JP6647315B2 - 組み合わせ免疫療法のための方法および組成物 - Google Patents
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Description
この出願は、2015年1月9日に出願された米国仮出願第62/101,969号および2015年4月20日に出願された米国仮出願第62/150,236号に対する優先権(これは、それらの全体が参考として本明細書に援用される)を主張する。
この出願は、2013年3月15日に出願されたPCT出願第PCT/US2013/032688号(この内容は、その全体が参考として本明細書に援用される)に関する。
この発明は、National Cancer Institute(NCI)によって付与された契約第HHSN 261200900059C号;およびNCIによって付与された契約第HHSN 261201100097C号;NCIによって付与された助成金第1R43CA134063号;NCIによって付与された助成金第2R44CA134063号;NCIによって付与された助成金第1R43CA186357号;National Institute of Dental and Craniofacial Research(NIDCR)によって付与された助成金第1R43DE021973号;およびNIDCRによって付与された助成金第2R44DE021973号の下、政府の支援を受けてなされた。政府は、本発明に一定の権利を有し得る。
本明細書において言及されている全ての刊行物、特許および特許出願は、個々の刊行物、特許、または特許出願が、具体的にかつ個別に参照により組み込まれることが示されたものと同じく参照により本明細書に組み込まれる。
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
MUC1−C抗原をコードする配列を含む組換え型複製欠損性ウイルスベクターを含む組成物であって、前記MUC1−C抗原をコードする配列が、配列番号5または配列番号6に対して少なくとも80%の配列同一性を有する、組成物。
(項目2)
前記MUC1−C抗原が、配列番号9に対して少なくとも80%の配列同一性を有する配列を含む、項目1に記載の組成物。
(項目3)
ブラキュリ抗原をコードする配列を含む組換え型複製欠損性ウイルスベクターを含む組成物であって、前記ブラキュリ抗原をコードする配列が、配列番号7または配列番号8に対して少なくとも80%の配列同一性を有する、組成物。
(項目4)
前記ウイルスベクターを投与されたヒトにおいて前記抗原または前記抗原を発現する細胞に対する免疫応答が誘導される、項目1から3までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目5)
MUC1−C抗原、ブラキュリ抗原、およびCEA抗原からなる群より選択される少なくとも2つの抗原をコードする配列を含む組換え型複製欠損性ウイルスベクターを含む組成物。
(項目6)
前記ウイルスベクターを投与されたヒトにおいて前記少なくとも2つの抗原または前記少なくとも2つの抗原を発現する細胞に対する免疫応答が誘導される、項目5に記載の組成物。
(項目7)
前記免疫応答が、前記抗原に対する抗体の産生を含む、項目1から6までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目8)
前記免疫応答が、細胞媒介性免疫(CMI)を含む、項目1から7までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目9)
前記MUC1−C抗原をコードする配列が、配列番号5または配列番号6に対して少なくとも80%の配列同一性を有する、項目1、2および5から8までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目10)
前記ブラキュリ抗原をコードする配列が、配列番号7または配列番号8に対して少なくとも80%の配列同一性を有する、項目3から9までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目11)
前記CEA抗原をコードする配列が、配列番号1、配列番号2、または配列番号3に対して少なくとも80%の配列同一性を有する、項目5から10までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目12)
前記抗原が、25、15、10、5、またはそれ未満のアミノ酸の改変を含む、項目1から11までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目13)
前記抗原が、1アミノ酸の改変を含む、項目12に記載の組成物。
(項目14)
前記組換え型ウイルスベクターが、レトロウイルス、レンチウイルス、サイトメガロウイルス、センダイウイルス、HPVウイルス、およびアデノウイルスからなる群より選択される、項目1から13までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目15)
前記組換え型ウイルスベクターが、複製欠損性アデノウイルスベクターを含む、項目1から14までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目16)
前記組換え型ウイルスベクターが、複製欠損性アデノウイルス5型ベクターを含む、項目1から15までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目17)
前記複製欠損性アデノウイルスベクターが、E2b遺伝子領域の欠失を含む、項目14から16までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目18)
前記複製欠損性アデノウイルスベクターが、E1遺伝子領域の欠失を含む、項目14から17までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目19)
前記複製欠損性アデノウイルスベクターが、E3遺伝子領域の欠失を含む、項目14から18までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目20)
前記複製欠損性アデノウイルスベクターが、E4遺伝子領域の欠失を含む、項目14から19までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目21)
前記組換え型ウイルスベクターが、トランスフェクトされた細胞において前記抗原の過剰発現をもたらす、項目1から20までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目22)
前記組換え型ウイルスベクターが、ヒトにおいて前記抗原を発現する細胞に対して基底の少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、20倍、または25倍の特異的な免疫応答を誘導する、項目1から21までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目23)
前記ヒトが、50超、75超、100超、125超、150超、160超、175超、または200超のAd5中和抗体力価の逆数を有する、項目22に記載の組成物。
(項目24)
前記ヒトが、250超、500超、750超、1000超、1500超、2000超、2500超、3000超、3500超、4000超、4500超、または4767超のAd5中和抗体力価の逆数を有する、項目22に記載の組成物。
(項目25)
前記免疫応答が、抗原特異的抗体応答として測定される、項目17に記載の組成物。
(項目26)
前記免疫応答が、抗原特異的細胞媒介性免疫(CMI)として測定される、項目22に記載の組成物。
(項目27)
前記免疫応答が、抗原特異的IFN−γ分泌として測定される、項目22に記載の組成物。
(項目28)
前記免疫応答が、抗原特異的IL−2分泌として測定される、項目22に記載の組成物。
(項目29)
前記抗原に対する免疫応答が、ELISpotアッセイによって測定される、項目24に記載の組成物。
(項目30)
前記抗原特異的CMIが、末梢血単核細胞(PBMC)10 6 個当たり、25超、50超、75超、100超、150超、200超、250超、または300超のIFN−γスポット形成細胞(SFC)である、項目29に記載の組成物。
(項目31)
前記免疫応答が、CAP−1でパルスした抗原提示細胞、腫瘍細胞株由来または自己腫瘍由来の、同種抗原を発現する細胞のT細胞溶解によって測定される、項目22に記載の組成物。
(項目32)
免疫原性成分をさらに含む、項目1から31までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目33)
前記免疫原性成分が、IFN−γ、TNFα、IL−2、IL−8、IL−12、IL−18、IL−7、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−9、IL−10、およびIL−13の群より選択されるサイトカインを含む、項目32に記載の組成物。
(項目34)
前記免疫原性成分が、IL−7、IL−7をコードする核酸、IL−7に対して実質的な同一性を有するタンパク質、およびIL−7に対して実質的な同一性を有するタンパク質をコードする核酸からなる群より選択される、項目32に記載の組成物。
(項目35)
前記CEA抗原が、配列番号3の610位に対応する位置におけるアスパラギン酸の置換を含む改変を含む、項目5から34までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目36)
免疫経路チェックポイントモジュレーターを含む分子組成物をさらに含む、項目1から35までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目37)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、免疫応答を活性化または強化する、項目36に記載の組成物。
(項目38)
前記免疫経路チェックポイントが、免疫応答を阻害する、項目36または37に記載の組成物。
(項目39)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、PD1、PDL1、PDL2、CD28、CD80、CD86、CTLA4、B7RP1、ICOS、B7RPI、B7−H3、B7−H4、BTLA、HVEM、KIR、TCR、LAG3、CD137、CD137L、OX40、OX40L、CD27、CD70、CD40、CD40L、TIM3、GAL9、ADORA、CD276、VTCN1、IDO1、KIR3DL1、HAVCR2、VISTA、およびCD244からなる群より選択される内在性免疫経路チェックポイントタンパク質またはその断片を標的とする、項目36から38までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目40)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、PD1タンパク質を標的とする、項目36から39までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目41)
前記分子組成物が、siRNA、アンチセンス、小分子、模倣物、リガンドの組換え型、受容体の組換え型、抗体、またはこれらの組み合わせを含む、項目36から40までのいずれか一項に記載の組成物。
(項目42)
項目1から41までのいずれか一項に記載の組成物の投与についてヒトを選択する方法であって、
(a)前記ヒトのHLA亜型を決定するステップと、
(b)前記HLA亜型が予め選択されたHLA亜型のサブグループのうちの1つであると決定された場合に、前記ヒトに前記組成物を投与するステップと
を含む、方法。
(項目43)
前記予め選択されたHLA亜型のサブグループが、HLA−A2、HLA−A3、およびHLA−A24のうちの1つまたは複数を含む、項目42に記載の方法。
(項目44)
がんまたは感染症についてヒトを処置する方法であって、項目1から41までのいずれか一項に記載の組換え型ウイルスベクターを投与するステップを含む、方法。
(項目45)
ヒトにおいてMUC1−C、ブラキュリ、CEA、またはそれらの任意の組み合わせに対する免疫応答を生じさせる方法であって、前記ヒトに項目1から41までのいずれか一項に記載の組成物を投与するステップを含む、方法。
(項目46)
前記投与するステップを少なくとも1回繰り返す、項目42から45までのいずれか一項に記載の方法。
(項目47)
前記投与するステップを前回の投与するステップの約2週間後、約3週間後、約4週間後、約5週間後、または約6週間後に繰り返す、項目46に記載の方法。
(項目48)
前記投与するステップを前回の投与するステップの約2カ月後、約3カ月後、約4カ月後、約5カ月後、または約6カ月後に繰り返す、項目46に記載の方法。
(項目49)
前記投与するステップを2回繰り返す、項目46に記載の方法。
(項目50)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、MUC1−C抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計3回、約3週間の間隔で投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記MUC1−C抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計3回、約3カ月の間隔で投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目51)
(a)処置の第1の相と第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、ブラキュリ抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計3回、約3週間の間隔で投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記ブラキュリ抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計3回、約3カ月の間隔で投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目52)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、MUC1−C抗原、ブラキュリ抗原、およびCEA抗原からなる群より選択される少なくとも2つの抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計3回、約3週間の間隔で投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記少なくとも2つの抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計3回、約3カ月の間隔で投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目53)
前記第2の相を前記第1の相の終了から約3カ月後に開始する、項目50から52までのいずれか一項に記載の方法。
