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JP4440346B2 - アミノオキシ修飾オリゴヌクレオチド - Google Patents

アミノオキシ修飾オリゴヌクレオチド Download PDF

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JP4440346B2 JP53583898A JP53583898A JP4440346B2 JP 4440346 B2 JP4440346 B2 JP 4440346B2 JP 53583898 A JP53583898 A JP 53583898A JP 53583898 A JP53583898 A JP 53583898A JP 4440346 B2 JP4440346 B2 JP 4440346B2
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Description

関連出願データ
本特許出願は１９９７年２月１４日に出願された米国仮出願第６０／０３７，１４３号の優先権の利益を主張し、その出願の内容は参照することによりここに組み込まれる。
発明の分野
本発明はアミノオキシ修飾オリゴヌクレオチドに向けられる。このようなオリゴヌクレオチドは、治療薬、診断薬、及び研究用試薬として有用である。本発明は、さらに、オリゴヌクレオチドを調製するための前駆体として有用であるアミノオキシヌクレオチド、ヌクレオシド及びヌクレオシド代替物に向けられる。本発明の特定の態様において、オリゴヌクレオチドへの本発明の１つ以上のアミノオキシ部分の組み込みは、とりわけ、それらのオリゴヌクレオチドの相補鎖への結合性を向上させる。本発明のさらなる態様においては、１つ以上のアミノオキシ部分の組み込みにより、それらのオリゴヌクレオチドへの様々な有用なリガンドの結合に有用な１つ以上の結合部位が提供される。このようなリガンドには、例えば、リポーター基及び、取り込み、分配又は他の薬力学的特性を修飾する基が含まれる。
発明の背景
比較的短いオリゴヌクレオチドをｍＲＮＡに相補的にハイブリダイゼーションさせてこれら細胞内核酸の正常な必須機能を破壊させることを含む機構によってｍＲＮＡの発現を調節するのに、オリゴヌクレオチドを用いることができることが知られている。ハイブリダイゼーションは相補的ＲＮＡ又はＤＮＡへのオリゴヌクレオチドの配列特異的な塩基対水素結合である。
診断薬において、及び研究用試薬として、さらに治療薬において用いるためには、特定のＤＮＡ又はＲＮＡに忠実に結合するオリゴヌクレオチドの能力が重要な因子である。相補的核酸に結合するオリゴヌクレオチドの相対能力は特定のハイブリダイゼーション複合体の溶融温度を測定することにより比較される。二重らせんの特徴的な物理特性である溶融温度（Ｔm）は、５０％のらせん対コイル（ハイブリダイズしていない）形態が存在する温度（℃）である。Ｔmは、ＵＶ分光法を用いてハイブリダイゼーションの形成及び破壊（溶融）を決定することにより測定される。ハイブリダイゼーションの間に生じる塩基の積み重ねにはＵＶ吸収の減少が伴う（淡色化）。したがって、ＵＶ吸収の減少はより高いＴmを示す。Ｔmが高いほど核酸鎖の結合力が大きい。したがって、適切な強度及び忠実度でその標的ＲＮＡ（又はＤＮＡ）にハイブリダイズするように修飾されたオリゴヌクレオチドが、研究用試薬、診断薬、及びオリゴヌクレオチド治療薬として使用するのに非常に望ましい。
様々な置換が、オリゴヌクレオチドのヌクレオシドの塩基及び糖部分に導入されている。これらの置換のうちの特定のものを含めることで得られるオリゴヌクレオチドに何らかの向上がみられる。そのような有用な向上の１つは、２’−置換基、例えば、ハロ、アルコキシ及びアリルオキシ基を導入することによるオリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性の増加である。
Ikeharaら（European J.Biochem.,1984,139,447）は、１つの２’−デオキシ−２’−フルオログアノシン残基又は１つの２’−デオキシ−２’−フルオロアデニン残基を含有する混合八量体の合成を報告している。Guschlbauer及びJankowski（Nucleic Acids Res,1980,8,1421）は、３’エンドの寄与が２’−置換基の電気陰性度の増加に伴って増加することを示している。かくして、２’−デオキシ−２’−フルオロウリジンは８５％のＣ３’エンド型を含有する。
さらに、２’−置換−２’−デオキシアデノシンポリヌクレオチドがＤＮＡではなく二本鎖ＲＮＡに類似することを示す証拠が提示されている。Ikeharaら（Nucleic Acids Res.,1978,5,3315）は、その相補体と二重鎖を形成するポリＡ、ポリＩ、又はポリＣにおける２’−フルオロ置換基が標準的な溶融検定による測定でリボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチドポリ二重鎖よりも安定であることを示している。Ikeharaら（Nucleic Acids Res.,1978,4,4249）は、ポリ（２’−デオキシアデニル酸）における２’−クロロ又はブロモ置換基がヌクレアーゼ耐性をもたらすことを示している。Ecksteinら（Biochemistry,1972,11.4336）は、ポリ（２’−クロロ−２’−デオキシウリジル酸）及びポリ（２’−クロロ−２’−デオキシシチジル酸）が様々なヌクレアーゼに対して耐性であることを報告している。Inoueら（Nucleic Acids Res.,1987,15,6131）は、全てのヌクレオチドに２’−ＯＭｅ置換基を含有する混合オリゴヌクレオチド配列の合成を記述している。この混合２’−ＯＭｅ−置換オリゴヌクレオチドは、そのＲＮＡ相補体にＲＮＡ−ＲＮＡ二重鎖と同程度の強さでハイブリダイズし、このＲＮＡ−ＲＮＡ二重鎖は同じ配列のＲＮＡ−ＤＮＡヘテロ二重鎖よりもかなり強い（九量体についてのＴm、４９．０及び５０.１対３３．０°）。Shibaharaら（Nucleic Acids Res.,1987,17,239）は全てのヌクレオチドに２’−ＯＭｅ置換基を含有する混合オリゴヌクレオチドの合成を報告している。この混合２’−ＯＭｅ−置換オリゴヌクレオチドはＨＩＶの複製を阻害するように設計された。
ヒドロキシル基の立体効果、その水素結合の能力、及びその電気陰性度対水素原子の特性を複合させたものがＲＮＡとＤＮＡの間の全体的な構造の差の原因であるものと信じられる。熱溶融研究で、２’−メトキシオリゴヌクレオチドの二重鎖安定性（ハイブリダイゼーション）の順序がＲＮＡ−ＲＮＡ＞ＲＮＡ−ＤＮＡ＞ＤＮＡ−ＤＮＡの順であることが示されている。
１９９１年５月７日発行の米国特許第５,０１３,８３０号は、２’−Ｏ−アルキル置換基を有し、ホスホジエステル結合によりＤＮＡ部分に結合するＲＮＡ部分を含む混合オリゴヌクレオチドを開示している。しかしながら、ホスホジエステルが存在することから、これらのオリゴヌクレオチドはヌクレアーゼ開裂に対して感受性である。
１９８９年４月１３日出願の欧州特許出願第３３９,８４２号は、２’−Ｏ−メチルリボオリゴヌクレオチドホスホロチオエートを含む２’−Ｏ−置換ホスホロチオエートオリゴヌクレオチドを開示している。また、この出願は、ヌクレアーゼ耐性を欠く２’−Ｏ−メチルホスホジエステルオリゴヌクレオチドをも開示している。
１９８７年８月２７日出願の欧州特許出願第２６０,０３２号は、糖部分に２’−Ｏ−メチル置換基を有するオリゴヌクレオチドを開示している。この出願は、他の２’−Ｏ−アルキル置換基、例えば、エチル、プロピル及びブチル基にも言及している。
１９９１年５月１６日公開の国際公開ＷＯ９１／０６５５６号及び米国特許第５,４６６,７８６号は、ヌクレアーゼ活性に対して安定である、２’位に置換基を有するオリゴマー誘導体を開示している。オリゴヌクレオチドに組み込まれる具体的な２’−Ｏ−置換基には、エトキシカルボニルメチル（エステル形態）、及びその酸、アミド及び置換アミド形態が含まれる。
１９９０年５月１５日出願の欧州特許出願第３９９,３３０号は、２’−Ｏ−アルキル置換基を有するヌクレオチドを開示している。
１９９１年１０月１７日公開の国際公開ＷＯ９１／１５４９９号は、２’−Ｏ−アルキル、−アルケニル及び−アルキニル置換基を有するオリゴヌクレオチドを開示している。
Martin,P.,Helvetica Chimica Acta,78,1995,486-504は、２’−メトキシエトキシ、２’−メトキシ（トリス−エトキシ）及び他の置換基を含む特定のヌクレオシド及びそれらから調製されるオリゴヌクレオチドを開示している。２’−メトキシエトキシ及び２’−メトキシ（トリス−エトキシ）置換基のいずれかで置換されたヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドは、Ｔmの増加によって判定されるようにハイブリダイゼーションの改善を示した。
ハイブリダイゼーションの忠実度が改善されたオリゴヌクレオチドが、研究用試薬、診断薬及び治療薬として有用なオリゴヌクレオチドの開発において非常に重要なものであることが認識されてきている。
発明の簡潔な説明
本発明によると、ＤＮＡ及びＲＮＡの活性を調節するアミノオキシ含有組成物が提供される。好ましい組成物は構造：
Figure 0004440346
〔式中、
Ｂｘはプリン又はピリミジン複素環塩基であり；
Ｔ1及びＴ2は、独立に、ＯＨ、ヒドロキシル保護基、活性化リン酸基、ヌクレオチド、ヌクレオシド、又はオリゴヌクレオチドであり、そして
Ｌは構造：
Figure 0004440346
（式中、
ｍは０〜１０であり；
ｙは１〜１０であり；
ｘは１であり；
ＥはＮ（Ｒ1）（Ｒ2）又はＮ＝Ｃ（Ｒ1）（Ｒ2）であり；そして
各々のＲ1及びＲ2は、独立に、Ｈ、Ｃ1〜Ｃ10アルキル、窒素保護基であるか、又はＲ1及びＲ2は一緒になって窒素保護基であるか、又はＲ1及びＲ2はＮ及びＯから選択される少なくとも１つのヘテロ原子を含むことができる環構造に加わっている。）のうちの１つを有する。〕
の化合物を含む。
Ｂｘは、好ましくは、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン、ウラシル、チミン、シトシン、２−アミノアデニン又は５−メチルシトシンである。Ｒ1及びＲ2は、環構造、例えば、イミダゾール、ピペリジン、モルホリン又は置換ピペラジン（例えば、Ｃ1〜Ｃ12アルキルで置換されているピペラジン）であり得る。Ｔ1及びＴ2の両者がオリゴヌクレオチドであってもよく、又はそれらの一方がオリゴヌクレオチドで他方がヒドロキシル保護基であってもよい。
特定の態様において、本発明の組成物は構造：
Ｑ−Ｌ
〔式中、
Ｌは構造：
Figure 0004440346
（式中、
ｍは０〜１０であり；
ｙは１〜１０であり；
ＥはＮ（Ｒ1）（Ｒ2）又はＮ＝Ｃ（Ｒ1）（Ｒ2）であり；
各々のＲ1及びＲ2は、独立に、Ｈ、Ｃ1〜Ｃ10アルキル、窒素保護基であるか、又はＲ1及びＲ2は一緒になって窒素保護基であるか、又はＲ1及びＲ2はＮ及びＯから選択される少なくとも１つのヘテロ原子を含むことができる環構造に加わっている。）のうちの１つを有し、
そして、ｘとＱは：
ｘが１である場合、Ｑが：
２’、３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されているヌクレオシド；
２’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されている３’−亜リン酸化ヌクレオシド；
３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されている２’−亜リン酸化ヌクレオシド；又は
２’、３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されているヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドになるように選択されるか；又は
ｘが０である場合、Ｑは構造：
Figure 0004440346
（式中、
ｎ及びｐは、独立に、０〜１０であって、ｎ及びｐの合計は２より大きくて１１未満であり；
Ｐｇはヒドロキシル保護基（例えば、ジメトキシトリチル）であり；そして
Ｚは固体支持体又は保護された活性化リン部分（例えば、シアノエトキシ−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト基）である。）の化合物である。〕
の化合物を含む。
好ましくは、ｐは１でありｎは４である。
好ましい化合物の群において、ｙは１〜４である。より好ましい化合物の群においては、ｙは１である。
好ましい化合物に群において、ｍは１〜６である。より好ましい化合物の群においては、ｍは２である。
好ましい化合物の群において、Ｒ1及びＲ2はＨ又はアルキルである。さらなる化合物の群においては、Ｒ1及びＲ2は窒素保護基である。窒素が保護された好ましい基にはフタルイミド−Ｎ−オキシ及びホルムアルオキシミル（formaloximyl）が含まれる。
好ましい群の化合物において、Ｑは、ヌクレオシド、ヌクレオチド又はオリゴヌクレオチド中に組み込まれているヌクレオシドである。より好ましい化合物の群においては、Ｑは、オリゴヌクレオチド中に組み込まれている２’又は３’置換ヌクレオシドである。
好ましい化合物の群において、Ｑは構造：
Figure 0004440346
（式中、Ｐｇ及びＺは上に定義される通りである。）である。さらに好ましい化合物の群においては、Ｚは固体支持体である。さらに好ましい化合物の群においては、Ｚは保護された活性化リン原子である。より好ましい化合物の群においては、Ｚは保護されたホスホロアミダイト部分である。
本発明の好ましい組成物は、上記Ｑ−Ｌ化合物の１つ以上を含むように修飾されたオリゴヌクレオチドを含む。したがって、これらの組成物は、本発明のアミノオキシ修飾ヌクレオシドを１つ以上有するオリゴヌクレオチド、又はＱが上記構造Ｉである式Ｑ−Ｌのヌクレオシド代替物を１つ以上含むように修飾されたオリゴヌクレオチドを含む。これらオリゴヌクレオチドは、一本鎖又は二本鎖標的ＤＮＡ又はＲＮＡの予め選択されたヌクレオチド配列と特異的にハイブリダイズし得る。これらオリゴヌクレオチドは、一本鎖ＤＮＡ及びＲＮＡを認識してそれと二本鎖を形成する。
本発明の修飾オリゴヌクレオチドは、連結基を介して共に連結する核酸塩基の一本鎖からなる。本発明のオリゴヌクレオチドは、長さが約５〜約５０個の核酸塩基の範囲であることができる。しかしながら、本発明の特定の好ましい態様によると、長さが約１２〜２５塩基の配列が望ましい。
本発明のオリゴヌクレオチドの好ましい個々のヌクレオチドは、リン結合を介して結合していてもよい。好ましいリン結合には、ホスホジエステル、ホスホロチオエート及びホスホロジチオエート結合が含まれ、ホスホジエステル及びホスホロチオエート結合が特に好ましい。
本発明の好ましいヌクレオベースには、アデニン、グアニン、シトシン、ウラシル、チミン、キサンチン、ヒポキサンチン、２−アミノアデニン、６−メチル、２−プロピル及び他のアルキルアデニン、５−ハロウラシル、５−ハロシトシン、６−アザウラシル、６−アザシトシン及び６−アザチミン、シュードウラシル、４−チオウラシル、８−ハロアデニン、８−アミノアデニン、８−チオールアデニン、８−チオールアルキルアデニン、８−ヒドロキシルアデニン及び他の８−置換アデニン、８−ハログアニン、８−アミノグアニン、８−チオールグアニン、８−チオールアルキルグアニン、８−ヒドロキシルグアニン及び他の８−置換グアニン、他のアザ及びデアザウラシル、他のアザ及びデアザチミジン、他のアザ及びデアザシトシン、他のアザ及びデアザアデニン、他のアザ及びデアザグアニン、５−トリフルオロメチルウラシル及び５−トリフルオロシトシンが含まれる。
本発明の一態様によると、オリゴヌクレオチドのヌクレオシドのうちの少なくとも１つが修飾される。ヌクレオシド成分の修飾に好ましい部位は、そのヌクレオシドの２’、３’又は５’位である。この修飾は、アミノオキシ部分を１つ以上のヌクレオシドに導入するものを含む。本発明のさらなる態様によると、アミノオキシ部分を有する少なくとも１つのヌクレオシド代替物がオリゴヌクレオチドの修飾に用いられる。こうしてアミノオキシで修飾されたヌクレオシド又はアミノオキシ含有ヌクレオシド代替物は、オリゴヌクレオチドを調製するための標準合成法を用いて、オリゴヌクレオチドに組み込まれ、結果としてオリゴヌクレオチドへのアミノオキシ部分の組み込みをもたらす。
好ましい修飾は、２’、３’もしくは５’−Ｏ−アミノオキシアルキル、２’、３’もしくは５’−Ｏ−アルキルアミノオキシアルキル又は２’、３’もしくは５’−Ｏ−ジアルキルアミノオキシアルキル修飾を含むように修飾された１つ以上のヌクレオシドを包含するオリゴヌクレオチドを含む。さらに好ましい修飾は、オリゴヌクレオチドに組み込むための第１及び第２ヒドロキシ官能基を有するアルキル単位であって、かつアミノオキシ部分での結合を介して結合基をオリゴヌクレオチドに連結させるのに用いるためのそのアミノオキシ部分を有する側鎖を有するアルキル単位を含むヌクレオシド代替物を含む。このような結合は、このアミノオキシ部分の窒素原子の適切なアルキル化又はアシル化により行なわれる。ビタミンＡファミリーの化合物を、そのファミリーの様々なメンバーに見出される酸又はアルコール官能基を介してオリゴヌクレオチドに結合させることができる。例えば、レチノイン酸の酸部分のＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステルをオリゴヌクレオチドからペンダントになっているリンカーのアミン官能基に結合させることで、オリゴヌクレオチドへのビタミンＡ化合物のアミド結合を介した連結が生じる。また、レチノールがそのホスホロアミダイトに変換されており、これは５’結合に有用である。
結合基又はリガンドとしての選択に適するものは：ステロイド分子、リポーター分子、親油性分子、リポーター酵素、ペプチド、タンパク質（すなわち、本質的に同じものからなる置換基）、又はグリコールもしくはグリコール様リンカーである。本発明の目的上、“リポーター分子”及び“リポーター酵素”という用語は、それらが、ゲル、流体、全細胞系、破壊された細胞系等において、分光、放射能、比色検定、蛍光、及び特異的結合のような物理的特性を用いて同定することを可能にする物理的又は化学的特性を有する分子又は酵素を包含するものである。ステロイドにはペルヒドロ−１,２−シクロペンタノフェナントレン環系を包含する化合物が含まれる。タンパク質及びペプチドは、アミノ酸のポリマーとしてのそれらの通常の意味で用いられる。通常、ペプチドには、単位分子当たりタンパク質よりも小数のアミノ酸を有するもののようなポリマーが含まれる。親油性分子には、脂肪酸；エステル；アルコール及び他の脂質分子；ジニトロフェニル基のような置換芳香族基；アダマンタン及びバックミンスターフラーレンのようなケージ構造体；及びベンゼン、ペリレン、フェナントレン、アントラセン、ナフタレン、ピレン、クリセン及びナフタセンのような芳香族炭化水素のような天然及び合成芳香族及び非芳香族部分が含まれる。
ステロイド分子として特に有用なものは、コール酸、デオキシコール酸及びデヒドロコール酸を含む胆汁酸；コルチゾン、ジゴキシゲニン、テストステロン及びコレステロールを含むステロイドであり、コルチゾン環の３位に二重結合を介して結合したトリメチルアミノメチルヒドラジド基を有するコルチゾンのようなカチオン性ステロイドもある。リポーター分子として特に有用なものは、ビオチン、ジニトロフェニル、及びフルオロセイン染料である。親油性分子として特に有用なものは、脂環式炭化水素、飽和及び不飽和脂肪酸、ワックス、テルペン、並びにアダマンタン及びバックミンスターフラーレンを含む多脂環式炭化水素である。リポーター酵素として特に有用なものは、アルカリ性ホスファターゼ及びセイヨウワサビペルオキシダーゼである。ペプチド及びタンパク質として特に有用なものは、ホスホジエステラーゼ、ペルオキシダーゼ、ホスファターゼ及びヌクレアーゼタンパク質を含む配列特異的ペプチド及びタンパク質である。このようなペプチド及びタンパク質には、ＳＶ４０ペプチド、ＲＮアーゼＡ、ＲＮアーゼＨ及びブドウ球菌ヌクレアーゼが含まれる。テルペノイドとして特に有用なものはビタミンＡ、レチノイン酸、レチナール及びデヒドロレチノールである。他の結合リガンドは、米国特許第５,５７８,７１８号に記載されており、この特許は本願と共通に譲渡され、参照することによりここに組み込まれる。
また、本発明は、２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシル−β−ヌクレオシドを含む複数の連結したヌクレオシドから形成されるオリゴヌクレオチドをも含む。これらのヌクレオシドは、相補的標的核酸と特異的にハイブリダイズする配列において荷電リン結合により連結される。この連結したヌクレオシドの配列は、少なくとも２つのサブ配列に分割される。第１サブ配列は、荷電３’−５’リン連結によって連結された２’−アミノオキシアルキル置換基を有するヌクレオシドを含む。第２サブ配列は、生理学的ｐＨで陰電荷を帯びる、荷電３’−５’リン連結によって連結する２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシル−β−ヌクレオシドからなる。さらに好ましい態様においては第３サブ配列が存在し、その配列のヌクレオシドは第１サブ配列について選択し得るものから選択される。好ましい態様において、第２サブ配列は、第１サブ配列と第３サブ配列の間に位置する。本発明のこのようなオリゴヌクレオチドは“キメラ”もしくは“ギャップド（gapped）”オリゴヌクレオチド、又は“キメラ体”とも呼ばれる。
本発明の新規オリゴヌクレオチドは、ヌクレアーゼ分解に対する耐性が増加しており、かつ野生型ＤＮＡ−ＤＮＡ及びＲＮＡ−ＤＮＡ二重鎖並びにホスホン酸メチル、ホスホロアミダイト及びリン酸トリエステルを含有するリン修飾オリゴヌクレオチド二重鎖よりも質の高いハイブリダイゼーション特性を示し、又はそれらにはヌクレオシド代替物単位が組み込まれており、これらのヌクレオシド代替物単位はアミノオキシ部分を介してオリゴヌクレオシドに結合基を連結させるためのアミノオキシ部位を有する。
また、本発明は、生物によるタンパク質の産生を調節するための方法であって、その生物を前述の考察に従って処方される組成物と接触させることを含む方法にも向けられている。調節されるべきＲＮＡ又はＤＮＡ部分が、その形成が調節されるべきタンパク質をコードするＤＮＡ又はＲＮＡの部分を含むように予め選択されることが好ましい。したがって、用いられるオリゴヌクレオチドは、標的ＤＮＡ又はＲＮＡの予め選択された部分に特異的にハイブリダイズし得るように設計される。
また、本発明は、望ましくないタンパク質の産生を特徴とする疾患を有する生物の治療方法にも向けられている。この方法は、その生物を前述の考察による組成物と接触させることを含む。その組成物は、好ましくは、その産生が阻害されるべきタンパク質をコードするｍＲＮＡと特異的に結合するように設計されたものである。
本発明は、さらに、生物又は細胞における異常なＲＮＡ分子の有無、又は正常ＲＮＡ分子の異常なもしくは不適切な発現の有無を検出するための診断方法にも向けられている。
また、本発明は、研究用試薬及び診断薬として用いるためのＲＮＡを選択的に結合させる方法にも向けられている。このような選択的かつ強力な結合は、そのようなＲＮＡ又はＤＮＡを、ハイブリダイゼーションの忠実度の上昇を示す本発明のオリゴヌクレオチドと相互作用させることにより達成される。
【図面の簡単な説明】
図１は、本発明の特定の中間体の合成を示す。
図２は、保護されたアミノオキシエチル基を２’−Ｏ−位に有する５−メチルウリジンＤＭＴ−ホスホロアミダイトの合成を示す。
図３は、本発明の特定の中間体の合成を示す。
図４は、保護されたアミノオキシエトキシ基を２’位に有するアデノシンＤＭＴ−ホスホロアミダイトの合成を示す。
図５は、本発明の特定の中間体の合成を示す。
図６は、保護されたアミノオキシエトキシ基を２’位に有するシチジンＤＭＴ−ホスホロアミダイトの合成を示す。
図７は、本発明の特定の中間体の合成を示す。
図８は、保護されたアミノオキシエトキシ基を２’位に有するグアニジンＤＭＴ−ホスホロアミダイトの合成を示す。
図９は、本発明の幾つかの中間体及び単量体の合成を示す。
図１０は、本発明の化合物のＣＰＧへの連結を示す。
図１１は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図１２は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図１３は、完全長オリゴヌクレオチド（％）対オリゴヌクレオチドへのヌクレアーゼ作用の効果に関与する時間（分）のグラフを示す。
図１４は、完全長オリゴヌクレオチド（％）対オリゴヌクレオチドへのヌクレアーゼ作用の効果に関与する時間（分）のグラフを示す。
図１５は、完全長オリゴヌクレオチド（％）対オリゴヌクレオチドへのヌクレアーゼ作用の効果に関与する時間（分）のグラフを示す。
図１６は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図１７は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図１８は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図１９は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２０は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２１は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２２は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２３は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２４は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２５は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２６は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２７は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２８は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
図２９は、本発明の中間体及び単量体の合成を示す。
好ましい態様の詳細な説明
本発明による、ＲＮＡもしくはＤＮＡの同定もしくは定量に又はＲＮＡもしくはＤＮＡ分子の活性化の調節に有用な組成物は、一般に、糖が修飾されたオリゴヌクレオチドであって、一本鎖もしくは二本鎖標的ＤＮＡもしくはＲＮＡ分子の予め選択されたヌクレオチド配列と特異的にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドを含む。一般には、タンパク質の産生に関与するＤＮＡもしくはＲＮＡの配列を選択してそのタンパク質の合成を最終的かつ全体的に調節もしくは阻害するか、又は診断試験においてＲＮＡもしくはＤＮＡを選択して、その存在、不存在もしくは具体的な量を決定することが望ましい。
本発明のオリゴヌクレオチドは、既知手順の固相合成を用いて合成することが好都合であり、標的ＲＮＡもしくはＤＮＡの予め選択されたヌクレオチド配列と相補的になるように又はそれに特異的にハイブリダイズし得るように設計される。核酸合成装置が市販されており、当業者は、それらの使用が合理的な長さの所望のオリゴヌクレオチドの生成において有効であることを理解する。
また、本発明のオリゴヌクレオチドには、荷電された連結によって連結されたヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチド、及びその配列が少なくとも２つのサブ配列に分割されるオリゴヌクレオチドも含まれる。第１サブ配列には、第１型の連結によって連結された２’−アミノオキシアルキル置換ヌクレオシドが含まれる。第２サブ配列には、第２型の連結によって連結されたヌクレオシドが含まれる。好ましい態様においては、第３サブ配列が存在し、その配列のヌクレオシドは第１サブ配列について選択することができるものから選択され、第２サブ配列は第１サブ配列と第３サブ配列との間に位置する。本発明のこのようなオリゴヌクレオチドは“キメラ体”又は“キメラ”もしくは“ギャップド”オリゴヌクレオチドとして知られる。
本発明の脈絡において、“オリゴヌクレオチド”という用語は、天然もしくは非天然ヌクレオベースからの特定の配列において互いに繋がった複数のヌクレオチドを指す。本発明の好ましいヌクレオベースは、糖部分を介してリン結合で互いに結合し、それらには、アデニン、グアニン、アデニン、シトシン、ウラシル、チミン、キサンチン、ヒポキサンチン、２−アミノアデニン、６−メチル、２−プロピル及び他のアルキルアデニン、５−ハロウラシル、５−ハロシトシン、６−アザウラシル、６−アザシトシン及び６−アザチミン、シュードウラシル、４−チオウラシル、８−ハロアデニン、８−アミノアデニン、８−チオールアデニン、８−チオールアルキルアデニン、８−ヒドロキシルアデニン及び他の８−置換アデニン、８−ハログアニン、８−アミノグアニン、８−チオールグアニン、８−チオールアルキルグアニン、８−ヒドロキシルグアニン及び他の８−置換グアニン、他のアザ及びデアザウラシル、他のアザ及びデアザチミジン、他のアザ及びデアザシトシン、他のアザ及びデアザアデニン、他のアザ及びデアザグアニン、５−トリフルオロメチルウラシル及び５−トリフルオロシトシンが含まれる。糖部分はデオキシリボースであってもリボースであってもよい。また、本発明のオリゴヌクレオチドは、修飾ヌクレオベース、又は本発明の精神と一致する他の修飾、特には、治療薬、診断薬もしくは研究用試薬としてのそれらの使用を容易にするためにそれらのヌクレアーゼ耐性を高める修飾を有するヌクレオベースを含んでいてもよい。
本発明のオリゴヌクレオチドは、長さが約５〜約５０塩基である。本発明のオリゴヌクレオチドは、８〜約４０個の塩基を有することがより好ましく、約１２〜約２５個の塩基を用いることがさらに好ましい。
本発明のオリゴヌクレオチドは、調節のために選択された標的ＲＮＡ又はＤＮＡのヌクレオチド配列と特異的にハイブリダイズし得るように適合されることが望ましい。本発明の１つ以上の態様の実施に特に適するオリゴヌクレオチドには、２’、３’もしくは５’−糖修飾オリゴヌクレオチドが含まれ、そのヌクレオシドのペントフラノシル部分の２’、３’もしくは５’位はアミノオキシ部分を含むように修飾されている。例えば、これらのオリゴヌクレオチドは、置換を含有するように修飾され、それらの置換には、２’、３’もしくは５’−Ｏ−アミノオキシアルキル、２’、３’もしくは５’−Ｏ−アルキルアミノオキシアルキル、２’、３’もしくは５’−Ｏ−ジアルキルアミノオキシエチルとして修飾された１つ以上のヌクレオシド単位；又は１つもしくは２つのヒドロキシル基及びアミノオキシ基を有するアルキル基を含む１つ以上のヌクレオシド代替物基；並びに、フタルイミド−Ｎ−オキシアルキル及びホルムアルオキシミルアルキル置換を含む上述のものの保護、ブロックトもしくは前駆体形態の組み込みが含まれるがこれらに限定されるものではない。これら修飾ヌクレオシド又は代替ヌクレオシドは、オリゴヌクレオチド内部にそのオリゴヌクレオチド主鎖への連結を介して位置することも、オリゴヌクレオチドの３’及び５’末端の一方もしくは両方に位置することもできる。
ヌクレオシド代替物は、オリゴヌクレオチドへの組み込みのためにＰIII又はＰV原子価状態の適切に活性化されたリン原子を含むことができる。このような活性化リン原子には、当該技術分野において公知のように、ホスホロアミダイト、Ｈホスホネート及びトリエステルが含まれる。また、本ヌクレオシド代替物は、適切なヒドロキシルブロッキング基を含むこともでき、これにはジメトキシトリチル、トリメトキシトリチル、モノメトキシトリチル及びトリチルブロッキング基並びに当該技術分野において公知の他のブロッキング基が含まれるがこれらに限定されるものではない。
本発明のヌクレオシド代替物基の１つをオリゴヌクレオチドに配置するにあたり、適切にブロック及び活性化されたヌクレオシド代替物が、正常なブロックされた標準ヌクレオシド及び活性な標準ヌクレオチドを組み込むための標準法でオリゴヌクレオチドに組み込まれる。例えば、そのアミノオキシ部分がフタルイミド保護基を用いて保護されているヌクレオシド代替物が選択される。この代替物分子のヒドロキシル基の１つは、ジメトキシトリチル保護基（ＤＭＴ保護基）を用いて保護され、他のヒドロキシル基、つまり第２ヒドロキシル基、はシアノエトキシジイソプロピルホスホロアミダイト部分として存在する。この代替物単位を、当該技術分野において公知であるように、通常の活性化剤で処理することにより成長しているオリゴヌクレオチドに添加し、そのホスホロアミダイト部分をその成長しているオリゴヌクレオチドと反応させる。その後、当該技術分野において公知である通りに標準法でＤＭＴ基を除去し、当該技術分野において標準である通りに正常なヌクレオチドアミダイトを用いてオリゴヌクレオチドの伸長を継続する。ヌクレオシド代替物単位がそのオリゴヌクレオチドの合成の過程で用いられた中間体単位である場合、この代替物ヌクレオシドはそのオリゴヌクレオチドの内部に位置する。ヌクレオシド代替物単位がオリゴヌクレオシドに連結する最後の単位である場合、このヌクレオシド代替物単位はそのオリゴヌクレオチドの５’最末端部分を形成することになる。
他のヌクレオチド代替物単位には、固体支持体への慣用的なヌクレオシドの結合に用いられるのと同じ方法で、固体支持体へ第２ヒドロキシル基を連結させることが含まれ得る。オリゴヌクレオチドを固体支持体から開裂させると、そのヌクレオシド代替物単位はそのオリゴヌクレオチドの３’最末端部分を形成することになる。
