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WO2022224966A1 - 6種混合液状ワクチン組成物 - Google Patents

6種混合液状ワクチン組成物 Download PDF

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WO2022224966A1
WO2022224966A1 PCT/JP2022/018211 JP2022018211W WO2022224966A1 WO 2022224966 A1 WO2022224966 A1 WO 2022224966A1 JP 2022018211 W JP2022018211 W JP 2022018211W WO 2022224966 A1 WO2022224966 A1 WO 2022224966A1
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WO
WIPO (PCT)
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adjuvant
hbs
prp
dpt
aluminum
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Application number
PCT/JP2022/018211
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English (en)
French (fr)
Inventor
駿 山下
達哉 白井
和広 大門
智博 簑田
慎二 赤▲崎▼
香奈衣 石川
春菜 岩田
Original Assignee
Kmバイオロジクス株式会社
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Publication date
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Priority to CN202280029659.2A priority patent/CN117177768A/zh
Priority to JP2023515483A priority patent/JP7526880B2/ja
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    • C12N2730/10134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
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    • C12N2770/32611Poliovirus
    • C12N2770/32634Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to the field of vaccines used for pediatric vaccination, including Diphtheria, Pertussis, Tetanus, Polio, Haemophilus influenzae type b (Hib), and Hepatitis B (HepB). ) for the production of a stable liquefied formulation of a 6-kind combination vaccine.
  • Inactivated pertussis-diphtheria-tetanus vaccine DPT
  • measles-rubella vaccine measles-rubella vaccine
  • HepB hepatitis B
  • mumps vaccine varicella vaccine
  • Haemophilus influenzae type b (Hib) vaccine HAV
  • IPV inactivated polio
  • Quattrovac registered trademark
  • Tetrabik registered trademark
  • DPT pertussis-diphtheria-tetanus vaccine
  • Square Kids registered trademark
  • These 4-type mixed vaccines are liquid preparations in which formaldehyde-inactivated antigens are adsorbed to aluminum adjuvants.
  • Quattrovac and Tetrabik use an inactivated Sabin strain, which is an attenuated strain of poliovirus, while Square Kids uses an inactivated wild (very virulent) strain (Salk (Salk Co., Ltd.) is used.
  • Alk very virulent strain
  • aluminum adjuvants are used because they are less prone to side reactions, and aluminum hydroxide and aluminum phosphate are known.
  • a 5-type combined vaccine is under development by adding Hib antigen (polyribosyl-ribitol-phosphate: PRP) for Hib vaccine to these 4-type combined vaccines.
  • Hib antigen polyribosyl-ribitol-phosphate: PRP
  • PRP polyribosyl-ribitol-phosphate
  • the technical problem is the binding and retention of the PRP conjugated to the carrier protein, that is, the suppression of detachment. disclosed.
  • Example 6 of this document does not describe a specific manufacturing method, Non-Patent Document 1 has a detailed description.
  • P pertussis antigen
  • diphtheria toxoid D
  • tetanus toxoid T
  • the poliovirus is then purified and formalin inactivated (IPV).
  • IPV formalin inactivated
  • the final mixture of these is the DPT-IPV adjuvant, and by adding PRP conjugated to tetanus toxoid (T) (PRP-T conjugate), five types of DPT-IPV-Hib Combination vaccines can be prepared (Patent Document 1, Non-Patent Document 1).
  • a 6-type mixed vaccine consisting of DPT-IPV-Hib-HBs, which is a combination of the above 5-type mixed vaccine and the hepatitis B surface (HBs) antigen for hepatitis B vaccine
  • HBs hepatitis B surface antigen for hepatitis B vaccine
  • Infanrix-Hexa is a kit preparation consisting of a solution of formaldehyde-inactivated DPT-IPV-HBs adsorbed to aluminum hydroxide adjuvant and a lyophilized product of PRP as a Hib antigen adsorbed to aluminum phosphate adjuvant.
  • Hexacima/Hexyon and Vaxelis are liquid preparations in which antigens inactivated with formaldehyde or glutaraldehyde are adsorbed to aluminum hydroxide adjuvant.
  • Patent Document 2 discloses a 6-kind mixed liquid vaccine containing DPT-IPV-Hib-HBs (these antigens are adsorbed to aluminum salts). Patent Document 2 also states that Hib antibody titers conjugated to tetanus protein tend to lose their immunogenicity over time when PRP is adsorbed to aluminum salts.
  • WO 2005/020003 also discloses that the addition of anions, especially phosphate, carbonate or citrate ions, prevents the removal of Hib antigen (PRP) from aluminum hydroxide oxide. It has been described that it can be prevented and maintain its immunogenicity.
  • Patent Document 3 also has a similar description.
  • Patent Document 4 describes that the addition of anions desorbs the HBs antigen when the HBs antigen is adsorbed on aluminum oxide hydroxide.
  • Patent Document 4 in a six-type mixed liquid vaccine containing aluminum hydroxide, HBs antigen, and Hib antigen conjugated with a carrier protein, HBs antigen remains adsorbed to aluminum hydroxide oxide, but Hib antigen is adsorbed.
  • a method for preparing a liquid combination vaccine has been disclosed. In the method for preparing the liquid combination vaccine disclosed in Patent Document 4, first, the HBs antigen is adsorbed to aluminum hydroxide oxide to obtain the HBs antigen/aluminum hydroxide oxide complex, and then the cation is added at a concentration of at least 100 mg/L.
  • a method of preparation comprising mixing HBs antigen/aluminum hydroxide oxide complex with Hib antigen in the presence of amino acids and phosphate ions at a concentration of 35-45 mmol/L.
  • the adsorption rate of HBs antigen to aluminum gel was 95-98% at the time of preparation, and the adsorption rate of HBs antigen in the 5°C storage stability test was 88-91% after 9 months.
  • the non-adsorption of PRP to aluminum gel was 20.0-22.6 ⁇ g/mL at the time of preparation, and the non-adsorption of PRP in the 5°C storage stability test was confirmed. was 23-27.0 ⁇ g/mL at 9 months and 19.9-23.9 ⁇ g/mL at 22 months, showing little change.
  • the object of the present invention is to liquefy a six-component mixed vaccine consisting of DPT-IPV-Hib-HBs, in which the HBs antigen is stably adsorbed and retained on an aluminum adjuvant, and the Hib antigen PRP is stably retained on a carrier protein. It is to provide formulations.
  • the present inventors found that by optimizing the final added phosphoric acid concentration and pH, the HBs antigen is stably adsorbed and retained on the aluminum adjuvant, and the PRP is stably retained.
  • the present inventors have found that the present invention has been completed.
  • the present invention includes the following.
