JP5634985B2 - インスリン抵抗性およびβ−細胞機能障害に関連する疾患を治療するためのリメポリドを含む医薬組成物 - Google Patents
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Description
研究デザイン
肥満したインスリン抵抗性のZF(fa/fa)ラットを、8から12週齢まで処置する、IRモデルとして使用した。特に断りのない限り、ラットは12時間点灯/12時間消灯のサイクルで飼育し、飼料および水を自由に摂取させた。研究は、Institutional Animal Care and Use Committeeによって承認された。研究には、合計18匹の動物(Charles Riverによって供給された8週齢の雄)がいた。研究開始時のランダム血糖値に基づいて、動物を3群(媒体群、化合物A群、化合物B群、各群n=6)にランダム化した。
グループ2:ZFラット(fa/fa)(n=6)、化合物B(固形飼料への混合物として40mg/kg/日)
グループ3:ZFラット(fa/fa)(n=6)、媒体処置(対照固形飼料、溶媒強制飼養)。
朝のランダムな血液を、飼料を自由に与えられたラットから、尾の先端の小さな切り口によって採取した。血液は、ヘパリン添加チューブに収集した。血中グルコース濃度を、研究デザイン毎として、One−Touchグルコメーター(Lifescan Inc、Milptias、CA)を使用して測定した。血液サンプルを氷上に設置して遠心分離し、インスリンをアッセイするまで、血漿を−20℃で保管した。ラットにおける血漿中インスリン濃度を、ラット特異的ELISAキット(Crystal Chem Inc、Downers Grove、IL)を用いて測定した。
ラットを4時間絶食させた。2H−GDTチャレンジより1時間前に、ラットに1.75mg/g体重のH2O18(10%18O、Spectra、X XX)を経口強制飼養によって投与して、以前に記載されているような体内総水分量の測定を可能にした。t=0において、血中グルコース濃度をグルコメーターを用いて決定し、血液サンプルを得、ベースラインとなるインスリンおよびH2O18希釈度を決定した。次いで、動物に、[6,6'−2H]グルコース(2g/kg体重、水中50%、Cambridge Isotope Laboratory、Inc.、Andover、MA)を経口強制飼養によって投与した。ラットプロトコルにおいて使用した2g/kg経口グルコース負荷は、所望のダイナミックレンジの範囲内またはその付近のグルコースレベルを達成した。2回目の血液サンプルをt=30分に収集し、グルコース濃度およびインスリン濃度ならびに2H2O含有量を決定した。
動物に、0.9%NaCl中99%重水を腹腔内ボーラス投与(0.35μl/g体重)し、大体5%(体重の60%を水と推定して使用)の体内水分強化量に到達させ、次いで、研究の最後の4週間に飲料水中8%2H2Oを投与した。このプロトコルによると、齧歯動物において、体内水分2H2O強化量は、2、3日以内に安定な定常状態値に到達する。
血漿サンプルの100マイクロリットルアリコートをバイアルの突端部(cape)の内側に入れ、これを逆さにして、ガラス玉で充填されている加熱ブロックに、70℃で一晩置き、バイアルの内部の留出水分を収集した。血漿サンプルにおける血液の重水素および酸素−18同位体比は、Conflo−III Interfaceを介してThermo Finnigan MAT 253 IRMSと連結したThermo Finnigan High Temperature Conversion/Elemental Analyzerを使用して決定した。以前のサンプル由来のヒステリシス効果を最小限に抑えるために、最初の2回の測定値を廃棄した。重水素同位体存在量は、最初に、国際VSMOW標準に対してδ2H値で算出され、次いで、既知の強化量を有する標準の検量線を使用することによって、APEに変換された。2H2O強化量を、グルコース負荷後30分に、ラットについて算出した。強化量にTBWプールサイズを掛け、20(MW 2H2O)で割ることによって、2H2O強化量をmmoleに換算した。生成した総2H2Oを、所与の[6,6'−2H2]グルコース負荷の百分率として算出した。血漿インスリン(INS AUC)およびグルコース(GLU AUC)の濃度曲線下面積は、台形法を使用して算出した。2つの2H−GDTパラメータを算出した:1)2H2O生成量(%負荷)/INS AUC×GLU AUCおよび2)2H2O生成の絶対率(%負荷)。
