JP2004292315A

JP2004292315A - Ｔａｋ１阻害剤

Info

Publication number: JP2004292315A
Application number: JP2000379995A
Authority: JP
Inventors: Masayuki Tsuchiya; 政幸土屋; Toshihiko Otomo; 俊彦大友; Koichiro Ono; 浩一郎小野; Masahiko Matsumoto; 雅彦松本; Tatsuya Ito; 達也伊藤
Original assignee: Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Current assignee: Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Priority date: 2000-12-14
Filing date: 2000-12-14
Publication date: 2004-10-21
Also published as: WO2002048135A1; AU2002222627A1

Abstract

【課題】ＴＡＫ１阻害剤を提供すること。
【解決手段】８位及び９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類を有効成分とする、ＴＡＫ１阻害剤またはＴＡＫ１活性化阻害剤。
【選択図】図１

Description

【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ＴＡＫ１阻害剤、およびＴＡＫ１活性化阻害剤に関する。
【０００２】
【従来の技術】
細胞内のシグナル伝達に関与する一連の系として、マイトジェン−活性化プロテインキナーゼ（Ｍｉｔｏｇｅｎ−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＰｒｏｔｅｉｎＫｉｎａｓｅ；ＭＡＰＫ）系が知られている。ＭＡＰＫ系は受容体のシグナルを種々の作用に転換する保存された真核細胞性シグナル伝達系である。ＭＡＰＫ系は３種類のプロテインキナーゼ、すなわちＭＡＰＫＫＫ（Ｍｉｔｏｇｅｎ−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＰｒｏｔｅｉｎＫｉｎａｓｅＫｉｎａｓｅＫｉｎａｓｅ）、ＭＡＰＫＫ（Ｍｉｔｏｇｅｎ−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＰｒｏｔｅｉｎＫｉｎａｓｅＫｉｎａｓｅ）、ＭＡＰＫ（Ｍｉｔｏｇｅｎ−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＰｒｏｔｅｉｎＫｉｎａｓｅ）を含む。ＭＡＰＫはＭＡＰＫＫによるリン酸化で活性化される。ＭＡＰＫＫはＭＡＰＫＫＫによるリン酸化で活性化される（ＴｒｅｎｄｓＢｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．（１９９３）１８，１２８；ＴｒｅｎｄｓＢｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．（１９９３）１９，２３６；ＴｒｅｎｄｓＢｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．（１９９３）１９，４７０；Ｃｅｌｌ（１９９５）８０，１７９）。
【０００３】
細胞内のシグナル伝達系において機能するＭＡＰＫＫＫファミリーの一つであるＴＡＫ１（ＴＧＦ−β−ＡｃｔｉｖａｔｅｄＫｉｎａｓｅ１）はＹａｍａｇｕｃｈｉ，Ｋ．らにより同定された蛋白質であり（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９５）２７０，２００８）、ＴＧＦ−βのシグナル伝達に関与しＴＧＦ−βにより活性化されることが明らかになっている。また、ＴＡＫ１に結合し、ＴＡＫ１を活性化するＴＧＦ−βのシグナル伝達系に関与する蛋白質であるＴＡＢ１（ＴＡＫ１ＢｉｎｄｉｎｇＰｒｏｔｅｉｎ１）がＳｈｉｂｕｙａ，Ｈ．らにより同定された（Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９６）２７２，１１７９−１１８２）。ＴＡＢ１はＴＡＫ１に結合してＴＡＫ１のキナーゼ活性を活性化し、ＭＡＰＫＫであるＭＫＫ４やＭＫＫ３／６の活性化を通じ、ｃ−ＪｕｎＮ−ｔｅｒｍｉｎａｌｋｉｎａｓｅ（ＪＮＫ）やｐ３８ＭＡＰＫの活性化を誘導し、ＴＧＦ−β等のシグナルを伝達する（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，（１９９６）２７１，１３６７５−１３６７９；Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，（１９９７）２７２，８１４１−８１４４）。さらに、活性化ＴＡＫ１の発現により心肥大、さらには心不全を誘導することが明らかとなった（ＮａｔｕｒｅＭｅｄ．，（２０００）６，５５６−５６３）。