このようなオリゴヌクレオチドの各々において、そのオリゴヌクレオチドを固体支持体から開裂させると、フタルイミドブロッキング基が除去されてオリゴヌクレオチド上にアミノオキシ部分が生じる。このアミノオキシ部分のアミノ官能基は、アルキル化又はアシル化反応により適切なリガンドとさらに反応し、そのリガンドを結合基としてオリゴヌクレオチドに繋ぐことができる。当該技術分野において公知の様々な結合基を、この方法でオリゴヌクレオチドに結合させることができる。
本発明の置換ヌクレオシドにおいて、各々のアルキルはＣ1〜Ｃ10の直鎖もしくは分岐鎖である。本発明の２’、３’もしくは５’−Ｏ−置換ヌクレオシドにおいて用いるためには、より好ましいアルキル基はＣ1〜Ｃ4アルキルであり、Ｃ2アルキルが最も好ましい。
本発明のヌクレオシド代替物については、アルキル基全体の長さは、そのアルキル基の両末端間に位置するアミノオキシ基を伴って１１未満となるように選択される。本発明の特定の好ましいヌクレオシド代替物においては、アミノオキシ基をそのヌクレオシド代替物のいずれのヒドロキシル基ともその間に少なくとも２つのメチレン基があるように配置することが好ましい。これは、アルキル主鎖内又はアミノオキシ側鎖上のいずれかのメチレン単位の何らかの組み合わせにより達成することができる。そのように配置することで、アミノオキシ部分の酸素原子とヒドロキシル基の酸素原子がアセタール型の構造を形成することがない。別の態様においては、アミノオキシ部分をヒドロキシル基の一方もしくは他方との間にメチレン基１つのみを伴って配置して、アセタール型の構造を形成させる。
本発明の置換ヌクレオシドにおいて、置換基の第１の好ましい群には、２’−アミノオキシアルキル置換基が含まれる。置換基のさらなる好ましい群には、アルキル化アミノキシアルキルが含まれ、これらには、ジアルキルアミノオキシアルキル及びモノアルキルアミノアルキル、例えば、ジメチルアミノオキシエチル及びエチルアミノオキシエチルが含まれる。置換基のさらなる好ましい群には、これら２’−Ｏ−アミノオキシアルキル置換基の前駆体又はブロックト形態が含まれ、これらには、フタルイミド及びホルムアルデヒド付加物、すなわち、フタルイミド−Ｎ−オキシ及びホルムアルオキシミル基が含まれる。
本発明の特定の好ましい態様において、本発明のオリゴヌクレオチドの個々のヌクレオシドは、リン結合を介して繋がれる。好ましいリン結合にはホスホジエステル、ホスホロチオエート及びホスホロジチオエート結合が含まれる。本発明の好ましい態様の１つにおいては、ホスホロチオエートヌクレオシド間連結を用いることにより、オリゴヌクレオチドにヌクレアーゼ耐性が付与される。
本発明のさらなる態様においては、ヌクレオシドを、ヌクレオシド間リン酸結合に代わる結合、例えば、代用ヌクレオシド間結合を介して連結させることができる。この型の巨大分子も、オリゴヌクレオシドと同一視されている。したがって、“オリゴヌクレオシド”という用語は、非リン結合によって繋がれた複数のヌクレオシド単位を指す。
オリゴヌクレオチド及びオリゴヌクレオシドを繋いでキメラオリゴマー化合物を得ることができる。天然ホスホジエステル連結基に加えて、本発明のオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオシド及びオリゴマーキメラ化合物の調製に用いることができるリン及び非リン含有結合基は従来技術において十分に文書化されており、これらには、限定することなしに、以下のものが含まれる：
リン含有結合
ホスホロジチオエート（−Ｏ−Ｐ（Ｓ）（Ｓ）−Ｏ−）；
ホスホロチオエート（−Ｏ−Ｐ（Ｓ）（Ｏ）−Ｏ−）；
ホスホロアミデート（−Ｏ−Ｐ（Ｏ）（ＮＪ）−Ｏ−）；
ホスホネート（−Ｏ−Ｐ（Ｊ）（Ｏ）−Ｏ−）；
ホスホトリエステル（−Ｏ−Ｐ（ＯＪ）（Ｏ）−Ｏ−）；
チオホスホロアミデート（−Ｏ−Ｐ（Ｏ）（ＮＪ）−Ｓ−）；
チオノアルキルホスホネート（−Ｏ−Ｐ（Ｓ）（Ｊ）−Ｏ−）；
チオノアルキルホスホトリエステル（−Ｏ−Ｐ（Ｏ）（ＯＪ）−Ｓ−）；
ボラノホスホネート（−Ｒ5−Ｐ（Ｏ）（Ｏ）−Ｊ−）；
非リン含有結合
チオジエステル（−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−Ｓ−）；
チオノカルバメート（−Ｏ−Ｃ（Ｏ）（ＮＪ）−Ｓ−）；
シロキサン（−Ｏ−Ｓｉ（Ｊ）2−Ｏ−）；
カルバメート（−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−ＮＨ−及び−ＮＨ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−）
スルファメート（−Ｏ−Ｓ（Ｏ）（Ｏ）−Ｎ−及び−Ｎ−Ｓ（Ｏ）（Ｏ）−Ｎ−）；
モルホリノスルファミド（−Ｏ−Ｓ（Ｏ）（Ｎ（モルホリノ）−）；
スルホンアミド（−Ｏ−ＳＯ2−ＮＨ−）；
スルフィド（−ＣＨ2−Ｓ−ＣＨ2−）；
スルホネート（−Ｏ−ＳＯ2−ＣＨ2−）；
Ｎ,Ｎ’−ジメチルヒドラジン（−ＣＨ2−Ｎ（ＣＨ3）−Ｎ（ＣＨ3）−）；
チオホルムアセタール（−Ｓ−ＣＨ2−Ｏ−）；
ホルムアセタール（−Ｏ−ＣＨ2−Ｏ−）；
チオケタール（−Ｓ−Ｃ（Ｊ）2−Ｏ−）；及び
ケタール（−Ｏ−Ｃ（Ｊ）2−Ｏ−）；
アミン（−ＮＨ−ＣＨ2−ＣＨ2−）；
ヒドロキシルアミン（−ＣＨ2−Ｎ（Ｊ）−Ｏ−）；
ヒドロキシルイミン（−ＣＨ＝Ｎ−Ｏ−）；及び
ヒドラジニル（−ＣＨ2−Ｎ（Ｈ）−Ｎ（Ｈ）−）。
ここで、Ｊは置換基を示し、これは、通常、水素又はアルキル基又はある型の連結から別の連結まで変動する複雑な基である。
天然の連結の−Ｏ−Ｐ−Ｏ−原子の修飾又は置換に関与する上述の連結基に加えて、１つ以上の−Ｏ−Ｐ−Ｏ−原子の他に５’−メチレン基の修飾を含む連結基が本発明の範囲内に含まれる。この型の連結は、従来技術において十分に文書化されており、これらには、限定することなしに、以下のものが含まれる：
アミド（−ＣＨ2−ＣＨ2−Ｎ（Ｈ）-Ｃ（Ｏ））及び−ＣＨ2-Ｏ-Ｎ＝ＣＨ−）；並びに
アルキルリン（−Ｃ（Ｊ）2−Ｐ（＝Ｏ）（ＯＪ）−Ｃ（Ｊ）2−Ｃ（Ｊ）2−）。
ここで、Ｊは上述の通りである。
上述の代用ヌクレオシド間連結を合成するための合成スキームは以下のものに記載されている：
ＷＯ９１／０８２１３；ＷＯ９０／１５０６５；ＷＯ９１／１５５００；ＷＯ９２／２０８２２；ＷＯ９２／２０８２３；ＷＯ９１／１５５００；ＷＯ８９／１２０６０；ＥＰ２１６８６０；ＵＳ９２／０４２９４；ＵＳ９０／０３１３８；ＵＳ９１／０６８５５；ＵＳ９２／０３３８５；ＵＳ９１／０３６８０；米国特許第０７／９９０,８４８号；第０７,８９２,９０２号；第０７／８０６,７１０号；第０７／７６３,１３０号；第０７／６９０,７８６号；第５,４６６,６７７号；第５,０３４,５０６号；第５,１２４,０４７号；第５,２７８,３０２号；第５,３２１,１３１号；第５,５１９,１２６号；第４,４６９,８６３号；第５,４５５,２３３号；第５,２１４,１３４号；第５,４７０,９６７号；第５,４３４,２５７号；Stirchak,E.P.ら，Nucleic Acid Res.,1989,17,6129-6141;Hewitt,J.M.ら，1992,11,1661-1666;Sood,A.ら，J.Am.Chem.Soc.,1990,112,9000-9001;Vaseur,J.J.ら，J.Amer.Chem.Soc.,1992,114,4006-4007;Musichi,B.ら，J.Org.Chem.,1990,55,4231-4233;Reynolds,R.C.ら，J.Org.Chem.,1992,57,2983-2985;Mertes,M.P.ら，J.Med.Chem.,1969,12,154-157;Mungall,W.S.ら，J.Org.Chem.,1977,42,703-706;Stirchak,E.P.ら，J.Org.Chem.,1987,52,4202-4206;Coull,J.M.ら，Tet.Lett.,1987,28,745；及びWang,H.ら，Tet.Lett.,1991,32,7385-7388。
他の修飾をヌクレオチドの糖、塩基、又はリン酸基に施すことができる。代表的な修飾は、１９９１年７月２５日公開の国際公開ＷＯ９１／１０６７１号、１９９２年２月２０日公開のＷＯ９２／０２２５８号、１９９２年３月５日公開のＷＯ９２／０３５６８、並びに米国特許第５,１３８,０４５号、第５,２１８,１０５号、第５,２２３,６１８号、第５,３５９,０４４号、第５,３７８,８２５号、第５,３８６,０２３号、第５,４５７,１９１号、第５,４５９,２５５号、第５,４８９,６７７号、第５,５０６,３５１号、第５,５４１,３０７号、第５,５４３,５０７号、第５,５７１,９０２号、第５,５７８,７１８号、第５,５８７,３６１号、第５,５８７,４６９号に開示されており、これらは全て本発明の譲受人に譲渡されている。上で引用される刊行物の各々の開示は参照することによりここに組み込まれる。
オリゴヌクレオチド及びそれらの類似体への結合基の結合は従来技術において十分に文書化されている。本発明の化合物は、官能基、例えば、一級もしくは二級ヒドロキシル基に共有結合する結合基を含むことができる。本発明の結合基には、インターカレーター、リポーター分子、ポリアミン、ポリアミド、ポリエチレングリコール、ポリエーテル、オリゴマーの薬力学的特性を高める基、及びオリゴマーの薬物動態学的特性を高める基が含まれる。典型的な結合基には、コレステロール、リン脂質、ビオチン、フェナジン、フェナントリジン、アントラキノン、アクリジン、フルオレセイン、ローダミン、クマリン、及び染料が含まれる。薬力学的特性を高める基には、本発明の脈絡においては、オリゴマーの取り込みを改善する基、分解に対するオリゴマーの耐性を高める基、及び／又はＲＮＡとの配列特異的ハイブリダイゼーションを強化する基が含まれる。薬物動態学的特性を高める基には、本発明の脈絡においては、オリゴマーの取り込み、分配、代謝又は排出を改善する基が含まれる。代表的な結合基は、１９９２年１０月２３日出願の国際特許出願ＰＣＴ／ＵＳ９２／０９１９６号、１９９７年７月１日発行の米国特許第５,５７８,７１８号、及び米国特許第５,２１８,１０５号に開示されている。前述のものの各々は本発明と共通に譲渡されている。各々の開示の全体は参照することによりここに組み込まれる。
多くのビタミンの特性は、それらを本発明のオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオシド、又はキメラオリゴマー化合物に取り込むのに良好な結合基とする。α−トコフェロール（ビタミンＥ）及び他のトコフェロール（β〜ζ）をオリゴヌクレオチドに結合させ、それらの親油性により取り込みを強化することができる。また、親油性ビタミン、ビタミンＤ、及びそのエルゴステロール前駆体をそれらのヒドロキシル基を介してオリゴヌクレオチドに結合させることもでき、これは、まず、それらのヒドロキシル基を、例えば、ヘミコハク酸エステルに活性化することにより行なわれる。次いで、オリゴヌクレオチドからペンダントになっているアミノリンカーに結合させる。ビタミン上のヒドロキシル基を介してオリゴヌクレオチドのアミノリンカーに結合させることができる他のビタミンには、チアミン、リボフラビン、ピリドキシン、ピリドキサミン、ピリドキサール、デオキシピリドキシンが含まれる。脂質可溶性ビタミンＫ及び関連キノン含有化合物はキノン環上のカルボニル基を介して結合させることができる。ビタミンＫのフィトール部分も細胞へのオリゴヌクレオチドの結合を強化するのに役立つ。
ピリドキサール（ビタミンＢ6）は、特異的Ｂ6結合タンパク質を有する。ピリドキサール輸送におけるこれらのタンパク質の役割がZhang及びMcCormick,Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1991,88,10407によって研究されている。また、Zhang及びMcCormickは、ピリドキサールの４’位に幾つかの合成アミンが結合した一連のＮ−（４’−ピリドキシル）アミンが、Ｂ6輸送体によって促進されるプロセスにより細胞に侵入することが可能であることも示している。また、彼らは、これらの合成アミンの細胞内での放出も示した。ピリドキサール・ファミリーの他のメンバーには、ピリドキシン、ピリドキサミン、リン酸ピリドキサール、及びピリドキシン酸（pyridoxic acid）が含まれる。ピリドキシン酸、ナイアシン、パントテン酸、ビオチン、葉酸及びアスコルビン酸は、レチノイン酸について上述したように、オリゴヌクレオチド上に位置するアミノリンカーと反応性であるＮ−ヒドロキシスクシンイミドエステルを用いて、オリゴヌクレオチドと結合させることができる。
アンチセンス特性を修飾するための他の基には、ＲＮＡ開裂複合体、ピレン、金属キレート剤、ポルフィリン、アルキレーター（alkylators）、ハイブリッドインターカレーター／リガンド及び光架橋剤が含まれる。ＲＮＡクリーバー（cleavers）には、ｏ−フェナントロリン／Ｃｕ複合体及びＲｕ（ビピリジン）3 2+複合体が含まれる。このＲｕ（ｂｐｙ）3 2+複合体は核酸と相互作用して核酸を光化学的に開裂する。金属キレート剤には、ＥＤＴＡ、ＤＴＰＡ、及びｏ−フェナントロリンが含まれる。アルキレーターには、ヨードアセトアミドのような化合物が含まれる。ポルフィリン類には、ポルフィン、その置換形態、及び金属複合体が含まれる。ピレン類には、ピレン及び同様のプロトコルを用いて結合させることができる他のピレンをベースとするカルボン酸が含まれる。
ハイブリッドインターカレーター／リガンドには、フォトヌクレアーゼ（photonuclease）／インターカレーターリガンドである６−［［［９−［［６−（４−ニトロベンズアミド）ヘキシル］アミノ］アクリジン−４−イル］カルボニル］アミノ］ヘキサノイル−ペンタフルオロフェニルエステルが含まれる。この化合物は２つの注目すべき特徴、つまりインターカレーターであるアクリジン部分及びフォトヌクレアーゼであるｐ−ニトロベンズアミド基を有する。
光架橋剤には、アリールアジド、例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジル−４−アジドベンゾエート（ＨＳＡＢ）及びＮ−スクシンイミジル−６（−４’−アジド−２’−ニトロフェニル−アミノ）ヘキサノエート（ＳＡＮＰＡＨ）が含まれる。オリゴヌクレオチドに結合したアリールアジドは、照射により核酸及びタンパク質との架橋をもたらす。また、これらは担体タンパク質（例えば、ＫＬＨ又はＢＳＡ）とも架橋し、そのオリゴヌクレオチドに対する抗体を生じる。
本発明によるビタミンは、一般に、水溶性又は脂溶性として分類することができる。水溶性ビタミンには、チアミン、リボフラビン、ニコチン酸、すなわちナイアシン、ビタミンＢ6ピリドキサール群、パントテン酸、ビオチン、葉酸、Ｂ12コバミド（cobamide）補酵素、イノシトール、コリン及びアスコルビン酸が含まれる。脂溶性ビタミンには、ビタミンＡファミリー、ビタミンＤ、ビタミンＥトコフェロールファミリー及びビタミンＫ（及びフィトール）が含まれる。レチノイン酸及びレチノールを含むビタミンＡファミリーは、特定のタンパク質、例えば、II型細胞質ゾルレチノール結合タンパク質（ＣＲＢＰ−ＩＩ）、レチノール結合タンパク質（ＲＢＰ）、及び細胞性レチノール結合タンパク質（ＣＲＢＰ）との相互作用を介して吸収され、そして標的組織に輸送される。これらタンパク質は、人体の様々な部位に見出されるのだが、約１５ｋＤの分子量を有する。これらは、ビタミンＡファミリーの化合物、特にはレチノイン酸及びレチノールと特異的に相互作用する。
本発明の脈絡において、“ハイブリダイゼーション”とは、相補的ヌクレオチド間の水素結合を意味し、これはWatson-Crick、Hoogsteen又は逆Hoogsteen水素結合であり得る。例えば、アデニン及びチミンは水素結合の形成を介して対を形成する相補的ヌクレオベースである。ここで用いられる場合、“相補的”は２つのヌクレオチドの間の配列相補性を指す。例えば、オリゴヌクレオチドの特定の位置のヌクレオチドがＤＮＡもしくはＲＮＡ分子の同じ位置のヌクレオチドと水素結合する能力を有する場合、そのオリゴヌクレオチドとそのＤＮＡもしくはＲＮＡはその位置で互いに相補的であるものと考えられる。そのオリゴヌクレオチドとそのＤＮＡもしくはＲＮＡは、各々の分子内の十分な数の対応位置が互いに水素結合し得るヌクレオチドで占められる場合に互いに相補的となる。かくして、“特異的にハイブリダイズし得る”及び“相補的”は、オリゴヌクレオチドとＤＮＡもしくはＲＮＡ標的との間に安定かつ特異的な結合が生じるような十分な程度の相補性を示すのに用いられる用語である。特異的にハイブリダイズし得るのに、オリゴヌクレオチドがその標的ＤＮＡ配列に対して１００％相補性である必要がないことは理解される。オリゴヌクレオチドは、標的ＤＮＡもしくはＲＮＡ分子へのそのオリゴヌクレオチドの結合がその標的ＤＮＡもしくはＲＮＡの正常な機能を妨害し、かつ特異的結合が望まれる条件下、すなわち、イン・ビボ検定もしくは治療処置の場合の生理学的条件下、又はイン・ビトロ検定の場合にはその検定が行われる条件下で、そのオリゴヌクレオチドの非標的配列への非特異的結合を回避するのに十分な程度の相補性が存在するときに、特異的にハイブリダイズし得る。
核酸分解酵素（nucleolytic enzymes）によるオリゴヌクレオチドの開裂には酵素−基質複合体、特には、ヌクレアーゼ−オリゴヌクレオチド複合体の形成が必要である。ヌクレアーゼ酵素は、一般に、適切な結合のためにオリゴヌクレオチド上に位置する特異的結合部位を必要とする。このオリゴヌクレオチドの結合部位が、ヌクレアーゼがそのオリゴヌクレオチドに結合することができなくなるように、除去又はブロックされている場合、そのオリゴヌクレオチドはヌクレアーゼ耐性となる。配列特異的回文構造二本鎖ＤＮＡを開裂する制限エンドヌクレアーゼの場合、特定の結合部位、例えば、３位及び７位の環員窒素が必要な結合部位として同定されている。これらの部位の１つ以上の除去又はオリゴヌクレオチド内のこれらの特定の位置に対するヌクレアーゼの立体的ブロッキングアプローチにより、特定のヌクレアーゼに対する様々な水準の耐性がもたらされている。
本発明は、優れたハイブリダイゼーション特性を有するオリゴヌクレオチドを提供する。構造−活性の関係の研究から、特定の２’−糖修飾オリゴヌクレオチドのＲＮＡ標的（相補的）への結合の増加（Ｔｍ）がそのヘテロ二重鎖の“Ａ”型立体配座の増加と相関することが明らかになっている。さらに、修飾オリゴヌクレオチドの絶対的な忠実度は維持される。本発明の２’−糖修飾配列特異的オリゴヌクレオチドの結合性の増加により、文献において公知のリン修飾オリゴヌクレオチド、例えば、メチルホスホネート、リン酸トリエステル及びホスホロアミデートよりも優れた効力及び特異性がもたらされる。
ＤＮＡ及びＲＮＡ二重鎖の間の唯一の構造的な相違は、（ウラシル環系におけるメチル基の有無には効果がないものと仮定して）ＤＮＡ分子の糖部分の２’位が水素原子であるのに対してＲＮＡ分子の糖部分の２’位がヒドロキシル基であることである。しかしながら、ＤＮＡ及びＲＮＡ二重鎖の間には大きな立体配座の相違が存在する。
核酸繊維のＸ線回折分析（Arnott及びHukins,Biochem.Biophys.Res.Comm.,1970,47,1504）及び二本鎖核酸の結晶の分析から、ＤＮＡが“Ｂ”形態の構造をとり、ＲＮＡがより堅い“Ａ”形態の構造をとることが知られている。ＤＮＡとＲＮＡとのヌクレオシドの糖の歪みの相違（“Ｂ”形態のＤＮＡについてはＣ２’エンド、“Ａ”形態のＲＮＡについてはＣ３’エンド）が、二本鎖核酸の間の主な立体配座の相違である。
ペントフラノシル部分の立体配座に主として寄与するものは２’位の置換基の性質である。かくして、２’−置換基の電気陰性度の増加に伴い、Ｃ２’エンド形態に対してＣ３’エンド形態の存在数が増加する。例えば、２’−デオキシ−２’−ハロアデノシンのうち、２’−フルオロ誘導体は、Ｃ３’エンド形態の最も多い存在数（６５％）を示し、２’−ヨードは、最も低い存在数（７％）を示す。アデノシン（２’−ＯＨ）及びデオキシアデノシン（２’−Ｈ）の存在数は、それぞれ、３６％及び１９％である。さらに、アデノシン二量体（２’−デオキシ−２’−フルオロアデノシン−２’−デオキシ−２’−フルオロアデノシン）の２’−フルオロ基の効果は、積み重なった立体配座の安定性にさらに相関する。ジヌクレオシドリン酸が、Ａ−Ａに類似する幾何学的構造ではあるものの塩基−塩基重複の程度がＡ−Ａよりも大きな、積み重なった立体配座を有することが、研究から示されている。Ｃ２’−Ｆ結合の高度に極性の性質及びＣ３’エンドの歪みについての極度の優先度が“Ａ”構造の積み重ねられた立体配座を安定化し得るものと考えられる。
ＵＶ淡色化、円二色性（circular dichromism）、及び1ＨＮＭＲからのデータも、積み重ねの程度がハロ置換基の電気陰性度の減少に伴って減少することを示す。さらに、糖部分の２’位の立体的な嵩高さは、“Ｂ”形態の二重鎖よりも“Ａ”形態の二重鎖によりよく収まる。
したがって、ジヌクレオシドモノリン酸の３’−ヌクレオチジル単位上の２’−置換基は積み重なり立体配座に対して幾つかの効果、つまり、立体的な反発、フラノースの歪みの優先度、静電気的反発、疎水性誘引、及び水素結合能力、を及ぼすものと考えられる。これらの置換基の効果は、その置換基の分子のサイズ、電気陰性度、及び疎水性によって決定されるものと考えられる。
２’−デオキシグアノシン、シチジン、及びウリジンジヌクレオシドリン酸の２’−ＯＭｅ修飾での研究によると、対応する非メチル化種（２’−ＯＨ）よりも強化された積み重ね効果が示される。この場合、メチル基の疎水性誘引力がその立体的嵩高さの脱安定化効果を克服する傾向にある。
２’−置換アデノシン二リン酸で溶融温度（相補的結合）が増加する。この結合性の増加の原因がこの立体配座の３’エンド優先度であるのか、又はこの置換基の存在であるかは明らかではない。しかしながら、隣接する塩基のより多くの重複（積み重ね）を３’エンド立体配座で達成することができる。
理論に拘束されることを望むものではないが、本発明のアミノオキシアルキル置換基は、Ｃ３’エンドの歪みであるヌクレオシドの糖の歪みをももたらすと考えられる。
本発明の化合物は、診断薬、治療薬及び研究用試薬並びにキットとして用いることができる。これらは、有効量の本発明のオリゴヌクレオチドを適切な薬学的に許容し得る希釈剤又は担体に添加することにより、医薬組成物で用いることができる。これらは、さらに、タンパク質の望ましくない産生を特徴とする疾患を有する生物の治療に用いることができる。その望ましくないタンパク質をコードする標的核酸の鎖と特異的にハイブリダイズすることが可能な配列を有する本発明のオリゴヌクレオチドにこの生物を接触させることができる。
治療用組成物の配合及び引き続くそれらの投与は、当業者の技術のうちにあるものと信じられる。一般に、治療薬については、そのような治療を必要とする患者に、通常は薬学的に許容し得る担体中にある本発明によるオリゴマーを、患者の年齢及び治療する疾患状態の重篤性に応じて体重ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇの範囲の用量で投与する。さらに、この治療は１回の服用であっても計画的投与であってもよく、この計画的投与が継続される期間は問題の疾患の性質、その重篤性及び患者の全体的な状態に応じて変化し、１日１回から２０年に１回にまで及ぶことがある。治療の後、その患者を彼／彼女の状態の変化及び疾患状態の症状の緩和について監視する。オリゴマーの用量は、患者が現在の用量水準に対して大きく応答しない場合には増加させることができ、疾患状態の症状の緩和が観察される場合又は疾患状態が取り除かれている場合には減少させることができる。
ある場合には、本発明のオリゴマーを他の伝統的な治療様式と共に用いて患者を治療することがより有効であることがある。例えば、ＡＩＤＳの治療を行う患者にオリゴマーをＡＺＴと共に投与することができ、又はアテローム性動脈硬化症の患者を、治療した動脈の再閉塞を防止する血管形成術に続いて、本発明のオリゴマーで治療することができる。
投薬は治療しようとする疾患状態の重篤性及び応答性に依存し、治療期間は数日から数ヶ月、又は治癒が達成され、もしくは疾患状態の減少が為し遂げられるまで継続される。最適投薬スケジュールは患者の体内の薬物の蓄積を測定することから計算することができる。当業者は最適投与量、投薬方法及び繰り返し率を容易に決定することができる。最適投与量は個々のオリゴマーの相対効力に応じて変化する可能性があり、一般には、イン・ビトロ及びイン・ビボ動物モデルにおいて有効であることが見出されているＥＣ50に基づいて見積もることができる。一般には、投与量は体重ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇであり、毎日、毎週、毎月もしくは毎年１回以上、又は２〜数年毎に１回ですら投与することができる。
治療が成功した後、疾患状態の再発を防止するために患者に維持療法を施すことが望ましいものであり得、ここではオリゴマーを、体重ｋｇ当たり０．０１μｇ〜１００ｇの範囲の維持用量、毎日１回以上から数年毎に１回投与する。
本発明の医薬組成物は、局所的又は全身的のいずれの治療が望まれるのか、及び治療しようとする領域に応じて、幾つかの方法で投与することができる。投与は局所（眼、膣、直腸、鼻内、経皮を含む）、経口又は非経口であり得る。非経口投与には静脈内点滴、皮下、腹腔内もしくは筋肉内注射、又はくも膜下腔内もしくは室内投与が含まれる。
局所投与用の製剤には経皮パッチ、軟膏、ローション、クリーム、ゲル、ドロップ、座剤、スプレー、液体及び粉末が含まれ得る。通常の医薬担体、水性、粉末もしくは油性基剤、濃厚剤等が必要となり、又は望ましいことがある。コートしたコンドーム、手袋等も有用であり得る。
経口投与用の組成物には粉末もしくは顆粒、水もしくは非水性媒体中の懸濁液もしくは溶液、カプセル、サシェイ又は錠剤が含まれる。濃厚剤、香料、希釈剤、乳化剤、分散助剤又は結合剤が望ましいこともある。
くも膜下腔内又は室内投与用の組成物には無菌の水溶液が含まれることがあり、これも緩衝剤、希釈剤及び他の適切な添加物を含むことができる。
非経口投与用の製剤には無菌の水溶液が含まれることがあり、これも緩衝剤、希釈剤及び他の適切な添加物を含むことができる。
本発明は、単細胞原核及び真核生物から多細胞真核生物までの範囲の様々な生物において実施することができる。ＤＮＡ−ＲＮＡ転写又はＲＮＡ−タンパク質翻訳をその遺伝、代謝又は細胞機構の基本部分として用いるあらゆる生物がそのような治療及び／又は予防処置に対して感受性である。表面上は、多様な生物、例えば、細菌、酵母、原生動物、藻類、植物及び温血動物を含む高等動物形態をこの方法で処置することができる。さらに、多細胞真核生物の細胞の各々はＤＮＡ−ＲＮＡ転写及びＲＮＡ−タンパク質翻訳の両者をそれらの細胞活性の不可欠な部分として含むため、そのような治療薬及び／又は診断薬をこのような細胞の集団に対して施すこともできる。さらに、真核細胞の多くの細胞小器官、例えば、ミトコンドリア及び葉緑体も転写及び翻訳機構を含む。そのようなものとして、単細胞、細胞の集団又は細胞小器官も本発明の治療用又は診断用オリゴヌクレオチドで処置することができる生物の定義のうちに含めることができる。ここで用いられる場合、治療薬は、疾患状態の根絶、生物、例えば細菌、原生動物もしくは他の感染体の殺傷の両者又は異常な、もしくは望ましくない細胞の成長もしくは発現の制御を含むことが意図される。
２’−置換オリゴヌクレオチドは、標準固相核酸合成により、自動合成装置、例えば、Model 380B（Perkin-Elmer/Applied Biosystems）又はMilliGen/Biosearch 7500もしくは8800を用いて合成した。リン酸トリエステル、ホスホロアミダイト、又はホスホン酸水素カップリング化学（Oligonucleotides:Antisense Inhibitions of Gene Expression.M.Carthers,p.7,J.S.Cohen（Ed.）,CRC Press,Boca Raton,Florida,1989）をこれらの合成装置と共に用いて所望のオリゴヌクレオチドが得られる。Beaucage試薬（J.Amer.Chem.Soc.,1990,112,1253）又は元素状態のイオウをホスホロアミダイト又はホスホン酸水素化学種と共に用いて２’−置換ホスホロチオエートオリゴヌクレオチドが得られる。
必要な２’−置換ヌクレオシド（Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｔ（Ｕ）、及び他の修飾ヌクレオベース）は、以下に記載される手順を用いて調製する。
他の用途のうち、本発明のオリゴヌクレオチドはｒａｓ−ルシフェラーゼトランス活性化を用いるｒａｓ−ルシフェラーゼ融合系において有用である。１９９２年１２月２３日公開の国際公開ＷＯ９２／２２６５１号並びに米国特許第５,５８２,９７２号及び第５,５８２,９８６号（これらは本願と共通に譲渡されており、その内容全体は参照することによりここに組み込まれる）に記載されるように、ｒａｓ癌遺伝子は、原形質膜の内面に局在する関連タンパク質をコードする遺伝子ファミリーのメンバーである。ｒａｓタンパク質は、アミノ酸の水準で高度に保存され、高い親和性及び特異性でＧＴＰに結合し、そしてＧＴＰアーゼ活性を有することが示されている。ｒａｓ遺伝子産物の細胞機能は知られていないが、それらの生化学的特性は、ＧＴＰ結合タンパク質、すなわちＧタンパク質として知られるシグナル伝達タンパク質のクラスとのそれらの大きな配列相同性と共に、ｒａｓ遺伝子産物が、原形質膜を横切る細胞外シグナルの伝達に関連する基本的な細胞調節機能において基礎的な役割を果たすことを示唆する。
Ｈ−ｒａｓ、Ｋ−ｒａｓ、及びＮ−ｒａｓと呼ばれる３種類のｒａｓ遺伝子が哺乳動物のゲノムで同定されている。哺乳動物のｒａｓ遺伝子は、それらのコーディング配列内の１点の突然変異により形質転換誘発特性を獲得する。天然のｒａｓ癌遺伝子における突然変異は、コドン１２、１３、及び６１に位置している。ヒトの腫瘍において見出される、最も一般的に検出される活性化ｒａｓ突然変異は、Ｈ−ｒａｓ遺伝子のコドン−１２におけるものであり、そこではＧＧＣからＧＴＣへの塩基の変化が、ｒａｓタンパク質産物のＧＴＰアーゼ調節ドメインにおいてグリシンからバリンへの置換をもたらす。この１つのアミノ酸の変化が、ｒａｓタンパク質機能の正常な制御を破壊することによって、正常に調節される細胞タンパク質が持続的に活性である細胞タンパク質に変換されるものと考えられる。このような正常ｒａｓタンパク質の機能の調節解除が、正常な成長から悪性の成長への形質転換の原因であるものと信じられる。
ｒａｓ遺伝子の調節に加えて、他の核酸と特異的にハイブリダイズし得る本発明のオリゴヌクレオチドは、そのような他の核酸の発現を調節するのに用いることができる。例には、ｒａｆ遺伝子が含まれ、これは時折活性化形態に転換する天然に存在する細胞性遺伝子であり、この活性化形態は異常な細胞の増殖及び腫瘍形成に関連付けられている。他の例には、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）の発現を調節することが見出されている、ＰＫＣに関連するもの、ＩＣＡＭのような細胞接着分子に関連するもの、多薬品耐性関連タンパク質に関連するもの、並びにＨＩＶ、ヘルペスウイルス、エプシュタイン・バーウイルス、サイトメガロウイルス、パピローマウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス及びインフルエンザウイルスを含むウイルスのゲノム核酸が含まれる（米国特許第５,１６６,１９５号、第５,２４２,９０６号、第５,２４８,６７０号、第５,４４２,０４９号、第５,４５７,１８９号、第５,５１０,４７６号、第５,５１０,２３９号、第５,５１４,５７７号、第５,５１４,７８６号、第５,５１４,７８８号、第５,５２３,３８９号、第５,５３０,３８９号、第５,５６３,２５５号、第５,５７６,３０２号、第５,５７６,９０２号、第５,５７６,２０８号、第５,５８０,７６７号、第５,５８２,９７２号、第５,５８２,９８６号、第５,５９１,７２０号、第５,５９１,６００号及び第５,５９１,６２３を参照のこと。なお、これらは本願と共通に譲渡されており、その開示は参照することによりここに組み込まれる）。
以下の例は本発明を説明するものであり、本発明を限定することを意図するものではない。
実施例
一般的記載
全ての試薬及び溶媒は、他に記載されない限りAldrich Chemicalsから購入した。ＮＭＲスペクトルは以下の機器を用いて得た：1Ｈ−ＮＭＲ：Varian Gemini-200（１１９．９７５ＭＨＺ）又はVarian Unity 400（３９９．９５７ＭＨＺ）。13Ｃ−ＮＭＲ：Varian Gemini-200（５０．２８９ＭＨＺ）。31Ｐ−ＮＭＲ：Varian Gemini-200（７９．９９０ＭＨＺ）又はVarian Unity 400（１５９．９８１ＭＨＺ）。ＮＭＲスペクトルはジューテリオクロロホルム又はジメチルスルホキシド−ｄ6のいずれかを溶媒として用いて記録した（テトラメチルシラン又はリン酸内部標準）。個々の信号の多重度を示すのに以下の略語を用いた：ｓ＝一重線、ｄ＝二重線、ｔ＝三重線、ｑ＝四重線、ｍ＝多重線、ｄｄ＝二重線の二重線、ｂｒｓ＝ブロード一重線。質量スペクトルはVG 70-SEQ機器（VG Analytical（Fisons））で高速原子衝突イオン化法（７ｋＶ Ｘｅ原子）を用いて得た。カラムクロマトグラフィーの溶媒比は容量／容量で示す。溶媒の蒸発は他に指定されない限り真空中（６０トール）３５℃で行った。
実施例１
メチル−２−Ｏ−（２−エチルアセチル）−３,５−ビス−Ｏ−（２,４−ジクロロベンジル）−α−Ｄ−リボフラノシド（３、図１）
