DE2934756A1 - Zusammensetzung zur bestimmung von beta 2 -humanmikroglobulin und verfahren zu deren herstellung und deren verwendung - Google Patents
Zusammensetzung zur bestimmung von beta 2 -humanmikroglobulin und verfahren zu deren herstellung und deren verwendungInfo
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Description
Zusammensetzung zur Bestimmung von ß2-Humanmikroglcbulin
und Verfahren zu de ren Herstellung und de ren Verwendung
Die Erfindung "bezieht sich auf eine Zusammensetzung zur
Bestimmung von ß^-Humanmikroglobulin, auf ein Verfahren
zu deren Herstellung und auf deren Verwendung. Insbesondere bezieht sich die Erfindung auf eine Zusammensetzung
zur Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin (sowohl
qualitativ als auch quantitativ), die eine überlegene Lagerstabilität besitzt und mit guter Reproduzierbarkeit
und einem hohen Grad an Genauigkeit rasch zuverlässige Ergebnisse liefert, ohne Störung durch andere Proteine,
welche in einer Versuchs- oder Testprobe enthalten sein können, wobei eine einfache Bestimmungsarbeitsweise und
ein einfaches Bestimmungsinstrument zur Anwendung gelangen.
030011/077 S
Insbesondere bezieht sich, die Erfindung auf eine Zusammensetzung
zur Bestimmung von ßp-Humaniaikroglobulin, welche
aus Teilchen eines synthetischen polymeren Latex,vorzugsweise
aus Teilchen eines synthetischen polymeren Latex vom Styroltyp, ausgewählt aus der Gruppe von Styrolpolymeren,
Styrolcopolymeren und den carboxylierten oder aminohaltigen,
carboxyl!erten Produkten hiervon besteht; ferner bezieht
sich die Erfindung auf ein Verfahren zur Herstellung dieser Zusammensetzung und auf die Verwendung dieser Zusammensetzung.
Bp-Humanmikroglobulin ist ein Protein nit einem relativ
niedrigen Molekulargewicht von etwa 12 000 und es wird im Serum, im Urin, Cerebrospinalflussigkeit, Speichel,
Milch oder dergleichen von Menschen gefunden- Die Wirkung in vivo von ßo-MikroglobulJn ist bis jetzt noch nicht
vollständig geklärt. Es wurde jedoch vor kurzem gefunden, daß bei bestimmten Krankheiten, wie Entzündungen, Karzinomerkrankungen
und Kierenerkrankungen der Gehalt an ßo-Mikroglobulin
in den Korperflussxgkeiten des Patienten ansteigt. Beispielsweise sind Nierenerkranklingen in solche, welche
durch glomerulare Störung hervorgerufen werden und in solche,
welche durch Störungen in Harnkanälchen verursacht werden, unterteilt. Im letzteren Fall nimmt die Menge an ßp-Mikroglobulin
zuerst im Blut, genauer im Serum und dann im Urin zu.
Das ß2-Mikroglobulin ist ein Protein, welches die glomerulare
Basalmembran durchdringt und dann von den Nierenkanälchen
oder Harnkanälchen absorbiert wird. Wenn jedoch eine Störung der Harnkanälchen auftritt, sickert dieses
Protein in den Urin, ohne erneut absorbiert zu werden. Demgemäß ist der ßo-Mikroglobulinspiegel im Urin einer der
besten Parameter für die Wirkung der Harnkanälchen. Auf diese Weise kann eine Störung der Hieren- oder Harnkanälchen
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durch die Bestimmung des Spiegels von ßp-Mikroglobulin
im Serum und Urin diagnostiziert werden.
Bisner war kein geeignetes Mittel zur Beurteilung einer Erkrankung der liieren- oder Harnkanälchen verfügbar.
Sie kann jedoch nun mühelos durch, die Bestimmung des
ßp-Mikroglobulinspiegels im Serum und Urin diagnostiziert
werden, wodurch ein Weg für eine geeignete Behandlung der Erkrankung eröffnet wird. Dies ist für die klinische
Anwendung äußerst wichtig und wertvoll.
Es bestand ein Interesse für die Entwicklung eines Verfahrens,
durch welches ßp-Humanmikroglobulin im Serum oder im Urin
mit einem hohen Ausmaß an Genauigkeit und Zuverlässigkeit bestimmt werden kann. Jedoch erwies sich keines der gebräuchlichen
Kittel für die Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin
als zufriedenstellend. Eine bekannte Maßnahme ist ein Verfahren einer einseinen Eadialimmunodiffusion, bei welchem
in einer Agarplatte, welche einen β.-,-HumanmikiOglobulin-Antikörper
enthält, Bohrungen geschaffen werden, in diese Bohrungen eine Versuchsprobe eingefüllt wird und aus einem
Ausfällungsband, welches bei der Diffusion von ßo-Mikroglobulin
auftritt, das ßp-Humanmikroglobulin bestimmt
wird. Da dieses Verfahren eine niedrige Empfindlichkeit besitzt, kann damit das ßp-Mikroglobulin in der Versuchsprobe lediglich in einer Konzentration oberhalb einer bestimmten
Grenze bestimmt werden.
Die Radioimmunoassay-Kethoäe ist ebenfalls eine gebräuchliche
Methode,nach welcher ßp-Mikroglobulin unter Verwendung
eines mit einem Radioisotopen indizierten ßp-Eumanmikroglobulin-Antikörper gemessen
wird. Dieses Verfahren ist jedoch gefährlich und mühsam, da
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es die Verwendung einer radioaktiven Substanz umfaßt. Es kann
daher nicht durchgeführt werden, wenn nicht eine ausreichende Kontrolle und Einrichtungen zur Anwendung der radioaktiven
Substanz zur Verfugung stehen.
Ein weiteres Beispiel ist ein Verfahren unter Anwendung einer passiven Umkehr-Hämagglutinationsreaktion (RPHA), nach welchem
ß2-Mikroglobulin mit einer äquivalenten Empfindlichkeit, wie
bei der Radioimmunoassay-Methode mühelos bestimmt werden kann.