(項目54)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、ブラキュリ抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計n回投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記ブラキュリ抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計m回投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目55)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、MUC1−C抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計n回投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記MUC1−C抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計m回投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目56)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、MUC1−C抗原、ブラキュリ抗原、およびCEA抗原からなる群より選択される少なくとも2つの抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計n回投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいて前記少なくとも2つの抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する前記少なくとも2つの抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計m回投与するステップと
を含む、処置方法。
(項目57)
nが1より大きい、項目54から56までのいずれか一項に記載の方法。
(項目58)
nが3である、項目57に記載の方法。
(項目59)
mが1より大きい、項目54から58までのいずれか一項に記載の方法。
(項目60)
mが3である、項目59に記載の方法。
(項目61)
前記第1の相が、少なくとも2週間、3週間、4週間、5週間、6週間、7週間、または8週間である、項目54から60までのいずれか一項に記載の方法。
(項目62)
前記第2の相が、少なくとも2カ月、3カ月、4カ月、5カ月、6カ月、7カ月、または8カ月である、項目54から61までのいずれか一項に記載の方法。
(項目63)
前記第2の相を、第1の相の終了から3〜16週間後に開始する、項目54から62までのいずれか一項に記載の方法。
(項目64)
前記第1の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が少なくとも18日間離れている、項目54から63までのいずれか一項に記載の方法。
(項目65)
前記第1の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が約21日間離れている、項目54から64までのいずれか一項に記載の方法。
(項目66)
前記第1の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が最大24日間離れている、項目54から65までのいずれか一項に記載の方法。
(項目67)
前記第2の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が少なくとも10週間離れている、項目54から66までのいずれか一項に記載の方法。
(項目68)
前記第2の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が約13週間離れている、項目54から67までのいずれか一項に記載の方法。
(項目69)
前記第2の相において、前記複製欠損性アデノウイルスの2回の投与が最大16週間離れている、項目54から68までのいずれか一項に記載の方法。
(項目70)
免疫経路チェックポイントモジュレーターを含む分子組成物を投与するステップをさらに含む、項目44から69までのいずれか一項に記載の方法。
(項目71)
(a)処置の第1の相と処置の第2の相を選択するステップと、
(b)前記第1の相の間に、ヒトに、ヒトにおいてMUC1−C、ブラキュリ、またはCEA抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導する抗原をコードする第1の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第1の組成物を合計n回投与するステップと、
(c)前記第2の相の間に、前記ヒトに、ヒトにおいてMUC1−C、ブラキュリ、またはCEA抗原を発現する細胞に指向される免疫応答を誘導することができる抗原をコードする第2の複製欠損性アデノウイルスベクターを含む第2の組成物を合計m回投与するステップと
を含む、処置方法であって、
免疫経路チェックポイントモジュレーターを含む分子組成物を前記第1の相、前記第2の相、またはその両方の間に投与する、
処置方法。
(項目72)
処置を必要とする被験体を処置するための方法であって、前記被験体に、
(a)(i)MUC1−C抗原、(ii)ブラキュリ抗原、または(iii)MUC1−C抗原、ブラキュリ抗原、およびCEA抗原からなる群より選択される少なくとも2つの抗原をコードする組換え型複製欠損性アデノウイルスベクターと、
(b)免疫経路チェックポイントモジュレーターを含む分子組成物と
を投与し、それにより、前記被験体において免疫応答を生じさせるステップを含む、方法。
(項目73)
(a)および(b)を逐次に投与する、項目72に記載の方法。
(項目74)
(a)および(b)を同時に投与する、項目72に記載の方法。
(項目75)
(a)および(b)を、1カ月の間隔を空けて投与する、項目72に記載の方法。
(項目76)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、免疫応答を活性化または強化する、項目70から75までのいずれか一項に記載の方法。
(項目77)
前記免疫経路チェックポイントが、免疫応答を阻害する、項目70から76までのいずれか一項に記載の方法。
(項目78)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、PD1、PDL1、PDL2、CD28、CD80、CD86、CTLA4、B7RP1、ICOS、B7RPI、B7−H3、B7−H4、BTLA、HVEM、KIR、TCR、LAG3、CD137、CD137L、OX40、OX40L、CD27、CD70、CD40、CD40L、TIM3、GAL9、ADORA、CD276、VTCN1、IDO1、KIR3DL1、HAVCR2、VISTA、およびCD244からなる群より選択される内在性免疫経路チェックポイントタンパク質またはその断片を標的とする、項目70から77までのいずれか一項に記載の方法。
(項目79)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、PD1タンパク質を標的とする、項目70から78までのいずれか一項に記載の方法。
(項目80)
前記分子組成物が、siRNA、アンチセンス、小分子、模倣物、リガンドの組換え型、受容体の組換え型、抗体、またはこれらの組み合わせを含む、項目70から79までのいずれか一項に記載の方法。
(項目81)
前記免疫応答が少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、20倍、または25倍に増大する、項目45から80までのいずれか一項に記載の方法。
(項目82)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターと前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが同じものである、項目50から80までのいずれか一項に記載の方法。
(項目83)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターが、複製欠損性アデノウイルス5型ベクターを含む、項目50から82までのいずれか一項に記載の方法。
(項目84)
前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、複製欠損性アデノウイルス5型ベクターを含む、項目50から83までのいずれか一項に記載の方法。
(項目85)
前記ヒトが、血清型HLA−A2、HLA−A3、またはHLA−A24のヒト白血球抗原を発現する、項目42から84までのいずれか一項に記載の方法。
(項目86)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E2b遺伝子領域の欠失を含む、項目50から85までのいずれか一項に記載の方法。
(項目87)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E1遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目86に記載の方法。
(項目88)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E3遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目86または87のいずれかに記載の方法。
(項目89)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E4遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目86から88までのいずれか一項に記載の方法。
(項目90)
前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E2b遺伝子領域の欠失を含む、項目50から89までのいずれか一項に記載の方法。
(項目91)
前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E1遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目90に記載の方法。
(項目92)
前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E3遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目90または91に記載の方法。
(項目93)
前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、E4遺伝子領域の欠失をさらに含む、項目90から92までのいずれか一項に記載の方法。
(項目94)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、前記組換え型核酸ベクターを含むウイルス粒子を少なくとも1.0×10 11 個、2.0×10 11 個、3.0×10 11 個、3.5×10 11 個、4.0×10 11 個、4.5×10 11 個、4.8×10 11 個、4.9×10 11 個、4.95×10 11 個、または4.99×10 11 個含む、項目50から93までのいずれか一項に記載の方法。
(項目95)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を最大7.0×10 11 個、6.5×10 11 個、6.0×10 11 個、5.5×10 11 個、5.2×10 11 個、5.1×10 11 個、5.05×10 11 個、または5.01×10 11 個含む、項目50から94までのいずれか一項に記載の方法。
(項目96)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を1.0〜7.0×10 11 個または1.0〜5.5×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目97)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を4.5〜5.5×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目98)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を4.8〜5.2×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目99)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を4.9〜5.1×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目100)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を4.95〜5.05×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目101)
前記第1の組成物、前記第2の組成物、またはその両方が、ウイルス粒子を4.99〜5.01×10 11 個含む、項目94または95に記載の方法。
(項目102)
前記第1の相が、少なくとも2週間、3週間、4週間、5週間、6週間、7週間、または8週間である、項目50から101までのいずれか一項に記載の方法。
(項目103)
前記第2の相が、少なくとも2カ月、3カ月、4カ月、5カ月、6カ月、7カ月、または8カ月である、項目50から102までのいずれか一項に記載の方法。
(項目104)
前記免疫応答が、抗原特異的抗体応答として測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目105)
前記免疫応答が、抗原特異的細胞媒介性免疫(CMI)として測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目106)
前記免疫応答が、抗原特異的IFN−γ分泌として測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目107)
前記免疫応答が、抗原特異的IL−2分泌として測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目108)
前記抗原に対する免疫応答が、ELISpotアッセイによって測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目109)
前記抗原特異的CMIが、末梢血単核細胞(PBMC)10 6 個当たり、25超、50超、75超、100超、150超、200超、250超、または300超のIFN−γスポット形成細胞(SFC)である、項目108に記載の方法。
(項目110)
前記免疫応答が、CAP−1でパルスした抗原提示細胞、腫瘍細胞株由来または自己腫瘍由来の、同種抗原を発現する細胞のT細胞溶解によって測定される、項目45から103までのいずれか一項に記載の方法。
(項目111)
第1の複製欠損性アデノウイルスまたは第2の複製欠損性アデノウイルスが前記ヒトにおいて樹状細胞に感染し、感染した前記樹状細胞が前記抗原を提示し、それにより、前記免疫応答が誘導される、項目45から110までのいずれか一項に記載の方法。
(項目112)
前記投与するステップが、皮下(sc)投与を含む、項目42から111までのいずれか一項に記載の方法。
(項目113)
前記ヒトが、前記投与するステップの前に、50超、75超、100超、125超、150超、160超、175超、200超、225超、250超、275超、または300超のAd5中和抗体力価の逆数を有する、項目42から112までのいずれか一項に記載の方法。
(項目114)
前記ヒトが、250超、500超、750超、1000超、1500超、2000超、2500超、3000超、3500超、4000超、4500超、または4767超のAd5中和抗体力価の逆数を有する、項目42から113までのいずれか一項に記載の方法。
(項目115)