体重
体重に関して(図1)、媒体処置群、化合物A処置群または化合物B処置群との間に有意差はなかった。
朝のランダム血糖値を、毎週午前9時から11時の間に測定した。この研究の4週間の間、朝のランダム血糖値に関して、化合物B処置群と媒体処置群との間に有意差はなかった(図2)。しかし、化合物A処置群は、他の2群と比較して、本研究の終わりまでに、より低い血糖値へと向かう傾向にあった。
研究終了時、ラットを4時間絶食させ、グルコースレベルおよびインスリンレベルを測定した。化合物A処置動物および化合物B処置動物における空腹時グルコースレベルは、処置後により低い値へと向かう傾向にあったが、媒体処置群では、治療前と治療後で有意差はなかった(図3)。化合物A処置動物および化合物B処置動物の両方において、それらの処置前のレベルと比較して、空腹時インスリンレベルが有意により低かった(図4)。
すべての動物は4週処置前および処置後の両方で2H−GDTを受けた。2H−GDTのために動物を4時間絶食させた。2H−GDTチャレンジより1時間前に、ラットに1.75mg/g体重のH2 18Oを経口強制飼養によって処置して、総水分含量の測定を可能にした。t=0分において血液サンプルを得、ベースラインのインスリン、グルコースおよびH2 18O希釈度を決定した。次いで、[6,6'−2H2]グルコース(2g/kg体重、水中50%)を動物に経口強制飼養によって処置した。グルコース濃度およびインスリン濃度ならびに2H2O含有量のために、90分時点で連続的に血液サンプルを採取した。膵臓の代償の適切さは、達成されたグルコース利用の絶対率(IRに対する膵臓の代償を反映している)と周囲のインスリンの単位当たりの処置グルコースの解糖処理(インスリン感受性を反映している)とを識別することによって評価した。β−細胞代償を、経口[6,6'−2H2]グルコース負荷後の%2H2O回収率として表し、インスリン感受性をインスリンAUC当たりの%2H2O回収率として表す。
研究デザイン
以前の2H−GDT研究(薬理学的研究報告I)では、Zucker fa/faラットにおいて、化合物Bはインスリン感受性(SI)を増加させ、β−細胞反応性(膵臓の代償)を増加または維持した。しかし、この研究では、ベースラインの空腹時インスリンレベルは各群間で異なった。ランダム血糖、空腹時グルコースまたはグルコースAUCに関して、処置群のいずれにも変化がなかったという事実にもかかわらず、空腹時インスリンレベルおよびインスリンAUCに関して、全群の動物に全体的な減少が見られた。本研究の目的は、化合物AおよびBがSIおよび膵臓の代償(PC)に及ぼす効果の、最初の観察結果を確認することであった。第2の目的は、経口グルコース負荷に対するグルコースおよびインスリンの反応に及ぼす薬物の効果の経時的変化をより十分に明確にすることであった。以前の研究から多くの変更を行った。
Charles Riverから入手した36匹の肥満したZucker fa/faおよび6匹の痩せたZucker fa/?雄ラットを、通常の動物施設条件化で、12時間点灯/12時間消灯のサイクルで飼育した。ラットをケージに2匹ずつ飼育し、毎週4時間の絶食中を除き、飼料および水を自由に摂取できるようにした。水は、これらの絶食中にも摂取できる状態にし続けた。
化合物Aは、カリポリドに相当する。化合物Bは、2−メチル−4,5−ジ−(メチルスルホニル)−ベンゾイル−グアニジン塩酸塩水和物に相当する。化合物AおよびBは、Merck Seronoによって散剤形態で供給された。薬物は、およそ40または80mg/kgの用量を得るために、Research Diets、lnc(New Brunswick、NJ)によって、ペレット状の食餌(LabDiet、5001)に食餌1kg当たり0.44gまたは0.88gの濃度で組み込まれた。濃度は、300gのラットは約30g/dの固形飼料を食べるであろうという仮定に基づいて算出された。同一の固形飼料であるが薬物を含まないものを、痩せた対照群動物およびfa/fa対照群動物の両方のラットに与えた。