  • Stabilization of a hexavalent vaccine against Diphtheria, Pertussis, Tetanus, Polio, Haemophilus influenzae type b (Hib) and Hepatitis B (HepB) including the following steps:
  • a method for producing a liquefied formulation (1) mixing diphtheria toxoid (D) and tetanus toxoid (T) with aluminum adjuvant to produce DT adjuvant; (2) mixing hepatitis B surface (HBs) antigen with the DT adjuvant obtained in step (1) to produce DT-HBs adjuvant; (3) mixing pertussis antigen (P) with the DT-HBs adjuvant obtained in step (2) to produce DPT-HBs adjuvant; (4) mixing the DPT-HBs adjuvant obtained in step (3) with inactivated poliovirus (IPV) to produce DPT-IPV-HBs adjuvant; (5) After adding a succinate phosphate buffer
  • step (5) succinate phosphate buffer (pH 5.5) is added so that the added phosphoric acid concentration is 2 to 8 mmol / L in terms of final concentration
  • step (5) succinate phosphate buffer (pH 5.5) is added so that the added phosphoric acid concentration is 2 to 8 mmol / L in terms of final concentration
  • step (5) succinate phosphate buffer (pH 5.5) is added so that the added phosphoric acid concentration is 2 to 8 mmol / L in terms of final concentration
  • step (5) succinate phosphate buffer (pH 5.5) is added so that the added phosphoric acid concentration is 2 to 8 mmol / L in terms of final concentration
  • a stable six-component mixed vaccine liquefied formulation having an HBs antigen adsorption rate to an aluminum adjuvant of 99% or more and a free PRP content of Hib bound to a carrier protein of less than 20% is obtained. becomes possible.
  • a stable liquefied formulation of a hexavalent vaccine produced by the method of the present invention can provide a sufficient antibody titer (immunogenicity) against the 6 bacteria or viruses required for vaccination.
  • FIG. 1 is a schematic diagram showing an outline of a method for producing a stable liquefied preparation of a 6-kind mixed vaccine according to the present invention.
  • the present invention provides a 6-type combined vaccine against Diphtheria, Pertussis, Tetanus, Polio, Haemophilus influenzae type b (Hib) and Hepatitis B (HepB), comprising the following steps: It relates to a method for producing a stable liquefied preparation, and a stable liquid vaccine composition having an HBs antigen adsorption rate to an aluminum adjuvant of 99% or more and a free PRP content of Hib bound to a carrier protein of less than 20%.
  • aluminum phosphate gel As the aluminum adjuvant, it is preferable to use aluminum phosphate gel as the aluminum adjuvant.
  • aluminum hydroxide (synonymous with aluminum hydroxide oxide) is also known as an aluminum adjuvant.
  • Aluminum phosphate gel is preferably used to obtain a stable liquid vaccine composition with a free PRP content of less than 20% of Hib antigen.
  • the amount of aluminum adjuvant to be added is in the range of 200 to 400 ⁇ g/dose, but is not limited thereto.
  • the adsorption rate of the PRP-T conjugate bound to the carrier protein to the aluminum phosphate gel is preferably 30% or less.
  • each of the six combined vaccines for Diphtheria, Pertussis, Tetanus, Polio, Haemophilus influenzae type b (Hib) and Hepatitis B (HepB) Diphtheria toxoid (D), tetanus toxoid (T), hepatitis B surface (HBs) antigen, pertussis antigen (P), inactivated poliovirus (IPV) and PRP as Hib antigen are used as antigens.
  • PRP as Hib antigen for example, a PRP-T conjugate can be used.
  • Step (1) diphtheria toxoid (D) and tetanus toxoid (T) are adsorbed onto aluminum adjuvant to produce DT adjuvant.
  • aluminum adjuvant it is preferable to use an aluminum phosphate gel as described above.
  • the WHO standard requires tetanus toxoid to have a purity exceeding 1,000 Lf (Limit of flocculation)/mgPN.
  • the standard for Hib conjugate vaccines in the European Pharmacopoeia (EP) is >1,500 Lf/mgPN.
  • Methods for purifying tetanus toxoid include ammonium sulfate precipitation, trichloroacetic acid precipitation, column chromatography (gel filtration chromatography, affinity chromatography), salting out, dialysis, and the like.
  • Step (2) In step (2), hepatitis B surface (HBs) antigen is mixed with the DT adjuvant obtained in step (1) and left at 15-30°C for 40-96 hours to produce DT-HBs adjuvant.
  • HBs hepatitis B surface
  • Step (3) In step (3), the DT-HBs adjuvant obtained in step (2) is mixed with pertussis antigen (P) to produce DPT-HBs adjuvant.
  • P pertussis antigen
  • Step (4) In step (4), the DPT-HBs adjuvant obtained in (3) is mixed with inactivated poliovirus (IPV) to produce DPT-IPV-HBs adjuvant.
  • IPV inactivated poliovirus
  • Step (5) a succinate phosphate buffer is added to the DPT-IPV-HBs adjuvant obtained in step (4), and then PRP as a Hib antigen, such as a PRP-T conjugate, is added to obtain DPT.
  • PRP as a Hib antigen such as a PRP-T conjugate
  • the purpose of adding the succinate phosphate buffer in step (5) is to adjust the concentration of the final added phosphoric acid according to the amount of aluminum adjuvant added. That is, succinate phosphate buffer solution (pH 5.5) is added so that the added phosphate concentration is 2 to 8 mmol/L in terms of final concentration.
  • succinate phosphate buffer pH 5.5
  • succinate phosphate buffer pH 5.5
  • succinate phosphate buffer pH 5.5
  • succinate phosphate buffer pH 5.5
  • succinate phosphate buffer pH 5.5
  • a PRP conjugate in which PRP and a carrier protein are bound can be used as PRP, which is a Hib antigen.
  • Antibodies against PRP, the Hib capsular polysaccharide, are known to be effective in protecting against Hib infection. The effect is insufficient for infants under 18 months of age. Therefore, a conjugate vaccine that is T cell-dependent by conjugating (binding) a carrier protein to PRP has been developed and used for infants.
  • PRP conjugates in which a polysaccharide such as PRP is bound to a carrier protein are known.
  • PRP conjugates can be prepared by known conjugation techniques. For example, PRP can be attached via a thioether bond.
  • PRP is activated with 1-cyano-4-(dimethylamino)pyridine tetrafluoroborate (CDAP) to form a cyanate ester.
  • CDAP 1-cyano-4-(dimethylamino)pyridine tetrafluoroborate
  • the PRP activated in this way can be conjugated directly or via a spacer group to the amino group of the carrier protein.
  • a cyanate ester is coupled with hexanediamine and the amino-derivatized polysaccharide and carrier protein are conjugated by heteroligation chemistry involving the formation of a thioether bond.
  • the conjugates can be prepared by reductive amination methods.
  • Yet another method involves coupling adipic acid dihydrazide (ADH)-derivatized cyanogen bromide (CNBr)-activated polysaccharides to carrier proteins via carbodiimide condensation.
