JP6868554B2 - MyD88およびCD40ポリペプチドによるキメラ抗原受容体の共刺激 - Google Patents
MyD88およびCD40ポリペプチドによるキメラ抗原受容体の共刺激 Download PDFInfo
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Description
2014年9月2日に出願した「Costimulation of Chimeric Antigen Receptors by MyD88 and CD40 Polypeptides」との表題の米国仮特許出願第62/044,885号に対する優先権、2015年2月13日に出願した「Costimulation of Chimeric Antigen Receptors by MyD88 and CD40 Polypeptides」との表題の米国仮特許出願第62/115,735号に対する優先権、および2015年4月6日に出願した「Costimulation of Chimeric Antigen Receptors by MyD88 and CD40 Polypeptides」との表題の米国仮特許出願第62/143,503号に対する優先権を主張する。上記出願の内容全体は、すべての本文、表および図面を含め、その全体がすべての目的で本明細書に参考として援用される。
本願は、ASCIIフォーマットで電子的に提出され、その全体が参考により本明細書に援用される配列表を含む。このASCIIコピーは、2015年10月2日に作成され、BEL−2016−PC_SL.txtと命名され、そのサイズは228,844バイトである。
この技術は、一般に免疫学の分野に関連し、部分的には、標的抗原に対する免疫応答を生じるT細胞および他の細胞を活性化するための方法に関する。この技術はまた、キメラMyD88由来およびCD40由来のポリペプチドを使用して標的抗原を認識するキメラ抗原レセプターを発現する治療用細胞の共刺激に関する。この技術はさらに、部分的には、MyD88由来およびCD40由来のポリペプチドを含む内部ドメインを有する、キメラ抗原レセプターを発現する治療用細胞、ならびにその改変された治療用細胞を使用して患者を処置するための方法に関する。
T細胞の活性化は、病原微生物(例えば、ウイルス、細菌および寄生生物)、外来タンパク質および環境内の有害な化学物質に対する防御免疫において、ならびにがんおよび他の過剰増殖性疾患に対する免疫としても、重要なステップである。T細胞は、その表面上に、細胞表面上に提示された抗原を認識するレセプター(すなわち、T細胞レセプター)を発現する。正常な免疫応答の間、MHC抗原提示の状況において、これらの抗原がT細胞レセプターに結合することにより、細胞内の変化が惹起され、T細胞の活性化に至る。
形質導入されたもしくはトランスフェクトされたT細胞および他の細胞は、キメラ抗原レセプターを発現し得、標的抗原の存在下でT細胞免疫の活性化を生じ得る。キメラ抗原レセプター(CAR)は、T細胞に抗原特異性を伝えるためにデザインされた人工レセプターである。それらは、一般的に、T細胞を活性化し、特異免疫をもたらすように選択された、抗原特異的成分、膜貫通成分および細胞内成分を含む。キメラ抗原レセプターを発現しているT細胞は、がん治療をはじめとした様々な治療において使用され得る。
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
(項目1)
キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含む、核酸。
(項目2)
細胞質キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含む、核酸。
(項目3)
以下を含む、核酸:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目4)
以下を含む、核酸:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;
を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目5)
以下を含む、核酸:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドの作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目6)
以下を含む、核酸:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;
を含む、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目7)
以下を含む、核酸:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域、
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目8)
以下を含む、核酸:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目9)
以下を含む、核酸:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域、
を含む、プロモーター;
b)キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、もしくはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;ならびに
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド。
(項目10)
以下を含む、核酸:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、もしくはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;ならびに
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド。
(項目11)
前記キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、項目2、4、6、8、または10のいずれか1項に記載の核酸。
(項目12)
前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターを含む、項目3〜11のいずれか1項に記載の核酸。
(項目13)
前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターおよび前記第3のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第3のプロモーターを含む、項目9〜11のいずれか1項に記載の核酸。
(項目14)
1つのプロモーターは、前記第1および第2のポリヌクレオチドの両方に作動可能に連結される、項目3〜13のいずれか1項に記載の核酸。
(項目15)
1つのプロモーターは、前記第1、第2、および第3のポリヌクレオチドに作動可能に連結される、項目9〜11のいずれか1項に記載の核酸。
(項目16)
前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドとの間に、リンカーポリペプチドをコードするリンカーポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該第1のポリヌクレオチドおよび該第2のポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、項目14に記載の核酸。
(項目17)
3つのポリヌクレオチドの間に、リンカーポリペプチドをコードするポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該3つのポリヌクレオチドは、前記第1、第2、および第3のポリヌクレオチドを含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該3つのポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、項目15に記載の核酸。
(項目18)
前記リンカーポリペプチドは、2Aポリペプチドである、項目16または17のいずれか1項に記載の核酸。
(項目19)
キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該キメラ抗原レセプターは、(i)膜貫通領域;(ii)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;(iv)T細胞活性化分子;および(v)抗原認識部分を含む、核酸。
(項目20)
前記キメラ抗原レセプターは、ストークポリペプチドをさらに含む、項目19に記載の核酸。
(項目21)
以下を含む、核酸:
a)キメラ抗原レセプターをコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ抗原レセプターは、
(i)膜貫通領域;
(ii)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;
(iv)T細胞活性化分子;および
(v)抗原認識部分
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
(項目22)
1つのプロモーターは、前記第1および第2のポリヌクレオチドの両方に作動可能に連結される、項目21に記載の核酸。
(項目23)
前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドとの間に、リンカーポリペプチドをコードするリンカーポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該第1および第2のポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、項目22に記載の核酸。
(項目24)
前記リンカーポリペプチドは、2Aポリペプチドである、項目23に記載の核酸。
(項目25)
前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターをさらに含む、項目21に記載の核酸。
(項目26)
前記膜標的化領域は、ミリストイル化領域、パルミトイル化領域、プレニル化領域、およびレセプターの膜貫通配列からなる群より選択される、項目1、3、5、7、9、または10〜18のいずれか1項に記載の核酸。
(項目27)
前記膜標的化領域は、ミリストイル化領域である、項目1、3、5、7、9、または10〜18のいずれか1項に記載の核酸。
(項目28)
前記切断型MyD88ポリペプチドは、配列番号147のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、項目1〜27のいずれか1項に記載の核酸。
(項目29)
前記MyD88ポリペプチドは、配列番号282のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、項目1〜28のいずれか1項に記載の核酸。
(項目30)
前記細胞質CD40ポリペプチドは、配列番号149のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、項目1〜29のいずれか1項に記載の核酸。
(項目31)
前記核酸は、ウイルスベクター内に含まれる、項目1〜30のいずれか1項に記載の核酸。
(項目32)
前記ウイルスベクターは、レトロウイルスベクター、マウス白血病ウイルスベクター、SFGベクター、アデノウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター、ヘルペスウイルスベクター、およびワクシニアウイルスベクターからなる群より選択される、項目31に記載の核酸。
(項目33)
前記核酸は、プラスミド内に含まれる、項目1〜30のいずれか1項に記載の核酸。
(項目34)
項目1〜18、または22〜33のいずれか1項に記載の核酸によってコードされる、キメラ刺激分子ポリペプチド。
(項目35)
項目19〜25または28〜33のいずれか1項に記載の、MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチドおよびCD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、キメラ抗原レセプター。
(項目36)
項目1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入された、改変された細胞。
(項目37)
前記キメラ刺激分子は、構成的に発現される、項目36に記載の改変された細胞。
(項目38)
前記キメラ刺激分子は、構成的に活性である、項目36または37のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目39)
a)前記細胞は、項目1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、キメラ抗原レセプターをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含む、
項目36〜38のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目40)
a)前記細胞は、項目1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含む、
項目36〜38のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目41)
a)前記細胞は、項目1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、キメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、キメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含み、ここで該キメラカスパーゼ−9ポリペプチドは、多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含む、
項目36〜40のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目42)
前記改変された細胞は、T細胞、腫瘍浸潤リンパ球、NK−T細胞、TCR発現細胞、もしくはNK細胞である、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目43)
前記細胞は、T細胞である、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目44)
前記細胞は、骨髄から得られるかまたは骨髄から調製される、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目45)
前記細胞は、臍帯血から得られるかまたは臍帯血から調製される、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目46)
前記細胞は、末梢血から得られるかまたは末梢血から調製される、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目47)
前記細胞は、末梢血単核球から得られるかまたは末梢血単核球から調製される、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目48)
前記細胞は、ヒト細胞である、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目49)
前記細胞は、エレクトロポレーション、ソノポレーション、バイオリスティック(例えば、Au粒子での遺伝子銃)、脂質トランスフェクション、ポリマートランスフェクション、ナノ粒子、またはポリプレックスからなる群より選択される方法を使用して、核酸ベクターによってトランスフェクトまたは形質導入される、項目36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目50)
CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該カスパーゼ−9ポリペプチドは、配列番号153のアミノ酸配列を含む、項目7〜18または21〜25のいずれか1項に記載の核酸、あるいは項目36〜49のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目51)
CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該カスパーゼ−9ポリペプチドは、配列番号153のアミノ酸配列を含み、表1中のカスパーゼバリアントからなる群より選択されるアミノ酸置換をさらに含む、項目7〜18または21〜25のいずれか1項に記載の核酸、あるいは項目36〜49のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目52)
前記カスパーゼ−9ポリペプチドは、N405Qの置換されたアミノ酸残基を有する、項目51に記載の核酸または改変された細胞。
(項目53)
CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで前記多量体リガンド結合領域は、FKBP、シクロフィリンレセプター、ステロイドレセプター、テトラサイクリンレセプター、重鎖抗体サブユニット、軽鎖抗体サブユニット、可動性リンカードメインによって分断された重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをタンデムで含む一本鎖抗体、およびこれらの変異配列からなる群より選択されるリガンド結合領域である、項目7〜18、21〜25、または50〜52のいずれか1項に記載の核酸、あるいは項目36〜52のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目54)
