥満の単一遺伝子モデル、レプチン欠乏)、db/dbマウス(肥満の単一遺伝子モデル、レプチン耐性)、Zucker(fa/fa)ラット(肥満の単一遺伝子モデル、レプチン耐性)、Goto-Kakizakiラット、KKマウス、NSYマウス、OLETFラット、イスラエルサンドラット(Israeli sand rat)、脂肪を給餌したストレプトゾトシン処置ラット、CBA/Caマウス、糖尿病Torriラット、ニュージーランド肥満マウスが挙げられる(Rees及びAlcolado Diabet. Med. 22、359〜370、2005を参照されたい)。
VEGF-Bシグナル伝達を阻害する化合物(別名、活性成分)は、予防的処置又は治療的処置のための非経口投与、局所(topical)投与、経口投与若しくは局所(local)投与、エアロゾル投与又は経皮投与に有用である。一例では、この化合物を非経口で投与し、例えば皮下に又は静脈内に投与する。
・ 高血圧を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体硬化症及び/若しくは尿細管硬化症を軽減させる、若しくは予防する、
・ メサンギウムの細胞外基質沈着及び/若しくは糸球体基底膜の異常肥厚を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のメサンギウム増殖を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体血管の再構成を軽減させる、若しくは予防する、
・ 腎臓の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のコラーゲン沈着及び/若しくは硝子様細動脈硬化(arteriolar hyaliosis)を軽減させる、若しくは予防する、
並びに/又は
・ 顕性アルブミン尿症を軽減させる若しくは予防する
のうちの1つ又は複数を得るのに効果的な量で投与する。
本開示の別の例は、上記に記載したような腎症の処置に有用な化合物を含むキットを提供する。
VEGF-Bを欠損している糖尿病マウスは、腎機能が改善されおり、且つ高血圧が軽減されている
(糖尿病及び糖尿病性腎症のモデルとして)C57BKS/Leprdb(db/db//BKS)マウスをJackson Laboratory社から入手し、C57BL/6-Vegfb-/-マウスと一緒に飼育した。db/db//Vegfb-/-マウスをヘテロ接合型db/+//Vegfb+/-マウスと互いに交尾させることにより繁殖させ、db/db、db/db//Vegfb+/-及びdb/db//Vegfb-/-を作成した。この研究では42週齢の雌のdb/db、db/db//Vegfb+/-及びdb/db//Vegfb-/-を使用した。1種の動物/遺伝子型を収容しているケージを撮影することにより、尿の生成を測定した。尿試験紙による分析によって糖尿及びタンパク尿を測定するために、マウスを1時間にわたり飢餓させ、次いで尿を採取し、グルコース濃度及びタンパク質濃度を、製造業者(Uristix、Siemens社)に従って試薬紙を使用し直接測定した。ACRの検出用に、20μlから200μl体積の尿を各マウスから採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット{Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア(Philadelphia)}を使用して尿中クレアチニンを測定した。収縮期血圧及び拡張期血圧を、CODAセットアップ(Kent Scientific社)を使用する尾カフ(tail-cuff)法により測定した。全ての動物を2週にわたり血圧測定装置に慣れさせた。全ての動物に、最低でも3日にわたり1日当たり20回の測定の記録を1〜2サイクル受けさせた。
42週齢の雌のdb/dbマウス、db/db//Vegfb+/-マウス及びdb/db//Vegfb-/-マウスを屠殺して腎臓を単離し、固定し、包埋し、切断して切片を作り、過ヨウ素酸-シッフ(PAS)で染色し、製造業者(Sigma社)の指示に従って糸球体のメサンギウム増殖及び尿細管硬化症を評価した。各切片内においてPAS染色した、1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体又は尿細管を、20倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により撮影した。i)糸球体のPAS染色(ピクセル2/μm2)に関して、ii)1フレーム当たりのアポトーシス糸球体の数に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。糸球体は、強いPAS染色及び25μm未満の直径の場合にアポトーシスとした。i)尿細管基底膜の厚さ(μm2)に関してAxio Vision Runウィザードプログラムを使用して尿細管を定量化した。
標準的な手順に従って、透過電子顕微鏡(TEM)分析に、42週齢の雌のdb/dbマウス、db/db//Vegfb+/-マウス及びdb/db//Vegfb-/-マウスからの腎生検を使用した。簡潔に述べると、組織を固定緩衝溶液(fixation solution buffer)(2%グルタルアルデヒド、0.5%パラホルムアルデヒド、0.1Mカコジル酸塩、0.1Mスクロース、3mM CaCl2)で固定し、0.1Mカコジル酸緩衝液pH7.4で洗浄した後、室温で1時間にわたりカコジル酸緩衝液中の2%OsO4で染色した。サンプルを脱水し、室温で1時間にわたり無水エタノール中の2%酢酸ウラニルでまとめて染色した。次いで、サンプルをEpon 812/アセトン系に通して処理し、純粋なEpon 812中に60℃で包埋した。Leica EM UC6 ultratomeで70nm厚の薄片に切り、ホルムバールで被覆された銅スロットグリッド上に載置した。2%水性酢酸塩pH 3.5並びにVenable及びCogglesallのクエン酸鉛で後染色を行った。グリッドをFEI TECNAI電子顕微鏡で分析した。