  • ADH adipic acid dihydrazide
  • CBr cyanogen bromide
  • PRP used here may be PRP having a lower molecular weight than native PRP, as described in Patent Document 1.
  • Carrier proteins include tetanus toxoid, pertussis toxoid, diphtheria toxoid, CRM197, a gene variant of diphtheria toxoid, non-capsular Haemophilus influenza D antigen, and meningitis group B outer membrane protein (OMP).
  • a typical carrier protein for PRP conjugates is tetanus toxoid.
  • tetanus toxoid When tetanus toxoid is used as a carrier protein, its purity should be at least 1,000 Lf/mgPN, which is the WHO standard. In the method of the present invention, the higher the purity of the tetanus toxoid the better, preferably between 2,500 and 3,500 Lf/mgPN. More preferably 2,900 to 3,300 Lf/mgPN.
  • Step (6) In step (6), if the pH of the DPT-IPV-Hib-HBs adjuvant obtained in step (5) is not in the range of 5.4-5.9, a pH adjuster is added to adjust the pH to 5.4-5.9. .
  • the pH of the final product In order to obtain a stable liquid vaccine composition in which the HBs antigen adsorption rate to aluminum adjuvant is 99% or more and the free PRP content of Hib antigen bound to the carrier protein is less than 20%, the pH of the final product is adjusted to It should be in the range of 5.4 to 5.9. If the pH of the final product is not within this range, the desired free PRP content of Hib cannot be obtained.
  • the free PRP content can be measured by the method described in Non-Patent Documents 2-4 and Patent Document 4.
  • the measurement of free PRP content in the present invention was performed by the method described in Example 3 of Patent Document 1.
  • adsorption of HBs antigen to an aluminum adjuvant can be performed by the methods described in Patent Document 4, Non-Patent Document 5, and the like.
  • the amount of HBs antigen adsorbed to the aluminum adjuvant in the present invention was calculated by subtracting the content of HBs antigen in the supernatant from the total content of HBs antigen.
  • the total content of HBs antigen was determined by dissolving the aluminum adjuvant with a chelating agent such as citric acid, using Tosoh's automated enzyme immunoassay device AIA-360 and Tosoh's hepatitis B virus surface antigen kit.
  • a chelating agent such as citric acid
  • Tosoh's automated enzyme immunoassay device AIA-360 and Tosoh's hepatitis B virus surface antigen kit was determined by centrifugation, the supernatant containing unadsorbed HBs antigen was recovered, and analyzed using Tosoh's automatic enzyme immunoassay device and Tosoh's hepatitis B virus surface antigen kit HBsAg. was measured using The temperature conditions for the long-term storage test when examining the stability should be 5 ⁇ 3°C or 10°C or less to avoid freezing. Alternatively, stability may be evaluated accelerated under higher temperature conditions.
  • the method for producing a stable liquefied formulation of the 6-kind combination vaccine according to the present invention is performed by steps (1) to (6) as described above, but the DTP-IPV 4-kind combination vaccine (precipitated and purified pertussis-diphtheria-tetanus-inactivated Inactivated poliovirus (Salk-IPV) in polio (Sabin strain) combined vaccine; for example, "Quattrovac (registered trademark)" manufactured by KM Biologics Co., Ltd.) or precipitated and purified pertussis-diphtheria-tetanus combined vaccine (KM Biologics Co., Ltd.) It can also be applied to the production of a 5-kind mixed vaccine prepared by adding a PRP conjugate to a mixture of
  • the composition conditions of the stable liquefied preparation are as follows.
  • Aluminum gel Aluminum concentration 200-400 ⁇ g/dose HBs: 5-10 ⁇ g/dose pH: 5.4-6.2
  • Final added phosphoric acid Adjusted according to the amount of aluminum Aluminum amount is 400 ⁇ g/dose: 6 to 8 mM 300 ⁇ g/dose of aluminum: 3-6 mM 200 ⁇ g/dose of aluminum: 2-6 mM (If IPV is Sabin strain, add 1.5 mM to the above concentration)
  • the present invention also provides a stable liquefied preparation of a hexa-valent vaccine obtained by the method for producing a stable liquefied preparation of a hexa-valent vaccine according to the present invention.
  • Aluminum phosphate adjuvant was used as an adjuvant.
  • An HBs antigen was added to the obtained 5-type mixed vaccine to obtain a 6-type mixed vaccine consisting of DPT-IPV-Hib-HBs.
  • the HBs adsorption rate of the obtained 6-kind mixed vaccine was examined, it was found to be less than 10%, indicating that the HBs antigen was not adsorbed to the adjuvant.
  • a 5-kind mixed vaccine was prepared in the same manner as in Comparative Example 1.
  • the HBs vaccine obtained by adsorbing the HBs antigen to an aluminum phosphate adjuvant was mixed with the obtained 5-type mixed vaccine to obtain a 6-type mixed vaccine consisting of DPT-IPV-Hib-HBs.
  • the HBs adsorption rate of the HBs antigen to the adjuvant and the free PRP content rate of the HBs antigen adjuvant were examined, the HBs adsorption rate of the HBs antigen to the adjuvant was improved to 96% or more, but it was still insufficient. , the free PRP content also increased to more than 25%.
  • a 5-kind mixed vaccine was prepared in the same manner as in Comparative Example 1.
  • the HBs vaccine obtained by adsorbing the HBs antigen to an aluminum phosphate adjuvant was mixed with the obtained 5-type mixed vaccine to obtain a 6-type mixed vaccine consisting of DPT-IPV-Hib-HBs.
  • the aluminum phosphate content was 300 ⁇ g/dose, and the final concentration of phosphoric acid added was 2 mmol/L.
  • the HBs adsorption rate to the HBs antigen adjuvant and the free PRP content rate of the obtained 6-type mixed vaccine were examined, the HBs adsorption rate improved to 99% or more, but the free PRP content rate increased to 60% or more. did.
  • FIG. 1 shows a production scheme of a method for producing a stable liquefied preparation of a 6-kind mixed vaccine according to the present invention.
  • a stable liquefied formulation of a six-kind mixed vaccine was prepared as follows with an aluminum phosphate content of 300 ⁇ g/dose.
  • Adsorption of diphtheria toxoid and tetanus toxoid to aluminum phosphate gel Diphtheria toxoid and tetanus toxoid (diphtheria: 600 Lf/mL, tetanus: 31.2 Lf/mL, 1/4 of the prepared amount) were mixed with aluminum phosphate gel (final concentration 1.8 mg/mL) and adsorbed. The adsorbed material was used as precipitated diphtheria tetanus.
  • Adsorption of undiluted HBs to precipitated diphtheria-tetanus 25-50 ⁇ g/mL of HBs antigen (1/5 amount of precipitated diphtheria-tetanus) was added to the precipitated diphtheria-tetanus and allowed to stand at 15-30° C. for 40-96 hours to adsorb HBs.