また最近になり、ＴＡＫ１がインターロイキン−１（ＩＬ−１）と腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）の刺激等の各種ストレスによっても活性化されることが明らかになり（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９７）２７２，８１４１−８１４４；Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，（１９９９）２７４，１０６４１−１０６４８）、ＴＡＫ１はＩＬ−１のシグナル伝達系においてＭＡＰＫカスケードを介したＪＮＫの活性化、ならびにｎｕｃｌｅａｒｆａｃｔｏｒ−κＢ（ＮＦ−κＢ）−ｉｎｄｕｃｉｎｇｋｉｎａｓｅ（ＮＩＫ）、ＩκＢｋｉｎａｓｅｓ（ＩＫＫ）の活性化を通じたＮＦ−κＢの活性化に関与することが明らかになった（Ｎａｔｕｒｅ（１９９９）３９８，２５２−２５６；Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ，（２０００）５，６４９−６５８）。さらに、ＬＰＳ刺激によりＴＡＫ１が活性化され、ＮＦ−κＢの活性化を誘導し、ＬＰＳのシグナル伝達への関与が明らかになった（ＦＥＢＳＬｅｔｔ．，（２０００）４６７，１６０−１６４）。
ＴＧＦ−βは多くの細胞機能を制御する多機能因子であり、その一つとしてＴＧＦ−βは様々な傷害に伴う組織の修復および再生を司る（ＮｅｗＥｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．，（１９９４）３３１，１２８６−１２９２）。しかしながら、慢性化した傷害においてはＴＧＦ−βの異常産生により、組織の修復、再生のバランスが崩れ病的な線維化を生ずることがある。ＴＧＦ−βは細胞外マトリックス蛋白質の産生を亢進させ、細胞外マトリックス分解酵素の合成の阻害、ならびに細胞外マトリックス分解酵素の阻害因子を誘導する事により、種々の臓器、例えば肝臓、腎臓等の線維症の主要な原因因子として作用することが明らかになっている（ＮｅｗＥｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．，（１９９４）３３１，１２８６−１２９２）。また、その他の作用としては、細胞増殖阻害活性（Ｃｅｌｌ（１９９０）６３，２４５−２４７）、単球遊走活性（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，（１９８７）８４，５７８８−５７９２）、生理活性物質誘導活性（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，（１９８７）８４，５７８８−５７９２）、βアミロイド蛋白質沈着作用（Ｎａｔｕｒｅ，（１９９７）３８９，６０３−６０６）が知られている。肝線維症、肺線維症、糸球体腎炎、糖尿病性腎症、腎硬化症、血管再狭窄、ケロイド症、強皮症、眼科手術後の瘢痕化、増殖性網膜症、自己免疫疾患およびアルツハイマー症などの疾病とＴＧＦ−βの異常産生の関連が報告されている。
ＩＬ−１やＴＮＦ等の炎症性サイトカインは、異物の侵入による炎症などの生体防御因子として重要な役割を果たしているが、この反応が過剰に発現すると、逆に様々な病態を引き起こす事が知られている。ＩＬ−１は免疫及び炎症反応において重要なメディエーターであると考えられ、様々な細胞に働いて、それぞれの細胞機能を亢進する。その結果、Ｔ、Ｂリンパ球の分化及び増殖、ＩＬ−２やコロニー刺激因子、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＴＮＦ等の炎症性サイトカインの産生、発熱・睡眠・食欲低下・低血圧の誘導、脳下垂体からのホルモン分泌亢進、コラゲナーゼの産生亢進による関節軟骨の破壊、プロスタグランジン産生亢進による痛覚閾値の低下をそれぞれ誘導し、さらにランゲルハンス島のβ細胞の破壊、骨髄性白血病細胞の増殖、関節炎、腸炎等の炎症への関与、動脈硬化プラークの形成など多彩な生理反応への関与が明らかになっている。また、ＩＬ−１の過剰産生が原因と考えられている疾病として慢性関節リウマチ、骨粗鬆症、敗血症、炎症性腸疾患、インスリン依存性糖尿病、動脈硬化症、乾癬、喘息、アルコール性肝炎等が知られている（ＴＩＰＳ，（１９８８）９，１７１−１７７；ＮｅｗＥｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．，（１９９３）３２８，１０６−１１３；Ｂｌｏｏｄ，（１９９６）８７，２０９５−２１４７）。