42週齢の雌のdb/dbマウス、db/db//Vegfb+/-マウス、db/db//Vegfb-/-マウス及び痩せた野生型マウスからの腎臓を使用して、オイルレッドO(ORO)分析を実施した。簡潔に述べると、腎臓を切開してドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をOROワーキング溶液{2.5gオイルレッドO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ後、この低温切片を載置した。染色した切片を、20倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により調べ、1個の切片当たり最低10フレームを保存した。脂質滴の定量化のために、各フレーム中の赤色ピクセルの量を、全ORO染色に関してAxio Vision Runウィザードプログラムを使用して定量化した(ピクセル、オングストローム単位)。
42週齢の雌のdb/dbマウス、db/db//Vegfb+/-マウス及びdb/db//Vegfb-/-マウスからの腎臓で糸球体の形態を評価した。簡潔に述べると、動物を屠殺して腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、その後、シナプトポジン及び/又はpecam(血小板内皮細胞接着分子)を免疫染色した。Antigen retrieval solution Ph6(Dako社)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)、ヤギ抗pecam(Abcam社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でシナプトポジン及びpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)シナプトポジン染色(ピクセル2/μm2)及び糸球体のii)pecam染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
42週齢の雌のdb/dbマウス、db/db//Vegfb+/-マウス及びdb/db//Vegfb-マウスからの腎臓で糸球体のコラーゲン沈着及び硝子様細動脈硬化を評価した。簡潔に述べると、動物を屠殺して腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、その後、コラーゲンIV、pecam及び/又はα-SMAを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗コラーゲンIV(abcam社)、ヤギ抗pecam(abcam社)又はα-SMA(Sigma社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でコラーゲンIV、pecam又はα-SMAを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)コラーゲンIV染色(ピクセル2/μm2)、糸球体のii)α-SMA染色(ピクセル2/μm2)、iii)糸球体の細動脈の厚さ(μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
痩せたdb+マウス、6週齢のdb/dbマウス及び21週齢のdb/db//BKSマウスをオイルレッドO(ORO)分析に使用した。腎臓を切開してドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をオイルレッドOワーキング溶液{2.5gオイルレッドO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ後、この低温切片を載置した。染色した切片を、20倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により調べ、1個の切片当たり最低10フレームを保存した。脂質滴の定量化のために、各フレーム中の赤色ピクセルの量を、全ORO染色に関してAxio Vision Runウィザードプログラムを使用して定量化した(ピクセル、オングストローム単位)。
痩せたdb+マウス、6週齢のdb/dbマウス及び21週齢のdb/db//BKSマウスを分析に使用した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、その後、シナプトポジン及び/又はpecamを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution pH6(Dako社)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるモルモット抗アディポフィリン(Fitzgerald社)及びウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でアディポフィリン及びシナプトポジンを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)アディポフィリン染色(ピクセル2/μm2)及びii)シナプトポジン染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
痩せたdb+マウス並びに6週齢の、12週齢の及び21週齢のdb/db//BKSマウスを切開し、ドライアイス上で急速凍結させた。製造業者の指示に従ってRNeasy Miniキット(Qiagen社)を使用し、腎臓から全RNAを抽出して精製した。iScript cDNA Synthesis Kit(Bio-Rad社)を使用し、0.5〜1μgの全RNAから第一鎖の(first strand)cDNAを合成した。製造業者の指示に従ってRotor-Gene Q(Qiagen社)リアルタイムPCRサーマルサイクラ―でKAPA SYBR FAST qPCR Kit Master Mix(2x)Universal(KAPA Biosystems社)を使用し、リアルタイム定量的PCR(Real-Time quantitive PCR)を実施した。発現レベルをL19及びβ-2ミクログロブリンの発現に対して正規化した。