前記ヒトが、ステロイド、コルチコステロイド、および免疫抑制剤のいずれか1つによる処置を同時に受けていない、項目42から114までのいずれか一項に記載の方法。
(項目116)
前記ヒトが、自己免疫疾患を有さない、項目42から115までのいずれか一項に記載の方法。
(項目117)
前記ヒトが、炎症性腸疾患、全身性エリテマトーデス、強直性脊椎炎、強皮症、多発性硬化症、ウイルス性肝炎、またはHIVを有さない、項目42から116までのいずれか一項に記載の方法。
(項目118)
前記ヒトが、感染症を有するまたは今後有する可能性がある、項目42から117までのいずれか一項に記載の方法。
(項目119)
前記ヒトが、自己免疫関連甲状腺疾患または白斑を有する、項目42から118までのいずれか一項に記載の方法。
(項目120)
前記ヒトが、増殖性疾患であるがんを有するまたは今後有する可能性がある、項目42から119までのいずれか一項に記載の方法。
(項目121)
前記ヒトが、結腸直腸腺癌、転移性結腸直腸がん、進行MUC1−C、ブラキュリ、またはCEA発現結腸直腸がん、乳がん、肺がん、膀胱がん、または膵がんを有する、項目42から120までのいずれか一項に記載の方法。
(項目122)
前記ヒトが、少なくとも1部位、2部位、または3部位の転移性疾患を有する、項目42から121までのいずれか一項に記載の方法。
(項目123)
前記ヒトが、MUC1−C、ブラキュリ、またはCEAを過剰発現する細胞を含む、項目42から122までのいずれか一項に記載の方法。
(項目124)
MUC1−C、ブラキュリ、またはCEAを過剰発現する前記細胞が、MUC1−C、ブラキュリ、またはCEAを非がん細胞におけるベースラインのMUC1−C、ブラキュリ、またはCEAの発現の少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、または10倍過剰発現する、項目123に記載の方法。
(項目125)
MUC1−C、ブラキュリ、またはCEAを過剰発現する細胞が、がん細胞を含む、項目123に記載の方法。
(項目126)
前記被験体が、診断された疾患素因を有する、項目42から125までのいずれか一項に記載の方法。
(項目127)
前記被験体が、安定病態を有する、項目42から126までのいずれか一項に記載の方法。
(項目128)
前記被験体が、疾患に対する遺伝的素因を有する、項目42から127までのいずれか一項に記載の方法。
(項目129)
前記疾患が、がんである、項目126から128までのいずれか一項に記載の方法。
(項目130)
前記がんが、前立腺がん、結腸がん、乳がん、または胃がんからなる群より選択される、項目129に記載の方法。
(項目131)
前記がんが、前立腺がんである、項目130に記載の方法。
(項目132)
前記被験体のグリーソンスコアが6またはそれ未満である、項目42から131までのいずれか一項に記載の方法。
(項目133)
前記被験体のグリーソンスコアが6超である、項目42から131までのいずれか一項に記載の方法。
(項目134)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターまたは前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、配列番号3に対して少なくとも80%の配列同一性を有する配列を含む、項目50から133までのいずれか一項に記載の方法。
(項目135)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターまたは前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、配列番号3内の26048〜26177、26063〜26141、1〜103、54〜103、32214〜32315、および32214〜32262から選択される領域に対して少なくとも80%の配列同一性を有する領域を含む、項目50から134までのいずれか一項に記載の方法。
(項目136)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターまたは前記第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、配列番号3内の1057位から3165位の間の領域に対して少なくとも80%の配列同一性を有する領域を含む、項目50から135までのいずれか一項に記載の方法。
(項目137)
前記第1の複製欠損性アデノウイルスベクターまたは第2の複製欠損性アデノウイルスベクターが、MUC1−C、ブラキュリ、またはCEA抗原をコードする配列を含み、前記MUC1−C抗原が、配列番号5または配列番号6に対して少なくとも80%の配列同一性を有する配列によりコードされ、前記ブラキュリ抗原が、配列番号7または配列番号8に対して少なくとも80%の配列同一性を有する配列によりコードされ、前記CEA抗原が、配列番号1、配列番号2、または配列番号3に対して少なくとも80%の配列同一性を有する配列によりコードされる、項目50から136までのいずれか一項に記載の方法。
(項目138)
ヒトにおいて免疫応答を誘導するためのキットであって、
(a)組換え型複製欠損性アデノウイルスベクターを含むウイルス粒子を少なくとも1.0×10 11 個含む治療用溶液を0.8〜1.2mLの範囲の体積で含む組成物、
(b)免疫経路チェックポイントモジュレーターを含む分子組成物の治療用溶液を含む組成物、および
(c)指示
を含む、キット。
(項目139)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を1.0〜5.5×10 11 個含む、項目138に記載のキット。
(項目140)
アデノウイルスベクターが、トランスフェクトされた細胞において改変されたMUC1−C、ブラキュリ、またはCEAの過剰発現をもたらすことができる、項目138または140に記載のキット。
(項目141)
治療用溶液が、第1の複製欠損性アデノウイルスベクター、第2の複製欠損性アデノウイルスベクター、および第3の複製欠損性アデノウイルスベクターを含み、そのそれぞれが、MUC1−C抗原、ブラキュリ抗原、CEA抗原からなる群より選択される抗原、およびこれらの組み合わせを含む、項目138から140までのいずれか一項に記載のキット。
(項目142)
前記アデノウイルスベクターが、ヒトにおいてMUC1−C、ブラキュリ、またはCEA発現細胞に対する特異的な免疫応答を誘導する抗原をコードする核酸配列を含む、項目138から141までのいずれか一項に記載のキット。
(項目143)
前記免疫経路チェックポイントモジュレーターが、PD1、PDL1、PDL2、CD28、CD80、CD86、CTLA4、B7RP1、ICOS、B7RPI、B7−H3、B7−H4、BTLA、HVEM、KIR、TCR、LAG3、CD137、CD137L、OX40、OX40L、CD27、CD70、CD40、CD40L、TIM3、GAL9、ADORA、CD276、VTCN1、IDO1、KIR3DL1、HAVCR2、VISTA、およびCD244からなる群より選択される内在性免疫経路チェックポイントタンパク質またはその断片を標的とする、項目138から142までのいずれか一項に記載のキット。
(項目144)
前記分子組成物が、siRNA、アンチセンス、小分子、模倣物、リガンドの組換え型、受容体の組換え型、抗体、またはこれらの組み合わせを含む、項目138から143までのいずれか一項に記載のキット。
(項目145)
前記指示が、増殖性疾患またはがんの処置に関する、項目138から144までのいずれか一項に記載のキット。
(項目146)
前記指示が、感染症の処置に関する、項目138から144までのいずれか一項に記載のキット。
(項目147)
前記アデノウイルスベクターが、複製欠損性アデノウイルス5型ベクターを含む、項目138から146までのいずれか一項に記載のキット。
(項目148)
前記治療用溶液が、前記組換え型核酸ベクターを含むウイルス粒子を少なくとも1.0×10 11 個、2.0×10 11 個、3.0×10 11 個、3.5×10 11 個、4.0×10 11 個、4.5×10 11 個、4.8×10 11 個、4.9×10 11 個、4.95×10 11 個、または4.99×10 11 個含む、項目138から147までのいずれか一項に記載のキット。
(項目149)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を最大7.0×10 11 個、6.5×10 11 個、6.0×10 11 個、5.5×10 11 個、5.2×10 11 個、5.1×10 11 個、5.05×10 11 個、または5.01×10 11 個含む、項目138から148までのいずれか一項に記載のキット。
(項目150)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を1.0〜7.0×10 11 個または1.0〜5.5×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目151)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を4.5〜5.5×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目152)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を4.8〜5.2×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目153)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を4.9〜5.1×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目154)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を4.95〜5.05×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目155)
前記治療用溶液が、ウイルス粒子を4.99〜5.01×10 11 個含む、項目148または149に記載のキット。
(項目156)
免疫原性成分をさらに含む、項目138から155までのいずれか一項に記載のキット。
(項目157)
前記免疫原性成分が、IFN−γ、TNFα、IL−2、IL−8、IL−12、IL−18、IL−7、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−9、IL−10、およびIL−13の群より選択されるサイトカインを含む、項目156に記載のキット。
(項目158)
前記免疫原性成分が、IL−7、IL−7をコードする核酸、IL−7に対して実質的な同一性を有するタンパク質、およびIL−7に対して実質的な同一性を有するタンパク質をコードする核酸からなる群より選択される、項目156に記載のキット。
免疫療法およびワクチンのためのウイルスベクター
組換え型ウイルスベクターを使用して、タンパク質をコードする遺伝子または抗原(例えば、TAAおよび/またはIDAA)を発現させることができる。組換え型ウイルスベクターをベースとしたワクチンおよび免疫療法の利点として、遺伝子形質導入の効率が高いこと、標的細胞への遺伝子の送達が高度に特異的であること、強固な免疫応答が誘導されること、および細胞性免疫(cellular immunity)が増大することが挙げられる。本開示は、ウイルスのゲノムの極めて重要な領域の欠失または挿入を含む組換え型アデノウイルスベクターを提供する。本開示により提供されるウイルスベクターは、それに対する免疫応答を生じさせることが望まれる1つまたは複数の目的の標的抗原、またはそのバリアント、断片もしくは融合物をコードする異種核酸配列を含み得る。
一般に、アデノウイルスは、広範な親和性を有し得、種々の分裂細胞型および非分裂細胞型に感染することができ、また、全身的にも哺乳動物の体内のより選択的な粘膜表面を通じても使用することができるので、臨床的に魅力的なものである。さらに、相対的な熱安定性により、それらの臨床使用がさらに容易になる。アデノウイルスは、直鎖二本鎖ゲノムを含有する、正二十面体の、エンベロープを有さないカプシドを特徴とするDNAウイルスのファミリーである。一般に、アデノウイルスは、サイズが約30〜35キロベースと概算される二本鎖DNAゲノムを含む、エンベロープを有さないウイルスとして見いだされる。ヒトAdの中でいかなる新生物疾患にも関連するものはなく、免疫適格性の個体において比較的軽度の自己限定性疾病が引き起こされるだけである。このウイルスによって発現される第1の遺伝子はE1遺伝子であり、これは、野生型ゲノムに存在する他のAd5遺伝子プロモーターからの高レベルの遺伝子発現が開始されるように作用する。ウイルスDNA複製および後代ビリオンの組み立ては感染細胞の核内で起こり、生活環全体は約36時間かかり、細胞当たりビリオンおよそ104個の出現が伴う。野生型Ad5ゲノムは、およそ36kbであり、DNA複製の前に発現されるか後に発現されるかに応じて初期ウイルス機能および後期ウイルス機能に分けられる遺伝子をコードする。初期/後期の線引きは、Ad5を予め感染させた細胞への重感染により、重感染ウイルス自体のゲノムが複製された後まで、重感染ウイルスからの後期遺伝子発現の欠如がもたらされることが実証されているので、ほぼ絶対的なものである。理論に縛られることなく、これは、おそらく、被包される複製されたゲノムが存在するまで後期遺伝子(主にAd5カプシドタンパク質)の発現を妨げる、Ad5主要後期プロモーター(MLP)の複製依存性シス活性化に起因する。本発明の組成物および方法では、進歩した世代のAdベクター/ワクチン開発の特徴を活用する。アデノウイルスの直鎖状ゲノムは、一般に、2つのDNA複製起点(ITR)に挟まれており、RNAポリメラーゼII媒介性転写のための8単位を有する。このゲノムは、5種の初期単位E1A、E1B、E2、E3、E4、およびE5、ウイルス複製の開始後に遅れて発現される2種の単位(IXおよびIVa2)、ならびにL1〜L5に細分される1つの後期単位(L)を有する。一部のアデノウイルスは、ウイルス関連(VA)RNAと称される1種または2種のRNAにさらにコードし得る。
ヒトおよび動物における試験により、Ad5に対する既存の免疫がAdをベースとしたワクチンの商業用途に対する阻害因子になり得ることが実証されている。大半のヒトは、ヒトワクチンに最も広く使用されている亜型であるAd5に対する抗体を有し、試験されたヒトの3分の2がAd5に対するリンパ球増殖性応答を有する。この既存の免疫により、典型的なAd5ワクチンを使用した免疫または再免疫が阻害される可能性があり、また、後の時点における、Ad5ベクターを使用した、第2の抗原に対するワクチンによる免疫が妨げられる可能性がある。既存の抗ベクター免疫の問題を克服することが、熱心な調査の対象になっている。代替ヒト(Ad5をベースとするものではない)Ad5亜型または、さらには非ヒト形態のAd5を使用した調査が考察されている。これらのアプローチでは、最初の免疫には成功したとしても、その後のワクチン接種に、新規のAd5亜型に対する免疫応答に起因して問題が生じる可能性がある。Ad5免疫という障壁を回避するため、および第1世代Ad5[E1−]ベクターの限られた有効性を改善して最適な免疫応答を誘導するために、本発明の種々の実施形態は、次世代Ad5ベクターをベースとしたワクチンプラットフォームに関する。