  • Table 1 shows the composition of the 6-kind mixed liquid vaccine preparation (DPT-IPV-Hib-HBs) obtained at this time.
  • DPT-IPV-Hib-HBs 6-kind mixed liquid vaccine preparation
  • the control group inoculated with a combination of approved drugs shown as a ratio to simultaneous inoculation.
  • a combination of approved drugs Quattrovac (registered trademark: KM Biologics Inc.), Beamgen (registered trademark: KM Biologics Inc.), ActHIB (registered trademark: Sanofi Pasteur) shown as a ratio to simultaneous inoculation).
  • the composition of aluminum amount 100 ⁇ g/dose and HBs amount: 5 ⁇ g/dose
  • the antibody titer after priming was higher than the control group, but showed a low value of about 0.2 after boosting.
  • the ratio to the control group showed a value of 1 or more after boosting for all doses of HBs.
  • Antibody titers other than HBs were all equal to or higher than those of the control group, so only No. 3 in Table 3 is shown in Table 4.
  • the free PRP content and the adsorption rate of HBs were examined.
  • the conditions that satisfy the HBs adsorption rate of 99% or more and the free PRP content rate of less than 20% are as follows: when the amount of aluminum is 400 ⁇ g/dose, the amount of added phosphoric acid is 5 to 8 mmol/L, and the amount of aluminum is 300 ⁇ g/dose.
  • the amount of added phosphoric acid was 3 to 6 mmol/L at 200 ⁇ g/dose of aluminum, and 2 to 6 mmol/L at 200 ⁇ g/dose of aluminum.
  • Tables 8 and 9 show changes in HBs adsorption rate and free PRP content during storage at 5 ⁇ 3°C for the 6-kind mixed liquid preparation obtained in Example 1, respectively.
  • the six-kind mixed liquefied preparation produced according to the method of the present invention had an HBs antigen adsorption rate to aluminum adjuvant of 99% even after storage at 5 ⁇ 3°C for 24 months. % or more and the free PRP content of Hib was less than 20%, indicating a stable liquid vaccine composition.
  • No.1 the test was completed in 9 months.
  • the present invention is useful in the field of pharmaceuticals, particularly in the field of vaccines.

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Abstract

アルミニウムアジュバントへHBs抗原が安定に吸着保持され、Hib抗原であるPRPがキャリアタンパク質に安定に結合保持された、DPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンの液状化製剤を提供する。以下の工程を含む、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)およびB型肝炎(HepB)に対する6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法:(1)ジフテリアトキソイド(D)および破傷風トキソイド(T)をアルミニウムアジュバントと混合してDTアジュバントを生成する工程;(2)工程(1)で得られたDTアジュバントにB型肝炎表面(HBs)抗原を混合してDT-HBsアジュバントを生成する工程;(3)工程(2)で得られたDT-HBsアジュバントに百日せき抗原(P)を混合してDPT-HBsアジュバントを生成する工程;(4)工程(3)で得られたDPT-HBsアジュバントに不活化ポリオウイルス(IPV)を混合してDPT-IPV-HBsアジュバントを生成する工程;(5)工程(4)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントにコハク酸リン酸緩衝液を添加した後、Hib抗原としてのPRP (PRP-Tコンジュゲート)を添加してDPT-IPV-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲート混合物を生成する工程;および(6)工程(5)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲート混合物のpHを5.4~5.9に調製する工程。

Description

6種混合液状ワクチン組成物
 本発明は、小児用予防接種に用いられるワクチンの分野に関し、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)、およびB型肝炎(HepB)を防御するための6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法に関する。
 これまで多種類の小児用ワクチンが上市されている。百日せきジフテリア破傷風不活化ワクチン(DPT)、麻疹風疹混合ワクチン、B型肝炎(HepB)ワクチン、おたふくかぜワクチン、水痘ワクチンに加え、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)ワクチン、不活化ポリオ(IPV)ワクチン、肺炎球菌コンジュゲートワクチン、ロタウイルスワクチンが接種されるようになり、特に乳児期の接種スケジュールは過密を極めている。
 近年の小児用ワクチンでは、複数のウイルスや細菌等に対する防御能を同時に獲得できる混合ワクチンが求められるようになった。混合ワクチンは投与される免疫回数を最小限に抑えることで、被接種者の負担軽減、接種率向上のためにも非常に有効である。
 日本では、百日せきジフテリア破傷風ワクチン(DPT)をベースとした混合ワクチンとして、DPTに不活化ポリオワクチンを混合した製品であるクアトロバック(登録商標)(KMバイオロジクス株式会社)やテトラビック(登録商標)(一般財団法人阪大微生物病研究会)およびスクエアキッズ(登録商標)(第一三共株式会社)が上市されている。これらの4種混合ワクチンはホルムアルデヒドで不活化した抗原をアルミニウムアジュバントに吸着した液剤である。なお、クアトロバックとテトラビックは、ポリオウイルスの弱毒株であるSabin(セービン)株を不活化したものが用いられているのに対し、スクエアキッズは野生(強毒)株不活化したもの(Salk(ソーク)株)が用いられている。小児用ワクチンでは、副反応が出にくい特徴からアルミニウムアジュバントが用いられており、水酸化アルミニウムまたはリン酸アルミニウムが知られている。