雄の野生型マウス、Vegf+/-マウス及びVegfb-/-マウスに、5週齢で開始して、30週にわたり60%高脂肪食(HFD)(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型対照動物も含めた。ACRの検出のために、各マウスから20μlから200μl体積の尿を採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット(Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア)を使用して尿中クレアチニンを測定した。
5週齢で開始して、雄の野生型マウス、Vegf+/-マウス及びVegfb-/-マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた対照動物も含めた。動物をイソフルオラン(isofluorane)麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、製造業者に従ってPAS(Sigma社)で染色した。各切片内でPAS染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のPAS染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
雄の野生型マウス、Vegf+/-マウス及びVegfb-/-マウスに、5週齢で開始して、30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型対照動物も含めた。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、ドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をオイルレッドOワーキング溶液{2.5gオイルレッドO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ。その後、切片をヘマトキシリン溶液に3秒間浸し、水道水下ですすいだ後、この切片を載置した。染色した切片を明視野顕微鏡により調べた。各切片内でORO及びヘマトキシリン染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のORO染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
5週齢で開始して、雄の野生型マウス、Vegf+/-マウス及びVegfb-/-マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型対照動物を更に含めた。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、その後、シナプトポジン及び/又はpecamを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるモルモット抗アディポフィリン(Fitzgerald社)及びウサギ抗ポドシン(Sigma社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でアディポフィリン及びシナプトポジンを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)アディポフィリン染色(ピクセル2/μm2)及びii)ポドシン染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
5週齢で開始して、雄の野生型マウス、Vegf+/-マウス及びVegfb-/-マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型対照動物も含めた。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、その後、コラーゲンIV、pecam及び/又はα-SMAを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗コラーゲンIV(abcam社)、ヤギ抗pecam(abcam社)又はα-SMA(sigma社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でコラーゲンIV、pecam又はα-SMAを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)コラーゲンIV染色(ピクセル2/μm2)及びii)糸球体の細動脈の厚さ(μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
糖尿病db/db//BKSマウスでは、抗体により媒介されるVEGF-Bの阻害が血中グルコース濃度に穏やかに影響を及ぼす
C57BKS/Leprdb(db/db/BKS)マウスをJackson Laboratory社から購入し、400μgの2H10(中和的な抗VEGF-B抗体)又はアイソタイプが一致する対照抗体のいずれかを週に2回腹腔内注入し{6週齢(予防的試験)又は12週齢(治療的試験)で開始した}、8週にわたり継続した。予防的試験では、ACR及び血中グルコースの開始値はそれぞれ、クレアチニン1mg当たり<50μgアルブミン及び<15mMであった。治療的試験では、ACR及び血中グルコースの開始値はそれぞれ、クレアチニン1mg当たり>150μgアルブミン及び>15mMであった。マウスの食後の血中グルコース濃度を、隔週で2時間にわたる絶食後にモニタリングした。Bayer Contour Glucoseメーターを使用して、尾静脈からの採血でグルコース測定を実施した。ACRを検出するために、各マウスから20μlから200μl体積の尿を採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット(Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア)を使用して尿中クレアチニンを測定した。
