JP5134060B2 - Lactobacillusplantarumおよびその使用 - Google Patents
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Description
実験A.Lactobacillus株の調製
胃腸細胞の接着分析を行うのに用いられるLactobacillus株には、Lactobacillus plantarum CMU995、Lactobacillus rhamnosus GG(LGG)、ならびに検査室から分離されたLactobacillus株B7P3、A7G1、B1T4、IA5およびHT5が含まれる。すべてのLactobacillus株をMRS培養溶液(Difco、Detroit、Michigan、USA)で2回活性化し、それらをMRS培養液(5mL)中に移し、培養した。24時間後に、1mLのブロスを採取し、10分間遠心処理し(6000rpm)、リン酸緩衝液(PBS、pH7.2)で2回すすいで、以下の接着実験へと進んだ。乳酸菌rhamnosus GGを対照群として使用した。
この実験で使用された胃腸管細胞系は、Caco−2ヒト結腸腺癌(受託番号:ATCC CRL2102)およびAGS胃腺癌(受託番号:ATCC CRL1739)であった。使用された尿路細胞系は、Helaヒト子宮頸部上皮細胞(受託番号:ATCC CCL−2)であった。これら(Caco−2ヒト結腸腺癌、AGS胃腺癌、およびHelaヒト子宮頸部上皮細胞)はすべて、生物資源保存及研究中心(Bioresource Collection and Research Center)(BCRC)、台湾から購入し、細菌、真菌およびマイコプラズマの汚染試験にすでに合格していた。細胞系が得られた後、それらを直ちに、常温下37℃の水浴中に移し、解凍し、25cm2のペトリディッシュ内で培養し、その後、37℃の、5容量%二酸化炭素を含有する細胞インキュベーター内で培養した。細胞を活性化し、数回、継代し、細胞系が安定となった後、さらなる実験を行った。Caco−2細胞の培養培地は、ダルベッコ変法イーグル培地(DMEM、Gibco Corpから購入)であった。AGS細胞の培養培地は、F−12培地(Gibco Corpから購入)であった。Hela細胞の培養培地は、基礎培地(MEM(Gibco Corpから購入される))であった。上記の培養培地すべてには、10容量%胎児ウシ血清(FBS)が添加されていた。
実験Bで調製された細胞系を5分間、0.05容量%トリプシン(1mL)で処理し、96ウェルプレートに移した。その際、各ウェルに1×104細胞を加えた、培地を毎日、新しい培地(200μL)で替えた。次に、実験A(20μL)で調製されたLactobacillusブロスを細胞に加え、Lactobacillusを細胞に接着させるために、1時間培養した。1時間の接着後に、培地を除去し、細胞を5回、リン酸緩衝溶液(PBS)ですすぎ、細胞に接着しなかったLactobacillusを除去し、10容量%ホルマリン(100μL)を加えて細胞とLactobacillusとを安定化させた。30分後に、細胞を3回、PBSですすぎ、最後にクリスタルバイオレット(100μL)で5分間染色し、細胞表面の染色を落すために、直ちに最小量の75容量%アルコールで洗浄した。
実験D.ペトリディッシュ試験
ウェル拡散法(well−diffusion method)を用いて、病原体増殖に対するLactobacillusの阻害能を評価した。滅菌Brucella寒天培地(Difco、Detroit,Michigan,USA)を細菌ペトリディッシュ内に注ぎ、固めた。次に、終夜培養された、胃腸管の指標病原体、Helicobacter pylori(受託番号:BCRC17021)および臨床的に単離されたHelicobacter pylori CMU83を寒天培地に均一になすりつけた。ブロスがわずかに乾燥した後、直径7mmの穴を、当該寒天培地上に作り、実験AのMRS培地中で24時間培養したLactobacillus plantarum CMU 995のブロス(70μL)を穴に加えた。さらに、Campylobacter jejuni CMU20、Escherichia属種、Staphylococcus aureus、Salmonella属種、Shigella flexneri、Clostridium perfringensおよびCandida albicansを含む、他の胃腸病原体を分析するのにも上記の方法を用いた。各試料を繰り返し3回分析し、培養培地を細菌インキュベーターに入れ、16から18時間後に、細菌阻害域(環)の直径を測定した。ここで、Lactobacillus rhamnosus GGの発酵溶液を陽性対照として用い、pH6.3のMRS培地を陰性対照として用いた。結果を表2に示す。
Caco−2細胞、AGS細胞およびHela細胞(各1mL;密度:5×104細胞/mL)を24ウェル細胞培養プレートでそれぞれ培養し、37℃の、5容量%二酸化炭素/95容量%空気を含む細胞インキュベーターに入れ、2日間培養し、以下の2種類の試験を行った。