化合物２（図１）（多グラム（multigram）量の２を１から文献の手順により調製した、Martin,P.Helv.Chem.Acta,1995,78,486-504）を５℃に冷却しながらＤＭＦ（８６ｍＬ）に溶解し、ＮａＨ（６０％分散液、１．３８ｇ、３４．３８ミリモル）を添加した。この反応混合物を５℃で５分間攪拌し、次に周囲温度に暖めて２０分間攪拌した後、その反応混合物を５℃に冷却してエチルブロモアセテート（３．８１ｍＬ、３４．４ミリモル）を滴下により添加したところ、気体が発生した。この反応混合物を周囲温度に暖めて３時間攪拌した後、この混合物を５℃に冷却して飽和ＮＨ4Ｃｌ水溶液でｐＨを３に調整した。溶媒を真空中で蒸発させてシロップ状物質を得、これをＥｔＯＡｃ（２００ｍＬ）に溶解し、水、次いで食塩水で洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、６０：４０を用いて精製し、表題の化合物（３）を油状物質として得た（１５．５２ｇ、９５％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ７．５８−７．１８（ｍ、６Ｈ）、５．０５（ｄ、Ｊ＝３．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．７９（ｑ、ＪAB＝１３．７Ｈｚ、２Ｈ）、４．５７（ｄ、Ｊ＝２．８Ｈｚ、２Ｈ）、４．３１−４．１６（ｍ、５Ｈ）、４．０３（ｍ、２Ｈ）、３．６２（ｄ、２Ｈ）、３．５０（ｓ、３Ｈ）、１．２８（ｔ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ１７０．０、１３４．２、１３３．６、１３３．５、１３０．３、１２９．８、１２９．１、１２８．８、１２７．１、１０２．１、８１．４、７８．９、７６．６、７０．６、７０．０、６９．３、６７．６、６１．０、５５．６、１４．２。Ｃ24Ｈ26Ｃｌ4Ｏ7・Ｈ2Ｏについて算出された分析値：Ｃ、４９．１７；Ｈ、４．８１。実測値：Ｃ、４９．３３；Ｈ、４．３１。
実施例２
１−［２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−３’,５’−ビス−Ｏ−（２,４−ジクロロベンジル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン（４、図１）
チミン（６．９０ｇ、５４．６ミリモル）を無水ジクロロエタン（１３６ｍＬ）に溶解し、ビストリメチルシリルアセトアミド（４０．５ｍＬ、１６４ミリモル）を添加した。この反応混合物を還流温度に１０分間加熱して溶液を得た。周囲温度に冷却した後、この溶液を攪拌しながら化合物３に添加した。トリメチルシリルトリフルオロメタンスルホネート（６．８６ｍＬ、３５．５ミリモル）を添加し、その反応混合物を還流温度に６時間加熱した。この混合物を５℃に冷却し、飽和ＮａＨＣＯ3を徐々に添加することによりｐＨを７に調整した。この混合物をＣＨ2Ｃｌ2で抽出し（３×１５０ｍＬ）、有機抽出物を合わせ、食塩水で洗浄し、溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をＣＨ2Ｃｌ2に溶解し、フラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、４５：５５を用いて精製し、表題の化合物（４）を油状物質として得た（７．９２ｇ、４４％）。（α−アノマーは後の画分に含まれていた）。1Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨＺ、ＣＤＣｌ3）：δ ８．２５（ｓ、１Ｈ）、７．６７（ｓ、１Ｈ）、７．４６−７．２１（ｍ、６Ｈ）、５．９４（ｄ、Ｊ＝１．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．８０（ｑ、ＪAB＝１２．４Ｈｚ、２Ｈ）、４．７０−４．１８（ｍ、９Ｈ）、４．０２（ｄ、１Ｈ）、３．７５（ｄ、１Ｈ）、１．５８（ｓ、３Ｈ）、１．２６（ｔ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １７０．１、１６４．３、１５０．３、１３５．５、１３４．５、１３４．２、１３４．１、１３３．８、１３３．５、１３０．７、１３０．２、１２９．４、１２９．０、１２７．１、１１０．３、８８．４、８０．８、８０．５、７４．７、７０．１、６８．９、６８．０、６６．２、６０．９、１４．１、１２．１。Ｃ28Ｈ28Ｃｌ4Ｎ2Ｏ8・Ｈ2Ｏについて算出された分析値：Ｃ、４９．４３；Ｈ、４．４４；Ｎ、４．１２。実測値：Ｃ、４９．２５；Ｈ、４．１０；Ｎ、３．９４。
実施例３
１−［２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−３’,５’−ビス−Ｏ−（２,４−ジクロロベンジル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン（５、図１）
化合物４（９．９２ｇ、１５．０ミリモル）を熱ＥｔＯＨ（１５０ｍＬ）に溶解し、その溶液を水浴において周囲温度に冷却した。この溶液にＮａＢＨ4（１．１３ｇ、３０．０ミリモル）を１０分にわたって慎重に添加した。３時間後にＮａＢＨ4（２８２ｍｇ、７．４５ミリモル）をさらに添加し、その混合物を１時間攪拌して８時間静置した。飽和ＮＨ4Ｃｌ（２５ｍＬ）を添加することによりｐＨを４に調整してゴム状物質を得た。溶媒をデカントし、真空中で蒸発させて白色固体を得、それをＣＨ2Ｃｌ2（２５０ｍＬ）に溶解した。ゴム状物質を飽和ＮａＨＣＯ3で溶解し、この溶液を生成物を含むＣＨ2Ｃｌ2で穏やかに抽出した。有機層を分離し、水相をＣＨ2Ｃｌ2で再度抽出した（２×５０ｍＬ）。有機層を合わせた後、溶媒をＭｇＳＯ4で乾燥させ、真空中で蒸発させて白色の泡状物質を得た。この泡状物質をＣＨ2Ｃｌ2に溶解し、フラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、２０：８０を用いて精製して、表題の化合物（５）を白色の泡状物質として得た（８．３９ｇ、９０％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １０．１８（ｓ、１Ｈ）、７．６６（ｓ、１Ｈ）、７．３９−７．２０（ｍ、６Ｈ）、５．９６（ｓ、１Ｈ）、４．７６−３．６２（ｍ、１４Ｈ）、１．５８（ｓ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １６４．０、１５０．８、１３５．２、１３４．６、１３４．２、１３４．１、１３３．５、１３３．４、１３０．２、１２９．４、１２９．０、１２７．１、１１０．６、８８．６、８１．０、８０．７、７５．２、７２．０、７０．１、６８．９、６８．１、６１．９、１２．１。
実施例４
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−ヒドロキシエチル）−３’,５’−ビス−Ｏ−（２,４−ジクロロベンジル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン（６、図１）
化合物５を、無水アセトニトリルと共に蒸発させ、次いで真空中（０．１トール）、周囲温度で１２時間さらに乾燥させることにより乾燥させた。この乾燥させた物質（８．３９ｇ、１３．５３ミリモル）を新たに蒸留したＴＨＦ（９７ｍＬ）に溶解し、ＰＰｈ3（３．９０ｇ、１４．９ミリモル）及びＮ−ヒドロキシフタルイミド（２．４３ｇ、１４．９ミリモル）を添加した。この反応混合物を−７８℃に冷却し、ジエチルアゾジカルボキシレート（２．３４ｍＬ、１４．９ミリモル）を添加した。この反応混合物を周囲温度に暖め、溶媒を真空中で蒸発させて泡状物質を得た。この泡状物質をＥｔＯＡｃ（１００ｍＬ）に溶解し、飽和ＮａＨＣＯ3水溶液で洗浄した（３×３０ｍＬ）。有機層を分離し、食塩水で洗浄し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を蒸発させて泡状物質を得た。この泡状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりＣＨ2Ｃｌ2−アセトン、８５：１５を用いて精製し、表題の化合物（６）を白色の泡状物質として得た（３．２２ｇ、３１％）。第２のクロマトグラフィー精製によりさらに６を白色の泡状物質として得た（５．１８ｇ、５０％）。1Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨＺ、ＣＤＣｌ3）：δ ９．０（ｓ、１Ｈ）、７．８（ｍ、１１Ｈ）、５．９５（ｓ、１Ｈ）、４．８４−３．７０（ｍ、１３Ｈ）、１．６０（ｓ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨＺ、ＣＤＣｌ3）：δ １６３．７、１６３．５、１５０．２、１３８．０、１３５．６、１３４．５、１３４．１、１３４．０、１３３．９、１３３．７、１３３．６、１３０．６、１３０．４、１３０．１、１２９．８、１２９．４、１２９．１、１２９．０、１２８．８、１２７．２、１２３．５、１１０．４、８８．２、８１．０、８０．９、７７．６、７５．４、７０．２、６８．９、６８．４、６８．１、１２．１。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：７６６（Ｍ＋Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｚ：７６４（Ｍ−Ｈ）。
実施例５
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−３’,５’−ビス−Ｏ−（２,４−ジクロロベンジル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン（７、図２）
化合物６（１．７９ｇ、２．３４ミリモル）をＣＨ2Ｃｌ2（１２ｍＬ）に溶解し、その溶液を−７８℃に冷却してＣＨ2Ｃｌ2中の１．０Ｍ三塩化ホウ素（５．１５ｍＬ、５．１５ミリモル）を添加し、その反応混合物を５℃で１．５時間保持した。ＣＨ2Ｃｌ2中の１．０Ｍ三塩化ホウ素（５．１５ｍＬ、５．１５ミリモル）をさらに添加し、その溶液を５°でさらに１．５時間攪拌した。飽和ＮａＨＣＯ3水溶液（３０ｍＬ）でｐＨを７に調整した。ＣＨ2Ｃｌ2（１００ｍＬ）で希釈した後、有機層を分離し、水層をＣＨＣｌ3（５×２５ｍＬ）、次いでＥｔＯＡｃ（３×２５ｍＬ）で抽出した。有機層を合わせ、Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりＣＨ2Ｃｌ2−アセトン、４５：５５を用いて精製し、表題の化合物（７）を白色の泡状物質として得た（６１９ｍｇ、５９％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．８（ｂｒ、１Ｈ）、７．８８−７．７５（ｍ、４Ｈ）、７．５０（ｓ、１Ｈ）、５．７０（ｄ、Ｊ＝４Ｈｚ、１Ｈ）、４．４５−３．７５（ｍ、１１Ｈ）、２．９５（ｂｒ、１Ｈ）、１．９０（ｓ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（１００ＭＨＺ、ＣＤＣｌ3）：δ １６４．３、１６３．７、１５０．６、１３７．４、１３４．７、１２８．５、１２３．６、１１０．５、８９．７、８４．７、８１．９、７７．６、６８．５、６８．４、６１．０、１２．３。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：４４８（Ｍ＋Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｚ：４４６（Ｍ−Ｈ）。
実施例６
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン（８、図２）
化合物７を、無水アセトニトリルと共に蒸発させ、次いで真空中（０．１トール）、周囲温度で１２時間さらに乾燥させることにより乾燥させた。この乾燥させた物質（６１９ｍｇ、１．３８ミリモル）を無水ピリジン（７ｍＬ）に溶解し、塩化４,４’−ジメトキシトリチル（５１４ｍｇ、１．５２ミリモル）を添加した。２時間後に塩化４,４’−ジメトキシトリチル（２５７ｍｇ、０．７６ミリモル）をさらに添加した。この溶液を２時間攪拌し、塩化４,４’−ジメトキシトリチル（２７５ｍｇ、０．７６ミリモル）の最後の添加を行った。１２時間後、ＭｅＯＨ（１０ｍＬ）をこの反応混合物に添加して１０分間攪拌し、溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得、それをトルエンと共に蒸発させた。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカをＣＨ2Ｃｌ2−アセトン−ピリジン、８０：２０：１で前処理した後にＣＨ2Ｃｌ2−アセトン、８０：２０を用いることによって精製し、表題の化合物（８）を黄色固体として得た（７０４ｍｇ、６８％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ７．８−６．８（ｍ、１８Ｈ）、５．９４（ｄ、Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．５７−４．１２（ｍ、７Ｈ）、３．７８（ｓ、６Ｈ）、３．５３（ｍ、２Ｈ）、１．３４（ｓ、３Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １６４．３、１６３．８、１５８．６、１５０．６、１４４．４、１３５．５、１３５．４、１３４．７、１３０．１、１２８．７、１２８．２、１２８．０、１２７．１、１２３．７、１１３．３、１１０．９、８７．９、８６．７、８３．２、６８．７、６８．５、６１．７、５５．２、１１．９。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：７５０（Ｍ＋Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｚ：７４８（Ｍ−Ｈ）。Ｃ41Ｈ39Ｎ3Ｏ11・Ｈ2Ｏについて算出された分析値：Ｃ、６５．１４；Ｈ、５．３８；Ｎ、５．４７。実測値：Ｃ、６３．８５；Ｈ、５．１６；Ｎ、５．１４。Ｃ41Ｈ39Ｎ3Ｏ11について算出された分析値：Ｃ、６５．６８；Ｈ、５．２４；Ｎ、５．６０。実測値：Ｃ、６５．２３；Ｈ、５．２７；Ｎ、５．４５。
実施例７
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（９、図２）
化合物８を、無水ピリジン（２×２０ｍＬ）と共に蒸発させ、次いで真空中（０．１トール）、周囲温度で１２時間さらに乾燥させることにより乾燥させた。この乾燥させた物質（７０４ｍｇ、０．９３９ミリモル）を、攪拌しながらＣＨ2Ｃｌ2（９ｍＬ）、ジイソプロピルアミンテトラゾリド（８０．４ｍｇ、０．４７ミリモル）及び２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（０．３３ｍＬ、１．０３ミリモル）に溶解した。２時間後、周囲温度で、２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（０．３３ｍＬ、１．０３ミリモル）をさらに添加し、その溶液を２０時間攪拌した。溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得、それをフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカをＣＨ2Ｃｌ2−アセトン−ピリジン、８５：１５：１で前処理した後にＣＨ2Ｃｌ2−アセトン、８５：１５を用いることによって精製し、表題の化合物（９）を油状物質として得た（７０４ｍｇ、６８％）。この生成物を無水アセトニトリル（２×３０ｍＬ）及びＣＨ2Ｃｌ2（２×３０ｍＬ）と共に蒸発させ、黄色の泡状物質を得た。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．６（ｂｒ、１Ｈ）、７．７８−６．８２（ｍ、１８Ｈ）、６．０６（ｍ、１Ｈ）、４．６−３．３（ｍ、１４Ｈ）、３．７５（ｓ、６Ｈ）、２．６６（ｍ、１Ｈ）、２．３７（ｍ、１Ｈ）、１．３６（ｓ、３Ｈ）、１．１６（ｍ、１２Ｈ）。31Ｐ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １５０．５、１５１．２。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：９５０（Ｍ＋Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｚ：９４８（Ｍ−Ｈ）。Ｃ50Ｈ56Ｎ5Ｏ12Ｐ・Ｈ2Ｏについて算出された分析値：Ｃ、６２．０４；Ｈ、６．０４；Ｎ、７．２４。実測値：Ｃ、６２．２０；Ｈ、５．９４；Ｎ、７．３４。
実施例８
２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１１、図３）
アデノシン（３０．００ｇ、１１２ミリモル）を熱無水ＤＭＦ（６００ｍＬ）に溶解し、その溶液を周囲温度に冷却した。ＮａＨ（６０％分散油、４．９４ｇ、１２４ミリモル）を添加し、その混合物を機械式攪拌機で１時間攪拌した。生じた懸濁液を５℃に冷却し、エチルブロモアセテート（１３．７ｍＬ、１２４ミリモル）を添加した。生じた溶液を周囲温度で１２時間攪拌し、溶媒を真空中で蒸発させて、２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）アデノシン（１０）及び推定３’−Ｏ−異性体を含む残滓を得た。この物質をピリジンと共に蒸発させて泡状物質を得、それを無水ピリジン（４００ｍＬ）に溶解した。１,３−ジクロロ−１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン（３９.５２ｍＬ、１２４ミリモル）を添加し、その溶液を周囲温度で２４時間攪拌した。溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得、それをＥｔＯＡｃ（５００ｍＬ）に溶解して食塩水で３回洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、８０：２０を用いて精製し、表題の化合物（１１）を油状物質として得た（１４．６３ｇ、２２％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．２６（ｓ、１Ｈ）、８．０７（ｓ、１Ｈ）、６．２０（ｂｒｓ、２Ｈ）、４．９１（ｄｄ、Ｊ1’2’＝４．７Ｈｚ、Ｊ2’3’＝９．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．６４−３．９７（ｍ、８Ｈ）、１．２２（ｔ、３Ｈ）、１．０５（ｍ、２８Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １７０．０、１５５．５、１５２．８、１４９．０、１３９．３、１２０．２、８８．６、８２．２、８１．１、６９．９、６８．３、６０．８、６０．０、１７．２、１４．０、１２．７。Ｃ26Ｈ45Ｎ5Ｏ7Ｓｉ2について算出された分析値：Ｃ、５２．４１；Ｈ、７．６１；Ｎ、１１．７５、Ｓｉ、９．４３。実測値：Ｃ、５２．２３；Ｈ、７．３４；Ｎ、１１．６９。
実施例９
２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１２、図３）
化合物１１（４．１７５ｇ、７．０１ミリモル）をエタノール（９５％、４０ｍＬ）に溶解し、生じた溶液を５℃に冷却した。ＮａＢＨ4（６０％油分散液、０．６４ｇ、１６．８ミリモル）を添加し、その混合物を周囲温度に暖めた。１２時間攪拌した後、ＣＨ2Ｃｌ2（２００ｍＬ）を添加し、その溶液を食塩水で２回洗浄して有機層を分離した。有機層をＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりＥｔＯＡｃ−ＭｅＯＨ、９５：５を用いて精製し、表題の化合物（１２）を油状物質として得た（０．３６８ｇ、９．５％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．３１（ｓ、１Ｈ）、８．１４（ｓ、１Ｈ）、６．１８（ｂｒｓ、２Ｈ）、６．０７（ｓ、１Ｈ）、４．６２（ｄｄ、Ｊ1’2’＝４．６Ｈｚ、Ｊ2’3’＝９．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．３−３．５（ｍ、８Ｈ）、１．０３（ｍ、２８Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（Ｃ ＤＣｌ3）：δ １５５．５、１５３．０、１４８．７、１３８．３、１２０．３、８９．２、８２．７、８１．４、７３．５、６９．３、６１．８、５９．７、１７．２、１７．０、１６．８、１３．４、１２．９、１２．８、１２．６。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：５５４（Ｍ＋Ｈ）、６８６（Ｍ＋Ｃｓ＋）。
実施例１０
２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−ヒドロキシエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１３、図４）
無水ＴＨＦ（１０ｍＬ）中の化合物１２（０．３３０ｇ、０．５９６ミリモル）の溶液にトリフェニルホスフィン（０．１８０ｇ、０．６８５ミリモル）及びＮ−ヒドロキシフタルイミド（０．１１２ｇ、０．６８５ミリモル）を添加した。この混合物にジエチルアゾジカルボキシレート（０．１１ｍＬ、６８５ミリモル）を５℃で滴下により添加した。周囲温度で３時間攪拌した後、溶媒を蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をＥｔＯＡｃに溶解し、飽和ＮａＨＣＯ3（×３）及び食塩水で洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させた。溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりＥｔＯＡｃ−ＭｅＯＨ、９５：５を用いて精製し、表題の化合物（１３）を油状物質として得た（０．２８５ｇ、６８％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．２１（ｓ、１Ｈ）、８．０５（ｓ、１Ｈ）、７．８−７．４５（ｍ、４Ｈ）、６．００（ｓ、１Ｈ）、５．８８（ｂｒｓ、２Ｈ）、４．９２（ｄｄ、Ｊ1’2’＝４．６、Ｊ2’3’＝９．０Ｈｚ）、４．５−３．９（ｍ、８Ｈ）、１．０（ｍ、２８Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １６３、１５５．３、１５２．８、１４９、１３９．６、１３４．３、１２３．４、１２０、８８．７、８２．７、８１．１、７７．４、７０．２、６９．５、６０．１、１７．４、１７．２、１７．０、１６．９、１３．３、１２．９、１２．７、１２．６。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：６９９（Ｍ＋Ｈ）。
実施例１１
Ｎ６−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−ヒドロキシエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１４、図４）
５℃に冷却した無水ピリジン（１９ｍＬ）中の化合物１３（１．０９ｇ、１．９７ミリモル）の溶液に塩化ベンゾイル（１．１４ｍＬ、９．８ミリモル）を添加し、得られた混合物を周囲温度で１２時間攪拌した。この混合物を５℃に冷却した後、冷水（３．８ｍＬ）を添加し、その混合物を１５分間攪拌して濃ＮＨ4ＯＨ（３．８ｍＬ）を添加した。５℃で３０分間攪拌した後、溶媒を蒸発させて残滓を得、それを水に溶解してＣＨ2Ｃｌ2で３回抽出した。有機抽出物を合わせ、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、真空中で蒸発させて油状物質を得た。この油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、５０：５０、次いで２０：８０を用いて精製し、表題の化合物（１４）を油状物質として得た（０．６１８ｇ、４８％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ９．２（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．６９（ｓ、１Ｈ）、８．２７（ｓ、１Ｈ）、８．０−７．４（ｍ、９Ｈ）、６．１２（ｓ、１Ｈ）、４．９５（ｄｄ、Ｊ1’2’＝４．７Ｈｚ、Ｊ2’3’＝９．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．５−４．０（ｍ、８Ｈ）、１．０６（ｍ、２８Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １６４．４、１６３．３、１５２．５、１５０．８、１４９．３、１４２．１、１３４．４、１３３．７、１３２．６、１３２．１、１２８．７、１２８．２、１２７．７、１２３．４、８８．９、８２．７、８１．３、７７．５、７０．１、６９．６、６０．０、１７．２、１７．０、１６．８、１３．３、１２．８、１２．７、１２．６。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：８０３（Ｍ＋Ｈ）。
実施例１２
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−ヒドロキシエチル）アデノシン（１５、図４）
ＴＨＦ（２０ｍＬ）中の化合物１４（０．６８０ｇ、０．８４７ミリモル）の溶液に、ポリエチレン反応容器内、５℃で、ＨＦ−ピリジン（７０％、０．４８ｍＬ、１６．９ミリモル）を添加し、得られた混合物を周囲温度に暖めた。１２時間攪拌した後、溶媒を真空中で蒸発させ、ＥｔＯＡｃを添加し、その溶液を水で洗浄し、水層を分離してＥｔＯＡｃで抽出した。有機層を合わせ、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を真空中で蒸発させて表題の化合物（１５）を固体として得た（４０８ｍｇ、８６％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ １１．２（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．７１（ｓ、１Ｈ）、８．６７（ｓ、１Ｈ）、８．０−７．５（ｍ、９Ｈ）、６．１１（ｄ、Ｊ１’２’＝５．７Ｈｚ）、５．２３（ｄ、１Ｈ）、５．１４（ｔ、１Ｈ）、４．６６（ｔ、１Ｈ）、４．３５（ｍ、３Ｈ）、３．９０（ｍ、３Ｈ）、３．６（ｍ、２Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ6）：δ １６３．５、１５２．０、１４３．２、１３５．０、１３２．６、１３１．９、１３１．７、１２９．３、１２８．７、１２８．５、１２３．４、８６．３、８５．８、８１．３、７６．８、６９．０、６８．７、６１．３。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：５６１（Ｍ＋Ｈ）、５８３（Ｍ＋Ｎａ＋）。
実施例１３
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）アデノシン（１６、図４）
無水ピリジン（５ｍＬ）中の化合物１５（０．２５８ｇ、０．４６ミリモル）の溶液に塩化４,４’−ジメトキシトリチル（０．１７９ｇ、０．５３ミリモル）を添加し、その溶液を周囲温度で１２時間攪拌した。水を添加し、その混合物をＥｔＯＡｃで３回抽出した。有機抽出物を合わせ、真空中で蒸発させ、ＭｇＳＯ4で乾燥させた。得られた油状物質をフラッシュクロマトグラフィーによりヘキサン−ＥｔＯＡｃ、９０：１０を用いて精製し、表題の化合物（１６）を油状物質として得た（０．２４９ｇ、６３％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ９．１６（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．６８（ｓ、１Ｈ）、８．２８（ｓ、１Ｈ）、８．１−６．８（ｍ、２２Ｈ）、６．２６（ｄ、Ｊ１’２’＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．７６（ｍ、１Ｈ）、４．６０（ｍ、１Ｈ）、４．４−４．３（ｍ、３Ｈ）、４．１３−４．０（ｍ、３Ｈ）、３．７７（ｓ、６Ｈ）、３．４８（ｍ、２Ｈ）。13Ｃ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １６４．５、１６３．６、１５８．５、１５２．６、１５１．４、１４９．５、１４４．５、１４１．９、１３５．７、１３４．７、１３２．７、１３０．１、１２８．８、１２８．２、１２７．８、１２６．９、１２３．７、１１３．２、８７．２、８４．１、８２．６、６９．９、６９．０、６３．０、６０．３、５５．２。Ｃ48Ｈ42Ｎ6Ｏ10について算出されたＨＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／Ｚ（Ｍ＋Ｃｓ＋）９９５．２０１７、実測９９５．２０５３（Ｍ＋Ｃｓ＋）。
実施例１４
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）アデノシン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（１７、図４）
ＣＨ2Ｃｌ2（１０ｍＬ）中の化合物１６（０．３００ｇ、０．３４８ミリモル）の溶液にジイソプロピルアミンテトラゾリド（０．０３０ｇ、０．１７４ミリモル）及び２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（０．１３ｍＬ、０．４１８ミリモル）を添加した。周囲温度で１２時間攪拌した後、ジイソプロピルアミンテトラゾリド（０．０６０ｇ、０．３４８ミリモル）及び２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（０．２６ｍＬ、０．８３２ミリモル）を２つに分けて２４時間にわたってさらに添加した。２４時間後、ＣＨ2Ｃｌ2−ＮＥｔ3、１００：１を添加し、その混合物を飽和ＮａＨＣＯ3水溶液及び食塩水で洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を真空中で蒸発させた。得られた油状物質をフラッシュクロマトグラフィーにより、シリカをヘキサン−ＥｔＯＡｃ−ＮＥｔ3（４０：６０：１）で前処理した後に同じ溶媒系を用いることによって、表題の化合物（１７）を油状物質として得た（２０３ｇ、５５％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）δ ６．２７（ｍ、１Ｈ）。31Ｐ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ １５１．０、１５０．５。Ｃ57Ｈ59Ｎ8Ｏ11Ｐについて算出されたＨＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ（Ｍ＋Ｃｓ＋）１１９５．３０９５、実測１１９５．３０４６（Ｍ＋Ｃｓ＋）。
実施例１５
２’−Ｏ−（２−アミノオキシエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１８、図５）
ＣＨ2Ｃｌ2（５ｍＬ）中の化合物１３（０．２２８ｇ、０．３２６ミリモル）の溶液に、５℃で、メチルヒドラジン（０．０１７ｍＬ、０．３２６ミリモル）を添加して２時間攪拌した。この混合物を濾過して沈殿を除去し、濾液を水及び食塩水で洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、真空中で蒸発させて表題の化合物（１８）を油状物質として得た（１８６ｍｇ）。この油状物質は次の反応に十分な純度のものであった。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．３１（ｓ、１Ｈ）、８．１５（ｓ、１Ｈ）、６．０７（ｓ、１Ｈ）、５．７８（ｂｒｓ、２Ｈ）、４．７０（ｄｄ、Ｊ１’、２’＝４．４Ｈｚ、Ｊ２’、３’＝９．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．３−３．９（ｍ、８Ｈ）、１．９（ｂｒ、２Ｈ）、１．０（ｍ、２８Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：５６９（Ｍ＋Ｈ）、７０２（Ｍ＋Ｃｓ+）。
実施例１６
２’−Ｏ−（２−Ｏ−ホルムアルドキシミルエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（１９、図５）
ＥｔＯＡｃ（２ｍＬ）及びＭｅＯＨ（２ｍＬ）中の化合物１８（０．１８６ｇ、０．３２６ミリモル）の溶液にホルムアルデヒド（３７％水溶液、０．０２８ｍＬ、０．３４２ミリモル）を添加し、周囲温度で３時間攪拌した。溶媒を真空中で蒸発させて表題の化合物（１９）を油状物質として得た（１８９ｍｇ）。この油状物質は次の反応に十分な純度のものであった。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．３１（ｓ、１Ｈ）、８．０９（ｓ、１Ｈ）、６．９７（ｄ、Ｊ＝８．３Ｈｚ、１Ｈ）、６．３８（ｄ、Ｊ＝８．３Ｈｚ、１Ｈ）、６．０１（ｓ、１Ｈ）、５．６６（ｂｒｓ、２Ｈ）、４．７７（ｄｄ、Ｊ1’2’＝４．７Ｈｚ、Ｊ2’3’＝９．３Ｈｚ）、４．３−４．０（ｍ、８Ｈ）、１．０（ｍ、２８Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：５８１（Ｍ＋Ｈ）、７１３（Ｍ＋Ｃｓ+）。
実施例１７
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｏ−ホルムアルドキシミルエチル）−３’,５’−Ｏ−（１,１,３,３−テトライソプロピルジシロキサン−１,３−ジイル）アデノシン（２０、図５）