前記リガンド結合領域は、FKBP12領域である、項目53に記載の核酸または改変された細胞。
(項目55)
前記FKBP12領域は、FKBP12v36領域である、項目54に記載の核酸または改変された細胞。
(項目56)
前記FKBP領域は、Fv’Fvlsである、項目54に記載の核酸または改変された細胞。
(項目57)
前記リガンドは、FK506二量体または二量体FK506アナログリガンドである、項目53〜56のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目58)
前記リガンドは、AP1903またはAP20187である、項目53〜56のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目59)
キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該キメラ抗原レセプターは、(i)膜貫通領域;(ii)T細胞活性化分子;および(iii)抗原認識部分を含む、項目3、4、9、10、または12〜25のいずれか1項に記載の核酸、あるいは項目36〜58のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目60)
前記キメラ抗原レセプターは、CD28、OX40、および4−1BBからなる群より選択される共刺激分子をさらに含む、項目59に記載の核酸または改変された細胞。
(項目61)
前記T細胞活性化分子は、ITAMを含みシグナル1を与える分子、CD3ζポリペプチド、およびFcイプシロンレセプターガンマ(FcεR1γ)サブユニットポリペプチドからなる群より選択される、項目59または60のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目62)
前記抗原認識部分は、腫瘍細胞上の抗原に結合する、項目59〜61のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目63)
前記抗原認識部分は、過剰増殖性疾患に関与する細胞上の抗原に、またはウイルス抗原もしくは細菌抗原に結合する、項目59〜61のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目64)
前記抗原認識部分は、PSMA、PSCA、MUC1、CD19、ROR1、メソテリン、GD2、CD123、MUC16、Her2/Neu、CD20、CD30、PRAME、NY−ESO−1、およびEGFRvIIIからなる群より選択される抗原に結合する、項目59〜61のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目65)
前記抗原認識部分は、一本鎖可変フラグメントである、項目59〜64のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目66)
前記膜貫通領域は、CD28膜貫通領域またはCD8膜貫通領域である、項目59〜65のいずれか1項に記載の核酸または改変された細胞。
(項目67)
前記キメラ抗原レセプターは、CD8ストーク領域をさらに含む、項目66に記載の核酸または改変された細胞。
(項目68)
被験体においてT細胞媒介性免疫応答を刺激するための方法であって、該方法は、項目36〜67のいずれか1項に記載の改変された細胞の有効量を該被験体に投与する工程を包含する、方法。
(項目69)
前記T細胞媒介性免疫応答は、標的細胞に向けられる、項目68に記載の方法。
(項目70)
前記改変された細胞は、標的細胞上の抗原に結合する、キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、またはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターを含む、項目68または69のいずれか1項に記載の方法。
(項目71)
前記標的細胞は、腫瘍細胞である、項目69または70のいずれか1項に記載の方法。
(項目72)
前記被験体における標的細胞の数または濃度は、前記改変された細胞の投与後に減少する、項目69〜71のいずれか1項に記載の方法。
(項目73)
前記改変された細胞の投与前に前記被験体から得られた第1のサンプル中の標的細胞の数または濃度を測定する工程、該改変された細胞の投与後に該被験体から得られた第2のサンプル中の標的細胞の数または濃度を測定する工程、および該第1のサンプルにおける標的細胞の数または濃度と比べて、該第2のサンプルにおける標的細胞の数または濃度の増大または減少を決定する工程を包含する、項目69〜72のいずれか1項に記載の方法。
(項目74)
前記第2のサンプルにおける標的細胞の濃度は、前記第1のサンプルにおける標的細胞の濃度と比べて減少する、項目73に記載の方法。
(項目75)
前記第2のサンプルにおける標的細胞の濃度は、前記第1のサンプルにおける標的細胞の濃度と比べて増大する、項目73に記載の方法。
(項目76)
さらなる用量の改変された細胞が、前記被験体に投与される、項目68〜75のいずれか1項に記載の方法。
(項目77)
被験体に抗腫瘍免疫を提供するための方法であって、該方法は、項目36〜67のいずれか1項に記載の改変された細胞の有効量を該被験体に投与する工程を包含する、方法。
(項目78)
標的抗原の上昇した発現と関連する疾患もしくは状態を有する被験体を処置するための方法であって、該方法は、項目36〜67のいずれか1項に記載の改変された細胞の有効量を該被験体に投与する工程を包含する、方法。
(項目79)
前記標的抗原は、腫瘍抗原である、項目78に記載の方法。
(項目80)
被験体において腫瘍のサイズを減少させるための方法であって、該方法は、項目36〜67のいずれか1項に記載の改変された細胞を該被験体に投与する工程を包含し、ここで該細胞は、該腫瘍上の抗原に結合する抗原認識部分を含む、キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、またはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターを含む、方法。
(項目81)
前記被験体は、腫瘍を有すると診断されている、項目68〜80のいずれか1項に記載の方法。
(項目82)
前記被験体は、がんを有する、項目68〜80のいずれか1項に記載の方法。
(項目83)
前記被験体は、固形腫瘍または白血病を有する、項目81に記載の方法。
(項目84)
前記改変された細胞は、腫瘍浸潤リンパ球またはT細胞である、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目85)
前記改変された細胞は、腫瘍床に送達される、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目86)
前記がんは、前記被験体の血液または骨髄に存在する、項目82に記載の方法。
(項目87)
前記被験体は、血液または骨髄の疾患を有する、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目88)
前記被験体は、任意の状態または幹細胞移植によって緩和され得る状態と診断されている、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目89)
前記被験体は、鎌状赤血球貧血または異染性白質ジストロフィーと診断されている、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目90)
前記被験体は、原発性免疫不全状態、血球貪食性リンパ組織球症(HLH)または他の血球貪食状態、遺伝性骨髄不全状態、ヘモグロビン異常症、代謝状態、および破骨細胞状態からなる群より選択される状態と診断されている、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目91)
前記被験体は、重症複合免疫不全症(SCID)、複合免疫不全症(CID)、先天性T細胞欠損/欠損症、分類不能型免疫不全症(CVID)、慢性肉芽腫症、IPEX(免疫不全、多腺性内分泌障害、腸症、X連鎖)もしくはIPEX様、ウィスコット・オールドリッチ症候群、CD40リガンド欠損症、白血球接着不全、DOCA 8不全症、IL−10欠損症/IL−10レセプター欠損症、GATA 2欠損症、X連鎖リンパ増殖性疾患(XLP)、軟骨毛髪形成不全、シュバッハマン・ダイアモンド症候群、ダイアモンド・ブラックファン貧血、先天性角化異常症、ファンコーニ貧血、先天性好中球減少症、鎌状赤血球症、サラセミア、ムコ多糖症、スフィンゴリピドーシス、および大理石骨病からなる群より選択される疾患または状態と診断されている、項目68〜83のいずれか1項に記載の方法。
(項目92)
さらなる用量の前記改変された細胞が前記被験体に投与されるべきかどうかを決定する工程をさらに包含する、項目68〜91のいずれか1項に記載の方法。
(項目93)
さらなる用量の前記改変された細胞を前記被験体に投与する工程をさらに包含し、ここで前記疾患もしくは状態の症候は、症候の減少後になおも残っているかまたは検出される、項目68〜92のいずれか1項に記載の方法。
(項目94)
被験体において状態もしくは疾患の有無またはステージを同定する工程;および
該被験体において同定された状態または疾患の有無またはステージに基づいて、項目68〜93のいずれか1項に記載の改変された細胞を投与する指示、該改変された細胞のその後の投与量を維持する指示、または該患者に投与される該改変された細胞のその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに包含する、項目68〜92のいずれか1項に記載の方法。
(項目95)
前記被験体は、HIV、インフルエンザ、ヘルペス、ウイルス性肝炎、エプスタイン・バー、ポリオ、ウイルス性脳炎、麻疹、水痘、サイトメガロウイルス(CMV)、アデノウイルス(ADV)、HHV−6(ヒトヘルペスウイルス6,I)、およびパピローマウイルスからなる群より選択されるウイルス病因の感染症と診断されているか、または肺炎、結核、および梅毒からなる群より選択される細菌病因の感染症と診断されているか、またはマラリア、トリパノソーマ症、リーシュマニア症、トリコモナス症、およびアメーバ症からなる群より選択される寄生生物病因の感染症と診断されている、項目68〜92のいずれか1項に記載の方法。
(項目96)
前記改変された細胞は、多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドを含む、項目68〜95のいずれか1項に記載の方法。
(項目97)
前記被験体への前記改変された細胞の投与後に、前記多量体リガンド結合領域に結合する多量体リガンドを該被験体に投与する工程をさらに包含する、項目96に記載の方法。
(項目98)
前記多量体リガンドの投与後に、前記キメラカスパーゼ−9ポリペプチドを含む改変された細胞の数が減少する、項目97に記載の方法。
(項目99)
前記キメラカスパーゼ−9ポリペプチドを含む改変された細胞の数は、50%減少する、項目98に記載の方法。
(項目100)
前記キメラカスパーゼ−9ポリペプチドを含む改変された細胞の数は、75%減少する、項目98に記載の方法。
(項目101)
前記キメラカスパーゼ−9ポリペプチドを含む改変された細胞の数は、90%減少する、項目98に記載の方法。
(項目102)
前記被験体への前記改変された細胞の投与後に、該被験体が有害な症候を経験していることを決定する工程、および該有害な症候を減少または緩和するために前記リガンドを投与する工程を包含する、項目96〜101のいずれか1項に記載の方法。
(項目103)
前記リガンドは、AP1903またはAP20187である、項目96〜101のいずれか1項に記載の方法。
(項目104)
前記改変された細胞は、自己T細胞である、項目96〜101のいずれか1項に記載の方法。
(項目105)
前記改変された細胞は、同種異系のT細胞である、項目96〜101のいずれか1項に記載の方法。
(項目106)
前記改変された細胞は、インビボでトランスフェクトまたは形質導入される、項目68〜105のいずれか1項に記載の方法。
(項目107)
前記改変された細胞は、エキソビボでトランスフェクトまたは形質導入される、項目36〜67のいずれか1項に記載の改変された細胞。
(項目108)
細胞において、キメラ刺激分子またはMyD88ポリペプチドおよびCD40細胞質ポリペプチドを含むキメラ抗原レセプターを発現させるための方法であって、該方法は、項目1〜33のいずれか1項に記載の核酸と細胞とを、該核酸が該細胞の中に組み込まれる条件下で接触させ、それによって該細胞が、該組み込まれた核酸から該キメラ刺激分子または該キメラ抗原レセプターを発現する工程を包含する、方法。
(項目109)
前記核酸は、前記細胞とエキソビボで接触させられる、項目108に記載の方法。
(項目110)
前記核酸は、前記細胞とインビボで接触させられる、項目108に記載の方法。
図面の簡単な説明
図面は、本技術の実施形態を図示するものであって、限定するものではない。図示を明確にするためおよび容易にするために、図面は、一定の割合で拡大縮小して作成されておらず、場合によっては、特定の実施形態の理解を容易にするために、様々な態様が、誇張または拡大されて示されていることがある。
腫瘍細胞上で発現される抗原を認識するキメラ抗原レセプター(CAR)を発現するように遺伝子操作されたT細胞の養子移入は、臨床試験において有望であることが示され始めている。CARは、抗原結合領域、例えば、抗原特異的モノクローナル抗体に由来する一本鎖可変フラグメント(scFv)およびT細胞活性化分子(例えば、T細胞レセプター(CD3)のζ鎖)から構成される。
クグラウンドを有し得る。
(例えば、赤血球、白血球および血小板)のことを指す。
米国では、前立腺がんは、男性において最も一般的な固形腫瘍の悪性疾患である。2008年の前立腺がんの新しい症例は推定186,320例であり、28,660人が死亡すると予想された。Jemal Aら、Cancer statistics,2008.CA Cancer J Clin.58:71−96,2008。一次療法の後にPSA−進行を経験する患者のおよそ70%が、その疾患の経過中の任意の時点において転移する。Gittes RF,N Engl J Med.324:236−45,1991。アンドロゲン枯渇療法(ADT)は、転移性前立腺がんに対する標準的な治療法であり、80〜85%の患者において、一時的な腫瘍のコントロールまたは後退を達成する。Crawford EDら、N Engl J Med.321:419−24,1989;Schellhammer PFら、J Urol.157:1731−5,1997;Scher HI and Kelly WK,J Clin Oncol.11:1566−72,1993;Small EJ and Srinivas S,Cancer.76:1428−34,1995。
本発明のキメラ刺激分子を発現する発現構築物は、キメラ刺激分子コード領域およびプロモーター配列(全て作動可能に連結される)を含む。本発明のMyD88/CD40コードキメラ抗原レセプターを発現する発現構築物は、MyD88/CD40キメラ抗原レセプターコード領域およびプロモーター配列(全て作動可能に連結される)を含む。一般に、用語「作動可能に連結された」は、プロモーター配列が第2の配列に機能的に連結されていることを示すと意味され、ここで、そのプロモーター配列は、第2の配列に対応するDNAの転写を開始および媒介する。
キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここでこのキメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含み、ここでこのキメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、プロモーター;および
b)T細胞レセプター、T細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプター、またはキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;および
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド。上記ポリヌクレオチドの順序は変動し得、任意の特定の方法に関して上記構築物が適切であることを決定するために試験され得、従って、この核酸は、種々の順序(これはまた、上記第1のポリヌクレオチド中のMyD88ポリペプチドまたは切断型MyD88ポリペプチドコード配列およびCD40細胞質ポリペプチド領域コード配列の順序のバリエーションを考慮に入れる)で、上記ポリヌクレオチドを含み得ることが理解される。従って、上記第1のポリヌクレオチドは、MyD88/CD40、切断型MyD88/CD40、CD40/MyD88、またはCD40/切断型MyD88を有し、かつこの順序を有するポリペプチドをコードし得る。そして、この核酸は、上記第1から第3のポリヌクレオチドを、以下の順序(ここで、1、2、3は、5’から3’へと、上記核酸の中のポリヌクレオチドの第1、第2、または第3の順序を示す)のうちのいずれかで含み得る。他のポリヌクレオチド(例えば、2Aポリペプチドをコードするもの)は、例えば、その3つの列挙されたポリヌクレオチドの間に存在し得ることは、理解される;この表は、上記第1から第3のポリヌクレオチドの順序を指定することが意味される:
