JP2021036883A - キメラ抗原受容体 - Google Patents
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Abstract
Description
a)哺乳動物から免疫細胞を単離すること(場合により、前記免疫細胞はT細胞である);
b)単離された免疫細胞(場合により、T細胞)を、本明細書に記載のCARをコードする核酸でトランスフェクトまたは形質導入すること;および
c)場合により、トランスフェクションまたは形質導入後にCAR発現細胞(場合により、CAR発現T細胞)を単離し、および/または拡大培養すること
を含んでなる、本明細書に開示されるCARを発現する細胞の作製方法が提供される。
以下、本開示の実施形態を図面に関して説明する。
本明細書では、i)所定の抗原に結合し得る細胞外ドメイン、ii)膜貫通ドメイン、およびiii)細胞質共刺激ドメインおよび/またはインターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインから選択される1以上の細胞内シグナル伝達ドメインと外因性STAT3関連モチーフを含んでなるCD3ζ細胞内シグナル伝達ドメインとを含んでなる細胞内セグメント(ここで、前記細胞内セグメントは、内因性のまたは外因性JAK結合モチーフおよびSTAT5関連モチーフを含んでなる)を含んでなるCARが開示される。ある実施形態では、これらのドメインは、場合により、N末端から始まって以上の順序で、直接的または間接的に融合される。ある実施形態では、細胞内セグメント内のこれらのドメインは、逆の順序で融合される。
本開示のCARに関して使用される「所定の抗原に結合し得る細胞外ドメイン」は、標的抗原と結合し得るタンパク質性分子またはその一部を含んでなるドメインであり、例えば、抗体の抗原結合ドメインおよび受容体のリガンド結合ドメインが含まれる。このドメインは、細胞表面に存在する抗原に結合して相互作用し、それにより、CARを発現する細胞に対する特異性を付与する。例えば、本開示のCARに関して使用される細胞外ドメインは、抗体(例えば、H鎖およびL鎖)の可変領域、一本鎖およびその結合フラグメントもしくはTCR(TCRα、TCRβ、TCRγ、TCRδ)を含んでなり、および/またはそれに由来し、あるいはCD4エクトドメイン、CD8α、CD8β、CD11A、CD11B、CD11C、CD18、CD29、CD49A、CD49B、CD49D、CD49E、CD49F、CD61、CD41、および/またはCD51に由来する。これらのタンパク質の全領域を使用してもよい。他方、抗原またはリガンドに結合し得るドメイン、例えば、抗体Fabフラグメント、抗体可変領域[H鎖のV領域(VH)およびL鎖(VL)のV領域]または受容体の細胞外リガンド結合ドメインを使用することができる。特に、ある実施形態では、一本鎖可変フラグメント(scFv)を使用することができる。例えば、CD4エクトドメインは、HIV感染細胞を認識することができる。
本開示によるCARの細胞内セグメントは、1以上の細胞内シグナル伝達ドメインを含んでなり得、同じ分子内に存在する細胞外ドメインがそのコグネイト抗原/リガンドと結合(相互作用)する際に細胞にシグナルを伝達し得る、タンパク質性分子である。
と、CD3ζの細胞内シグナル伝達ドメインが、場合によりN末端側からこの順序で連結されたものを含んでなるCARも含む。例えば、CAR細胞内セグメントは、CD3ζの細胞内シグナル伝達ドメインのC末端側にIL受容体の細胞質ドメインを含んでなり、すなわち、それは、CD3ζの細胞内シグナル伝達ドメインとIL受容体の細胞質ドメインは、N末端側からこの順序で連結されたものを含んでなる。