 さらにこれら4種混合ワクチンに、HibワクチンのためのHib抗原(ポリリボシルリビトールリン酸(Polyribosyl-Ribitol-Phosphate:PRP))を加えた5種混合ワクチンが開発中である。DPT-IPV-Hibからなる5種混合ワクチンの液剤化では、キャリアタンパク質へコンジュゲートしたPRPの結合保持、すなわち脱離抑制が技術的な課題とされ、これを解決する製造方法が特許文献1に開示されている。本文献の実施例6には具体的な製造方法が記載されていないが、非特許文献1に詳細な記載がある。まず、百日せき抗原(P)を精製し、ホルマリンで不活化する。つぎに、ジフテリアトキソイド(D)をアルミニウムゲルに吸着させ、これとは別に破傷風トキソイド(T)をアルミニウムゲルに吸着させる。つぎに、ポリオウイルスを精製し、ホルマリンで不活化する(IPV)。最終的にこれらを混合したものがDPT-IPVアジュバントであり、さらにPRPを破傷風トキソイド(T)にコンジュゲートしたもの(PRP-Tコンジュゲート)を加えることで、DPT-IPV-Hibからなる5種混合ワクチンが調製できる(特許文献1、非特許文献1)。
 世界的には、上記5種混合ワクチンにさらにB型肝炎ワクチンのためのB型肝炎表面(Hepatitis B surface; HBs)抗原を加えたDPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンとして、キット製剤のInfanrix-Hexa(GlaxoSmithKline)、液剤であるHexamine/Hexyon(Sanofi)やVaxelis(Sanofi-MSD)が承認されている。Infanrix-Hexaは、ホルムアルデヒドで不活化したDPT-IPV-HBsを水酸化アルミニウムアジュバントに吸着した溶液とHib抗原としてのPRPをリン酸アルミニウムアジュバントに吸着した凍結乾燥品からなるキット製剤である。一方、Hexacima/HexyonとVaxelisはホルムアルデヒドまたはグルタルアルデヒドで不活化した抗原を水酸化アルミニウムアジュバントに吸着した液剤である。
 特許文献2には、DPT-IPV-Hib-HBsを含む6種混合液状ワクチン(これらの抗原はアルミニウム塩に吸着されている)が開示されている。特許文献2にはまた、破傷風タンパク質にコンジュゲートしたHib抗体価は、PRPをアルミニウム塩に吸着した場合、その免疫原性を経時的に喪失していく傾向があることが記載されている。この課題を解決するため、特許文献2にはまた、陰イオン、とりわけ、リン酸イオン、炭酸イオンまたはクエン酸イオンを加えることで、Hib抗原(PRP)が水酸化酸化アルミニウムから脱離するのを防ぐことができ、その免疫原性を維持することが記載されている。特許文献3にも同様の記載がある。一方、陰イオンの添加は、HBs抗原を水酸化酸化アルミニウムに吸着している場合には、HBs抗原を脱着させることが特許文献4に記載されている。
 特許文献4には、水酸化酸化アルミニウム、HBs抗原、キャリアタンパク質とコンジュゲートしたHib抗原を含む6種混合液体ワクチンにおいて、HBs抗原は水酸化酸化アルミニウムに吸着されたままであるが、Hib抗原は吸着されないままである、液体混合ワクチンの調製方法が開示されている。特許文献4に開示の液体混合ワクチンの調製方法は、まず、HBs抗原を水酸化酸化アルミニウムに吸着させてHBs抗原/水酸化酸化アルミニウム複合体を得た後、少なくとも100 mg/L濃度の陽イオンアミノ酸および35~45 mmol/L濃度のリン酸イオンの存在下でHBs抗原/水酸化酸化アルミニウム複合体をHib抗原と混合することを含む、調製方法である。特許文献4の実施例において、アルミニウムゲルへのHBs抗原の吸着率は調製時95~98%であり、5℃保存安定性試験でのHBs抗原の吸着率は9ヵ月で88~91%、22ヵ月で78~86%までの低下に留めていること、また、アルミニウムゲルへのPRPの非吸着は、調製時20.0~22.6μg/mLであり、5℃保存安定性試験でのPRPの非吸着は9ヵ月で23~27.0μg/mL、22ヵ月で19.9~23.9μg/mLとあまり変化がなかったことが記載されている。
WO2018/074296 WO1999/013906 WO1996/037222 特開2017-203043
クアトロバック(登録商標)の添付文書 Vaccine 12 (8) (1994) 700-706 Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis 21 (6) (2000) 1087-1091 Journal of Microbiology and Biotechnology (2003), 13(3), 469-472 AUTOMATED ENZYME IMMUNOASSAY SYSTEM AIA-360のカタログ
 DPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンの液剤化では、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原の吸着保持、およびHib抗原であるPRPのキャリアタンパク質からの脱離抑制が技術的な課題とされている。
 本発明の目的は、アルミニウムアジュバントへHBs抗原が安定に吸着保持され、Hib抗原であるPRPがキャリアタンパク質に安定に結合保持された、DPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンの液状化製剤を提供することである。
 本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、最終添加リン酸濃度、pHを最適化することにより、アルミニウムアジュバントへHBs抗原が安定に吸着保持、およびPRPが安定的に結合保持することを見出し、本発明を完成するに至った。
 したがって、本発明は以下を含む。
[1]以下の工程を含む、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)およびB型肝炎(HepB)に対する6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法:
(1)ジフテリアトキソイド(D)および破傷風トキソイド(T)をアルミニウムアジュバントと混合してDTアジュバントを生成する工程;
(2)工程(1)で得られたDTアジュバントにB型肝炎表面(HBs)抗原を混合してDT-HBsアジュバントを生成する工程;
(3)工程(2)で得られたDT-HBsアジュバントに百日せき抗原(P)を混合し、DPT-HBsアジュバントを生成する工程;
(4)工程(3)で得られたDPT-HBsアジュバントに不活化ポリオウイルス(IPV)を混合し、DPT-IPV-HBsアジュバントを生成する工程;
(5)工程(4)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントにコハク酸リン酸緩衝液を添加した後、Hib抗原としてのPRP(PRP-Tコンジュゲート)を添加してDPT-IPV-Hib-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物を生成する工程;および
(6)工程(5)で得られたDPT-IPV-Hib-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物のpHを5.4~5.9に調整する工程。
[2]アルミニウムアジュバントがリン酸アルミニウムゲルである、[1]に記載の方法。
[3]アルミニウムアジュバントの添加量が200~400μg/doseである、[1]または[2]に記載の方法。
[4]工程(5)において、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~8 mmol/Lになるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する、[1]から[3]のいずれか1に記載の方法。
[5]アルミニウムアジュバントの添加量が200μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~6 mmol/Lである、[3]または[4]に記載の方法。
[6]アルミニウムアジュバントの添加量が300 μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で3~6 mmol/Lである、[3]または[4]に記載の方法。
