[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

WO2018012993A1 - Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation - Google Patents

Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation Download PDF

Info

Publication number
WO2018012993A1
WO2018012993A1 PCT/RU2016/000426 RU2016000426W WO2018012993A1 WO 2018012993 A1 WO2018012993 A1 WO 2018012993A1 RU 2016000426 W RU2016000426 W RU 2016000426W WO 2018012993 A1 WO2018012993 A1 WO 2018012993A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
strains
native
treponemal
cultures
treponema
Prior art date
Application number
PCT/RU2016/000426
Other languages
French (fr)
Russian (ru)
Inventor
Эдуард Исаакович МОРДУХОВИЧ
Давид Борисович ЖУКОВ
Илья Владимирович ДАРМОВ
Вероника Юрьевна ОХАПКИНА
Original Assignee
Эдуард Исаакович МОРДУХОВИЧ
Давид Борисович ЖУКОВ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Эдуард Исаакович МОРДУХОВИЧ, Давид Борисович ЖУКОВ filed Critical Эдуард Исаакович МОРДУХОВИЧ
Priority to PCT/RU2016/000426 priority Critical patent/WO2018012993A1/en
Publication of WO2018012993A1 publication Critical patent/WO2018012993A1/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/04Preserving or maintaining viable microorganisms

Definitions

  • the invention relates to microbiology and can be used in studies of the biological properties of the causative agent of syphilis, while maintaining and maintaining the cultural strains of pale treponemas, as well as in the production technology of therapeutic and diagnostic preparations based on them.
  • the causative agent of syphilis is pale treponema (spirochete), discovered in 1905 by F. Schaudinn and E. Hoffman. According to Bergey's classification, it belongs to the Gracillicutes division, the Spirochaetales order, the Spirochaetaceae family, the Treponema genus, the Treponema pallidum species, the Treponema pallidum pallidum subspecies ( ⁇ Identifier of the Bergie bacteria. Reference book in 2 volumes / edited by J. Holet, N. Kriga , P. Snita / transl. From English under the editorship of G.A. Zavarzin. - M.: Mir, 1997. - 800 p).
  • Pale treponemas develop well on the chorionallant tissue of a chicken fetus, in rabbit serum with the addition of pieces of brain tissue under a layer of paraffin oil.
  • the most common culture media for cultivating treponemes are culture media, the nutritional basis of which is bovine heart broth with pieces of liver or bovine heart with the addition of peptone and growth factors (Yu.A. Kozlov, Culture media in medical microbiology, M.: Medgiz, 1950, pp. 203-206 .; Handbook of Microbiological and Virological Research Methods, edited by MO Birger, Moscow: Medicine, 1973, pp. 47-92).
  • the subculturing method is characterized by a number of significant drawbacks: the complexity, the high cost of nutrient media prepared on the basis of high-quality food raw materials, the danger of contamination the ministry of crops by extraneous microflora in the process of reseeding, the threat of changes in the basic biological properties of the pathogen.
  • the indicated difficulties in preserving the strains lead to the need for systematic duplication of reseeding and maintaining ties with institutions that preserve the cultured strains of pale treponemes.
  • cryoprotective media (cryoprotectants).
  • Treponema pallidum pallidum Nichols strain which is not susceptible to cultivation on artificial nutrient media and is maintained exclusively in the body of a susceptible laboratory animal (rabbit). It includes: testicular infection of the rabbit with a culture of pathogenic pale treponema; obtaining from the testis suspension of microbes containing an extract of native tissues; suspension stabilization with a cryoprotectant (glycerin); separation into small aliquots of 0.75-1.5 ml; freezing and storage at a temperature of minus 70-80 ° ⁇ (RU 2292388 ⁇ , January 27, 2007).
  • the objective of the invention is to develop a method that preserves the viability of the cultured strains of pale treponema for a long period of time, while simplifying the method and reducing costs associated with the acquisition and / or preparation of expensive food raw materials of proper quality (nutrient media) , and eliminating the danger of contamination of crops by extraneous microflora in the process of regular reseeding.
  • the technical result is to increase the life span of the culture strains of pale treponemas.
  • the method of maintaining the viability of the cultured pale treponem strains using cryopreservation involves obtaining stabilized microbial suspensions from native concentrated cultures of treponemal strains by adding a cryoprotective medium, followed by freezing and storage of stabilized microbial suspensions at a temperature of minus 40 ⁇ 2 " C.
  • the addition of a cryoprotective medium can be carried out in a volume ratio of 1: 2 (about on a part of the protective environment and two parts of the culture of microbes.)
  • Native concentrated cultures of treponemal strains are obtained from native deep cultures using the natural precipitation method followed by removal of the supernatant.