本開示のCARは、膜貫通ドメインを含んでなる。膜貫通ドメインは、天然ポリペプチドに由来してもよく、または人工的に設計されてもよい。天然ポリペプチド由来の膜貫通ドメインは、膜結合または膜貫通タンパク質から得ることができる。例えば、T細胞受容体αまたはβ鎖、CD3ζ鎖、CD28、CD3ε、CD45、CD4、CD5、CD8、CD9、CD16、CD22、CD33、CD37、CD64、CD80、CD86、CD134、CD137、ICOS、CD154、またはGITRの膜貫通ドメインが使用可能である。人工的に設計された膜貫通ドメインは、主として、ロイシンおよびバリンなどの疎水性残基を含んでなるポリペプチドである。例えば、フェニルアラニン、トリプトファンおよびバリンのトリプレットが合成膜貫通ドメインの各末端に見られ得る。場合により、短鎖オリゴペプチドリンカーまたはポリペプチドリンカー、例えば、2〜10アミノ酸長のリンカーを、本明細書に記載の膜貫通ドメインと細胞内セグメントの間に配置することができる。特に、グリシン−セリン連続配列を有するリンカー配列が使用可能である。
本開示は、本明細書に記載のCARをコードする核酸を提供する。CARをコードする核酸は、示されたCARのアミノ酸配列から常法により容易に作製することができる。アミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列は、各ドメインのアミノ酸配列に関する上述のNCBI RefSeq IDまたはGenBank受託番号から取得することができ、標準的な分子生物学的および/または化学的手順を用いて本開示の核酸を作製することができる。例えば、ヌクレオチド配列に基づいて核酸を合成することができ、cDNAライブラリーからポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を用いて得られたDNAフラグメントを組み合わせることによって本開示の核酸を作製することができる。
本開示のCARを発現する細胞を生産するための方法は、本明細書に記載のCARをコードする核酸を細胞に導入する工程を含む。この工程は、ex vivoで行われる。例えば、細胞を、本開示のCARを発現する細胞を生産するようにex vivoにて本開示の核酸を運ぶウイルスベクターまたは非ウイルスベクターで形質転換することができる。
a)哺乳動物から免疫細胞を単離すること;
b)単離された免疫細胞、場合により、単離されたT細胞を、本明細書に開示されるCARをコードする核酸でトランスフェクトまたは形質導入すること;および
c)場合により、CAR発現細胞、場合により、CAR発現T細胞を単離し、および/または拡大培養すること
を含んでなる、本明細書に開示される細胞の作製方法である。
本開示のCARを発現する細胞は、本明細書に記載のCARをコードする核酸が本明細書に記載の生産方法によって導入および発現された細胞である。
抗CD19キメラ抗原受容体(CAR)構築物
図1に示されるように、FMC63由来一本鎖可変フラグメント(scFv)(Nicholson et al., 1997)が、CD28およびCD3ζ鎖(28−z、第二世代)、CD28、4−1BBおよびCD3ζ鎖(28−BB−z、第3世代)、またはCD28、内部欠失を伴うIL−2受容体β鎖の細胞質ドメイン、およびSTAT3結合のために外因性YXXQモチーフ(配列番号13)が導入されたCD3ζ鎖(28−IL2RB−z(YXXQ))に連結された。YXXQ(配列番号13)モチーフは、156〜158番においてCD3ζ鎖によりコードされているLeu−His−Met残基をTyr−Arg−Hisに置換することによって作製した。FMC63は、CD19クラスターに属すIgG2aマウスモノクローナル抗体である。オンコスタチンMをシグナルペプチドとして使用した。部位特異的変異誘発にはギブソンアセンブリ法を用いた。以下のプライマーを使用した:ACGCCTATCGCCATCAGGCCCTGC(配列番号26)、およびCTGATGGCGATAGGCGTCGTAGGTGT(配列番号27)。
抗CD19 CAR構築物による初代T細胞の形質導入効率を決定するために、末梢血CD3+ T細胞を、膜性型の抗CD3 mAb(クローンOKT3)、CD80、およびCD83(mOKT3/aAPC)(Butler et al.,2012)を発現する人工抗原提示細胞で刺激し、その後、レトロウイルスを用いて個々のCAR構築物で形質導入した。形質導入は連続3日繰り返した。mOKT3/aAPCでの初回刺激から7日後に、CAR形質導入T細胞をビオチン標識プロテインL、次いで、ストレプトアビジン−APCで染色した。染色されたT細胞を図2に示されるようにフローサイトメトリーにより分析した。種々のCAR構築物で形質導入したT細胞で形質導入効率は同等であった。独立した4回の実験の代表的データを示す。