上記に記載したように8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6〜8週齢のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、製造業者の指示に従ってPAS(Sigma社)で染色した。各切片内でPAS染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のPAS染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
上記に記載したように8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6〜8週齢のdb/db/BKS又は歳及び性別が一致する痩せたdb/+動物から腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、pecam又はポドシンを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるヤギ抗pecam(abcam社)及びウサギ抗ポドシン(sigma社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)pecam(ピクセル2/μm2)及びii)ポドシン染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
上記に記載したように8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6〜8週齢のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、シナプトポジン(synaptodin)及び/又はpecamを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)アディポフィリン染色(ピクセル2/μm2)及びii)シナプトポジン染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
上記に記載したように8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6週齢のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、糸球体のコラーゲンIVを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のコラーゲンIV染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で予め処置した6〜8週齢の雌のdb/db/BKSマウス並びに歳及び性別が一致する痩せたdb/+から、心穿刺により血液を採取した。血液を10分にわたり14000rpm、4℃で遠心分離し、その後、血漿を分離して-80℃にてアリコートで凍結させた。市販のキットを使用して、NEFA{Wako Chemicals社、ドイツ、ノイス(Neuss)}、ベータ-ヒドロキシ酪酸塩{Stanbio Laboratories社、米国、テキサス州、ベルネ(Boerne)}並びにHDL-c及びLDL-c{BioVision社、米国、カリフォルニア州、マウンテンビュー(Mountain View)}を酵素的に定量した。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6〜8週齢の雌のdb/db/BKSから腎臓を採取し、透過電子顕微鏡(TEM)分析に使用した。標準的な手順に従って、TEM用の腎生検の調製を実施した。組織を固定緩衝溶液(2%グルタルアルデヒド、0.5%パラホルムアルデヒド、0.1Mカコジル酸塩、0.1Mスクロース、3mM CaCl2)で固定し、0.1Mカコジル酸緩衝液pH7.4で洗浄した後、室温で1時間にわたりカコジル酸緩衝液中の2%OsO4で染色した。サンプルを脱水し、室温で1時間にわたり無水エタノール中の2%酢酸ウラニルでまとめて染色した。次いで、サンプルをEpon 812/アセトン系に通して処理し、純粋なEpon 812中に60℃で包埋した。Leica EM UC6 ultratomeで70nm厚の薄片に切り、ホルムバールで被覆された銅スロットグリッド上に載置した。2%水性酢酸塩pH 3.5並びにVenable及びCogglesallのクエン酸鉛で後染色を行った。グリッドをFEI TECNAI電子顕微鏡で分析した。
8週にわたり2H10若しくはアイソタイプが一致する対照抗体で処置した6〜8週齢のdb/db/BKSマウス又は痩せたdb/+マウスから、血液及び腎臓を採取した。腎臓を切開し、ドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をオイルレッドOワーキング溶液{2.5gオイルレッドO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ。その後、切片をヘマトキシリン溶液に3秒間浸し、水道水下ですすいだ後、この切片を載置した。染色した切片を明視野顕微鏡により調べた。各切片内でORO及びヘマトキシリン染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のORO染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した12週齢の雄の及び雌のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、製造業者の指示に従ってPAS(Sigma社)で染色した。各切片内でPAS染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のPAS染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した12週齢の雄の及び雌のdb/db/BKSから腎臓を採取し、ドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をOROワーキング溶液{2.5gORO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ後、この低温切片を載置した。