  • treponemal strains are obtained from seed material on a commercial Omata Bouillon for Treponemus and Fusobacteria ”, the cultivation of which is carried out in meat and peptone broth with the addition of pieces of the liver.
  • a cryopreservation medium of any composition can be used, which ensures the viability of culture treponemes during freezing and storage.
  • a protective medium is used comprising, wt.%: Sucrose - from 7 to 8%, glycerin - from 28 to 32%, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7%, water - up to 100%.
  • the technical result is achieved due to the fact that biomass of treponems is accumulated in a liquid nutrient medium, concentrated by natural sedimentation followed by decantation of the supernatant, and stabilization of the concentrated microbial suspension by cryoprotective sucrose-glycerol medium.
  • the resulting preparation is packaged in separate airtight closures, for example, 5 ml each and immediately subjected to freezing for subsequent storage at a temperature of minus 40 ⁇ 2 ° ⁇ .
  • the concentration of treponem biomass ensures the creation of the required seed dose for subsequent reseeding, the addition of a cryoprotective sucrose-glycerin medium determines the protective effect during freezing and storage, packing in separate airtight closures allows achieving optimal rates of freezing and thawing of the obtained product, and subsequent storage at minus 40 ⁇ 2 ° C ensures viable microorganisms for at least 18 months. (according to experimental studies).
  • cryopreserved cultures of treponemal strains after reactivation can be used for direct inoculation of liquid nutrient media from the calculation of 10 contents of one closure per 0.25 - 0.5 l of medium;
  • cryopreserved cultures in separate airtight closures allows fractional use of the initially prepared preparation without 20 deterioration of its properties and is repeatedly used as a seed;
  • the method is as follows:
  • native concentrated suspensions of treponemal strains are obtained using the natural sedimentation method, followed by decantation of the supernatant, which includes settling the microbial culture obtained at the previous stage for a day at a temperature of 20 ⁇ 2 ° ⁇ until a formed sediment is obtained, followed by aseptic removal of the supernatant. dosing fluid in a volume of 60 to 80% of the initial volume of the culture fluid;
  • stabilized microbial suspensions of the treponemal strains are prepared by adding a cryoprotective medium comprising the following components, wt.%: sucrose - from 7 to 8%, glycerin - from 28 to 32%, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7% ;
  • Stabilized microbial suspensions of the treponem strains are packaged in separate sealed closures;
  • stabilized microbial suspensions of treponemal strains are frozen at a temperature of minus 40 ⁇ 2 "C; storage of cryopreserved microbial suspensions of treponemal strains is carried out at a temperature of minus 40 ⁇ 2" for up to 18 months.
  • Example Na The method of cryopreservation of culture strains of pale treponema on the example of the strain Treponema pallidum pallidum Reiter
  • the contents of the seeded flasks were thoroughly mixed with neat rotational movements and placed in a thermostat at a temperature of 37 ⁇ GS for a period of 7 to 10 days. Every day several times a day, the growing cultures were mixed with neat rotational movements to evenly distribute microbes throughout the entire volume of the medium.
  • a cryoprotective medium was added to the concentrated suspension in a volume ratio of 1: 2.
  • the contents of the container were thoroughly mixed. After that, the typicality of the morphology of microbes and the absence of extraneous microflora in native preparations of the “crushed drop” type were monitored using phase contrast microscopy.
  • the stabilized microbial suspension was packaged in 5 ml in sterile 10 ml bottles, corked with rubber stoppers, which were fixed with metal caps. Packaged and labeled vials with a stable concentrated treponem culture were immediately placed in a low-temperature refrigerator with a temperature of minus 40 ⁇ 2 ° C for freezing and storage.
  • Table 1 The results of assessing the viability and growth properties of cultural treponemal strains after freezing and storage in a cryopreserved state

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

The invention relates to the field of microbiology. Proposed is a method for maintaining the viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation. The method involves: accumulating treponema biomass in a liquid nutrient medium, concentrating via a natural sedimentation method with the subsequent decanting of supernatant liquid, and stabilizing the concentrated microbial suspension using a protective sucrose/glycerol medium. The produced preparation is packaged in individual airtight sealing elements and frozen for subsequent storage at a temperature of negative 40±1°C. The use of the method guarantees the ability to maintain the viability and growth characteristics of treponema culture strains for 18 months.