Da als Träger die roten Blutzellen von einem Tier verwendet werden, hat dieses Verfahren den Nachteil, daß bei der Herstellung
von antikörpersensibilisierten roten Blutzellen,, Vorbehandlungen der roten Blutzellen, z.B. die Fixierung der
roten Blutzellen und Behandlung der roten Blutzellen mit Bindereagenzien, wie Glutaraldehyd oder Gerbsäure erforderlich
sind. Da außerdem eine nicht spezifische Reaktion, welche einem Antikörper für die als Träger verwendeten
roten Blutzellen zugeschrieben wird, bei der praktischen Bestimmung häufig auftritt, ist es notwendig, eine Absorptionsbehandlung mit den roten Blutzellen und einen Kontrollversuch
unter Verwendung von gebräunten Zellen durchzuführen.
Es wurden nunmehr Untersuchungen ausgeführt, um eine Mittel oder eine Methode zur Bestimmung von ßp-Humanmikroglobulin
zu schaffen, die frei von den Nachteilen und Mangeln der gebräuchlichen, vorstehend beschriebenen Arbeitsweisen ist,
und die zuverlässige Ergebnisse mit einem hohen Ausmaß an Genauigkeit unter Verv/endung eines einfachen Gerätes und
unter Anwendung einer einfachen Bestimmungsarbeitsweise liefern kann. Diese Untersuchungen führten zu dem Ergebnis,
daß eine Zusammensetzung, welche Teilchen eines synthetischen polymeren Latices, vorzugsweise Teilchen eines synthetischen
polymeren Latices vom Styroltyp und einen ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper
als Überzug auf der Oberfläche der Teil-
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chen enthält, eine überlegene La gerbe ständigkeit besitzt
und bei der raschen Bestimmung der Konzentration von ßp-Humanmikroglobulin in einer Versuchsprobe mit einem
hohen Ausmaß an Genauigkeit und Zuverlässigkeit und einer guten Reproduzierbarkeit sehr brauchbar ist, wobei ein
einfaches Meßinstrument und eine mühelose Bestimmungsarbeitsweise zur Anwendung gelangen, und wobei keine
Störung durch andere Proteine, welche in der Versuchsprobe enthalten sein können, auftritt. Es wurde auch gefunden,
daß die vorstehend genannte Zusammensetzung in einfacher Weise hergestellt und nicht nur als Latex sondern auch
als getrocknetes Produkt gelagert werden kann.
Aufgabe der Erfindung ist daher die Schaffung einer neuartigen und ausgezeichneten Zusammensetzung zur Bestimmung
von ß2-Humanraikroglobulin, eines Verfahrens zur Herstellung
derselben und die Verwendung der vorstehend genannten Zusammensetzung.
ßp-Humanmikroglobulin ist in verschiedenen menschlichen
Körperflüssigkeiten vorhanden. So können Urin, Milch, Serum und dergleichen als Ausgangs-ßo-Humanmikroglobulin
für die Herstellung des ßp-Humanmikroglobulin-Antikörpers
in der Zusammensetzung gemäß der Erfindung verwendet
werden. Am zweckmäßigsten wird das Ausgangsmaterial aus dem Urin eines Patienten, der an einer der vorstehend
beschriebenen Krankheiten erkrankt ist, hergestellt.
Die Abtrennung des ß2-Humanmikroglobulins kann unter
Anwendung von verschiedenen, an sich bekannten Arbeitsweisen ausgeführt werden. Beispiele für derartige Arbeitsweisen
umfassen ein Zonenelektrophoretisch.es Verfahren, das
Verfahren von Berggird u.a. (I. Berggird et al : J. Biol. Chem.,
24-5, 4095, 1968) durch lonenaustausch-Chromatographie,
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Gelfiltration und das Verfahren von Ohsawa u.a. (M. Ohsawa et
al : Experientia, _29, 1179, 1973).
Das Ausgangs-ßp-Humanmikroglobulin ist zweckmäßig eine
Probe eines einzigen !Proteins, da der Einschluß von Verunreinigungen den nachfolgenden Arbeitsgang erschwert.
Ein Antikörper des ßp-Humanmikroglobulins, welches unter
Anwendung der vorstehend genannten bekannten Arbeitsweisen erhalten werden kann, kann durch Verabreichung des ßp-Mikroglobulins
a]s ein Antigen an ein Tier mit der Fähigkeit zur Erzeugung eines Antikörpers, z.B. Meerschweinchen, Kaninchen
oder Ziegen, in üblicher V/eise zur Immunisierung desselben, Abnahme von Blut aus dem immunisierten Tier und Abtrennung
des ßp-Humanmikroglobulin-Antikörpers aus dem so erhaltenen
Blut hergestellt werden.
Das bei diesem Verfahren verwendete Tier kann irgendein Tier sein, das die Fähigkeit zur Erzeugung von Antikörpern
besitzt. Um jedoch eine große Menge an Antikörper zu erhalten, wird die Verwendung eines großen Tieres bevorzugt.
Gewöhnlich sind Kaninchen oder Ziegen geeignet, wobei jedoch das zu verwendende Tier nicht auf diese beschränkt ist.
Die Abtrennung eines ßp-Humanmikroglobulin-Antikörpers
aus dem diesen enthaltenden Antiserum kann unter Anwendung von bekannten Maßnahmen ausgeführt v/erden. Beispielsweise
wird das Antiserum ausgesalzen und eine Absorption-Eluierung unter Verwendung eines unlöslichen Antigens wird wiederholt.