また、ＴＮＦαは生体内に侵入した異物抗原との接触により活性化されたマクロファージ等の細胞より放出され、マクロファージの走化性、貪食能を亢進させるばかりでなく、Ｔリンパ球のＨＬＡ抗原の発現を増強し、またＩＬ−２受容体の発現の増加を通じてＴ細胞の機能を賦活化、さらに好中球の走化性の亢進、活性化を誘導し、異物の除去に働く。また、炎症局所の線維芽細胞に対しては増殖促進に働き、その組織修復を行っている。さらに、ＴＮＦαはこれらの細胞より種々のサイトカインの発現を亢進させ、ＩＬ−１と同様にサイトカインネットワークの形成に関与している。しかし、これらの反応が過剰に発現すると増悪因子として働くことがあり、ＴＮＦαの過剰産生が知られている疾患として、敗血症、慢性関節性リウマチ、炎症性腸疾患、潰瘍性大腸炎、クローン病、ＳＬＥ、川崎病等が報告されている（日本臨床、（１９９９）５７、Ｓｕｐｐｌ：７９４−７９７）。
従って、ＴＡＫ１キナーゼ活性もしくはＴＡＫ１の活性化を抑制する物質が見出されれば、ＴＡＫ１がシグナル伝達に関与する事が知られているＴＧＦ−β、ＩＬ−１、ＬＰＳ、ＴＮＦ等が原因因子として知られている各種疾病、並びに心肥大、心不全の治療および予防薬の開発につながると考えられる。しかしながら、現在までにＴＡＫ１キナーゼ阻害剤、もしくはＴＡＫ１活性化阻害剤は知られていない。
ところで、ゼアラレノン類は、これまでに種々の化合物が報告されており、また、種々の作用、例えば、サイトカイン、特にＩＬ−１の産生抑制（特開平８−４０８９３号公報、欧州第６０６０４４Ａ号公報など）、チロシンキナーゼ阻害（ＷＯ９６／１３２５９号公報）、ＭＥＫ１キナーゼ阻害に基づくＴ細胞の活性化及び活性化に伴う増殖阻害（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３７；９５７９−９５８５，１９９８）、ＪＮＫ／ｐ３８活性化の阻害（Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２５７；１９−２３，１９９９）、ＭＥＫ阻害（Ｊ．Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ，５２；１０８６−１０９４，１９９９）、ＬＰＳ刺激後のサイトカイン（ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＴＮＦ−α）産生阻害（Ｉｎｔ．Ｊ．Ｉｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２１；７９９−８１４，１９９９）、ＬＰＳ、ＩＦＮ−γ刺激後のサイトカイン（ＩＬ−１β、ＴＮＦ−α）産生抑制（Ｃｙｔｏｋｉｎｅ，８；７５１−７６１，１９９６）など、についても報告されている。
しかし、これまで、ゼアラレノン類がＴＡＫ１あるいはＴＡＫ１活性化を阻害する作用を有することは知られていない。また、８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類が特に優れた該作用を有することも全く知られていない。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、ＴＡＫ１阻害剤、あるいは、ＴＡＫ１活性化阻害剤を提供することである。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意研究を重ねた結果、ある種のゼアラレノン類が優れたＴＡＫ１キナーゼ阻害活性を持ち、また、ＴＡＫ１の活性化を介したＴＧＦ−βやＩＬ−１等のシグナル伝達を阻害することを見出し、この知見に基づき本発明を完成した。
【０００６】
すなわち、本発明は、８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類を有効成分とする、ＴＡＫ１阻害剤またはＴＡＫ１活性化阻害剤を提供する。
【０００７】
【発明の実施の形態】
本発明において、８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類には、ゼアラレノン（Ｚｅａｒａｌｅｎｏｎｅ：下記式（Ａ））またはゼアラレノール（Ｚｅａｒａｌｅｎｏｌ：下記式（Ｂ））
【０００８】
【化３】