抗CD19−CAR表面発現を、初代T細胞で発現されたCAR構築物の平均蛍光強度(MFI)を測定することにより比較した(n=4)(図3)。CAR表面発現は、28−BB−zおよび28−IL2RB−z(YXXQ) CAR T細胞では、28−z CAR T細胞に比べてやや低かった。統計的有意性は対応のあるt検定を用いて表した。エラーバーは標準偏差を示す。
28−IL2RB−z(YXXQ) CAR形質導入T細胞をサイトカイン不含培地で1日間休止させ、K562−CD19細胞で、エフェクター:標的(E:T)比2:1にて刺激した。リン酸化されたSTAT3およびSTAT5 CD8+ T細胞を固定/透過処理し、特異的mAbで染色し、図4に示されるように細胞内フローサイトメトリー分析により分析した。28−IL2RB−z(YXXQ)CARで操作されたT細胞は、STAT3およびSTAT5両方のリン酸化に段階的な増加を示した。3回の実験の代表的データを示す。
CAR形質導入T細胞を図4と同じ条件下、K562細胞またはCD19を安定発現するK562細胞(K562−CD19)で刺激し、リン酸化されたSTAT3およびSTAT5の発現を刺激後18時間に測定した。相対的平均蛍光強度(MFI)を、K562細胞と共培養した28−z CAR形質導入T細胞の平均MFI値(n=4)で除することにより計算した。図5に示されるように、28−IL2RB−z(YXXQ)CAR+ T細胞は、K562−CD19細胞と共培養した場合に、STAT3(P<0.01)およびSTAT5(P<0.05;対応のあるt検定)の有意に高いリン酸化を示し、CARがCD19特異的JAK−STAT経路の活性化を誘導したことを示す。
抗CD19 CAR構築物T細胞の形質導入および拡大培養のプロトコール
末梢CD3+ T細胞をmOKT3/aAPCで刺激し、レトロウイルスにより個々のCD19 CARで連続3日形質導入した。CAR形質導入T細胞を、IL−2 100IU/mLおよびIL−15 10ng/mLの存在下、照射済みのK562−CD19細胞またはK562細胞でE:T比2:1にて、示されている場合に週に1回刺激した(図6参照)。E:T比および形質導入期間の変動が想定され得る。例えば、mOKT3/aAPCで刺激したCD3+ T細胞は、E:T比10:1で連続3日形質導入することができる。
CAR形質導入T細胞の増殖倍率を図7に示す(n=4)。総てのCAR形質導入T細胞において2週間で100倍を超えるCD8+ T細胞の拡大増殖が得られた。28−BB−z CAR形質導入T細胞は、形質導入後に、28−z CAR形質導入T細胞に比べて有意に優れた増殖を示し(対応のあるt検定によりP<0.05)、一方、28−z CAR形質導入T細胞と28−IL2RB−z(YXXQ)CAR形質導入T細胞の間に差は無かった。
CAR形質導入T細胞を、照射済みのK562−CD19細胞を用いて、CD19特異的方法で刺激した。28−IL2RB−z(YXXQ)CARで形質導入したT細胞は、サイトカインの補充にかかわらずCD4+ T細胞とCD8+ T細胞の両方でより優れた増殖を示した。CAR+ T細胞の増殖倍率を図8に示す(n=4;統計的有意性は対応のあるt検定で評価した)。
CAR形質導入T細胞を照射済みK562細胞(対照)で刺激した。CAR形質導入T細胞の増殖倍率を図9に示す(n=4)。従前に示されるように、28−BB−zで形質導入されたT細胞は、28−z CAR形質導入T細胞に比べて抗原非依存的増殖を促進した(Milone et al., 2009)(CD8+ T細胞に対して対応のあるt検定によりP<0.05)。対照的に、28−IL2RB−z(YXXQ)CAR+ T細胞は、抗原特異的CD19刺激の不在下で28−z CAR T細胞を超える増殖利益を付与しなかった。
CAR形質導入T細胞を、図10に示されるように、毎週、照射済みK562−CD19細胞で2回刺激した。CAR+ T細胞の増殖倍率を示す(n=4)。28−IL2RB−z(YXXQ) CARで操作されたT細胞は、他のCAR形質導入T細胞に比べて増殖の向上を示した(CD8+ T細胞に対してP<0.05;対応のあるt検定)。