Verschiedene synthetische Latexteilchen können für die Herstellung
der Zusammensetzung für die Bestimmung von ßp-Humanmikroglobulin
gemäß der Erfindung verwendet werden. Beispiele für Polymere oder Copolymere, welche diesen Latex
bilden, umfassen Polystyrol, carboxyliertes Polystyrol,
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aminohaltiges.carboxyliertes Polystyrol, Polyvinyltoluol,
Styrol/Butadien-Copolymeres, carboxyliertes Styrol/Butadien-Copolymeres,
Styrol/Divinylbenzol-Copolymeres, Vinyltoluol/
tert.-Butylstyrol-Copolymeres, Polyester, Polyacrylsäure,
Polymethacrylsäure, Polyacrylnitril, Acrylnitril/Butadien/
Styrol-Copolymeres, Polyvinylacetat-Acrylat, Polyvinylpyrrolidon und Vinylchlorid/Acrylat-Copolymeres.
Bevorzugte Teilchen von synthetischen polymeren Latices sind
Teilchen von synthetischen Polymerlatices vom Styroltyp aus der Gruppe von Styrolpolyaeren, Styrolcopolymeren^ z.B.
einem Copolymeren von Styrol mit einem Monomeren aus der Gruppe von Chlorstyrol, Methylmethacrylat und Vinylidenchlorid,
und carboxylierte oder aminohaltige carboxylierte Produkte hiervon. Diese synthetischen Polymerlatexteilchen
können nach Vorbehandlung ihrer Oberflächen mit einem nicht ionischen oberflächenaktiven Mittel verwendet werden.
Beispielsweise werden diese Teilchen bevorzugt verwendet, nachdem ein nicht ionisches oberflächenaktives Mittel vom
Äthylenoxydtyp einem Verfahren zum Anhaften daran gebracht wurde, das in der JP-Offenlegungsschrift Nr. 9716/76,
offengelegt am 26. Januar 1976, beschrieben ist. Beispiele für geeignete nicht ionische oberflächenaktive Mittel vom
Äthylenoxydtyp sind ein Blockcopolymeres von Äthylenoxyd
und Polyoxypropylenglykol, Polyoxyäthylenalkyläther und PoIyoxyäthylenaIky1aryläther.
Gemäß der Erfindung besitzen die synthetischen Polymerlatexteilchen
vorzugsweise einen mittleren Teilchendurchmesser von 0,01 bis 10 /um, insbesondere 0,1 bis 1 /um. Zur
Erhöhung der Reproduzierbarkeit der Meßergebnisse werden
vorzugsweise Teilchen mit einem relativ engen Bereich der Größenverteilung verwendet. Das spezifische Gewicht der
Latexteilchen beträgt vorzugsweise etwa 0,9 bis 1,4- und insbesondere 1,1 bis 1,3. Im Falle einer Bestimmung unter
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-ßr-
Anwendung einer Aggjufcinationsreaktion auf einer Obgektträgerglasplatte
können Latexteilchen mit einem "breiten Bereich des spezifischen Gewichts verwendet werden. Im
Falle einer Mikrotitermethode werden Latexteilchen mit einem spezifischen Gewicht von wenigstens 1,1 bevorzugt
verwendet. Die Zusammensetzung zur Bestimmung von ßp-Humanmikroglobulin gemäß der Erfindung kann in einfacher Weise
hergestellt werden. Beispielsweise kann sie dadurch hergestellt werden, daß man einen synthetischen polymeren Latex
vorzugsweise mit einer Konzentration von 0,05 bis 5 °/° mit einem ß2-Humanmikroglobulin-Antikö"rper mit einer Konzentration
von 0,0001 bis 1 % in einem Puffer bei einem pH-Bereich von vorzugsweise etwa 5 his etwa 10, insbesondere
etwa 6,5 his etwa 8 bei einer Temperatur von vorzugsweise
etwa 4 bis etwa 40 C in Berührung bringt. Das Inberührungkann
do <=>
bringen/unter schwachem Rühren während etwa 30 min bis
etwa 24 h ausgeführt werden.
Der zur Anwendung gelangende Puffer kann z.B. eine mit Phosphat gepufferte Salzlösung ^fT/60 Phosphatpuffer
(pH 7,2) mit einem Gehalt von 0,15 M HaCl, abgekürzt PBÖ7
und eine glycingepufferte Salzlösung sein. Erwünschtenfalls
kann 0,01 bis 0,1 % eines Proteins z.B. Rinderserum-
vo-TZUgswexse albumin (abgekürzt BSA) zu einer Antikörperlösung / zugesetzt
werden, um eine nicht spezifische Agglutination zu verhindern. Nach der Beschichtungs- oder Überzugsreaktion
wird die Reaktionsmischung mehrmals durch Zentrifugierung in einer neutralen Salzlösung z.B. einer glycingepufferten
Salzlösung oder in PBS gewaschen. Schließlich können die Latexteilchen mit dem darauf aufgebrachten Überzug von
dem ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper in Form einer Suspension
in einem Verdünnungsmittel gelagert werden. Das Verdünnungsmittel ist vorzugsweise eine Mischung, die durch Zugabe von
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etwa 0,1 % BSA zu einer glycingepufferten Salzlösung
oder zu PBS erhalten vrurde. Es wird ferner "bevorzugt, dem
Verdünnungsmittel 0,01 "bis 0,5 % von Natriumazid (NaN,)
zuzusetzen.
Die Zusammensetzung zur Bestimmung von ß^-Humanmikroglobulin
gemäß der Erfindung kann in Form eines Latices, wie vorstehend "beschrieben, und auch in Form eines getrockneten
Produktes vorliegen. Die Zusammensetzung in Form eines getrockneten Produktes kann erhalten werden, indem man
einen Stabilisator, z.B. eine Aminosäure (z.B. Glycin oder Natriumglutamat) oder Dextran zu dem vorstehend "beschriebenen
Verdünnungsmittel zusetzt, die Latexmasse mit dem darauf befindlichen Überzug des ßo-Humanmikroglobulin-Antikörpers
in dem Verdünnungsmittel suspendiert und die Suspension gefriertrocknet. Die Mengen von Aminosäuren und Dextran sind
etwa 1,2 bis etwa 4 Gew.Teile, beziehungsweise etwa 1,6 bis etwa 6 Gew.Teile je 1 Gew.Teil Latexteilchen.