ある特定の実施形態において、発現構築物は、その発現構築物にマーカーを含めることによってその発現がインビトロまたはインビボにおいて識別される核酸構築物を含む。そのようなマーカーは、その発現構築物を含む細胞の容易な識別を可能にする識別可能な変化を細胞にもたらし得る。通常、薬物選択マーカーを含めることが、クローニングおよび形質転換体の選択に役立つ。例えば、ネオマイシン、ピューロマイシン、ハイグロマイシン、DHFR、GPT、ゼオシンおよびヒスチジノールに対する抵抗性を付与する遺伝子は、有用な選択マーカーである。あるいは、単純ヘルペスウイルスのチミジンキナーゼ(tk)などの酵素が使用される。免疫学的表面マーカーを含む細胞外の非シグナル伝達ドメインまたは様々なタンパク質(例えば、CD34、CD19、LNGFR)もまた使用され得、それにより、磁性抗体または蛍光抗体によって媒介される選別のための直接的方法が可能になる。使用される選択マーカーは、遺伝子産物をコードする核酸と同時に発現されることができる限り、重要であると考えられない。選択マーカーのさらなる例としては、例えば、レポーター(例えば、GFP、EGFP、ベータ−galまたはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ(CAT))が挙げられる。ある特定の実施形態において、マーカータンパク質、例えば、CD19などは、例えば、免疫磁気選択などにおいて、移入するための細胞の選択のために使用される。本明細書中で論じられるように、CD19マーカーは、抗CD19抗体、すなわち、例えば、CD19に結合するscFv、TCRまたは他の抗原認識部分と区別される。
共刺激ポリペプチド分子は、細胞の生存および増殖に関与するシグナル伝達経路の活性化によって細胞媒介性の免疫応答を増幅することができる。企図される共刺激タンパク質としては、例えば、腫瘍壊死因子レセプター(TNFR)ファミリーのメンバー(すなわち、CD40、RANK/TRANCE−R、OX40、4−1BB)およびCD28ファミリーのメンバー(CD28、ICOS)が挙げられるが、これらに限定されない。共刺激タンパク質には、例えば、CD28、4−1BB、OX40およびCD3ζ鎖、または例えばそれらの細胞質領域が含まれ得る。2つ以上の共刺激ポリペプチドまたは共刺激ポリペプチドの細胞質領域が、本明細書中で論じられる誘導性キメラ刺激分子において使用され得る。
リガンド結合領域は、本明細書で論じられるキメラポリペプチドの中に、例えば、誘導性カスパーゼポリペプチドの一部として含まれ得る。発現構築物のリガンド結合(「二量体化」)ドメインは、天然または非天然のリガンド、例えば、非天然の合成リガンドを使用して誘導を可能にし得る任意の好都合なドメインであり得る。多量体化領域、多量体リガンド結合領域、多量体化領域、またはリガンド結合ドメインは、構築物の性質およびリガンドの選択に応じて、細胞膜に対して内側または外側であり得る。上に示された細胞質領域と会合されるリガンド結合タンパク質を含むレセプターをはじめとした多種多様のリガンド結合タンパク質が公知である。本明細書中で使用されるとき、用語「リガンド結合ドメインは、用語「レセプター」と相互交換可能であり得る。リガンド(例えば、小さい有機リガンド)が公知であるかまたは容易に生成され得るリガンド結合タンパク質が、特に興味深い。これらのリガンド結合ドメインまたはレセプターには、FKBPおよびシクロフィリンレセプター、ステロイドレセプター、テトラサイクリンレセプター、上に示された他のレセプターなど、ならびに抗体から得ることができる「非天然の」レセプター、特に、重鎖または軽鎖サブユニット、その変異された配列、確率論的手順、コンビナトリアル合成などによって得られるランダムアミノ酸配列が含まれる。ある特定の実施形態において、リガンド結合領域は、FKBPリガンド結合領域、シクロフィリンレセプターリガンド結合領域、ステロイドレセプターリガンド結合領域、シクロフィリンレセプターリガンド結合領域およびテトラサイクリンレセプターリガンド結合領域からなる群より選択される。しばしば、リガンド結合領域は、FvFvls配列を含む。時折、Fv’Fvls配列は、さらなるFv’配列をさらに含む。例としては、例えば、Kopytek,S.J.ら、Chemistry & Biology 7:313−321(2000)およびGestwicki,J.E.ら、Combinatorial Chem.& High Throughput Screening 10:667−675(2007);Clackson T(2006)Chem Biol Drug Des 67:440−2;Clackson,T.,in Chemical Biology:From Small Molecules to Systems Biology and Drug Design(Schreiber,s.ら、eds.,Wiley,2007))において論じられているものが挙げられる。
形質導入されるシグナルは、通常、キメラタンパク質分子のリガンド媒介性のオリゴマー化によって、すなわち、リガンドが結合した後のオリゴマー化の結果として、生じ得るが、他の結合事象、例えば、アロステリックな活性化が、シグナルを惹起するために使用され得る。キメラタンパク質の構築物は、様々なドメインの順序および個々のドメインの反復の数に関して、変動し得る。
膜標的化配列は、細胞表面膜へのキメラタンパク質の輸送を提供し、ここで、同じ配列または他の配列が、細胞表面膜へのキメラタンパク質の結合をコードし得る。細胞膜と会合した分子は、膜会合を容易にするある特定の領域を含み、そのような領域は、キメラタンパク質分子に組み込まれることにより、膜標的化分子をもたらし得る。例えば、いくつかのタンパク質は、アシル化される配列をN末端またはC末端に含み、これらのアシル部分は、膜会合を容易にする。そのような配列は、アシルトランスフェラーゼによって認識され、特定の配列モチーフに一致することが多い。ある特定のアシル化モチーフは、単一のアシル部分(その後に、陰イオン性脂質頭部基との会合を改善するいくつかの正に帯電した残基(例えば、ヒトc−Src:M−G−S−N−K−S−K−P−K−D−A−S−Q−R−R−R(配列番号283))が続くことが多い)によって修飾されることができ、他のものは、複数のアシル部分によって修飾されることができる。例えば、タンパク質チロシンキナーゼSrcのN末端配列は、単一のミリストイル部分を含み得る。二重アシル化領域は、ある特定のタンパク質キナーゼ(例えば、Srcファミリーメンバーのサブセット(例えば、Yes、Fyn、Lck)およびGタンパク質アルファサブユニット)のN末端領域内に配置されている。そのような二重アシル化領域は、そのようなタンパク質の最初の18アミノ酸の中に配置されることが多く、それは、配列モチーフMet−Gly−Cys−Xaa−Cys(配列番号284)に一致し、ここで、Metは、切断され、Glyは、N−アシル化され、Cys残基のうちの1つは、S−アシル化される。Glyは、ミリストイル化されることが多く、Cysは、パルミトイル化され得る。配列モチーフCys−Ala−Ala−Xaa(いわゆる「CAAXボックス」)に一致するアシル化領域は、Gタンパク質ガンマサブユニットのC末端由来のC15またはC10イソプレニル部分によって修飾され得、他のタンパク質(例えば、ワールドワイドウェブアドレスebi.ac.uk/interpro/DisplayIproEntry?ac=IPR001230)もまた使用され得る。これらのおよび他のアシル化モチーフとしては、例えば、Gauthier−Campbellら、Molecular Biology of the Cell 15:2205−2217(2004);Glabatiら、Biochem.J.303:697−700(1994)およびZlakineら、J.Cell Science 110:673−679(1997)において論じられているものが挙げられ、そのモチーフは、膜局在化を誘導するためにキメラ分子に組み込まれ得る。ある特定の実施形態において、アシル化モチーフを含むタンパク質由来の天然の配列が、キメラタンパク質に組み込まれる。例えば、いくつかの実施形態において、Lck、FynもしくはYesまたはGタンパク質アルファサブユニットのN末端部分(例えば、そのようなタンパク質由来の最初の25個のN末端アミノ酸またはそれより少ないアミノ酸(例えば、随意の変異を有する、その天然の配列の約5〜約20アミノ酸、約10〜約19アミノ酸または約15〜約19アミノ酸))が、キメラタンパク質のN末端の中に組み込まれ得る。ある特定の実施形態において、CAAXボックスモチーフ配列を含むGタンパク質ガンマサブユニット由来の約25アミノ酸以下のC末端配列(例えば、随意の変異を有する、天然の配列の約5〜約20アミノ酸、約10〜約18アミノ酸または約15〜約18アミノ酸)が、キメラタンパク質のC末端に連結され得る。
本明細書中のキメラタンパク質は、一回貫通型(single−pass)または複数回貫通型(multiple pass)の膜貫通配列を含み得る(例えば、キメラタンパク質のN末端またはC末端に)。一回貫通型膜貫通領域は、ある特定のCD分子、チロシンキナーゼレセプター、セリン/トレオニンキナーゼレセプター、TGFβ、BMP、アクチビンおよびホスファターゼに見出される。一回貫通型膜貫通領域は、シグナルペプチド領域および約20〜約25アミノ酸(それらの多くは、疎水性アミノ酸であり、アルファヘリックスを形成し得る)の膜貫通領域を含むことが多い。短いトラックの正に帯電したアミノ酸が、タンパク質を膜に繋ぎ止めるために膜貫通の範囲の後に続くことが多い。複数回貫通型タンパク質には、イオンポンプ、イオンチャネルおよびトランスポーターが含まれ、膜を複数回またぐ2つまたはそれを超えるらせんを含む。複数回貫通型タンパク質のすべてまたは実質的にすべてが、時折、キメラタンパク質に組み込まれる。一回貫通型および複数回貫通型膜貫通領域に対する配列は、公知であり、キメラタンパク質分子に組み込むために選択され得る。
1.プロモーター
目的のポリヌクレオチド配列の発現をコントロールするために使用される特定のプロモーターは、標的化された細胞においてそのポリヌクレオチドの発現を指示することができる限り、重要であると考えられない。したがって、ヒト細胞が標的化される場合、ポリヌクレオチド配列コード領域は、例えば、ヒト細胞において発現されることができるプロモーターに隣接しておよびそのプロモーターの支配下に配置され得る。一般的に言えば、そのようなプロモーターは、ヒトプロモーターまたはウイルスプロモーターを含み得る。
エンハンサーは、同じDNA分子上の離れた位置に配置されたプロモーターからの転写を増加させる遺伝的エレメントである。初期の例としては、コード配列に隣接し、かついくつかのイントロンの中に存在する、免疫グロブリンおよびT細胞レセプターに関連するエンハンサーが挙げられる。多くのウイルスプロモーター(例えば、CMV、SV40およびレトロウイルスLTR)は、エンハンサーの活性と密接に関連し、単一エレメントのように扱われることが多い。エンハンサーは、ほぼプロモーターのように組織化される。すなわち、エンハンサーは、多くの個々のエレメントから構成され、その各々が、1つ以上の転写性タンパク質に結合する。エンハンサーとプロモーターとの基本的な区別は、操作上のものである。エンハンサー領域は概して、少し離れて、しばしば向きに関係なく、転写を刺激する;これは、プロモーター領域またはその成分エレメントには必ずしも当てはまらない。他方で、プロモーターは、特定の部位において特定の向きでRNA合成の開始を指示する1つ以上のエレメントを有するのに対し、エンハンサーは、これらの特異性を欠く。プロモーターおよびエンハンサーは、しばしば重複し、近接することから、しばしば非常によく似たモジュール構成を有するようである。エンハンサーのサブセットには、転写活性を増加させ得るだけでなく、ゲノムにインテグレートされたとき、隣接する配列から転写性エレメントを(インスレーターエレメントとともに)隔離するのを助け得る、遺伝子座調節領域(LCR)が含まれる。
cDNAインサートが使用される場合、遺伝子転写産物の適切なポリアデニル化をもたらすためにポリアデニル化シグナルを含めることが通常望ましい。ポリアデニル化シグナルの性質は、本方法の実施の成功にとって重大であるとは考えられておらず、任意のそのような配列(例えば、ヒトまたはウシの成長ホルモンおよびSV40のポリアデニル化シグナルならびにLTRポリアデニル化シグナル)が、使用される。1つの非限定的な例は、pCEP3プラスミド(Invitrogen,Carlsbad,California)に存在するSV40ポリアデニル化シグナルである。ターミネーターもまた、発現カセットのエレメントとして企図される。これらのエレメントは、メッセージレベルを高めるため、およびそのカセットから他の配列への読み過ごしを最小限にするために役立ち得る。終止シグナル配列またはポリ(A)シグナル配列は、例えば、mRNAの3’末端における保存配列(AAUAAA)から約11〜30ヌクレオチド下流に位置し得る(Montgomery,D.L.ら、1993.DNA Cell Biol.12:777−83;Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88)。
特定の開始シグナルもまた、コード配列の効率的な翻訳に必要とされることがある。これらのシグナルは、ATG開始コドンまたは隣接する配列を含む。ATG開始コドンをはじめとした外来性翻訳調節シグナルが、提供される必要があり得る。開始コドンは、インサート全体の翻訳を確実にするために、所望のコード配列の読み枠とインフレームで配置される。外来性翻訳調節シグナルおよび開始コドンは、天然または合成であり得る。発現の効率は、適切な転写エンハンサーエレメントを含めることによって上昇し得る。
タンパク質産生は、導入遺伝子におけるコドンを最適化することによっても増加され得る。タンパク質産生を増加させるために、種特異的コドンの変更が用いられ得る。また、コドンが最適化されることにより、最適化されたRNAが生成され得、それにより、より効率的な翻訳がもたらされ得る。RNAに組み込まれるコドンを最適化することによって、不安定性を引き起こす二次構造をもたらすエレメント、例えばリボソーム結合を阻害し得るmRNA二次構造、またはmRNAの核外輸送を阻害し得るクリプティック(cryptic)配列などのエレメントが、除去され得る(Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88;Yan.,J.ら、2007.Mol.Ther.15:411−21;Cheung,Y.K.ら、2004.Vaccine 23:629−38;Narum.,D.L.ら、2001.69:7250−55;Yadava,A.,and Ockenhouse,C.F.,2003.Infect.Immun.71:4962−69;Smith.,J.M.ら、2004.AIDS Res.Hum.Retroviruses 20:1335−47;Zhou,W.ら、2002.Vet.Microbiol.88:127−51;Wu,X.ら、2004.Biochem.Biophys.Res.Commun.313:89−96;Zhang,W.ら、2006.Biochem.Biophys.Res.Commun.349:69−78;Deml,L.A.ら、2001.J.Virol.75:1099−11001;Schneider,R.M.ら、1997.J.Virol.71:4892−4903;Wang,S.D.ら、2006.Vaccine 24:4531−40;zur Megede,J.ら、2000.J.Virol.74:2628−2635)。例えば、FBP12または他の多量体化領域ポリペプチド、共刺激ポリペプチド細胞質シグナル伝達領域およびCD19配列が、コドンの変更によって最適化され得る。
リーダー配列は、mRNAの安定性を高めるためおよびより効率的な翻訳をもたらすために付加され得る。リーダー配列は、通常、mRNAを小胞体に標的化することに関与する。例としては、自身の切断を遅延させる、HIV−1エンベロープ糖タンパク質(Env)に対するシグナル配列、およびIgE遺伝子リーダー配列が挙げられる(Kutzler,M.A.,and Weiner,D.B.,2008.Nature Rev.Gen.9:776−88;Li,V.ら、2000.Virology 272:417−28;Xu,Z.L.ら、2001.Gene 272:149−56;Malin,A.S.ら、2000.Microbes Infect.2:1677−85;Kutzler,M.A.ら、2005.J.Immunol.175:112−125;Yang.,J.S.ら、2002.Emerg.Infect.Dis.8:1379−84;Kumar.,S.ら、2006.DNA Cell Biol.25:383−92;Wang,S.ら、2006.Vaccine 24:4531−40)。IgEリーダーは、小胞体への挿入を高めるために使用され得る(Tepler,Iら(1989)J.Biol.Chem.264:5912)。
本明細書中で使用される「核酸」は、一般に、核酸塩基を含む、DNA、RNAまたはその誘導体もしくはアナログの分子(1本、2本またはそれより多くの鎖)のことを指す。核酸塩基には、例えば、DNA(例えば、アデニン「A」、グアニン「G」、チミン「T」またはシトシン「C」)またはRNA(例えば、A、G、ウラシル「U」またはC)に見られる天然に存在するプリンまたはピリミジン塩基が含まれる。用語「核酸」は、用語「オリゴヌクレオチド」および「ポリヌクレオチド」を包含し、その各々は、用語「核酸」の亜属として包含される。核酸は、少なくとも、多くとも、または約3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、120、130、140、150、160、170、180、190、200、210、220、230、240、250、260、270、280、290、300、310、320、330、340、350、360、370、380、390、400、410、420、430、440、441、450、460、470、480、490、500、510、520、530、540、550、560、570、580、590、600、610、620、630、640、650、660、670、680、690、700、710、720、730、740、750、760、770、780、790、800、810、820、830、840、850、860、870、880、890、900、910、920、930、940、950、960、970、980、990もしくは1000ヌクレオチド長、またはこの中の導き出せる任意の範囲の長さであり得る。