ピリジン（５ｍＬ）中の化合物１９（０．１８９ｇ、０．３２６ミリモル）の溶液に５℃で塩化ベンゾイル（０．１９ｍＬ、１．６３ミリモル）を添加し、得られた溶液を周囲温度で３時間攪拌した。この溶液を５℃に冷却し、濃ＮＨ4ＯＨ（１．５ｍＬ）を添加して１時間攪拌した。溶媒を真空中で蒸発させて油状物質を得、それをＣＨ2Ｃｌ2に溶解した。この溶液を水で洗浄し、有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、溶媒を蒸発させて表題の化合物（２０）（２２３ｍｇ）を油状物質として得たが、これは次の反応に十分な純度のものであった。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ９．３０（ｂｒ、１Ｈ）、８．７９（ｓ、１Ｈ）、８．３１（ｓ、１Ｈ）、８．１−７．２（ｍ、５Ｈ）、７．００（ｄ、１Ｈ）、６．３９（ｄ、１Ｈ）、６．０９（ｓ、１Ｈ）、４．７７（ｄｄ、１Ｈ）、４．４−３．９（ｍ、８Ｈ）、１．１（ｍ、２８Ｈ）。
実施例１８
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｏ−ホルムアルドキシミルエチル）アデノシン（２１、図５）
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中の化合物２０（２２３ｍｇ、０．３２６ミリモル）の溶液に、ポリエチレン反応容器内、５℃で、ＨＦ−ピリジン（７０％、０．１９ｍＬ、６．５ミリモル）を添加し、この混合物を周囲温度に暖めた。４８時間攪拌した後、溶媒を真空中で蒸発させて残滓を得、それをＥｔＯＡｃに溶解して水で洗浄した。有機層を分離し、水層をＥｔＯＡｃで抽出し、有機層を合わせ、ＭｇＳＯ4で乾燥させ、真空中で蒸発させた。得られた残滓をフラッシュクロマトグラフィーによりＥｔＯＡｃ−ＭｅＯＨ、９５：５を用いて精製し、表題の化合物（２１）を固体として得た（２４ｍｇ、１３から１７％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ９．０５（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．７７（ｓ、１Ｈ）、８．１３（ｓ、１Ｈ）、７．９−７．２（ｍ）、６．２６（ｄ、Ｊ＝１０．７Ｈｚ、１Ｈ）、６．０３（ｄ、Ｊ1’2’＝７．８Ｈｚ）、４．８８（ｄｄ、Ｊ＝４．６Ｈｚ、Ｊ＝７．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．６−３．７（ｍ、１０Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ：４４３（Ｍ＋Ｈ）。ＬＲＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｚ：４４１（Ｍ−Ｈ）。
実施例１９
Ｎ６−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｏ−ホルムアルドキシミルエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）アデノシン（２１Ａ、図５）
ピリジン（７ｍＬ）中の化合物２１（０．３４ｇ、０．７６８ミリモル）の溶液に塩化４,４’−ジメトキシトリチル（０．３１２ｇ、０．９２２ミリモル）を添加し、その反応混合物を周囲温度で５時間攪拌した。追加量の塩化４,４’−ジメトキシトリチル（５２０ｍｇ、１．５４ミリモル及び３４０ｍｇ、０．７６８ミリモル）を２４時間にわたって添加した。溶媒を蒸発させ、粗製生成物をＥｔＯＡｃに溶解し、水で洗浄した。有機層を分離し、ＭｇＳＯ4で乾燥させて溶媒を真空中で蒸発させた。粗製物質をカラムクロマトグラフィーにより、ＥｔＯＡｃ−ヘキサン−ＮＥｔ3，８０：２０：０．５、ｖ／ｖ／ｖ、次いでＥｔＯＡｃ−ＮＥｔ3、１００：０．５、ｖ／ｖを溶媒として用いて精製し、表題の化合物（２１Ａ）を油状物質として得た（０．２６９ｇ、４７％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：δ ８．９９（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．７４（ｓ、１Ｈ）、８．１−６．８（ｍ、１８Ｈ）、７．００（ｄ、１Ｈ）、６．４３（ｄ、１Ｈ）、６．１９（ｄ、１Ｈ）、４．７２（ｍ、１Ｈ）、４．４８（ｍ、１Ｈ）、４．２３（ｍ、３Ｈ）、４．１（ｍ、１Ｈ）、３．９（ｍ、１Ｈ）、３．７８（ｓ、６Ｈ）、３．４５（ｍ、２Ｈ）、３．１５（ｄ、１Ｈ）。Ｃ41Ｈ40Ｎ6Ｏ8について算出されたＨＲＭＳ（ＦＡＢ＋）ｍ／ｚ（Ｍ＋Ｃｓ＋）８７７．１９６２、実測８７７．１９８８（Ｍ＋Ｃｓ＋）。
実施例２０
２’−Ｏ−アリル−５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−５−メチルウリジン
１００ｍＬステンレス鋼圧力反応器において、アリルアルコール（２０ｍＬ）をテトラヒドロフラン中のホウ素の溶液（１Ｍ、１０ｍＬ、１０ミリモル）に攪拌しながら徐々に添加した。水素ガスが急速に生じた。泡立ちの割合が鎮まったら、２,２’−アンヒドロ−５−メチルウリジン（１．０ｇ、０．４．２ミリモル）及び重炭酸ナトリウム（６ｍｇ）を添加し、反応器を密封した。この反応器を油浴に入れ、内部温度１７０℃に１８時間加熱した。反応器を室温に冷却して開封した。ｔｌｃにより出発物質が全て無くなったことが明らかになった（出発物質及び生成物のＲｆは、シリカゲルで、４：１酢酸エチル／メタノールにおいて、それぞれ０．２５及び０．６０である）。この粗製溶液を濃縮し、メタノール（５０ｍＬ）、沸騰水（１５ｍＬ）、無水エタノール（２×２５ｍＬ）と共に蒸発させた後、残滓を乾燥させて１．４ｇの黄褐色泡状物質とした（１ｍｍＨｇ、２５℃、２時間）。この粗製ヌクレオシドの一部（１．２ｇ）をさらに精製することなく次の反応工程に用いた。この残滓をピリジン（３０ｍＬ）と共に蒸発させ、ピリジン（３０ｍＬ）に再溶解した。塩化ジメトキシトリチル（１．７ｇ、５．０ミリモル）を室温で一度に添加した。２時間後、メタノール（５ｍＬ）で反応を停止させ、真空中で濃縮し、飽和重炭酸ナトリウム及び酢酸エチルの溶液（各々１５０ｍＬ）に分配した。有機層を分離して濃縮し、その残滓を、ヘキサン−酢酸エチル−トリエチルアミン（５０：４９：１）〜（６０：３９：１）の溶媒勾配を用いるカラムクロマトグラフィー（シリカゲル４５ｇ）に処した。生成物含有画分を合わせ、濃縮し、アセトニトリル（３０ｍＬ）と共に蒸発させ、乾燥（１ｍｍｈｇ、２５℃、２４時間）させて８４０ｍｇ（２工程の収率３４％）の白色泡状固体とした。ＮＭＲは文献に報告される非メチル化ウリジン類似体と一致した。
実施例２１
２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−５−メチルウリジン
２’−Ｏ−アリル−５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−５−メチルウリジン（１．０ｇ、１．６ミリモル）、四酸化オスミウム水溶液（０．１５Ｍ、０．３６ｍＬ、０．００５６ミリモル、０．０３５当量）及び４−メチルモルホリンＮ−酸化物（０．４１ｇ、３．５ミリモル、２．１５当量）をジオキサン（２０ｍＬ）に溶解し、２５℃で４時間攪拌した。ｔｌｃによりジオールへの完全かつ完壁な反応が示された（シリカゲルで、ジクロロメタン／メタノールにおいて、出発物質からジオールへのＲｆは０．４０から０．１５である）。過ヨウ化カリウム（０．８１ｇ、３．５６ミリモル、２．２当量）を水（１０ｍＬ）に溶解し、この反応物に添加した。１７時間後、ｔｌｃにより反応の９０％の完了が示された（上記の系におけるアルデヒドのＲｆは０．３５）。この反応溶液を濾過し、５％亜硫酸水素ナトリウム水溶液（２００ｍＬ）で反応を停止させ、生成物アルデヒドを酢酸エチル（２×２００ｍＬ）で抽出した。有機層を合わせ、食塩水（２×１００ｍＬ）で洗浄し、濃縮して油状物質とした。この油状物質を無水エタノール（１５ｍＬ）に溶解し、水素化ホウ素ナトリウム（１ｇ）を添加した。２５℃で２時間後、ｔｌｃにより反応の完了が示された。水（５ｍＬ）を添加して水素化ホウ素を破壊した。２時間後、この反応物をストリップし、残滓を酢酸エチル及び飽和重炭酸ナトリウム溶液（各々５０ｍＬ）に分配した。有機層を真空中で濃縮し、残滓をカラム処理した（シリカゲル３０ｇ、ジクロロメタン−メタノール９７：３）。生成物含有画分を合わせ、ストリップし、乾燥させて０．５０ｇ（５０％）の白色泡状物質とした。ＮＭＲはグリコシル化経路によって調製した物質のものと一致した。
実施例２２
２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−５−メチルウリジン
１００ｍＬステンレス鋼圧力反応器において、エチレングリコール（２０ｍＬ）をテトラヒドロフラン中のホウ素の溶液（１Ｍ、１０ｍＬ、１０ミリモル）に攪拌しながら徐々に添加した。水素ガスが急速に生じた。泡立ちの割合が鎮まったら、２,２’−アンヒドロ−５−メチルウリジン（１．０ｇ、０．４．２ミリモル）及び重炭酸ナトリウム（３ｍｇ）を添加し、反応器を密封した。この反応器を油浴に入れ、内部温度１５０℃に７２時間加熱した。ボンベを室温に冷却して開封した。ｔｌｃにより６５％の出発物質が無くなったことが明らかになった（出発物質及び生成物のＲｆは、シリカゲルで、４：１酢酸エチル／メタノールにおいて、それぞれ０．２５及び０．４０である）。反応は不完全であった。この粗製溶液を濃縮し（１ｍｍＨｇ、１００℃）、メタノール（５０ｍＬ）、沸騰水（１５ｍＬ）及び無水エタノール（２×２５ｍＬ）と共に蒸発させ、残滓を乾燥させて１．３ｇのオフホワイトの泡状物質とした（１ｍｍＨｇ、２５℃、２時間）。この粗製生成物のＮＭＲは所望の生成物６５％及び出発物質３５％と一致した。ＴＬＣのＲｆが上記ＤＭＴ誘導体をメタノール中において希塩酸で処理することにより生じる同じ生成物と一致した（同スポット（cospot））だけではなく、この生成物の試料を塩化ジメトキシトリチルで処理することにより生じるスポットのうちの１つが既知ＤＭＴ誘導体と一致した（他のスポットは側鎖上のＤＭＴ及びビス置換生成物であった）。
実施例２３
Ｎ４−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）シチジン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（２５、図６）
２’−Ｏ−アミノオキシエチルシチジン及びグアノシド類似体は報告された文献の手順と組み合わせた類似の化学により調製することができる。この合成経路の鍵は非保護ヌクレオシドの選択的２’−Ｏ−アルキル化である。（Guinosso,C.J.,Hoke,G.D.,Frier,S.,Martin,J.F.,Ecker,D.J.,Mirabelli,C.K.,Crooke,S.T.,Cook,P.D.,Nucleosides Nucleotides,1991,10,259;Manoharan,M.,Guinosso,C.J.,Cook,P.D.,Tetrahedron Lett.,1991,32,7171;Izatt,R.M.,Hansen,L.D.,Rytting,J.H.,Christensen,J.J.,J.Am.Chem.Soc.,1965,87,2760.Christensen,L.F.,Broom,A.D.,J.Org.Chem.,1972,37,3398.Yano,J.,Kan,L.S.,Ts’o,P.O.P.,Biochim.Biophys.Acta,1980,629,178;Takaku,H.,Kamaike,K.,Chemistry Lett.1982,189）。したがって、シチジンを選択的にアルキル化して中間体２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）シチジン２２を得ることができる。２２の３’−異性体が典型的には微量存在し、クロマトグラフィー又は結晶化により分離することができる。化合物２２を保護して２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）シチジン（２３）を得ることができる。このエステル２３を還元することで２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）シチジン（２４）が生じ、これをＮ−４−ベンゾイル化することができ、その一級ヒドロキシル基を光延反応によりＮ−ヒドロキシフタルイミドで置換することができ、かつ保護されたヌクレオシドを通常の通り亜リン酸化してＮ４−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）シチジン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（２５）を得ることができる。
実施例２４
Ｎ２−イソブチリル−６−Ｏ−ジフェニルカルバモイル−２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）グアノシン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（３１）
同様の方式で、２’−Ｏ−アミノオキシエチルグアノシン類似体をジアミノプリンリボシド（多グラム量のジアミノプリンリボシドはSchering AG（ベルリン）から購入することができる）の選択的２’−Ｏ−アルキル化により得、微量の３’−Ｏ−異性体を含む２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）ジアミノプリンリボシド２６類似体を得ることができる。化合物２６はアデノシンデアミナーゼで処理することにより分離して２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）グアノシン２７に変換することができる（McGee,D.P.C.、Cook,P.D.、Guinosso,C.J.、ＰＣＴ国際出願、８５ｐｐ．；ＰＩＸＸＤ２；ＷＯ９４／０２５０１Ａ１９４０２０３）。標準的な保護手順により２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）グアノシン２８及び２Ｎ−イソブチリル−６−Ｏ−ジフェニルカルバモイル−２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）グアノシン２９が得られ、これを還元して２−Ｎ−イソブチリル−６−Ｏ−ジフェニルカルバモイル−２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４、４’−ジメトキシトリチル）グアノシン（３０）が得られる。前記と同様に、光延反応によりヒドロキシル基をＮ−ヒドロキシフタルイミドで置換し、保護したヌクレオシドを通常通り亜リン酸化して２−Ｎ−イソブチリル−６−Ｏ−ジフェニルカルバモイル−２’−Ｏ−（２−エチルアセチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）グアノシン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（３１）を得ることができる。
実施例２５
Ｎ−（１−ヒドロキシフタルイミド）−５−ヘキセン（３２、図９）
ＴＨＦ（５００ｍＬ）中の５−ヘキサン−１−オール（２０ｇ、０．２モル）の攪拌溶液にトリフェニルホスフィン（８０ｇ、０．３モル）及びＮ−ヒドロキシフタルイミド（４９ｇ、０．３モル）を添加した。この混合物を０℃に冷却し、ジエチルアジドカルボキシレート（４８ｍＬ、０．３モル）を１時間にわたって徐々に添加した。この反応混合物を室温に暖め、その黄色溶液を一晩攪拌した。次に、溶媒を蒸発させて黄色の油状物質を得た。この油状物質をＣＨ2Ｃｌ2に溶解し、水、飽和ＨａＨＣＯ3溶液、次いで飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄した。有機層を真空中で濃縮し、残留油状物質をＣＨ2Ｃｌ2／エーテルの溶液に溶解してＰｈ3Ｐ＝Ｏを可能な限り多く晶出させた。３工程の精製の後、表題の化合物を黄色ワックス状固体として単離した（収率９３％）。13Ｃ ＮＭＲ：δ ２１．９４、２４．８３、２７．５８、３３．２６、７８．２６、１１４．９１、１２３．４１、１２８．４０、１２８．５４、１２８．６３、１３４．４５及び１６３．８ｐｐｍ。
実施例２６
Ｎ−（１−ヒドロキシフタルイミド−５,６−ヘキサン−ジオール）（３３、図９）
化合物３２（２．５９ｇ、１０ミリモル）、四酸化オスミウム水溶液（０．１５Ｍ、３．６ｍＬ、０．０５６ミリモル）及びＮ−メチルモルホリン−Ｎ−オキシド（２．４６ｇ、２１ミリモル）をＴＨＦ（１００ｍＬ）に溶解した。この反応混合物をアルミニウムホイルで覆い、２５℃で４時間攪拌した。ｔｌｃによりジオールが形成されたことが示された。溶媒を蒸発させ、残滓を水及びＣＨ2Ｃｌ2に分配した。有機層をＮａＣｌの飽和溶液で洗浄し、無水ＭｇＳＯ4で乾燥させた。有機層を濃縮することで褐色がかった油状物質が生じ、これを13Ｃ ＮＭＲで特徴付け、さらに精製することなく次の工程において用いた。13Ｃ ＮＭＲ：δ ２１．９２、２８．０８、３２．６２、６６．７６、７１．９６、７８．３３、１２３．４３、１２８．４７、１２８．７１、１３１．９３、１３２．１３、１３４．４９、１６３．８９。
実施例２７
Ｎ−１−ヒドロキシフタルイミド−６−Ｏ−ジメトキシトリチル−５,６−ヘキサン−ジオール（３４、図９）
前工程からの生成物（３．０ｇ）をピリジン（２×２０ｍＬ）と共に蒸発させ、ピリジン（１００ｍＬ）に溶解した。塩化ジメトキシトリチル（３．５ｇ、１０ミリモル）をピリジン（３０ｍＬ）に溶解し、ジオールに３０分にわたって滴下により添加した。４時間後、メタノール（１０ｍＬ）で反応を停止させた。溶媒を蒸発させ、残留生成物を飽和重炭酸ナトリウム溶液及びＣＨ2Ｃｌ2（各々１００ｍＬ）に分配した。有機層を無水ＭｇＳＯ4で乾燥させて濃縮し、その残滓を、ヘキサン−酢酸エチル−トリエチルアミン（６０：３９：１）を用いるシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィーに処した。生成物含有画分を合わせ、真空中で濃縮し、乾燥させて黄色の泡状固体を得た。ＮＭＲ分析により、表題の化合物が純粋な均質ジメトキシトリチル化固体（５．０５ｇ、収率８３％）として示された。
実施例２８
（３５、図９）
化合物３４を、ＣＨ2Ｃｌ2溶媒（２０ｍＬ）中で、ジイソプロピルアミンテトラゾリド（２１４ｍｇ、１．２５ミリモル）及び２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（１．３ｍＬ、４．０ミリモル）を添加することにより亜リン酸化した（１．５ｇ、２．５ミリモル）。この溶液を一晩攪拌した後、溶媒を蒸発させ、その残滓をシリカゲルカラムに添加してヘキサン−酢酸エチル−トリエチルアミン（５０：４９：１）で溶出した。適切な画分を濃縮することで１．６１ｇの亜リン酸化化合物を黄色泡状物質として得た（８１％）。
実施例２９
Ｏ−ＮリンカーのＣＰＧへの結合（３６、図１０）
スクシニル化したキャップドＣＰＧをP.D.Cookらによって記述される方法に従って調製した（米国特許第５,５４１,３０７号）。化合物３４（０．８ミリモル）、ジメチルアミノピリジン（０．２ミリモル）、２．０ｇのスクシニル化したキャップドＣＰＧトリエチルアミン（１６０μｇ）及びＤＥＣ（４．０ミリモル）を一緒に２４時間振盪した。次にペンタクロロフェニル（１．０ミリモル）を添加し、得られた混合物を２４時間振盪した。ＣＰＧビーズを濾別し、ピリジン（３０ｍＬ）、ジクロロメタン（２×３０ｍＬ）、エーテル中のＣＨ3ＯＨ（３０ｍＬ）で徹底的に洗浄した。このＣＰＧ固体支持体をＰ2Ｏ5で乾燥させたところ、その積載量は２８μモル／ｇと決定された。
実施例３０
ＯＮリンカーを用いるオリゴヌクレオチドの合成
以下のオリゴヌクレオチドを化合物３５を用いて合成した：
Figure 0004440346
これらのオリゴヌクレオチドはホスホロチオエートとして合成した。化合物３５はＣＨ3ＣＮ中の０．１Ｍ溶液として用いた。ＯＮ−リンカーのカップリング効率は、トリチルの色によって示されるように、＞９５％であった。固相結合のために、これらのオリゴヌクレオチドは固体支持体に保持した。
実施例３１
ＯＮ−リンカーを用いるオリゴヌクレオチドへのピレンの結合
ＣＰＧ中のオリゴヌクレオチド配列番号１（１μモル）をガラスロート反応器にとり、９：１ＣＨ2Ｃｌ2／ＣＨ3ＯＨ中の５％メチルヒドラジン（５ｍＬ）を添加した。反応器を３０分間振盪した。メチルヒドラジンを排出し、ＣＨ2Ｃｌ2で洗浄し、メチルヒドラジン反応を繰り返した。ビーズをＣＨ2Ｃｌ2、次いでエーテルで洗浄し、乾燥させた。ＤＭＦ（５ｍＬ）中のピレン酪酸−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（１１０ｍｇ）を添加した。２時間振盪した後、ピレンブチレート溶液を排出し、オリゴヌクレオチドをＮＨ4ＯＨ中において室温で３０分間脱保護した。次に、その水溶液を濾過し、ＨＰＬＣ分析を行った。生成物ピークの保持時間は３４．８５分であり、ダイオード・アレイ分光光度計によりピレンの吸収が示された。
実施例３２
ピレンブチルアルデヒドのオリゴヌクレオチド（配列番号２）への結合
ピレンブチルアルデヒドを、ＭｅＮＨＮＨ2処理の後に配列番号２に添加した。次に、ＭｅＯＨ中のＮａＣＮＢＨ3を添加した。ＣＰＧを脱保護し、次いでＣＰＧをＮＨ4ＯＨ開裂することにより、オリゴヌクレオチドへのピレンの結合が示された。
実施例３３
無水ＴＨＦ（１００ｍＬ）中の１,６−ヘキサン−ジオールＮ−ヒドロキシフタルイミド（６．５２５ｇ、０．０３９モル）及びトリフェニルホスフィン（１０．２ｇ、０．０３９モル）の攪拌溶液にジエチルアジドカルボキシレート（ＤＥＡＤ、７．８３ｇ、０．０４５モル）を５℃、アルゴン雰囲気下で、１時間にわたって添加した。次に、この反応混合物を室温で一晩攪拌した。その明黄色溶液を真空下で濃縮してＴＨＦを除去し、ＣＨ2Ｃｌ2及び水に分配した。その後、有機層を飽和ＮａＨＣＯ3、次いで飽和ＮａＣｌで洗浄した。次に、それを無水ＭｇＳＯ4で乾燥させ、シリカカラムに添加してＥｔＯＡｃ／ヘキサン１：１で溶出し、９．８ｇを得た。この物質にはＰｈ3Ｐ＝Ｏが混入しており、ＣＨ2Ｃｌ2／エーテルを用いて再結晶させた。
実施例３４
（図１１及び１２）
５−ヘキセン−１−オールをＣＨ2Ｃｌ2中のイミダゾール／ＴＢＤＰＳ−Ｃｌを用いてシリル化し（sylylated）、化合物３７を得る。次に、化合物３７を（化合物３３に対する実施例２５）と同様にＯＳＯ4／ＮＭＭＯでジヒドロキシル化し、化合物３８を得る。化合物３８の一級アルコール官能基をジメトキシトリチル化し、化合物３９を得る。次いで、これを、Ｎ−ヒドロキシフタルイミドを用いる光延反応に処し、化合物４０を得る。その後、化合物４０をＴＢＡＦ（フッ化テトラブチルアンモニウム、ＴＨＦ中１Ｍ）でジシリル化して化合物４１を得る。次に、化合物４１を誘導体化してホスホロアミダイト４２とする。またこれとは別に、化合物４１をコントロールド・ポア・グラス・ビーズに結合させた（化合物４３）。
実施例３５
２,６,９−（β−Ｄ−リボフラノシル）プリン（５．６４ｇ、２０ミリモル）を、ＤＭＦ１００ｍＬ中のヘキサンで予め洗浄した油中の６０％水素化ナトリウム８００ｍｇの懸濁液に、アルゴンの下で添加した。室温で１時間攪拌した後、臭化アリル（２ｍＬ、１．１当量）をこの溶液に添加し、室温で一晩攪拌した。この反応混合物を蒸発させ、シリカカラムに添加して１％トリエチルアミンを含むＣＨ2Ｃｌ2／ＣＨ3ＯＨ（２０：１）で溶出した。２’及び３’Ｏ−アリル化合物の総収量は５．０２ｇ（７７％）であった。次に、この２’及び３’異性体の混合物を、ＭｅＯＨ中、定量的収量でのＤＭＦＤＭＡの処理により環外のアミンを保護した。その後、この物質を５’−Ｏ−ジメトキシトリチル化し、５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−Ｎ−２−ホルムアミジン−２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−グアノシン及び５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−Ｎ２−ホルムアミジン−３’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）グアノシンの２：１の比の混合物を得た。これらの最終化合物をシリカゲルフラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製した。
実施例３６
２,６ジアミノ−９−（ｂ−Ｄ−リボフラノシル）プリン（２８２ｍｇ、１ミリモル）を、無水ＤＭＦ（５ｍＬ）中のヘキサンで予め洗浄した油中の６０％水素化ナトリウム４０ｍｇの懸濁液に添加した。これに、２−（ブロモエトキシ）−ｔ−ブチル−ジメチルシラン（２２０ｍＬ）の溶液を添加した。この混合物を室温で一晩攪拌した。その反応混合物を蒸発させ、残留油状物質を水及び酢酸エチルに分配した。有機層をＮａ2ＳＯ4で乾燥させた。この反応混合物をシリカゲルで精製して２’及び３’異性体を得た。その後、２’−物質をＤＭＦＤＭＡでアミン保護し、５’−ジメトキシトリチル化して５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−Ｎ２−ホルムアミジン−２’−Ｏ−（２−ＴＢＤＭＳ−ヒドロキシエチル）グアニンを得た。
実施例３７
オリゴヌクレオチドの合成
非置換及び置換オリゴヌクレオチドを、自動ＤＮＡ合成装置（Applied Biosystems model 380B）で、ヨウ素による酸化を伴う標準ホスホロアミダイト化学を用いて合成する。ホスホロチオエートオリゴヌクレオチドについては、標準酸化ボトルを亜リン酸結合の段階的チア化（thiation）のために３Ｈ−１,２−ベンゾジチオール−３−オン−１,１−ジオキシドで置き換える。チア化遅延工程は６８秒に増加させ、その後にキャッピング工程を行う。ＣＰＧカラムから開裂して５５℃で濃水酸化アンモニウムで脱ブロック（１８時間）した後、２．５容量のエタノールを用いて０．５Ｍ ＮａＣｌ溶液から２回沈殿させることによりオリゴヌクレオチドを精製する。分析用ゲル電気泳動を２０％アクリルアミド、８Ｍ尿素、４５４ｍＭトリス−ホウ酸バッファ、ｐＨ＝７．０で行う。オリゴヌクレオチド及びホスホロチオエートが、ポリアクリルアミドゲル電気泳動に基づいて、８０％を上回る完全長物質であるものと判定される。
実施例３８
ＣＰＧ支持体に結合したヌクレオシドの５’−ヒドロキシに２’−デオキシ−２’−置換５’−ジメトキシトリフェニルメチルリボヌクレオシドを結合させるための一般的手順
オリゴヌクレオチドの末端３’位に存在する２’−デオキシ−２’−置換ヌクレオシドを５’−ＤＭＴ基として保護し（シトシン及びアデニンの環外アミノ基はベンゾイル化し、グアニンのアミノはイソブチリル化する）、ピリジン中のトリフルオロ酢酸／ブロモ酢酸混合無水物及びジメチルアミノピリジンを用いて５０℃で５時間処理する。次に、この溶液を減圧下で蒸発させて希薄シロップを得、これを酢酸エチルに溶解してシリカゲルのカラムに通す。均質画分を集め、蒸発させて乾燥させる。１０ｍＬのアセトニトリル、１０μＭの３’−Ｏ−ブロモメチルエステル修飾ヌクレオシド、及び１ｍＬのピリジン／ジメチルアミノピリジン（１：１）の溶液を、遊離５’−ヒドロキシル基をもたらす標準条件に従って酸で予め処理されているＣＰＧチミジンの１μＭカラム（Applied Biosystems,Inc.）を通して徐々に（６０〜９０秒）注入する。他のヌクレオシド結合ＣＰＧカラムを用いることもできる。溶出液を集め、再度カラムを通して注入する。このプロセスを３回繰り返す。ＣＰＧカラムを１０ｍＬのアセトニトリルでゆっくりと洗浄した後、ＡＢＩ ３８０Ｂ核酸合成装置に取り付ける。ここでオリゴヌクレオチドの合成を開始する。ＣＰＧ支持体からチミジンエステル結合を開裂する濃水酸化アンモニウム脱保護の標準条件は、ピリミジン修飾ヌクレオシドを最初からＣＰＧヌクレオシドに結合していたチミジンに結合させる３’５’エステル結合をも開裂する。このようにして、あらゆる２’−置換ヌクレオシド又は、一般に、複素環及び／又は糖が修飾されているあらゆるヌクレオシドをオリゴヌクレオチドの３’末端に結合させることができる。
実施例３９
２’−置換ヌクレオチドを組み込むための修飾オリゴヌクレオチドの合成
Ａ．ＡＢＩ合成装置
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミンを含むオリゴヌクレオチド配列を、ＡＢＩ ３８０Ｂで、二重カップリングを用い、かつカップリング時間を増加させた（５及び１０分）ホスホロアミダイト化学を利用して合成した。２’−Ｏ−アミノオキシエトキシホスホロアミダイトを０．０８Ｍの出発濃度で用い、アセトニトリル中の１０％過酸化ｔｅｒｔ−ブチルを酸化剤として用いた。デオキシホスホロアミダイトを０．２Ｍで用いた。２’−Ｏ−アミノオキシエトキシ及びデオキシアミダイトの最終濃度は、それぞれ、０．０４Ｍ及び０．１Ｍであった。オリゴヌクレオチドをＣＰＧ支持体から開裂させ、濃アンモニアを５５℃で６時間用いて塩基保護基を除去した。これらのオリゴヌクレオチドをセファデックスＧ２５でのサイズ排除クロマトグラフィーにより精製し、エレクトロスプレー質量分析及びキャピラリーゲル電気泳動により分析した。デオキシホスホロアミダイトはPerseptive Biosystems GmbHから購入した。
（配列番号６）CTC GTA CCt TTC CGG TCC。ＬＲＭＳ（ＥＳ−）ｍ／ｚ：算出：５４５３．２；実測：５４５３．５。
（配列番号８）CTC GTA Ctt ttC CGG TCC。ＬＲＭＳ（ＥＳ−）ｍ／ｚ：算出：５６９３．２；実測：５６９２．９。
（配列番号１２）GCG ttt ttt ttt tGC G。ＬＲＭＳ（ＥＳ−）ｍ／ｚ：算出：５６２５．７；実測：５６２５．９。
Ｂ．Ｅｘｐｅｄｉｔｅ合成装置
１−［２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル−５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−Ｂ−Ｄ−リボフラモシル（riboframosyl））−６−Ｎ−ベンゾイルチミンを含むオリゴヌクレオチドをＥｘｐｅｄｉｔｅ ８６９０合成装置で合成した。１３０ｍｇのアミダイトを乾燥ＣＨ3ＣＮ（１．３ｍＬ、約０．０８Ｍ）に溶解した。ＣＨ3ＣＮ中の１０％ｔ−ＢｕＯＯＨ ｖ／ｖを酸化剤として用いた。カップリング及び遅延時間を延長し、１０分の酸化を行った。このオリゴヌクレオチドの合成優れたカップリング収率（＞９８％）を示した。オリゴヌクレオチドを精製し、それらの質量スペクトル及びプロフィールを決定した。
Figure 0004440346
ここで、ａは１−［２’−Ｏ−（２−アミノオキシエチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］アデノシンを表す。
実施例４０
中央２’−デオキシホスホロチオエートオリゴヌクレオチド領域に並列する２’−置換オリゴヌクレオチド領域を有するオリゴヌクレオチド
配列5’GCGTTTTTTTTTTGCG 3’（配列番号３）の１５量体ＲＮＡ標的を通常の方法で、ＲＮＡプロトコルを用いるＤＮＡシーケンサーで調製する。２’−デオキシ領域に並列する領域に２’−Ｏ−置換ヌクレオチドを有する一連の相補的ホスホロチオエートオリゴヌクレオチドを、既知の文献の調製法により調製した２’−Ｏ−置換ヌクレオチド前駆体、すなわち２’−Ｏ−メチル、又は１９９２年３月５日公開の国際公開ＷＯ９２／０３５６８号の手順により調製した２’−Ｏ−置換ヌクレオチド前駆体を用いて調製する。これらの２’−Ｏ−置換ヌクレオチドを、それらの５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−３’−ホスホロアミダイトとして、通常の方法で、ＤＮＡ合成装置を用いて付加する。これらの相補的オリゴヌクレオチドは5’CGCAAAAAAAAAAAAACGC 3’（配列番号４）の配列を有する。２’−Ｏ−置換基はこれらのオリゴヌクレオチドのＣＧＣ及びＣＧ領域に位置する。用いる２’−Ｏ−置換基は２’−アミノオキシエチル、２’−Ｏ−エチルアミノオキシエチル及び２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチルである。
実施例４１
ハイブリダイゼーション分析
Ａ．２’−修飾オリゴヌクレオチドのハイブリダイゼーションの熱力学の評価
２’−修飾オリゴヌクレオチドがそれらの相補的ＲＮＡ又はＤＮＡ配列にハイブリダイズする能力を熱溶融分析により決定する。ＲＮＡ相補体をＴ７ ＲＮＡポリメラーゼ及びApplied Biosystems,Inc.で合成したＤＮＡのテンプレート−プロモーターから合成する。３８０Ｂ ＲＮＡ種を、ＦＰＬＣ（LKB Pharmacia,Inc.）を用いるイオン交換により精製する。天然のアンチセンスオリゴヌクレオチド又は特定の位置に２’−修飾を含むものをＲＮＡもしくはＤＮＡ相補体のいずれかに化学量論的濃度で添加し、二重鎖からランダムコイルへの移行の際の吸収（２６０ｎｍ）の濃色化をGilford Response II分光光度計を用いて監視する。これらの測定は、１０ｍＭ Ｎａ−リン酸、ｐＨ７．４、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ、及びイオン強度１０を生じる、０．１Ｍもしくは１．０MのいずれかのＮａＣｌのバッファ中で行う。データを１／Ｔm対ｌｎ（Ｃｔ）のグラフ表示により分析し、ここで（Ｃｔ）は全オリゴヌクレオチドの濃度であった。この分析から熱力学的パラメータを決定する。形成されるヘテロ二重鎖の二重鎖安定性に関して得られる情報に基づき、オリゴヌクレオチドへの修飾ピリミジンの配置をらせん安定性に対するそれらの効果について評価する。ハイブリッドの安定性を劇的に変化させる修飾はフリーエネルギーの減少（デルタＧ）を示し、それらのアンチセンスオリゴヌクレオチドとしての有用性に関する判定を行う。