CARで操作されたT細胞を、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)で標識し、K562−CD19細胞で2:1比にて刺激した。刺激3日後の、28−z CAR形質導入T細胞に対するCAR形質導入CD4+またはCD8+ T細胞におけるCFSEの平均MFIを図11に示す(n=4)。各ドナーにおいて28−z CAR形質導入T細胞におけるCFSEの強度を1とした。エラーバーは標準偏差を示す。統計的有意性は対応のあるt検定で評価した。28−IL2RB−z(YXXQ)CARで形質導入したT細胞は、有意に増強された細胞分裂を示した。
CAR形質導入T細胞の生存率
CAR形質導入T細胞をK562−CD19細胞で2:1比にて刺激した。死細胞の頻度を刺激3日後にフローサイトメトリーにより評価した(n=4)(図12)。エラーバーは標準偏差を表す。28−IL2RB−z(YXXQ)CAR構築物で形質導入したT細胞は、抗原刺激時にアポトーシスの減少を示した。差の有意性は対応のあるt検定により評価した。図11および12に示されるデータは、CD19刺激時の28−IL2RB−z(YXXQ)CAR+ T細胞の増殖の優位性が細胞分裂の増加とアポトーシスの減少の両方から生じたことを示す。
CAR形質導入T細胞をK562−CD19で2:1比にて刺激した。CD4+およびCD8+ T細胞上の表面CD45RAおよびCD62Lを特異的mAbで染色し、刺激7日後にフローサイトメトリー分析を行った(図13)。4回の独立した実験の代表的データを示す。28−IL2RB−z(YXXQ)CARで形質導入したT細胞は、28−zまたは28−BB−z CAR+ T細胞に比べてCD45RA+ CD62L+ T細胞サブセットを維持していた。
CAR形質導入T細胞をK562−CD19で2:1比にて刺激した。CD45RA、CD62L、およびCD95表面発現を刺激7日後に分析した(n=4)(図14)。28−IL2RB−z(YXXQ)CAR形質導入T細胞は、CD45RA+ CD62L+ CD95+幹細胞様メモリーT細胞サブセットの有意に高い頻度を有した。統計的有意性は対応のあるt検定で評価した。
CAR形質導入T細胞におけるCD62L発現を図13および14に関して記載したように分析した。CAR形質導入CD4+およびCD8+ T細胞におけるCD62L発現の相対的MFIは、各MFIを28−z CAR形質導入T細胞の平均MFI値(n=4)で除することにより計算した。28−IL2RB−z(YXXQ) CAR形質導入T細胞は、他のCAR+ T細胞に比べて有意に高いCD62L発現レベルを示した(対応のあるt検定によりP<0.05)。
CAR形質導入T細胞をK562−CD19で1:1比にて刺激した。刺激1週間後、T細胞をmOKT3/aAPCで再刺激し、サイトカイン分泌は、特異的mAbによる染色の後に細胞内フローサイトメトリーで測定した。28−IL2RB−z(YXXQ)CAR+ T細胞は、28−zおよび28−BB−z CAR形質導入T細胞に比べてより多いIL−2を分泌した。有意性は対応のあるt検定により評価した。これらの結果は図15に示されるデータと一致し;28−IL2RB−z(YXXQ)CAR+ T細胞は、他のCAR T細胞に比べて、CD45RA+ CD62L+ CD95+幹細胞様メモリーT細胞サブセットを優先的に維持した。
CAR形質導入T細胞を、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)で標識した照射済み標的細胞(K562−CD19およびCD19+ Nalm−6細胞)とともにE:T比3:1にて6時間共培養した。培養中に残存したCFSE陽性生細胞のパーセンテージをフローサイトメトリー分析により決定した(n=3)。親K562細胞を対照として使用した。エラーバーは標準偏差を表す。統計的有意性は反復測定ANOVAで評価した。28−IL2RB−z(YXXQ)CAR形質導入T細胞は、CD19+細胞に対して、他のCAR形質導入T細胞と同等の溶解活性を示した。
ベクター構築