2日間培養され、均一に混合されたCaco−2細胞、AGS細胞またはHela細胞に、実験Aで24時間培養されたLactobacillus plantarum CMU995の発酵溶液(100μL)を加え、細胞を細胞インキュベーターに入れ、0.5時間インキュベートした。次に、細胞に接着しなかったLactobacillusを除去するために、細胞を滅菌食塩水ですすいだ。Helicobacter pylori CMU83、腸管凝集性大腸菌(EAggEC)またはSalmonella enteritidis(各1mL、1×107cfu/mL)を細胞に加え、均一に混合し、細胞インキュベーターに1時間、細胞を入れ、培養し、病原体を細胞に感染させた。次に、培地を除去し、細胞に感染しなかった病原体を除去するために、細胞を滅菌食塩水ですすいだ。0.1容量%Triton−X−100(1mL)(Sigma、Louis,Missouri,USA)をさらに加え、感染している病原体を放出させるために、細胞を溶解させた。最後に、溶解した細胞を含有している溶液を収集し、PBS溶液(9mL)中に入れた。溶液を適切に希釈した後、混釈平板法を用いて、細菌数を計算した。ここで、細胞にLactobacillusが加えられなかった実験を対照群として用い、計算結果を下記の式に当てはめて、Lactobacillus plantarum CMU995の感染阻害率を計算した。結果を表3に示す。
感染阻害率=(対照群における病原体の数−Lactobacillusの添加を行った群における病原体の数)/対照群における病原体の数×100%
Caco−2細胞、AGS細胞またはHela細胞をそれぞれ2日間培養し、Helicobacter pylori CMU83、腸管凝集性大腸菌(EAggEC)またはSalmonella enteritidis(各1mLで、1×107cfu/mL)を細胞に加え、病原体を細胞に感染させるために、細胞を0.5時間培養した。次に、細胞に侵入しなかった病原体を除去するために、細胞を滅菌食塩水ですすいだ。実験Aで24時間培養されたLactobacillus plantarum CMU995の発酵溶液(100のμL)を細胞に加え、Lactobacillus plantarum CMU995に病原体を駆逐させるために、細胞を1時間培養した。最後に、細胞に接着しなかったLactobacillusおよび駆逐された病原体を除去するために、細胞を滅菌食塩水ですすいだ。感染している病原体を放出させるために、0.1容量%Triton−X−100(1mL)を加えて、細胞を溶解させた。溶解した細胞を含有している溶液を収集して、適切に希釈した後、混釈平板法によって細菌数を計算した。ここで、細胞にLactobacillusが加えられなかった実験を対照群として用い、計算結果を上記の式に当てはめて、Lactobacillus plantarum CMU995の感染阻害率を計算した。結果を表4に示す。
実験G.実験動物群
6週齢の雄性C57BL/6マウス(Lasco,Inc.、台湾から購入)がこの実験で使われた。マウスの体重は20から26gにわたり、マウスは、温度が22℃に維持され、定期的な12時間の明暗を有する独立したIVCマウス飼育システムで飼育された。マウスに滅菌飼料および逆浸透水を与え、自由摂取させた。マウスを環境に適応させるため、実験を始める前に、これらのマウスに2週間飼料を与えた。マウスをランダムに、1群当たり8匹のマウスの4群に分類した。Helicobacter pyloriによって感染する前に、各群のマウスは、様々な濃度の新たに調製されたLactobacillus plantarum CMU995ブロス200μLで、特定の時間に連続7日間経口給餌され、1日1回給餌された。各群の実験の条件を以下に記載する。
滅菌濾過された生理的食塩水によってマウスに給餌した。
Lactobacillus plantarum CMU995をMRS培養液で24時間培養し、ブロスを収集し、遠心処理し、生理食塩水中に再溶解させた。細菌濃度を1×1010cfu/mLに調整し、次に細菌をマウスに給餌した。
Lactobacillus plantarum CMU995をMRS培養液で24時間培養し、ブロスを収集し、遠心処理し、生理食塩水中に再溶解させた。細菌濃度を1×109cfu/mLに調整し、細菌を次にマウスに給餌した。
Lactobacillus plantarum CMU995をMRS培養液で24時間培養し、ブロスを収集し、遠心処理し、生理食塩水中に再溶解させた。細菌濃度を1×108cfu/mLに調整し、細菌を次にマウスに給餌した。
マウスにLactobacillus plantarum CMU995ブロスを7日間給餌した後、その翌日に、2×107コロニー形成単位(cfu)のHelicobacter pylori CMU83を含有しているブロスをマウスに経口給餌した。感染を引き起こすために、マウスに3日間連続給餌し、その翌日に、マウスを1日間断食させた。次に、マウスを二酸化炭素で屠殺し、それらの頸部および脊椎骨を分離した。マウスの胃および十二指腸切片(およそ0.5g)を採取して、9.5mLの滅菌PBS溶液を含有するeppendorfチューブに入れ、ホモジナイザーで3分間撹拌した。断片化した組織を含有する溶液(1mL)を採取し、次に滅菌PBS溶液で連続的に10倍希釈した。様々な希釈倍率で希釈された溶液(100μL)を採取し、塗抹平板法によってBrucella寒天培地上にそれぞれプレーティングし、Helicobacter pyloriをスクリーニングするために、2.5容量%胎児ウシ血清および選択剤SR147E(Oxoid,Hampshire,England)を培地に加えた。この培地を試験して、この実験で使用するHelicobacter pylori CMU83をスクリーニングできることを確認した。細菌を培養するために、培地を37℃で48時間微好気条件下に置き、細菌のコロニー形成単位(cfu)を計算した。各実験の統計分析は3回繰り返し、実験結果はSPSS 10.0ソフトウェアによって分析した。最初に、一元配置ANOVA(分散分析)を用いて各群間の有意差を検定し、判定基準はp<0.05であった。結果を表5に示す。