Die Zusammensetzung zur Bestimmung von ß2-Humanmikroglobulin
gemäß der Erfindung besitzt eine gute Stabilität sowohl in Form eines Latices als auch in Form eines getrockneten
Produktes. Das getrocknete Produkt kann während einer längeren Zeitdauer beispielsweise während mehrerer Jahre stabil gelagert
werden.
Gemäß der Erfindung wird ein Verfahren zur Bestimmung von ß2-Humanmikroglobulin geschaffen, nach welchem ßp-Humanmikroglobulin
in menschlichem Urin oder Serum unter Verwendung der Zusammensetzung, die synthetische Polymerlatexbeilchen
und als Überzug auf den Oberflächenlatexteilchen einen ß^-Humanmikroglobulin-Antikörper umfaßt, qualitativ
oder quantitativ bestimmt wird.
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Zur Bestimmung können an sich bekannte Maßnahmen zur Anwendung
gelangen; beispielsweise kann die Konzentration von ßg-Mikroglobulin in Serum oder "Urin nach einem Mikrotiterverfahren
mühelos bestimmt werden. Gemäß dieser Arbeitsweise wird eine bestimmte Menge eines Verdünnungsmittels
der vorstehend erläuterten Art anteilsweise auf eine Mikroplatte gegossen und dann wird eine bestimmte Menge einer
Versuchsprobe, z.B. von Serum oder Urin in die erste Bohrung oder den ersten Boden eingeführt und allmählich mit einem
Verdünner verdünnt. Ebenfalls wird eine Verdünnungsreihe in der gleichen Weise unter Verwendung eines Standardantigens
hergestellt. Eine bestimmte Menge eines mit ß2-Humanmikroglobulin-Antikörpers
sensibilisierten Latices zu jeder Verdünnungsreihe zugegeben und damit gemischt. Bach Stehenlassen
während einer bestimmten Zeitdauer bei Eaumtemperatur wird der Endpunkt der Agglutination beobachtet und die
absolute Menge von ßg-Mikroglobulin kann durch Vergleich
mit der Standardantigenreihe bestimmt werden.
Bei dem gebräuchlichen Verfahren der Einzelradialimmunodiffusion zur Bestimmung von ßp-Mikroglobulin kann das
ß2~Mikroglobulin nicht bestimmt werden, wenn nicht dessen
Menge wenigstens 5 /U-g je ml einerVersuchsprobe beträgt,
falls die Versuchsprobe Serum oder Urin ist. Da die Neigung zum Auftreten von Fehlern bei einem ß2-Mikroglobulingehalt
von etwa 5 bis 10 /Ug besteht, wird eine etwas höhere Konzentration
bevorzugt. Im Gegensatz dazu ist es bei dem Verfahren zur Bestimmung von ßg-Mikroglobulin gemäß der
Erfindung unter Verwendung des mit dem ß2-Eiimanmikroglobulin-Antikörper
sensibilisierten Latices möglich, eine Bestimmung auszuführen, wenn die Menge von ß2-Mikroglobulin mehr als
1 ng je ml beträgt. Somit zeigt das Verfahren gemäß der Erfindung eine sehr hohe Empfindlichkeit, und die Empfindlich-
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keit ist derjenigen äquivalent
oder höher als diese der Radioimmunoassay-Methode,
die als eine Methode mit der höchsten Empfindlichkeit bei gebräuchlichen Analysen angesehen wird.
Bei einer anderen Ausführungsform der Bestimmung gemäß
der Erfindung wird eine bestimmte Menge einer Versuchsprobe auf eine Objektträgerglasplatte getropft, und getrennt
davon wird eine festgelegte Menge einer ßo-Humaninikroglobulinlösung
von einer bekannten Konzentration tropfenweise zugegeben. Eine bestimmte Menge des mit dem
ßp-Huaanmikroglobulin-Antikörper sensibilisierten Latices
wird zu jeder der Lösungen zugegeben, worauf eine schwache Schwingbewegung erteilt wird. Bei Bewertung des sich ergebenden
Agglutinationsmusters kann die Konzentration von dem ßp-Humanmikroglobulin in der Versuchsprobe innerhalb
weniger Minuten qualitativ bestimmt werden. Eine halbquantitative Bestimmung kann ebenfalls ausgeführt werden,
wenn die Versuchsprobe in einem Probeglas verdünnt wird und die Reaktion mit Bezug auf die jeweilige Verdünnung
beobachtet wird.
Die Zusammensetzung für die Bestimmung von ß^-Humanmikroglobulin
in Form eines Latices oder in Form eines getrockneten Produktes ist den Zusammensetzungen überlegen, die
durch Überziehen von roten Blutkörperchen oder anderen iCrägermaterialien mit ßp-Humanmikroglobulin erhalten wurden,
da aufgrund des Fehlens eine Antigenizität des Trägers selbst nicht—spezifische Reaktionen außer der gewünschten
Antigen-Antikörperreaktion nicht stattfinden, und weil ein ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper direkt auf einen
Latex mühelos durch einfaches Eintauchen einer Antikörperlösung in den Latex ohne Verwendung eines Binders als
Überzug aufgebracht werden kann, und weil sie eine gute
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Lagerstabilität besitzt.
Die neuartige Zusammensetzung gemäß der Erfindung, welche
Latexteilchen und einen darauf als Überzug aufgebrachten ß^-Humanaikroglobulin-Antikörper umfaßt, reagiert überhaupt
nicht mit anderen Proteinen als dem ßg-Humanmikroglobulin
und der träger reagiert ebenfalls nicht mit ßo-Mikroglobulin.
Aufgrund dieser Tatsache kann gesagt werden, daß der ßo-Humanmikroglobulin-Antikörper an die Trägerlatexteilchen
gebunden ist.
Die Erfindung wird nachstehend anhand von Herstellungsbeispielen und Arbeitsbeispielen näher erläutert.
Herstellung von ßo-Humanmikroglobulin:
C.