以下の表（表１）に示されるように、本発明の２’−置換ヌクレオシドをオリゴヌクレオチドに組み込むことで、修飾オリゴヌクレオチド鎖（アンチセンス鎖）及びその相補的ＲＮＡ鎖（センス鎖）の二重鎖安定性を大きく高めることができる。二重鎖の安定性はアンチセンス鎖中の２’−置換ヌクレオシドの数が増加するに従って増加した。表１から明らかなように、２’−置換ヌクレオシドの付加により、個々のヌクレオシド又はオリゴヌクレオチド配列におけるそのヌクレオシドの位置にかかわらず、二重鎖安定性が増加した。
表１において、小文字のヌクレオシドは本発明の置換基を含むヌクレオシドを表す。ＤＮＡ（アンチセンス）−ＲＮＡ（センス）二重鎖の安定性に対する２’−Ｏ−アミノオキシエトキシ修飾の効果
Figure 0004440346
ｔ＝１−［２’−Ｏ−（２−アミノオキシエチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］チミン。ａ＝１−［２’−Ｏ−（２−アミノオキシエチル）−β−Ｄ−リボフラノシル］アデノシン。＊＝ＤＮＡに対してセンス鎖としてハイブリダイズした。
Figure 0004440346
表１から明らかなように、ＲＮＡと本発明の２’−置換基を含むオリゴヌクレオチドとの間で形成される二重鎖は、ハイブリダイゼーションの熱力学的安定性による測定で、結合安定性の増加を示す。理論によって結び付けることを望むものではないが、現時点では、本発明の２’−置換基の存在が実質的に３’エンド立体配座を呈する２’−置換ヌクレオチドの糖部分を生じ、これがＡ型らせん立体配座を呈するオリゴヌクレオチド−ＲＮＡ複合体を生じるものと信じられる。
実施例４２
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｏ2−２’−アンヒドロ−５−メチルウリジン（１０１）
Ｏ2−２’−アンヒドロ−５−メチルウリジン（Pro.Bio.Sint.、バレーゼ、イタリア、１００．０ｇ、０．４１６ミリモル）、ジメチルアミノピリジン（０．６６ｇ、０．０１３当量、０．００５４ミリモル）を乾燥ピリジン（５００ｍｌ）に周囲温度、アルゴン雰囲気下で、機械的に攪拌しながら添加した。ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルクロロシラン（１２５．８ｇ、１１９．０ｍＬ、１．１当量、０．４５８ミリモル）を一度に添加した。この反応物を周囲温度で１６時間攪拌した。ＴＬＣ（Ｒｆ ０．２２、酢酸エチル）により反応の完了が示された。この溶液を減圧下で濃縮して濃厚油状物質を得た。これをジクロロメタン（１Ｌ）及び飽和重炭酸ナトリウム（２×１Ｌ）及び食塩水（１Ｌ）に分配した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥させ、減圧下で濃縮して濃厚油状物質を得た。この油状物質を酢酸エチル及びエチルエーテルの１：１混合液（６００ｍＬ）に溶解し、その溶液を−１０℃に冷却した。生じた結晶性生成物を濾過により集め、エチルエーテル（３×２００ｍＬ）で洗浄し、乾燥（４０℃、１ｍｍＨｇ、２４時間）させて１４９ｇ（７４．８％）の白色固体とした。ＴＬＣ及びＮＭＲは純粋な生成物と一致した。
実施例４３
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−５−メチルウリジン（１０２）
２Ｌのステンレス鋼非攪拌圧力反応器内にテトラヒドロフラン中のボラン（１．０Ｍ、２．０当量、６２２ｍＬ）を添加した。ヒューム・フード内において手で攪拌しながら、エチレングリコール（３５０ｍＬ、過剰）を最初は水素ガスの発生が鎮まるまで慎重に添加した。５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｏ2−２’−アンヒドロ−５−メチルウリジン（１４９ｇ、０．３１１モル）及び重炭酸ナトリウム（０．０７４ｇ、０．００３当量）を手で攪拌しながら添加した。反応器を密封して油浴において内部温度が１６０℃に到達するまで加熱した後、それを１６時間維持した（圧力＜１００ｐｓｉｇ）。反応容器を周囲温度に冷却して開封した。ＴＬＣ（所望の生成物についてＲｆ ０．６７、ａｒａ−Ｔ副生物についてＲｆ ０．８２、酢酸エチル）により、生成物への約７０％の変換が示された。さらなる副生物の形成を回避するため、反応を停止させ、減圧下（１０〜１ｍｍＨｇ）で、温水浴（４０〜１００℃）において、エチレングリコールの除去に用いられるより極端な条件を用いて濃縮した。［あるいは、低沸点溶媒が無くなったら、残留する溶液を酢酸エチル及び水に分配することができる。生成物は有機相に存在する。］残滓をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル２ｋｇ、酢酸エチル−ヘキサン勾配１：１〜４：１）により精製した。適切な画分を合わせ、ストリップし、乾燥させて生成物を白色のパリパリした泡状物質（８４ｇ、５０％）としたところ、出発物質（１７．４ｇ）及び純粋な再使用可能な出発物質２０ｇが混入していた。出発物質、純度の劣る回収された出発物質に基づく収率は５８％であった。ＴＬＣ及びＮＭＲは純度９９％の生成物と一致した。ＮＭＲ（ＤＭＳＯ−ｄ６）ｄ １．０５（ｓ、９Ｈ、ｔ−ブチル）、１．４５（ｓ、３Ｈ、ＣＨ３）、３．５−４．１（ｍ、８Ｈ、ＣＨ２ＣＨ２、３’−Ｈ、４’−Ｈ、５’−Ｈ、５”−Ｈ）、４．２５（ｍ、１Ｈ、２’−Ｈ）、４．８０（ｔ、１Ｈ、ＣＨ２Ｏ−Ｈ）、５．１８（ｄ、２Ｈ、３’−ＯＨ）、５．９５（ｄ、１Ｈ、１’−Ｈ）、７．３５−７．７５（ｍ、１１Ｈ、Ｐｈ及びＣ６−Ｈ）、１１．４２（ｓ、１Ｈ、Ｎ−Ｈ）。
実施例４４
２’−Ｏ−（［２−フタルイミドキシ）エチル］−５’−ｔ−ブチルジフェニルシリル−５−メチルウリジン（１０３）
ヌクレオシド１０２（２０ｇ、３６．９８ミリモル）をトリフェニルホスフィン（１１．６３ｇ、４４．３６ミリモル）及びＮ−ヒドロキシフタルイミド（７．２４ｇ、４４．３６ミリモル）と混合した。次にこれを、高真空下、４０℃で２日間、Ｐ2Ｏ5で乾燥させた。この反応混合物をアルゴンでフラッシュし、乾燥ＴＨＦ（３６９．８ｍＬ、Aldrich、確実に密封したボトル）を添加して透明溶液を得た。ジエチル−アゾジカルボキシレート（６．９８ｍＬ、４４．３６ミリモル）をこの反応混合物に滴下により添加した。添加の速度は、生じる深紅の色合いが次の液滴を添加する前に丁度消散するように維持する。添加が完了した後、反応物を４時間攪拌した。それまでには、ＴＬＣで反応の完了が示された（酢酸エチル：ヘキサン、６０：４０）。溶媒を真空中で蒸発させた。得られる残滓をフラッシュカラムに添加し、酢酸エチル：ヘキサン（６０：４０）で溶出して１０３を白色泡状物質（２１．８１９、８６％）として得た。Ｒｆ ０．５６（酢酸エチル：ヘキサン、６０：４０）。ＭＳ（ＦＡＢ−）ｍ／ｅ ６８４（Ｍ−Ｈ+）。
実施例４５
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−２’−Ｏ−［（２−ホルムアドキシイミノオキシ）エチル］−５−メチルウリジン（１０４）
化合物１０３（３．１ｇ、４．５ミリモル）を乾燥ＣＨ2Ｃｌ2（４．５ｍＬ）に溶解し、メチルヒドラジン（３００ｍＬ、４．６４ミリモル）を−１０℃〜０℃で滴下により添加した。１時間後、この混合物を濾過してその濾液を氷冷ＣＨ2Ｃｌ2で洗浄し、合わせた有機相を水、食塩水で洗浄して無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させた。この溶液を濃縮して２’−Ｏ−（アミノオキシエチル）チミジンを得、次にこれをＭｅＯＨ（６７．５ｍＬ）に溶解した。これにホルムアルデヒド（２０％水溶液、ｗ／ｗ、１．１当量）を添加し、その混合物を１時間。溶媒を減圧下で除去した；残滓をクロマトグラフィー処理し、化合物１０４を白色泡状物質（１．９５、７８％）として得た。Ｒｆ ０．３２（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ５６６（Ｍ−Ｈ+）。
実施例４６
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−２’−Ｏ−［Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル］−５−メチルウリジン（１０５）
化合物１０４（１．７７ｇ、３．１２ミリモル）を乾燥ＭｅＯＨ中の１Ｍピリジニウムｐ−トルエンスルホネート（ＰＰＴＳ）の溶液（３０．６ｍＬ）に溶解した。水素化シアノホウ素ナトリウム（０．３９ｇ、６．１３ミリモル）をこの溶液に、１０℃、不活性雰囲気下で添加した。この反応混合物を１０℃で１０分間攪拌した。その後、反応容器を氷浴から取り出して室温で２時間攪拌し、反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。ＮａＨＣＯ3水溶液（５％、１０ｍＬ）を添加し、酢酸エチル（２×２０ｍＬ）で抽出した。酢酸エチル相を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をＭｅＯＨ中の１Ｍ ＰＰＴＳの溶液（３０．６ｍＬ）に溶解した。ホルムアルデヒド（２０％ｗ／ｗ、３０ｍＬ、３．３７ミリモル）を添加し、その反応混合物を室温で１０分間攪拌した。反応混合物を氷浴において１０℃に冷却し、水素化シアノホウ素ナトリウム（０．３９ｇ、６．１３ミリモル）を添加して反応混合物を１０℃で１０分間攪拌した。１０分後、反応混合物を氷浴から取り出し、室温で２時間攪拌した。この反応混合物に５％ＮａＨＣＯ3（２５ｍＬ）溶液を添加し、酢酸エチル（２×２５ｍＬ）で抽出した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。得られた残滓をフラッシュカラムクロマトグラフィーにより精製し、ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨで溶出して１０５を白色泡状物質として得た（１４．６ｇ、８０％）。Ｒｆ ０．３５（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ５８４（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例４７
２’−Ｏ−（ジメチルアミノオキシエチル）−５−メチルウリジン（１０６）
トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（３．９１ｍＬ、２４．０ミリモル）を乾燥ＴＨＦ及びトリエチルアミン（１．６７ｍＬ、１２ミリモル、乾燥、ＫＯＨで保持）に溶解した。次に、このトリエチルアミン−２ＨＦの混合物を化合物１０５（１．４０ｇ、２．４ミリモル）に添加し、室温で２４時間攪拌した。反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。溶媒を減圧下で除去して残滓をフラッシュカラムに入れ、ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して１０６（７６６ｍｇ、９２．５％）を得た。Ｒｆ ０．２７（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ３４６（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例４８
５’−Ｏ−ＤＭＴ−２’−Ｏ−（ジメチルアミノオキシエチル）−５−メチルウリジン（１０７）
化合物１０６（７５０ｍｇ、２．１７ミリモル）をＰ2Ｏ5で減圧下において一晩、４０℃で乾燥させた。次に、これを無水ピリジン（２０ｍＬ）と共に蒸発させた。得られた残滓をアルゴン雰囲気下でピリジン（１１ｍＬ）に溶解した。４−ジメチルアミノピリジン（２６．５ｍｇ、２．６０ミリモル）、塩化４,４’−ジメトキシトリチル（８８０ｍｇ、２．６０ミリモル）をこの混合物に添加し、その反応混合物を出発物質が全て消失するまで室温で攪拌した。ピリジンを減圧下で除去し、残滓をクロマトグラフィー処理してＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ（数滴のピリジンを含む）で溶出し、１０７（１．１３ｇ、８０％）を得た。Ｒｆ０．４４（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ６４８（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例４９
５’−Ｏ−ＤＭＴ−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５−メチルウリジン−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］（１０８）
化合物１０７（１．０８ｇ、１．６７ミリモル）をトルエン（２０ｍＬ）と共に蒸発させた。その残滓にＮ,Ｎ−ジイソプロピルアミンテトラゾニド（０．２９ｇ、１．６７ミリモル）を添加し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において一晩、４０℃で乾燥させた。次に、この反応混合物を無水アセトニトリル（８．４ｍＬ）及び２−シアノエチル−Ｎ,Ｎ,Ｎ’,Ｎ’−テトライソプロピルホスホロアミダイト（２．１２ｍＬ、６．０８ミリモル）を添加した。この反応混合物を周囲温度で４時間、不活性雰囲気下で攪拌した。反応の進行をＴＬＣ（ヘキサン：酢酸エチル１：１）で監視した。溶媒を蒸発させた後、残滓を酢酸エチル（７０ｍＬ）に溶解し、５％ＮａＨＣＯ3水溶液（４０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水ＮａＳＯ4で乾燥させ、濃縮した。得られた残滓をクロマトグラフィー処理（溶出液として酢酸エチル）し、１０８を泡状物質として得た（１．０４ｇ、７４．９％）。Ｒｆ ０．２５（酢酸エチル：ヘキサン、１：１）。31Ｐ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）δ １５０．８ｐｐｍ；ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ８４８（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例５０
２’／３’−Ｏ−アリルアデノシン（１０９）
アデノシン（２０ｇ、７４．８４ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において４０℃で２日間乾燥させた。次に、これを不活性雰囲気下でＤＭＦに懸濁させた。水素化ナトリウム（２．５ｇ、７４．８４ミリモル、鉱油中の６０％分散液）、室温で１０分間攪拌した。その後、臭化アリル（７．１４ｍＬ、８２．４５ミリモル）を滴下により添加し、その反応混合物を室温で一晩攪拌した。ＤＭＦを真空下で除去し、その残滓を酢酸エチル（１００ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層をデカントした。得られた濾液は生成物を含んでいた。次に、これをフラッシュカラムに添加し、ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して１０９（１５．１９ｇ、６６％）を得た。Ｒｆ ０．４、０．４ａ（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。
実施例５１
２’／３’−Ｏ−アリル−Ｎ6−ベンゾイルアデノシン（１１０）
化合物１０９（１５．１９ｇ、５１．１ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において一晩、４０℃で乾燥させた。次に、これを不活性雰囲気下で無水ピリジン（５０４．６ｍＬ）に溶解した。トリメチルクロロシラン（３２．０２ｍＬ、２５２．３ミリモル）を０℃で添加し、その反応混合物を不活性雰囲気下で１時間攪拌した。その後、塩化ベンゾイル（２９．４ｍＬ、２５２．３ミリモル）を滴下により添加した。塩化ベンゾイルの添加が完了したら、その反応混合物を室温にして４時間攪拌した。次に、その反応混合物を氷浴において０℃にした。水（１００．９ｍＬ）添加し、その反応混合物を３０分間攪拌した。その後、ＮＨ4ＯＨ（１００．０ｍＬ、３０％水溶液ｗ／ｗ）を添加し、その反応混合物を０℃に保持してさらに１時間攪拌した。溶媒を蒸発させ、残滓を水及びエーテルに分配した。生成物が油状物質として沈殿し、次にそれをクロマトグラフィー処理（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）して１３を白色泡状物質（１２．６７ｇ、６２％）として得た。
実施例５２
３’−Ｏ−アリル−５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−アデノシン（１１１）
化合物１１０（１１．１７ｇ、２７．８４ミリモル）をＰ2Ｏ5で真空下において４０℃で乾燥させた後、乾燥ＣＨ2Ｃｌ2（５６ｍＬ、Aldrichからの確実な密封品）に溶解した。４−ジメチルアミノピリジン（０．３４ｇ、２．８ミリモル）、トリエチルアミン（２３．８２ｍＬ、１６７ミリモル）及び塩化ｔ−ブチルジフェニルシリルを添加した。この反応混合物を１２時間激しく攪拌した。反応をＴＬＣ（酢酸エチル：ヘキサン１：１）で監視した。次に、これをＣＨ2Ｃｌ2（５０ｍＬ）で希釈し、水（３×３０ｍＬ）で洗浄した。ジクロロメタン層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をフラッシュクロマトグラフィー（溶出液として酢酸エチル：ヘキサン１：１）で精製し、１１１を白色泡状物質として得た（８．８５ｇ、４９％）。Ｒｆ ０．３５（酢酸エチル：ヘキサン、１：１）。
実施例５３
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２,３−ジヒドロキシプロピル）−アデノシン（１１２）
化合物１１１（５．５ｇ、８．４６ミリモル）、４−メチルモルホリンＮ−オキシド（１．４３ｇ、１２．１８ミリモル）をジオキサン（４５．４２ｍＬ）に溶解した。ＯＳＯ4の４％水溶液（１．９９ｍＬ、０．３１ミリモル）を添加した。この反応混合物を光から保護し、３時間攪拌した。反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。酢酸エチル（１００ｍＬ）を添加し、得られた反応混合物を水（１×５０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて１１２（５．９ｇ）を得、これを精製することなく次の工程に用いた。Ｒｆ ０．１７（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。
実施例５４
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（ホルミルメチル）−アデノシン（１１３）
化合物１１２（５．５９ｇ、８．１７ミリモル）を乾燥ＣＨ2Ｃｌ2（４０．４２ｍＬ）に溶解した。これに、シリカゲルに吸着させたＮａＩＯ4（J.Org.Chem.1997,62,2622-2624を参照）（１６．３４ｇ、２ｇ／ミリモル）を添加し、周囲温度で３０分間攪拌した。反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。反応混合物を濾過し、濾液をＣＨ2Ｃｌ2で徹底的に洗浄した。ジクロロメタン層を蒸発させてアルデヒド１１３（５．６０ｇ）を得、これを精製することなく次の工程に用いた。Ｒｆ ０．３（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。
実施例５５
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）アデノシン（１１４）
化合物１１３（５．５５ｇ、８．５０ミリモル）を無水ＭｅＯＨ（８５ｍＬ）中の１Ｍピリジニウムｐ−トルエンスルホネートの溶液に溶解した。反応混合物を水分から保護した。水素化シアノホウ素ナトリウム（１．０８ｇ、１７．２７ミリモル）を添加し、反応混合物を周囲温度で５時間攪拌した。反応の進行をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。この反応混合物を酢酸エチル（１５０ｍＬ）で希釈した後、５％ＮａＨＣＯ3（７５ｍＬ）及び食塩水（７５ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をフラッシュクロマトグラフィー（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で精製し、１１４（４．３１ｇ、７７．８％）を得た。Ｒｆ ０．２１（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ６５５（Ｍ＋Ｈ+）、６７７（Ｍ＋Ｎａ+）。
実施例５６
５’−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−フタルイミドオキシエチル）アデノシン（１１５）
化合物１１４（３．２２ｇ、４．９２ミリモル）をトリフェニルホスフィン（１．５５ｇ、５．９０ミリモル）及びＮ−ヒドロキシフタルイミド（０．９６ｇ、５．９０ミリモル）と混合した。その後、これをＰ2Ｏ5で真空下において４０℃で２日間乾燥させた。乾燥させた混合物を不活性雰囲気下において無水ＴＨＦ（４９．２ｍＬ）に溶解した。ジエチルアゾジカルボキシレート（０．９３ｍＬ、５．９０ミリモル）を滴下により添加した。添加速度は、生じる深紅の色合いが次の液滴が添加される前に丁度消失するように維持した。添加が完了した後、反応物を４時間攪拌し、ＴＬＣ（酢酸エチル：ヘキサン７０：３０）で監視した。溶媒を真空下で除去し、残滓を酢酸エチル（７５ｍＬ）に溶解した。酢酸エチル層を水（７５ｍＬ）で洗浄した後、Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮し、クロマトグラフィー処理（酢酸エチル：ヘキサン７０：３０）して１１５（３．６０ｇ、９１．５％）を得た。Ｒｆ ０．２７（酢酸エチル：ヘキサン、７：３）。ＭＳ（ＦＡＢ+）。ｍ／ｅ７９９（Ｍ＋Ｈ+）、８２１（Ｍ＋Ｎａ+）。
実施例５７
５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−ホルムアルドキシイミノオキシエチル）アデノシン（１１６）
化合物１１５（３．５ｇ、４．２８ミリモル）をＣＨ2Ｃｌ2（４３．８ｍＬ）に溶解した。Ｎ−メチルヒドラジン（０．２８ｍＬ、５．２７ミリモル）を−１０℃で添加し、その反応混合物を−１０〜０℃で１時間攪拌した。反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。形成した白色沈殿を濾過し、濾液を氷冷ＣＨ2Ｃｌ2で徹底的に洗浄した。ジクロロメタン層を、ロタベイパー（rotavapor）を用いて、ロタベイパーの水浴の温度を２５℃未満に保持しながら蒸発させた。その後、得られた残滓をＭｅＯＨ（６５．７ｍＬ）に溶解した。ホルムアルデヒド（７１０ｍＬ、４．８ミリモル、２０％水溶液）を添加し、その反応混合物を周囲温度で１時間攪拌した。反応を1Ｈ ＮＭＲで監視した。反応混合物を濃縮し、クロマトグラフィー処理（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）して１１６を白色泡状物質として得た（２．４７ｇ、８３％）。Ｒｆ ０．３７（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ６８１（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例５８
５’−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）アデノシン（１１７）
化合物１１６（２．２ｇ、３．２３ミリモル）をＭｅＯＨ中の１Ｍピリジニウムｐ−トルエンスルホネート（ＰＰＴＳ）の溶液（３２ｍＬ）に溶解した。水素化シアノホウ素ナトリウム（０．３１ｇ）を１０℃で添加し、反応混合物を１０℃で１０分間攪拌した。次に、それを周囲温度にして２時間攪拌し、ＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。５％重炭酸ナトリウム水溶液（１００ｍＬ）、酢酸エチル（３×５０ｍＬ）で抽出した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をＭｅＯＨ中の１Ｍ ＰＰＴＳの溶液（３２ｍＬ）に溶解した。ホルムアルデヒド（０．５４ｍＬ、３．５５ミリモル、２０％水溶液）を添加し、室温で１０分間攪拌した。水素化シアノホウ素ナトリウム（０．３１ｇ）を１０℃で添加し、１０℃で１０分間攪拌した。その後、この反応混合物を氷浴から取り出し、室温でさらに２時間攪拌し、ＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）で監視した。反応混合物を５％ＮａＨＣＯ3水溶液（１００ｍＬ）で希釈し、酢酸エチル（３×５０ｍＬ）で抽出した。酢酸エチル層を乾燥させて蒸発させ、クロマトグラフィー処理（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）して１１７（１．９ｇ、８１．８％）を得た。Ｒｆ ０．２９（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ６９７（Ｍ＋Ｈ+）、７１９（Ｍ＋Ｎａ+）。
実施例５９
Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）アデノシン（１１８）
無水ＴＨＦ（１０ｍＬ）中のＥｔ3Ｎ−３ＨＦ（１．６ｇ、１０ミリモル）の溶液にトリエチルアミン（０．７１ｍＬ、５．１２ミリモル）を添加した。その後、この混合物を化合物１７（０．７２ｇ、１ミリモル）に添加し、室温、不活性雰囲気下で２４時間攪拌した。反応をＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）で監視した。溶媒を真空下で除去し、その残滓をクロマトグラフィー処理（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）して１１８（０．４０９ｇ、８９％）を得た。Ｒｆ０．４０（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ４５９（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例６０
５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−Ｎ6−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）アデノシン（１１９）
化合物１１８（０．４ｇ、０．８７ミリモル）をＰ2Ｏ5で真空下において一晩、４０℃で乾燥させた。４−ジメチルアミノピリジン（０．０２２ｇ、０．１７ミリモル）を添加した。その後、それを無水ピリジン（９ｍＬ）と共に蒸発させた。残滓を不活性雰囲気下で無水ピリジン（２ｍＬ）に溶解し、塩化４,４’−ジメトキシトリチル（０．５８ｇ、１．７２ミリモル）を添加して室温で４時間攪拌した。ＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）により反応の完了が示された。ピリジンを真空下で除去し、残滓をＣＨ2Ｃｌ2（５０ｍＬ）に溶解して、５％ＮａＨＣＯ3水溶液（３０ｍＬ）、次いで食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。ＣＨ2Ｃｌ2層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させた。残滓をクロマトグラフィー処理（数滴のピリジンを含む、ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）して１１９（０．５ｇ、７５％）を得た。Ｒｆ ０．２０（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ７５９（Ｍ＋Ｈ+）。
実施例６１
Ｎ6−ベンゾイル−５’−Ｏ−ＤＭＴ−２’−Ｏ−（Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）アデノシン−３’−Ｏ−ホスホロアミダイト（１２０）
化合物１１９（０．４７ｇ、０．６２ミリモル）をトルエン（５ｍＬ）と共に蒸発させた。残滓をＮ,Ｎ−ジイソプロピルアミンテトラゾリド（０．１０６ｇ、０．６２ミリモル）と混合し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において一晩乾燥させた。その後、それを不活性雰囲気下で無水ＣＨ3ＣＮ（３．２ｍＬ）に溶解した。２−シアノエチル−テトライソプロピルホスホロジアミダイト（０．７９ｍＬ、２．４８ミリモル）を滴下により添加し、その反応混合物を室温、不活性雰囲気下で６時間攪拌した。反応をＴＬＣ（数滴のピリジンを含む酢酸エチル）で監視した。溶媒を除去した後、残滓を酢酸エチル（５０ｍＬ）に溶解し、５％ＮａＨＣＯ3水溶液（２×２５ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させて蒸発させ、残滓をクロマトグラフィー処理（数滴のピリジンを含む酢酸エチル）して１２０（０．４５ｇ、７６％）を得た。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ９５９（Ｍ＋Ｈ+）。31Ｐ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）δ １５１．３６、１５０．７７ｐｐｍ。
実施例６２
２’／３’−Ｏ−アリル−２,６−ジアミノプリンリボシド（１２１及び１２２）
２,６−ジアミノプリンリボシド（３０ｇ、１０６．４ミリモル）を無水ＤＭＦ（５４０ｍＬ）に懸濁させた。反応容器をアルゴンでフラッシュした。水素化ナトリウム（３．６ｇ、１０６．４ミリモル、鉱油中の６０％分散液）を添加し、その反応物を１０分間攪拌した。臭化アリル（１４．１４ｍＬ、１１７．２２ミリモル）を２０分にわたって滴下により添加した。得られた反応混合物を室温で２０時間攪拌した。ＴＬＣ（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）により出発物質の完全な消失が示された。ＤＭＦを真空下で除去し、シリカに吸収させた残滓をフラッシュカラムに入れてＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出した。２’及び３’アリル化生成物の混合物を含む画分をまとめてプールし、濃縮して乾燥させ、１２１及び１２２の混合物を得た（２６．３８ｇ、７７％）。Ｒｆ ０．２６、０．４（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。
実施例６３
２’−Ｏ−アリル−グアノシン（１２３）
１２１及び１２２の混合物（２０ｇ、６２．１２ミリモル）を１００ｍｍリン酸ナトリウムバッファ（ｐＨ７．５）に懸濁させ、アデノシンデアミナーゼ（１ｇ）を添加した。得られた溶液を、反応容器を大気に開放しながら、非常にゆっくりと６０時間攪拌した。その後、反応混合物を氷浴において１時間冷却し、得られた沈殿を濾過し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において乾燥させて１２３を白色粉末として得た（１３．９２ｇ、収率６９．６％）。Ｒｆ ０．１９（ＣＨ2Ｃｌ2中の２０％ＭｅＯＨ）。
実施例６４
２’−Ｏ−アリル−３’,５’−ビス（ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル）グアノシン（１２４）
２’−Ｏ−アリル−グアノシン（６ｇ、１８．６９ミリモル）をイミダゾール（１０．１８ｇ、１４．９５２ミリモル）と混合し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において一晩乾燥させた。その後、これをアルゴンでフラッシュした。無水ＤＭＦ（５０ｍＬ）を添加し、その反応混合物を１０分間攪拌した。これに、塩化ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル（１９．４４ｍＬ、７４．７６ミリモル）を添加し、その反応混合物をアルゴン雰囲気下で一晩攪拌した。ＤＭＦを真空下で除去し、その残滓を酢酸エチル（１００ｍＬ）に溶解して水（２×７５ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨで溶出した。生成物を含む画分をまとめてプールし、蒸発させて１２４（１０．８４ｇ、収率７２％）を白色泡状物質として得た。Ｒｆ＝？。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ８００（Ｍ＋Ｈ+）、８２２（Ｍ＋Ｎａ+）。
実施例６５
２’−Ｏ−（２−ヒドロキシエチル）−３’,５’−ビス（ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル）グアノシン（１２５）