下記で論じられる修飾のいずれかが、核酸に適用され得る。修飾の例としては、RNAもしくはDNAの骨格、糖または塩基、およびそれらの様々な組み合わせに対する変更が挙げられる。核酸における任意の好適な数の骨格結合、糖および/または塩基が、修飾され得る(例えば、独立して、約5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、最大100%)。修飾されていないヌクレオシドは、β−D−リボ−フラノースの1’炭素に結合された塩基アデニン、シトシン、グアニン、チミンまたはウラシルのうちのいずれか1つである。
いくつかの実施形態において、例えば、アッセイにおけるコントロールまたは標準物質として、または治療薬として使用するための核酸が、提供される。核酸は、当該分野で公知の任意の手法(例えば、化学合成、酵素的生成または生物学的生成など)によって作製され得る。核酸は、生物学的サンプルから回収され得るかまたは単離され得る。核酸は、組換えであり得るか、または天然であり得るかもしくは細胞にとって内因性であり得る(細胞のゲノムから産生され得る)。生物学的サンプルは、小さい核酸分子の回収率を高めるような方法で処理され得ることが企図される。一般に、方法は、グアニジニウムおよび界面活性剤を有する溶液で細胞を溶解する工程を含み得る。
細胞内での導入遺伝子発現の効果を媒介するために、発現構築物を細胞に移行させる必要があり得る。そのような移行は、ウイルスによる遺伝子移入方法またはウイルスによらない遺伝子移入方法を使用し得る。この項では、遺伝子移入の方法および組成物の考察が提供される。
細胞、例えば、T細胞をトランスフェクトするためもしくは形質転換するため、または本方法のヌクレオチド配列もしくは組成物を投与するために、任意の適切な方法が使用され得る。ある特定の例が、本明細書中に提示され、それらの例としてはさらに、カチオン性ポリマー、脂質様分子およびある特定の市販品、例えば、IN−VIVO−JET PEIなどを使用した送達などの方法が挙げられる。
生物から取り出された血管細胞および血管組織をエキソビボの環境においてトランスフェクトするために、様々な方法が利用可能である。例えば、イヌ内皮細胞は、インビトロにおけるレトロウイルス遺伝子移入によって遺伝的に変更され、イヌに移植された(Wilsonら、Science,244:1344−1346,1989)。別の例では、ユカタンミニブタ内皮細胞を、インビトロにおいてレトロウイルスでトランスフェクトし、ダブルバルーンカテーテルを使用して動脈に移植した(Nabelら、Science,244(4910):1342−1344,1989)。したがって、細胞または組織が、取り出され、本明細書中に提示されるポリヌクレオチドを使用してエキソビボにおいてトランスフェクトされ得ることが企図される。特定の態様において、移植された細胞または組織は、生物の中に配置され得る。例えば、T細胞は、動物から得られ得、上記細胞は、発現ベクターでトランスフェクトまたは形質導入され得、次いで、その動物へと投与して戻され得る。
ある特定の実施形態において、細胞または核酸ベクターもしくはウイルスベクターは、1つ以上の注射(すなわち、針による注射)、例えば、例えば、皮下、皮内、筋肉内、静脈内、前立腺内(intraprotatic)、腫瘍内、腹腔内などを介して、細胞小器官、細胞、組織または生物に送達され得る。注射の方法としては、例えば(foe example)、食塩水溶液を含む組成物の注射が挙げられる。さらなる実施形態は、直接マイクロインジェクションによるポリヌクレオチドの導入を含む。使用される発現ベクターの量は、抗原の性質、ならびに使用される細胞小器官、細胞、組織または生物に応じて変動し得る。
ある特定の実施形態において、ポリヌクレオチドは、エレクトロポレーションを介して細胞小器官、細胞、組織または生物に導入される。エレクトロポレーションは、細胞およびDNAの懸濁液を高圧放電に曝露することを含む。この方法のいくつかの変法では、ある特定の細胞壁分解酵素(例えば、ペクチン分解酵素)を使用して、標的レシピエント細胞を、未処理の細胞よりもエレクトロポレーションによる形質転換に対してより感受性にする(参照により本明細書中に援用される米国特許第5,384,253号)。
他の実施形態では、リン酸カルシウム沈殿を用いて、ポリヌクレオチドが細胞に導入される。この手法を用いて、ヒトKB細胞が、アデノウイルス5DNAでトランスフェクトされた(Graham and van der Eb,(1973)Virology,52,456−467)。また、この様式において、マウスL(A9)、マウスC127、CHO、CV−1、BHK、NIH3T3およびHeLa細胞が、ネオマイシンマーカー遺伝子でトランスフェクトされ(Chen and Okayama,Mol.Cell Biol.,7(8):2745−2752,1987)、ラット肝細胞が、種々のマーカー遺伝子でトランスフェクトされた(Rippeら、Mol.Cell Biol.,10:689−695,1990)。
別の実施形態では、DEAE−デキストランの後にポリエチレングリコールを使用して、ポリヌクレオチドが細胞に送達される。この様式において、レポータープラスミドが、マウス骨髄腫細胞および赤白血病細胞に導入された(Gopal,T.V.,Mol Cell Biol.1985 May;5(5):1188−90)。
さらなる実施形態は、直接音波負荷(direct sonic loading)によるポリヌクレオチドの導入を含む。LTK線維芽細胞が、音波処理負荷によってチミジンキナーゼ遺伝子でトランスフェクトされた(Fechheimerら(1987)Proc.Nat’l Acad.Sci.USA,84,8463−8467)。
さらなる実施形態において、ポリヌクレオチドは、脂質複合体、例えば、リポソームなどの中に閉じ込められ得る。リポソームは、リン脂質二重層膜および内側の水性媒質を特徴とする小胞構造である。多重膜リポソームは、水性媒質によって隔てられた複数の脂質層を有する。それらは、リン脂質が過剰量の水溶液に懸濁されると、自発的に形成する。それらの脂質成分は、自己再配列を起こした後、閉鎖構造を形成し、水および溶解した溶質を脂質二重層の間に閉じ込める(Ghosh and Bachhawat,(1991)In:Liver Diseases,Targeted Diagnosis and Therapy Using Specific Receptors and Ligands.pp.87−104)。Lipofectamine(Gibco BRL)またはSuperfect(Qiagen)と複合体化されたポリヌクレオチドも企図される。
なおもさらに、ポリヌクレオチドは、レセプター媒介性送達ビヒクルを介して標的細胞に送達され得る。これらは、標的細胞において生じているレセプター媒介性エンドサイトーシスによる高分子の選択的取り込みを利用する。様々なレセプターの細胞型特異的分布に照らして、この送達方法は、別の特異性の程度を付加する。
微粒子銃法は、ポリヌクレオチドを少なくとも1つの細胞小器官、細胞、組織または生物に導入するために使用され得る(米国特許第5,550,318号;米国特許第5,538,880号;米国特許第5,610,042号;およびPCT出願WO94/09699;これらの各々は、参照により本明細書中に援用される)。この方法は、DNAでコーティングされた微小発射体が高速度に加速して、それらが細胞膜を貫通し、細胞を殺滅せずにそれらの細胞に入ることを可能にする能力に依存する(Kleinら(1987)Nature,327,70−73)。当該分野で公知の多種多様の微粒子銃法が存在し、それらの多くは、本方法に適用可能である。
被験体内の単数または複数の細胞がヌクレオチド配列によってコードされる遺伝子を発現し得るようにそのヌクレオチド配列またはそのヌクレオチド配列を含む組成物をその細胞またはその被験体に投与するのに適した任意のウイルスベクターが、本方法において使用され得る。ある特定の実施形態において、導入遺伝子は、細胞への遺伝子移入を媒介するウイルス粒子に組み込まれる。代表的には、そのウイルスは、単純に、適切な宿主細胞に生理学的条件下で曝露されることにより、ウイルスの取り込みが可能になり得る。本方法は、下記で論じられるように、種々のウイルスベクターを使用して都合よく使用される。
アデノウイルスは、その中程度のサイズのDNAゲノム、操作の容易性、高力価、広範囲な標的細胞および高感染力を理由に、遺伝子トランスファーベクターとして使用するのに特に適している。およそ36kbのウイルスゲノムは、ウイルスDNAの複製およびパッケージングに必要なシス作用性エレメントを含む100〜200塩基対(bp)の末端逆位配列(ITR)が境を接している。異なる転写単位を含む、ゲノムの初期(E)領域および後期(L)領域は、ウイルスDNA複製の開始によって分割される。
レトロウイルスは、そのRNAを逆転写のプロセスによって感染細胞において二本鎖DNAに変換する能力を特徴とする一本鎖RNAウイルスの群である(Coffin,(1990)In:Virology,ed.,New York:Raven Press,pp.1437−1500)。次いで、得られたDNAは、プロウイルスとして細胞染色体内に安定に組み込み、ウイルスタンパク質の合成を指示する。その組み込みにより、レシピエント細胞およびその子孫においてウイルス遺伝子配列が保持される。レトロウイルスゲノムは、3つの遺伝子、それぞれキャプシドタンパク質、ポリメラーゼ酵素およびエンベロープ成分をコードするgag、polおよびenvを含む。psiと呼ばれる、gag遺伝子から上流に見られる配列は、ゲノムをビリオンにパッケージングするためのシグナルとして機能する。2つの長い末端反復(LTR)配列が、ウイルスゲノムの5’および3’末端に存在する。これらは、強力なプロモーター配列およびエンハンサー配列を含み、宿主細胞ゲノムへの組み込みにも必要である(Coffin,1990)。したがって、例えば、本技術は、例えば、細胞を形質導入するために使用されるポリヌクレオチドがその細胞のゲノムに組み込まれた細胞を含む。
AAVは、約4700塩基対の直鎖状の一本鎖DNAを使用する。末端逆位反復配列は、ゲノムに隣接している。2つの遺伝子が、ゲノム内に存在し、いくつかの異なる遺伝子産物を生じる。第1に、cap遺伝子は、VP−1、VP−2およびVP−3と命名された3つの異なるビリオンタンパク質(VP)を生成する。第2に、rep遺伝子は、4つの非構造タンパク質(NS)をコードする。これらのrep遺伝子産物の1つ以上は、AAV転写のトランス活性化に関与する。
他のウイルスベクターも、本発明の方法および組成物において発現構築物として用いられる。ワクシニアウイルス(Ridgeway,(1988)In:Vectors:A survey of molecular cloning vectors and their uses,pp.467−492;Baichwal and Sugden,(1986)In,Gene Transfer,pp.117−148;Couparら、Gene,68:1−10,1988)カナリアポックスウイルスおよびヘルペスウイルスなどのウイルスに由来するベクターが使用される。これらのウイルスは、様々な哺乳動物細胞への遺伝子移入において使用するためのいくつかの特徴を提供する。
本方法は、疾患を処置するかまたは予防する方法も包含し、ここで、例えば注入による細胞の投与が、有益であり得る。
改変された細胞の投与量および投与スケジュールは、処置される疾患または状態のレベルを決定することによって最適化され得る。例えば、任意の残存している固形腫瘍のサイズ、または標的化される細胞、例えば、患者の中に残存している、腫瘍細胞またはCD19発現B細胞などのレベルが、決定され得る。
キメラ抗原レセプターは、標的抗原に結合する。インビトロまたはエキソビボでT細胞活性化をアッセイする場合、標的抗原は、種々の供給源から得られ得るかまたは単離され得る。標的抗原は、本明細書中で使用されるとき、抗原または抗原上の免疫学的エピトープであり、それは、哺乳動物における、免疫認識および疾患を引き起こす作用因子(agent)または疾患状態の最終的な排除またはコントロールにおいてきわめて重大である。その免疫認識は、細胞性および/または体液性であり得る。細胞内の病原体およびがんの場合、免疫認識は、例えば、Tリンパ球応答であり得る。
Tリンパ球は、本明細書中で論じられる発現ベクターを含む細胞との接触によって活性化され得、ここで、その細胞は、抗原でチャレンジされているか、トランスフェクトされているか、パルスされているか、または電気融合されている。
そのレセプターは、他の細胞の表面上の主要組織適合遺伝子複合体(MHC)分子と会合している抗原のみを認識することができる。T細胞にはいくつかの集団、例えば、ヘルパーT細胞および細胞傷害性T細胞がある。ヘルパーT細胞および細胞傷害性T細胞は、第一に、それぞれ、膜結合糖タンパク質CD4およびCD8のディスプレイによって区別される。ヘルパーT細胞は、B細胞、細胞傷害性T細胞、マクロファージおよび他の免疫系細胞の活性化にとってきわめて重大な様々なリンフォカインを分泌する。対照的に、抗原−MHC複合体を認識するナイーブCD8T細胞は、増殖し、細胞傷害性CD8Tリンパ球(CTL)と呼ばれるエフェクター細胞に分化する。CTLは、細胞溶解をもたらす物質を産生することによって、抗原をディスプレイしている体内の細胞(例えば、ウイルスに感染した細胞および腫瘍細胞)を排除する。
臨床適用が企図される場合、薬学的組成物(発現構築物、発現ベクター、融合タンパク質、形質導入された細胞、活性化T細胞、形質導入されたT細胞、および負荷されたT細胞)を、意図される用途にとって適切な形態で調製する必要があり得る。一般に、これは、発熱物質ならびにヒトまたは動物にとって有害であり得る他の不純物を本質的に含まない組成物を調製することを伴い得る。
AP1903 APIは、Alphora Research Inc.によって製造されており、AP1903 Drug Product for Injectionは、Formatech Incによって作製されている。それは、非イオン性可溶化剤Solutol HS 15(250mg/mL,BASF)の25%溶液中のAP1903の5mg/mL溶液として製剤化されている。室温において、この製剤は、わずかに黄色の透明の溶液である。冷蔵されると、この製剤は、可逆的な相転移を起こし、乳白色の溶液になる。この相転移は、室温に再度温めると、元に戻る。1本分(the fill)は、3mLのガラスバイアルにおける2.33mLである(バイアル1本あたり合計約10mgのAP1903 for Injection)。
1つの例において、患者には、非DEHPで非エチレンオキシドの滅菌された注入セットを使用して、2時間にわたるIV注入によって、単一の固定された用量のAP1903 for Injection(0.4mg/kg)が投与される。AP1903の用量は、すべての患者に対して個別に計算され、体重が≧10%変動しない限り、再計算されない。計算された用量は、注入前に0.9%生理食塩水で100mLに希釈される。
送達ベクターを安定にするためおよび標的細胞による取り込みを可能にするために適切な塩および緩衝剤を使用することが一般に望ましい場合がある。緩衝剤は、組換え細胞が患者に導入されるときにも使用され得る。水性組成物は、薬学的に許容され得るキャリアまたは水性媒質に溶解されたまたは分散された、細胞に対して有効量のベクターを含む。そのような組成物は、接種材料とも称される。句「薬学的にまたは薬理学的に許容され得る」とは、動物またはヒトに投与されたとき、有害(adverse)反応、アレルギー反応または他の有害(untoward)反応をもたらさない分子実体および組成物のことを指す。薬学的に許容され得るキャリアは、任意およびすべての溶媒、分散媒、コーティング、抗菌剤および抗真菌剤、等張剤ならびに吸収遅延剤などを含む。薬学的に活性な物質に対するそのような媒質および作用物質の使用は、公知である。任意の従来の媒質または作用物質が、ベクターまたは細胞と不適合性である場合を除いては、治療的な組成物におけるその使用が企図される。補助的な活性成分もまた、その組成物に組み込まれ得る。
なる白血球アフェレーシスをさらに含み得る。
本方法は、病原微生物によって引き起こされる疾患および/または過剰増殖性疾患の処置または予防の方法も包含する。
ある特定の実施形態において、共刺激ポリペプチド(例えば、本明細書中で論じられるもの)を提供することができる発現構築物が、細胞に、および例えばT細胞に備わっている。発現ベクターおよびその中に使用される遺伝的エレメントに関する長い考察が、参照によりこの項に援用される。ある特定の例では、発現ベクターは、ウイルスベクター(例えば、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルスおよびレトロウイルス)であり得る。別の例では、ベクターは、リソソームによって被包された発現ベクターであり得る。
企図される別の治療は、形質導入されたT細胞の投与である。それらのT細胞は、インビトロにおいて形質導入され得る。薬学的に許容され得る組成物としての製剤は、本明細書中で論じられる。
本明細書中に提示される発現ベクターの有効性を高めるために、これらの組成物および方法をその疾患の処置において有効な作用物質と組み合わせることが、望ましい場合がある。