染色した切片を、20倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により調べ、1個の切片当たり最低10フレームを保存した。脂質滴の定量化のために、各フレーム中の赤色ピクセルの量を、全ORO染色に関してAxio Vision Runウィザードプログラムを使用して定量化した(ピクセル、オングストローム単位)。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した12週齢の雌のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、シナプトポジン(synaptodin)又はpecamを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のシナプトポジン又はpecam染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
8週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した12週齢の雌のdb/db/BKSから腎臓を採取し、48時間にわたり4%PFAで固定し、包埋して3μm切片を調製し、コラーゲンIV、pecam及び/又はα-SMAを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗シナプトポジン(Santa Cruz社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でpecamを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のコラーゲンIV、pecam及び/又はα-SMA染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
db/db/BKSマウスに、400μgの2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体のいずれかを週に2回腹腔内注入し(6〜8週齢で開始した)、8週にわたり継続した。ACRを検出するために、各マウスから20μlから200μl体積の尿を採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット(Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア)を使用して尿中クレアチニンを測定した。収縮期血圧及び拡張期血圧を、CODAセットアップ(Kent Scientific社)を使用する尾カフ法により測定した。全ての動物を2週にわたり血圧測定装置に慣れさせた。動物に、最低でも3日にわたり1日当たり20回の測定の記録を1〜2サイクル受けさせた。マウスの腎機能試験のために、個々のマウスを代謝ケージに収容した。24時間での体重及び尿量を2日連続してモニタリングした。後半24時間の尿サンプルを使用して尿中クレアチニンを測定した。代謝ケージでの収容後、動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去し、血漿中クレアチニンの測定に使用した。腎臓を切開し、マイクロスケールで秤量した。クレアチニンクリアランスを(尿[Cr]×尿量)/(血漿[Cr]×24時間)で算出した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。試験の終了時に、2時間の絶食後にマウスの食後のBG濃度を記録した。Bayer Contour Glucoseメーターを使用して、尾静脈からの採血でグルコース測定を実施した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型の対照動物も含めた。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。試験の終了時に、アルブミン及びACRの検出用に20μlから200μl体積の尿を各マウスから採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット(Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア)を使用して尿中クレアチニンを測定した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型の対照動物を更に含めた。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を取り出した。血液を10分にわたり14000rpm、4℃で遠心分離し、その後、血漿を分離して-80℃にてアリコートで凍結させた。市販のキットを使用して、NEFA(Wako Chemicals社、ドイツ、ノイス)、ベータ-ヒドロキシ酪酸塩(Stanbio Laboratories社、米国、テキサス州、ベルネ)及びトリグリセリド(Sigma-Aldrich社)を酵素的に定量した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型の対照動物も含めた。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで後固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、製造業者に従ってPAS(Sigma社)で染色した。各切片内でPAS染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にて明視野顕微鏡(Axio Vision顕微鏡、Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のPAS染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型の対照動物も含めた。