NFMC63−28Z CARは、28−z CARとも呼ばれ、Kochenderfer et al. (J Immunother. 2009 Sep;32(7):689-702)により最初に構築されたFMC63−28Z CARのシグナル配列をオンコスタチンMシグナル配列(NCBI RefSeq:NP_065391.1、配列番号1のアミノ酸番号1〜25)で置換することにより作出された抗CD19キメラ抗原受容体である。コドンが最適化されたNFMC63−28Z CAR構築物はGeneart(登録商標)により合成し、pMXレトロウイルスベクター(Int J Hematol. 1998, 67:351-9)にクローニングした。NFMC63−28Z CARのアミノ酸配列は配列番号1に示される。NFMC63−28−d2RbZ CARは、NFMC63−28Z CARのCD28ドメインとCD3ζドメインの間に、box−1モチーフおよび隣接チロシン残基−510を含むヒトIL−2受容体β鎖の細胞質ドメインの末端切断フラグメント(例えば、NCBI RefSeq:NP_000869.1のアミノ酸番号266〜337および530〜551、配列番号5)を有するキメラ抗原受容体である。NFMC63−28−d2RbZ CARのアミノ酸配列を配列番号2に示す。NFMC63−28−21RaZ CARは、NFMC63−28Z CARのCD28ドメインとCD3ζドメインの間に、ヒトIL−21受容体α鎖の全長細胞質ドメイン(NCBI RefSeq:NP_068570.1のアミノ酸番号256〜538、配列番号6)を有するキメラ抗原受容体である。NFMC63−28−21RaZ CARのアミノ酸配列を配列番号3に示す。NFMC63−28Z−21Ra CARは、NFMC63−28Z CARのN末端とともにヒトIL−21受容体α鎖の全長細胞質ドメインを有するキメラ抗原受容体である。NFMC63−28Z−21Ra CARのアミノ酸配列を配列番号4に示す。CARの構造を図21に示す。FMC63−28−d2RbZ CAR、NFMC63−28−21RaZ CARおよびNFMC63−28Z−21Ra CARをコードする核酸を、各細胞質ドメインをコードするDNAをpMXレトロウイルスベクター中のNFMC63−28Z CAR構築物に挿入することにより構築した。
PG13細胞株およびphoenix−eco細胞株を10%ウシ胎児血清(FCS)および50μg/mLゲンタマイシン(Gibco)を添加したDMEM培地で培養した。
細胞を、RetroNectin結合ウイルス感染法(J Biochem. 2001 Sep;130(3):331-4)を用いて形質導入した。この方法では、レトロウイルス溶液をRetroNectin(登録商標、タカラバイオ)コーティングプレートに予め付与し、32℃、2,000gで2時間遠心分離した後、ウシ血清アルブミンを含むリン酸緩衝生理食塩水ですすいだ。Jurkat細胞を、ウイルスを予め付与したプレートに適用した。この遺伝子導入を2回行った。
CAR形質導入Jurkat細胞およびaAPCを計数し、氷上で混合した。4℃で回転沈降させた後、細胞を37℃の湯浴でインキュベートした。インキュベーション後、細胞を1.5%パラホルムアルデヒド中で固定し、100%メタノールで透過処理を施した。その後、細胞を以下の抗体で染色した;Phospho−p44/42 MAPキナーゼ(Cell signaling technology、クローンE10)、Phospho−STAT3(pY705)(BD Phosflow、クローン4/P−STAT3)、およびPhospho−STAT5(pY694)(BD Phosflow、クローン47/P−STAT5)。フローサイトメトリーの取得はBD FacsCanto II(BD Biosciences)を用いて行い、分析はFlowJo(Treestar)を用いて行った。
マウスにおけるインビボ抗白血病効果
ヒトCD19+ NALME B白血病細胞を保持する免疫不全NSGマウス を28−IL2RB−z(YXXQ)抗CD19 CARまたは前世代CAR T細胞で処置した。
配列番号1:NFMC63−28Z
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
381−492:CD3ζの細胞内ドメイン