【０００９】
から誘導される化合物であって、その８位および９位のいずれにも水酸基（−ＯＨ）を有する化合物が含まれる。これら化合物には、光学異性体、幾何異性体が存在し得るがそれらのいずれも、およびそれら任意の割合の混合物も本発明に含まれる。
【００１０】
８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類としては、具体的には、例えば、以下に示されるような化合物が含まれる：
【００１１】
【化４】

【００１２】
【化５】

【００１３】
これら化合物（１）〜（１３）は、自体公知の化合物であり、文献（例えば、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｉｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．，２１：７９９−８１４，１９９９；Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，４３：２３３９−２３４３，１９７８；Ｃｈｅｍ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｕｌｌ．４１：３７３−３７５，１９９３；Ｊ．Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ，５２：１０７７−１０８５，１９９９；Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．，２５７：１９−２３，１９９９；Ｃｙｔｏｋｉｎｅ，８：７５１−７６１，１９９６；Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｃｏｍｍｕｎ．，７：３０１−３０８，１９９６；日本特許公開平８−４０８９３号公報；欧州特許公開第６０６０４４Ａ号公報；Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３７：９５７９−９５８５，１９９８など）に記載の方法により調製することができる。
【００１４】
８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類としては、化合物（１）〜（１３）が好ましく、化合物（１）〜（３）がさらに好ましく、化合物（１）が特に好ましい。
【００１５】
本発明において、ＴＡＫ１阻害とは、ＴＡＫ１のキナーゼ活性を阻害することを意味する。ＴＡＫ１の阻害活性は、例えば、後述の実施例２に記載された方法により測定することができる。
【００１６】
ＴＡＫ１活性化阻害とは、ＴＡＫ１を介した細胞内シグナル伝達を阻害することを意味する。ＴＡＫ１阻害活性化阻害作用は、例えば、後述の実施例３に記載された方法により測定することができる。
【００１７】
疾病の原因としてＴＡＫ１の活性化が関与する疾病には、ＴＡＫ１の活性化を介した細胞内のシグナル伝達系に関与するＴＧＦ−β、ＩＬ−１、ＬＰＳ、ＴＮＦ等を原因因子とする各種疾病、並びに、心肥大、心不全などが含まれる。
【００１８】
本発明のＴＡＫ１キナーゼ阻害剤またはＴＡＫ１活性化阻害剤の投与経路、投与量は、患者の体型、年齢、体調、疾患の種類や度合い、発症後の経過時間等により、適宜選択することができるが、非経口投与の場合には、一般に０．０２μｇ〜２ｍｇ／体重ｋｇ／日の用量で、経口投与の場合には、一般に５μｇ〜５００ｍｇ／体重ｋｇ／日の用量で効果が期待できる。
【００１９】
