FR2629460A1 - Peptides pf16 d'un retrovirus hiv - procede de synthese de ces peptides - leur utilisation pour le diagnostic - Google Patents
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Abstract
L'invention concerne des peptides capables de former un complexe immunologique avec des anticorps antiprotéine F d'un rétrovirus susceptible de provoquer un SLA ou un SIDA, caractérisés en ce qu'ils comportent au plus 40 aminoacides et possèdent une séquence d'aminoacides correspondant à la partie C-terminale de la protéine F d'un HIV ou à une variante de cette séquence néanmoins telle qu'elle soit immunologiquement reconnue par des anticorps antiprotéines F de rétrovirus HIV.
Description
PEPTIDES PF16 D'UN RETROVIRUS HIV - PROCEDE DE SYNTHESE
DE CES PEPTIDES - LEUR UTILISATION POUR LE DIAGNOSTIC
L'invention concerne des peptides ayant des propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, en commun avec la protéine F d'un rétrovirus capable de provoquer chez l'homme des syndrômes de lymphadénopathies (SLA) susceptibles d'entre relayés par un syndrome d'immunodéficience acquise (SIDA).
DE CES PEPTIDES - LEUR UTILISATION POUR LE DIAGNOSTIC
L'invention concerne des peptides ayant des propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, en commun avec la protéine F d'un rétrovirus capable de provoquer chez l'homme des syndrômes de lymphadénopathies (SLA) susceptibles d'entre relayés par un syndrome d'immunodéficience acquise (SIDA).
Jusqu'à présent, plusieurs rétrovirus ayant une responsabilité dans le développement dlun SLA ou d'un SIDA, ont été isolés et caractérisés. Ainsi un premier virus dénommé LAV-1 ou HIV-1 a été isolé et décrit dans la demande de brevet ,B.83/24.800 et une demande EP.84/401.834 du 14/09/84. Ce virus a également été décrit par F.Barre Sinoussi et al. dans Science, 220 n 45-99, 20, pages 868-871.
Des variants de ce virus HIV-1 désignés par
LAV ELI et LAV MAL, ont également été isolés, caractérisés et décrits dans la demande de brevet EP. 84/- 401.834.
LAV ELI et LAV MAL, ont également été isolés, caractérisés et décrits dans la demande de brevet EP. 84/- 401.834.
L'isolement et la caractérisation de rétro- virus appartenant a une classe distincte et n'ayant qu'une parenté immunologique réduite avec les précédents, ont été décrits dans la demande de brevet européen n' 87/400.151.4 publiée sous le n 239.425. Ces rétrovirus qui ont été regroupés sous la désignation
HIV-2, ont été isolés chez plusieurs malades africains présentant des symptômes d'une lymphadénopathie ou d'un
SIDA.
HIV-2, ont été isolés chez plusieurs malades africains présentant des symptômes d'une lymphadénopathie ou d'un
SIDA.
L'étude de ces rétrovirus HIV-1 et HIV-2 a conduit à l'obtention de leurs séquences d'ADN complé- mentaires puis à la caractérisation des séquences nu cléotidíques spécifiques codant pour d'autres protéines que celles décrites précédemment, notamment pour la protéine F de HIV-1 décrite dans la publication Bruno
Guy et al. Nature 1987 vol. 33 p. 266 à 269.
Guy et al. Nature 1987 vol. 33 p. 266 à 269.
On connaissait les propriétés antigéniques de la protéine F vis-à-vis d'anticorps contenus dans un sérum de patient infecté par un rétrovirus capable de provoquer un SLA ou un SIDA et plus particulièrement vis-à-vis d'anticorps dirigés contre cette protéine F.
Les inventeurs ont constaté que certaines séquences peptidiques sélectionnées à partir de la séquence connue de la protéine F, pour différents isolats de rétrovirus HIV-1 ou HIV-2, présentent un intérêt particulier pour la détection d'une infection par l'un des rétrovirus décrits plus haut.
De façon tout à fait intéressante les inventeurs ont remarqué que certains peptides de la protéine
F (encore désignés par PF) sont reconnus par des anticorps induits dans un hôte infecté par un rétrovirus du type HIV à un stade très précoce de l'infection par le virus.
F (encore désignés par PF) sont reconnus par des anticorps induits dans un hôte infecté par un rétrovirus du type HIV à un stade très précoce de l'infection par le virus.
Cette observation démontre s'il en est besoin l'intérêt que peuvent représenter de tels peptides pour la détection à un stade précoce d'une infection chez l'homme par un rétrovirus des classes HIV-1 ou HIV-2.
L'invention concerne à cet égard des peptides de la protéine F d'un rétrovirus capable de provoquer un
SLA ou un SIDA, qui présentent des propriétés immunologiques, en commun avec celles de cette protéine F et qui ont la capacité d'être reconnus par des anticorps contre cette protéine, présents dans un échantillon biologique, notamment un tissu ou un liquide biologique, d'un hôte infecté par un rétrovirus HIV notamment de la classe
HIV-1 ou de la classe HIV-2.
SLA ou un SIDA, qui présentent des propriétés immunologiques, en commun avec celles de cette protéine F et qui ont la capacité d'être reconnus par des anticorps contre cette protéine, présents dans un échantillon biologique, notamment un tissu ou un liquide biologique, d'un hôte infecté par un rétrovirus HIV notamment de la classe
HIV-1 ou de la classe HIV-2.
L'invention vise en outre des peptides de la protéine F d'un rétrovirus HIV-1 ou HIV-2, ayant des propriétés immunogènes, ou susceptibles d'être rendus immunogènes in vivo.
Les peptides de l'invention peuvent être obtenus par isolement à partir de la séquence complète de la protéine F d'un rétrovirus déterminé ou encore par synthèse chimique.
La figure 1 représente la séquence peptidique de la protéine F pour deux isolats, correspondant l'un au rétrovirus HIV-2, l'autre au rétrovirus HIV-1. Les correspondances entre les acides aminés et leur code à une lettre sont les suivantes
M Méthionine L Leucine
I Isoleucine
V Valine
F Phénylalanine
S Sérine
P Proline
T Thréonine
A Alanine
Y Tyrosine
H Histidine
Q Glutamine
N Asparagine
K Lysine
D Acide Aspartique
E Acide glutamique
C Cystéine
W Tryptophane
R Arginine
G Glycine
Les peptides de l'invention, obtenus éventuellement après modification de l'enchainement d'acides aminés, à partir d'un isolat d'un rétrovirus ou encore obtenus par synthèse sont tels qu'ils présentent une parenté de séquence ou (homologie) avec la séquence peptidique correspondante de la région C-terminale de la protéine F d'un rétrovirus de la classe HIV-1 ou/et d'un rétrovirus de la classe HIV-2, suffisante pour que les propriétés immunologiques de cette séquence vis-à-vis des anticorps formés dans un milieu biologique (notamment un sérum) d'un hôte infecté par l'un ou l'autre des virus HIV-1 ou HIV-2 soient conservées.