抗Ad免疫を克服するための試みは、代替Ad血清型および/またはAd5ウイルスカプシドタンパク質の交代の使用を含むものであり、どちらも成功は限られており、また、得られるワクチンの体内分布を大きく変化させる潜在性を伴う。したがって、既存のAd免疫の標的であることが公知であるタンパク質であるE1欠失Ad5ベクター由来のウイルスタンパク質の発現をさらに低下させることによる完全に新規のアプローチを試みた。詳細には、初期1(E1)遺伝子領域の欠失および初期2b(E2b)遺伝子領域の追加的な欠失を伴う新規の組換え型Ad5プラットフォームが記載されている(Ad5[E1−、E2b−])。E2b領域(DNAポリメラーゼおよび末端タンパク質前駆体をコードする)の欠失により、ウイルスDNA複製および後期ウイルスタンパク質発現が低下する。このベクタープラットフォームを使用して、がんおよび感染症の動物モデルにおいてCMI応答を誘導することができ、また、より重要なことに、この組換え型Ad5遺伝子送達プラットフォームはAd5免疫の障壁を克服し、既存のAd免疫および/またはベクターにより誘導されるAd免疫の状況下で使用することができ、したがって、ワクチンの複数回の同種投与を可能にするものである。特定の実施形態では、本発明は、免疫原性ポリペプチドをコードする配列を含む、血清型5の複製欠損性アデノウイルスベクターに関する。免疫原性ポリペプチドは、変異体、天然のバリアントまたはその断片であってよい。
本開示は、さらに、本明細書では1つまたは複数の目的の標的抗原、またはそれらの断片もしくはバリアントをコードするポリヌクレオチドとも称される核酸配列を提供する。したがって、本発明は、本明細書にさらに記載されている任意の供給源に由来する標的抗原をコードするポリヌクレオチド、そのようなポリヌクレオチドを含むベクター、および、そのような発現ベクターを形質転換またはトランスフェクトされた宿主細胞を提供する。所望の標的抗原ポリペプチドを発現させるために、ポリペプチドまたは機能的等価物をコードするヌクレオチド配列を適切なAdベクターに挿入することができる(例えば、組換え技法を使用して)。適切なアデノウイルスベクターは、挿入されるコード配列の転写および翻訳に必要なエレメントならびに任意の所望のリンカーを含有し得る。当業者に周知の方法は、目的のポリペプチドおよび適切な転写制御エレメントおよび翻訳制御エレメントをコードする配列を含有するこれらのアデノウイルスベクターを構築するために使用することができる。これらの方法としては、in vitro組換えDNA技法、合成技法、およびin vivo遺伝子組換えが挙げられる。
本開示は、本明細書で提供されるベクターおよび他のベクターを利用した、MUC1、MUC1c、MUC1n、T、またはCEAに対する単一の抗原または組み合わせ抗原による免疫を提供する。本開示は、MUC1、MUC1c、MUC1n、T、またはCEAに対する治療ワクチンを提供する。本開示は、MUC1、MUC1c、MUC1n、T、またはCEAに対する予防ワクチン(prophylactic vaccine)を提供する。さらに、種々の実施形態では、本明細書で提供される組成物および方法により、疾患の進行または平均余命の変化などの臨床応答を導くことができる。
CEAは、ほぼ全ての結腸直腸がんおよび膵がん(pancreatic cancer)において過剰発現され、一部の肺がんおよび乳がん、および甲状腺髄様がんなどのまれな腫瘍でも発現されるが、胃腸上皮において低レベルで発現している以外は体の他の細胞では発現されないので、免疫療法のための魅力的な標的抗原である。CEAは、T細胞によってMHCにより拘束された様式で認識され得るエピトープを含有する。
ヒトムチンファミリー(MUC1〜MUC21)は、体内の上皮表面上に保護的な粘液障壁を形成する役割を果たす分泌型膜貫通ムチンを含む。これらのタンパク質は、呼吸器を裏打ちする上皮、胃腸管、および、例えば、乳腺、肝臓、胃、膵臓、および腎臓などの重要な器官を裏打ちする管の保護において機能する。
本開示は、ブラキュリに対する1つまたは複数の抗原を含む免疫療法も提供する。ブラキュリ(ヒトにおいて「T」タンパク質としても公知)は、初期発生の間に、大部分は正常な中胚葉の形成および分化において重要な役割を果たし、T−ドメインと称される高度に保存されたDNA結合性ドメインを特徴とする、転写因子のT−ボックスファミリーのメンバーである。上皮間葉転換(EMT)は、ブラキュリが極めて重要な役割を果たす、原発腫瘍が転移性の状態に進行する間の重要なステップである。ヒト癌細胞におけるブラキュリの発現により、間葉系マーカーの上方制御、上皮マーカーの下方制御、ならびに細胞遊走および浸潤の増大を含めたEMTの特性の変化が誘導される。逆に、ブラキュリの阻害により、間葉系マーカーの下方制御ならびに細胞遊走および浸潤の喪失ならびにヒト腫瘍細胞の転移を形成する能力の低下がもたらされる。ブラキュリは、上皮間葉転換を媒介し、浸潤を促進するように機能し得る。
本開示の標的抗原としては、これだけに限定されないが、例えば寄生生物、細菌、ウイルス、プリオンなどの種々の感染因子のいずれかに由来する抗原が挙げられる。感染因子とは、宿主に感染することが可能な任意の生きている生物体を指し得る。感染因子としては、例えば、細菌、一本鎖RNAウイルス、一本鎖DNAウイルスなどの任意の種類のウイルス、真菌、寄生生物、および原生生物が挙げられる。
(Vaccinia virus)、水痘帯状疱疹ウイルス(Varicella−zoster virus)、東部ウマ脳炎ウイルス(eastern equine encephalitis virus)(EEEV)、重症急性呼吸器症候群ウイルス(severe acute respiratory virus)(SARS)、ベネズエラウマ脳炎ウイルス(Venezuelan equine encephalitis virus)(VEEV)、水疱性口内炎ウイルス(Vesicular stomatitis virus)、Vibrio cholerae、血液型亜型01、Vibrio parahaemolyticus、ウエストナイルウイルス(West Nile virus)、Wuchereria bancrofti、Yellow fever virus、Yersinia enterocolitica、Yersinia pseudotuberculosis、およびYersinia pestis。標的抗原としては、感染性生物のいずれかによって産生されるタンパク質、またはそのバリアントもしくは断片を挙げることができる。
標的抗原として、腫瘍性タンパク質E6およびE7などの、ヒトパピローマウイルス(HPV)に関連するタンパク質、またはそのバリアントもしくは断片も挙げることができる。ある特定の実施形態では、腫瘍性タンパク質を改変して、非腫瘍形成バリアントまたは野生型タンパク質と比較して腫瘍原性が低下したバリアントを作製することができる。例えば、腫瘍抑制因子タンパク質(例えば、p53およびpRb)との結合に関与するペプチドの部分を欠失させるかまたは改変し、その結果もはや腫瘍抑制因子タンパク質と相互作用しないようにすることができる。別の例として、Her2/neuなどのキナーゼである腫瘍性タンパク質を、例えば点変異によってキナーゼ不活性化することができる。一部の例では、免疫の間に2つまたはそれ超の標的抗原を使用することができる。例えば、E6抗原とE7抗原を組み合わせて融合タンパク質にすることもでき、改変されたまたは改変されていないE6標的抗原およびE7標的抗原をコードする異種ヌクレオチドを含有する別々のベクターを組み合わせて使用する。例えば、Ad5−E6ベクターをAd5−E7ベクターと共に投与することができる。本実施例では、Ad5−E6ベクターおよびAd5−E7ベクターは、同時に投与することもでき、逐次的に投与することもできる。
ある特定の実施形態では、本発明の組成物および方法で使用する腫瘍関連抗原は、増殖性疾患またはがんを有する個体から直接同定することができる。ある特定の実施形態では、がんは、良性腫瘍、転移性腫瘍、癌腫、または肉腫などを含み得る。一部の実施形態では、個人向けの腫瘍抗原は、患者から特徴付けられ、標的抗原として、全体として、一部、またはバリアントとしてさらに利用されるMUC1、MUC1c、MUC1n、T、またはCEAを含み得る。
本開示は、がんおよび感染症を処置するための組み合わせ免疫療法およびワクチン組成物を提供する。一部の態様では、本明細書において提示される組み合わせ免疫療法およびワクチンは、腫瘍関連抗原(TAA)などのがんの発生に関連する抗原、または、感染症関連抗原(IDAA)などの特定の感染症に関与することが公知の抗原に対する多標的化免疫療法薬アプローチを含み得る。一部の態様では、本明細書において提示される組み合わせ免疫療法およびワクチンは、がんまたは感染症の発生に関連する抗原に対する多標的化抗原シグネチャ免疫療法薬アプローチを含み得る。種々の実施形態では、本発明の組成物および方法は、本明細書において提示される疾患の免疫のための、MUC1、MUC1c、MUC1n、T、および/またはCEAのバリアントを発現する、ウイルスをベースとしたベクターを提供する。これらのベクターにより、MUC1、MUC1c、MUC1n、T、および/またはCEAに対する免疫応答を生じさせることができる。
本発明のウイルスベクターは、標的抗原の免疫原性を増大させるタンパク質をコードする核酸配列も含み得る。この点について、そのようなタンパク質を含有するウイルスベクターを用いた免疫後に産生されるタンパク質は、目的の標的抗原と目的の標的抗原の免疫原性を増大させるタンパク質が融合した融合タンパク質であり得る。
一部の実施形態では、本発明の組成物を1つまたは複数の免疫チェックポイントモジュレーターと一緒に投与する。活性化シグナルと阻害シグナルの平衡によりTリンパ球と疾患細胞の相互作用が調節され、ここで、T細胞応答は、T細胞受容体(TCR)による抗原認識によって開始される。阻害性の経路およびシグナルは、免疫チェックポイントと称される。正常な状況では、免疫チェックポイントは、自己免疫の制御および防止において重大な役割を果たし、また、病原性感染に応答して組織傷害からの保護も行う。
本発明は、単独で、または薬学的に許容される担体または賦形剤と共に、任意の経路によって投与することができるワクチン接種レジメンを含む医薬組成物を提供し、そのような投与は、単回投薬および複数回投薬のどちらでも行うことができる。より詳細には、医薬組成物は、種々の薬学的に許容される不活性な担体と、錠剤、カプセル剤、ロゼンジ、トローチ剤、手持ちキャンディ(hand candy)、散剤、噴霧剤、水性懸濁剤、注射溶液、エリキシル剤、シロップ剤などの形態で組み合わせることができる。そのような担体としては、固体希釈剤または充填剤、滅菌水性媒体および種々の無毒性の有機溶媒などが挙げられる。さらに、そのような経口医薬製剤は、当該目的のために一般に使用される種々の型の薬剤を用いて適切に甘味および/または風味を付けることができる。全体を通して記載されている組成物は、医薬品として製剤化することができ、疾患、例えば、がんと診断された、それを必要とするヒトまたは哺乳動物を処置するために使用することができる。
ヘキサメチレンビスアセトアミド;ヒペリシン;イバンドロン酸;イダルビシン;イドキシフェン;イドラマントン(idramantone);イルモホシン;イロマスタット;イミダゾアクリドン(imidazoacridone);イミキモド;免疫賦活薬ペプチド;インスリン様増殖因子1受容体阻害剤;インターフェロンアゴニスト;インターフェロン;インターロイキン;イオベングアン(iobenguane);ヨードドキソルビシン;イポメアノール(ipomeanol)、4−;イロプラクト(iroplact);イルソグラジン;イソベンガゾール(isobengazole);イソホモハリコンドリン(isohomohalicondrin)B;イタセトロン;ジャスプラキノリド;カハラリド(kahalalide)F;ラメラリン(lamellarin)−Nトリアセテート;ランレオチド;レイナマイシン(leinamycin);レノグラスチム;硫酸レンチナン;レプトルスタチン(leptolstatin);レトロゾール;白血病抑制因子;白血球アルファインターフェロン;ロイプロリド+エストロゲン+プロゲステロン;リュープロレリン;レバミソール;リアロゾール;直鎖ポリアミン類似体;親油性二糖ペプチド;親油性の白金化合物;リソクリンアミド(lissoclinamide)7;ロバプラチン(lobaplatin);ロムブリシン(lombricine);ロメテレキソール(lometrexol);ロニダミン;ロソキサントロン(losoxantrone);ロバスタチン;ロキソリビン;ラルトテカン(lurtotecan);ルテチウム テキサフィリン(lutetium texaphyrin);リソフィリン(lysofylline);溶解性ペプチド;マイタンシン;マンノスタチンA;マリマスタット;マソプロコール;マスピン;マトリライシン阻害剤;マトリックスメタロプロテイナーゼ阻害剤;メノガリル;メルバロン;メテレリン(meterelin);メチオニナーゼ;メトクロプラミド;MIF阻害剤;ミフェプリストン;ミルテホシン;ミリモスチム;ミスマッチ二本鎖RNA;ミトグアゾン;ミトラクトール;マイトマイシン類似体;ミトナフィド(mitonafide);ミトトキシン(mitotoxin)線維芽細胞増殖因子−サポリン;ミトキサントロン;モファロテン(mofarotene);モルグラモスチム;モノクローナル抗体、ヒト絨毛膜ゴナドトロピン;モノホスホリルリピドA+ミオバクテリウム(myobacterium)細胞壁sk;モピダモール;多剤耐性遺伝子阻害剤;複数の腫瘍抑制因子1に基づく療法;マスタード抗がん剤;ミカペルオキシド(mycaperoxide)B;マイコバクテリア細胞壁抽出物;ミリアポロン(myriaporone);N−アセチルジナリン(acetyldinaline);N−置換ベンズアミド;ナファレリン;
ナグレスチップ(nagrestip);ナロキソン+ペンタゾシン;ナパビン(napavin);ナフテルピン(naphterpin);ナルトグラスチム;ネダプラチン;ネモルビシン(nemorubicin);ネリドロン酸(neridronic acid);中性エンドペプチダーゼ;ニルタミド;ニサマイシン(nisamycin);一酸化窒素修飾物質;窒素酸化物 抗酸化剤;ニトルリン(nitrullyn);O6−ベンジルグアニン;オクトレオチド;オキセノン(okicenone);オリゴヌクレオチド;オナプリストン(onapristone);オンダンセトロン;オンダンセトロン;オラシン(oracin);経口サイトカイン誘導因子;オルマプラチン(ormaplatin);オサテロン(osaterone);オキサリプラチン;オキサウノマイシン(oxaunomycin);パクリタキセル;パクリタキセル類似体;パクリタキセル誘導体;パラウアミン(palauamine);パルミトイルリゾキシン;パミドロン酸;パナキシトリオール(panaxytriol);パノミフェン(panomifene);パラバクチン(parabactin);パゼリプチン(pazelliptine);ペグアスパラガーゼ;ペルデシン(peldesine);ペントサンポリ硫酸ナトリウム;ペントスタチン;ペントロゾール(pentrozole);ペルフルブロン;ペルホスファミド(perfosfamide);ペリリルアルコール;フェナジノマイシン(phenazinomycin);フェニルアセテート;ホスファターゼ阻害剤;ピシバニール;塩酸ピロカルピン;ピラルビシン;ピリトレキシム;プラセチン(placetin)A;プラセチンB;プラスミノーゲン活性化因子阻害因子;白金複合体;白金化合物;白金−トリアミン複合体;ポルフィマーナトリウム;ポルフィロマイシン;プレドニゾン;プロピルビス−アクリドン;プロスタグランジンJ2;プロテアソーム阻害剤;プロテインAをベースとした免疫修飾物質;プロテインキナーゼC阻害剤;微細藻類プロテインキナーゼC阻害剤;タンパク質チロシンホスファターゼ阻害剤;プリンヌクレオシドホスホリラーゼ阻害剤;プルプリン;ピラゾロアクリジン;ピリドキシル化ヘモグロビンポリオキシエチレンコンジュゲート;rafアンタゴニスト;ラルチトレキセド;ラモセトロン;rasファルネシルタンパク質トランスフェラーゼ阻害剤;ras阻害剤;ras−GAP阻害剤;脱メチル化レテリプチン(retelliptine);レニウムRe186エチドロネート;リゾキシン;リボザイム;RIIレチンアミド;ログレチミド(rogletimide);ロヒツキン(rohitukine);ロムルチド;ロキニメックス;ルビギノン(rubiginone)B1;ルボキシル(ruboxyl);サフィンゴール;サイントピン(saintopin);SarCNU;サルコフィトール(sarcophytol)A;サルグラモスチム;Sdi1模倣物;セムスチン;老化由来阻害剤1;センスオリゴヌクレオチド;シグナルトランスダクション阻害剤;シグナルトランスダクション修飾物質;単鎖抗原結合性タンパク質;シゾフィラン;ソブゾキサン;ナトリウムボロカプテート(sodium borocaptate);フェニル酢酸ナトリウム;ソルベロール(solverol);ソマトメジン結合性タンパク質;ソネルミン(sonermin);スパルホス酸(sparfosic acid);スピカマイシン(spicamycin)D;スピロムスチン(spiromustine);スプレノペンチン(splenopentin);スポンギスタチン(; spongistatin)1;スクアラミン;