化合物１２４（９ｇ、１１．２３ミリモル）をＣＨ2Ｃｌ2（８０ｍＬ）に溶解した。この透明溶液に、アセトン（５０ｍＬ）、４−メチルモルホリン−Ｎ−オキシド（１．８９ｇ、１６．１７ミリモル）を添加した。反応フラスコを光から保護した。このようにして四酸化オスミウムの４％水溶液を添加し、その反応混合物を室温で６時間攪拌した。反応容積を半分に濃縮し、酢酸エチル（５０ｍＬ）を添加した。その後、これを水（３０ｍＬ）及び食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。その後、残滓をＣＨ2Ｃｌ2に溶解し、シリカに吸着させたＮａＩＯ4（２１．１７ｇ、２ｇ／ミリモル）を添加して、その反応混合物を３０分間攪拌した。この反応混合物を濾過し、シリカをＣＨ2Ｃｌ2で徹底的に洗浄した。合わせたＣＨ2Ｃｌ2層を蒸発させて乾燥させた。その後、残滓を乾燥ＭｅＯＨ中の１Ｍピリジニウム−ｐ−トルエンスルホネート（ＰＰＴＳ）（９９．５ｍＬ）に不活性雰囲気下で溶解した。この透明溶液に水素化シアノホウ素ナトリウム（１．１４ｇ、１８．２ミリモル）を添加し、室温で４時間攪拌した。５％重炭酸ナトリウム水溶液（５０ｍＬ）をこの反応混合物に徐々に添加し、酢酸エチル（２×５０ｍＬ）で抽出した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して１２５を得た（６．４６ｇ、収率７２％）。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ８０２（Ｍ−Ｈ+）。
実施例６６
２’−Ｏ−［（２−フタルイミドキシ）エチル］−３’,５’−ビス（ｔｅｒｔブチルジフェニルシリル）グアノシン（１２６）
化合物１２５（３．７ｇ、４．６１ミリモル）をＰｈ3Ｐ（１．４０ｇ、５．３５ミリモル）及びヒドロキシフタルイミド（０．８７ｇ、５．３５ミリモル）と混合した。次に、それをＰ2Ｏ5で高真空下において２日間、４０℃で乾燥させた。これらの無水ＴＨＦ（４６．１ミリモル）を不活性雰囲気下で添加して透明溶液を得た。ジエチルアジドカルボキシレート（０．７３ｍＬ、４．６１ミリモル）を滴下により、次の液滴が添加される前に赤色が消失するような方式で添加した。その後、得られた溶液を室温で４時間攪拌した。ＴＨＦを減圧下で除去し、その残滓を酢酸エチル（７５ｍＬ）に溶解して水（２×５０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。残滓をカラムクロマトグラフィーにより精製し、酢酸エチル中の７％ＭｅＯＨで溶出して１２６を得た（２．６２ｇ、収率６０％）。Ｒｆ ０．４８（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ-）ｍ／ｅ ９４７（Ｍ−Ｈ+）。
実施例６７
２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−３’,５’−Ｏ−ビス−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル−Ｎ２−イソブチリルグアノシン（１２７）
２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−３’,５’−Ｏ−ビス−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリルグアノシン（３．６６ｇ、３．８６ミリモル）を無水ピリジン（４０ｍＬ）に溶解し、その溶液を５℃に冷却して塩化イソブチリル（０．８０８ｍＬ、７．７２ミリモル）を滴下により添加した。この反応混合物を２５℃に暖め、２時間後にさらに塩化イソブチリス（０．４０ｍＬ、３．３５ミリモル）を２５℃で添加した。１時間後、溶媒を真空中（０．１トール）、３０℃で蒸発させて泡状物質を得、これを酢酸エチル（１５０ｍＬ）に溶解して微細懸濁液を得た。この懸濁液を水（２×１５ｍＬ）及び食塩水（４ｍＬ）で洗浄し、有機層を分離してＭｇＳＯ4で乾燥させた。溶媒を真空中で蒸発させて泡状物質を得、これをカラムクロマトグラフィーによりＣＨ2Ｃｌ2−ＭｅＯＨ、９４：６、ｖ／ｖを用いて精製し、表題の化合物を白色泡状物質として得た（２．５７ｇ、６５％）。1Ｈ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）：ｄ １１．９７（ｂｒｓ、１Ｈ）、８．７３（ｓ、１Ｈ）、７．８−７．２（ｍ、２５Ｈ）、５．９３（ｄ、１Ｈ、Ｊ1’、2’＝３．３Ｈｚ）、４．４６（ｍ、１Ｈ）、４．２４（ｍ、２Ｈ）、３．８３（ｍ、２Ｈ）、３．６０（ｍ、２Ｈ）、３．３２（ｍ、１Ｈ）、２．６７（ｍ、１Ｈ）、１．３０（ｄ、３Ｈ、Ｊ＝３．２Ｈｚ）、１．２６（ｄ、３Ｈ、ｊ＝３．１Ｈｚ）、１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．０２（ｓ、９Ｈ）。
この化合物を、さらに、Ａ及びＴ類似体について上述される化学を用いて対応するホスホロアミダイトに誘導体化し、化合物１２８を得た。
実施例６８
３’−Ｏ−アセチル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリルチミジン（１２９）
化合物１０５（３．０４ｇ、５．２１ミリモル）をクロロホルム（１１．４ｍＬ）に溶解した。これにジメチルアミノピリジン（０．９９ｇ、８．１０ミリモル）を添加し、その反応混合物を１０分間攪拌した。無水酢酸（０．７０１ｇ、６．８７ミリモル）を添加し、その反応混合物を一晩攪拌した。次に、この反応混合物をＣＨ2Ｃｌ2（４０ｍＬ）で希釈し、飽和ＮａＨＣＯ3（３０ｍＬ）及び食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。ＣＨ2Ｃｌ2層を蒸発させて乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、酢酸エチル：ヘキサン（８０：２０）で溶出して１２９を得た。Ｒｆ ０．４３（酢酸エチル：ヘキサン、８０：２０）。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ６２４（Ｍ−Ｈ+）。
実施例６９
２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリル ５−メチルシチジン（１３０）
無水ＣＨ3ＣＮ（４９ｍＬ）中の１,２,４−トリアゾール（５．８６ｇ、８４．８３ミリモル）の溶液を氷浴において５〜１０分間、アルゴン雰囲気下で冷却した。これにＰＯＣｌ3の冷懸濁液（１．８７ｍＬ、２０ミリモル）を１０分にわたって徐々に添加し、攪拌をさらに５分間継続した。トリエチルアミン（１３．９１ｍＬ、９９．８ミリモル）を、浴温度を約０〜２℃に保持しながら、３０分にわたって徐々に添加した。添加が完了した後、その反応混合物をこの温度でさらに３０分間攪拌し、その時点で無水アセトニトリル（３ｍＬ）中の化合物３５（３．１２ｇ、４．９９ミリモル）を一度に添加した。この反応混合物を０〜２℃で１０分間攪拌した。その後、氷浴を取り除き、反応混合物を室温で１．５時間攪拌した。その反応混合物を℃に冷却し、濃縮して小容積にし、酢酸エチル（１００ｍＬ）に溶解して水（２×３０ｍＬ）及び食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。有機層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。その後、得られた残滓をジオキサン中のＮＨ3の飽和溶液（２５ｍＬ）に溶解し、室温で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去した。残滓をカラムクロマトグラフィーにより精製し、ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して１３０を得た。
実施例７０
２’−Ｏ−（２,Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−Ｎ4−ベンゾイル−５’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジフェニルシリルシチジン（１３１）
化合物１３０（２．８ｇ、４．８１ミリモル）を無水ＤＭＦ（１２．３３ｍＬ）に溶解した。無水安息香酸（１．４ｇ、６．１７ミリモル）を添加し、その反応混合物を室温で一晩攪拌した。メタノールを添加し（１ｍＬ）、溶媒を蒸発させて乾燥させた。残滓をジクロロメタン（５０ｍＬ）に溶解し、ＮａＨＣＯ3の飽和溶液（２×３０ｍＬ）、次いで食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。ジクロロメタン層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮した。得られた残滓をカラムクロマトグラフィーにより精製し、ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨで溶出して１３１を泡状物質として得た。
実施例７１
Ｈ4−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５−メチルシチジン（１３２）
化合物１３１（２．５ｇ、３．９ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において乾燥させた。１００ｍＬ丸底フラスコにおいて、三フッ化水素酸トリエチルアミン（６．３６ｍＬ、３９ミリモル）を無水ＴＨＦ（３９ｍＬ）に溶解した。これにトリエチルアミン（２．７２ｍＬ、１９．５ミリモル）を添加し、その混合物を直ちに化合物１３１に注いで室温で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残滓をフラッシュカラム内に保持してＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出し、１３２を得た。
実施例７２
Ｎ4−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５−Ｏ’−ジメトキシトリチル−５−メチルシチジン（１３３）
化合物１３２（１．３ｇ、２．９８ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において一晩乾燥させた。その後、これを無水ピリジン（１０ｍＬ）と共に蒸発させた。残滓を無水ピリジン（１５ｍＬ）に溶解し、４−ジメチルアミノピリジン（１０．９ｍｇ、０．３ミリモル）を添加して、その溶液を室温、アルゴン雰囲気下で４時間攪拌した。ピリジンを真空下で除去し、その残滓を酢酸エチルに溶解して５％ＮａＨＣＯ3（２０ｍＬ）及び食塩水（２０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、数滴のピリジンを含むＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して化合物１３３を得た。
実施例７３
Ｎ4−ベンゾイル−２’−Ｏ−（２−Ｎ,Ｎ−ジメチルアミノオキシエチル）−５−ジメトキシトリチル−５−メチルシチジン−３’−Ｏ−ホスホロアミダイト（１３４）
化合物１３３（１．５４ｇ、２．０９ミリモル）をトルエン（１０ｍＬ）と共に蒸発させた。次に、これをジイソプロピルアミンテトラゾリド（０．３６ｇ、２．０９ミリモル）と混合し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において４０℃で一晩乾燥させた。その後、それを無水アセトニトリル（１１ｍＬ）に溶解し、２−シアノエチル−テトライソプロピルホスホロアミダイト（２．６６ｍＬ、８．３６ミリモル）を添加した。この反応混合物を室温、不活性雰囲気下で４時間攪拌した。溶媒を真空下で除去した。酢酸エチル（５０ｍＬ）をその残滓に添加し、５％ＮａＨＣＯ3（３０ｍＬ）及び食塩水（３０ｍＬ）で洗浄した。有機相を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、数滴のピリジンを含む酢酸エチル：ヘキサン（６０：４０）で溶出して１３４を得た。
実施例７４
２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシドホスホロアミダイト（１３５）
２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシドをオリゴヌクレオチドに組み込むのに、保護６−アミノ−２−フルオロプリンリボシド１３５のホスホロアミダイトを用いることを選んだ。オリゴ合成後、オリゴヌクレオチドの保護基の脱保護に伴い、２−フルオロ基がアンモニアで置換されて２,６−ジアミノプリンリボシド類似体が生じる。したがって、２,６−ジアミノプリンリボシドを臭化ジメチルアミノオキシエチル１３６でアルキル化して２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシド１３７及び３’−異性体１３８の混合物を得る。典型的には、５’−ヒドロキシルにＤＭＴで機能付加して５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシド１３９を得た後、２’−異性体をクロマトグラフィーで分離することができる。１３９をSchiemann反応（Krolikiewicz,K.;Vorbruggen,H.Nucleosides Nucleotides,1994,13,673-678）によってフッ素化することで２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−６−アミノ−２−フルオロ−プリンリボシド１４０が得られ、標準保護プロトコルにより５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−６−ジメチルホルムアミジン−２−フルオロプリンリボシド１４０が得られる。１４０を亜リン酸化することで５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチル−６−ジメチルホルムアミジン−２−フルオロプリンリボシド−３’−［（２−シアノエチル）−Ｎ,Ｎ−ジイソプロピルホスホロアミダイト］１３８が得られる。
化合物１３９を３’−異性体からクロマトグラフィーで分離することができない場合には、化合物１３７及び１３８の混合物を、３’−Ｏ−異性体の存在下において２’−Ｏ−置換アデノシン類似体を選択的に脱アミノ化することが知られるアデノシンデアミナーゼで処理し、２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチルグアノシン１４２を得る。５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ジメチルアミノオキシエチルグアノシン１４０を、６−オキソ基をアミノ化することにより、２,６−ジアミノプリンリボシド類似体１３９に変換することができる（Gryaznov,S.;Schultz,R.G.Tetrahedron Lett.1994,2489-2492）。その後、これを標準保護法及び亜リン酸化プロトコルにより対応するアミダイト１４４に変換した。
実施例７５
２’／３’−Ｏ−［２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルヒドロキシ）エチル］−２,６−ジアミノプリンリボシド（１４５及び１４６）
２,６−ジアミノプリンリボシド（１０ｇ、３５．４６ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において乾燥させた。これを無水ＤＭＦ（１８０ｍＬ）に懸濁させ、ＮａＨ（１．２ｇ、３５．４６ミリモル、鉱油中の６０％分散液）を添加した。この反応混合物を周囲温度、不活性雰囲気で３０分間攪拌した。これに（２−ブロモエトキシ）−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシラン（１２．７３ｇ、５３．２ミリモル）を滴下により添加し、得られた溶液を室温で一晩攪拌した。ＤＭＦを真空下で除去し、残滓を酢酸エチル（１００ｍＬ）に溶解して水（２×７０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水ＭｇＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨで溶出して生成物の混合物を得た（６．０７１１ｇ、収率３１％）。Ｒｆ ０．４９、０．５９、０．６８（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。
実施例７６
２’−Ｏ−アミノオキシエチル類似体
ヌクレオシドの他の様々な２’−Ｏ−アミノオキシエチル類似体（例えば、２,６−ジアミノプリンリボシド）を化合物１５４として調製することができる。例えば、２,６−ジアミノプリンを（２−ブロモエトキシ）−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシランでアルキル化することで、２’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシド１４５及び３’−異性体１４６が得られる。所望の２’−Ｏ−異性体は、５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルオキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシド１４７を調製し、その混合物をカラムクロマトグラフィーに処することにより分離することができる。シリル基を脱保護することにより５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−ヒドロキシエチル−２,６−ジアミノプリンリボシド１４８が得られ、これを光延反応に処することで５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−２,６−ジアミノプリンリボシド１４９が得られる。１４９をSchiemann条件下で処理することによりＤＭＴ基のフッ素化及び脱保護が生じ、２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−６−アミノ−２−フルオロプリンリボシド１５０が得られる。標準保護条件で５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−（２−フタルイミド−Ｎ−オキシエチル）−６−ジメチルホルムアミド−２−フルオロプリンリボシド１５１が得られ、そのフタルイミド官能基の脱保護により５’−Ｏ−（４,４’−ジメトキシトリチル）−２’−Ｏ−アミノオキシエチル−６−ジメチルホルムアミジン−２−フルオロプリンリボシド１５２が得られる。
１５２をアルデヒド又はジアルデヒドで還元アミノ化することで、環状もしくは非環式二置換２’−Ｏ−アミノオキシエチル類似体１５３が生じる。１５３を亜リン酸化することで、環状もしくは非環式二置換２’−Ｏ−アミノオキシエチル類似体１５４がホスホロアミダイトとして得られる。
実施例７７
２’／３’−Ｏ（２−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリルヒドロキシエチル）アデノシン（１５５及び１５６）
アデノシン（１０ｇ、３７．４２ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において乾燥させた。その後、これを無水ＤＭＦ（１５０ｍＬ）に懸濁させ、ＮａＨ（１．３５ｇ、５６．１３ミリモル）を添加した。この反応混合物を室温、不活性雰囲気下で３０分間攪拌した。その後、（２−ブロモエチル）−ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシラン（９．６８ｍＬ、４．４．９０ミリモル）を滴下により添加し、その反応混合物を室温で一晩攪拌した。ＤＭＦを真空下で除去し、その残滓にジクロロメタン（１００ｍＬ）を添加して水（２×８０ｍＬ）で洗浄した。ジクロロメタン層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、蒸発させて乾燥させた。残滓をカラムで精製して生成物の混合物を得た（４．３０ｇ）。Ｒｆ ０．４９、０．５７（ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨ）。
実施例７８
２’−Ｏ−（２−メチレンイミノオキシエチル）チミジン（１５７）
化合物１０４（３．１０ｇ、５．４８ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において乾燥させた。１００ｍＬ丸底フラスコにおいて、三フッ化水素酸トリエチルアミン（８．９３ｍＬ、５４．８ミリモル）を無水ＴＨＦに溶解し、トリエチルアミン（３．８２ｍＬ、２７．４ミリモル）を添加した。得られた溶液を直ちに化合物１０４に添加し、その反応混合物を室温で一晩攪拌した。溶媒を真空下で除去した。得られた残滓をフラッシュカラムに入れ、ＣＨ2Ｃｌ2中の１０％ＭｅＯＨで溶出して１５７を白色泡状物質として得た（１．３５ｇ、収率７５％）。Ｒｆ ０．４５（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（ＦＡＢ+）ｍ／ｅ ３３０（Ｍ＋Ｈ+）、３５２（Ｍ＋Ｎａ+）。
実施例７９
５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−２’−Ｏ−（２−メチレンイミノオキシエチル）チミジン（１５８）
化合物１５７（０．６４ｇ、１．９５ミリモル）をＰ2Ｏ5で高真空下において一晩乾燥させた。その後、これを無水ピリジン（５ｍＬ）と共に蒸発させた。残滓を無水ピリジン（４．４３ｍＬ）及び塩化ジメトキシトリチル（０．７９ｇ、２．３４ミリモル）に溶解し、４−ジメチルアミノピリジン（２３．８ｍｇ、０．２ミリモル）を添加した。反応混合物を不活性雰囲気下、周囲温度で４時間攪拌した。溶媒を真空下で除去し、残滓をカラムで精製し、数滴のピリジンを含むＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨで溶出して１５８を泡状物質として得た（１．０９ｇ、収率８８％）。Ｒｆ ０．４（ＣＨ2Ｃｌ2中の５％ＭｅＯＨ）。ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ６３０（Ｍ−Ｈ+）。
実施例８０
５’−Ｏ−ジメトキシトリチル−２’−Ｏ−（２−メチレンイミノオキシエチル）チミジン−３’−Ｏ−ホスホロアミダイト（１５９）
化合物１５８（０．８７ｇ、１．３４ミリモル）をトルエン（１０ｍＬ）と共に蒸発させた。その後、残滓をジイソプロピルアミンテトラゾリド（０．２３ｇ、１．３４ミリモル）と混合し、Ｐ2Ｏ5で高真空下において一晩乾燥させた。次に、これをアルゴンでフラッシュした。無水アセトニトリル（６．７ｍＬ）を添加して透明溶液を得た。この溶液に２−シアノエチルテトライソプロピルホスホロジアミダイト（１．７ｍＬ、５．３６ミリモル）を添加し、その反応混合物を室温で６時間、不活性雰囲気下で攪拌した。溶媒を真空下で除去し、その残滓を酢酸エチル（４０ｍＬ）で希釈して５％ＮａＨＣＯ3（２０ｍＬ）及び食塩水（２０ｍＬ）で洗浄した。酢酸エチル層を無水Ｎａ2ＳＯ4で乾燥させ、濃縮して乾燥させた。残滓をフラッシュカラムに入れ、酢酸エチル：ヘキサン（６０：４０）で溶出して１５９を得た（１．９２ｇ、収率８０％）。Ｒｆ ０．３４（酢酸エチル：ヘキサン、６０：４０）。31Ｐ ＮＭＲ（ＣＤＣｌ3）δ １５０．７６ｐｐｍ、ＭＳ（エレクトロスプレー）ｍ／ｅ ８３０（Ｍ−Ｈ+）。
実施例８１
固体支持体へのヌクレオチドの結合の一般的手順
化合物１０７（２００ｍｇ、０．３１ミリモル）をＤＭＡＰ（１９ｍｇ、１６ミリモル）、無水コハク酸（４７ｍｇ、０．４７ミリモル）、トリエチルアミン（８６ｍＬ、０．６２ミリモル）及びジクロロメタン（０．８ｍＬ）と混合し、４時間攪拌した。この混合物をＣＨ2Ｃｌ2（５０ｍＬ）で希釈し、ＣＨ2Ｃｌ2層をまず氷冷１０％クエン酸水溶液で、次いで水で洗浄した。有機相を濃縮して乾燥させ、１６１を得た。残滓（１６１）を無水アセトニトリル（２３ｍＬ）に溶解した。これに、ＤＭＡＰ（３７ｍｇ、０．３ミリモル）、及び２’,２’−ジチオビス（５−ニトロピリジン）（１０３ｍｇ、０．３３ミリモル）を添加した。この溶液を５分間攪拌した。これに、無水アセトニトリル（３ｍＬ）中のトリフェニルホスフィン（７８．６９ｍｇ、０．３ミリモル）を添加した。この溶液を１０分間攪拌した後、ＣＰＧを添加した。その後、このスラリーを２時間振盪した。次に、それを濾過し、アセトニトリル及びＣＨ2Ｃｌ2で洗浄した。この機能付加ＣＰＧを乾燥させ、キャッピング溶液でキャップを形成して１６１を得た。積載能力を決定した（５８．３μモル／ｇ）。
実施例８２
アミノオキシ誘導体の合成：代替手順
ジオール１６２を、１当量のｐ−塩化トルエンスルホニル−ピリジンでの処理とそれに続く標準的後処理により、そのトシレート誘導体１６３に変換する。続いて、このトシレートを、トシレートの置換において求核剤として作用する幾つかのアミノ−ヒドロキシ化合物で処理し、一連のオキシ−アミノ化合物を得る。この反応は、無水条件下で水素化ナトリウムを用いることによりアミノアルコール又はヒドロキシルアミン誘導体からアニオンを予め形成することで促進される。
手順１
ヌクレアーゼ耐性
Ａ．血清及び細胞質ヌクレアーゼに対する修飾オリゴヌクレオチドの耐性の評価。
本発明の修飾オリゴヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドをそれらの血清ヌクレアーゼに対する耐性について、様々な濃度のウシ胎児血清又はヒト成人血清を含む培地においてそれらのオリゴヌクレオチドをインキュベートすることにより評価することができる。標識オリゴヌクレオチドを様々な時間インキュベートし、プロテアーゼＫで処理した後、２０％ポリアクリルアミド−尿素変性ゲル上でのゲル電気泳動、及びそれに続くオートラジオグラフィーにより分析する。オートラジオグラムをレーザー濃度測定により定量する。オリゴヌクレオチドの修飾の位置及びその既知の長さに基づいて、特定の修飾によるヌクレアーゼの分解に対する効果を決定することができる。細胞質ヌクレアーゼに対しては、ＨＬ６０細胞系を用いる。ポストミトコンドリア（post-mitochondrial）上清を分画遠心により調製し、標識オリゴヌクレオチドをこの上清中で様々な時間インキュベートする。インキュベーションの後、血清核分解について上に概述されるように、オリゴヌクレオチドを分解について評価する。非修飾及び修飾オリゴヌクレオチドを比較するため、オートラジオグラフィーの結果を定量する。対照として、非置換ホスホジエステルオリゴヌクレオチドは１時間以内に５０％分解し、２０時間以内に１００％分解することが見出されている。
Ｂ．特定のエンド及びエキソヌクレアーゼに対する修飾オリゴヌクレオチドの耐性の評価
分解に対する修飾の正確な効果を決定するため、特定のヌクレアーゼ（すなわち、エンドヌクレアーゼ、３’,５’−エキソ、及び５’,３’−エキソヌクレアーゼ）に対する天然及び修飾オリゴヌクレオチドの耐性の評価を行う。修飾オリゴヌクレオチドを、選択された様々なヌクレアーゼについて特有の定義された反応バッファ中でインキュベートする。生成物をプロテアーゼＫで処理した後、尿素を添加し、尿素を含む２０％ポリアクリルアミドゲル上での分析を行う。ゲル生成物を、Stains All（Sigma Chemical Co.）を用いて染色することにより可視化した。レーザー濃度測定を用いて分解の程度を定量する。修飾の効果を特定のヌクレアーゼについて決定し、血清及び細胞質系から得られる結果と比較する。
Figure 0004440346
Ｔ１９ジエステル及びチオエート対照と共に、ゲル精製したオリゴを32Ｐで５’末端標識し、標準ヌクレアーゼ検定プロトコルにより実施した。ＰＡＧＥ／リン光画像形成により、無傷％及び（無傷＋（Ｎ−１））％について定量化された画像が形成された。これらのパーセンテージをプロットして半減期を得、これが下記表に記載されている。この表には２’−Ｏ−メトキシエチル（ＭＯＥ）類似体（配列番号２２）の半減期が含められている。これらの結果は、２’−ジメチルアミノオキシエチル（ＤＭＡＯＥ）が高度にヌクレアーゼ耐性の修飾であることを示した（図１４及び１５）。
Figure 0004440346
２’−ＤＭＡＯＥ修飾でキャップしたオリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性の最初の検定では、検定間の比較で、修飾２’−Ｏ−メトキシエチルよりも良好な耐性が示された（図１３）。これらの研究は、２つのモチーフにおける幾つかの修飾の中での検定内比較である。第１のモチーフは、最３’側ヌクレオシドから始まる４つの修飾ヌクレオチドのキャップを有する、完全ホスホジエステル主鎖である。第２のモチーフは、同様ではあるが、最３’側ヌクレオチド間結合にホスホロチオエートを１つ含む。
Figure 0004440346
Ｔ１９ホスホロチオエート対照と共に、これらのオリゴをゲル精製し、標準ヌクレアーゼプロトコルにより実施した。これらの検定から、配列番号２３が次に最も耐性のオリゴヌクレオチドであるものと立証された。配列番号２４はより容易に分解され、配列番号２５はむしろ急速に分解する。このゲルは、ゲルの底部に幾つかの反応生成物を示すが、耐性オリゴヌクレオチドのｎ−２及びｎ−３はほとんど示さない。これらの生成物はＳＶＰＤによるヌクレオチド鎖切断開裂の結果であるものと思われる。この型の活性は常に基本的な割合で存在するが、ほとんどのオリゴヌクレオチドに対する３’エキソヌクレアーゼ活性の圧倒的な優位性のため、通常は見られない。しかしながら、これらのオリゴヌクレオチドは３’エキソヌクレアーゼに対して並外れて耐性であるため、エンドヌクレアーゼ活性が完全長オリゴに対する大部分の開裂の原因となる。エンドヌクレアーゼ反応の２’−デオキシホスホジエステル生成物は、次に、迅速に開裂されて単量体となる。これらの反応について２組の定量を行う。一方は３’−エキソヌクレアーゼ生成物のみを計数し、他方は全ての反応の生成物を計数する。いずれの場合においても、配列番号２３の半減期は２４時間を上回る。配列番号２４については、エキソヌクレアーゼ活性の半減期は２４時間を上回るが、他の型の定量では約１００分の半減期が示される。ホスホロチオエート結合を１つ含むモチーフのオリゴヌクレオチド（配列番号２６及び配列番号２７）は上述のエンドヌクレアーゼ活性の基質であるが、３’エキソヌクレアーゼ活性の生成物はこの検定の間には検出されない。
Figure 0004440346
Figure 0004440346
Figure 0004440346
Figure 0004440346
Figure 0004440346
ΔＴｍは、ＤＮＡ及びホスホロチオエートオリゴヌクレオチドの報告されている文献値に基づく。
手順２
ｒａｓ−ルシフェラーゼ・リポーター遺伝子の組み立て
この研究に記載されるｒａｓ−ルシフェラーゼ・リポーター遺伝子を、ＰＣＲ技術を用いて組み立てる。オリゴヌクレオチドプライマーを、変異体（コドン１２）及び非変異体（野生型）ヒトＨ−ｒａｓ遺伝子の両者のエキソン１の５’領域をＰＣＲクローン化するためのプライマーとして用いるために合成する。Ｈ−ｒａｓ遺伝子のテンプレートはメリーランド州ベテスダのアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＡＴＣＣ番号４１０００及び４１００１）から購入する。オリゴヌクレオチドＰＣＲプライマー5’-ACA-TTA-TGC-TAG-CTT-TTT-GAG-TAA-ACT-TGT-GGG-GCA-GGA-GAC-CCT-GT-3’（センス）（配列番号１６）、及び5’-GAG-ATC-TGA-AGC-TTC-TGG-ATG-GTC-AGC-GC-3’（アンチセンス）（配列番号１７）を、変異体及び非変異体Ｈ−ｒａｓ遺伝子をテンプレートとして用いる標準ＰＣＲ反応において用いる。これらのプライマーは、ＮｈｅＩ及びＨｉｎｄＩＩＩ制限エンドヌクレアーゼ部位が並列する、正常及び変異体Ｈ−ｒａｓの（翻訳開始部位に対して）配列−５３〜＋６５に相当する１４５塩基対のＤＮＡ産物を生じるものと期待される。このＰＣＲ産物を、標準手順を用いて、ゲル精製し、沈殿させ、洗浄して水に再懸濁させる。
Ｐ．ピラリス（P.pyralis）（ホタル）ルシフェラーゼ遺伝子をクローン化するためのＰＣＲプライマーは、そのＰＣＲ産物が、アミノ末端メチオニン残基が２つのアミノ酸、アミノ末端リジン残基、続いてロイシン残基で置換されていることを除いて完全長のルシフェラーゼタンパク質をコードするように設計された。ルシフェラーゼ遺伝子のクローン化に用いられるこれらのオリゴヌクレオチドＰＣＲプライマーは5’-GAG-ATC-TGA-AGC-TTG-AAG-ACG-CCA-AAA-ACA-TAA-AG-3’（センス）（配列番号１８）、及び5’-ACG-CAT-CTG-GCG-CGC-CGA-TAC-CGT-CGA-CCT-CGA-3’（アンチセンス）（配列番号１９）であり、ルシフェラーゼ・リポーター遺伝子を含む市販のプラスミド（ｐＴ３／Ｔ７−Ｌｕｃ）（Clontech）をテンプレートとして用いる標準ＰＣＲ反応において用いる。これらのプライマーは、ＨｉｎｄＩＩＩ及びＢｓｓＨＩＩ制限エンドヌクレアーゼ部位が並列する、ルシフェラーゼ遺伝子に相当する約１．９ｋｂの産物を生じるものと期待される。この断片を、標準プロトコルを用いて、ゲル精製し、沈殿させ、洗浄して水に再懸濁させる。
ｒａｓ−ルシフェラーゼ融合リポーター遺伝子の組み立てを完了させるため、ｒａｓ及びルシフェラーゼＰＣＲ産物を適切な制限エンドヌクレアーゼで消化し、制限エンドヌクレアーゼＮｈｅＩ、ＨｉｎｄＩＩＩ及びＢｓｓＨＩＩを用いて三部ライゲーションによりステロイド誘発性マウス乳癌ウイルスプロモーターＭＭＴＶを含む発現ベクターにクローン化する。得られたクローンは、インフレームでホタルルシフェラーゼ遺伝子と融合したＨ−ｒａｓ５’配列（−５３〜＋６５）の挿入を生じる。得られた発現ベクターはｒａｓ−ルシフェラーゼ融合産物をコードし、これはステロイド誘発性ＭＭＴＶプロモーターの制御の下で発現する。
手順３
プラスミドＤＮＡでの細胞の形質移入