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開してドライアイス上で急速凍結させ、直接クライオスタットのモールド上でTissue-Tek(登録商標)(Sakura社)に包埋した。低温切片(12μm)をオイルレッドOワーキング溶液{2.5gオイルレッドO(Sigma-Aldrich社)、400mlの99%イソプロパノールに溶解され、H2Oで6:10に更に希釈され、22μmフィルター(Corning社)を通してろ過されたもの}に5〜15分間浸し、水道水流下で10分間すすいだ。その後、切片をヘマトキシリン溶液に3秒間浸し、水道水下ですすいだ後、この切片を載置した。染色した切片を明視野顕微鏡により調べた。各切片内でORO及びヘマトキシリン染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のORO染色(ピクセル2/μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
5週齢で開始して、マウスに30週にわたりHFDを目的として60%HFD(Research Diets社、米国)を給餌した。この研究には、痩せた野生型の対照動物も含めた。11週で抗体処置を開始し、20週にわたり2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体でマウスを処置した。動物をイソフルオラン麻酔薬で屠殺し、心穿刺により全血液を除去した。腎臓を切開し、48時間にわたり4%PFAで後固定し、続いて標準的な手順を使用してパラフィン包埋用に加工した。包埋後に3μm切片を調製し、その後、コラーゲンIV、pecam及び/又はα-SMAを免疫染色した。簡潔に述べると、Antigen retrieval solution Ph6(Dako社、#S2367)を使用して3μm切片上で抗原回復を実施し、10分にわたり98℃で加熱した。切片を、一次抗体であるウサギ抗コラーゲンIV(abcam社)、ヤギ抗pecam(Abcam社)又はα-SMA(Sigma社)と共に12時間にわたり4℃でインキュベートした。適切な蛍光標識二次抗体(Invitrogen社、Alexa fluor)をアプライし、切片を室温で1時間にわたり更にインキュベートした後、切片を顕微鏡用に調製した。各切片内でコラーゲンIV、pecam又はα-SMAを染色した1匹の動物当たり少なくとも10個の糸球体を、40倍の倍率にてAxio Vision顕微鏡(Carl Zeiss社)により撮影した。糸球体のi)コラーゲンIV染色(ピクセル2/μm2)及びii)糸球体の細動脈の厚さ(μm2)に関して、Axio Vision Runウィザードプログラムを使用して糸球体を定量化した。
I型糖尿病の誘発のために、ストレプトゾトシン(streptozotozin)(STZ)モデルを採用した。Charles River社からの雄のBl/6マウスで実験を実施した。STZの注入前に4時間にわたりマウスを飢餓させ、1日目、2日目、3日目、4日目及び5日目に50mMクエン酸ナトリウム(pH4.5)中の又はクエン酸ナトリウム緩衝液中の体重1kg当たり50mgのストレプトゾトシン(Sigma-Aldrich社)を腹腔内投与した。STZ投与の前及び1週間後にマウスのBG濃度を記録した。血中グルコース濃度が12mmol/lを超える動物を高血糖とみなした。動物を2つの群にランダムに分け、週に2回、2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した。抗VEGF-B(2H10)又は対照抗体で処置したマウス及び痩せた対照動物の食後のBG濃度を、隔週で2時間の絶食後に記録した。Bayer Contour Glucoseメーターを使用して、尾静脈からの採血でグルコース測定を実施した。
I型糖尿病の誘発のために、ストレプトゾトシン(streptozotozin)(STZ)モデルを採用した。Scanbur社からの雄のBl/6マウスで実験を実施した。STZの注入前に4時間にわたりマウスを飢餓させ、1〜5日目に50mMクエン酸ナトリウム緩衝液(pH4.5)中の体重1kg当たり50mgのSTZ(Sigma-Aldrich社)を腹腔内投与した。STZ投与の前及び1週間後にマウスのBG濃度を記録した。グルコース濃度が12mmol/lを超える動物を高血糖とみなした。動物を2つの群にランダムに分け、上記のように週に2回、2H10又はアイソタイプが一致する対照抗体で処置した。アルブミン及びACRの検出用に、試験の終了時(これは進行中の実験であり、1週の処置についてのみ報告する)に20μlから200μl体積の尿を各マウスから採取した。Albuwell Mキットを使用して尿中アルブミンを検出し、Creatinine CompanionネズミELISAキット(Exocell社、ペンシルバニア州、フィラデルフィア)を使用して尿中クレアチニンを測定した。
Claims (11)
- VEGF-Bシグナル伝達を阻害する化合物を含む、糖尿病性腎症に罹患している対象の糖尿病性腎症を処置するための医薬組成物であって、VEGF-Bシグナル伝達を阻害する前記化合物が、VEGF-Bに結合又は特異的に結合しVEGF-Bシグナル伝達を中和する抗体可変領域を含むタンパク質であり、前記抗体可変領域が、
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号3のアミノ酸25〜34に示す配列を含むCDR1をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR1、
(b)配列番号3のアミノ酸49〜65に示す配列を含むCDR2をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号3のアミノ酸98〜108に示す配列を含むCDR3をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR3、並びに