[7]アルミニウムアジュバントの添加量が400 μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で6~8 mmol/Lである、[3]または[4]に記載の方法。
[8]アルミニウムアジュバントへのHBs抗原の吸着率が99%以上であり、Hibの遊離PRP含有率が20%未満である、[1]から[7]のいずれか1に記載の方法。
[9][1]から[8]のいずれか1に記載の方法によって製造した、6種混合ワクチンの安定な液状化製剤。
 本発明の方法によれば、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原吸着率が99%以上で、キャリアタンパク質に結合したHibの遊離PRP含有率が20%未満の安定な6種混合ワクチンの液状化製剤を得ることが可能になる。本発明の方法によって製造した6種混合ワクチンの安定な液状化製剤は、予防接種に求められる6つの細菌またはウイルスに対する十分な抗体価(免疫原性)を与えることができる。
本発明による6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法の概要を示す模式図である。
 以下、本発明の好適な実施形態について詳細に説明する。ただし、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。
 本発明は、以下の工程を含む、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)およびB型肝炎(HepB)に対する6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法に関するものであり、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原吸着率が99%以上で、かつキャリアタンパク質に結合したHibの遊離PRP含有率が20%未満の安定な液状ワクチン組成物の提供を可能とするものである:
(1)ジフテリアトキソイド(D)および破傷風トキソイド(T)をアルミニウムアジュバントと混合してDTアジュバントを生成する工程;
(2)工程(1)で得られたDTアジュバントにB型肝炎表面(HBs)抗原を混合してDT-HBsアジュバントを生成する工程;
(3)工程(2)で得られたDT-HBsアジュバントに百日せき抗原(P)を混合してDPT-HBsアジュバントを生成する工程;
(4)工程(3)で得られたDPT-HBsアジュバントに不活化ポリオウイルス(IPV)を混合して、DPT-IPV-HBsアジュバントを生成する工程;
(5)工程(4)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントにコハク酸リン酸緩衝液を添加した後、Hib抗原としてのPRP(PRP-Tコンジュゲート)を添加してDPT-IPV-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物を生成する工程;および
(6)工程(5)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物のpHを5.4~5.9に調整する工程。
 本発明の製造方法において、アルミニウムアジュバントとしては、リン酸アルミニウムゲルを用いるのが好ましい。アルミニウムアジュバントとしては、リン酸アルミニウムの他に水酸化アルミニウム(水酸化酸化アルミニウムと同義)等も知られているが、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原吸着率が99%以上で、かつキャリアタンパク質に結合したHib抗原の遊離PRP含有率が20%未満の安定な液状ワクチン組成物を得るためにはリン酸アルミニウムゲルを用いるのが好ましい。また、アルミニウムアジュバントの添加量としては、200~400 μg/doseの範囲が挙げられるが、これに限られない。さらに、キャリアタンパク質に結合したPRP-Tコンジュゲートのリン酸アルミニウムゲルへの吸着率は30%以下であることが好ましい。
 本発明の製造方法において、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)およびB型肝炎(HepB)のための6種混合ワクチンの各抗原として、ジフテリアトキソイド(D)、破傷風トキソイド(T)、B型肝炎表面(HBs)抗原、百日せき抗原(P)、不活化ポリオウイルス(IPV)およびHib抗原としてのPRPを用いるが、これらは、当業者に知られたいかなる抗原をも用いることができる。Hib抗原としてのPRPとしては、例えば、PRP-Tコンジュゲートを用いることができる。
工程(1):
 工程(1)では、ジフテリアトキソイド(D)および破傷風トキソイド(T)をアルミニウムアジュバントに吸着させてDTアジュバントを生成する。アルミニウムアジュバントとしては、上記のようにリン酸アルミニウムゲルを用いるのが好ましい。破傷風トキソイドは、WHO規格により1,000 Lf(Limit of flocculation)/mgPNを超える純度が要求されている。また欧州薬局方(EP:European Pharmacopoeia)のHibコンジュゲートワクチンの規格では、>1,500 Lf/mgPNとなっている。破傷風トキソイドの精製方法としては、硫安沈殿やトリクロロ酢酸沈殿、カラムクロマトグラフィー(ゲルろ過クロマト、アフィニティークロマト)、塩析、透析などが用いられている。
工程(2):
 工程(2)では、工程(1)で得られたDTアジュバントにB型肝炎表面(HBs)抗原を混合し、15-30℃で40-96時間置くことでDT-HBsアジュバントを生成する。
工程(3):
 工程(3)では、工程(2)で得られたDT-HBsアジュバントに百日せき抗原(P)を混合させてDPT-HBsアジュバントを生成する。
工程(4):
 工程(4)では、(3)で得られたDPT-HBsアジュバントに不活化ポリオウイルス(IPV)を混合させてDPT-IPV-HBsアジュバントを生成する。
工程(5):
 工程(5)では、工程(4)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントにコハク酸リン酸緩衝液を添加した後、Hib抗原としてのPRP、例えば、PRP-Tコンジュゲートを添加してDPT-IPV-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物を生成する。工程(5)においてコハク酸リン酸緩衝液を添加するのは、アルミニウムアジュバントの添加量に応じて最終添加リン酸の濃度を調整するためである。すなわち、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~8 mmol/Lになるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する。例えば、アルミニウムアジュバントの添加量が200 μg/doseである場合、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~6 mmol/Lとなるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する。アルミニウムアジュバントの添加量が300 μg/doseである場合、添加リン酸濃度が終濃度換算で3~6 mmol/Lとなるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する。アルミニウムアジュバントの添加量が400 μg/doseである場合、添加リン酸濃度が終濃度換算で6~8 mmol/Lとなるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する。
 本発明において、Hib抗原であるPRPとしては、PRPとキャリアタンパク質とを結合させたPRPコンジュゲートを用いることができる。Hib感染の防御にはHibの莢膜多糖体であるPRPに対する抗体が有効であることが知られているが、PRP成分のみに基づくHibワクチンはT細胞非依存性のため、免疫系の未熟な生後18ヶ月未満の乳幼児に対しては効果不十分である。そこで、PRPにキャリアタンパク質をコンジュゲート(結合)させてT細胞依存性にしたコンジュゲートワクチンが開発され、乳幼児に対して使用されている。