形質移入を、以下の変更を加えて、Current Protocols in Molecular Biology,Ausubel et al.,Eds.,John Wiley and Sons,New YorkにGreenbergによって記載される通りに行う：ＨｅＬａ細胞を６０ｍｍ皿に５×１０5細胞／皿で平板培養する。合計１０μｇのＤＮＡを各々の皿に添加し、そのうちの９μｇはｒａｓ−ルシフェラーゼ・リポータープラスミドであり、１μｇは構成型ラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）プロモーターの制御の下でラット糖質コルチコイド・リポーターを発現するベクターである。リン酸カルシウム−ＤＮＡ共沈殿を、１６〜２０時間後に、３ｍＭ ＥＧＴＡを含むトリス緩衝生理食塩水（５０ｍＭトリス−Ｃｌ（ｐＨ７．５）,１５０ｍＭ ＮａＣｌ）で洗浄することにより除去する。その後、１０％ウシ胎児血清を補足した新鮮な培地を細胞に加える。この時点で、細胞をアンチセンスオリゴヌクレオチドで前処理し、次いでリポーター遺伝子の発現をデキサメタゾンにより活性化する。
手順４
細胞のオリゴヌクレオチド処理
プラスミド形質移入の直後に、細胞をＯｐｔｉＭＥＭ（GIBCO）で３回洗浄し、３７℃に予め暖める。１０μｇ／ｍｌの塩化Ｎ−［１−（２,３−ジオールエチルオキシ）プロピル］−Ｎ,Ｎ,Ｎ−トリメチルアンモニウム（ＤＯＴＭＡ）（Bethesda Research Labs、ゲーサーズバーグ、ＭＤ）を含む２ｍｌのＯｐｔｉＭＥＭを各々の皿に添加し、オリゴヌクレオチドを直接添加して３７℃で４時間インキュベートする。その後、ＯｐｔｉＭＥＭを除去し、オリゴヌクレオチドを含む適切な細胞成長培地に交換する。この時点で、リポーター遺伝子の発現を、細胞を最終濃度０．２μＭまでのデキサメタゾンで処理することにより活性化する。ステロイド処理の１２〜１６時間後に細胞を回収する。
手順５
ルシフェラーゼ検定
Current Protocols in Molecular Biology,Ausubel et al.,Eds.,John Wiley and Sons,New YorkにGreenbergによって記載されるように、洗浄剤トリトンＸ−１００で溶解することにより、細胞からルシフェラーゼを抽出する。Ｄｙｎａｔｅｃｋ ＭＬ１０００照度計を用いて、ルシフェリン（Sigma）を６２５μＭまで添加した際のピーク発光を測定する。各々の抽出物について、データが検定の直線範囲に集まることを確実にするために異なる量の抽出物を用いて、ルシフェラーゼ検定を複数回行う。
手順６
ｒａｓ−ルシフェラーゼ遺伝子の発現のアンチセンスオリゴヌクレオチドの阻害
活性化Ｈ−ｒａｓのコドン−１２点変異を標的とする一連のアンチセンスホスホロチオエートオリゴヌクレオチド類似体を、前述の例に記載されるルシフェラーゼ・リポーター遺伝子系を用いて試験する。この系列には基本配列及びその基本配列の類似体が含められた。基本配列は、上で確認された国際公開ＷＯ９２／２２６５１に報告される既知活性を有するものである。この基本配列及びその類似体の両者において、ヌクレオチドサブユニットの各々はヌクレアーゼ耐性をもたらすためにホスホロチオエート結合を含んでいた。類似体の各々は、２’−Ｏ−置換及び２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシル糖を含むヌクレオチドサブユニットを含んでいた。これらの類似体において、２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシル糖含有サブユニットの配列にはその両端に２’−Ｏ−置換サブユニットの配列が並列する。これらの類似体は２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシル糖含有ヌクレオチドの配列の長さの点で互いに異なる。これらの配列の長さは、合計１〜９ヌクレオチドの間で、２ヌクレオチドづつ変化する。２’−デオキシ−エリスロ−ペントフラノシルヌクレオチドサブ配列は、活性化ｒａｓのコドン−１２点変異の点変異に中心を置く。
手順７
ｍＲＮＡの過剰発現を検出するための診断検定
オリゴヌクレオチドを、合成の後に、ポリヌクレオチドキナーゼを用いて５’末端を32Ｐ標識することにより放射標識する。Sambrookら（”Molecular Cloning.A Laboratory Manual,”Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989,Volume 2,pg.11.31-11.32）。放射標識オリゴヌクレオチドをｍＲＮＡの過剰発現が疑われる組織又は細胞試料、例えば患者からの試料と、特異的ハイブリダイゼーションが起こり得る条件下で接触させ、その試料を洗浄して未結合のオリゴヌクレオチドを除去する。放射標識オリゴヌクレオチドを特異的ハイブリダイゼーションを可能にする条件下で正常細胞又は組織試料と接触させ、その試料を洗浄して未結合のオリゴヌクレオチドを除去する類似の対照を維持する。試料に残留する放射能は結合したオリゴヌクレオチドを示すものであり、それをシンチレーションカウンター又は他の定型的な手段を用いて定量する。正常及び疾患細胞からの試料に残留する放射能の比較により、関心のあるｍＲＮＡの過剰発現が示される。
また、本発明の放射標識オリゴヌクレオチドはオートラジオグラフィーにおいても有用である。組織切片を放射標識オリゴヌクレオチドで処理し、上述の通り洗浄した後、標準オートラジオグラフィー手順に従って写真乳剤に露出する。正常細胞又は組織試料を用いる対照も維持する。乳剤は、現像すると、ｍＲＮＡを過剰発現する領域全体にわたって銀粒子の画像を生じるので、それを定量する。ｍＲＮＡの過剰発現の程度を、正常及び疾患細胞で観察される銀粒子の比較によって決定する。
ｍＲＮＡの過剰発現を蛍光検出するための類似の検定は、フルオレセイン又は他の蛍光タグで標識されている本発明のオリゴヌクレオチドを用いる。標識ＤＮＡオリゴヌクレオチドは、自動ＤＮＡ合成装置（Applied Biosystems model 380B）で、ヨウ素による酸化を用いる標準ホスホロアミダイト化学を用いて合成する。β−シアノエチルジイソプロピルホスホロアミダイトはApplied Biosystems（Foster City、ＣＡ）から購入する。フルオレセイン標識アミダイトはGlen Research（Sterling、ＶＡ）から購入する。オリゴヌクレオチド及び生物学的試料のインキュベーションは、シンチレーションカウンターの代わりに蛍光顕微鏡を蛍光の検出に用いることを除いて、放射標識オリゴヌクレオチドについて記述される通りに行う。正常及び疾患細胞に由来する試料に観察される蛍光を比較することで、ｍＲＮＡの過剰発現を検出することが可能となる。
手順８
異常なｍＲＮＡの発現の検出
異常なｍＲＮＡを発現することが疑われる組織又は細胞試料を、野生型（正常）ｍＲＮＡを標的とする第１の32Ｐ又はフルオレセイン標識オリゴヌクレオチドと共にインキュベートする。細胞又は組織の同一試料を、異常ｍＲＮＡを標的とする第２の標識オリゴヌクレオチドと共に、特異的ハイブリダイゼーションが生じ得る条件下でインキュベートし、その試料を洗浄して未結合オリゴヌクレオチドを除去する。試料に残留する標識は結合したオリゴヌクレオチドを示すものであり、シンチレーションカウンター、蛍光光度計、又は他の定型的な手段を用いて定量することができる。結合が第２の試料の場合には観察されるものの第１の試料では観察されない場合、異常なｍＲＮＡの存在が示される。
二重標識も、本発明のオリゴヌクレオチド及び方法で、異常なｍＲＮＡの発現を特異的に検出するのに用いることができる。単一の組織試料を、野生型ｍＲＮＡを標的とする第１の32Ｐ標識オリゴヌクレオチド及び異常ｍＲＮＡを標的とする第２のフルオレセイン標識オリゴヌクレオチドと共に、特異的ハイブリダイゼーションが生じ得る条件下でインキュベートする。この試料を洗浄して未結合オリゴヌクレオチドを除去し、標識をシンチレーション計数及び蛍光定量により検出する。その試料が32Ｐ標識オリゴヌクレオチドとは結合しない（すなわち、放射性ではない）ものの、蛍光標識を保持する（すなわち、蛍光性である）場合、異常なｍＲＮＡの存在が示される。

Claims (12)

  1. 構造：
    Figure 0004440346
    〔式中、
    Ｂｘはプリン又はピリミジン複素環塩基であり；
    Ｔ1及びＴ2は、独立に、ＯＨ；ヒドロキシル保護基；そのリン原子がオリゴヌクレオチドへの組み込みのためにＰ III 又はＰ V 原子価状態に活性化されたホスホロアミダイト、Ｈホスホネート、又はホスホトリエステル；ヌクレオチド；ヌクレオシド；又はオリゴヌクレオチドであり、そして
    Ｌは構造：
    Figure 0004440346
    （式中、
    ｍは１〜６であり；
    ｙは１〜１０であり；
    ｘは１であり；
    ＥはＮ（Ｒ1）（Ｒ2）又はＮ＝Ｃ（Ｒ1）（Ｒ2）であり；そして
    各々のＲ1及びＲ2は、独立に、Ｈ、Ｃ1〜Ｃ10アルキル、又はホルムアルデヒドにより形成される窒素保護基であるか、又は、ＥがＮ（Ｒ1）（Ｒ2）である場合においてＲ1とＲ2はそれらが結合するＮと一緒になってフタルイミドであるか、又はＲ1及びＲ2は、イミダゾール、ピペリジン、モルホリン又はＣ1〜Ｃ12アルキルで置換されているピペラジンから選択される環構造に加わっている。）のうちの１つを有する。〕
    を有する化合物。
  2. Ｂｘが、アデニン、グアニン、ヒポキサンチン、ウラシル、チミン、シトシン、２−アミノアデニン又は５−メチルシトシンである、請求項１の化合物。
  3. Ｒ1及びＲ2が、独立に、Ｈ又はＣ1〜Ｃ10アルキルである、請求項１の化合物。
  4. Ｒ1及びＲ2が、イミダゾール、ピペリジン、モルホリン又はＣ1〜Ｃ12アルキルで置換されているピペラジンから選択される環構造に加わっている、請求項１の化合物。
  5. Ｔ1及びＴ2の両方がオリゴヌクレオチドであるか、又はＴ1及びＴ2の一方がオリゴヌクレオチドであって他方がヒドロキシル保護基である、請求項１の化合物。
  6. 構造：
    Ｑ−Ｌ
    〔式中、
    Ｌは構造：
    Figure 0004440346
    （式中、
    ｍは１〜６であり；
    ｘは１であり；
    ｙは１〜１０であり；
    ＥはＮ（Ｒ1）（Ｒ2）又はＮ＝Ｃ（Ｒ1）（Ｒ2）であり；
    各々のＲ1及びＲ2は、独立に、Ｈ、Ｃ1〜Ｃ10アルキル、又はホルムアルデヒドにより形成される窒素保護基であるか、又は、ＥがＮ（Ｒ1）（Ｒ2）である場合においてＲ1とＲ2はそれらが結合するＮと一緒になってフタルイミドであるか、又は、Ｒ1及びＲ2は、イミダゾール、ピペリジン、モルホリン又はＣ1〜Ｃ12アルキルで置換されているピペラジンから選択される環構造に加わっている。）のうちの１つを有し、
    そして、Ｑは：
    ２’、３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されているリボヌクレオシド；
    ２’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されている３’−亜リン酸化リボヌクレオシド；
    ３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されている２’−亜リン酸化リボヌクレオシド；又は
    ２’、３’もしくは５’位が前記Ｌ基で置換されているリボヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドになるように選択される。〕
    の化合物。
  7. Ｑが、２’、３’もしくは５’位がＬ基で置換されているリボヌクレオシドである、請求項６の化合物。
  8. Ｑが、その２’位がＬ基で置換されているリボヌクレオシドである、請求項７の化合物。
  9. Ｑが、その２’位がＬ基で置換されている３’−亜リン酸化リボヌクレオシドある請求項７の化合物。
  10. Ｑが、２’、３’もしくは５’位がＬ基で置換されている少なくとも１つのリボヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドである、請求項６の化合物。
  11. Ｑが、その２’位がＬ基で置換されている少なくとも１つのリボヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドである、請求項１０の化合物。
  12. Ｑが、その２’位がアミノオキシエチル基で置換されている少なくとも１つのリボヌクレオシドを含むオリゴヌクレオチドである、請求項６の化合物。
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Families Citing this family (127)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6335434B1 (en) 1998-06-16 2002-01-01 Isis Pharmaceuticals, Inc., Nucleosidic and non-nucleosidic folate conjugates
DE69433036T2 (de) 1993-09-03 2004-05-27 Isis Pharmaceuticals, Inc., Carlsbad Aminoderivatisierte nukleoside und oligonukleoside
US7812149B2 (en) 1996-06-06 2010-10-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2′-Fluoro substituted oligomeric compounds and compositions for use in gene modulations
US5898031A (en) 1996-06-06 1999-04-27 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligoribonucleotides for cleaving RNA
US9096636B2 (en) 1996-06-06 2015-08-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Chimeric oligomeric compounds and their use in gene modulation
US6127533A (en) * 1997-02-14 2000-10-03 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2'-O-aminooxy-modified oligonucleotides
US6639062B2 (en) * 1997-02-14 2003-10-28 Isis Pharmaceuticals, Inc. Aminooxy-modified nucleosidic compounds and oligomeric compounds prepared therefrom
US6576752B1 (en) * 1997-02-14 2003-06-10 Isis Pharmaceuticals, Inc. Aminooxy functionalized oligomers
US6172209B1 (en) * 1997-02-14 2001-01-09 Isis Pharmaceuticals Inc. Aminooxy-modified oligonucleotides and methods for making same
CA2294988C (en) 1997-07-01 2015-11-24 Isis Pharmaceuticals Inc. Compositions and methods for the delivery of oligonucleotides via the alimentary canal
WO1999060012A1 (en) * 1998-05-21 1999-11-25 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for non-parenteral delivery of oligonucleotides
US6326478B1 (en) 1998-07-08 2001-12-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Process for the synthesis of oligomeric compounds
US6277967B1 (en) 1998-07-14 2001-08-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. Carbohydrate or 2′-modified oligonucleotides having alternating internucleoside linkages
US6077709A (en) 1998-09-29 2000-06-20 Isis Pharmaceuticals Inc. Antisense modulation of Survivin expression
US6403779B1 (en) 1999-01-08 2002-06-11 Isis Pharmaceuticals, Inc. Regioselective synthesis of 2′-O-modified nucleosides
DE19956568A1 (de) 1999-01-30 2000-08-17 Roland Kreutzer Verfahren und Medikament zur Hemmung der Expression eines vorgegebenen Gens
WO2000046231A1 (en) * 1999-02-05 2000-08-10 Amersham Pharmacia Biotech Inc. Method for deprotecting oligonucleotides
US6207819B1 (en) * 1999-02-12 2001-03-27 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compounds, processes and intermediates for synthesis of mixed backbone oligomeric compounds
EP1152009B2 (en) 1999-02-12 2017-09-06 Daiichi Sankyo Company, Limited Novel nucleosides and oligonucleotide analogues
US20040171566A1 (en) 1999-04-06 2004-09-02 Monia Brett P. Antisense modulation of p38 mitogen activated protein kinase expression
US6140124A (en) * 1999-04-06 2000-10-31 Isis Pharmaceuticals Inc. Antisense modulation of P38 mitogen activated protein kinase expression
US6656730B1 (en) 1999-06-15 2003-12-02 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides conjugated to protein-binding drugs
JP4151751B2 (ja) * 1999-07-22 2008-09-17 第一三共株式会社 新規ビシクロヌクレオシド類縁体
US6277982B1 (en) 1999-08-20 2001-08-21 Isis Pharmaceuticals, Inc. Alkylation of alcohols, amines, thiols and their derivatives by cyclic sulfate intermediates
US20050118618A1 (en) * 1999-08-30 2005-06-02 Dale Roderic M. Method for detecting nucleic acid sequences
DE10100586C1 (de) * 2001-01-09 2002-04-11 Ribopharma Ag Verfahren zur Hemmung der Expression eines Ziegens
US6686461B1 (en) 2000-03-22 2004-02-03 Solulink Bioscience, Inc. Triphosphate oligonucleotide modification reagents and uses thereof
US7423142B2 (en) * 2001-01-09 2008-09-09 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for inhibiting expression of anti-apoptotic genes
US7767802B2 (en) * 2001-01-09 2010-08-03 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for inhibiting expression of anti-apoptotic genes
US6825338B2 (en) 2001-03-30 2004-11-30 Isis Pharmaceuticals, Inc. Labeled oligonucleotides, methods for making same, and compounds useful therefor
US7727713B2 (en) 2001-06-20 2010-06-01 Nuevolution A/S Templated molecules and methods for using such molecules
EP1487978B1 (en) 2002-03-15 2008-11-19 Nuevolution A/S An improved method for synthesising templated molecules
US20030190626A1 (en) * 2002-04-09 2003-10-09 Vasulinga Ravikumar Phosphorothioate monoester modified oligomers
EP1539980B1 (en) 2002-08-01 2016-02-17 Nuevolution A/S Library of complexes comprising small non-peptide molecules and double-stranded oligonucleotides identifying the molecules
US20040038331A1 (en) * 2002-08-23 2004-02-26 Reddy M. Parameswara Solid phase synthesis of biomolecule conjugates
WO2004043979A2 (en) 2002-11-05 2004-05-27 Isis Pharmaceuticals, Inc. Sugar surrogate-containing oligomeric compounds and compositions for use in gene modulation
US9534224B2 (en) 2002-11-15 2017-01-03 Trustees Of Boston University Cis/trans riboregulators
US20040115634A1 (en) 2002-12-11 2004-06-17 Isis Pharmaceuticals, Inc. Modulation of stat 6 expression
JP4579911B2 (ja) 2003-06-03 2010-11-10 アイシス・ファーマシューティカルズ・インコーポレイテッド スルビビン発現の調節
EP3604537B1 (en) 2003-06-13 2021-12-08 Alnylam Europe AG Double-stranded ribonucleic acid with increased effectiveness in an organism
US7825235B2 (en) * 2003-08-18 2010-11-02 Isis Pharmaceuticals, Inc. Modulation of diacylglycerol acyltransferase 2 expression
ATE447626T1 (de) 2003-09-18 2009-11-15 Nuevolution As Methode zur gewinnung struktureller informationen kodierter moleküle und zur selektion von verbindungen
EP2256201A3 (en) 2003-09-18 2012-07-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Modulation of eIF4E expression
WO2005056761A2 (en) * 2003-12-05 2005-06-23 Massachusetts Institute Of Technology REAGENTS AND METHODS FOR IDENTIFICATION OF RNAi PATHWAY GENES AND CHEMICAL MODULATORS OF RNAi
JP2007527240A (ja) * 2004-03-01 2007-09-27 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー アレルギー性鼻炎および喘息のためのＲＮＡｉベースの治療
US8569474B2 (en) 2004-03-09 2013-10-29 Isis Pharmaceuticals, Inc. Double stranded constructs comprising one or more short strands hybridized to a longer strand
US7947659B2 (en) * 2004-03-12 2011-05-24 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. iRNA agents targeting VEGF
KR101147147B1 (ko) * 2004-04-01 2012-05-25 머크 샤프 앤드 돔 코포레이션 Ｒｎａ 간섭의 오프 타겟 효과 감소를 위한 변형된폴리뉴클레오타이드
EP1737878A2 (en) 2004-04-05 2007-01-03 Alnylam Pharmaceuticals Inc. Process and reagents for oligonucleotide synthesis and purification
CA2562151C (en) 2004-04-30 2016-09-06 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides comprising a c5-modified pyrimidine
US8394947B2 (en) 2004-06-03 2013-03-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. Positionally modified siRNA constructs
US7884086B2 (en) 2004-09-08 2011-02-08 Isis Pharmaceuticals, Inc. Conjugates for use in hepatocyte free uptake assays
EP1809302B1 (en) 2004-10-20 2012-08-22 Antisense Therapeutics Ltd Antisens modulation of integrin alpha-4 expression
US9492400B2 (en) 2004-11-04 2016-11-15 Massachusetts Institute Of Technology Coated controlled release polymer particles as efficient oral delivery vehicles for biopharmaceuticals
US7244829B2 (en) * 2004-11-08 2007-07-17 Gem Pharmaceuticals, Llc Compositions and processes for preparing 13-deoxy-anthracyclines
US7935811B2 (en) 2004-11-22 2011-05-03 Dharmacon, Inc. Apparatus and system having dry gene silencing compositions
US7923207B2 (en) 2004-11-22 2011-04-12 Dharmacon, Inc. Apparatus and system having dry gene silencing pools
US20060166234A1 (en) 2004-11-22 2006-07-27 Barbara Robertson Apparatus and system having dry control gene silencing compositions
US7585968B2 (en) 2005-03-28 2009-09-08 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compositions and their uses directed to thymus and activation-regulated chemokine (TARC)
US20090203055A1 (en) * 2005-04-18 2009-08-13 Massachusetts Institute Of Technology Compositions and methods for RNA interference with sialidase expression and uses thereof
CN101365801B (zh) * 2005-10-28 2013-03-27 阿尔尼拉姆医药品有限公司 抑制亨廷顿基因表达的组合物和方法
JP4929288B2 (ja) * 2005-11-04 2012-05-09 アルナイラム ファーマシューティカルズ， インコーポレイテッド Ｎａｖ１．８遺伝子の発現を抑制するための組成物および方法
CA2626690A1 (en) 2005-11-09 2007-05-18 Alnylam Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for inhibiting expression of factor v leiden mutant gene
LT2336315T (lt) 2005-12-01 2017-11-10 Nuevolution A/S Fermentiniai kodavimo būdai, skirti efektyviai didelių bibliotekų sintezei
US20090317802A1 (en) * 2005-12-09 2009-12-24 Bhatia Sangeeta N Compositions and Methods to Monitor RNA Delivery to Cells
WO2007070682A2 (en) 2005-12-15 2007-06-21 Massachusetts Institute Of Technology System for screening particles
EP2007435B1 (en) 2006-03-31 2019-12-18 Massachusetts Institute Of Technology System for targeted delivery of therapeutic agents
CN101573141B (zh) 2006-05-15 2016-05-04 麻省理工学院 用于功能性颗粒的聚合物
AU2007256780B2 (en) 2006-06-02 2013-08-29 President And Fellows Of Harvard College Protein surface remodeling
WO2007150030A2 (en) 2006-06-23 2007-12-27 Massachusetts Institute Of Technology Microfluidic synthesis of organic nanoparticles
US8198253B2 (en) 2006-07-19 2012-06-12 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compositions and their uses directed to HBXIP
US8252755B2 (en) 2006-09-22 2012-08-28 Dharmacon, Inc. Duplex oligonucleotide complexes and methods for gene silencing by RNA interference
WO2008060448A2 (en) 2006-11-10 2008-05-22 Massachusetts Institute Of Technology Small molecule pak inhibitors