幹細胞阻害剤;幹細胞分裂阻害剤;スチピアミド(stipiamide);ストロメライシン阻害剤;スルフィノシン(sulfinosine);超活性血管作用性腸管ペプチドアンタゴニスト;スラジスタ(suradista);スラミン;スワインソニン;合成グリコサミノグリカン;タリムスチン(tallimustine);タモキシフェンメチオジド(tamoxifen methiodide);タウロムスチン(tauromustine);タザロテン;テコガランナトリウム;テガフール;テルラピリリウム(tellurapyrylium);テロメラーゼ阻害剤;テモポルフィン;テモゾロミド;テニポシド;テトラクロロデカオキシド;テトラゾミン(tetrazomine);タリブラスチン(thaliblastine);チオコラリン(thiocoraline);トロンボポエチン;トロンボポエチン模倣物;チマルファシン(thymalfasin);チモポイエチン受容体アゴニスト;チモトリナン(thymotrinan);甲状腺刺激ホルモン;エチルエチオプルプリンスズ;チラパザミン;二塩化チタノセン(titanocene bichloride);トプセンチン(topsentin);トレミフェン;全能性幹細胞因子;翻訳阻害剤;トレチノイン;トリアセチルウリジン;トリシリビン(triciribine);トリメトレキサート;トリプトレリン;トロピセトロン;ツロステリド(turosteride);チロシンキナーゼ阻害剤;チロホスチン;UBC阻害剤;ウベニメクス;尿生殖洞由来の成長阻害因子;ウロキナーゼ受容体アンタゴニスト;バプレオチド(vapreotide);バリオリン(variolin)B;ベクター系、赤血球遺伝子療法;ベラレソール(velaresol);ベラミン;バーディン(verdin);ベルテポルフィン;ビノレルビン;ビンキサルチン(vinxaltine);ビタキシン(vitaxin);ボロゾール;ザノテロン(zanoterone);ゼニプラチン;ジラスコルブ(zilascorb);およびジノスタチンスチマラマーが挙げられる。一実施形態では、抗がん薬は、5−フルオロウラシル、タキソール、またはロイコボリンである。
本発明の組成物および方法は、種々の実施形態において、選択されたMHC分子、例えば、HLA−A2、A3、およびA24に結合するMUC1、T、またはCEAエピトープを認識するものなどの、ヒト細胞溶解性T細胞(cytolytic T−cell)(CTL)を活用する。ある特定の血清型のMHC分子、例えば、HLA−A2、A3、およびA24を発現する個体を、本発明の方法および組成物を使用する療法に選択することができる。例えば、ある特定の血清型のMHC分子、例えば、HLA−A2、A3、およびA24を発現する個体を、本明細書に記載されている方法および組成物を使用してMUC1、T、またはCEAに対する免疫応答を生じさせることを含む療法に選択することができる。
本発明のアデノウイルスベクターは、本明細書に記載されている1つまたは複数の標的抗原に対する免疫応答を生じさせるためのいくつものワクチンの状況で使用することができる。本発明は、本明細書の他の箇所に記載されているものなどの任意の標的抗原に対する免疫応答を生じさせる方法を提供する。アデノウイルスベクターは、特に重要である。なぜなら、Adに対する既存の免疫を有する被験体において免疫応答を生じさせるために使用することができ、また、以前の世代のアデノウイルスベクターを使用すると不可能なレジメンである、アデノウイルスベクターを使用した複数のラウンドの免疫を含むワクチン接種レジメンにおいて使用することができるという予想外の所見のためである。
本発明の組成物および方法は、療法の間の種々の投薬量および投与レジメンを意図している。患者は、個体において、本明細書に記載されている標的抗原に対する免疫応答を生じさせることが可能な1つまたは複数の複製欠損性アデノウイルスまたはアデノウイルスベクター、例えば、Ad5[E1−、E2B−]−CEA(6D)、Ad5[E1−、E2b−]−MUC1、Ad5[E1−、E2b−]−MUC1c、Ad5[E1−、E2b−]−MUC1n、Ad5[E1−、E2b−]−Tを受けることができる。種々の実施形態では、複製欠損性アデノウイルスを、そのような免疫応答をもたらすために適した用量で投与する。一部の場合では、複製欠損性アデノウイルスを、免疫当たり、1×109個を上回るまたはそれと等しい、2×109個を上回るまたはそれと等しい、3×109個を上回るまたはそれと等しい、4×109個を上回るまたはそれと等しい、5×109個を上回るまたはそれと等しい、6×109個を上回るまたはそれと等しい、7×109個を上回るまたはそれと等しい、8×109個を上回るまたはそれと等しい、9×109個を上回るまたはそれと等しい、1×1010個を上回るまたはそれと等しい、2×1010個を上回るまたはそれと等しい、3×1010個を上回るまたはそれと等しい、4×1010個を上回るまたはそれと等しい、5×1010個を上回るまたはそれと等しい、6×1010個を上回るまたはそれと等しい、7×1010個を上回るまたはそれと等しい、8×1010個を上回るまたはそれと等しい、9×1010個を上回るまたはそれと等しい、1×1011個を上回るまたはそれと等しい、2×1011個を上回るまたはそれと等しい、3×1011個を上回るまたはそれと等しい、4×1011個を上回るまたはそれと等しい、5×1011個を上回るまたはそれと等しい、6×1011個を上回るまたはそれと等しい、7×1011個を上回るまたはそれと等しい、8×1011個を上回るまたはそれと等しい、9×1011個を上回るまたはそれと等しい、1×1012個を上回るまたはそれと等しい、1.5×1012個を上回るまたはそれと等しい、2×1012個を上回るまたはそれと等しい、3×1012個を上回るまたはそれと等しい、またはそれ超のウイルス粒子(VP)である用量で投与する。一部の場合では、複製欠損性アデノウイルスを、免疫当たり、1×109個を下回るまたはそれと等しい、2×109個を下回るまたはそれと等しい、3×109個を下回るまたはそれと等しい、4×109個を下回るまたはそれと等しい、5×109個を下回るまたはそれと等しい、6×109個を下回るまたはそれと等しい、7×109個を下回るまたはそれと等しい、8×109個を下回るまたはそれと等しい、9×109個を下回るまたはそれと等しい、1×1010個を下回るまたはそれと等しい、2×1010個を下回るまたはそれと等しい、3×1010個を下回るまたはそれと等しい、4×1010個を下回るまたはそれと等しい、5×1010個を下回るまたはそれと等しい、6×1010個を下回るまたはそれと等しい、7×1010個を下回るまたはそれと等しい、8×1010個を下回るまたはそれと等しい、9×1010個を下回るまたはそれと等しい、1×1011個を下回るまたはそれと等しい、2×1011個を下回るまたはそれと等しい、3×1011個を下回るまたはそれと等しい、4×1011個を下回るまたはそれと等しい、5×1011個を下回るまたはそれと等しい、6×1011個を下回るまたはそれと等しい、7×1011個を下回るまたはそれと等しい、8×1011個を下回るまたはそれと等しい、9×1011個を下回るまたはそれと等しい、1×1012個を下回るまたはそれと等しい、1.5×1012個を下回るまたはそれと等しい、2×1012個を下回るまたはそれと等しい、3×1012個を下回るまたはそれと等しい、またはそれ超のウイルス粒子である用量で投与する。種々の実施形態では、本明細書に記載されている所望の用量を適切な体積、例えば、約0.1〜10mL、0.2〜8mL、0.3〜7mL、0.4〜6mL、0.5〜5mL、0.6〜4mL、0.7〜3mL、0.8〜2mL、0.9〜1.5mL、0.95〜1.2mL、または1.0〜1.1mLの体積の製剤緩衝液で投与する。体積は、これらの値のいずれかの範囲内の任意の範囲(例えば、約0.5mL〜約1.1mL)内に入り得ることが当業者には理解される。ウイルス粒子の投与は、送達のための種々の適切な経路を通じたものであってよく、例えば、注射による投与(例えば、皮内、筋肉内、静脈内または皮下)、鼻腔内投与(例えば、吸引によって)、丸剤形態での投与(例えば、嚥下、膣または直腸への送達用の坐薬)であってよい。一部の実施形態では、皮下送達が好ましい場合があり、それにより樹状細胞へのより大きな接近をもたらすことができる。
組成物、免疫療法またはワクチンは、キットの形態で供給することができる。本開示のキットは、処置レジメン情報を含めた投薬量およびまたは投与に関する指示をさらに含み得る。
以下のHLA−A2およびHLA−A24結合性ペプチドを、このおよび他の実施例で使用した:(a)HLA−A2結合性CEAアゴニストペプチドCAP1−6D(YLSGADLNL(配列番号10))、(b)HLA−A2 MUC1アゴニストペプチドP93L(ALWGQDVTSV(配列番号12))、(c)HLA−A24結合性MUC1アゴニストペプチドC6A(KYHPMSEYAL(配列番号13))、および(d)HLA−A2結合性ブラキュリアゴニストペプチド(WLLPGTSTV(配列番号14))。全てのペプチドは、96%を超えて純粋であった。
この実施例は、注射された被験体でAd5−ヌルの複数回の注射が抗アデノウイルス抗体の生成をもたらすことを示す。
ELISAプレートを0.05Mの炭酸−重炭酸緩衝液pH9.6中の100ngのヒトCEA(Sigma−Aldrich)でコーティングして、室温で一晩インキュベートした。プレートは1%Tween−20(PBS−T)を含有するリン酸緩衝食塩水で3回洗浄し、次に1%BSAを含有するPBSにより室温で60分間、ブロックした。さらなる3回の洗浄の後、PBS−Tで1/50に希釈した血清をウェルに加え、プレートを室温で1時間インキュベートした。洗浄後に1:5000希釈のペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス免疫グロブリン(Ig)G(γ−鎖特異的)(Sigma−Aldrich)抗体をウェルに加え、プレートを1時間インキュベートした。プレートを3回洗浄し、1,2−フェニレンジアミン基質溶液を各ウェルに加えた。10%リン酸を加えることによって反応を停止した。SpectraMax190 ELISAリーダーで、吸光度を492nmで測定した。ウェルあたりのCEAと結合したIgGのナノグラム等価物は、精製されたマウスIgGを使用して生成され、CEA ELISAと同時に作り出した標準曲線を参照して得られた。SoftMax Pro6.3ソフトウェアを使用して結果を分析し、定量化した。
この実施例は、Ad5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームが、マウスで既存のAd5免疫の存在下で、腫瘍関連抗原(TAA)癌胎児性抗原(CEA)に対してCMI応答を誘導することを示す。
2つのAd5−CEAベクタープラットフォームのCEA遺伝子発現を確認するために、初期研究を実行した。ワクチンベクタープラットフォームをトランスフェクトした細胞でCEA抗原が発現され得ることを最初に決定した。A549細胞をATCCから得、Ad5[E1−]−CEAまたはAd5[E1−、E2b−]−CEAをトランスフェクトした。ウェスタンブロット分析は、ベクタープラットフォームをトランスフェクトした細胞がCEA抗原を発現することを明らかにした。(図35)
A549細胞に、Ad5[E1−、E2b−]−CEAを555VP/細胞のMOIで接種した。細胞を、5%CO2中の37℃で48時間インキュベートした。48時間後に、細胞を収集し、PBSで洗浄し、3回凍結/解凍した。全細胞溶解物を70℃で10分間加熱した後、ゲルにローディングした。組換え型CEA対照は30ng/レーンで、調製した溶解物は20μL/レーンでローディングした。追加の陰性対照として試料ローディング緩衝液が含まれ、陽性対照はMagic Mark CPウェスタンマーカーおよび組換え型CEAであった。ゲルをニトロセルロース膜に転写し、SuperBlockブロッキング溶液で60分間ブロックした。膜をマウスモノクローナル抗CEA一次抗体(1:1000)および二次抗マウスHRP(1:2500)コンジュゲート抗体でプローブした。膜を3回洗浄し、次にSuperSignal化学発光試薬とインキュベートし、X線フィルムを膜に曝露させた後に発色させることによってバンド形成を可視化した。
誘導されるかもしれないAd5免疫のレベルを評価するために、Ad5ナイーブC57Bl/6マウスの群に、Ad5ベクタープラットフォーム(VP)を皮下注射した。28〜42日後に、血清試料を収集し、エンドポイントAd5 NAb力価について評価した。図3に示すように、検出不能なAd5 NAb力価(エンドポイントAd5 NAb力価<1/25)が通常の対照マウスで観察された。1回の注射の後にAd5 NAb(1/25〜1/50のエンドポイント力価)が検出可能だったが、1010のAd5の3回の注射の後に劇的に増加した。したがって、追加のAd5免疫研究では、マウスに1010のAd5 VPを2回注射して、これらの動物をAd5免疫にした。
これらの実験は、Ad5免疫マウスでAd5[E1−]−CEAおよびAd5[E1−、E2b−]−CEAワクチンの免疫誘導能力を決定し、比較するように設計した。4〜8週齢の雌C57Bl/6マウスの群を、1010のAd5−ヌルVPにより2週間隔で2回免疫した。最後のAd5−ヌル免疫の2週後、マウスをAd5[E1−]−CEAまたはAd5[E1−、E2b−]−CEAの1010VPにより1週間隔で3回免疫した。最後の免疫の2週後、マウスを安楽死させ、それらの脾臓および血清を分析のために収集した。
毒性研究は、前記のようにAd5[E1−]−CEA、Ad5[E1−、E2b−]−CEAで免疫したAd5免疫雌C57Bl/6マウスからの血清で実行した。緩衝液だけを注射したAd5ナイーブまたはAd5免疫マウスが、対照の役目を果した。処置による肝臓毒性を決定するために、第3の免疫の3日後に、アスパラギン酸アミノ基転移酵素(AST)レベルを血液試料で評価した。いずれのベクターによる免疫の後にも、ASTレベルは対照を超えて上昇しなかった(図5)。アラニンアミノ基転移酵素(ALT)レベルも評価し、類似の結果が観察された。
上で観察された成功裏の免疫学的結果に基づき、MC38腫瘍をマウスで確立し、次に処置した研究を、下記の通りに実行した。これらの研究のために、CEA発現MC38マウスの細胞株を使用した。この細胞株は、ヒトCEAを発現するように遺伝子改変され、C57Bl/6マウスに移植することができる。腫瘍確立の後、マウスを新規のAd5[E1−、E2b−]−CEAベクタープラットフォームで処置した。Ad5免疫腫瘍を有するマウスをAd5[E1−、E2b−]−CEAベクターで処置できるかどうか決定するために、マウスをAd5免疫にするために、C57Bl/6マウスに、14日間隔で1010のAd5[E1−]−ヌルVPを皮下に2回注射した。最後の注射から2週後に、7匹のC57Bl/6マウスの2群に、106のCEA発現MC38腫瘍細胞を皮下に注射した。7日後、腫瘍が触知可能になったとき、7、13および19日目に、1群のマウスを1010VPのAd5[E1−、E2b−]−CEAによる遠位皮下注射によって処置した。7匹の注射緩衝液だけで処置したC57Bl/6マウスの1群が、未処置対照の役割を果たした。全てのマウスを21日間にわたって腫瘍サイズについてモニタリングし、腫瘍体積は前述の通り決定した。