研究開始より1週間前に、すべてのラットの体重を測定した。4時間の絶食後、血液サンプルを得、血中グルコース、インスリンおよびグリコシル化ヘモグロビンレベル(HbA1c)を決定した。次いで、動物を、これらのパラメータに基づいて、下記に掲載されている群に分けた。ラットは、処置開始時に8週齢であった。
1.ZFラット(fa/fa)(n=6)薬物を含まない固形飼料
2.ZFラット(fa/fa)(n=6)化合物A(40mg/kg/日)
3.ZFラット(fa/fa)(n=6)化合物A(80mg/kg/日)
4.ZFラット(fa/fa)(n=6)化合物B(40mg/kg/日)
5.ZFラット(fa/fa)(n=6)化合物B(80mg/kg/日)
6.痩せたZuckerラット(fa/?)(n=6)薬物を含まない固形飼料。
処置に適切な固形飼料は、1週間に1回行われる予定された4時間の絶食中を除いて、4週間継続的に摂取可能であった。
個々の体重を1週間に1回決定した。ケージ当たりの平均摂餌量も1週間に1回決定し、個々のラットの摂餌量は、ケージ平均を2で割る(1ケージ当たり2匹のラットが飼育されている)ことによって算出した。
ランダム血糖値および空腹時(4時間)血中グルコースレベルの決定は、尾の毛細血管サンプルから得られた血液上で、手持ち式グルコメーター(OneTouch Ultra、Lifescan、Inc.Milapitas、CA)を使用して行った。血漿中インスリンレベルを、ラット特異的ELISA(Ultra Sensitive Rat Insulin ELISA Kit、Crystal Chem、Inc.、Chicago、IL)によって決定した。4時間の絶食期間は、午前9時に開始し、午後1時に血液採取後、終了した。
HbA1cレベルの決定は、研究開始より前および4週目の処置期間終了時に再度、DCA2000分析器(Bayer Healthcare LLC、Elkhart IN)を使用して行った。
インスリン感受性(SI)および膵臓の代償(PC)は、0、14および28日目に2H−グルコース処理試験を行うことによって測定した。
強化量(2H2O APE)に体内総水分量プールサイズを掛け、20(2H2Oの分子量)で割ることによって、2H2O強化量をmmolに換算した。生成した総2H2Oを、処置した[6,6'−2H2]グルコース負荷の百分率として算出した。血漿インスリンおよびグルコースの濃度曲線下面積(AUC 60分)は、台形法を使用して算出した(GraphPad Prsim)。
1.インスリン感受性指数(SI)=2H2O生成量(%負荷)/(グルコースAUC×インスリンAUC)。
グルコースおよびインスリン測定の全体的な結果を、要因として薬物および時間(反復)を使用する二元配置反復測定ANOVAによって分析した。最初の分析の後に、ボンフェローニの事後検定を行い、全群を比較した。データは、p<0.05で有意であると見なす。グルコースおよびインスリンのAUC60分値を、一元配置ANOVAによって分析した後、チューキーの全群比較を行った。
2H−GDT中、グルコース投与の失敗または部分的な失敗が原因で、強化が十分でないことが示されたデータを除外した。
研究前の群割り付け
研究開始時にfa/fa群間に有意差はなかった。予想通り、痩せた動物の体重および空腹時インスリンレベルは、すべてのfa/fa動物とは有意に異なった。グリコシル化ヘモグロビンおよび空腹時グルコースレベルは、痩せた動物においてやや低かったものの、これらの値が他の処置群の値と有意に異なっていなかった(表1)。
すべての動物は、実験期間中に体重が増え続け、このことは、薬物が良好に忍容されたということを示した(二元配置反復測定ANOVA後、ボンフェローニの事後検定:時間:F(4,136)=1488.41、p<0.0001;処置:F(6,36)=31.02、p<0.0001、交互作用 処置×時間:F(24,136)=12.69、p<0.0001)。4週間の処置期間にわたって、体重に関する有意差は、fa/fa群間に認められなかったが(図9)、痩せた対照群と比べて増加した。化合物A群および化合物B群の平均週間摂餌量は、痩せた対照と比較して増加したが、固形飼料を与えたfa/fa対照の摂餌量とは有意に異なっていなかった(表2)。