キメラ抗原レセプター(CAR)は、T細胞に抗原特異性を伝えるためにデザインされた人工レセプターである。それらは、T細胞を活性化し、特異免疫をもたらすように選択された、抗原特異的成分、膜貫通成分および細胞内成分を含む。それらは、膜貫通成分とともに、ストークポリペプチドをさらに含み得る。キメラ抗原レセプターを発現しているT細胞は、がん治療をはじめとした様々な治療において使用され得る。
例えば前立腺がんを含む固形腫瘍がんに対する処置は、処置のコース中にIL−6、IL6−sRまたはVCAM−1の濃度を決定することによって、最適化され得る。IL−6とは、インターロイキン6のことを指す。IL−6sRとは、IL−6可溶性レセプターのことを指し、そのレベルは、IL−6のレベルと密接に相関することが多い。VCAM−1とは、血管細胞接着分子のことを指す。異なるステージまたはタイプのがんを有する異なる患者は、様々な治療に対して異なって反応し得る。処置に対する応答は、様々な体液中または組織内のIL−6、IL−6sRまたはVCAM−1の濃度またはレベルを追跡することによってモニターされ得る。IL−6、IL−6sRまたはVCAM−1などのポリペプチドの濃度、レベルまたは量の決定には、完全長ポリペプチドまたはそのフラグメントもしくはバリアントの検出が含まれ得る。そのフラグメントまたはバリアントは、例えば、免疫学的方法、質量分析、核酸ハイブリダイゼーションなどによって検出されるのに十分であり得る。個々の患者に対する処置の最適化は、過量投与の結果としての副作用を回避するのに役立つこともあるし、その処置がいつ無効であるかを決定し、処置のコースを変更するのに役立つこともあるし、いつ用量を増加させ得るかを決定するのに役立つこともある。本明細書中で論じられる技術は、臨床医がバイオマーカー、例えば、IL−6、IL−6sRまたはVCAM−1などを追跡すること、および被験体に投与するための薬物またはワクチンのその後の用量を維持し得るか、減少させ得るかまたは増加させ得るかを決定すること、およびその後の用量のためのタイミングを決定することを可能にすることによって、固形腫瘍がんを処置するための治療方法を最適化する。
バイオマーカーの有無または量は、被験体内(例えば、インサイチュ)または被験体外(例えば、エキソビボ)において決定され得る。いくつかの実施形態において、バイオマーカーの有無または量は、細胞(例えば、分化細胞、幹細胞)において決定され得、ある特定の実施形態では、バイオマーカーの有無または量は、実質的に無細胞の媒質(例えば、インビトロ)において決定され得る。用語「被験体においてバイオマーカーの有無または量を同定すること」は、本明細書中で使用されるとき、バイオマーカーを評価するため、およびその被験体における有無または量を推定するための当該分野で公知の任意の方法(例えば、インサイチュ、エキソビボにおいてまたはインビトロにおける方法)のことを指す。
1つまたはそれを超えるバイオマーカーの有無または量は、当該分野で公知の任意の好適な方法によって決定され得、非限定的な決定方法は、本明細書中で論じられる。バイオマーカーの有無または量の決定は、時折、生物学的アッセイの使用を含む。生物学的アッセイにおいて、そのアッセイにおいて検出される1つまたはそれを超えるシグナルは、バイオマーカーの有無または量に変換され得る。そのアッセイにおいて検出されたシグナルの変換は、例えば、検量線、1つまたはそれを超える標準物質(例えば、内部標準、外部標準)、チャート、シグナルをバイオマーカーの有無または量に変換するコンピュータプログラムなど、および前述のものの組み合わせの使用を含み得る。
その後の薬物用量を調整することまたは維持することについての指示は、バイオマーカーの有無に基づき得る。例えば、(i)バイオマーカーのレベルの低感度の測定が利用可能であるとき、(ii)バイオマーカーのレベルが、薬物に応答して急激に変化するとき、(iii)低レベルもしくは高レベルのバイオマーカーが存在するとき、および/または(iv)薬物が、投与のレベルにおいて明らかに有毒でないとき、バイオマーカーの有無は、その後の薬物用量を調整するかまたは維持する指示を作製するのに十分であり得る。
いくつかの実施形態において、例えば、アッセイにおいてコントロールまたは標準物質として使用するため、または治療薬として使用するために、抗体または小分子が提供される。いくつかの実施形態において、抗体または他の小分子は、サイトカインもしくはサイトカインレセプター(IL−6、IL−6sRを含むがこれらに限定されない)に結合し、そのサイトカインの作用を変化させるように形成されているか、またはVCAM−1に結合するように形成されていることがある。ある特定の実施形態において、抗体または他の小分子は、サイトカインまたはレセプターをコードするmRNAの構造に結合し得る。
実施例1〜7は、キメラ刺激分子の誘導可能な形態の発現に関連し、本明細書で論じられるMyD88/CD40キメラ刺激分子を発現させるために使用され得る方法の例を提供する。これらの実施例は、本明細書で論じられるキメラ刺激分子およびキメラ抗原レセプターを構築、アッセイ、および使用するための参照として使用され得る。実施例8(および以下参照)は、本明細書で論じられる非誘導性MyD88/CD40キメラ刺激分子およびMyD88/CD40キメラ抗原レセプターの発現および適用に関する。
誘導性MyD88/CD40キメラ共刺激分子を、T細胞において発現させた;このT細胞とrimiducid(AP1903)との接触は、キメラ抗原レセプターを共発現したT細胞を含め、共刺激活性の活性化およびT細胞の活性化を生じた。
発現構築物、およびヒト細胞においてこの発現構築物を使用する方法が、この実施例で示される。この実施例は、誘導性キメラ刺激分子を指すが、任意の適切な改変を含め、非誘導性キメラ刺激分子をコードするベクター、およびMyD88/CD40キメラ抗原レセプターも使用され得る。
遺伝子改変されたT細胞の大規模産生
T細胞は、標準的な方法を用いて健常志願者から生成される。簡潔には、健常ドナーま
たはがん患者由来の末梢血単核球(PBMC)を、可溶性αCD3およびαCD28(Miltenyi Biotec,Auburn,CA)を使用して、増殖および形質導入のために活性化する。PBMCを、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充されたCellgenix DC培地に、1×106細胞/mlで再懸濁し、0.2μg/ml αCD3および0.5μg/ml αCD28可溶性抗体で刺激する。次いで、細胞を37℃、5%CO2において4日間培養する。4日目に、IL−2を含む1mlの新鮮培地を加える。7日目に、形質導入に向けて、細胞を収集し、Cellgenix DC培地に再懸濁する。
SFGプラスミドは、切断可能な2A様配列を介して切断型ヒトCD19に連結された誘導性CSMからなる。その誘導性CSMは、F36V変異を有し、Ser−Gly−Gly−Gly−Serリンカー(配列番号285)を介してヒトCSMに接続された、ヒトFK506結合タンパク質(FKBP12;GenBank AH002 818)からなる。そのF36V変異は、合成ホモ二量体化剤AP20187またはAP1903に対するFKBP12の結合親和性を高める。その2A様配列は、Thosea asigna昆虫ウイルス由来の20アミノ酸ペプチドをコードし、それは、グリシンと末端プロリン残基との間での>95%の切断を媒介して、誘導性CSMのC末端に19個の追加のアミノ酸およびCD19のN末端に1つの追加のプロリン残基をもたらす。CD19は、細胞質内ドメインを242アミノ酸から19アミノ酸に短縮し、リン酸化に対する潜在的な部位である保存されたすべてのチロシン残基を除去する、アミノ酸333(TDPTRRF)(配列番号286)で切断される、完全長CD19(GenBank NM001770)からなる。
T細胞の活性化および増殖のための培養培地は、100U/ml IL−2(Cellgenix)が補充された無血清Cellgenix DC培地(Cellgenix)である。レトロウイルスベクターで形質導入する前の7日間にわたって、T細胞を可溶性抗CD3および抗CD28(Miltenyi Biotec)によって活性化する。必要であれば、ΔCD19の免疫磁気選択を形質導入後の4日目に行い;陽性画分をさらに2日間にわたって増殖させ、凍結保存する。
臨床適用のための形質導入プロセスのスケールアップは、非組織培養処理T75フラスコ(Nunc, Rochester, NY)を使用する。このフラスコは、10mlの抗CD3 0.5g/mlおよび抗CD28 0.2μg/mlまたは10mlのフィブロネクチン 7g/mlで、4℃で一晩コーティングされている。細胞接着の増大のためにコロナ放電処理したフッ化エチレンプロピレンバッグ(2PF−0072AC, American Fluoroseal Corporation, Gaithersburg, MD)もまた、使用する。PBMCを、抗CD3、抗CD28によってコーティングされたフラスコに、100U/ml IL−2が補充された培地中、1×106細胞/mlで播種する。レトロウイルス形質導入に向けて、レトロネクチンでコーティングされたフラスコまたはバッグを、10mlのレトロウイルス含有上清で2〜3時間、一度負荷する。活性化T細胞を、100U/ml IL−2が補充された、3:1の比のレトロウイルスベクター含有新鮮培地およびT細胞培養培地中に1×106細胞/mlで播種する。細胞を、翌朝収集し、組織培養用に処理されたT75またはT175フラスコ内、100U/ml IL−2が補充された培養培地中で、約5×105細胞/ml〜8×105細胞/mlの播種密度で増殖させる。
CD19に対する免疫磁気選択は、例えば、形質導入の4日後に行われ得る。細胞を、モノクローナルマウス抗ヒトCD19抗体に結合体化された常磁性マイクロビーズ(Miltenyi Biotech,Auburn,CA)で標識し、小規模実験ではMSまたはLSカラムにおいて、および大規模実験ではCliniMacs Plus自動選択デバイスにおいて、選択する。CD19によって選択された細胞を、さらに4日間増殖させ、形質導入後の8日目に凍結保存する。これらの細胞は、「遺伝子改変細胞」と称される。
フローサイトメトリー解析(FACSCaliburおよびCellQuestソフトウェア;Becton Dickinson)を、以下の抗体を使用して行う:CD3、CD4、CD8、CD19、CD25、CD27、CD28、CD45RA、CD45RO、CD56およびCD62L。CD19−PE(クローン4G7;Becton Dickinson)は、最適な染色をもたらすと見出されており、その後のすべての解析において使用された。形質導入されていないコントロールを、CD19に対するネガティブゲートを設定するために使用する。CAR発現を、抗F(ab’)2(Jackson ImmunoResearch Laboratories, West Grove, PA)を使用して評価する。
対応のある両側スチューデントt検定を使用して、サンプル間の差の統計的有意性を決定する。すべてのデータを平均±1標準偏差として表す。
本願の方法を使用して、進行した治療抵抗性白血病を有する白血病患者を処置する本実施例は、他の状態または疾患、例えば、他の過剰増殖性疾患または固形腫瘍などにも適用され得る。これらの方法は、標的抗原に応じて一本鎖可変フラグメントが変化し得るという理解の下で、本質的には論じられるように使用され得る。
この実施例は、誘導性キメラ刺激分子の使用を論じるが、本明細書で論じられる方法はまた、非誘導性キメラ刺激分子に適用され得る。
誘導性T細胞分子のデザインおよびクローニング:
1.T細胞の形質導入は、RV−172(SFG−Myr.MyD88/CD40.Fv.Fv’.2A.ΔCD19)およびRV−89(SFG.PSCAscFv.CH2CH3.CD28.ζ)を用いて行う。そのscFvは、ヒト化モノクローナル抗体1G8(US2012077962A1におけるヒト化抗PSCAから得られる)由来のscFvを使用してPSCAを標的化する。これは、ヒトIgG1のCH2CH3領域に連結され、それは続いて、その分子の膜貫通部分と細胞質部分の両方を含むCD28に連結される。CD28は、CD3ζの細胞質部分に連結される。
2.本質的には、前の実施例と同じである。
3.Capan−1をATCCから購入する。続いて、EGFP/ホタルルルシフェラーゼ融合タンパク質に対する遺伝子、ならびに安定にトランスフェクトされた細胞が、G418抗生物質とともに培養することによって長い時間にわたって選択されるのを可能にするネオマイシン耐性遺伝子を含むpBP0168−pcDNA3.1−EGFPlucによるトランスフェクションによって、その細胞株を遺伝子改変する。培養後、高いGFP発現を有するクローンを選択し、>95%GFPを有する細胞株が得られるまで継代培養する。
4.形質導入されていないT細胞またはRV−89(PSCA CAR)およびRV−172(iMCベクター)で共形質導入されたT細胞を、10nM AP1903ありまたはなしで50U/ml IL−2が補充された培地中においてT細胞と腫瘍細胞とが5:1の比で培養する。次いで、共培養物を37℃および5%CO2において72時間インキュベートする。続いて、蛍光顕微鏡法によって、および0.25%トリプシン/EDTAを用いて培養物を回収し、培養物中のGFP+CD3−腫瘍細胞の頻度をフローサイトメトリーによって計測することによって、GFP+腫瘍細胞の存在について培養物を解析する。
結果:
1.培養物を蛍光顕微鏡法によって調べることにより、誘導性共刺激分子およびキメラ抗原レセプターを形質導入されたT細胞を含むウェルおよびAP1903を投与されたウェルにおける腫瘍細胞殺滅の改善を評価する。
2.フローサイトメトリーを使用して、トリプシン処理後の培養物中のGFP+細胞を解析することにより、AP1903がこの短い培養期間(72時間)において腫瘍細胞数の減少に寄与するかを決定する。培養の時間は、およそ5日間まで延長され得る。フローサイトメトリーのプロットは、5:1の比において、両方のウイルスで形質導入され、AP1903を投与されたウェル内のGFP+細胞の減少を示し得る。
3.残存している生存可能なCapan−1−GFP細胞を、AP1903なしのNT T細胞の条件に正規化することにより、腫瘍細胞殺滅に対するiMC活性化の効果が示される。
以下の配列は、本明細書で提供されるキメラ抗原レセプターまたはキメラ刺激分子をコードする発現ベクターのデザインにおいて使用され得る。
本明細書中の方法は、誘導性MyD88/CD40構築物の使用を論じるが、非誘導性MyD88/CD40キメラ刺激分子に関しても適切な改変を伴って使用され得る。
本明細書中の方法は、誘導性MyD88/CD40構築物の使用、ならびにMyD88およびCD40ポリペプチドの両方を1つのキメラ刺激分子へと組み合わせる場合に得られる相乗効果を論じる。これら方法は、適切な改変を伴って、非誘導性MyD88/CD40キメラ刺激分子に関しても使用され得る。
以下の実施例は、本願において提供されるように、MyD88/CD40キメラ抗原レセプターおよびキメラ刺激分子に関する組成物および方法を論じる。カスパーゼ−9ベースの安全スイッチ、およびMyD88/CD40キメラ抗原レセプターまたはキメラ刺激分子を発現する細胞におけるその使用に関する組成物および方法もまた、含まれる。
(MC−CAR構築物のデザイン)
本明細書で論じられる誘導性MyD88/CD40実験からの活性化データに基づいて、従来の内部ドメイン(例えば、CD28および4−1BB)の代わりに、CAR分子におけるMCシグナル伝達の潜在性を試験した。MC(AP1903結合FKBPv36領域なし)を、PSCA.ζの中にサブクローニングして、CD28内部ドメインの位置を模倣した(図4a)。レトロウイルスを、3つの構築物の各々に関して生成し、ヒトT細胞を形質導入し、その後、形質導入効率を測定して、PSCA.MC.ζが発現され得ることを実証した(図4bおよび4c)。これらCAR構築物の各々を有するT細胞が、PSCA+腫瘍細胞を認識するそれらの能力を保持することを確認するために、6時間の細胞傷害アッセイを行った。これは、Capan−1標的細胞の溶解を示した(図4d)。従って、CAR分子の細胞質領域へのMCの付加は、CAR発現または標的細胞上の抗原の認識に影響を及ぼさない。
MyD88/CD40キメラ刺激分子はまた、CARとともに細胞中で発現され得、このCARは、例えば、scFvポリペプチド、およびCD3−ζ鎖を含み得る。この方法において、CSM分子は、CARと組み合わせて使用され、それによって、CARシグナル伝達を2種の別個の機能へと分離する。この第2の機能は、CARによって提供され、抗原特異的細胞傷害性を操作されたT細胞に提供する。例えば、PSMAに対して特異性を有するCARは、T細胞において、MyD88/CD40キメラ刺激分子とともに発現され得る。また、このMyD88/CD40 CSMおよびCAR部分は、シスで同じベクター上、またはトランスで別個のベクター上のいずれかで細胞へとトランスフェクトまたは形質導入され得る。従って、この2つのポリペプチドは、2つの核酸(例えば、2つのプラスミドまたは2つのベクターのような)を使用して発現され得、そのT細胞は、例えば、2回トランスフェクトされてもよいし、特定の実施形態では、その2つの核酸は、コトランスフェクトされてもよい。他の実施形態において、この2つのポリペプチドは、1つの核酸(例えば、同じプラスミドもしくはウイルスなど)中で発現され得る。上記核酸は、2つの別個のプロモーター(一方は、CARのため、および一方は、CSMのため)を使用して、その2つのポリペプチドを発現し得る。または、他の実施形態において、その2つのポリペプチドは、同じプロモーターを使用して発現され得る。この実施形態において、その2つのポリペプチドは、切断可能なポリペプチド(例えば、2A配列のような)によって分離され得る。その操作されたT細胞は、例えば、特異的免疫応答(例えば、前立腺がんの腫瘍に向けられるもの)を生成するために被験体に投与され得る。
SFG−Myr.MC.2A.CD19scFv.CD34e.CD8stm.ゼータ配列
以下の参考文献は、引用されるか、または関連し得るさらなる情報を提供する。