この実施例は、ヒトがん性肺細胞株A−549を形質導入するためにAd5[E1−、E2b−]CEAベクターを使用した用量応答評価を示す。結果は、CEA抗原を用量依存的に発現させることができることを示す。
アッセイの1日目に、BDファルコン組織培養96ウェルプレートに3日前に継代したA549細胞を播種し(ロット番号30Jul02、継代p+23)、(細胞数7.7×103/ウェル)、5±2%CO2雰囲気下の37±2℃インキュベーターに一晩入れた。
Ad5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームが、トランスフェクトした細胞の上で抗原タンパク質を発現できることを評価、確認するために、初期前臨床研究を実行した。A−549細胞をワクチンプラットフォームでトランスフェクトし、ウェスタンブロット分析によって分析した(図8)。それらがAd5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームでトランスフェクトされると、HIV−gag、HIV−polまたはHIV−nefなどの抗原タンパク質が細胞で発現されるのが観察された。
臨床試験設計は、Ad5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームを使用して、動物およびヒトで前臨床および臨床試験から移行した。Ad5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームを使用した用量応答評価を実行し、1010VPがマウスモデルで導入遺伝子産物に対する所望のCMI応答をもたらす用量であることが実証された。さらに、マウスおよび非ヒト霊長類(NHP)モデルでは、それぞれ2週〜4週の間隔の1010VPを使用した3回の免疫は、所望のCMIをもたらした。優勢な樹状細胞(DC)が真皮に存在するので、免疫経路が選択される。この前提を使用して、複数のマウスおよびNHP研究を皮下注射プロトコールを使用して実行した。CEAおよび他の導入遺伝子を用いたAd5[E1−、E2b−]プラットフォームを使用して、所望のレベルの循環CMIを誘導した。針皮下(SQ)送達方法による3週間隔の3回の免疫を使用してフェーズIII臨床試験が続き、死亡を含むいかなる理由により研究から排除されるまで、免疫療法処置を3カ月ごとに継続した。
CAP1(6D)変異を有する改変されたCEAを含有するcDNA配列を、生成した。E.C7細胞株を使用して、臨床グレードAd5[E1−、E2b−]−CEA(6D)を構築、製造した。合計34人の患者(32人の結腸直腸がん患者、1人の膀胱がん患者および1人の肺がん患者)を、IND14325の下のフェーズI/II臨床試験に入れた。大半は、Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)による全3回の予定の免疫療法処置を受けた。免疫療法を早期に中止した5人の患者は、かなりの疾患進行のためにそうした。CTまたはMRIスキャンを使用するRECIST1.0基準を、ベースライン時および処置が完了した後に得た。毒性は、有害事象のための米国癌研究所一般用語基準(National Cancer Institute Common Terminology Criteria for Adverse Events)(CTCAE)バージョン4.0に従って評価した。末梢血CEAレベル、血液学、血清化学および抗核抗体力価を、ベースラインと免疫療法の開始から9週後の間で比較した。いかなる原因による死亡まで、第1の免疫の日からの生存を測定した。
臨床試験はFDAによって承認された治験新薬免除の下で実行し、ClinicalTrials.govで登録した。参加者は、Duke University Medical Center(NC)およびMedical Oncology Associates(WA)の医学腫瘍学クリニックから募集した。患者は、それぞれの施設内倫理委員会(IRB)によって承認されたインフォームドコンセントを提供した。適格性要件には、CEAを発現する転移がん、ならびに十分な血液学的、腎臓および肝臓の機能が含まれた。治験参加者は、可能な全生存の恩恵を有することが知られている標準療法による処置を受けたか、そのような療法を拒否したことが必要とされた。除外基準には、前の4週以内の化学療法もしくは放射線、自己免疫性疾患、ウイルス性肝炎、HIVの病歴、または免疫抑制剤の使用が含まれた。登録の前に少なくとも3カ月の間ベバシズマブまたはセツキシマブを受けていた患者は、これらの抗体を受け続けることが許された。前のCEA免疫療法は許された。本研究は、標準の3+3用量漸増戦略を用い、用量制限毒性(DLT)はグレード3または4の主要器官毒性と規定された。Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)用量は、以下の通りに患者に送達された:コホート1:3回の免疫のために3週ごとの同じ大腿への皮下(SQ)による0.5mL中に1×109VPの用量;コホート2:3回の処置のために3週ごとのSQによる0.5mL中に1×1010VPの用量;コホート3:3回の処置のために3週ごとのSQによる0.5mL中に1×1011の用量。1×1011VPの用量が安全であると立証されたのち、さらなる12人の患者がAd5[E1−、E2b−]−CEA(6D)をこの用量およびスケジュールで受けた(フェーズIIコホート)。フェーズIIコホートを完了した後に、達成可能な最高用量の安全性を決定するために、6人の患者の追加のコホート(コホート5)が、3回の処置のために2.5mL中のSQによる5×1011VPの用量を3週毎に受けた。0、3、6週目の免疫の直前および最後の処置の3週後に、PMBCを患者から収集した。ELISpotアッセイを実行するまで、PBMCは液体窒素で凍結させた。コホート5では、新鮮なPBMCを、多機能性CD8+Tリンパ球のための予備的フローサイトメトリーアッセイで分析した。
臨床活性は、ベースライン時および処置の完了後に得られたコンピュータ断層撮影法(CT)または磁気共鳴画像化(MRI)スキャンを使用して、固形腫瘍における応答評価基準(RECIST 1.0基準)に従って評価した。毒性は、有害事象のための米国癌研究所一般用語基準(CTCAE)バージョン4に従って評価した。末梢血CEAレベル、血液学、血清化学および抗核抗体力価を、ベースライン時および最終処置から3週後に比較した。いかなる原因による死亡まで、第1の免疫の日からの生存を測定した。
IFN−γ分泌リンパ球のためのELISpotアッセイを実行した。簡潔には、IFN−γ生成T細胞を刺激するために、個々の患者試料からの単離されたPBMC(細胞数2×105/ウェル)を、CEAペプチドプール(6D改変を有する完全長CEAを網羅する11aa重複部分を有する15mer;0.1μg/ウェル)と36〜40時間インキュベートした。Ad5へのCMI応答は、Ad5−ヌル(空のベクター)に患者PBMCを曝露させた後に決定した。0.25μg/ウェルの濃度のコンカナバリンA(Con A)で刺激した細胞は、陽性対照の役目を果した。Immunospot ELISpotプレートリーダーを使用して有色スポット形成細胞(SFC)を数え、陰性対照の減算の後に細胞数106当たり50SFCが検出され、SFCが陰性対照ウェルでのそれらより2倍以上高かったならば、応答は陽性であると考えられた。
エンドポイントAd5 NAb力価を決定した。簡潔には、10%ウシ胎仔血清を含有する100μLのDMEM中の熱不活性化試験血清の希釈溶液を、4×107VPのAd5[E1−]−ヌルと混合し、室温で60分の間インキュベートした。10%熱不活性化子ウシ血清を含有するDMEMで5%CO2中の37℃で24時間培養した、細胞数2×103/ウェルのHEK293細胞を含有するマイクロウェルに、試料を追加した。混合物を、5%CO2中の37℃でさらに72時間インキュベートした。細胞の死滅およびエンドポイントAd5 NAb力価を測定するために、MTSテトラゾリウム生体内還元アッセイを使用した。1:25未満の値を有するエンドポイント力価に、0の値を割り当てた。
免疫応答を比較する統計分析を、マン−ホイットニー検定法(PRISM、Graph Pad)を用いて実行した。生存比較は、カプラン−マイヤープロット(PRISM、Graph Pad)を用いて実行した。Ad5 NAb力価およびCEA特異的CMIは、連続変数として分析した。CEA特異的CMIの変化とAd5 NAb力価の関連は、スピアマン相関係数で検定した。生存とAd5 NAb力価の関連は、比例危険モデルのワルド検定で検定した。全ての検定は、0.05の両側αを使用した。
メジアンで3回の事前の化学療法レジメン(範囲:2〜>5)が失敗し、90%(範囲70%〜100%)のメジアンパフォーマンスステータスを有し、メジアンで3部位の転移性疾患(範囲1〜5)を有していた、メジアン年齢58(範囲38〜77)の、32名の転移性結腸直腸がん患者、1名の肺がんがん患者および1名の膀胱がん患者を登録した(表2)。大多数の患者は、全3回の免疫を受けることができた。全3回の処置の完了より前に免疫を中止した5人の患者は、かなりの疾患進行のためにそうした。患者人口統計を、表3に示す。
メジアンで3回の事前の化学療法レジメン(範囲:2〜>5)が失敗し、90%(範囲70%〜100%)のメジアンパフォーマンスステータスを有し、メジアンで3部位の転移性疾患(範囲1〜5)を有していた、メジアン年齢57.5(範囲38〜77)の転移性結腸直腸がんの32人の患者が登録された(表2)。大半は、全3回の免疫を受けることができた。免疫を早期に中止した4人の患者は、かなりの疾患進行のためにそうした。結腸直腸腺癌患者の人口統計は、化学療法抗療性の結腸直腸がん患者の以前に公開された研究に比べて遜色がない。
合計94の免疫処置が、全ての患者に投与された。いかなるワクチン用量レベルでも、処置中止をもたらした用量制限毒性および重大な有害事象はなかった。最も一般的な毒性(表3)は、自己限定性の注射部位反応であった。低頻度で起こった他の反応には、発熱、インフルエンザ様症状、食欲不振、悪寒、吐き気および頭痛が含まれる。これらの症状も自己限定性であって、アセトアミノフェンなどの症候的措置以外の介入を必要としなかった。
個々の患者の血液学、化学および抗核抗体(ANA)値を症例記録様式(CRF)に記録することによって、Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)注射の生物学的作用をモニタリングした。治験に登録された34人の合計患者のうち、28人がAd5[E1−、E2b−]−CEA(6D)による全3回の処置を受けた。全3回の処置を受けた28人の患者について、0週目(第1の処置の前)の血液学、化学およびANA値を、9週目(第3の処置の3週後)に得られたそれらと比較した。下の表4に示すように、Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)による処置後に化学またはANA値に有意な変化はなかった。血液学の値に1つの有意な変化だけがあった。処置後9週目に、好塩基球数が有意に(P=0.0403)より低かった。しかし、この値は好塩基球数の正常範囲内にあり、全体として有意な生物学的作用はなかった。
ベースラインおよび9週目のCEAレベルを患者で評価した。ベースラインおよび追跡調査で入手可能なCEAレベルを有する患者の中で、3人(患者010、020および024)は免疫期間の終わりにCEAレベルの増加はなかったが、残りの患者は増加したCEAレベルを示した。安定病態を有する3人の患者がいたが、彼らは9週間の試験期間中そのままだった。全ての他の患者は、多少のレベルの進行性疾患を経験した(表2)。コホート1および2の7人の患者のうち、免疫開始の12カ月後に5人の死亡があり、2人の患者が生存していた。コホート3およびフェーズIIの21人の患者のうち、12カ月でそれぞれ、10人の死亡があり、残りの全11人の患者は生存していた。コホート5の6人の患者のうち、6、7および8カ月でそれぞれ、3人の死亡があり、3人の患者が生存していた。
二次的目的は、本生成物による免疫処置の後のCEA特異的免疫応答を評価することであった。
CEA特異的CMI応答を評価するために、各免疫の前および最終免疫の完了後に採取した低温保存PBMC試料で、ELISpot分析を実行した。Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)の最高用量を受けた患者で起きた最大級のCEA特異的CMI応答による用量応答効果が、観察された(図14)。受けた用量の中で、コホート1の0人/3人(0%)の患者が陽性のCEA誘導性CMI応答を示し、コホート2の1人/4人(25%)の患者が陽性のCEA誘導性CMI応答を示し、コホート3/フェーズIIの10人/19人(53%)の患者が陽性のCEA誘導性CMI応答を示し、コホート5の4人/6人(67%)の患者が陽性のCEA誘導性CMI応答を示した。CEA特異的CMIの誘導の時間経過(図15)は、最終用量の前にCEA CMIの大きさにプラトーがある可能性を実証した。同じ用量を受けた患者の最大の群(コホート3およびフェーズII)では、6週目評価での平均CEA誘導性CMI応答においてベースラインに対して有意な増加(P<0.05、マン−ホイットニー検定法)が観察され、それは平均で94SFC/106PBMCであり、9週目評価までにさらに増加した(図15)。1人の患者(患者ID13)は、高度に上昇したベースラインのCEA特異的免疫応答(1100SFC)、および6週目に上昇したCMI(2305SFC)を有していたが、9週目評価では戻らず、CEA CMI分析に含まれなかった。
このフェーズI/II治験では、Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)は、一定の比率で製造するのに、また、従来の皮下注射技術によって容易におよび繰り返し投与するのに適することが実証された。最も一般的な有害作用は、注射部位の反応ならびに発熱、悪寒、頭痛および吐き気からなるインフルエンザ様の症状であった。血液学または血清化学への影響はなく、全体として、処置は良好な耐容性を示した。具体的には、SAEは記されず、有害事象のために処置が停止されることはなく、この臨床適用でのAd5[E1−、E2b−]−CEA(6D)の使用に対する用量制限に達することはなかったことを示した。
概して導入遺伝子生成物に特異的な確固とした適応性免疫応答を誘導するそれらの傾向のため、アデノウイルスベクターは、がん治療ワクチンとして使用するためのかなりの可能性を有する。しかし、同種の初回刺激/追加刺激レジメンで使用される組換え型第1世代Ad5[E1−]ベクターは、既存のAd5免疫ならびにベクターにより誘導される免疫の存在のために、それらの潜在的有効性が大いに制限されている。具体的には、Ad5誘導性免疫は、より早い世代のAd5[E1−]をベースとしたプラットフォームに組み込まれたTAAへの免疫応答を軽減する。本研究で利用されるAd5[E1−、E2b−]プラットフォームは、既存のAd5免疫の標的である抗原の提示を回避することによって、同種の初回刺激−追加刺激レジメンに対応することを意図した。CEAは米国癌研究所によって優先的がん抗原の1つとして同定されたので、このTAAは、がん治療ワクチンとして使用するための新しいAd5[E1−、E2b−]ベクタープラットフォームに組み込まれる導入遺伝子として調査された。成人でのCEA発現は胃腸上皮では通常低いレベルに制限され、一方、結腸および直腸の腺癌、ならびに多くの乳がん、肺がんおよび膵がんではCEAは過剰発現される。野生型CAP1エピトープと比べてCAP1(6D)はCTLの感作を増強することができ、近年のCEAをベースとしたワクチン構築物に含まれているので、CEAのHLA A2制限CAP1(6D)改変が選択された。HLA制限ではない完全長CEAが使用されたので、HLAタイプについて試験されなかったが、A*0201が白人で最も頻繁に観察される対立遺伝子であり(対立遺伝子頻度0.2717)、他の集団で一般的である。しかし、HLAタイプについて患者を試験し、HLAタイプと臨床および/またはCMI応答の間の関係を利用することが可能である。
Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)を使用したmCRCにおけるフェーズI/II臨床治験:この最初のヒトにおけるフェーズI/II投薬治験の目的は、安全性を評価すること、mCRC患者でCEA特異的免疫応答を評価すること、および全生存に関するデータを得ることであった。治験はFDA承認IND14325の下で実行され、ClinicalTrials.gov(NCT01147965)に登録された。Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)用量は、以下の通り、3回の処置のために3週ごとに皮下(sc)投与された:コホート1(3人の患者)は、各処置で109VPを受け;コホート2(3人の患者)は、1010VPを受け;コホート3/4(21人の患者)は、1011VPを受け;コホート5(5人の患者)は5×1011VPを受けた。
CEA発現がんを有する32人のmCRC患者が、研究に登録された。登録された32人のmCRC患者は、メジアン年齢57.5(範囲38〜77)、メジアンで3回の事前の化学療法レジメン(範囲:2〜5)が失敗し、90%(範囲70%〜100%)のメジアンパフォーマンスステータスを有し、メジアンで3部位の転移性疾患(範囲1〜5)を有していた。大多数の患者は、全3回の免疫を受けた。免疫を早期に中止した患者は、かなりの疾患進行のためにそうした。mCRC人口統計は、化学療法抗療性mCRCの以前に公開された研究に比べて遜色がない。
いかなる用量レベルでも、処置中止をもたらす用量制限毒性および重大な有害事象はなかった。最も一般的な毒性は、自己限定性の注射部位反応であった。0週目(第1の処置の前)の血液学、化学および抗核抗体(ANA)値を、9週目に得られたそれらと比較した。化学、血液学またはANA値で生物学的に関連した変化はなかった。
免疫療法より前の30日間、抗がん処置から患者をウォッシュアウトした。Kras野生型患者およびKras変異患者の両方が登録された。
二次的目的は、免疫療法中のCEA特異的免疫応答を評価することであった。再び、mCRC患者は処置した患者の最大数を占めたので、免疫原性研究は彼らで実行した。ELISAによって決定されたように、血清試料中にCEAに対する検出可能な抗体活性はなかった。
CEAペプチドに曝露させた後の高いCMI活性(>1000のELISpot IFN−γ SFC)を有する患者からのPBMCでのフローサイトメトリー試験は、CD8+/IFN−γ+細胞(3.5%)、CD8+/IFN−γ+/TNF−α+細胞(1.0%)、CD4+/IFN−γ+細胞(0.4%)およびCD4+/IFN−γ+/TNF−α+細胞(0.2%)を明らかにし、多機能性細胞の存在を実証した。
この実施例は、優良実験室規範(good laboratory practice)(GLP)を使用した、臨床グレードの多標的化ワクチンの生産を示す。以前に、優良製造実施基準()に従ってGLP条件の下で5L細胞バイオリアクターを使用して、Ad5[E1−、E2b−]−CEA(6D)製品を生産した。この実施例は、Ad5[E1−、E2b−]−mMUC1−CおよびAd5[E1−、E2b−]−ブラキュリ製品を、類似のアプローチを使用して5L細胞バイオリアクターで生産することができることを示す。
この実施例は、CEA、MUC1およびT(ブラキュリ)に対する多標的化ワクチンを使用した免疫原性結果を示す。本明細書に記載されるように、純度、感染性および抗原発現について各ウイルスベクター生成物を試験し、各々はこれらの基準に合格した。
雌C57BL/6マウス(n=5)に、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ブラキュリもしくはAd5[E1−、E2b−]−CEAもしくはAd5[E1−、E2b−]−MUC1または1:1:1の比の全3つのウイルスの1010VPの組み合わせ(Tri−Ad5)を皮下注射した。対照マウスには、3×1010VPのAd−ヌル(導入遺伝子挿入断片なし)を注射した。用量は25μlの注射緩衝液(3%スクロースを含有する20mM HEPES)で投与し、マウスは14日間隔で3回ワクチン接種をした。最終注射の14日後に、脾臓および血清を収集した。血清を、−20℃で冷凍した。70μMナイロン細胞ストレーナー(BD Falcon、San Jose、CA)を通して脾臓を静かに破砕することによって、脾細胞懸濁液を生成した。赤血球溶解緩衝液(Sigma−Aldrich、St.Louis、MO)の添加によって赤血球を除去し、脾細胞を2回洗浄し、R10(L−グルタミン(2mM)、HEPES(20mM)、ペニシリン100U/mlおよびストレプトマイシン100μg/mlおよび10%ウシ胎仔血清を追加したRPMI1640)に再懸濁させた。ELISPOTおよびフローサイトメトリーによって、サイトカイン生産について脾細胞をアッセイした。
以前の研究は、多標的化ワクチン混合物によって生成される、誘導された免疫を評価する。Ad5[E1−、E2b−]ベクターによる免疫は用量依存的であり、1用量当たり1×1010VPが通常使用された。C57Bl/6マウスの群(N=5)が、使用された。
ブラキュリ−、CEA−およびMUC1−特異的IFN−γ−またはIL−2−分泌T細胞は、前記のように新たに単離されたマウス脾細胞からのELISpotアッセイによって決定した。簡潔には、ブラキュリまたはCEAまたはMUC1に由来する単一のプールにおいて、0.2μg/ウェルの重複する15merペプチドで、2×105個の脾細胞を刺激した。陽性対照として細胞を1ウェル当たり0.0625μgの濃度のCon Aで刺激し、SIV−NefおよびSIV−Vifに由来する重複した15mer完全ペプチドプールを無関係なペプチド対照として使用した。Immunospot ELISpotプレートリーダーを使用してSFCの数を決定し、結果は106個の脾細胞当たりのSFCの数として報告した。
上のために示した通りに、脾細胞を調製した。96ウェルU底プレート中の1ウェル当たり1×106個の生脾細胞を使用して、刺激アッセイを実行した。ブラキュリ、CEAおよびMUC1のコード配列全体にわたる重複したペプチドのプールを、11アミノ酸重複部を有する15merとして合成し、凍結乾燥したペプチドプールをDMSOに溶解した。SIV−VifおよびSIV−Nefに対応する、同じように構築したペプチドプールは、オフターゲット対照の役目を果した。R10培地(RPMI 1640、10%ウシ胎仔血清および抗生物質)中の脾細胞を、2μg/mL/ペプチドのペプチドプールの添加によって37℃および5%CO2で6時間刺激し、インキュベーションにはタンパク質輸送阻害剤(GolgiStop、BD)を2時間加えた。刺激された脾細胞は、次にリンパ球表面マーカーCD8αおよびCD4について染色し、固定し、透過処理し、次にIFN−γおよびTNFαの細胞内蓄積について染色した。マウスCD8α、CD4、IFN−γおよびTNFαに対する抗体が使用され、染色は抗CD16/CD32の存在下で実行した。フローサイトメトリーを実行し、BD Accuri C6ソフトウェアで分析した。
96ウェル組織培養マイクロプレートに、MC38−CEA2腫瘍細胞を1ウェル当たり細胞数2×104の密度で一晩培養した。プールされた熱不活性化マウス血清を1:50の希釈で追加し、37℃で1時間インキュベートした。次にウサギ血清を補体の供給源として1:50の希釈で追加し、細胞を37℃でさらに2.5時間インキュベートした。製造業者の指示に従ってPromega Cytotox 96非放射性細胞傷害性アッセイを使用して、細胞培養上清をアッセイした。MC38−CEA2細胞のパーセント溶解は、式%溶解=(実験的−標的自発的)/(標的最大値−標的自発的)×100%によって計算した。
確立されたCEA、MUC1またはブラキュリ発現腫瘍をそれぞれ有するマウスでの免疫療法研究で、Ad5[E1−、E2b−]をベースとした三ワクチンの抗腫瘍能力を試験するために研究を実行した。この研究では、Ad5[E1−、E2b−]をベースとした三ワクチンの個々の成分の抗腫瘍活性を評価した。
腫瘍細胞培養
ヒト結腸癌SW620(HLA−A2+、HLA−A24+、ブラキュリ+、MUC1+、CEA+)および膵臓癌ASPC−1(HLA−A1+、HLA−A26+、MUC1+)細胞株を使用した。細胞培養物はマイコプラズマを含まず、完全培地(10%FBS、100U/mlペニシリン、100μg/mlストレプトマイシンおよび2mM L−グルタミンを加えたRPMI−1640)で維持した。
無IL−2培地でアデノウイルスベクターに感染させたDCまたはペプチドでパルスしたDCで24時間刺激したT細胞の上清を、ELISAキットを使用してIFN−γの分泌について評価した。この分析で使用された抗原特異的T細胞株は、以前に報告されている:(a)HLA−A2 CEA特異的CTL、(b)HLA−A2 MUC1特異的CTL、(c)HLA−A24 MUC1特異的CTL、および(d)HLA−A2ブラキュリ特異的CTL。
簡潔には、50μCiの酸化111Inにより標的細胞を37℃で20分間標識し、96ウェル丸底培養プレートの中で細胞数3,000/ウェルで使用した。T細胞を異なる比で加え、37℃で16時間インキュベートした。上清を、ガンマ計数のために収集した。決定を三連で実行し、SDを計算した。標的細胞を培地単独とインキュベートすることによって自発的放出を決定し、0.25%TritonX−100とインキュベートすることによって完全な溶解を決定した。比溶解は、以下の式を使って計算した:溶解(%)=[観察された放出(CPM)−自発的放出(CPM)]/[完全放出(CPM)−自発的放出(CPM)]×100。
この実施例は、本明細書で提供される組み合わせ療法が、HPV初期6(E6)および初期7(E7)がん遺伝子を発現する腫瘍およびHPV関連がんのマウスモデルを低減することを示す。簡潔には、腫瘍保持HPVマウスモデルのマウスを、改変された非腫瘍形成および融合HPV−E6/E7遺伝子を含むAd5[E1−、E2b−]−HPV−E6/E7ワクチンで処置した。マウスで腫瘍を誘導するために使用したTC−1マウス腫瘍細胞株は、HPV−E6/E7ならびにPDL1を発現した。
Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7を構築し、生成した。簡潔には、相同組換えに基づくアプローチを使用して、導入遺伝子をAd5[E1−、E2b−]ベクターにサブクローニングし、複製欠陥ウイルスはE.C7パッケージング細胞株で増殖させ、CsCl2精製し、滴定した。ウイルス感染力価は、E.C7細胞単層の上のプラーク形成単位(PFU)として決定した。ウイルス粒子(VP)濃度は、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)破壊ならびに260nmおよび280nmでの分光測光によって決定した。ベクター対照として、Ad5[E1−、E2b−]−ヌルを用いたが、それは導入遺伝子挿入断片のないAd5プラットフォーム骨格である。
雌C57BL/6マウス(n=5/群)に、Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7またはAd5[E1−、E2b−]−ヌルの様々な用量を皮下注射した(SQ)。用量は25μLの注射緩衝液(3%スクロースを含有する20mM HEPES)で投与し、マウスは14日間隔で3回免疫した。最終注射の14日後に、脾臓および血清を収集した。マウスからの血清は、評価まで−20℃で冷凍した。脾臓被膜を破壊し、70μmのナイロン細胞ストレーナーを通して静かに内容物を圧搾することによって、脾細胞の懸濁液を生成した。赤血球溶解緩衝液の添加によって赤血球を溶解し、溶解後、脾細胞をR10(L−グルタミン(2mM)、HEPES(20mM)(Corning、Corning、NY)、ペニシリン(100U/ml)およびストレプトマイシン(100μg/mL)および10%ウシ胎仔血清を追加したRPMI1640)で2回洗浄した。ELISpotおよびフローサイトメトリーによって、サイトカイン生産について脾細胞をアッセイした。
HPV E6およびE7特異的インターフェロン−γ(IFN−γ)分泌T細胞は、前記のように調製された新たに単離されたマウス脾細胞を使用してELISpotアッセイによって決定した。ELISpotアッセイを実行した。HPV E6およびE7のコード配列全体にわたる重複したペプチドのプールを、11アミノ酸重複部を有する15merとして合成し、凍結乾燥したペプチドプールをDMSOに溶解した。脾細胞(細胞数2×105)を、E6またはE7に由来するプール中の重複する15merペプチドの2μg/mL/ペプチドで刺激した。陽性対照として、細胞を0.06μg/ウェルの濃度のコンカナバリンA(Con A)で刺激した。SIV−Nef(AIDS Research and Reference Reagent Program、Division of AIDS、NIAID、NIH)に由来する重複する15mer完全ペプチドプールを、無関係なペプチド対照として使用した。Immunospot ELISpotプレートリーダーを使用してスポット形成細胞(SFC)の数を決定し、結果は106個の脾細胞当たりのSFCの数として報告した。
上のELISpotアッセイのために記載した通りに、脾細胞を調製した。96ウェルU底プレート中の1ウェル当たり106個の生脾細胞を使用して、刺激アッセイを実行した。2μg/mL/ペプチドのHPV E6、HPV E7またはSIV−Nefペプチドプールの添加によって、R10培地中の脾細胞を5%CO2中の37℃で6時間刺激し、インキュベーションの開始から2時間後にタンパク質輸送阻害剤(GolgiStop、BD)を追加した。刺激された脾細胞は、次にリンパ球表面マーカーCD8αおよびCD4について染色し、パラホルムアルデヒドで固定し、透過性化し、IFN−γおよびTNF−αの細胞内蓄積について染色した。マウスCD8α(クローン53−6.7)、CD4(クローンRM4−5)、IFN−γ(クローンXMG1.2)およびTNF−α(クローンMP6−XT22)に対する蛍光コンジュゲート抗体をBDから購入し、抗CD16/CD32(クローン2.4G2)の存在下で染色を実行した。Accuri C6フローサイトメーター(BD)を使用してフローサイトメトリーを実行し、BD Accuri C6ソフトウェアを使用して分析した。
in vivo腫瘍免疫療法研究のために、8〜10週齢の雌C57BL/6マウスに対して、左側腹部に2×105のTC−1 HPV−E6/E7発現腫瘍細胞をSQ移植した。マウスを、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7のSQ注射により、7日間隔で3回処置した。対照マウスには、同じプロトコールの下で1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌルを注射した。組み合わせ研究では、免疫と同時に100μgのラット抗PD1(クローンRMP1−14)またはアイソタイプラット対照抗体(クローン2A3)を、IPでマウスに与えた。ラット抗PD1抗体およびラットIgG2aアイソタイプ対照抗体は、BioXcellから購入した。腫瘍サイズは2つの対向する寸法(a、b)によって測定し、体積は式V=(a2×b)/2に従って計算し、ここで、aはより短い寸法であった。腫瘍が1500mm3に到達したとき、または腫瘍が潰瘍化したとき、動物を安楽死させた。