本発明のＴＡＫ１阻害剤またはＴＡＫ１活性化阻害剤は、１種もしくはそれ以上の薬学的に許容し得る希釈剤、湿潤剤、乳化剤、分散剤、補助剤、防腐剤、緩衝剤、結合剤、安定剤などを含む薬学的組成物として、目的とする投与経路に応じ、適当な任意の形態にして投与することができる。
【００２０】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例によりなんら限定されるものではない。
【００２１】
【実施例】
ＴＡＫ１キナーゼ阻害活性の評価
（実施例１）化合物（１）〜（３）のＴＡＫ１キナーゼ阻害活性の検討
ＴＡＫ１キナーゼ活性はＴＡＫ１の自己リン酸化、ならびにＴＡＢ１のリン酸化を測定することで評価した。すなわち、ＴＡＫ１及びＴＡＢ１遺伝子を含有した組み換えバキュロウイルスベクター（ＷＯ９９／２１０１０号公報）をそれぞれ昆虫細胞Ｓｆ−９に共感染させ、３日間培養した。培養後、細胞をＰＢＳで洗浄し、３．０ｘ１０^７細胞／ｍＬとなるように抽出液（２０ｍＭＨＥＰＥＳ，ｐＨ７．４、１５０ｍＭＮａＣｌ、１２．５ｍＭ β−ｇｙｃｅｒｏｐｈｏｓｐｈａｔｅ、１．５ｍＭＭｇＣｌ_２、２ｍＭＥＧＴＡ、１０ｍＭＮａＦ、２ｍＭＤＴＴ、１ｍＭＮａ_３ＶＯ_４、１ｍＭＰＭＳＦ、２０μＭＡｐｒｏｔｉｎｉｎ、０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）に懸濁し細胞抽出液を調製した。細胞抽出液１０μＬに抗ＴＡＫ１抗体Ｍ−１７（ＳａｎｔａＣｒｕｚ社製）１００ｎｇ、及びＰｒｏｔｅｉｎＧ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（ＡｍｅｒｓｈａｍＰｈａｒｍａｃｉａ社製）１ μＬを加え、４℃でインキュベートした後、免疫沈降物を洗浄液（２０ｍＭＨＥＰＥＳ，ｐＨ７．４、５００ｍＭＮａＣｌ、１０ｍＭＭｇＣｌ_２）で３回洗浄、続いてキナーゼ溶液（１０ｍＭＨＥＰＥＳ，ｐＨ７．４、１ｍＭＤＴＴ、５ｍＭＭｇＣｌ_２）で２回洗浄し、ＴＡＫ１／ＴＡＢ１精製物を調製した。ＴＡＫ１／ＴＡＢ１精製物をキナーゼ溶液に再懸濁し、Ｍｕｌｔｉｓｃｒｅｅｎプレート（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）の各穴に２５μＬずつ加えた後、ＤＭＳＯに溶解した試験化合物を１μＬずつ加え、室温にて３０分間インキュベートした。続いて、１ウエル当たり０．１μＣｉとなるように［γ−^３３Ｐ］−ＡＴＰ（ＡｍｅｒｓｈａｍＰｈａｒｍａｃｉａ社製）を加えた溶液（１００ｍＭＭＯＰＳ，ｐＨ７．２、１０ｍＭＭｇＣｌ_２、２μＭＡＴＰ）を２５μＬずつ加え、３７℃にて３０分間インキュベートしキナーゼ反応を行った。反応停止液（５０％ＴＣＡ含有ＰＢＳ）を５０μＬずつ加え、さらに４℃にて１０分間インキュベートし、キナーゼ反応を停止した。フリーの^３３Ｐ−ＡＴＰを除去するために、０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０を含有するＰＢＳで５回洗浄し、５０μＬずつのＳｕｐｅｒｍｉｘ（Ｗａｌｌａｃ社製）を加え、さらに室温にて３０分間清置した後ＴＡＫ１及びＴＡＢ１に取り込まれた^３３Ｐ−ＡＴＰ量をｍｉｃｒｏ−ｂｅｔａにより測定することでＴＡＫ１キナーゼ活性を測定した。その結果、化合物（１）〜（３）は表１に示すようにＴＡＫ１キナーゼ活性を抑制し、特に化合物（１）はＩＣ_５０値として８．１ｎＭのＴＡＫ１キナーゼ阻害活性を示した。しかしながら、化合物（１）〜（３）の８位および９位に対応する位置に水酸基を有しない化合物であるＲａｄｉｃｉｃｏｌ
【００２２】
【化６】