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本明細書で提供されるMyD88/CD40共刺激分子を発現する改変された細胞はまた、T細胞レセプターを発現し得る。これらの例では、このT細胞レセプターは、その細胞に対して内因性であってもよいし、T細胞レセプターをコードするポリヌクレオチドを含む核酸でのトランスフェクションもしくは形質転換を介してその細胞に提供されてもよい。ある特定の例では、このT細胞レセプターは、MyD88/CD40共刺激分子と同じ核酸ベクター上で発現されてもよい。さらなる例では、このT細胞レセプターは、誘導性キメラカスパーゼ−9分子と同じ核酸ベクター上で発現されてもよい。キメラ抗原レセプター、MyD88/CD40共刺激分子、または誘導性カスパーゼ−9分子を共発現するかまたは別個に発現するベクターを構築するために本明細書で提供される方法は、そのT細胞レセプター、MyD88/CD40共刺激分子、または誘導性カスパーゼ−9分子の共発現または別個の発現に適切であるように改変され得る。いくつかの例では、その改変された細胞は、腫瘍浸潤リンパ球である。
改変された細胞は、患者が有害な作用を経験し、処置を低減するかもしくは中止する必要がある場合でも、細胞のうちのいくらかまたは全てを除去するための機構を備え得る。これら細胞は、全てのCSM発現改変T細胞またはCAR発現改変T細胞のために使用されてもよいし、上記細胞は、CARが、標的に対してだけでなくそれ以外の臓器に対する致死的毒性(lethal on−target, off−organ toxicity)を以前に引き起こしたかまたは引き起こすリスクがある抗原に向けられる場合に、治療を迅速に終えるための選択肢が必要である場合に、この能力を備え得る。
ヒトT細胞において安定してかつ効率的に発現され得る安全スイッチは、本明細書で示される。ヒトFK506結合タンパク質(FKBP)(例えば、FKBP12v36のような)に融合された改変されたヒトカスパーゼ−9活性を含む、治療剤としての使用に適した発現ベクターを構築した。このカスパーゼ−9/FKBP12ハイブリッド活性は、小分子医薬を使用して二量体化され得る。カスパーゼ−9活性の全長、切断型、および改変されたバージョンを、リガンド結合ドメイン、多量体化する(multimerizing)領域、二量体化する領域、二量体化領域、または多量体化(multimerization)領域に融合し、蛍光マーカーGFPの発現も可能にするレトロウイルスベクターMSCV.IRES.GRPへと挿入した。
この例では、発現構築物を使用して、半合致幹細胞移植後に同種枯渇T細胞の安全性を改善するための発現構築物および該発現構築物を使用する方法が示される。類似の方法は、非同種枯渇細胞においてカスパーゼ−9発現構築物を発現させるために使用され得る。iCasp9および選択マーカー(切断型CD19)をコードするレトロウイルスベクターを、ドナーT細胞のための安全スイッチとして生成した。(抗CD25免疫毒素を使用する)同種枯渇の後ですら、ドナーT細胞は、効率的に形質導入でき、増殖でき、およびその後にCD19免疫磁性選択によって>90%純度へと富化できた。その操作された細胞は、抗ウイルス特異性および機能性を保持し、調節性の表現型および機能を有するサブセットを含んだ。iCasp9を小分子二量体化剤(small-molecule dimerizer)で活性化すると、>90%アポトーシスが迅速に生じた。導入遺伝子発現は、静止しているT細胞においてダウンレギュレートされたが、iCasp9は、活性化(同種反応性)T細胞において迅速に発現がアップレギュレートされたので、効率的な自殺遺伝子を保持した。
(同種枯渇T細胞の生成)
同種枯渇細胞を、以前に示されたように、健常志願者から生成した。簡潔には、健常ドナーに由来する末梢血単核球(PBMC)を、無血清培地(AIM V; Invitrogen, Carlsbad, CA)中で40:1のレスポンダー 対 刺激物質比で、30Gγ照射レシピエントエプスタイン・バーウイルス(EBV)形質転換リンパ芽球様細胞株(LCL)とともに共培養した。72時間後、CD25を発現する活性化T細胞は、RFT5−SMPT−dgA免疫毒素中での一晩のインキュベーションによる共培養物から枯渇された。同種枯渇を、残っているCD3+CD25+集団が<1%であり、3H−チミジン取り込みによる残りの増殖が<10%であった場合に適切であるとみなした。
SFG.iCasp9.2A.CD19は、切断可能な2A様配列を介して切断型ヒトCD19へと連結された誘導性カスパーゼ−9(iCasp9)からなる。iCasp9は、Ser−Gly−Gly−Gly−Ser−Glyリンカー(配列番号119)を介してヒトカスパーゼ−9(CASP9; GenBank NM 001229)へと接続された、F36V変異を有するヒトFK506結合タンパク質(FKBP12; GenBank AH002 818)からなる。このF36V変異は、合成ホモ二量体化剤AP20187またはAP1903へのFKBP12の結合親和性を増大させる。カスパーゼリクルートメントドメイン(CARD)を、ヒトカスパーゼ−9配列から欠失させた。なぜならその生理学的機能は、FKBP12によって置き換えられており、その除去は、導入遺伝子の発現および機能を増大させるからである。この2A様配列は、Thosea asigna昆虫ウイルス由来の20アミノ酸のペプチドをコードし、このペプチドは、グリシンと末端プロリン残基との間で>99%切断を媒介し、iCasp9のC末端において19個の余分なアミノ酸およびCD19のN末端において1個の余分なプロリン残基を生じる。CD19は、アミノ酸333(TDPTRRF)(配列番号286)で短縮された全長CD19(GenBank NM 001770)からなり、これは、細胞質内ドメインを242から19アミノ酸に短縮し、リン酸化の潜在的部位である全ての保存されたチロシン残基を除去する。
T細胞活性化および増殖のための培養培地は、45% RPMI 1640(Hyclone, Logan, UT)、45% クリック(Irvine Scientific, Santa Ana, CA)および10% ウシ胎仔血清(FBS; Hyclone)からなった。同種枯渇細胞を、固定化抗CD3(OKT3; Ortho Biotech, Bridgewater, NJ)によって48時間にわたって活性化し、その後、レトロウイルスベクター選択的同種枯渇での形質導入を、ドナーPBMCとレシピエントEBV−LCLとを共培養することによって行って、同種反応性細胞を活性化した:活性化した細胞は、CD25を発現し、その後、抗CD25免疫毒素によって排除した。この同種枯渇細胞を、OKT3によって活性化し、レトロウイルスベクターで48時間後に形質導入した。免疫磁性選択を、形質導入の4日目に行った;陽性画分を、さらに4日間増殖させ、凍結保存した。
臨床適用のための形質導入プロセスのスケールアップは、非組織培養処理T75フラスコ(Nunc, Rochester, NY)を使用し、これを、一晩4℃において、10mlのOKT3 1μg/mlまたは10mlのフィブロネクチン 7μg/mlでコーティングした。増大した細胞接着のためのコロナ放電処理したフッ化エチレンプロピレンバッグ(2PF−0072AC, American Fluoroseal Corporation, Gaithersburg, MD)も使用した。同種枯渇細胞を、1×106 細胞/mlで、OKT3でコーティングしたフラスコの中に播種した。100U/ml IL−2を翌日添加した。レトロウイルス形質導入のために、レトロネクチンでコーティングしたフラスコまたはバッグに、10mlのレトロウイルス含有上清を2〜3時間にわたって1回負荷した。OKT3活性化T細胞を、3:1の比の新鮮なレトロウイルスベクター含有培地およびT細胞培養培地(100 U/ml IL−2を補充)の中で、1×106 細胞/mlで播種した。翌朝に細胞を採取し、約5×105 細胞/ml〜8×105 細胞/mlの播種密度で、組織培養処理T75またはT175フラスコ中の、IL−2 約50〜100U/mlを補充した培養培地中で増殖させた。
CD19に関する免疫磁性選択を、形質導入の4日後に行った。細胞を、モノクローナルマウス抗ヒトCD19抗体に結合体化した常磁性マイクロビーズ(Miltenyi Biotech, Auburn, CA)で標識し、小規模実験ではMSもしくはLSカラム上で、および大規模実験ではCliniMacs Plus自動化選択デバイスで選択した。CD19選択した細胞を、さらに4日間増殖させ、形質導入後の8日目に凍結保存した。それらの細胞を、「遺伝子改変同種枯渇細胞」と呼んだ。
フローサイトメトリー分析(FACSCaliburおよびCellQuestソフトウェア; Becton Dickinson)を、以下の抗体を使用して行った:CD3、CD4、CD8、CD19、CD25、CD27、CD28、CD45RA、CD45RO、CD56およびCD62L。CD19−PE(Clone 4G7; Becton Dickinson)は、最適な染色を与えることが見出されたので、その後の全ての実験において使用した。非形質導入コントロールを使用して、CD19に関する陰性ゲートを設定した。HLA−ペンタマー、HLA−B8−RAKFKQLL(配列番号287として開示される「RAKFKQLL」)(Proimmune, Springfield, VA)を使用して、EBV溶解抗原(BZLF1)のエピトープを認識するT細胞を検出した。HLA−A2−NLVPMVATVペンタマー(配列番号288として開示される「NLVPMVATV」)を使用して、CMV−pp65抗原のエピトープを認識するT細胞を検出した。
自殺遺伝子機能性を、小分子合成ホモ二量体化剤、AP20187(Ariad Pharmaceuticals; Cambridge, MA)をCD19免疫磁性選択の翌日に10nM 終濃度で添加することによって評価した。AP1903も使用され得る。細胞を、24時間においてアネキシンVおよび7−アミノアクチノマイシン(7−AAD)(BD Pharmingen)で染色し、フローサイトメトリーによって分析した。アネキシンVおよび7−AADの両方に関して陰性の細胞を、生存しているとみなし、アネキシンV陽性の細胞をアポトーシスとみなし、アネキシンVおよび7−AADの両方が陽性の細胞を壊死とみなした。二量体化によって誘導される殺滅率を、以下のとおり、基底生存率に関して較正した:殺滅率=100%−(AP20187処理細胞の%生存率÷非処理細胞の%生存率)。
細胞を、形質導入の22日後まで、50U/ml IL−2を含むT細胞培地中で維持した。細胞の一部を、1g/ml OKT3および1g/ml 抗CD28(Clone CD28.2, BD Pharmingen, San Jose, CA)で48〜72時間コーティングした24ウェルプレート上で再活性化した。再活性化細胞および非再活性化細胞の両方でのCD19発現および自殺遺伝子機能を、形質導入後の24日目または25日目に測定した。
この例は、代替の自殺遺伝子ストラテジーを使用するフェーズ1臨床試験の結果を示す。簡潔には、ドナー末梢血単核球を、レシピエントの照射EBV形質転換リンパ芽球様細胞とともに(40:1)72時間共培養し、CD25免疫毒素で同種枯渇させ、次いで、iCasp9自殺遺伝子および選択マーカー(ΔCD19)を有するレトロウイルス上清で形質導入した;ΔCD19は、免疫磁性選択を介して>90%純度への富化を可能にした。
(原材料)
末梢血の240mlまで(2回の収集にて)を、確立されたプロトコルに従って移植ドナーから得た。場合によっては、ドナーおよびレシピエントのサイズに依存して、白血球除去を行って、十分なT細胞を単離した。10〜30ccの血液をまた、レシピエントから採血し、それを使用して刺激細胞(stimulator cell)として使用されるエプスタイン・バーウイルス(EBV)形質転換リンパ芽球様細胞株を生成した。場合によっては、医療履歴および/またはB細胞数が低いという表示に依存して、LCLを、適切な第1度近親者(例えば、親、きょうだい、もしくは子孫)の末梢血単核球を使用して生成した。
同種枯渇細胞を、本明細書で示されるように移植ドナーから生成した。健常ドナーの末梢血単核球(PBMC)を、無血清培地(AIM V; Invitrogen, Carlsbad, CA)中40:1のレスポンダー対刺激物質比において、照射したレシピエントのエプスタイン・バーウイルス(EBV)形質転換リンパ芽球様細胞株(LCL)とともに共培養した。72時間後、CD25を発現する活性化T細胞を、RFT5−SMPT−dgA免疫毒素中での一晩のインキュベーションによって、共培養物から枯渇させた。同種枯渇を、その残りのCD3+CD25+集団が<1%であり、3H−チミジン取り込みによる残りの増殖が<10%であった場合に、適切であるとみなす。
レトロウイルスプロデューサー株クローンを、iCasp9−ΔCD19構築物のために生成した。このプロデューサーのマスター細胞バンクもまた、生成した。このマスター細胞バンクの試験を行って、複製能のあるレトロウイルスの生成およびMycoplasma、HIV、HBV、HCVなどによる感染を除外した。このプロデューサー株を、コンフルエントになるまで成長させ、上清を採取し、濾過し、アリコートに分け、急速凍結し、−80℃で貯蔵した。さらなる試験を、レトロウイルス上清の全てのバッチに対して行って、プロトコルに従って、複製能のあるレトロウイルス(RCR)を除外し、分析証明書を発行した。
同種枯渇Tリンパ球を、フィブロネクチンを使用して形質導入した。プレートまたはバッグを、組換えフィブロネクチンフラグメントCH−296(RetronectinTM, Takara Shuzo, Otsu, Japan)でコーティングした。ウイルスを、コーティングしたプレートまたはバッグ中でプロデューサー上清をインキュベートすることによってレトロネクチンに結合させた。次いで、細胞を、ウイルスコーティングしたプレートまたはバッグに移した。形質導入後、同種枯渇T細胞を、プロトコルに従って、これらにIL−2を1週間に2回供給して増殖させて十分な細胞数に到達させた。
CD19に関する免疫磁性選択を、形質導入の4日後に行った。細胞を、モノクローナルマウス抗ヒトCD19抗体に結合体化した常磁性マイクロビーズ(Miltenyi Biotech, Auburn, CA)で標識し、CliniMacs Plus自動化選択デバイスで選択する。臨床での注入に必要とされる細胞数に依存して、細胞を、CliniMacs選択後に凍結保存するか、またはIL−2でさらに増殖させて形質導入後の6日目または8日目に凍結保存するかのいずれかを行った。
細胞のアリコートを、FDAによる最終リリース試験のために必要とされるとおりの形質導入効率、同一性、表現型および微生物学的培養を試験するために取り出した。この細胞を、プロトコルに従って投与する前に、凍結保存した。
(RFT5−SMPT−dgA)
RFT5−SMPT−dgAは、ヘテロ−−二官能性架橋剤[N−スクシンイミジルオキシカルボニル−α−メチル−d−(2−ピリジルチオ)トルエン](SMPT)を介して化学的に脱グリコシル化したリシンA鎖(dgA)に結合体化されたマウスIgG1 抗CD25(IL−2レセプターα鎖)である。RFT5−SMPT−dgAを、0.5mg/mlの滅菌溶液として製剤化する。
作用機構:AP1903誘導性細胞死は、ヒトFK506結合タンパク質(FKBP)由来の薬物結合ドメインに融合されたヒト(カスパーゼ−9)プロテインレセプター(これは、アポトーシス細胞死をシグナル伝達する)のプロドメイン欠失部分を含むキメラタンパク質を発現させることによって達成される。このキメラタンパク質は、FKBPドメインを架橋し、カスパーゼシグナル伝達およびアポトーシスを開始するAP1903の投与まで細胞内で静止状態のままである。
3名の患者に、ハプロ−CD34+幹細胞移植(SCT)後に、約1×106 細胞/kg〜約3×106 細胞/kgの間の用量レベルでiCasp9+ T細胞を与えた。
患者細胞および試薬の利用可能性に依存して、免疫再構築研究(免疫表現型決定、T細胞およびB細胞機能)は、移植後一連の間隔で得られ得る。iカスパーゼ形質導入同種枯渇T細胞から生じる免疫再構築を測定するいくつかのパラメータを分析する。この分析は、全リンパ球カウント、T細胞およびCD19 B細胞の数の反復測定、ならびにT細胞サブセット(CD3、CD4、CD8、CD16、CD19、CD27、CD28、CD44、CD62L、CCR7、CD56、CD45RA、CD45RO、アルファ/ベータおよびガンマ/デルタT細胞レセプター)のFACS分析を含む。患者T細胞の利用可能性に依存して、調節性T細胞マーカー(例えば、CD41CD251FoxP3)もまた分析する。可能な場合には、注入の4時間後、1ヶ月の間週に1回、月に1回×9ヶ月間、および次に1年でおよび2年で、およそ10〜60mlの患者血液を採取する。採取される血液量は、レシピエントのサイズに依存し、いずれの1回の採血時にも(臨床上のケアおよび研究評価のために血液採取は可能である)合計で1〜2cc/kgを超えない。
基底シグナル伝達(アゴニストまたは活性化剤の非存在下でのシグナル伝達)は、多くの生体分子で一般的である。例えば、複数のサブファミリーに由来する60を超える野生型Gプロテイン共役レセプター(GPCR)[1]、キナーゼ(例えば、ERKおよびabl)[2]、表面免疫グロブリン[3]、およびプロテアーゼにおいて観察されている。基底シグナル伝達は、胚性幹細胞多能性の維持、B細胞発生および分化[4〜6]、T細胞分化[2, 7]、胸腺細胞発生[8]、エンドサイトーシスおよび薬物耐容性[9]、自己免疫[10]から、植物生長および発生[11]まで、非常に種々の生物学的事象に寄与すると仮定されている。その生物学的重要性は常に完全に理解されているわけでも明らかでもないが、欠陥のある基底シグナル伝達は、重大な帰結をもたらし得る。欠陥のある基底Gsプロテインシグナル伝達は、網膜色素変性、色盲、腎性尿崩症、家族性ACTH抵抗性(familial ACTH resistance)、および家族性低カルシウム尿性高カルシウム血症[12, 13])などの疾患をもたらした。