[Lactobacillus同定キット分析]
本発明のLactobacillus plantarum CMU995を16時間MRS培養培地で活性化およびインキュベートし、Lactobacillusの同定を専門とするAPI 50 CHL同定キット(Biomerieux、Marcy I’Etoile、Frace)を用いて、株の種を分析および確認した。
Lactobacillus用の特異的プライマーを用いて、Lactobacillus plantarum CMU995の16S−23S rRNA区域のポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を行い、結果として生じた産物の配列を分析した。得られたPCR産物の配列を分析した。配列の一部を配列番号1に示す。
配列番号1
ACATTGCAACAGCGCGTGCCGTATTTTAATTATCGGCTAGCCACAGAGATCTATCCGTTAAACAAACAATTTACTGAGAAATACGGGAATAAGTATGGGAAATATCCCTAGCGAACCCTAAATAATGGCCCCCCTGTCTTGAACAGATAGACTGGCCAAACTCCTACGGGAGAAAACGTTGGGAAATTTTGCTCAATGGGCCCAACCCTGAGGCGCCCCTGCCACATATATGAGGAAAGCCTTCGGGTTATAAAATTTTTTTTCAGCGAGGAGTGAAGTGAGGATAAGAACCTTCTACA
LU-5: 5'-CTAGCGGGTGCGACTTTGTT-3' 配列番号2
Lac-2: 5'-CCTCTTCGCTCGCCGCTACT-3' 配列番号3
パルスフィールドゲル電気泳動を用いて、Lactobacillus plantarum CMU995のゲノムDNAを分析した。Lactobacillus plantarum CMU995の遺伝子指紋地図を得るための制限酵素としてSgsI(Promega Corporation、Madison,USA)を用いた。結果を図1に示す。図1における遺伝子指紋地図は、Lactobacillus plantarum CMU995の遺伝子指紋同定の参照として示すのみであり、この株の遺伝子同定結果を限定するために示すものではない。
Claims (12)
- 受託番号DSM 23780の下にドイツ微生物細胞培養収集機関(DSMZ)に寄託されている、単離されたLactobacillus plantarum CMU995。
- 胃腸管および/または尿路に接着できる、請求項1に記載のLactobacillus plantarum CMU995。
- 病原体の増殖を阻害できる、請求項1または2に記載のLactobacillus plantarum CMU995。
- 病原体が胃腸管および/または尿路に接着するのを阻害できる、請求項1から3のいずれかに記載のLactobacillus plantarum CMU995。
- 病原体が、Helicobacter pylori、Campylobacter jejuni、Salmonella属種、Escherichia属種、Staphylococcus属種、Shigella flexneri、Clostridium perfringens、Candida albicansおよびこれらの組合せからなる群から選択される、請求項3または4に記載のLactobacillus plantarum CMU995。
- 病原体がHelicobacter pyloriである、請求項3から5のいずれかに記載のLactobacillus plantarum CMU995。
- 請求項1から6のいずれかに記載のLactobacillus plantarum CMU 995を含む組成物。
- 病原体を阻害するため、胃腸管を保護するため、および/または尿路を保護するために使用される、請求項7に記載の組成物。
- 病原体が、Helicobacter pylori、Campylobacter jejuni、Salmonella属種、Escherichia属種、Staphylococcus属種、Shigella flexneri、Clostridium perfringens、Candida albicansおよびこれらの組合せからなる群から選択される、請求項8に記載の組成物。
- 医薬品組成物、飼料、飲料、栄養補助剤、乳製品、食品、健康食品、スプレーまたは坐薬である、請求項7から9のいずれかに記載の組成物。
- 病原体を阻害するため、胃腸管を保護するため、および/または尿路を保護するための医薬の製造のための、請求項1から6のいずれかに記載のLactobacillus plantarum CMU 995の使用。
- 病原体が、Helicobacter pylori、Campylobacter jejuni、Salmonella属種、Escherichia属種、Staphylococcus属種、Shigella flexneri、Clostridium perfringens、Candida albicansおよびこれらの組合せからなる群から選択される、請求項11に記載の使用。
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