M Méthionine L Leucine
I Isoleucine
V Valine
F Phénylalanine
S Sérine
P Proline
T Thréonine
A Alanine
Y Tyrosine
H Histidine
Q Glutamine
N Asparagine
K Lysine
D Acide Aspartique
E Acide glutamique
C Cystéine
W Tryptophane
R Arginine
G Glycine
Les peptides de l'invention, obtenus éventuellement après modification de l'enchainement d'acides aminés, à partir d'un isolat d'un rétrovirus ou encore obtenus par synthèse sont tels qu'ils présentent une parenté de séquence ou (homologie) avec la séquence peptidique correspondante de la région C-terminale de la protéine F d'un rétrovirus de la classe HIV-1 ou/et d'un rétrovirus de la classe HIV-2, suffisante pour que les propriétés immunologiques de cette séquence vis-à-vis des anticorps formés dans un milieu biologique (notamment un sérum) d'un hôte infecté par l'un ou l'autre des virus HIV-1 ou HIV-2 soient conservées.
A cet égard, les peptides selon l'invention, capables de former un complexe immunologique avec des anticorps anti-protéine F d'un retrovirus susceptible de provoquer un SLA ou un SIDA, sont caractérisés en ce qu'ils comportent au plus 40 aminoacides et possèdent une séquence correspondant à la partie C-terminale de la protéine F d'un rétrovirus HIV ou à une variante de cette séquence néanmoins telle qu'elle soit immunologiquement reconnue par des anticorps anti-protéine F de rétrovirus HIV.
Dans un autre mode de réalisation de l'invention, le peptide est sélectionné en fonction de sa capacité à être reconnu par des anticorps anti-protéine
F d'un hôte infecté spécifiquement par l'un ou l'autre des rétrovirus HIV-1 ou HIV-2.
F d'un hôte infecté spécifiquement par l'un ou l'autre des rétrovirus HIV-1 ou HIV-2.
Un premier peptide conforme à l'invention est caractérisé par tout ou partie de la formule
XGM-D-E--VL-W-F-S-LA--H-ARE-HPE--K-CZ dans laquelle - les tirets "-" figurent des acides aminés variables choisis de manière à ce que le peptide final conserve sa capacité à être reconnu par des anticorps formés lors d'une infection par l'un des rétrovirus précédents.
XGM-D-E--VL-W-F-S-LA--H-ARE-HPE--K-CZ dans laquelle - les tirets "-" figurent des acides aminés variables choisis de manière à ce que le peptide final conserve sa capacité à être reconnu par des anticorps formés lors d'une infection par l'un des rétrovirus précédents.
- les groupes X représentent soit un groupe NH2 libre ou amidé, notamment par un ou deux groupes alcoyle comprenant de 1 à 5 atomes de carbone, soit un groupe peptidique comprenant de 1 à 5 aminoacides, dont l'amino-acide N-terminal présente lui-même un groupe NH2 libre ou amidé comme précédemment indiqué, et les groupes Z représentent, soit un groupe -OH libre ou alcoxyle et contenant alors un groupe alcoyle comprenant de 1 à 5 atomes de carbone, soit un.groupe peptidique comprenant de i à 5 aminoacides, dont l'aminoacide Cterminal présente lui-même un groupe -OH libre ou alcoxyle, comme précédemment indiqué, les groupes de 1 à 5 acides aminés le cas échéant contenus dans X ou Z ou dans les deux à la fois ainsi que les acides aminés remplaçant les tirets étant tels, que leur présence n'est pas incompatible avec les propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, des peptides formés, notamment leur capacité à être reconnus par des sérums humains contenant des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-1 et plus particulièrement des anticorps monospécifiques contre le peptide ci-dessus.
Des peptides préférés répondant à la structure précédente sont les suivants
XGMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNCZ XGMEDAEKEVLVWRFDSKLAFHHMARELHPEYYKDCZ
XGMEDAEREVLKWKFDSSLALRHRAREQHPEYYKDCZ
XGMEDPERQVLKWRFNSRLAFEHKAREMHPEFYKNZ
Des peptides particulièrement préférés sont donnés par les enchainements d'acides aminés suivants
GMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNC GMEDAEKEYLYWRFDSKLAFHHMARELHPEYYRDC
GMEDAEREVLKWKFDSSLALRHRAREQHPEYYKDC
GMEDPERQVLKWRFNSRLAFEHKAREMHPEFYKN
D'autres peptides conformes à l'invention sont aptes à etre reconnus par des anticorps formés chez un hôte infecté par un rétrovirus de la classe HIV-2 et sont caractérisés en ce qu'ils présentent des propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, en commun avec la séquence suivante
XKFDDPHGETLVWEFDPLLAYSYEAFIRYPEEFGHKZ dans laquelle X et Z ont des significations analogues aux précédentes à condition toutefois que leur choix permette la conservation de la capacité du peptide ci-dessus à être reconnu par des sérums humains contenant des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-2.
XGMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNCZ XGMEDAEKEVLVWRFDSKLAFHHMARELHPEYYKDCZ
XGMEDAEREVLKWKFDSSLALRHRAREQHPEYYKDCZ
XGMEDPERQVLKWRFNSRLAFEHKAREMHPEFYKNZ
Des peptides particulièrement préférés sont donnés par les enchainements d'acides aminés suivants
GMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNC GMEDAEKEYLYWRFDSKLAFHHMARELHPEYYRDC
GMEDAEREVLKWKFDSSLALRHRAREQHPEYYKDC
GMEDPERQVLKWRFNSRLAFEHKAREMHPEFYKN
D'autres peptides conformes à l'invention sont aptes à etre reconnus par des anticorps formés chez un hôte infecté par un rétrovirus de la classe HIV-2 et sont caractérisés en ce qu'ils présentent des propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, en commun avec la séquence suivante
XKFDDPHGETLVWEFDPLLAYSYEAFIRYPEEFGHKZ dans laquelle X et Z ont des significations analogues aux précédentes à condition toutefois que leur choix permette la conservation de la capacité du peptide ci-dessus à être reconnu par des sérums humains contenant des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-2.
D'autres modifications des différentes séquences d'acides aminés décrites pour la composition des peptides de l'invention, éventuellement des délétions au niveau de certains acides aminés peuvent etre envisagées dès lors que la séquence modifiée formée reste capable d'être reconnue par des anticorps présents dans un milieu biologique, notamment un sérum humain à la suite d'une infection par un rétrovirus susceptible de provoquer un SLA ou un SIDA.
On- peut notamment mettre en oeuvre une partie seulement des peptides précédemment décrits dans la mesure où une séquence de plus petite taille formée conserve des propriétés immunologiques, le cas échéant immunogènes, vis-à-vis des anticorps contre la protéine
F d'un rétrovirus HIV.
F d'un rétrovirus HIV.
Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, les peptides ci-dessus sont mis en oeuvre dans des mélanges capables d'être reconnus par des anticorps présents lors d'une infection par un rétrovirus de la classe HIV-1.
On peut également réaliser des mélanges de peptides reconnus par des anticorps dirigés contre un rétrovirus du type HIV-1 d'une part et des- peptides reconnus par un rétrovirus du type HIV-2 d'autre part.