Ein Kilogramm Ammonium sulfat wurde zu etwa 2 1 Urin eines
an Nierenentzündung erkrankten Patienten gegeben und die Lösung wurde über Nacht bei 4 0C stehengelassen. Die
gebildete Ausfällung wurde gesammelt und in Wasser gelöst. Das unlösliche Material wurde durch Zentrifugierung abgetrennt
und die Ausfällung wurde in Salzlösung aufgelöst und auf eine Sephadex G100-Säule (ein Produkt von Pharmacia
Pine Chemicals Co., Ltd., Schweden) (5 χ 100 cm), gepuffert
mit einer 0,02M Erispufferlösung (pH 8,0) mit einem Gehalt
von 1M Natriumchlorid aufgebracht. Der Puffer wurde bei einem Strömungsausmaß von 40 ml/h fließen gelassen, um eine
Gelfiltration auszuführen. 400 ml eluierter Fraktionen wurden gesammelt, entsalzen und auf ein Volumen von 10 ml konzentriert.
Dann wurde das Produkt auf eine DEAE-Cellulose-Säule
(ein Produkt von Brown Company, USA) (2,5 x 40 cm)
gepuffert mit einem 0,01 M Phosphatpuffer (pH 7,5) aufge-
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bracht und die Eluierung wurde ausgeführt, während die Konzentration von Natriumchlorid in dem Puffer linear auf
0,2 Mol zunahm. 70 ml einer Proteinfraktion, die an erster Stelle eluiert wurde, wurde gesammelt, entsalzen und
auf 10 ml konzentriert. Die Flüssigkeit wurde auf eine SP-Sephadex C 50-Säule (Pharmacia Fine Chemicals Co., Ltd.,
Schweden) (2 χ 35 cm), gepuffert mit einem 0,OA-M Phosphatpuffer
(pH 5S9) aufgebracht und die Eluierung wurde
bei einem Strömungsausmaß von 25 ml je h ausgeführt, wobei
die Konzentration des Puffers linear auf 0,02 Mol erhöht wurde. 100 ml von Fraktionen von 73 ml bis 175 ml Eluat
wurden gesammelt, entsalzen, konzentriert und gefriergetrocknet, wobei 60 ml eines weißen Pulvers erhalten wurden.
Das Produkt zeigte ein einzigesBand bei der Scheibenelektrophorese.
Herstellung von ß^-Humanraikroglobulin-Antikörper:
Das im Herstellungsbeispiel 1 erhaltene ßp-Humanmikroglobulin
wurde in einer physiologischen Salzlösung in einer Konzentration von 4 mg/ml der letzteren aufgelöst. Die Lösung wurde mit
einer gleichen Menge eines vollständigen Freund1sehen Hilfsmittels
vermischt. Die Mischung wurde in einer Menge von 0,1 ml in jedes Faßpolster von 4- gesunden Kaninchen mit
einem Gewicht von etwa 2,3 bis2,5 kg dreimal in der Woche
eingespritzt. Eine Voche später wurde 1 ml einer 0,1 %igen ßp-Humanmikroglobulinlösung indiziert. Drei Wochen nach
der letzten Injektion wurde das Gesamtblut aus der Halsschlagader der Kaninchen entnommen. Das Blut wurde in
üblicherweise zentrifugiert und das sich ergebende Serum wurde
bei 56 0C während 30 min gehalten, wobei etwa 200 ml Antiserum
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gebildet wurden.
Aus der Tatsache,daß ein einziges Ausfällungsband mit einem
Antigen nach einem Ouchtalony-Terfahren und nach der Immunoelektrophorese
gebildet wurde, wurde festgestellt, daß das sich ergebende Antiserum ein einziger Antikörper war.
Herstellung von unlöslichem ß^-Humanmikroglobulin:
5 mg von ßp-Humanmikroglobulin wurden in 5 ml einer 0,2M Essigsäur
epufferlösung (pH 5»0) gelöst und etwa 0,5 ml einer
5 %igen Rinaerserumalbuminlösung wurden zugegeben. Dann
wurde 5 %iger Glutaraldehyd tropfenweise zugegeben, bis
eine Ausfällung gebildet wurde. Die Ausfällung wurde gesammelt, homogenisiert und mit EBS und dann mit einem
Glycin-Salzsäure-Euffer (pH 2,8) und ferner mit EBS gewaschen und bei unter -20 0C gelagert.
Eeinigung von ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper:
Zu dem Antiserum wurde eine gleiche Menge einer gesättigten Lösung von Ammoniumsulfat ,gegeben, worauf vollständig gemischt
wurde. Die Mischung wurde bei Raumtemperatur während 30 min stehengelassen. Die sich dabei bildende Ausfällung
wurde durch Zentrifugalabscheidung gesammelt, mit 0,5 gesättigter Lösung von Ammoniumsulfat gewaschen und dann
gegen EBS dialysiert. Dann wurde das im Herstellungsbeispiel 3 hergestellte unlösliche ßp-Humanmikroglobulin zu dem Dialysat
zugegeben und die Mischung wurde anschließend bei Saumtemperatur
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30 min stehen-gelassen. Die Mischung wurde zur Trennung
in eine überstehende Flüssigkeit und in eine Abscheidung zentrifugiert. Zu der überstehenden Flüssigkeit wurde
erneut unlösliches ßo-Humanmikroglobulin zugegeben und die
Mischung wurde in gleicher Weise behandelt. Die zwei Ausfällungen wurden vereinigt und mit PBS gewaschen. Dann wurde
ein Glycin-Salzsäure-Puffer (pH 2,8) zugegeben und die
Mischung wurde 5 min lang geschüttelt, worauf zentrifugiert
wurde. Die Ausfällung wurde in ähnlicher Weise mit einem Glycin-Salzsäure-Puffer behandelt und die sich ergebenden
überstehenden Flüssigkeiten vereinigt. Die Mischung wurde gegen PBS dialysiert, wobei ein gereinigter ßg-Humanmikroglobulin-Antikörper
gebildet wurde.