ランダム血糖値を、絶食していないラットにおいて、1週間に1回、およそ午前9時に決定した。固形飼料fa/fa群と他の処置群とのランダム血糖値の間には有意差はなかった(図10)(二元配置反復測定ANOVA後、ボンフェローニの事後検定:処置F6,136=0.93;p=0.48ns;時間:F4,136=3.25、p=0.01;交互作用F24,136=0.97、p=0.51ns)。
空腹時血中グルコースを、1週間に1回、4時間の絶食後に決定した(午前9時に絶食、午後1時にサンプル採取)。種々の薬物処置群におけるグルコースレベルは、対照fa/fa群とは有意に異なっていなかった(図11)。化合物Aの40mg/kg用量は、4週間の投与の後に空腹時グルコース濃度が増加した(二元配置反復測定ANOVA後、ボンフェローニの事後検定:処置F6,136=5.26;p=0.0006;時間:F4,136=7.68、p=0.0001;交互作用F24,136=0.97、p=0.51ns)。
ベースラインおよび処置4週後の空腹時インスリン濃度を、表3にまとめる(二元配置反復測定ANOVA後、ボンフェローニの事後検定:処置F6,36=11.24、p<0.0001;時間:F6,36=9.48、p<0.0001;交互作用F24,136=3.21、p<0.0001)。痩せた対照のインスリン濃度は、固形飼料を与えたfa/fa対照の濃度とは、3週目以外の各週で有意に異なっていた。処置4週目までに、80mg/kgの化合物Aは両方とも、fa/fa媒体対照と比べて、空腹時インスリンを有意に減少させた。しかし、これらの値は、痩せた対照の値を超えたままであった(図12)。
HbA1cレベルは、経時的な血糖コントロールを反映している。ベースラインでは、すべてのfa/fa群の平均HbA1cレベルは、有意にとはいえなかったが、痩せた対照のレベルをやや超えていた。4週目では、fa/fa対照群および化合物B80mg/kg群のHbA1cレベルは、痩せた対照のレベルを有意に超えていた(表3)。4週間の処置期間にわたって、HbA1cの変化は、いずれの処置群間でも統計的に有意ではなかった(表3)。
化合物AおよびBが膵臓の機能およびインスリン感受性に及ぼす効果を決定するために、動物を離乳させ薬物を含む固形飼料に切り替える前、次いで薬物処置2週後および4週後に、ラットを2H−GDTに供した。
薬物処置開始前のグルコースチャレンジに反応して、血中グルコース濃度は、痩せた対照に比べて、すべてのfa/faラットにおいて増加した(図13a)。60分の時点では、割り付けられることになる40および80mg/kg化合物A群の両方のグルコースレベルが、fa/fa媒体に割り付けられることになる動物のレベルを超えて増加した。しかし、グルコースAUC(60分)は、fa/faラットの全群が、痩せた対照に比べて、類似の程度の経口耐糖能異常を有することを示した(図13b)。ベースラインでは、2H−GDTチャレンジ中、すべてのfa/fa動物は、痩せた対照と比較して、類似の程度の障害された高インスリン血症を示した(図13c、d)。
薬物処置開始後2週目に、すべてのfa/fa動物は、痩せた対照に比べて、血中グルコース濃度が有意に増加した(図14a、b)。同様に、すべてのfa/fa動物は、痩せた対照に比べて、インスリン濃度が増加した(図14c、d)。化合物AおよびBは、処置2週後のグルコースまたはインスリン反応に影響を及ぼさなかった。
薬物処置開始後4週目に、化合物A(40および80mg/kg)および化合物B(40および80mg/kg)を処置したラットは、血中グルコース濃度およびインスリン濃度が上昇し続けた(図15a、b、c、d)。実際に、90分時点では、グルコースレベルは、化合物A40mg/kg処置群において、fa/fa媒体処置ラットのレベルを超えて上昇した。80mg/kgでは、化合物Bは、血中グルコースレベルをわずかに減少させたが、この値は、痩せた媒体ラットまたはfa/fa媒体対照のレベルと有意に異なっていないレベルであった。インスリン濃度は、80mg/kg化合物B群において、上昇したままであった。
前処置