L'invention a trait également à des composi tions comprenant de tels peptides seuls ou en mélange avec d'autres protéines ou peptides codés par le génome d'un rétrovirus capable de causer un SLA ou un SIDA et à leur utilisation dans un procédé de détection invitro dans un échantillon biologique, de l'infection par un rétrovirus du type HIV-1 ou HIV-2.
L'invention est également relative à la synthèse des peptides intéressants de la protéine F.
Un principe de synthèse est par exemple de mettre en présence une phase solide dans laquelle s assemble la séquence du peptide et une phase liquide contenant solvants et réactifs. A chaque étape la séparation entre le peptide en croissance et les réactifs se fait par simples filtrations et lavages.
Initialement r le support solide qui porte un groupement réactif réagit avec le carboxyle d'un acide aminé introduit avec son -NH2 bloqué (protégé par exemple par le t-butyloxy carbonyle), pour établir une liaison covalente. Après déprotection de la fonction aminée (par exemple en lavant avec un acide tel que l'acide trifluoroacétique), un deuxième acide aminé protégé est introduit pour former par couplage la première liaison peptidique. Le deuxième acide aminé, qui fournit le deuxième amino-acyle de la séquence, est couplé à partir du résidu amino-acyle C-terminal sur la fonction amine déprotégée du premier acide aminé
C-terminal de la chaine. De préférence la fonction carboxyle de ce deuxième acide aminé est activée r par exemple par dicyclohexylcarbodiimide.Par une suite de réactions, déprotections et couplages, la synthèse progresse du résidu C- vers le résidu N- terminal. Lorsque la séquence voulue a été assemblée le peptide est décroché de la phase solide, par une réaction spécifique de coupure de la liaison peptide-résine établie initialement. Le protocole détaillé de cette synthèse est décrit dans l'exemple 1.
C-terminal de la chaine. De préférence la fonction carboxyle de ce deuxième acide aminé est activée r par exemple par dicyclohexylcarbodiimide.Par une suite de réactions, déprotections et couplages, la synthèse progresse du résidu C- vers le résidu N- terminal. Lorsque la séquence voulue a été assemblée le peptide est décroché de la phase solide, par une réaction spécifique de coupure de la liaison peptide-résine établie initialement. Le protocole détaillé de cette synthèse est décrit dans l'exemple 1.
Le procédé de synthèse d'un peptide conforme à ce qui est décrit plus haut est caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes
a/ mise en contact d'un support solide portant un groupement réactif apte à réagir avec une fonction carboxyle, avec le premier acide aminé C-terminal de la chaine à synthétiser, protégé au niveau de la fonction amine devant ultérieurement intervenir dans le couplage avec un autre acide aminé, pour éviter l'auto-condensation
b/ déprotection de la fonction amine de l'acide aminé précédemment fixé
c/ couplage de la fonction amine déprotégée de l'acide aminé à l'issue de l'étape b/ avec la fonction carboxyle d'un deuxième acide aminé, protégé au niveau de sa fonction amine et qui fournit le deuxième résidu aminoacyle alors couplé au résidu aminoacyle C-terminal du peptide à synthétiser
d/ déprotection de la fonction amine du deuxième acide aminé ajouté et répétition des étapes c/ de couplage et d/ de protection, successivement avec les acides aminés correspondant respectivement aux résidus aminoacyle successifs jusqu'à aboutir au résidu aminoacyle N-terminal dudit peptide
e/ séparation du peptide formé, par traitement de la phase solide portant le peptide synthétisé, notamment. au moyen de l'acide fluorhydrique, une fois obtenu l'acide-aminé N-terminal
f/ récupération de la séquence peptidique à partir de la solution.
a/ mise en contact d'un support solide portant un groupement réactif apte à réagir avec une fonction carboxyle, avec le premier acide aminé C-terminal de la chaine à synthétiser, protégé au niveau de la fonction amine devant ultérieurement intervenir dans le couplage avec un autre acide aminé, pour éviter l'auto-condensation
b/ déprotection de la fonction amine de l'acide aminé précédemment fixé
c/ couplage de la fonction amine déprotégée de l'acide aminé à l'issue de l'étape b/ avec la fonction carboxyle d'un deuxième acide aminé, protégé au niveau de sa fonction amine et qui fournit le deuxième résidu aminoacyle alors couplé au résidu aminoacyle C-terminal du peptide à synthétiser
d/ déprotection de la fonction amine du deuxième acide aminé ajouté et répétition des étapes c/ de couplage et d/ de protection, successivement avec les acides aminés correspondant respectivement aux résidus aminoacyle successifs jusqu'à aboutir au résidu aminoacyle N-terminal dudit peptide
e/ séparation du peptide formé, par traitement de la phase solide portant le peptide synthétisé, notamment. au moyen de l'acide fluorhydrique, une fois obtenu l'acide-aminé N-terminal
f/ récupération de la séquence peptidique à partir de la solution.
Dans un mode de réalisation préféré du procédé précédent, l'étape b/ de déprotection est suivie par une étape de neutralisation destinée à rendre la fonction amine nucléophile.
Dans un autre mode de réalisation particulier, on peut encore avoir recours à une seconde étape de couplage réalisée après lavage et neutralisation du peptide obtenu à l'issue de l'étape c/, au moyen d'un agent de couplage, afin de permettre la réaction des fonctions amine qui n'avaient pas réagi lors du premier couplage.
Pour certains acides aminés tels que le triptophane ou la cystéine, la déprotection des fonctions réactives sera obtenue après la séparation du peptide, de la résine respectivement au moyen d'une base ou avec un traitement avec l'acétate mercurique.
Il est entendu que le procédé de synthèse des peptides selon l'invention n'est pas limité au procédé précédemment décrit mais englobe au contraire toutes les variantes dans la mesure où la séquence peptidique ainsi synthétisée conserve les propriétés immunologiques souhaitées.
Selon un autre mode de réalisation de l'invention, on aura recours à la technique de synthèse en solution homogène décrit par HOUBENWEYL dans l'ouvrage intitulé "Méthode der Organischen Chemie" (Méthode de la
Chimie Organique) édité par E. Wunsch, vol. 15-1 et Il,
THIEME, Stuttgart 1974.
Chimie Organique) édité par E. Wunsch, vol. 15-1 et Il,
THIEME, Stuttgart 1974.
Cette méthode de synthèse consiste à condenser successivement deux-à-deux les aminoacyles successifs dans l'ordre requis, ou à condenser des aminoacyles et des fragments préalablement formés et contenant déjà plusieurs aminoacyles dans l'ordre approprié, ou encore plusieurs fragments préalablement ainsi préparés, étant entendu que l'on aura eu soin de protéger au préalable toutes les fonctions réactives portées par ces aminoacyles ou fragments, à l'exception des fonctions amines de l'un et carboxyles de l'autre ou vice-versa, qui doivent normalement intervenir dans la formation des liaisons peptidiques, notamment après activation de la fonction carboxyle, selon les méthodes bien connues dans la synthèse des peptides.En variante, on pourra avoir recours à des réactions de couplage mettant en jeu des réactifs de couplage classique, du type carbodiimide, tels que par exemple la 1-éthyl-3-(3-diméthyl-amino- propyl)-carbodiimide. Lorsque l'aminoacyle mis en oeuvre possède une fonction acide supplémentaire (notamment dans le cas de l'acide glutamique), ces fonctions seront par exemple protégées par des groupes t-butylester.