Mit ßo-Humanmikroglobulin-Antikörper sensibilisierter Latex:
Polystyrollatex (ein Produkt von Takeda Chemical Industry Co., Ltd; SDL 59; spezifisches Gewicht 1,14; Teilchendurchmesser
0,9 /tun) wurde mit PBS so verdünnt, daß die Konzentration
der Teilchen 0,25 % erreichte, worauf eine gleiche Menge eines gereinigten Antikörpers, der bis auf das 60-fache
mit PBS verdünnt wurde, zugegeben wurde. Die Mischung wurde bei 37 0C während zwei Stunden gehalten, worauf .
zentrifugiert wurde. Die Latexteilchen wurden gesammelt und mit PBS und dann mit einem Verdünnungsmittel gewäsehen.
Danach wurden die Latexteilchen bis auf eine Konzentration von 0,25 % unter Verwendung eines Verdünnungsmittels suspendiert,
wobei ein mit ß2-Humanmikroglobulin-Antikörper sensibilisierter Latex gebildet wurde.
Wenn eine ß2-Humanmikroglobulinlösung zu diesem sensibilisierten Latex zugegeben wurde, trat eine Agglutination ein.
Es fand jedoch keine Agglutination statt, wenn Albumin-,
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IgG-, IgM- und IgA-Lösungen jeweils hierzu zugegeben wurden.
Das verwendete Verdünnungsmittel war PBS mit einem Gehalt
an 0,08 % BSA und 0,1 % Natriumazid.
.Arbeitsbeispiel 2
Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin:
Ein Verdünnungsmittel in einer Menge von 0,025 ml wurde jeweils in eine Bohrung einer Mikroplatte vom V-Ί^ρ gegossen und 0,025 ml
Serum oder eines mit einem geeigneten Verdünnungsmittel verdünnten
SeruEB wurden der ersten Bohrung zugegeben und mit einem Verdünner nach einem Reihendoppelverdünnungsverfahren
allmählich verdünnt. Ferner wurden 0,025 ml einer Standardlösung mit einem Gehalt von 0,01 >ug ßp-Humanmikroglobulin
je ml der ersten Bohrung einer weiteren Reihe zugegeben und
in gleicher Weise verdünnt. Dann wurden 0,025 ml des mit
ß2-Humanmikroglobulin-Antikörper sensibilisierten Latices in jede der Bohrungen gegossen und nach ausreichendem Vermischen
bei Raumtemperatur während mehr als 10 h stehengelassen, um den Endpunkt der Agglutination zu beobachten. Wenn
eine Antigen-Antikörper-Reaktion stattfand, wurden die Latexteilchen
auf der gesamten Oberfläche des Bodens einer Bohrung dispergiert. Wenn keine Antigen-Antikörper-Reaktion stattfand,
sammelten sich die Latexteilchen in der Mitte von jeder Bohrung. Auf diese Weise kann der Endpunkt der Agglutination
bewertet werden. Nach dem vorstehend angegebenen Verfahren wurde die Menge von ßo-Mikroglobulin mit Bezug
auf sieben Proben von Serum, das auf das 100-fache verdünnt war, und sieben Proben von Urin, der auf das 50-fache verdünnt
war, bestimmt. Die Ergebnisse sind in der nachstehenden Tabelle I zusammengestellt.
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Probe
Konzentration von
Standard-ßo-Mikroglobulin
Standard-ßo-Mikroglobulin
Agglutationsmuster
(ng/ml)
2,5 1,25 0,625 0,312 0,156 0,078 0,03S
Konz entration in der Probe (ng/ml)
Gesunder Erwachsener (32 Jahre
alter Mann)
Gesunder Erwachsener (43 Jahre
alter Mann)
Gesunder Erwachsener (22 Jahre
alter Mann)
Leukämie-Patient (9 Jahre alt,
männlich)
53 Jahre alter Mann, erkrankt an Magenkrebs
62 Jahre alter Mann, erkrankt an Nierenversagen
32 Jahre alte Frau, erkrankt an SLE
0,5 1
8 8
über 8
Gesunder Erwachsener (32 Jahre
alter Mann) Gesunder Erwachsener (43 Jahre
alter Mann) Gesunder Erwachsener (22 Jahre
alter Mann)
57 Jahre alter Mann mit Knochenmarkerkrankung
(Myeloma)
9 Jahre alt, männlich, erkrankt an Leukämie
62 Jahre alter Mann, erkrankt an Nierenversagen
32 Jahre alte Frau, erkrankt an SLE 0,25 0,13 0,25
über 8 Ot <
Anmerkung
+: positiv; -: negotiv
Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin durch Objektglas-Aggregation
(Slide Aggregation):
Polystyrollatex (ein Produkt von Dow Chemical; Teilchendurchmesser
0,22 + 0,006 /um; spezifisches Gewicht 1,05) wurde mit einem Glycin-Natriuachlorid-Puffer (pH 8,4) auf 1 %
verdünnt und eine gleiche Menge des gereinigten Antikörpers wurde zugegeben. Die Mischung wurde über Nacht bei 4 0C
stehengelassen und dann zentrifugiert, wobei der Latex abgetrennt wurde. Der Latex wurde einmal mit einem Glycin-Natriumchlorid-Puffer
gewaschenund auf eine Konzentration von 1 % in einem Glycin-Natriumchlorid-Puffer mit einem Gehalt
von 1 % BSAsuspendiert, wobei ein sensibilisierter Latex
gebildet wurde.
50 yul einer ßp-Humanmikroglobulin-Lösung mit einer Konzentration
von 400 ng/ml, 200 ng/ml, 100 ng/ml, 50 ng/ml oder 25 ng/ml wurden getrennt tropfenweise auf ein Objektglas aufgebracht.