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
398−491:IL−2受容体β部分的細胞質ドメイン
499−610:CD3ζの細胞内ドメイン
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
381−663:IL−21受容体α全長細胞質ドメイン
671−782:CD3ζの細胞内ドメイン
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
381−492:CD3ζの細胞内ドメイン
508−790:IL−21受容体α全長細胞質ドメイン
配列番号13−YXXQ
配列番号14−YLPSNID
配列番号15−YCTFP
配列番号16−YFFFH
配列番号17−YVTMS
配列番号18−YLPQE
配列番号19−KLGGSGP
配列番号20−YKAFS
配列番号21−YKPFQ
配列番号22−YRHQ
配列番号23−YXPQ
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
381−474:IL−2受容体β部分的細胞質ドメイン
475−586:外因性STAT3関連モチーフYXXQを含んでなるCD3ζの細胞内ドメイン
26−270:FMC63 SCFV
274−312:CD28部分的細胞外ドメイン
313−339:CD28膜貫通ドメイン
340−380:CD28細胞質ドメイン
381−474:IL−2受容体β部分的細胞質ドメイン
475−586:外因性STAT3関連モチーフYRHQを含んでなるCD3ζの細胞内ドメイン
配列番号27−CTGATGGCGATAGGCGTCGTAGGTGT
配列番号28−YFFF
配列番号29−YCTF
配列番号30−YLRQ
配列番号31−YFKQ
配列番号32−YLPQ
配列番号33−YMPQ
配列番号34−YVLQ
配列番号35−YQPQ
配列番号36−YKPQ
配列番号37−YRPQ
配列番号38−YTHQ
配列番号39−YLKQ
配列番号40−YHNQ
配列番号41−YXXL
配列番号42−IDGGGGSGGGGSGGGGS
配列番号43−YLSL
Claims (27)
- i)所定の抗原に結合し得る細胞外ドメインと、ii)膜貫通ドメインと、iii)a)インターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインおよび/または細胞質共刺激ドメインから選択される1以上の細胞内シグナル伝達ドメインと、b)外因性シグナル伝達転写活性化因子(STAT)3関連モチーフを含んでなるCD3ζ細胞内シグナル伝達ドメインとを含んでなる細胞内セグメントとを含んでなり、前記細胞内セグメントが内因性または外因性JAK結合モチーフおよびSTAT5関連モチーフを含んでなる、キメラ抗原受容体(CAR)。
- 前記外因性STAT3関連モチーフが、YXXQ(配列番号13)である、請求項1に記載のCAR。
- 前記外因性STAT3関連モチーフが、YRHQ(配列番号22)である、請求項1または2に記載のCAR。
- 前記外因性STAT3関連モチーフが、CARのC末端から100アミノ酸残基内に導入される、請求項1〜3のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記1以上の細胞内シグナル伝達ドメインが、インターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインであるかまたはそれを含んでなる、請求項1〜4のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記インターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインが、JAK結合モチーフおよびSTAT5関連モチーフを含んでなる前記細胞質ドメインの末端切断フラグメントである、請求項1〜5のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記STAT5関連モチーフが、YXXL(配列番号41)である、請求項1〜6のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記1以上の細胞内シグナル伝達ドメインが、細胞質共刺激ドメインであるかまたはそれを含んでなる、請求項1〜7のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記細胞質共刺激ドメインが、CD28、CD2、CD4、CD5、CD8α、CD8β、CD134またはCD137の細胞質ドメインである、請求項1〜8のいずれか一項に記載のCAR。