L'invention est également relative à un procédé de détection in vitro d'une infection par un rétrovirus susceptible de provoquer un SLA ou SIDA, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes
a) la mise en contact d'au moins un peptide selon l'invention avec un échantillon biologique à tester, susceptible de contenir des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV ci-dessus, dans des conditions permettant la formation d'un complexe immunologique peptide-anticorps,
b) la détection du complexe immunologique formé.
a) la mise en contact d'au moins un peptide selon l'invention avec un échantillon biologique à tester, susceptible de contenir des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV ci-dessus, dans des conditions permettant la formation d'un complexe immunologique peptide-anticorps,
b) la détection du complexe immunologique formé.
Pour réaliser la détection du complexe immunologique peptide-anticorps et ainsi faire le diagnostic de l'infection, on pourra par exemple avoir recours à un dosage radioimmunologique. On peut également avoir recours à une méthode d'immunoenzymologie telle que la méthode ELISA.
Dans un premier mode de réalisation du test de détection d'une infection par un rétrovirus capable de provoquer un SLA. ou un SIDA, le peptide mis en oeuvre pour effectuer le diagnostic de la présence d'anticorps anti-protéine F est reconnu spécifiquement par un rétrovirus HIV-1.
Dans un deuxième mode de réalisation de ce test de détection, le peptide mis en oeuvre est reconnu spécifiquement par un rétrovirus HIV-2.
Dans un autre mode de réalisation de ce test, on choisit de mettre en oeuvre un mélange de peptides reconnaissant d'une part des anticorps formés contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-1 et tes peptides reconnaissant d'autre part des anticorps formés contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-2. On peut ainsi réaliser un diagnostic non spécifique d'une infection par l'un ou l'autre des rétrovirus HIV-1 ou HIV-2.
Pour effectuer le diagnostic le peptide pourra avantageusement etre fixé sur une plaque ELISA.
L'invention concerne aussi l'utilisation des peptides de la protéine F, pour purifier des anticorps monospécifiques contre la protéine F.
Pour effectuer une telle purification, par exemple par chromatographie d'affinité, on peut opérer comme suit : - fixation des peptides utilisés pour la purification sur un support, - passage sur ce support d'une solution contenant les anticorps que l'on cherche à purifier pour les amener au contact des peptides fixés, dans des conditions permet tant la formation d'un complexe immunologique peptide- anticorps ladite solution peut être un sérum polyclonal, un surnageant ou encore un ascite contenant des anticorps monoclonaux, - élimination des constituants n'ayant pas réagi, - récupération des anticorps monospécifiques dirigés contre la protéine F.
L'invention concerne donc les anticorps monospécífiques dirigés contre la protéine F, caractérisés en ce qu'ils sont reconnus par un ou plusieurs peptides précédemment décrits.
L'invention concerne également un kit pour le diagnostic in vitro d'une infection par un rétrovirus capable de provoquer un SLA ou un SIDA, caractérisé en ce qu'il comprend :
- un peptide conforme à l'invention, ou un mélange de ces peptides
- les réactifs pour la constitution d'un milieu, notamment une solution tamponnée, propice à la formation d'une réaction immunologique entre le ou les peptides et les anticorps éventuellement présents dans un échantillon biologique
- un ou plusieurs réactifs éventuellement marqué(s) aptes(s) à réagir avec le ou lesdits peptides pour la détection du complexe peptide-anticorps formé
- le cas échéant, un milieu biologique de référence, tel qu'un sérum, semblable au milieu biologique provenant de la personne éventuellement infectée avec un rétrovirus HIV et dépourvu d'anticorps reconnaissant les susdits peptides.
- un peptide conforme à l'invention, ou un mélange de ces peptides
- les réactifs pour la constitution d'un milieu, notamment une solution tamponnée, propice à la formation d'une réaction immunologique entre le ou les peptides et les anticorps éventuellement présents dans un échantillon biologique
- un ou plusieurs réactifs éventuellement marqué(s) aptes(s) à réagir avec le ou lesdits peptides pour la détection du complexe peptide-anticorps formé
- le cas échéant, un milieu biologique de référence, tel qu'un sérum, semblable au milieu biologique provenant de la personne éventuellement infectée avec un rétrovirus HIV et dépourvu d'anticorps reconnaissant les susdits peptides.
Les exemples qui suivent illustrent la synthèse des peptides selon l'invention et leur utilisation dans un test de diagnostic de la présence d'anticorps anti-protéine F contenus dans des sérums humains connus pour avoir été infectés par un virus HIV-1.
D'autres caractéristiques apparaissent dans les figures.
- la figure 1 représente l'alignement des séquences d'acides aminés de la protéine F pour les isolats ROD.P de HIV-2 et LAV.P de HIV-1.
- la figure 2 représente les relations entre le rendement global d'incorporation des acides aminés et la pureté des produits obtenus par synthèse en phase solide (d'après Wang, S.S., 1972).
EXEMPLE 1
SYNTHESE, PURIFICATION ET CARACTERISATION DES PEPTIDES
1/ Nature du support solide
Pour la réalisation de la synthèse, un bon support solide est choisi de façon à répondre aux conditions suivantes - être insoluble dans les solvants et réactifs de la phase liquide - être inerte vis-à-vis des réactifs de la synthèse - être suffisamment stable physiquement pour être agité et subir les filtrations - assurer une excellente diffusion des réactifs pour ne pas ralentir la cinétique d'un facteur trop important comparé à celle des réactions en solution.
SYNTHESE, PURIFICATION ET CARACTERISATION DES PEPTIDES
1/ Nature du support solide
Pour la réalisation de la synthèse, un bon support solide est choisi de façon à répondre aux conditions suivantes - être insoluble dans les solvants et réactifs de la phase liquide - être inerte vis-à-vis des réactifs de la synthèse - être suffisamment stable physiquement pour être agité et subir les filtrations - assurer une excellente diffusion des réactifs pour ne pas ralentir la cinétique d'un facteur trop important comparé à celle des réactions en solution.
Deux sortes de résines ont été utilisées pour les besoins de la synthèse - une résine obtenue par copolymérisation de styrène en présence de 1% de divinylbenzène, dont la fonction réactive est le groupement benzydrylamine (-O-CHO-NH2); avec une substitution de 0,2 mmole NH2/g de résine - une résine polyacrylamide macroporeuse dont la fonction réactive est le groupement amino méthyl (-CH2-NH2) à 0,5 ou 0,7 mmole NH2ig).
2/ Nature des acides aminés a/ Protection des groupements aminés.
La fonction a-NH2 de l'acide aminé ajouté a été protégée pour éviter la réaction d'auto-condensation des acides aminés. Le groupement protecteur utilisé pour cette synthèse est le tertiobutyloxycarbonyle (Boc) qui est éliminé par l'acide trifluoroacétique (TFA) 30 dans le dichlorométhane (DCM).
b/ Protection des groupements fonctionnels latéraux.