ベースラインで決定したインスリン感受性および膵臓の代償は、すべてのfa/fa群において類似しており(図16a、b)、痩せた対照と比較して有意に減少した。このことは、fa/faラットがそれらの重症のインスリン抵抗性に対して代償する能力は不十分であり、それらの耐糖能に寄与することを示している。後に80mg/kgの化合物Bを処置される動物群に見られた、膵臓の代償に関する明白な減少は、実験的な人為現象であると見なされ得る。その理由として、この減少は後の時点では見られず、同時に行われた他の尺度(例えば、体重、空腹時グルコースまたはインスリン濃度)で、これらの動物には差がなかったためである。PCに関するANOVAの結果:F6,29=33.02、p<0.0001;SIに関しては:F6,29=35.8、p<0.0001。
2週間の処置の後、化合物Bにおける膵臓の代償は、80mg/kg群が痩せた対照群とfa/fa対照群との中間にあった(図16c、d)。PCに関するANOVAの結果:F6,32=9.121、p<0.0001;SIに関しては:F6,32=132.7、p<0.0001。
4週間の薬物処置の後の結果は、2週間のものと類似していた(図16e、f)。80mg/kg化合物B群におけるインスリン感受性は、有意には改善されなかったものの、膵臓の代償に関してわずかな改善が見られた。PCに関するANOVAの結果:F6,32=6.17、p=0.0002;SIに関しては:F6,32=35.01、p<0.0001。
ベースラインでは、体重、摂餌量、HbA1c、ランダム血糖値、空腹時血中グルコース濃度またはインスリン濃度に関して、fa/fa群間に有意差はなかった。同様に、グルコースチャレンジに反応して、fa/fa群は、グルコースAUC(60分)またはインスリンAUC(60分)においてお互いに差はなかったが、痩せた対照とは有意に異なっていた。インスリン感受性および膵臓の代償の両方は、ベースラインでは、他の群と比べて低下していた化合物B(80mg/kg/d)群を除くすべてのfa/faラットにおいて類似していた。4週間の処置の後に、80mg/kgの化合物Aは、空腹時インスリン濃度を減少させたが、他のパラメータに及ぼす効果は全くなかった。化合物Aの用量は、(空腹時またはチャレンジに反応した)グルコースレベルもインスリン感受性も膵臓の代償も有意には改善しなかった。本実験における化合物Bの効果は、中等度であった。80mg/kg/dでの4週間の処置の後に、化合物Bは、グルコースチャレンジに反応してグルコースAUC60分を減少させた。グルコース濃度は、痩せた媒体対照の濃度とfa/fa媒体対照の濃度との中間にあったが、いずれからもわずかに異なっていた。実際には、インスリンAUC60分に及ぼす効果も、インスリン感受性(SI)のコンピュータ測定に及ぼす効果もなかった。膵臓の代償は、2週間の処置の後および4週間の処置の後の両方でわずかに改善されているように思われ、痩せた媒体対照またはfa/fa媒体対照のいずれか一方とわずかに異なっていた。しかし、この群における膵臓の代償は、ベースラインの他の群のものに比べて低い(悪い)ように思われたことが留意される。4週間の化合物Aの処置は、耐糖能を改善しなかったか、または高インスリン血症を有意には改善せず、過度のインスリン反応がfa/faラットにおいて見られた。高用量の化合物Bは、fa/fa対照と比べて、膵臓の代償において劣化を弱めた。化合物Bは、インスリン感受性を効果的には増加させないにしても、膵臓機能にプラスの効果をもたらす。
例A:注射バイアル
本発明による活性成分100gおよびリン酸水素二ナトリウム5gの再蒸留水3l中溶液を、2N塩酸を使用してpH6.5に調整し、除菌し、注射バイアル中に移し、無菌条件下で凍結乾燥し、無菌条件下で密封する。各注射バイアルは、5mgの活性成分を含む。
本発明による活性成分20gと、100gの大豆レシチンおよび1400gのカカオバターとの混合物を融解させ、金型に注入し、冷却する。各坐剤は、20mgの活性成分を含む。
本発明による活性成分1g、9.38gのNaH2PO4・2H2O、28.48gのNa2HPO4・12H2Oおよび0.1gの塩化ベンザルコニウムから、再蒸留水940ml中溶液を調製する。pHを6.8に調整して、溶液を1lにし、照射によって滅菌処理する。この液剤は、点眼剤の形態で使用され得る。
本発明による活性成分500mgを、99.5gのワセリンと無菌条件下で混合する。
本発明による活性成分1kg、4kgのラクトース、1.2kgのジャガイモデンプン、0.2kgのタルクおよび0.1kgのステアリン酸マグネシウムの混合物を、従来のやり方で、各錠剤が10mgの活性成分を含むように圧縮して錠剤を得る。