Dann wurden 50 /Ul des erhaltenen sensibilisierten Latices
tropfenweise auf die Oberseite jeweils zugegeben und unter sanftem Rühren während einiger Minuten wurde die Reaktion
beobachtet. Ein Agglutinationsmuster erschien, wenn die Konzentration der ßo-Humanmikroglobulinlösung 400 ng/ml,
200 ng/ml und 100 ng/ml betrug. Es trat jedoch kein Agglutinationsmuster in Erscheinung bei einer Konzentration von
50 ng/ml und 25 ng/ml.
Nach der vorstehend angegebenen Arbeitsweise wurde der Gehalt an ß2-Humanmikroglobulin bei sechs Beispielen von Seren und
0300Π/077Θ
sechs Beispielen von Urin bestimmt. Die Ergebnisse sind in
der nachstehenden Tabelle II zusammengefaßt.
030011/0779
Tabelle II: Latexagglutinationswert
Fersuchsprobe | Agglutinations muster |
Serum (verdünnt auf das 50-fache) |
— | Konzentration in der Probe |
100 50 25 + + |
Gesunder Erwachsener (32 Jahre alter Mann) |
|||||
Gesunder Erwachsener (43 Jahre alter Mann) |
+ | weniger als 2,5 g/nl |
|||
Gesunder Erwachsener (22 Jahre alter Mann) |
+ | It | |||
Leukämie-Patient (9 Jahre alt, männlich) |
+ | M | |||
62 Jahre alter Mann, er krankt an Hierenversagen |
mindestens 5 g/ml |
||||
J2 Jahre alte Frau, erkrankt an SLE |
_ | [I | |||
Urin (verdünnt auf das 10-fache) |
_ | η | |||
Gesunder Erwachsener (32 Jahre alter Mann) |
— | ||||
Gesunder Erwachsener (43 Jahre alter Mann) |
+ + |
weniger als 0,5 g/ml |
|||
Gesunder Erwachsener (22 Jahre alter Mann) |
+ | It | |||
Leukämie-Patient (9 Jahre alt, männlich 62 Jahre alter Mann, erkrankt an Nierenversagen |
It | ||||
32 Jahre alte Prau, erkrankt an SLE |
400 200 ++ + |
mindestens 1 g/ml 11 |
|||
Kontrolle | Il | ||||
Konzentration der Standard- ß2-Mikroglobulinlösung (ng/ml) Agglutinationsmuster |
|||||
030011/0779
-23- 2334756
Durch Ausführung einer Behandlung in gleicher Weise wie
in Arbeitsbeispiel 1 wurde ein Latex sensibilisiert, gewaschen und in einem Verdünnungsmittel mit einem Gehalt
von 0,5 % Glycin und 0,7 % Dextran T-10 (ein Produkt von
Pharmacia Pine Chemicals Co., Ltd., Schweden) so suspendiert, daß die Konzentration der Latexteilchen 1,25 % erreichte.
Die Suspension wurde dann in üblicher Weise gefriergetrocknet, wobei eine Zusammensetzung von Latexteilchen mit einer
Empfindlichkeit gegenüber einem ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper
erhalten wurde.
Ein Verdünnungsmittel wurde zu der in Arbeitsbeispiel 4 erhaltenen Latexteilchenzusammensetzung mit einer Empfindlichkeit
gegenüber ίϊρ-Humanmikroglobulin-Antikörper zugegeben.
Bei Ausführung der gleichen Arbeitsweise wie in Arbeitsbeispiel 2 wurde dann die Menge von 3p-Mikrogibbulin
in Serum und Urin bestimmt. Es wurden dabei ähnliche Ergebnisse erhalten.
Aus den in den vorstehenden Beispielen erhaltenen Ergebnissen ist klar ersichtlich, daß die Menge von ßp-Mikrοglobulin in
Serum und Urin von Patienten, die an verschiedenen Krankheiten erkrankt sind, einen offensichtlich höheren Wert
als derjenige in den Seren und Urinflüssigkeiten von gesunden Erwachsenen zeigten. Demgemäß ist die Bestimmung
der Menge von ßp^-Mikroglobulin in Blut und Urin äußerst
wertvoll für die Diagnose von diesen Erkrankungen.
Getrennt wurde die Menge von ß2-Mikroglobulin in dem Serum
030011/0779
und in Urin von Menschen gemessen, wobei ein mit ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper
sensibilisierter Latex, hergestellt aus dom Antiserum einer Ziege unter Anwendung der gleichen
Arbeitsweise wie in Herstellungsbeispiel 4 und in den nachfolgenden Arbeitsbeispielen, verwendet wurden. Die Ergebnisse
waren völlig die gleichen wie in den vorstehend aufgeführten Tabellen.
Unter Verwendung des mit ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper
sensibilisierten Latices oder der den sensibilisierten Latex
gemäß der Erfindung enthaltenden Zusammensetzung kann die Menge von ßo-Mikroglobulin innerhalb einer kürzeren Zeitdauer
gemessen werden, wenn eine Probe (menschliches Serum oder menschlicher Urin) in einer sehr geringen Menge von
weniger als 0,03 el vorhanden ist. Die Empfindlichkeit ist
äußerst hoch und ein ng von ß^-Mikroglobulin je 1 ml der
Versuchsprobe kann bestimmt werden. Demgemäß gewährt die Zusammensetzung gemäß der Erfindung eine wichtige und brauchbare
Information für die Diagnose von Leukämie, Nierenerkrankungen, Entzündungen oder dergleichen, und ihr Anwendungsbereich
ist sehr breit. Da ferner die Menge der Versuchsprobe sehr gering sein kann, ist die Zusammensetzung
gemäß der Erfindung besonders geeignet für Kinder, insbesondere für Neugeborene und Säuglinge, von welchen lediglich eine kleine
Blutmenge ent -nommen werden kann.
030011/077«
Claims (11)
- Pat ent ansprüciie1J Zusammensetzung zur Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin, ■bestehend aus synthetischen Polymerlatexteilchen und einem als Überzug auf die Oberflächen der Latexteilchen aufgebrachten ß2-Humanmikroglobulin-lntikörper.