Contrairement à une protection temporaire des fonctions aminés, les fonctions portées par les chaines latérales doivent être maintenues protégées durant toute la synthèse et, par conséquent, les protections doivent être non labiles en milieu TFA 30%. Par contre, elles. seront déprotégées, en général, par le réactif utilisé pour couper la liaison peptide-résine, l'acide fluorhydrique. Les différents groupements protecteurs correspondant aux acides aminés utilisés sont représentés dans le tableau 1.
<tb>
<SEP> Fonction~prote gee <SEP> l <SEP> Groupement <SEP> protecteur
<tb> <SEP> CI\
<tb> Ot' <SEP> de <SEP> la <SEP> tyrosine <SEP> 1 <SEP> 2,(8-dichlorobensyl
<tb> OH <SEP> dc <SEP> a <SEP> tyrosine <SEP> 1
<tb> <SEP> 1 <SEP> CI,
<tb> OH <SEP> de <SEP> la <SEP> thréonine <SEP> t
<tb> OH <SEP> dc <SEP> la <SEP> serine <SEP> t
<tb> <SEP> benzyl <SEP> -C <SEP> H <SEP> t
<SEP> t <SEP> 2
<tb> <SEP> - <SEP> COH <SEP> de <SEP> 1 <SEP> aspartatel'aspartate <SEP> t
<tb> <SEP> - <SEP> COOH <SEP> du <SEP> lutamate <SEP> /
<tb> <SEP> - <SEP> COOH <SEP> du <SEP> 61utamate
<tb> <SEP> CH3
<tb> SH <SEP> de <SEP> la <SEP> cystéine <SEP> t <SEP> t.<SEP> butylmercapto <SEP> - <SEP> S <SEP> - <SEP> t <SEP> CH
<tb> <SEP> t <SEP> CH3
<tb> itid:ole <SEP> de <SEP> l'histidine <SEP> 1} <SEP> tosyl <SEP> - <SEP> S <SEP> < <SEP> CH3
<tb> <SEP> -NH <SEP> de <SEP> l <SEP> arginine <SEP> j
<tb> <SEP> t <SEP> o
<tb> <SEP> I <SEP> Il <SEP>
<tb> <SEP> de <SEP> de <SEP> la <SEP> lysine <SEP> bentyloxycarbonyl <SEP> -c <SEP> -O-CH
<tb> t <SEP> du <SEP> rryptophane <SEP> r
<tb> Indole <SEP> du <SEP> Tryptophane <SEP> | <SEP> foreyl
<tb>
Tablcau 1 : Protection des fonctions tertiaires des acides utilisés
dans nos svnthéses.
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Tablcau 1 : Protection des fonctions tertiaires des acides utilisés
dans nos svnthéses.
3/ DisPositif exPérimenta
L'assemblage des peptides a été réalisé automatiquement dans un synthétiseur (APPLIED BIOSYSTEMS (marque déposée) Peptides Synthétiseur modèle 430A) suivant la méthode générale décrite par MERRIFIELD.
L'assemblage des peptides a été réalisé automatiquement dans un synthétiseur (APPLIED BIOSYSTEMS (marque déposée) Peptides Synthétiseur modèle 430A) suivant la méthode générale décrite par MERRIFIELD.
4/ Protocole d'incorPoration d'un résidu
Le protocole expérimental permettant d'effectuer un cycle de synthèse comporte les étapes suivantes a/ - DéProtectlon des fonctions aminées
Elle est obtenue après 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 30 minutes avec 30% de
TFA/CH2Cl2. Les conditions utilisées sont normalement suffisantes pour éliminer complètement les groupements
Boc protecteurs des fonctions a-NH2, bl - Lavaqe
Les produits déprotégés ont été lavés 5 fois 2 minutes avec CH2Cl2.
Le protocole expérimental permettant d'effectuer un cycle de synthèse comporte les étapes suivantes a/ - DéProtectlon des fonctions aminées
Elle est obtenue après 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 30 minutes avec 30% de
TFA/CH2Cl2. Les conditions utilisées sont normalement suffisantes pour éliminer complètement les groupements
Boc protecteurs des fonctions a-NH2, bl - Lavaqe
Les produits déprotégés ont été lavés 5 fois 2 minutes avec CH2Cl2.
c/ - Neutralisation
Nécessaire pour désioniser l'amine a-NH2 du peptide sur la résine et la rendre nucléophile pour participer à la réaction de couplage, la neutralisation est obtenue par 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 10 minutes avec 5% de DIEA/CH2Cl2 (le
DIEA étant le Di-Isopropyl-Ethyl-Amine).
Nécessaire pour désioniser l'amine a-NH2 du peptide sur la résine et la rendre nucléophile pour participer à la réaction de couplage, la neutralisation est obtenue par 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 10 minutes avec 5% de DIEA/CH2Cl2 (le
DIEA étant le Di-Isopropyl-Ethyl-Amine).
d/ - Premier couplage
Le premier couple est réalisé dans un excès (3 fois) de Boc acide aminé (aa) et du dicyclohexylcarbodiimide (DCC) dans CH2Cl2 (2 heures). Lors du couplage dont le mécanisme est représenté ci-après, une réaction secondaire donne un dérivé uréique non réactif qui dépend de la nature du solvant.
Le premier couple est réalisé dans un excès (3 fois) de Boc acide aminé (aa) et du dicyclohexylcarbodiimide (DCC) dans CH2Cl2 (2 heures). Lors du couplage dont le mécanisme est représenté ci-après, une réaction secondaire donne un dérivé uréique non réactif qui dépend de la nature du solvant.
Cette réaction est assez faible dans le dichlorométhane et elle est contrebalancée par l'utilisation d'un excès de réactifs'(DCC et Boc-a.a).
produit de couplage
produit de couplage
dicyclohexyl urée
Mécanisme de couplage par le dicyclohexylcarbanide.
Mécanisme de couplage par le dicyclohexylcarbanide.
e/ - Lavaqe .
On lave le produit de réaction 5 fois, 2 minutes avec CH2Cl2.
f/ - Nouvelle neutralisation
Pour réaliser cette nouvelle neutralisation, on fait 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 10 minutes avec 5% de DIEA/CH2Cl2.
Pour réaliser cette nouvelle neutralisation, on fait 2 prétraitements de 2 minutes suivis d'un traitement de 10 minutes avec 5% de DIEA/CH2Cl2.
Cette nouvelle neutralisation permet l'activation des amines qui auraient échappé au premier traitement basique.
g/ - Lavage
On lave le produit 5 fois 2 minutes avec
CH2Cl2 et 1 fois 2 minutes avec la diméthylformamide (DMF).
On lave le produit 5 fois 2 minutes avec
CH2Cl2 et 1 fois 2 minutes avec la diméthylformamide (DMF).
h/ - 2ème couplage
Ce deuxième couplage fait intervenir comme réactif l'ester de benzotriazole du Boc acide aminé 1,5 fois en excès dans la DMF (1 heure).
Ce deuxième couplage fait intervenir comme réactif l'ester de benzotriazole du Boc acide aminé 1,5 fois en excès dans la DMF (1 heure).
L'ester de benzotriazole du Boc (aa) est préparé extemporanément comme suit - on prépare un mélange équimoléculaire de DCC et d'hydroxybenzotriazole (HOBt) dans la diméthylformamide (DMF) et on laisse incuber pendant dix minutes à O'C.