 PRPなどの多糖類をキャリアタンパク質と結合したコンジュゲートワクチンは公知である。PRPコンジュゲートは公知の結合技術によって調製することができる。例えばPRPをチオエーテル結合を介して結合することができる。この結合方法では、PRPを1-シアノ-4-(ジメチルアミノ)ピリジンテトラフルオロボレート(CDAP)で活性化することにより、シアン酸エステルを形成する。このようにして活性化されたPRPは、直接又はスペーサー基を介してキャリアタンパク質のアミノ基と結合できる。好ましくは、シアン酸エステルをヘキサンジアミンと結合し、チオエーテル結合の形成を伴うヘテロライゲーション化学反応によりアミノ誘導体化多糖とキャリアタンパク質をコンジュゲートさせる。上記の他、還元アミノ化方法によりコンジュゲートを調製することもできる。さらに別の方法として、アジピン酸ジヒドラジド(ADH)で誘導体化した臭化シアン(CNBr)活性化多糖を、カルボジイミド縮合でキャリアタンパク質に結合する方法が挙げられる。また、ここで用いるPRPは特許文献1に記載のように、ネイティブPRPよりも低分子化されたPRPを用いてもよい。
 キャリアタンパク質としては、破傷風トキソイドや百日咳トキソイド、ジフテリアトキソイド、ジフテリアトキソイドの遺伝子変異体であるCRM197、非莢膜型ヘモフィルスインフルエンザD抗原、髄膜炎グループBの外膜タンパク質(OMP)などが挙げられる。PRPコンジュゲートに典型的なキャリアタンパク質は、破傷風トキソイドである。破傷風トキソイドをキャリアタンパク質として用いる場合、その純度は、WHO規格である1,000 Lf/mgPN以上で使用する。本発明の方法では、破傷風トキソイドの純度はより高い方が良く、2,500~3,500 Lf/mgPNであることが好ましい。より好ましくは2,900~3,300 Lf/mgPNである。
工程(6):
 工程(6)では、工程(5)で得られたDPT-IPV-Hib-HBsアジュバントのpHが5.4~5.9の範囲にない場合に、pH調節剤を添加してpHを5.4~5.9に調整する。アルミニウムアジュバントへのHBs抗原吸着率が99%以上で、かつキャリアタンパク質に結合したHib抗原の遊離PRP含有率が20%未満の安定な液状ワクチン組成物とするためには、最終生成物のpHを5.4~5.9の範囲とする必要がある。最終生成物のpHが前記範囲にない場合、所望のHibの遊離PRP含有率を得ることはできない。
 遊離PRP含有率の測定は非特許文献2~4および特許文献4などに記載の方法で行うことができる。本発明における遊離PRP含有率の測定は特許文献1の実施例3に記載の方法で行った。また、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原の吸着は特許文献4および非特許文献5などに記載の方法で行うことができる。本発明におけるアルミニウムアジュバントへのHBs抗原の吸着量は、HBs抗原の総含量から上清中のHBs抗原の含量を差し引くことで算出した。HBs抗原の総含量はクエン酸などのキレート剤でアルミニウムアジュバントを溶解させ、東ソー社の自動エンザイムイムノアッセイ装置AIA-360および東ソー社のB型肝炎ウイルス表面抗原キットを用いて測定した。また、上清中のHBs抗原の含量は、遠心分離を行い、吸着していないHBs抗原を含む上清を回収し、東ソー社の自動エンザイムイムノアッセイ装置および東ソー社のB型肝炎ウイルス表面抗原キットHBsAgを用いて測定した。安定性を検討する際の長期保存試験の温度条件は、5±3℃もしくは凍結を避けて10℃以下にて行う。あるいは、より高温条件下で安定性を加速的に評価しても構わない。
 本発明による6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法は、上記のように工程(1)~(6)により行うが、DTP-IPV4種混合ワクチン(沈降精製百日せきジフテリア破傷風不活化ポリオ(セービン株)混合ワクチン;例えば、KMバイオロジクス株式会社製「クアトロバック(登録商標)」)または沈降精製百日せきジフテリア破傷風混合ワクチン(KMバイオロジクス株式会社)に不活化ポリオウイルス(Salk-IPV)を加えたものに、PRPコンジュゲートを加えることで調製した5種混合ワクチンを製造する場合にも応用することができる。
 本発明による6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法において、安定な液状化製剤の組成条件は以下の通りである。
アルミニウムゲル::アルミ濃度200~400 μg/dose
HBs:5~10 μg/dose
pH:5.4~6.2
最終添加リン酸:アルミニウム量に応じて調整
 アルミニウム量が400 μg/dose:6~8 mM
 アルミニウム量が300 μg/dose::3~6 mM
 アルミニウム量が200 μg/dose:2~6 mM
(IPVがSabin株の場合は上記濃度に1.5 mM増量)
 本発明は、他の側面において、本発明による6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法によって得られる、6種混合ワクチンの安定な液状化製剤をも提供する。
 以下、実施例によって本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に何ら限定されるものではない。
比較例1
<リン酸アルミニウムゲルを用いた6種混合ワクチンの製造(1)>
 DTP-IPV4種混合ワクチン(沈降精製百日せきジフテリア破傷風不活化ポリオ(セービン株)混合ワクチン;KMバイオロジクス株式会社製「クアトロバック(登録商標)」)または沈降精製百日せきジフテリア破傷風混合ワクチン(KMバイオロジクス株式会社製)に不活化ポリオウイルス(IPV;Salk株)を加えたものに、特許文献1の方法でPRPを破傷風トキソイドにコンジュゲートしたものを加えることで5種混合ワクチンを調製した。アジュバントとしてはリン酸アルミニウムアジュバントを用いた。得られた5種混合ワクチンにHBs抗原を添加してDPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンを得た。得られた6種混合ワクチンのHBs吸着率を調べたところ、10%未満であり、HBs抗原がアジュバントに吸着していないことがわかった。
比較例2
<リン酸アルミニウムゲルを用いた6種混合ワクチンの製造(2)>
 比較例1と同様にして5種混合ワクチンを調製した。得られた5種混合ワクチンに、HBs抗原をリン酸アルミニウムアジュバントに吸着させたHBsワクチンを混合してDPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンを得た。得られた6種混合ワクチンについて、HBs抗原のアジュバントへのHBs吸着率および遊離PRP含有率を調べたところ、HBs抗原のアジュバントへのHBs吸着率は96%以上に向上したものの未だ不十分であり、遊離PRP含有率も25%以上に増加した。
比較例3
<リン酸アルミニウムゲルを用いた6種混合ワクチンの製造>
 比較例1と同様にして5種混合ワクチンを調製した。得られた5種混合ワクチンに、HBs抗原をリン酸アルミニウムアジュバントに吸着させたHBsワクチンを混合してDPT-IPV-Hib-HBsからなる6種混合ワクチンを得た。この際、リン酸アルミニウム含量は300 μg/doseとし、最終添加リン酸濃度を2 mmol/Lとした。得られた6種混合ワクチンについて、HBs抗原のアジュバントへのHBs吸着率および遊離PRP含有率を調べたところ、HBs吸着率は99%以上に向上したものの、遊離PRP含有率は60%以上に増加した。
<6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造>
 本発明による6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法の製造スキームを図1に示す。リン酸アルミニウム含量300 μg/doseとして、以下のようにして6種混合ワクチンの安定な液状化製剤を製造した。
ジフテリアトキソイド、破傷風トキソイドのリン酸アルミニウムゲルへの吸着:
 ジフテリアトキソイドおよび破傷風トキソイド(ジフテリア:600 Lf/mL、破傷風:31.2 Lf/mL、調製量の1/4量)をリン酸アルミニウムゲル(終濃度1.8 mg/mL)と混合し、吸着させた。この吸着させたものを沈降ジフテリア破傷風とした。
HBs原液の沈降ジフテリア破傷風への吸着:
 上記沈降ジフテリア破傷風にHBs抗原25~50 μg/mL(沈降ジフテリア破傷風の1/5量)を加え、15~30 ℃にて40時間から96時間放置し、HBsを吸着させた。
最終生成物の調製:
 上記生成物に、精製百日せき抗原(最終生成物の1/3量)、ポリオワクチン3価バルク(以下、ポリオ;1型:2型:3型=30:1000:1000 DU(D-antigen unit)/mL、最終生成物の1/10量)、コハク酸リン酸緩衝液(pH 5.5、添加リン酸濃度が終濃度換算で4.5 mmol/L相当;Sabin IPVを用いる場合は6.0 mmol/L相当)、Hib原薬(以下、PRP-Tコンジュゲート:特許文献1の方法でPRPを破傷風トキソイド(T)にコンジュゲートしたもの)を加え、pHが5.4~5.9の範囲にあることを確認した。pHがこの範囲から外れていた場合は、範囲内に入るよう塩酸溶液または水酸化ナトリウム溶液を用いてpHの調整を行った。また、最終生成物を分析したところ、PRP-Tコンジュゲートのリン酸アルミニウムゲルへの吸着率は30%以下であった。
 このときに得られた6種混合液状ワクチン製剤(DPT-IPV-Hib-HBs)の組成を表1に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001

(注)
*アルミニウムゲルの素材
**Salk IPVの場合、1型:2型:3型は40:4:32(単位はDU/0.5mL)であった。
***リン酸水素二ナトリウム12水和物
****リン酸二水素ナトリウム2水和物
<遊離PRP含有率に対するpHの影響>
 実施例1で得られた6種混合液状ワクチン製剤(DPT-IPV-Hib-HBs)について、遊離PRP含有率に対するpHの影響を検討した。その結果を表2に示す。リン酸アルミニウム含量は300 μg/doseであった。表2に示す結果から明らかなように、37℃、2週間後で、pHが5.4~6.2の範囲から外れると遊離PRP含有率が大きくなり、遊離が増進することが示唆された。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
<カニクイザルにおける有効性へのアルミニウム含量およびHBsの量の影響>
 実施例1で見出した6種混合液状ワクチン製剤(DPT-IPV-Hib-HBs)の製造方法において、アルミニウムゲルの量およびHBsの量がワクチンとしての有効性に及ぼす影響を調べるため、カニクイザル(原産地:カンボジア、月齢31~35箇月、雌31~37箇月)に投与した。接種後4週目に採血を行い、血清を採取した。得られた血清を自家調製した各ワクチン抗原を用いたELISAまたはAIA-360(登録商標:東ソー社)を用いたEIAにて抗体価を測定した。その結果を表3および4に示す。表中、既承認薬の組み合わせを接種している対照群(クアトロバック(登録商標:KMバイオロジクス株式会社)、ビームゲン(登録商標:KMバイオロジクス株式会社)、アクトヒブ(登録商標:サノフィパスツール社)の同時接種)に対する比にて示す。
 アルミニウム量:100 μg/dose、HBs量:5 μg/doseの組成においては、プライミング後の抗体価は対照群以上であったものの、ブースト後では0.2程度と低い値を示していた。一方、アルミニウム量が200 μg/dose以上では、HBsの用量いずれもブースト後で対照群比が1以上の値を示していた。HBs以外の抗体価については、すべて対照群と同等以上であったため、表3のNo.3についてのみ表4に示した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
<6種混合液状化製剤での安定性に関する検討>
 Salk IPVを用いて実施例1で製造した6種混合液状製剤での安定性を検討するため、コハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)における添加リン酸濃度がHBsの吸着維持およびPRPの遊離抑制に及ぼす影響を調べた。その結果を、アルミニウム量が400 μg/dose、300 μg/doseおよび200 μg/doseの場合について、それぞれ表5、表6および表7に示す。ここで示すリン酸濃度は終濃度での添加量である。Sabin IPVを用いる場合は、添加リン酸濃度を1.5mmol/L増加する。
 37℃で2週間保管後の検体の遊離PRP含有率およびHBsの吸着率を調べた。その結果、HBs吸着率が99%以上かつ遊離PRP含有率が20%未満を満たす条件は、アルミニウム量が400 μg/doseでは添加リン酸が5~8 mmol/L、アルミニウム量が300 μg/doseでは添加リン酸が3~6 mmol/L、アルミニウム量が200 μg/doseでは添加リン酸が2~6 mmol/Lであった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
<6種混合液状化製剤のHBs吸着率および遊離PRP含有率の経時変化>
 実施例1で得られた6種混合液状製剤について、5±3℃保管時のHBs吸着率の推移および遊離PRP含有率の推移を、それぞれ表8および表9に示す。表8および表9に示す結果から明らかなように、本発明の方法に従って製造した6種混合液状化製剤は、5±3℃で24箇月保管後も、アルミニウムアジュバントへのHBs抗原吸着率が99%以上で、かつHibの遊離PRP含有率が20%未満であり、安定な液状ワクチン組成物であることがわかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008

No.1については9箇月で試験を終了した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009

No.1については9箇月で試験を終了した。
 本発明は医薬品の分野、特にワクチンの分野において有用である。

Claims (9)

  1.  以下の工程を含む、ジフテリア(Diphtheria)、百日せき(Pertussis)、破傷風(Tetanus)、ポリオ、ヘモフィルスインフルエンザ菌b型(Hib)およびB型肝炎(HepB)に対する6種混合ワクチンの安定な液状化製剤の製造方法:
    (1)ジフテリアトキソイド(D)および破傷風トキソイド(T)をアルミニウムアジュバントと混合してDTアジュバントを生成する工程;
    (2)工程(1)で得られたDTアジュバントにB型肝炎表面(HBs)抗原を混合してDT-HBsアジュバントを生成する工程;
    (3)工程(2)で得られたDT-HBsアジュバントに百日せき抗原(P)を混合し、DPT-HBsアジュバントを生成する工程;
    (4)工程(3)で得られたDPT-HBsアジュバントに不活化ポリオウイルス(IPV)を混合し、DPT-IPV-HBsアジュバントを生成する工程;
    (5)工程(4)で得られたDPT-IPV-HBsアジュバントにコハク酸リン酸緩衝液を添加した後、Hib抗原としてのPRP(PRP-Tコンジュゲート)を添加してDPT-IPV-Hib-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物を生成する工程;および
    (6)工程(5)で得られたDPT-IPV-Hib-HBsアジュバントとPRP-Tコンジュゲートの混合物のpHを5.4~5.9に調整する工程。
  2.  アルミニウムアジュバントがリン酸アルミニウムゲルである、請求項1に記載の方法。
  3.  アルミニウムアジュバントの添加量が200~400 μg/doseである、請求項1または2に記載の方法。
  4.  工程(5)において、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~8 mmol/Lになるようにコハク酸リン酸緩衝液(pH5.5)を添加する、請求項1から3のいずれか1項に記載の方法。
  5.  アルミニウムアジュバントの添加量が200μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で2~6 mmol/Lである、請求項3または4に記載の方法。
  6.  アルミニウムアジュバントの添加量が300μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で3~6 mmol/Lである、請求項3または4に記載の方法。
  7.  アルミニウムアジュバントの添加量が400μg/doseであり、添加リン酸濃度が終濃度換算で6~8 mmol/Lである、請求項3または4に記載の方法。
  8.  アルミニウムアジュバントへのHBs抗原の吸着率が99%以上であり、Hibの遊離PRP含有率が20%未満である、請求項1から7のいずれか1項に記載の方法。
  9.  請求項1から8のいずれか1項に記載の方法によって製造した、6種混合ワクチンの安定な液状化製剤。
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