- i)所定の抗原に結合し得る細胞外ドメインと、ii)膜貫通ドメインと、iii)インターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインおよび場合により少なくとも1つの補足的細胞質ドメインを含む1以上の細胞内シグナル伝達ドメインを含んでなる細胞内セグメントとを含んでなるCAR。
- 前記インターロイキン受容体鎖の細胞質ドメインが、チロシンキナーゼ関連モチーフおよびSTAT関連モチーフを含んでなる前記細胞質ドメインの末端切断フラグメントである、請求項10に記載のCAR。
- 前記少なくとも1つの補足的細胞質ドメインが、CD3ζの細胞内シグナル伝達ドメインおよび/またはCD28の細胞質共刺激ドメインである、請求項10または11に記載のCAR。
- 前記インターロイキン受容体鎖が、インターロイキン2受容体(IL−2R)β鎖およびインターロイキン21受容体(IL−21R)α鎖からなる群から選択される、請求項1〜12のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記細胞外ドメインが、所定の抗原に結合し得る抗体の抗原結合領域である、請求項1〜13のいずれか一項に記載のCAR。
- 前記抗体の抗原結合領域が、前記抗体の一本鎖可変フラグメントである、請求項14に記載のCAR。
- 前記膜貫通ドメインが、CD28膜貫通ドメインおよびCD8膜貫通ドメインからなる群から選択される、請求項1〜15のいずれか一項に記載のCAR。
- 請求項1〜16のいずれか一項に記載のCARをコードするポリヌクレオチドを含んでなる核酸。
- 前記核酸がCARをコードし、さらにN末端にシグナルペプチドをコードする、請求項17に記載の核酸。
- 請求項17または18に記載の核酸を含んでなるベクター。
- 請求項1〜16のいずれか一項に記載のCARを発現し、および/または請求項17もしくは18の核酸または請求項19のベクターでトランスフェクトまたは形質導入された細胞。
- 請求項1〜20いずれか一項に記載のCAR、核酸、ベクターまたは細胞と場合により薬学上許容可能な賦形剤とを含んでなる組成物。
- 請求項17もしくは18に記載の核酸または請求項19に記載のベクターで細胞を形質導入する、請求項20に記載の細胞の作製方法。
- a)哺乳動物から免疫細胞を単離すること(場合により、前記免疫細胞はT細胞である);
b)単離された免疫細胞(場合により、T細胞)を、請求項1〜16のいずれか一項に記載のCARをコードする核酸でトランスフェクトまたは形質導入すること;および
c)場合により、トランスフェクションまたは形質導入後にCAR発現細胞(場合により、CAR発現T細胞)を単離し、および/または拡大培養すること
を含んでなる、請求項22に記載の細胞の作製方法。 - 疾患を治療もしくは予防するための、および/または対象において所定の抗原を発現する細胞の数を減らすための、請求項1〜21のいずれか一項に記載のCAR、核酸、ベクター、細胞または組成物の使用。
- 対象において疾患を治療する方法であって、それを必要とする対象に有効量の請求項20または21に記載の細胞または組成物を投与することを含んでなる、方法。
- 哺乳動物において抗腫瘍免疫を提供するための、請求項24または25に記載の使用または方法。
- 対象において所定の抗原を発現する細胞の数を減らす方法であって、それを必要とする対象に有効量の請求項20に記載の細胞または所定の抗原と特異的に結合する前記細胞を含んでなる組成物を投与することを含んでなる、方法。
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