Puis, le Boc acide aminé est ajouté et la réaction est poursuivie à OsC pendant dix minutes. L'ester de benzotriazole du Boc acide aminé ainsi formé est ajouté dans le vase à réaction.
i/ - Lavaae
On a à nouveau lavé le produit 5 fois 2 minutes avec CH2Cl2.
On a à nouveau lavé le produit 5 fois 2 minutes avec CH2Cl2.
5/ Contrôles analvtiaues en cours de svnthèse:
Du fait que la synthèse se déroule sans purification des intermédiaires, il est impératif de contrôler que les réactions de couplages sont complètes.
Du fait que la synthèse se déroule sans purification des intermédiaires, il est impératif de contrôler que les réactions de couplages sont complètes.
Le diagramme de la figure 2 montre l'importance d'avoir des couplages complets pour la synthèse des grandes séquences bien en effet si l'on synthétise un peptide de 40 résidus avec un rendement global (déprQtection, neutralisation et couplage) de 98S, on obtient un mélange contenant 46% du peptide voulu et 54% de différents peptides plus petits. Si le rendement est de 99% en moyenne par étape le peptide entier sera présent à 67%.
Si le rendement est de 99,5 le peptide voulu représentera alors 82% et seulement 18% de mélanges de peptides plus petits.
Pour vérifier la bonne réalisation du couplage, trois tests de couplages peuventêtre mis en oeuvre - Test à la ninhydrine (Kaiser, et coll.,1970) : on prélève une partie aliquote de peptidyl-résine (environ 1Omg) qu'on lave bien à l'éthanol dans des petits tubes en verre. Après centrifugation et élimination de l'éthanol, on ajoute une solution de nînhydrine et on laisse réagir pendant 5 minutes à 95 C.
L'apparition d'une coloration bleue (test positif) signifie un couplage incomplet. Si la couleur de la résine ne change pas le couplage a eu lieu au moins à 99%.
- Test à la fluorescamine (Felix et Jimenez, 1973) : un peu plus sensible que celui à la ninhydrine, il permet de détecter moins de 1% de NH2 libre. Une partie aliquote de peptidyl-résine (10 à 20mg) est lavée successivement au DCM, à l'éthanol et au DIEA 5% dans le DCM puis on ajoute la fluorescamine. La réaction a lieu dans un milieu basique (DIEA 5% pendant 10 minutes. Après lavage et sèchage, on regarde la résine sous une lampe
UV à une longueur d'onde de 366nm. L'apparition d'une fluorescence signifie la présence de NH2 libres.
UV à une longueur d'onde de 366nm. L'apparition d'une fluorescence signifie la présence de NH2 libres.
- Test au chloranyl (Christensen, 1979) : après le couplage d'un acide aminé quelconque sur une proline on ne peut utiliser les deux premiers tests à cause de leur faible sensibilité dans la détection des amines secondaires. On utilise le chloranyl (2,3,5,6. tétrachloro 1,4 benzoquinone). A une partie aliquote de peptidyl-résine (5 à îOmg) on ajoute 200 ul d'acétone et 50 ul d'une solution saturée de chloranyl dans le toluène; le tout est maintenu en agitation pendant 5 minutes. L'apparition d'une coloration verte signifie un couplage incomplet.Selon le résultat du test, s'il demeure positif après un second ou troisième couplage, on bloque par acétylation les fonctions a-NH2 qui n'ont pas réagi pour éviter la formation de peptide à délétion, ou bien, s'il est négatif un nouveau cycle de déprotection-couplage est entamé. Par ailleurs, on titre à intervalles réguliers (tous les deux ou trois résidus incorporés) la quantité d'amines présentes sur la résine. Cette quantité doit rester constante et égale à la quantité d'acide aminé fixée initialement sur la phase solide.
Nous utilisons la méthode des sels d'acide picrique (Gisinr 1972) 10 à 20 mg de peptidyl-résine séchés sont pesés avec précision dans une seringue et traités de la façon suivante - 5 lavages au DCM - 3 . traitements de 3 minutes avec une solution d'acide picrique (0,01 M dans DCM) - 5 lavages au DCM pour éliminer l'excès d'acide picrique - 5 traitements de 5 minutes avec la DIEA (5% dans DCM) qui déplacent le picrate lié à la résine. On recueille les filtrats dans une fiole jaugée de 100 ml.
- lavage de la résine avec de'l'éthanol puis on complète la fiole à 100 ml avec l'éthanol - mesure de la densité optique à 358 nm : sachant la valeur de l'tM (coefficient d'extinction molaire) 358 nm (13800) on calcule la concentration des a-NH2 libres qui ont pu réagir avec l'acide picrique pour former le sel correspondant.
6/ Acétylation du peptide sur la résine
Si le couplage d'un acide aminé demeure incomplet après plusieurs tentatives de réaction, ou si la synthèse du peptide est terminée et que l'on désire bloquer l'extrémité o NH2 du peptide par le groupement acétyl (l'acétylation de l'extrémité N-terminale est faite dans l'objectif d'avoir un peptide qui mime au point de vue de la charge, celle qui existe dans la protéine native), le peptide sur la résine est acétylé dans les conditions suivantes - neutralisation par 5% DIEA - lavages DCM - lavages DMF - acétylation par le mélange d'îml d'anhydride acétique (10 mmoles) et de 1,7 ml de DIEA (10 mmoles) dans la
DMF. La réaction dure 20 à 30 minutes et est considérée comme complète lorsque le test de couplage est négatif.
Si le couplage d'un acide aminé demeure incomplet après plusieurs tentatives de réaction, ou si la synthèse du peptide est terminée et que l'on désire bloquer l'extrémité o NH2 du peptide par le groupement acétyl (l'acétylation de l'extrémité N-terminale est faite dans l'objectif d'avoir un peptide qui mime au point de vue de la charge, celle qui existe dans la protéine native), le peptide sur la résine est acétylé dans les conditions suivantes - neutralisation par 5% DIEA - lavages DCM - lavages DMF - acétylation par le mélange d'îml d'anhydride acétique (10 mmoles) et de 1,7 ml de DIEA (10 mmoles) dans la
DMF. La réaction dure 20 à 30 minutes et est considérée comme complète lorsque le test de couplage est négatif.
7/ Couture de la liaison PeDtide-résine
La rupture de la liaison peptide-phase solide est faite par l'acide fluorhydrique anhydre (HF) à 0C.
La rupture de la liaison peptide-phase solide est faite par l'acide fluorhydrique anhydre (HF) à 0C.
(Lenard et Robinson, 1967 ; Sakakibara et coll. r 1967).
Elle s'accompagne, si on a choisi des protecteurs labiles dans l'HF, de la déprotection des chaines latérales.