8〜10週齢の雌C57BL/6マウスの4群(n=5/群)に対して、0日目に左側腹部に2×105のTC−1腫瘍細胞をSQ移植した。これらの群のうちの2つを、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌルベクター対照によりSQ免疫し、他の2つの群は1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7ワクチンによりSQ免疫した。これらの免疫は、12日目から開始して7日間隔で2回投与した。抗PD1の有効用量を増加させるために、免疫に加えて、Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7の1群およびAd5[E1−、E2b−]−ヌルの1群のマウスに、12日目および16日目に100μgのラット抗PD1(クローンRMP1−14)を、19日目および23日目に100μgのハムスター抗PD1(クローンJ43)をSQ投与した。これらの免疫経路チェックポイントモジュレーターによる処置の対照とするために、残りのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7およびAd5[E1−、E2b−]−ヌル群のマウスに、関連するラットおよびハムスター対照IgG抗体を同じ日に投与した。ハムスター抗PD1抗体およびアイソタイプ対照は、BioXcellから購入した。27日目に、腫瘍を測定し、切除し、計量した。腫瘍を細かく切り刻み、80rpmで回転させながら室温で30分間、ハンクス平衡塩類溶液(HBSS)中のコラゲナーゼIV(1mg/ml)、ヒアルロニダーゼ(100μg/ml)およびDNアーゼIV(200U/ml)の混合液で消化した。酵素は、Sigma−Aldrichから購入した。消化の後、腫瘍懸濁液を70μmナイロン細胞ストレーナーに通し、遠心分離した。赤血球溶血緩衝液(Sigma−Aldrich)の添加によって赤血球を除去し、溶解後、1%(w/v)ウシ血清アルブミンを含有するリン酸緩衝食塩水(PBS)で腫瘍懸濁液を2回洗浄し、染色のために蛍光活性化細胞分取(FACS)緩衝液(PBS pH7.2、1%ウシ胎仔血清および2mM EDTA)に再懸濁させた。CD45(30−F11)、CD4(RM4−5)およびPDL1(MIH5)に対する蛍光コンジュゲート抗体は、BDから購入した。CD8β(H35−17.2)、CD25(PC61.5)、FoxP3(FJK−16s)、PD1(RMP1−30)、LAG−3(C9B7W)およびCTLA4(UC10−4B9)に対する蛍光コンジュゲート抗体は、eBioscienceから全て購入した。抗CD16/CD32(クローン2.4G2)を含有する100μLのFACS緩衝液中で、表面染色を4℃で30分の間実行した。染色された細胞をFACS緩衝液で洗浄し、パラホルムアルデヒドで固定し、(必要ならば)透過処理緩衝液(eBioscience)で透過処理してから、抗CD16/CD32(クローン2.4G2)を含有する100μL透過処理緩衝液中で、蛍光コンジュゲート抗FoxP3または抗CTLA4により4℃で60分の間染色した。細胞を透過処理緩衝液で洗浄し、FACS緩衝液に洗浄して戻し、BD Accuri C6フローサイトメーターを使用して各試料の固定体積をフローサイトメトリーによって分析した。腫瘍細胞は、小さい細胞および大きな細胞を含む散乱ゲート中のCD45−事象と規定した。CD4+TILは、リンパ球散乱ゲート中のCD45+/CD4+事象と規定した。CD8+TILは、リンパ球散乱ゲート中のCD45+/CD8β+事象と規定した。調節T細胞(Treg)は、リンパ球散乱ゲート中のCD45+/CD4+/CD25+/FoxP3+事象と規定した。エフェクターCD4+T細胞は、リンパ球散乱ゲート中のCD45+/CD4+/CD25−/FoxP3−事象と規定した。FoxP3、PDL1、PD1、LAG−3およびCTLA4の陽性発現を決定するために、アイソタイプが一致した対照抗体を使用した。Accuri C6フローサイトメーター(BD)を使用してフローサイトメトリーを実行し、BD Accuri C6ソフトウェアで分析した。
マウスでのCMI応答の誘導に及ぼすAd5[E1−、E2b−]−E6/E7免疫の用量の増加の影響を決定するために、研究を実行した。C57BL/6マウスの群(n=5/群)を、108、109または1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7により14日間隔で3回SQ免疫した。対照マウスは、108VP、109VPまたは1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌル(空のベクター対照)を受けた。最後の免疫から2週後に、IFN−γ分泌細胞のためのELISpot分析によって脾細胞CMI応答を評価した。用量効果が観察され、最も高いCMI応答レベルは1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7による免疫によって得られた。Ad5[E1−、E2b−]−ヌルを注射した対照マウスでは、応答が検出されなかった。
HPV−E6/E7 TC−1腫瘍を有するマウスで、免疫療法処置の抗腫瘍効果を調査した。フローサイトメトリー分析によって評価したとき、これらの腫瘍細胞はPDL1を発現した。PEコンジュゲート抗PDL1で標識したとき、TC−1細胞は537のメジアン蛍光強度(MFI)を有したが、PEコンジュゲートアイソタイプ対照抗体で標識した細胞は184のMFIを有し、TC−1細胞の表面での免疫抑制性PDL1の存在を実証した(データ示さず)。C57BL/6マウスの2群(n=5/群)に対して、0日目に右肋骨下領域に2×105個のTC−1腫瘍細胞をSQ接種した。1、8および14日目に、マウスを、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌル(ベクター対照)または1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7のSQ注射で処置した。全てのマウスを腫瘍サイズについてモニタリングし、腫瘍体積を計算した。Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7で免疫したマウスは、12日目から始まって対照マウスより有意に小さい腫瘍を有し(p<0.01)、実験の残りの期間中有意により小さいままであり(p<0.02)、例えば5匹のうちの3匹のマウスは完全な腫瘍退縮を示した。ベクター対照処置群からのマウスでの腫瘍は、26日目に始まって安楽死のための閾値に近づき始め、この群の全てのマウスは33日目までに安楽死させたが、Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7処置群のマウスは、36日目の実験の終わりに全て生存し、小さい腫瘍(<150mm3)の完全な腫瘍退縮が見られた。
Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7の治療効果を大きな腫瘍の場面で向上させることができるかどうか決定するために、抗PD1抗体を同時投与した。マウスの4群(n=7/群)に、0日目に2×105のTC−1腫瘍細胞を移植し、10日目から開始して、マウスは、SQの1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7とIPの100μgの抗PD1、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌルと100μgの抗PD1、1010VPのAd5[E1−、E2b−]−E6/E7と100μgのラットIgG2aアイソタイプ対照、または1010VPのAd5[E1−、E2b−]−ヌルと100μgのラットIgG2aアイソタイプ対照の週ごとの投与を受けた。腫瘍サイズを経時的にモニタリングし、腫瘍サイズが1500mm3を超えたとき、または腫瘍潰瘍化が存在したとき、マウスを安楽死させた。Ad5[E1−、E2b−]−ヌルと100μgのラットIgG2aアイソタイプ対照を受けた対照マウス(図6A)、およびAd5[E1−、E2b−]−ヌルと100μgの抗PD1で処置されたマウス(図6B)は、類似の腫瘍増殖パターンを示した(図6B)。これらの2つの群の間で、有意な生存利益は観察されなかった。Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7とラットIgG2aアイソタイプ対照を受けたマウスは、対照と比較して遅延した腫瘍増殖パターンを有し、マウスのうちの2匹は、腫瘍移植から52日後にベースラインレベルの近くまでの腫瘍退縮を有した(図6C)。Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7および抗PD1を受けた7匹のマウスのうちの4匹は、25日目から腫瘍退縮を有し、これらのうちの2匹は、53日目の実験の終わりまでに腫瘍クリアランスをもたらした(図6D)。
Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7で処置したマウスにおいて遅延した腫瘍増殖および生存に寄与した細胞集団を分析するために、腫瘍浸潤リンパ球(TIL)をフローサイトメトリーによって分析した。4群のマウスに2×105のTC−1細胞を移植し、10日後に、Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7とPD1抗体の2回の週ごとの免疫による処置を開始した。27日目に、材料および方法に記載の通り、全腫瘍を収集し、処理した。腫瘍1mg当たりの浸潤性CD8+T細胞の数は、Ad5[E1−、E2b−]−ヌルを受けた群と比較して、Ad5[E1−、E2b−]−E6/E7処置群で有意に増加した(図8C)。抗PD1抗体処置は、浸潤性CD8+T細胞の数にほとんどまたは全く影響しなかった(図8C)。腫瘍1mg当たりの浸潤性Treg(CD4+CD25+Foxp3+)の数に関して、4群のいずれの間にも差はなかった(図8B)。しかし、マウスをAd5[E1−、E2b−]−E6/E7ワクチンまたはAd5[E1−、E2b−]−E6/E7ワクチンと抗PD1抗体処置で処置したとき、CD8+T細胞の増加は腫瘍微小環境でのTreg:CD8+T細胞比の低下につながった(図8A)。
Claims (16)
- (a)E2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびMUC1抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクター;
(b)E2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびブラキュリ抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクター;および
(c)E2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびCEA抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクター
を含み、前記MUC1抗原はMUC1−C抗原である、組成物。 - 前記MUC1−C抗原のアミノ酸配列は、配列番号9またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有する、請求項1に記載の組成物。
- 前記ブラキュリ抗原をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号8またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有する、請求項1に記載の組成物。
- 前記CEA抗原をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号1またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有する、請求項1に記載の組成物。
- 前記MUC1−C抗原をコードする前記ヌクレオチド配列を含むウイルスベクター、前記ブラキュリ抗原をコードする前記ヌクレオチド配列を含むウイルスベクター、および前記CEA抗原をコードする前記ヌクレオチド配列を含むウイルスベクターが、E3遺伝子領域、E4遺伝子領域、またはそれらの任意の組み合わせにおける欠失を含む、請求項1に記載の組成物。
- 免疫原性成分をさらに含む、請求項1に記載の組成物であって、前記免疫原性成分は、IFN−γ、TNFα、IL−2、IL−8、IL−12、IL−18、IL−7、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、IL−9、IL−10、およびIL−13の群より選択されるサイトカインを含む、組成物。
- ウイルスベクターが、前記MUC1抗原、前記ブラキュリ抗原および前記CEA抗原からなる群から選択される少なくとも2つの抗原をコードする配列を含む、請求項1に記載の組成物。
- 前記CEA抗原のアミノ酸配列が、配列番号10を含む、請求項1に記載の組成物。
- 処置を必要とする被験体を処置するための組成物であって、
前記組成物は、E2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびMUC1抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクター、E2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびブラキュリ抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクター、ならびにE2b遺伝子領域の欠失、E1遺伝子領域の欠失、およびCEA抗原をコードするヌクレオチド配列を含む組換え型複製欠損性アデノウイルス5型ウイルスベクターを含み、前記組成物は、処置を必要とする前記被験体に投与されることを特徴とし、そして、
前記組成物は、前記MUC1抗原、前記ブラキュリ抗原、または前記CEA抗原、あるいは、前記MUC1抗原、前記ブラキュリ抗原、または前記CEA抗原を発現する細胞に対する免疫応答を誘導し、
処置を必要とする前記被験体はがんを有し、
前記MUC1抗原はMUC1−C抗原である、組成物。 - 前記組成物は、5×1011ウイルス粒子(VP)の前記MUC1−C抗原をコードするヌクレオチド配列を含む前記ウイルスベクター、少なくとも5×1011ウイルス粒子(VP)の前記ブラキュリ抗原をコードするヌクレオチド配列を含む前記ウイルスベクター、および少なくとも5×1011ウイルス粒子(VP)の前記CEA抗原をコードするヌクレオチド配列を含む前記ウイルスベクターを含む、請求項9に記載の組成物。
- 前記免疫応答が、基底の少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、20倍、または25倍である、請求項9に記載の組成物。
- 前記免疫応答が、抗原特異的抗体応答として、抗原特異的細胞媒介性免疫(CMI)として、抗原特異的IFN−γ分泌として、抗原特異的IL−2分泌として、ELISpotアッセイによって、またはこれらの任意の組み合わせによって測定される、請求項9に記載の組成物。
- 前記投与が皮下投与を含む、請求項9に記載の組成物。
- 前記被験体が、結腸直腸腺癌、転移性結腸直腸がん、進行MUC1−C、ブラキュリ、もしくはCEA発現結腸直腸がん、乳がん、肺がん、膀胱がん、または膵がんを有する、請求項9に記載の組成物。
- 処置を必要とする前記被験体がヒトである、請求項9に記載の組成物。
- 前記MUC1−C抗原のアミノ酸配列が、配列番号9またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有するか、前記ブラキュリ抗原をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号8またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有するか、前記CEA抗原をコードする前記ヌクレオチド配列が、配列番号1またはその断片に対して少なくとも90%の配列同一性を有するか、前記CEA抗原のアミノ酸配列が、配列番号10を含むか、またはそれらの任意の組み合わせである、請求項9に記載の組成物。
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