AU2007333225B2 (en) * 2006-12-08 2014-06-12 Massachusetts Institute Of Technology Delivery of nanoparticles and/or agents to cells
US9217129B2 (en) 2007-02-09 2015-12-22 Massachusetts Institute Of Technology Oscillating cell culture bioreactor
WO2008124632A1 (en) 2007-04-04 2008-10-16 Massachusetts Institute Of Technology Amphiphilic compound assisted nanoparticles for targeted delivery
WO2008124634A1 (en) 2007-04-04 2008-10-16 Massachusetts Institute Of Technology Polymer-encapsulated reverse micelles
EP2162458A4 (en) * 2007-05-30 2012-08-15 Univ Brigham Young PROTEIN KINASE BINDING NUCLEOSIDES AND RELATED METHODS
EP2630967A1 (en) 2007-10-12 2013-08-28 Massachusetts Institute of Technology Vaccine nanotechnology
US7732659B2 (en) * 2007-11-20 2010-06-08 Genetic Services, Inc. Injecting Drosophila embryos
US8188060B2 (en) 2008-02-11 2012-05-29 Dharmacon, Inc. Duplex oligonucleotides with enhanced functionality in gene regulation
CN102066405B (zh) * 2008-04-28 2015-09-30 哈佛大学校长及研究员协会 用于细胞穿透的超荷电蛋白
KR20110017005A (ko) * 2008-07-15 2011-02-18 에프. 호프만-라 로슈 아게 Ｔｇｆ-베타 수용체 유전자 발현 억제용 조성물 및 방법
US20100076183A1 (en) 2008-09-22 2010-03-25 Dellinger Douglas J Protected monomer and method of final deprotection for rna synthesis
US8277812B2 (en) 2008-10-12 2012-10-02 Massachusetts Institute Of Technology Immunonanotherapeutics that provide IgG humoral response without T-cell antigen
US8343498B2 (en) 2008-10-12 2013-01-01 Massachusetts Institute Of Technology Adjuvant incorporation in immunonanotherapeutics
US8343497B2 (en) 2008-10-12 2013-01-01 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Targeting of antigen presenting cells with immunonanotherapeutics
US8591905B2 (en) 2008-10-12 2013-11-26 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Nicotine immunonanotherapeutics
JP2012508569A (ja) * 2008-11-17 2012-04-12 エフ．ホフマン−ラ ロシュ アーゲー 第ｖｉｉ因子遺伝子の発現を阻害するための組成物および方法
MX358603B (es) * 2008-12-04 2018-08-28 Curna Inc Tratamiento de enfermedades relacionadas con un gen supresor de tumor mediante inhibicion del transcrito antisentido natural para el gen.
KR20110100316A (ko) 2009-02-03 2011-09-09 에프. 호프만-라 로슈 아게 Ｐｔｐ1ｂ 유전자의 발현을 억제하기 위한 조성물 및 방법
JP5463055B2 (ja) * 2009-02-27 2014-04-09 公益財団法人相模中央化学研究所 フタルイミド誘導体及びそれらの製造方法
US8067526B2 (en) * 2009-03-27 2011-11-29 Nof Corporation Method for producing polyoxalkylene derivative
EP2424877A4 (en) 2009-04-28 2013-01-02 Harvard College SUPERCHARGED PROTEINS FOR CELL PENETRATION
CN102427852A (zh) * 2009-05-15 2012-04-25 霍夫曼-拉罗奇有限公司 用于抑制糖皮质素受体(gcr)基因表达的组合物和方法
US8951981B2 (en) * 2009-06-16 2015-02-10 Curna, Inc. Treatment of paraoxonase 1 (PON1) related diseases by inhibition of natural antisense transcript to PON1
US20110112176A1 (en) * 2009-11-09 2011-05-12 John Frederick Boylan Compositions and methods for inhibiting expression of kif10 genes
US20110152349A1 (en) * 2009-12-18 2011-06-23 Anke Geick Compositions and methods for inhibiting expression of il-18 genes
TW201129365A (en) 2010-02-05 2011-09-01 Hoffmann La Roche Compositions and methods for inhibiting expression of IKK2 genes
LT2558577T (lt) 2010-04-16 2019-03-12 Nuevolution A/S Bifunkciniai kompleksai ir tokių kompleksų gamybos ir naudojimo būdai
EP2575773A4 (en) 2010-05-26 2014-06-25 Selecta Biosciences Inc SYNTHETIC NANOTRÄGERKOMBINATIONSIMPFSTOFFE
EP2630240A1 (en) 2010-10-18 2013-08-28 Arrowhead Research Corporation Compositions and methods for inhibiting expression of rrm2 genes
AU2012209339B2 (en) 2011-01-24 2017-05-11 Anterios, Inc. Nanoparticle compositions
KR20230007537A (ko) 2011-01-24 2023-01-12 안테리오스, 인코퍼레이티드 나노입자 조성물, 이의 제형, 및 그의 용도
ES2587512T3 (es) 2011-04-04 2016-10-25 The U.S.A. As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Derivados de 2'-O-aminooximetil nucleósido para su uso en la síntesis y modificación de nucleósidos, nucleótidos y oligonucleótidos
US8916696B2 (en) 2011-06-12 2014-12-23 City Of Hope Aptamer-mRNA conjugates for targeted protein or peptide expression and methods for their use
MX342731B (es) 2011-06-30 2016-10-11 Arrowhead Res Corp Composiciones y metodos para inhibir la expresion genica del virus de hepatitis b.
CN112587658A (zh) 2012-07-18 2021-04-02 博笛生物科技有限公司 癌症的靶向免疫治疗
EP3052627B1 (en) 2013-10-04 2018-08-22 Novartis AG Novel formats for organic compounds for use in rna interference
CN105792832B (zh) 2013-10-04 2021-03-23 诺华股份有限公司 用于治疗乙肝病毒的有机化合物
JP6694811B2 (ja) 2013-10-04 2020-05-20 ノバルティス アーゲー ＲＮＡ干渉に使用するためのＲＮＡｉ剤用の３’末端キャップ
CA2936377A1 (en) 2014-01-10 2015-07-16 Shanghai Birdie Biotech, Inc. Compounds and compositions for treating egfr expressing tumors
HRP20220379T1 (hr) 2014-06-10 2022-05-27 Erasmus University Medical Center Rotterdam Antisense oligonukleotidi korisni u liječenju pompeove bolesti
CN112546231A (zh) 2014-07-09 2021-03-26 博笛生物科技有限公司 用于治疗癌症的联合治疗组合物和联合治疗方法
TWI691335B (zh) 2014-07-09 2020-04-21 英屬開曼群島商博笛生物科技有限公司 用於治療腫瘤的抗pd-l1組合
CN112587672A (zh) 2014-09-01 2021-04-02 博笛生物科技有限公司 用于治疗肿瘤的抗-pd-l1结合物
CN107613980A (zh) 2015-05-31 2018-01-19 源生公司 用于免疫疗法的组合组合物
WO2017011276A1 (en) 2015-07-10 2017-01-19 Ionis Pharmaceuticals, Inc. Modulators of diacyglycerol acyltransferase 2 (dgat2)
AU2016306275A1 (en) 2015-08-07 2018-02-08 Arrowhead Pharmaceuticals, Inc. RNAi therapy for Hepatitis B virus infection
CA3007152A1 (en) 2015-12-07 2017-06-15 Erasmus University Medical Center Rotterdam Enzymatic replacement therapy and antisense therapy for pompe disease
JOP20170161A1 (ar) 2016-08-04 2019-01-30 Arrowhead Pharmaceuticals Inc عوامل RNAi للعدوى بفيروس التهاب الكبد ب
NL2017294B1 (en) 2016-08-05 2018-02-14 Univ Erasmus Med Ct Rotterdam Natural cryptic exon removal by pairs of antisense oligonucleotides.
NL2017295B1 (en) 2016-08-05 2018-02-14 Univ Erasmus Med Ct Rotterdam Antisense oligomeric compound for Pompe disease
US10369167B2 (en) 2016-11-01 2019-08-06 City Of Hope Continuously expressed therapeutic RNAs for targeted protein binding and methods for their use
CN112166118A (zh) 2018-03-22 2021-01-01 德克萨斯大学体系董事会 治疗自身免疫性疾病和癌症的可溶性白介素-7受体(sIL7R)调节疗法
CA3158528A1 (en) 2019-12-23 2021-07-01 Jim SWILDENS Antisense oligonucleotides for nucleotide deamination in the treatment of stargardt disease
WO2023152371A1 (en) 2022-02-14 2023-08-17 Proqr Therapeutics Ii B.V. Guide oligonucleotides for nucleic acid editing in the treatment of hypercholesterolemia

Family Cites Families (66)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4469863A (en) * 1980-11-12 1984-09-04 Ts O Paul O P Nonionic nucleic acid alkyl and aryl phosphonates and processes for manufacture and use thereof
US5430136A (en) * 1984-10-16 1995-07-04 Chiron Corporation Oligonucleotides having selectably cleavable and/or abasic sites
WO1986005518A1 (en) * 1985-03-15 1986-09-25 James Summerton Stereoregular polynucleotide-binding polymers
US5034506A (en) * 1985-03-15 1991-07-23 Anti-Gene Development Group Uncharged morpholino-based polymers having achiral intersubunit linkages
DE3788914T2 (de) * 1986-09-08 1994-08-25 Ajinomoto Kk Verbindungen zur Spaltung von RNS an eine spezifische Position, Oligomere, verwendet bei der Herstellung dieser Verbindungen und Ausgangsprodukte für die Synthese dieser Oligomere.
US5749847A (en) * 1988-01-21 1998-05-12 Massachusetts Institute Of Technology Delivery of nucleotides into organisms by electroporation
WO1989009221A1 (en) * 1988-03-25 1989-10-05 University Of Virginia Alumni Patents Foundation Oligonucleotide n-alkylphosphoramidates
EP0339842B1 (en) * 1988-04-27 1996-11-06 Isis Pharmaceuticals, Inc. Novel oligoribonucleotide derivatives and application thereof to antiviral agents
US5278302A (en) * 1988-05-26 1994-01-11 University Patents, Inc. Polynucleotide phosphorodithioates
US5216141A (en) * 1988-06-06 1993-06-01 Benner Steven A Oligonucleotide analogs containing sulfur linkages
DE3916871A1 (de) * 1989-05-24 1990-11-29 Boehringer Mannheim Gmbh Modifiziertes phosphoramidit-verfahren zur herstellung von modifizierten nukleinsaeuren
JPH05500799A (ja) * 1989-06-05 1993-02-18 ギリアド　サイエンシス，インコーポレイテッド エキソヌクレアーゼ抵抗性オリゴヌクレオチドおよびその調製方法
EP0942000B1 (en) * 1989-10-24 2004-06-23 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2'-Modified oligonucleotides
US5264562A (en) * 1989-10-24 1993-11-23 Gilead Sciences, Inc. Oligonucleotide analogs with novel linkages
US5177198A (en) * 1989-11-30 1993-01-05 University Of N.C. At Chapel Hill Process for preparing oligoribonucleoside and oligodeoxyribonucleoside boranophosphates
US5457189A (en) * 1989-12-04 1995-10-10 Isis Pharmaceuticals Antisense oligonucleotide inhibition of papillomavirus
WO1993007883A1 (en) * 1991-10-24 1993-04-29 Isis Pharmaceuticals, Inc. Derivatized oligonucleotides having improved uptake and other properties
US5578718A (en) * 1990-01-11 1996-11-26 Isis Pharmaceuticals, Inc. Thiol-derivatized nucleosides
US5457191A (en) * 1990-01-11 1995-10-10 Isis Pharmaceuticals, Inc. 3-deazapurines
US5514788A (en) * 1993-05-17 1996-05-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotide modulation of cell adhesion
US5591623A (en) * 1990-08-14 1997-01-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotide modulation of cell adhesion
US5506351A (en) * 1992-07-23 1996-04-09 Isis Pharmaceuticals Process for the preparation of 2'-O-alkyl guanosine and related compounds
US5514786A (en) * 1990-01-11 1996-05-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Compositions for inhibiting RNA activity
CA2073500C (en) * 1990-01-11 2008-03-25 Phillip Dan Cook Compositions and methods for detecting and modulating rna activity and gene expression
US5459255A (en) * 1990-01-11 1995-10-17 Isis Pharmaceuticals, Inc. N-2 substituted purines
US5587361A (en) * 1991-10-15 1996-12-24 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides having phosphorothioate linkages of high chiral purity
US5359051A (en) * 1990-01-11 1994-10-25 Isis Pharmaceuticals Compounds useful in the synthesis of nucleic acids capable of cleaning RNA
US5248670A (en) * 1990-02-26 1993-09-28 Isis Pharmaceuticals, Inc. Antisense oligonucleotides for inhibiting herpesviruses
US5514577A (en) * 1990-02-26 1996-05-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotide therapies for modulating the effects of herpes viruses
US5321131A (en) * 1990-03-08 1994-06-14 Hybridon, Inc. Site-specific functionalization of oligodeoxynucleotides for non-radioactive labelling
DE4037363A1 (de) * 1990-04-09 1991-10-10 Europ Lab Molekularbiolog 2-0-alkylnukleotide sowie polymere, die solche nukleotide enthalten
US5470967A (en) * 1990-04-10 1995-11-28 The Dupont Merck Pharmaceutical Company Oligonucleotide analogs with sulfamate linkages
US5166195A (en) * 1990-05-11 1992-11-24 Isis Pharmaceuticals, Inc. Antisense inhibitors of the human immunodeficiency virus phosphorothioate oligonucleotides
WO1991018997A1 (en) * 1990-05-25 1991-12-12 Gilead Sciences, Inc. Sequence-specific nonphotoactivated crosslinking agents which bind to the major groove of duplex dna
US5138045A (en) * 1990-07-27 1992-08-11 Isis Pharmaceuticals Polyamine conjugated oligonucleotides
US5378825A (en) * 1990-07-27 1995-01-03 Isis Pharmaceuticals, Inc. Backbone modified oligonucleotide analogs
US5541307A (en) * 1990-07-27 1996-07-30 Isis Pharmaceuticals, Inc. Backbone modified oligonucleotide analogs and solid phase synthesis thereof
US5386023A (en) * 1990-07-27 1995-01-31 Isis Pharmaceuticals Backbone modified oligonucleotide analogs and preparation thereof through reductive coupling
US5223618A (en) * 1990-08-13 1993-06-29 Isis Pharmaceuticals, Inc. 4'-desmethyl nucleoside analog compounds
US5218105A (en) * 1990-07-27 1993-06-08 Isis Pharmaceuticals Polyamine conjugated oligonucleotides
ATE154246T1 (de) * 1990-07-27 1997-06-15 Isis Pharmaceuticals Inc Nuklease resistente, pyrimidin modifizierte oligonukleotide, die die gen-expression detektieren und modulieren
US5489677A (en) * 1990-07-27 1996-02-06 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleoside linkages containing adjacent oxygen and nitrogen atoms
ES2259177T3 (es) * 1990-08-13 2006-09-16 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotidos modificados en el azucar que detectan y modulan la expresion genica.
HUT69956A (en) * 1990-08-14 1995-09-28 Isis Pharmaceuticals Inc Methode for inhibition of influenza virus by antiseuse oligonucleotides
US5442049A (en) * 1992-11-19 1995-08-15 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides for modulating the effects of cytomegalovirus infections
DE69126710T2 (de) * 1990-08-16 1998-01-15 Isis Pharmaceutical, Inc., Carlsbad, Calif. Oligonukleotide zur modulation der effekte von cytomegalovirusinfektionen
US5214134A (en) * 1990-09-12 1993-05-25 Sterling Winthrop Inc. Process of linking nucleosides with a siloxane bridge
JPH06505704A (ja) * 1990-09-20 1994-06-30 ギリアド　サイエンシズ，インコーポレイテッド 改変ヌクレオシド間結合
US5242906A (en) * 1991-04-22 1993-09-07 University Of North Carolina At Chapel Hill Antisense oligonucleotides against Epstein-Barr virus
WO1994008003A1 (en) * 1991-06-14 1994-04-14 Isis Pharmaceuticals, Inc. ANTISENSE OLIGONUCLEOTIDE INHIBITION OF THE ras GENE
US5582986A (en) * 1991-06-14 1996-12-10 Isis Pharmaceuticals, Inc. Antisense oligonucleotide inhibition of the ras gene
ES2138972T3 (es) * 1991-06-14 2000-02-01 Isis Pharmaceuticals Inc Inhibicion por oligonucleotidos antisentido del gen ras.
US5576302A (en) * 1991-10-15 1996-11-19 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotides for modulating hepatitis C virus having phosphorothioate linkages of high chiral purity
US5359044A (en) * 1991-12-13 1994-10-25 Isis Pharmaceuticals Cyclobutyl oligonucleotide surrogates
US5464746A (en) * 1991-12-17 1995-11-07 Abbott Laboratories Haptens, tracers, immunogens and antibodies for carbazole and dibenzofuran derivatives
US5543507A (en) * 1992-03-05 1996-08-06 Isis Pharmaceuticals, Inc. Covalently cross-linked oligonucleotides
US5434257A (en) * 1992-06-01 1995-07-18 Gilead Sciences, Inc. Binding compentent oligomers containing unsaturated 3',5' and 2',5' linkages
ATE299509T1 (de) * 1992-07-23 2005-07-15 Isis Pharmaceuticals Inc Neue 2'-o-alkyl-nukleoside und -phosphoramidite, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendungen
US5523389A (en) * 1992-09-29 1996-06-04 Isis Pharmaceuticals, Inc. Inhibitors of human immunodeficiency virus
GB9304618D0 (en) * 1993-03-06 1993-04-21 Ciba Geigy Ag Chemical compounds
US5571902A (en) * 1993-07-29 1996-11-05 Isis Pharmaceuticals, Inc. Synthesis of oligonucleotides
US5510239A (en) * 1993-10-18 1996-04-23 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonucleotide modulation of multidrug resistance-associated protein
US5563255A (en) * 1994-05-31 1996-10-08 Isis Pharmaceuticals, Inc. Antisense oligonucleotide modulation of raf gene expression
US5510476A (en) * 1994-07-07 1996-04-23 Isis Pharmaceuticals, Inc. Carbocation scavenging during oligonucleotide synthesis
US5681940A (en) * 1994-11-02 1997-10-28 Icn Pharmaceuticals Sugar modified nucleosides and oligonucleotides
US6127533A (en) * 1997-02-14 2000-10-03 Isis Pharmaceuticals, Inc. 2'-O-aminooxy-modified oligonucleotides

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