La présence d'anisole (10% en volume) est nécessaire pour piéger les radicaux libres et éviter ainsi l'alkylation de certains résidus, comme la tyrosine, par les groupements protecteurs libérés. En utilisant une résine benzhydrylamine on obtient, à l'issue de la réaction, le peptide sous sa forme C-o amidée. Après évaporation de l'acide fluorhydrique, l'anisole est extraite par l'éther et le peptide est solubilisé par l'acide acétique. Le rendement de la réaction de coupure est calculé à partir des résultats d'analyses d'acides aminés donnant les quantités de peptide avant (peptide fixé à la résine) et après (peptide brut libre) la coupure par l'acide fluorhydrique. Cependant certains groupements protecteurs des chaines latérales de quelques acides aminés, comme le formyl tryptophane ne sont enlevés que par un traitement supplémentaire.
8/ DéDrotection du trvDtoDhane
Sous la forme formyl tryptophane, l'acide aminé aromatique est convenablement protégé durant la synthèse contre les risques d'oxydation du groupement indole. Ce groupement indole peut être régénéré par action d'une base (1 M hydroxylamine, pH 9) pendant une heure en milieu aqueux (Ohno et coll., 1972).
Sous la forme formyl tryptophane, l'acide aminé aromatique est convenablement protégé durant la synthèse contre les risques d'oxydation du groupement indole. Ce groupement indole peut être régénéré par action d'une base (1 M hydroxylamine, pH 9) pendant une heure en milieu aqueux (Ohno et coll., 1972).
EXEMPLE 2
ETUDE SEROLOGIOUE AVEC DU PEPTIDE PF 16 DE LA PROTEINE
F. OBTENU PAR SYNTHESE COMPARATIVE
Le peptide a été préalablement synthétisé par la méthode décrite précédemment. Ce peptide couvre la séquence de 35 acides aminés de la partie C-terminale de la séquence d'acides aminés de la protéine F du rétrovirus HIV-1.
ETUDE SEROLOGIOUE AVEC DU PEPTIDE PF 16 DE LA PROTEINE
F. OBTENU PAR SYNTHESE COMPARATIVE
Le peptide a été préalablement synthétisé par la méthode décrite précédemment. Ce peptide couvre la séquence de 35 acides aminés de la partie C-terminale de la séquence d'acides aminés de la protéine F du rétrovirus HIV-1.
Le peptide PF 16 a la séquence d'acides aminés suivante, dans laquelle l'acétamide (acm) représente un groupe hautement protecteur des fonctions SH des cystéines
GMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNC(acm)
Le peptide PF 16 est encore caractérisé par une masse molaire de 4408g et de 6725g lorsque ses fonctions réactives sont protégées. Son coefficient théorique d'extinction molaire E à 280 nm est de 7550 cm 1 M 1, sa charge nette à pH neutre est nulle et son homologie de séquence avec la séquence correspondante de
HIV-2 est de 40%.
GMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNC(acm)
Le peptide PF 16 est encore caractérisé par une masse molaire de 4408g et de 6725g lorsque ses fonctions réactives sont protégées. Son coefficient théorique d'extinction molaire E à 280 nm est de 7550 cm 1 M 1, sa charge nette à pH neutre est nulle et son homologie de séquence avec la séquence correspondante de
HIV-2 est de 40%.
Pour les besoins du test, le peptide PF 16 est dilué à une concentration de 2 mg/ml.
Sur une bande de papier BIORAD pour transblot, on dépose différents spots îijl, 2vl, 5pl, 101.
Après séchage on pratique un test Western Blot classique en utilisant comme anticorps des sérums de patients infectés par le virus HIV-1, positifs pour la protéine F, à des dilutions variant de 1/100 à 1/300.
Le peptide PF 16 donne des résultats positifs avec trois sérums différents anti-F ++ (++ signifiant une réaction plus marquée), comme le montre le tableau 2 qui suit.
Par ailleurs, les inventeurs ont constaté qu'un anticorps monoclonal anti-protéine F d'un rétrovirus HIV-1 produit chez la souris reconnait le peptide PF de l'invention dans un test ELISA.
Ceci montre bien le caractère immunodominant des peptides selon l'invention.
<SEP> SERUMS <SEP> POSITIFS, <SEP> ANTI-PROTEINE <SEP> F <SEP> DE <SEP> HIV-1
<tb> <SEP> CHA <SEP> 1/300 <SEP> P.6. <SEP> 1/200 <SEP> 1545 <SEP> 1/200 <SEP> LOM <SEP> 1/100
<tb> PEPTIDE <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l
<tb> PF <SEP> 16 <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> + <SEP> - <SEP> - <SEP> - <SEP> ++ <SEP> - <SEP> - <SEP> - <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> + <SEP> +
<tb>
<tb> <SEP> CHA <SEP> 1/300 <SEP> P.6. <SEP> 1/200 <SEP> 1545 <SEP> 1/200 <SEP> LOM <SEP> 1/100
<tb> PEPTIDE <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l <SEP> 10 <SEP> l <SEP> 5 <SEP> l <SEP> 2 <SEP> l <SEP> 1 <SEP> l
<tb> PF <SEP> 16 <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> + <SEP> - <SEP> - <SEP> - <SEP> ++ <SEP> - <SEP> - <SEP> - <SEP> ++ <SEP> ++ <SEP> + <SEP> +
<tb>
Tableau 2
Claims (16)
1. Peptide capable de former un complexe immunologique avec des anticorps anti-protéine F d'un rétrovirus susceptible de provoquer un SLA ou un SIDA, caractérisé en ce qu'il comporte au plus 40 aminoacides et possède une séquence d'aminoacides correspondant à la partie C-terminale de la protéine F d'un HIV ou à une variante de cette séquence néanmoins telle qu'elle soit immunologiquement reconnue par des anticorps anti-protéine F de rétrovirus HIV.
2. Peptide selon la revendication 1, caractérisé par tout ou partie de la séquence de formule
XGM-D-E--VL-W-F-S-LA--H-ARE-HPE--K-CZ dans laquelle X et Z sont des groupements OH ou NH2 ou, dans la mesure où les propriétés immunologiques du peptide dépourvu de ces groupes ne s'en trouvent pas essentiellement modifiées, des groupes comportant de 1 à 5 résidus d'acides aminés, et chacun des tirets correspond à un résidu aminoacyle choisi parmi ceux qui permettent de conserver au peptide sus-défini la capacité d'être reconnu par des sérums humains contenant des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-1 et plus particulièrement des anticorps monospécifiques dirigés contre le peptide ci-dessus.
3. Peptide selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il est constitué par tout ou partie d'un peptide choisi parmi les peptides suivants
GMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHVARELHPEYFKNC
GMEDAEKEVLVWRFDSKLAFHHMARELRPEYYXDC
GMEDAEREVLKWKFDSSLALRHRAREQHPEYYKDC
GMEDPERQVLKWRFNSRLAFEHKAREMHPEFYKN
4.Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il présente des propriétés immunologiques, avec la séquence suivante XKFDDPHGETLVWEFDPLLAYSYEAFIRYPEEFGRKZ dans laquelle X et Z sont des groupements OH ou NH2 ou, .4ans la mesure où les propriétés immunologiques du peptide dépourvu de ces groupes ne s'en trouvent pas essentiellement modifiées, des groupes comportant de 1 à 5 résidus d'acides aminés, choisis de telle sorte qu'ils permettent de conserver au peptide sus-défini la capacité d'être reconnu par des sérums humains contenant des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-2 et plus particulièrement des anticorps monospécifiques dirigés contre le peptide ci-dessus.