- 2. Zusammensetzung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Latexteilchen einen mittleren Teilchendurchmesser von 0,01 bis 10 yum besitzen.
- 3. Zusammensetzung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die Latexteilchen ein spezifisches Gewicht von 0,9 bis 1,4 besitzen.
- 4. Zusammensetzung nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß sie ferner einen Stabilisator aus der Gruppe von Aminosäuren und Dextran enthält.
- 5. Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, daß die synthetischen Polymerlatexteilchen Teilchen eines synthetischen Polymerlatex vom Styroltyp aus der Gruppe von Laticesvon Styrolpolymeren, Styrolcopolymeren und den carboxylierten oder aminohaltigen carboxylierten Produkten hiervon sind.
- 6. Zusammensetzung zur Bestimmung von ßo-Humanmikroglobulin nach Anspruch 1, bestehend aus Teilchen eines synthetischen Polymerlatices vom Styroltyp mit einem mittleren Teilchendurchmesser von 0,01 bis 10/um und einem spezifischen Gewicht von 0,9 bis 1,4, aus der Gruppe von Styrolpolymeren, Styrolcopolymeren und den carboxylierten oder aminohaltigen carboxylierten Produkten hiervon, und einem auf die Oberflächen030011/072934758der Latexteilchen als Überzug aufgebrachten ßo-Eumanmikroglobulin-Antikörper.
- 7· Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß sie in Form eines Latices vorliegt.
- 8. Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß sie in Form eines getrockneten Produktes von dem Latex vorliegt.
- 9..Verfahren zur Bestimmung von ßp-Humanmikroglobulin, dadurch gekennzeichnet, daß man in menschlichem Urin oder Serum unter Verwendung einer Zusammensetzung, bestehend aus synthetischen Polymerlatexteilchen und einem auf die Oberfläche der Teilchen als Überzug aufgebrachten ßg mikroglobulin-Antikörper qualitativ oder quantitativ g mikroglobulin bestimmt.
- 10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, daß die Bestimmung unter Anwendung eines Mikrotiterverfahrens ausgeführt wird.
- 11. Verfahren zur Herstellung einer Zusammensetzung zur Bestimmung von ßp-Humanmikroglobulin, bestehend aus synthetischen Polymerlatexteilchen und einem auf die Oberfläche der Teilchen als Überzug aufgebrachten ßp-Eumanmikroglobulin-Antikörper, dadurch gekennzeichnet, daß man einen synthetischen Polymerlatex mit einer Konzentration von 0,05 bis 5 % mit einem ßp-Humanmikroglobulin-Antikörper mit einer Konzentration von 0,0001 bis 1 % in einem Puffer bei einem pH von etwa 5 bis etwa 10 bei einer Temperatur von etwa 4 bis etwa 40 C in Berührung bringt.030011/077*
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US4575486A (en) * | 1983-10-26 | 1986-03-11 | International Remote Imaging Systems, Inc. | Process for differentiating the origin of particles in urine |
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DK160944C (da) * | 1986-01-16 | 1991-10-21 | Novo Industri As | Modificerede beta2-mikroglobuliner og farmaceutiske praeparater indeholdende disse |
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EP0247592B1 (de) * | 1986-05-30 | 1992-03-04 | Kanegafuchi Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha | Sorbentmittel für beta 2-Mikroglobulin und Immunoglobulin L-Kette |
NL8602915A (nl) * | 1986-11-17 | 1988-06-16 | Innogenetics Nv | Werkwijze en diagnostisch middel voor het diagnostiseren en/of prospectief volgen van letsel ter hoogte van de pulmonaire microcirculatie. |
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CN109975550A (zh) * | 2018-12-29 | 2019-07-05 | 宁波普瑞柏生物技术股份有限公司 | 消除β2-微球蛋白检测中钩状效应的方法和试剂盒 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3088875A (en) * | 1959-10-27 | 1963-05-07 | Hyland Lab | Immunological diagnostics utilizing polystyrene latex particles of 0.15 to 0.25 micron |
US3551555A (en) * | 1965-04-15 | 1970-12-29 | Organon | Coated immunochemical reagent particles and process of preparation |
DE2204684A1 (de) * | 1971-02-01 | 1972-08-17 | Hoffmann La Roche | Verfahren zum Nachweis von Antikörpern bzw. Antigenen in einer Körperflüssigkeit |
-
1978
- 1978-08-28 JP JP10389078A patent/JPS5530652A/ja active Pending
-
1979
- 1979-08-27 CH CH776879A patent/CH645727A5/de not_active IP Right Cessation
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- 1979-08-28 GB GB7929797A patent/GB2030294B/en not_active Expired
- 1979-08-28 FR FR7921528A patent/FR2435039A1/fr active Granted
- 1979-08-28 DE DE19792934756 patent/DE2934756C2/de not_active Expired
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US3088875A (en) * | 1959-10-27 | 1963-05-07 | Hyland Lab | Immunological diagnostics utilizing polystyrene latex particles of 0.15 to 0.25 micron |
US3551555A (en) * | 1965-04-15 | 1970-12-29 | Organon | Coated immunochemical reagent particles and process of preparation |
DE2204684A1 (de) * | 1971-02-01 | 1972-08-17 | Hoffmann La Roche | Verfahren zum Nachweis von Antikörpern bzw. Antigenen in einer Körperflüssigkeit |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
G.Müller, Klin.Biochem. und Laboratoriums- diagnostik, Stuttgart u. New York, 1977, S. 53 und 54 * |
Jap.J.of Clin.Path., Vol. 25, 1977, Suppl., Ausatz: Testuo Tomiyama et al., B2-Microglobulin u.Lysozyme Determination by Reverse Passive Hemagglutination * |
Scand.J.clin.Lab.Investig., Vol.28, 1971, S. 439-443 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
SE446130B (sv) | 1986-08-11 |
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FR2435039A1 (fr) | 1980-03-28 |
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Ipc: G01N 33/546 |
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