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図34および40は、CD19抗原を認識する抗原認識部分を使用する、本明細書で論じられるものに類似の実験の結果を示す。本明細書で提供されるベクターは、CD19+腫瘍細胞を標的化するMyD88/CD40 CAR構築物(これは、誘導性カスパーゼ−9安全スイッチも組み込む)を構築するために改変され得ることは、理解される。
種々のキメラ抗原レセプター構築物を作製して、抗原への曝露後の形質導入T細胞のサイトカイン生成を比較した。上記キメラ抗原レセプター構築物は全て、CD19に結合される抗原認識領域を有した。図30は、アッセイにおいて使用される種々のレトロウイルス構築物の模式図を提供する。図12は、形質導入効率およびキメラ抗原レセプター発現を比較する。図13は、形質導入されたT細胞がDaudiバーキットリンパ腫細胞に曝された後のIL−2およびIL−6分泌を比較する。図14は、形質導入されたT細胞がRajiバーキットリンパ腫細胞に曝された後のIL−2およびIL−6分泌を比較する別のアッセイ結果を提供する。図15は、CAR改変T細胞との共培養後のCD19+ DaudiおよびRaji腫瘍細胞の排除を示す。
図18および19は、Her2/Neu抗原を認識する抗原認識部分を使用する、本明細書で論じられるものに類似の実験の結果を示す。本明細書で提供されるベクターが、Her2+腫瘍細胞を標的化するMyD88/CD40 CAR構築物(これは、誘導性カスパーゼ−9安全スイッチも組み込む)を構築するように改変され得ることは理解される。
pBP0509−SFG−PSCAscFv.CH2CH3.CD28tm.ζ.MyD88/CD40配列
pBP0521−SFG−CD19scFv.CH2CH3.CD28tm.MyD88/CD40.ζ配列
SFG-Myr.MC.2A.CD19scFv.CD34e.CD8stm.ζ配列
CAR−T細胞においてMyD88/CD40(MC)共刺激の有用性を評価する本明細書で示される実施例は、共刺激ドメイン(例えば、CD28またはOX40のような)の従来の位置において、CAR内にMyD88/CD40ポリペプチドを含めることに焦点を当てた。本実施例では、このMyD88/CD40ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを、CD8膜貫通領域とCD3ζとの間に配置した(図26)。このCARデザイン(MC.ζと称される)は、インビトロ共培養アッセイの間に、有意により高いサイトカイン生成(例えば、IL−2およびIL−6)、増強されたT細胞生存および増殖、ならびに優れた腫瘍殺滅を明らかに示した。しかし、インビボマウス研究は、抗腫瘍活性が共刺激を欠いているCARと比べて増強されるが、CD19+またはHer2+腫瘍に対する長期間の腫瘍コントロールは達成されないことを示した。
プラスミドpBP0813−SFG−iCasp9.2A.CD19.ゼータ.2A.MCは、本技術のキメラ抗原レセプターの一例をコードするポリヌクレオチドを含む;このポリヌクレオチドは、膜標的化領域を含まない。このポリヌクレオチドはまた、誘導性キメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする。
キメラ抗原レセプター(CAR)T細胞での治療の効力は、インビボ養子移入後の抗原曝露に応じたT細胞増殖、持続性、および複数のサイトカインの生成(elaboration)と関連する。MyD88、CD40、またはMyD88/CD40ポリペプチドを含むキメラ刺激分子を、CAR T細胞活性を共刺激するそれらの能力に関してアッセイした。誘導性キメラカスパーゼ−9ポリペプチドも共発現する細胞を、安全スイッチとしてのそれらの有効性に関してアッセイした;誘導するリガンドの投与は、インビボ腫瘍モデルにおいて腫瘍コントロールを喪失することなしに、サイトカインレベルの正常化を生じた。
CD19:5×105 Raji腫瘍細胞を、NSGマウスへとi.v.注射した。3日目に、CD19 CAR改変T細胞を、i.v.注射し、バイオルミネッセンス(BLI)を、IVISイメージングによって1週間に1回を基本に、腫瘍またはT細胞のいずれかに関して測定した。>20%体重減少のマウスを、5mg/kg rimiducidでi.p.処置した。
図38は、Her2 CAR−T細胞におけるMC共刺激のアッセイの結果を提供する。A)iCasp9−Her2.ζ−MC CAR構築物での初代T細胞の形質導入および検出。B)CAR−T細胞とHer2+ SK−BR−3−GFP腫瘍細胞(1:1比)とを混合して48時間後の共培養実験(n=4)からのIL−2生成。CおよびD)培養の10日後の異なるCAR構築物での共培養実験からのT細胞およびSK−BR−3−GFP腫瘍細胞の数。E)培養して10日後のSK−BR−3−GFPに対する共培養アッセイにおいて、CD40のみ、MyD88のみまたはMCでのCAR−T細胞共刺激を比較する腫瘍細胞排除の効力。F)示された共刺激ドメインを有する構築物を使用する共培養アッセイからのIL−2生成。*P値≦0.01。
図39は、種々のHer−2特異的CAR構築物を使用するマウスインビボ効力アッセイの結果を提供する。A)T細胞を、Her2.ζ、Her2.28.ζまたはHer2.ζ−MC CARで形質導入し、NSGマウス(n=5)に移植したルシフェラーゼ発現s.c. Her2+ SK−BR−3腫瘍へと直接注射した。腫瘍細胞のバイオルミネッセンス(BLI)を、IVISによって測定した。腫瘍サイズ(B)を、カリパスによって測定し、生存率(C)を、75日間にわたって計算した。D)T細胞を、その後、CARおよびルシフェラーゼで共形質導入し、NSGマウス(n=5)へと移植したs.c. Her2+ SK−BR−3腫瘍へと直接注射した。E)CAR−T細胞増殖を、IVISイメージングを使用して目的領域ROIによって計算した。F)腫瘍サイズを、カリパス測定値によって計算した。それは、各処置群における個々のマウスを示す。*P値≦0.05。
図40は、種々のCD19特異的CAR構築物を使用するマウスインビボ効力アッセイの結果を提供する。A)NSGマウス(n=5/群)に、Raji−ルシフェラーゼ腫瘍細胞を移植し、次いで、非形質導入(NT)またはiC9−CD19.ζ−MC CAR改変T細胞で3日目に処置した。腫瘍成長を、IVISイメージングによって測定し、全身BLIによって計算した(B)。C)(A)のカプラン・マイアー分析。sCRSの客観的証拠において、rimiducidを投与した(赤いボックス、パネルA)ところ、24時間以内にサイトカインの正常化および腫瘍コントロールを損なうことなく臨床的sCRSの完全な解決がもたらされた(示さず)。
図41は、CD19特異的CAR構築物およびカスパーゼ−9安全スイッチを含むマウスインビボアッセイの結果を提供する。AおよびB)NSGマウス(n=5/群)に、CD19+ Rajiリンパ腫細胞を移植し、5×106 iC9−CD19.ζ−MC/ルシフェラーゼ形質導入T細胞で3日目に処置した。6日後に、マウスを、rimiducidの対数希釈物(0.00005〜5mg/kg)でi.p.処置した。CAR−T細胞のBLIを、rimiducid処置の前、注射後24時間および48時間で評価した。C)血清サイトカインレベルを、rimiducidの投与前(黒線)および投与の24時間後(橙色の線)に、各群から測定した。*P値≦0.01。
これらのアッセイでは、MyD88およびCD40(「MC」)が、CD19+「液性」腫瘍およびHer2+「固形」腫瘍の両方を標的化するCAR改変T細胞において強力な共刺激を提供するように相乗作用することが見出された。このMC共刺激は、標準的な共刺激分子(例えば、CD28)を含むコントロールCARと比べて、増大したT細胞増殖、サイトカイン生成および抗腫瘍効力をインビボで生じた。誘導性キメラカスパーゼ−9ポリペプチドもまた発現する構築物は、高レベルで治療の中止を可能にし、万能で、滴定可能な細胞治療安全スイッチと、MC駆動CAR T細胞とを組み合わせ、インビボ腫瘍モデルにおいて腫瘍コントロールの喪失なしに、サイトカインレベルのrimiducid依存性正常化を可能にした。
例えば、細胞質形態(MC)または膜標的化形態(myr−MC)のいずれかにあるキメラ刺激分子MyD88/CD40(MC)のシグナル伝達活性および物理的発現を比較し、多量体化リガンド結合FKBP12領域を含む誘導性MyD88/CD40分子とも比較した。MCの高レベル発現は、キメラ抗原レセプター(CAR)をコードするDNA配列に対して5’側であろうと3’側であろうと、実質的な基底活性を生成するために十分であった。膜局在は、シグナル伝達活性を強力に誘導したが、定常状態のMCタンパク質発現を減少させ得る。MCの3’側でのFKBP12融合物は、基底MC活性を減弱し、FKBPリガンドとの二量体化は、iMC発現を増大させることなく、シグナル伝達活性を強力に誘導した。
DNA構築物のまとめ オペロンとしてCARおよび/またはMCおよび/または誘導性カスパーゼ−9(iC9)をコードする遺伝子を形質導入し得るレトロウイルスを生成するために使用される組換えDNAベクターは、図48および49に模式的に概説される。各構築物は、pSFGレトロウイルスベクター骨格を使用した:
この構築物は、短い5’ MLEMLEリンカー(配列番号342)を有するヒトFKBP12のF36V変異体に対して3’側にあるSGGGSGリンカー(配列番号119)と融合されたヒトカスパーゼ−9をコードする。Thosea asigna ウイルス由来のT2A共翻訳切断配列は、ヒンジおよび膜貫通ドメインと融合しその細胞質ドメイン上でT細胞レセプターCD3複合体のζ鎖とさらに融合した、CD19を標的化する一本鎖可変フラグメント(scFv)を含むキメラ抗原レセプター(CAR)から、誘導性キメラカスパーゼポリペプチド(iC9)をコードする配列を分断する。ブタテシオウイルス−1由来のP2A共翻訳切断配列は、CARを、ヒトMyD88/CD40(MC)融合タンパク質から分断する。
HEK−293T細胞を、上記で概説されるSFGベースの組換えレトロウイルス構築物で、組換えRNAをレトロウイルスとしてパッケージするために必要なgag−polおよびenv遺伝子をコードするヘルパープラスミドpBP0049およびpBP0175とともに形質導入した。これらレトロウイルスを、CD3/CD28活性化ドナー由来初代T細胞へと形質導入した。形質導入T細胞からのサイトカイン生成を、次いで、構築物中のMC対立遺伝子(存在する場合には)によって付与された共刺激シグナル伝達活性の程度を評価するために使用した。
この実施例は、MCキメラ共刺激分子が有意なサイトカイン生成を支援することを実証するデータを提供する。BP1152(MyrMC−CAR)で形質導入したT細胞からの高いサイトカイン放出は、高レベルの定常状態タンパク質発現と相関しなかった。ミリステートタグ化を介した膜への局在は、MCシグナル伝達を大いに増強するようである。完全なMyr−MC発現は、抽出物調製の間に膜タンパク質の不完全な可溶化に起因して、観察されない可能性がある。MyD88およびCD40は、形質膜に天然に位置しているので、それらの分解をコントロールする因子はまた、膜に局在し、低下したMyr−MC発現をもたらし得る。この低下した、Myr−MCの観察された発現はまた、形質導入された集団内の個々の細胞に対して選択される高いMC活性に起因し得る。pBP1152(MyrMC−CAR)は、減少した、観察された形質導入効率および全体的な細胞生存率を有した。形質導入された細胞は、BP1151(MC−CAR)で形質導入された細胞より、その同じCARの発現が低かった。これはおそらく、BP1152(MyrMC−CAR)においてより低い組換え遺伝子発現の選択を示す。高い発現に対する提唱される選択の原は、T細胞の活性化誘導細胞死(AICD)であり得る。高レベルMCシグナル伝達は、おそらくフィードバックし得、MCタンパク質発現を負に調節し得る。Myr−MCは、高活性および低タンパク質発現を有する。さらに、BP0774によってコードされるiMCで形質導入されるT細胞は、MC活性が遙かに高いにも拘わらず、rimiducid処理での可溶性iMCの発現を低下させた。非局在化iMC 対 MCにおける「基底」MC活性の減少は、BP1151(MC−CAR)形質導入細胞およびBP0774形質導入細胞を比較する場合に観察されるタンパク質発現のより穏やかな減少より大きいようであった。FKBP12融合物は、自発的MC活性に負に影響を及ぼすようであった。
本明細書以下で、上記技術のある特定の実施形態の例が提供される。
該被験体において同定された状態または疾患の有無またはステージに基づいて、実施形態28〜35のいずれか1つに記載の改変された細胞を投与する指示、該改変された細胞のその後の投与量を維持する指示、または該患者に投与される該改変された細胞のその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに包含する、実施形態A44〜A67のいずれか1つに記載の方法。
キメラ抗原レセプターをコードする第1のポリヌクレオチドであって、ここで該キメラ抗原レセプターは、(i)膜貫通領域;(ii)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;(iv)T細胞活性化分子;および(v)抗原認識部分を含む、第1のポリヌクレオチド;ならびに
多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)核酸であって、ここで該核酸は、キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドを含み、ここで該キメラ刺激分子は、(i)膜標的化領域;(ii)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、核酸;ならびに
b)キメラ抗原レセプター。
a)核酸であって、ここで該核酸は、キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドを含み、ここで該キメラ刺激分子は、(i)膜標的化領域;および(ii)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチドを含む、核酸;ならびに
b)キメラ抗原レセプター。
a)核酸であって、ここで該核酸は、キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドを含み、ここで該キメラ刺激分子は、(i)膜標的化領域;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、核酸;ならびに
b)キメラ抗原レセプター。
該被験体において同定された状態または疾患の有無またはステージに基づいて、実施形態B31〜B36のいずれか1つに記載の改変された細胞を投与する指示、該改変された細胞のその後の投与量を維持する指示、または該患者に投与される該改変された細胞のその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに包含する、実施形態B37〜B63のいずれか1つに記載の方法。
キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドであって、ここで該キメラ刺激分子は、(i)膜標的化領域;(ii)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、第1のポリヌクレオチド;ならびに
多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含む、核酸。
(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含み、ただし、該キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、核酸。
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含み、ただし該キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含み、ただし該キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含み、ただし該キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド。
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含み、ただし該キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプター、T細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプター、またはキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;ならびに
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド。
該被験体において同定された状態または疾患の有無またはステージに基づいて、実施形態D1〜D38のいずれか1つに記載の改変された細胞を投与する指示、該改変された細胞のその後の投与量を維持する指示、または該患者に投与される該改変された細胞のその後の投与量を調整する指示を伝える工程
をさらに包含する、実施形態E1〜E25のいずれか1つに記載の方法。
* * *
Claims (66)
- キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含み、該キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 細胞質キメラ刺激分子をコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域