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号4のアミノ酸23〜33に示す配列を含むCDR1をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR1、
(b)配列番号4のアミノ酸49〜55に示す配列を含むCDR2をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号4のアミノ酸88〜96に示す配列を含むCDR3をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR3
を含む、医薬組成物。 - VEGF-Bシグナル伝達を阻害する化合物を含む、糖尿病と微量アルブミン尿症又は顕性アルブミン尿症とに罹患している対象の糖尿病性腎症を予防するための医薬組成物であって、VEGF-Bシグナル伝達を阻害する前記化合物が、VEGF-Bに結合又は特異的に結合しVEGF-Bシグナル伝達を中和する抗体可変領域を含むタンパク質であり、前記抗体可変領域が、
(i)下記を含むVH:
(a)配列番号3のアミノ酸25〜34に示す配列を含むCDR1をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR1、
(b)配列番号3のアミノ酸49〜65に示す配列を含むCDR2をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号3のアミノ酸98〜108に示す配列を含むCDR3をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR3、並びに
(ii)下記を含むVL:
(a)配列番号4のアミノ酸23〜33に示す配列を含むCDR1をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR1、
(b)配列番号4のアミノ酸49〜55に示す配列を含むCDR2をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR2、及び
(c)配列番号4のアミノ酸88〜96に示す配列を含むCDR3をコードする核酸によりコードされる配列を含むCDR3
を含む、医薬組成物。 - (i)配列番号3のアミノ酸25〜34に示す配列を含むCDR1、配列番号3のアミノ酸49〜65に示す配列を含むCDR2、及び配列番号3のアミノ酸98〜108に示す配列を含むCDR3を含むVHと、配列番号4のアミノ酸23〜33に示す配列を含むCDR1、配列番号4のアミノ酸49〜55に示す配列を含むCDR2、及び配列番号4のアミノ酸88〜96に示す配列を含むCDR3を含むVLとを含むタンパク質、並びに
(ii)(i)のタンパク質のバリアントであって、コードされたC末端リジン残基を欠損しているバリアント、脱アミド化バリアント、グリコシル化バリアント、タンパク質のN末端にピログルタミン酸塩を含むバリアント、N末端残基を欠いているバリアント、及び/又は分泌シグナルの全て若しくは一部を含むバリアントの1つ以上である、バリアント
を含む、請求項1又は2に記載の医薬組成物。 - 前記化合物を、下記の効果:
・ 高血圧を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体硬化症及び/若しくは尿細管硬化症を軽減させる、若しくは予防する、
・ メサンギウムの細胞外基質沈着及び/若しくは糸球体基底膜の異常肥厚を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のメサンギウム増殖を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体血管の再構成を軽減させる、若しくは予防する、
・ 腎臓の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体の脂質蓄積を軽減させる、若しくは予防する、
・ 糸球体のコラーゲン沈着及び/若しくは硝子様細動脈硬化を軽減させる、若しくは予防する、並びに/又は
・ 顕性アルブミン尿症を軽減させる若しくは予防する
のうちの1つ以上を得るのに有効な量で含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載の医薬組成物。 - 前記化合物が、Fvを含むタンパク質である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記タンパク質が、
(i)単鎖Fv断片(scFv)、
(ii)二量体scFv(ジscFv)、
(iii)ダイアボディ、
(iv)トリアボディ、
(v)テトラボディ、
(vi)Fab、
(vii)F(ab')2、
(viii)Fv、又は
(ix)抗体の定常領域、Fc若しくは重鎖定常ドメイン(CH)2及び/若しくはCH3に連結されている(i)から(viii)のうちの1つ
から成る群から選択される、請求項5に記載の医薬組成物。 - 前記化合物が抗体である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記化合物が、抗体2H10(配列番号3に示す配列を含む重鎖可変領域(VH)と配列番号4に示す配列を含む軽鎖可変領域(VL)とを含む)のVEGF-Bへの結合を競合的に阻害する抗体可変領域を含むタンパク質である、請求項1〜7のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- (i)のタンパク質が、抗体2H10のヒト化型の可変領域を含むか、又は前記化合物がヒト化型の抗体2H10である、請求項3に記載の医薬組成物。
- (i)のタンパク質が、配列番号5に示す配列を含むVHと配列番号6に示す配列を含むVLとを含む抗体である、請求項3に記載の医薬組成物。
- 前記腎症を処置若しくは予防するための、又は糖尿病を処置若しくは予防するか若しくは糖尿病の進行を遅延させるための更なる化合物と組み合わせて使用される、請求項1〜10のいずれか一項に記載の医薬組成物。
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