例Eと同じように錠剤を圧縮し、続いて、従来のやり方で、ショ糖、ジャガイモデンプン、タルク、トラガカントおよび色素のコーティングでコートする。
本発明による活性成分2kgを、従来の方法で、各カプセル剤が20mgの活性成分を含むように硬ゼラチンカプセルに導入する。
本発明による活性成分1kgの再蒸留水60l中溶液を、除菌し、アンプル中に移し、無菌条件下で凍結乾燥し、無菌条件下で密封する。各アンプルは、10mgの活性成分を含む。
本発明による活性成分14gを10lの等張NaCl溶液に溶かし、ポンプ機構を備えた市販のスプレー容器に溶液を移す。溶液は、口または鼻に噴霧され得る。1回の噴霧ショット(約0.1ml)は、約0.14mgの用量に相当する。
Claims (14)
- インスリン抵抗性ならびにβ−細胞機能障害の双方を付随している疾患の予防上もしくは治療上の処置において使用される、有効量の2−メチル−4,5−ジ−(メチルスルホニル)−ベンゾイル−グアニジンおよび/またはその生理学的に許容される塩および/または溶媒和物を活性成分として含む医薬組成物であり、
該活性成分は、インスリン感受性の増大、ならびに、β−細胞の機能の保持または増加のため、末梢のインスリン感作物質、もしくは、直接的なインスリン分泌促進物質として、利用され;
該活性成分の1日あたりの投与量は、0.02〜200mg/kg体重の用量範囲である
ことを特徴とする、医薬組成物。 - 薬学的に認容されるアジュバントをさらに含む、
ことを特徴とする、請求項1に記載の医薬組成物。 - 前記疾患は、2型糖尿病、ないしは、2型糖尿病の進行である、
ことを特徴とする、請求項1または2に記載の医薬組成物。 - 前記活性成分が、塩酸塩、メタンスルホン酸塩、ヘミ硫酸塩、ヘミフマル酸塩およびヘミリンゴ酸塩の群から選択される、2−メチル−4,5−ジ−(メチルスルホニル)−ベンゾイル−グアニジンの塩である、
ことを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載の医薬組成物。 - 前記活性成分が、2−メチル−4,5−ジ−(メチルスルホニル)−ベンゾイル−グアニジン塩酸塩の水和物である、
ことを特徴とする、請求項1〜4のいずれかに記載の医薬組成物。 - 経口または非経口投与のための、請求項1〜5のいずれかに記載の医薬組成物。
- 該活性成分の1日あたりの投与量は、20〜100mg/kg体重の用量範囲である
ことを特徴とする、請求項1〜6のいずれかに記載の医薬組成物。 - インスリン抵抗性ならびにβ−細胞機能障害の双方を付随している疾患の予防上もしくは治療上の処置において使用される、医薬組成物の調製における、活性成分としての、2−メチル−4,5−ジ−(メチルスルホニル)−ベンゾイル−グアニジンおよび/またはその生理学的に許容される塩および/または溶媒和物の使用であり、
該活性成分は、インスリン感受性の増大、ならびに、β−細胞の機能の保持または増加のため、末梢のインスリン感作物質、もしくは、直接的なインスリン分泌促進物質として、利用され;
該活性成分の1日あたりの投与量は、0.02〜200mg/kg体重の用量範囲である
ことを特徴とする、使用。 - 前記β−細胞機能障害は、β−細胞の生存力および/またはβ−細胞の代謝活性の減少に起因する、低減したβ−細胞の応答性ならびに低減したインスリン濃度を有している
ことを特徴とする、請求項8に記載の使用。 - 該活性成分は、加齢に関連したβ−細胞機能の減少を防止するために使用される
ことを特徴とする、請求項8または9に記載の使用。 - インスリン分泌に対する膵β−細胞の機能が、β−細胞機能障害を患う前のインスリン分泌に対する膵β−細胞機能の基準レベルの少なくとも70%に保持される、
ことを特徴とする、請求項8または9に記載の使用。 - インスリン分泌に対する膵β−細胞の機能が、β−細胞機能障害を患う前のインスリン分泌に対する膵β−細胞機能の基準レベルの100%に保持される、
ことを特徴とする、請求項8または9に記載の使用。 - 少なくとも1週間の期間、前記医薬組成物が投与される
ことを特徴とする、請求項8〜12のいずれかに記載の使用。 - 少なくとも4週間の期間、前記医薬組成物が投与される
ことを特徴とする、請求項8〜13のいずれかに記載の使用。
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