を含み、該細胞質キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチドを含む核酸であって、ここで、該キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該細胞質キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドの作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域
を含む、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;を含む、プロモーター;ならびに
b)T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該細胞質キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域、
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該細胞質キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;および
(iii)膜標的化領域、
を含む、プロモーター;
b)キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、もしくはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;ならびに
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 以下:
a)細胞質キメラ刺激分子をコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該細胞質キメラ刺激分子は、
(i)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;および
(ii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、プロモーター;ならびに
b)キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、もしくはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードする第2のポリヌクレオチド;ならびに
c)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第3のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該細胞質キメラ刺激分子が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 前記キメラ刺激分子は、膜標的化領域を含まない、請求項2、4、6、8、または10のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターを含む、請求項3〜10のいずれか1項に記載の核酸、または、請求項4、6、8もしくは10を引用する場合の請求項11に記載の核酸。
- 前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターおよび前記第3のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第3のプロモーターを含む、請求項9もしくは10に記載の核酸、または、請求項10を引用する場合の請求項11に記載の核酸。
- 1つのプロモーターは、前記第1および第2のポリヌクレオチドの両方に作動可能に連結される、請求項3〜10、12および13のいずれか1項に記載の核酸、または、請求項4、6、8もしくは10を引用する場合の請求項11に記載の核酸。
- 1つのプロモーターは、前記第1、第2、および第3のポリヌクレオチドに作動可能に連結される、請求項9もしくは10に記載の核酸、または、請求項10を引用する場合の請求項11に記載の核酸。
- 前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドとの間に、リンカーポリペプチドをコードするリンカーポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該第1のポリヌクレオチドおよび該第2のポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、請求項14に記載の核酸。
- 3つのポリヌクレオチドの間に、リンカーポリペプチドをコードするポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該3つのポリヌクレオチドは、前記第1、第2、および第3のポリヌクレオチドを含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該3つのポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、請求項15に記載の核酸。
- 前記リンカーポリペプチドは、2Aポリペプチドである、請求項16または17のいずれか1項に記載の核酸。
- キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターを含む核酸であって、ここで該キメラ抗原レセプターは、(i)膜貫通領域;(ii)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;(iv)T細胞活性化分子;および(v)抗原認識部分を含み、該MyD88/CD40は、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。
- 前記キメラ抗原レセプターは、ストークポリペプチドをさらに含む、請求項19に記載の核酸。
- 以下:
a)キメラ抗原レセプターをコードする第1のポリヌクレオチドに作動可能に連結されたプロモーターであって、ここで該キメラ抗原レセプターは、
(i)膜貫通領域;
(ii)MyD88ポリペプチドもしくはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチド;
(iii)CD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域;
(iv)T細胞活性化分子;および
(v)抗原認識部分
を含む、プロモーター;ならびに
b)多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含むキメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードする第2のポリヌクレオチド
を含む核酸であって、ここで、該MyD88/CD40が、多量体リガンド結合領域を含まない、核酸。 - 1つのプロモーターは、前記第1および第2のポリヌクレオチドの両方に作動可能に連結される、請求項21に記載の核酸。
- 前記第1のポリヌクレオチドと前記第2のポリヌクレオチドとの間に、リンカーポリペプチドをコードするリンカーポリヌクレオチドをさらに含み、ここで該リンカーポリペプチドは、翻訳中または翻訳後に、該第1および第2のポリヌクレオチドの翻訳産物を分断する、請求項22に記載の核酸。
- 前記リンカーポリペプチドは、2Aポリペプチドである、請求項23に記載の核酸。
- 前記第2のポリヌクレオチドに作動可能に連結された第2のプロモーターをさらに含む、請求項21に記載の核酸。
- 前記膜標的化領域は、ミリストイル化領域、パルミトイル化領域、プレニル化領域、およびレセプターの膜貫通配列からなる群より選択される、請求項1、3、5、7、9、または請求項3、5、7もしくは9のいずれか1項を引用する場合の請求項12〜18のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記膜標的化領域は、ミリストイル化領域である、請求項1、3、5、7、9、または請求項3、5、7もしくは9のいずれか1項を引用する場合の請求項12〜18のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記切断型MyD88ポリペプチドは、配列番号147のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、請求項1〜27のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記MyD88ポリペプチドは、配列番号282のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、請求項1〜28のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記細胞質CD40ポリペプチドは、配列番号149のアミノ酸配列、またはその機能的フラグメントを有する、請求項1〜29のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記核酸は、ウイルスベクター内に含まれる、請求項1〜30のいずれか1項に記載の核酸。
- 前記ウイルスベクターは、レトロウイルスベクター、マウス白血病ウイルスベクター、SFGベクター、アデノウイルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター、ヘルペスウイルスベクター、およびワクシニアウイルスベクターからなる群より選択される、請求項31に記載の核酸。
- 前記核酸は、プラスミド内に含まれる、請求項1〜30のいずれか1項に記載の核酸。
- 請求項1〜18、または22〜33のいずれか1項に記載の核酸によってコードされる、キメラ刺激分子ポリペプチド。
- 請求項19〜25または28〜33のいずれか1項に記載の、MyD88ポリペプチドまたはTIRドメインを欠いている切断型MyD88ポリペプチドおよびCD40細胞外ドメインを欠いているCD40細胞質ポリペプチド領域を含む、キメラ抗原レセプター。
- 請求項1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入された、改変された細胞。
- 前記キメラ刺激分子は、構成的に発現される、請求項1〜18のいずれか1項を引用する場合の請求項36に記載の改変された細胞。
- 前記キメラ刺激分子は、構成的に活性である、請求項1〜18のいずれか1項を引用する場合の請求項36に記載の改変された細胞、または請求項37に記載の改変された細胞。
- a)前記細胞は、請求項1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、キメラ抗原レセプターをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含む、
請求項36〜38のいずれか1項に記載の改変された細胞。 - a)前記細胞は、請求項1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、T細胞レセプターまたはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含む、
請求項36〜38のいずれか1項に記載の改変された細胞。 - a)前記細胞は、請求項1〜33のいずれか1項に記載の核酸でトランスフェクトまたは形質導入され、ここで該核酸は、キメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードしない;および
b)前記改変された細胞は、キメラカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む核酸をさらに含み、ここで該キメラカスパーゼ−9ポリペプチドは、多量体リガンド結合領域およびカスパーゼ−9ポリペプチドを含む、
請求項36〜40のいずれか1項に記載の改変された細胞。 - 前記改変された細胞は、T細胞、腫瘍浸潤リンパ球、NK−T細胞、TCR発現細胞、もしくはNK細胞である、請求項36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記細胞は、T細胞である、請求項36〜41のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該カスパーゼ−9ポリペプチドは、配列番号153のアミノ酸配列を含む、請求項36〜43のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該カスパーゼ−9ポリペプチドは、配列番号153のアミノ酸配列を含み、表1中のカスパーゼバリアントからなる群より選択されるアミノ酸置換をさらに含む、請求項36〜43のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記カスパーゼ−9ポリペプチドは、N405Qの置換されたアミノ酸残基を有する、請求項45に記載の改変された細胞。
- CARDドメインを欠いているカスパーゼ−9ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで前記多量体リガンド結合領域は、FKBP、シクロフィリンレセプター、ステロイドレセプター、テトラサイクリンレセプター、重鎖抗体サブユニット、軽鎖抗体サブユニット、可動性リンカードメインによって分断された重鎖可変領域と軽鎖可変領域とをタンデムで含む一本鎖抗体、およびこれらの変異配列からなる群より選択されるリガンド結合領域である、請求項36〜46のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記リガンド結合領域は、FKBP12領域である、請求項47に記載の改変された細胞。
- 前記FKBP12領域は、FKBP12v36領域である、請求項48に記載の改変された細胞。
- 前記FKBP領域は、Fv’Fvlsである、請求項48に記載の改変された細胞。
- 前記リガンドは、FK506二量体または二量体FK506アナログリガンドである、請求項47〜50のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記リガンドは、AP1903またはAP20187である、請求項47〜50のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- キメラ抗原レセプターをコードするポリヌクレオチド配列を含み、ここで該キメラ抗原レセプターは、(i)膜貫通領域;(ii)T細胞活性化分子;および(iii)抗原認識部分を含む、請求項36〜52のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記キメラ抗原レセプターは、CD28、OX40、および4−1BBからなる群より選択される共刺激分子をさらに含む、請求項53に記載の改変された細胞。
- 前記T細胞活性化分子は、ITAMを含みシグナル1を与える分子、CD3ζポリペプチド、およびFcイプシロンレセプターガンマ(FcεR1γ)サブユニットポリペプチドからなる群より選択される、請求項53または54のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記抗原認識部分は、腫瘍細胞上の抗原に結合する、請求項53〜55のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記抗原認識部分は、過剰増殖性疾患に関与する細胞上の抗原に、またはウイルス抗原もしくは細菌抗原に結合する、請求項53〜55のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記抗原認識部分は、PSMA、PSCA、MUC1、CD19、ROR1、メソテリン、GD2、CD123、MUC16、Her2/Neu、CD20、CD30、PRAME、NY−ESO−1、およびEGFRvIIIからなる群より選択される抗原に結合する、請求項53〜55のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記抗原認識部分は、一本鎖可変フラグメントである、請求項53〜58のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記膜貫通領域は、CD28膜貫通領域またはCD8膜貫通領域である、請求項53〜59のいずれか1項に記載の改変された細胞。
- 前記キメラ抗原レセプターは、CD8ストーク領域をさらに含む、請求項60に記載の改変された細胞。
- 被験体においてT細胞媒介性免疫応答を刺激するための組成物であって、該組成物は、請求項36〜61のいずれか1項に記載の改変された細胞を含む、組成物。
- 被験体において腫瘍のサイズを減少させるための組成物であって、該組成物は、請求項36〜61のいずれか1項に記載の改変された細胞を含み、ここで該細胞は、該腫瘍上の抗原に結合する抗原認識部分を含む、キメラ抗原レセプター、T細胞レセプター、またはT細胞レセプターベースのキメラ抗原レセプターを含む、組成物。
- 細胞において、キメラ刺激分子またはMyD88ポリペプチドおよびCD40細胞質ポリペプチドを含むキメラ抗原レセプターを発現させるための、請求項1〜33のいずれか1項に記載の核酸を含む組成物であって、該組成物は、該核酸が該細胞の中に組み込まれる条件下で該細胞と接触させられ、それによって該細胞が、該組み込まれた核酸から該キメラ刺激分子または該キメラ抗原レセプターを発現することを特徴とする、組成物。
- 前記核酸は、前記細胞とエキソビボで接触させられる、請求項64に記載の組成物。
- 前記核酸は、前記細胞とインビボで接触させられる、請求項64に記載の組成物。
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