【００２３】
、ゼアラレノン（式（Ａ））、ゼアラレノール（式（Ｂ））
【００２４】
【化７】

【００２５】
はＴＡＫ１キナーゼ阻害活性はほぼ認められなかった。
【００２６】
【表１】

【００２７】
（実施例２）ＴＡＫ１を介したシグナル伝達阻害作用の検討
ＴＡＫ１の活性化によりＭＡＰＫカスケードならびにＮＦ−κＢの活性化が誘導されることが知られている。そこで、ＴＡＫ１キナーゼ活性の阻害によりＴＡＫ１を介したシグナル伝達への影響をレポーターアッセイを用い検討した。
【００２８】
初めに、ＴＧＦ−β応答性エレメントの下流にルシフェラーゼの遺伝子を組み込んだｐ３ＴＰ−Ｌｕｘ（Ｃｅｌｌ，７１，１００３−１０１４，１９９２）を用い、化合物（１）の影響を検討した。ヒトｆｉｂｒｏｓａｒｃｏｍａ細胞株ＨＴ−１０８０細胞１ｘ１０^６個を播種し終夜培養した後、２μｇのｐ３ＴＰ−Ｌｕｘと１０μＬのＦｕＧＥＮＥ遺伝子導入試薬（Ｒｏｃｈｅ社製）の混合物を細胞に添加し、さらに８時間培養し遺伝子を導入した。遺伝子を導入した細胞をトリプシンにより剥がした後、１ウエル当たり１ｘ１０^４個となるように９６穴マイクロプレート（Ｆａｌｃｏｎ社製）に播種し、さらに終夜培養した。ＤＭＥＭ培地で１回洗浄した後、０．２％ウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培地で希釈した化合物（１）を５０μＬずつ添加した。３７℃で１時間インキュベートした後、終濃度で１０ｎｇ／ｍＬとなるようにＴＧＦ−β（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）を５０μＬずつ加え、さらに２４時間培養した。ルシフェラーゼ活性はＳｔｅａｄｙＧｌｏＬｕｃｉｆｅｒａｓｅＡｓｓａｙＫｉｔ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）を用いて測定した。
【００２９】
また、ＮＦ−κＢの活性化の測定には応答性エレメントの下流にルシフェラーゼの遺伝子を組み込んだＮＦｋＢ−Ｌｕｃ（ＧｅｎｅｓＤｅｖ．，７，１３５４−１３６３，１９９３）を用い、ＩＬ−１刺激、又はＴＡＫ１／ＴＡＢ１強制発現によりＴＡＫ１の活性化を誘導し行った。すなわち、ヒト胎児腎細胞株２９３細胞にＩＬ−１受容体を強制発現させた２９３−ＩＬ１Ｒ細胞（Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ，５，６４９−６５８，２０００）を１ｘ１０^６個を播種し終夜培養した後、２μｇのＮＦｋＢ−Ｌｕｃと１０μＬのＦｕＧＥＮＥ遺伝子導入試薬（Ｒｏｃｈｅ社製）の混合物を細胞に添加し、さらに８時間培養し遺伝子を導入した。遺伝子を導入した細胞をトリプシンにより剥がした後、１ウエル当たり１ｘ１０^４個となるように９６穴マイクロプレート（ＣｏａｎｉｎｇＣｏａｓｔｅｒ社製）に播種し、さらに終夜培養した。ＤＭＥＭ培地で１回洗浄した後、０．２％ウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培地で希釈した化合物（１）を５０μＬずつ添加した。３７℃で１時間インキュベートした後、終濃度で１０ｎｇ／ｍＬとなるようにＩＬ−１α（ＰＥＰＲＯＴＥＣＨ社製）を５０μＬずつ加え、さらに２４時間培養した。ルシフェラーゼ活性はＳｔｅａｄｙＧｌｏＬｕｃｉｆｅｒａｓｅＡｓｓａｙＫｉｔ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）を用いて測定した。ＴＡＫ１／ＴＡＢ１強制発現によるＮＦｋＢの活性化に関しては、ＮＦｋＢ−Ｌｕｃの遺伝子導入と共に、ＴＡＫ１、ＴＡＢ１発現ベクターｐＴＡＫ１−ＨＡならびにｐＣＯＳ−ＦＴＡＢ１をそれぞれ２５０ｎｇずつを同時に加え、上記と同様に遺伝子を導入した。遺伝子を導入した細胞は上記と同様に９６穴マイクロプレート（ＣｏａｎｉｎｇＣｏａｓｔｅｒ社製）に播種し、終夜培養した後、ＤＭＥＭ培地で１回洗浄し、０．２％ウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ培地で希釈した化合物（１）を５０μＬずつ添加した。３７℃で２４時間培養した後、ルシフェラーゼ活性を測定した。
【００３０】
結果を図１に示す。図１において、縦軸は、阻害活性（％）を示す。横軸は、化合物（１）濃度（Ｍ）を示す。黒塗り四角は、ｐ３ＴＰ−ＬｕｘアッセイにおけるＴＧＦ−βシグナル伝達経の阻害活性を示す。黒塗り三角はＮＦｋＢ−ＬｕｃアッセイにおけるＩＬ−１シグナル伝達系の阻害活性を示す。白抜き三角はＮＦｋＢ−ＬｕｃアッセイにおけるＴＡＫ１／ＴＡＢ１強制発現によるシグナル伝達系の阻害活性を示す。
【００３１】
図１に示すように、化合物（１）は容量依存的にＴＧＦ−β、ＩＬ−１α、ならびにＴＡＫ１／ＴＡＢ１強制発現によるルシフェラーゼの発現を抑制した。この結果はＴＡＫ１キナーゼ活性の阻害により下流へのシグナル伝達を阻害できることを示唆する。
【００３２】
【発明の効果】
本発明の化合物は、はＴＡＫ１阻害作用を有するので、ＴＡＫ１の活性化を介した各種シグナル伝達系を阻害し、疾病の原因としてＴＡＫ１の活性化が関与する各種疾病、例えば、ＴＧＦ−β、ＩＬ−１、ＬＰＳ、ＴＮＦ−α等が原因因子として知られる各種疾病の治療および予防する薬剤として有用であることが期待される。
【図面の簡単な説明】
【図１】化合物（１）のＴＡＫ１を介したシグナル伝達阻害作用を示すグラフである。

Claims

８位及び９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類を有効成分とする、ＴＡＫ１阻害剤またはＴＡＫ１活性化阻害剤。
８位および９位のいずれにも水酸基を有するゼアラレノン類が、下記の化合物（１）〜（１３）

から選択される、請求項１に記載の阻害剤。
化合物が、化合物（１）、（２）または（３）である、請求項２に記載の阻害剤。