5. Mélange de peptides caractérisé en ce qu'il comprend un mélange d'un peptide selon la revendication 2 ou la revendication 3 et d'un peptide selon la reven diction 4.
6. Kit pour le diagnostic invitro d'une infection par un rétrovirus capable de provoquer un SLA ou un SIDA, caractérisé en ce qu'il comprend
- un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, ou un mélange selon la revendication 5
- les réactifs pour la constitution d'un milieu, notamment une solution tamponnée, propice à la formation d'une réaction immunologique entre le ou les peptides et les anticorps éventuellement présents dans un échantillon biologique
- un ou plusieurs réactifs éventuellement marqué(s) aptes(s) à réagir avec le ou lesdits peptides pour la détection du complexe peptide-anticorps formé
- le cas échéant, un milieu biologique de référence, tel qu'un sérum, semblable au milieu biologique provenant de la personne éventuellement infectée avec un rétrovirus HIV et dépourvu d'anticorps reconnaissant les susdits peptides.
7. Anticorps monospécifiques dirigés contre la protéine F caractérisés en ce qu'ils reconnaissent immunologiquement un ou plusieurs des peptides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4.
8. Procédé de synthèse d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend par les étapes suivantes
a/ mise en contact d'un support solide portant un groupement réactif apte à réagir avec une fonction carboxyle, avec le premier acide aminé C-terminal de la chaine à synthétiser, protégé au niveau de la fonction amine devant ultérieurement intervenir dans le couplage avec un autre acide aminé, pour éviter l'auto-condensation
b/ déprotection de la fonction amine de l'acide aminé précédemment fixé
c/ couplage de la fonction amine déprotégée de l'acide aminé à l'issue de l'étape b/ avec la fonction carboxyle d'un deuxième acide aminé, protégé au niveau de sa fonction amine et qui fournit le deuxième résidu aminoacyle alors couplé au résidu aminoacyle C-terminal du peptide à synthétiser
d/ déprotection de la fonction amine du deuxième acide aminé ajouté et répétition des étapes c/ de couplage et d/ de protection, successivement avec les acides aminés correspondant respectivement aux résidus aminoacyle successifs jusqu'à aboutir au résidu aminoacyle N-terminal dudit peptide
e/ séparation du peptide formé, par traitement de la phase solide portant le peptide synthétisé, notamment par exemple au moyen de l'acide fluorhydrique, une fois obtenu l'acide-aminé N-terminal
f/ récupération de la séquence peptidique à partir de la solution.
9. Procédé de synthèse selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'étape b/ de déprotection est suivie par une étape de neutralisation destinée à rendre la fonction amine nucléophile.
10. Procédé de synthèse selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que l'étape de couplage fait intervenir un agent de couplage capable d'activer la fonction carboxyle, de préférence le dicyclohexylcarboodiimide.
11. Procédé de synthèse selon l'une quelconque des revendications 8 à 9, caractérisé par une seconde étape de couplage réalisée après lavage et neutralisation du peptide obtenu après l'étape c/, au moyen d'un agent de couplage, afin de permettre la réaction des fonctions amines qui n'avaient pas réagi lors du premier couplage.
12. Procédé de synthèse selon l'une quelconque des revendications 8 à 10, caractérisé en ce que la protection des fonctions tertiaires des acides aminés est réalisée par le 2,6-dichlorobenzyle pour la fonction
OH de la tyrosine, le benzyle pour la fonction OH de la thréonine ou de la sérine ou pour la fonction COOH de l'aspartate ou du glutamate, le t-butylmercapto pour la fonction SH de la cystéine, le tosyle pour l'imidazole de l'histidine ou la fonction NH de l'arginine, le benzyloxycarbonyle pour la fonction NH2 de la lysine, le formyle pour la fonction indole du tryptophane;
13. Procédé de détection in vitro, d'une infection par un rétrovirus HIV susceptible de provoquer un SLA ou un SIDA, caractérisé en ce qu'il comprend
a/ la mise en contact d'au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 avec un échantillon biologique à tester, susceptible de contenir des anticorps contre la protéine F d'un rétrovirus HIV, dans des conditions permettant la formation d'un complexe immunologique peptide-anticorps,
b/ a détection du complexe immunologique forme.
14. Procédé de détection selon la revendication 13, caractérisé en ce que le peptide mis en oeuvre reconnait spécifiquement des anticorps formés contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-1.
15. Procédé de détection selon la revendication 13, caractérisé en ce que le peptide mis en oeuvre reconnait spécifiquement des anticorps formés contre la protéine F d'un rétrovirus HIV-2.
16. Procédé selon la revendication .13, caractérisé en ce que l'on met en oeuvre un mélange de peptides, capable de détecter une infection par un rétrovirus HIV-1 ou HIV-2.
Priority Applications (4)
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|---|---|---|---|
| FR8804406A FR2629460B1 (fr) | 1988-04-01 | 1988-04-01 | Peptides pf16 d'un retrovirus hiv - procede de synthese de ces peptides - leur utilisation pour le diagnostic |
| PCT/FR1989/000151 WO1989009227A2 (fr) | 1988-04-01 | 1989-03-31 | Peptides pf10 a pf19 d'un retrovirus hiv - procede de synthese de ces peptides - leur utilisation notamment pour le diagnostic |
| EP89400905A EP0349354A1 (fr) | 1988-04-01 | 1989-03-31 | Peptides PF10 à PF19 d'un rétrovirus HIV, procédé de synthèse de ces peptides, leur utilisation notamment pour le diagnostic |
| JP1504146A JPH03503639A (ja) | 1988-04-01 | 1989-03-31 | レトロウイルスｈｉｖのペプチドｐｆ１０〜ｐｆ１９、該ペプチドの合成方法、特に診断用としてのその使用 |
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|---|---|
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| FR2629460B1 FR2629460B1 (fr) | 1990-12-21 |
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| FR (1) | FR2629460B1 (fr) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0226513A1 (fr) * | 1985-12-06 | 1987-06-24 | Institut Pasteur | Peptides capables d'inhiber les interactions entre des antigènes et les lymphocytes T4, produits qui en sont dérivés et leurs applications |
| EP0242216A1 (fr) * | 1986-04-16 | 1987-10-21 | THE UNITED STATES OF AMERICA as represented by the Secretary United States Department of Commerce | Clone non cytopathique de virus lymphotropique de T-cellule humaine type III |
| WO1987007642A1 (fr) * | 1986-06-16 | 1987-12-17 | Transgene S.A. | Vaccin, contenant la proteine f du virus du sida |
| EP0187041B1 (fr) * | 1984-12-24 | 1996-05-15 | Genentech, Inc. | Fusions de polypeptides ayant rapport au SIDA |
-
1988
- 1988-04-01 FR FR8804406A patent/FR2629460B1/fr not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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| WO1987007642A1 (fr) * | 1986-06-16 | 1987-12-17 | Transgene S.A. | Vaccin, contenant la proteine f du virus du sida |
Non-Patent Citations (4)
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FR2629460B1 (fr) | 1990-12-21 |
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