Description

СПОСОБ СОХРАНЕНИЯ ЖИЗНЕСПОСОБНОСТИ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ШТАММОВ БЛЕДНЫХ ТРЕПОНЕМ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ КРИОКОНСЕРВАЦИИ Область техники  METHOD FOR PRESERVING THE VITALITY OF CULTURAL STRAINS OF WALK TREPONES USING CRYO-CONSERVATION
Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано в иссле- дованиях по изучению биологических свойств возбудителя сифилиса, при сохранении и поддержании культуральных штаммов бледных трепонем, а также в технологии производства лечебно-диагностических препаратов на их основе.  The invention relates to microbiology and can be used in studies of the biological properties of the causative agent of syphilis, while maintaining and maintaining the cultural strains of pale treponemas, as well as in the production technology of therapeutic and diagnostic preparations based on them.
Предшествующий уровень техники  State of the art
Возбудителем сифилиса является бледная трепонема (спирохета), открытая в 1905 г. F. Schaudinn и Е. Hoffman. По классификации Bergey она относится к отделу Gracillicutes, порядку Spirochaetales, семейству Spirochaetaceae, роду Treponema, виду Treponema pallidum, подвиду Treponema pallidum pallidum (^Определитель бактерий Берджи. Справочное пособие в 2-х томах / под ред.Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита / пер. с англ. под ред. Г.А.Заварзина. - М.: «Мир», 1997. - 800 с). The causative agent of syphilis is pale treponema (spirochete), discovered in 1905 by F. Schaudinn and E. Hoffman. According to Bergey's classification, it belongs to the Gracillicutes division, the Spirochaetales order, the Spirochaetaceae family, the Treponema genus, the Treponema pallidum species, the Treponema pallidum pallidum subspecies ( ^ Identifier of the Bergie bacteria. Reference book in 2 volumes / edited by J. Holet, N. Kriga , P. Snita / transl. From English under the editorship of G.A. Zavarzin. - M.: Mir, 1997. - 800 p).
Бледных трепонем, выделенных из патологического материала от человека, практически никогда не удавалось поддерживать в патогенном состоянии на искус- ственных средах. Однако попытки выращивания бледной трепонемы на питательных средах в анаэробных условиях привели к получению определенного количества куль- тивируемых штаммов. Указанные штаммы трепонем, получившие название «культу- ральные» (в отличие от патогенных «тканевых» трепонем) являются авирулентными не только для человека, но и для чувствительных к сифилису лабораторных животных - кроликов и приматов.  Pale treponemas isolated from pathological material from humans were almost never managed to be maintained in a pathogenic state on artificial media. However, attempts to grow pale treponema on nutrient media under anaerobic conditions led to the production of a certain number of cultured strains. These treponemal strains, called “cultured” (in contrast to the pathogenic “tissue” treponemas) are avirulent not only for humans, but also for laboratory animals sensitive to syphilis - rabbits and primates.
Культуральные трепонемы несколько отличаются от тканевых по своим мор- фол огическим, биохимическим и патогенным свойствам. Однако особенно значимо то, что антигенные свойства их очень близки к патогенным вариантам возбудителя сифилиса. Наибольшее количество культуральных штаммов бледных трепонем в нашей стране выделили В.М.Аристовский и Р.Р.Гельтцер. Данные «казанские» (I, II, IV, V) и «ставропольские» (VI, VII, VIII, IX) штаммы наряду со штаммом Рейтера применяют для приготовления антигенов для серодиагностики сифилиса (Овчинни- ков, Н.М. Экспериментальный сифилис / Н.М.Овчинников. - М.: Медгиз, 1955. - 387 с).  Cultural treponemas are somewhat different from tissue ones in their morphological, biochemical, and pathogenic properties. However, it is especially significant that their antigenic properties are very close to the pathogenic variants of the causative agent of syphilis. The greatest number of cultured strains of pale treponemas in our country were isolated by V.M. Aristovsky and R.R.Geltzer. These Kazan (I, II, IV, V) and Stavropol (VI, VII, VIII, IX) strains along with the Reiter strain are used to prepare antigens for serodiagnosis of syphilis (Ovchinnikov, N.M. Experimental syphilis / N.M. Ovchinnikov .-- M .: Medgiz, 1955 .-- 387 s).
Следует отметить, что возбудитель сифилиса является крайне прихотливым микроорганизмом. Культуральные трепонемы по сравнению с другими гетеротроф- ными микроорганизмами отличаются высокими питательными потребностями, не растут на обычных питательных средах, развиваются в узком температурном и кис- лотно-щелочном диапазоне, требуют тщательного соблюдения анаэробных условий, характеризуются очень медленным (до 7-10 сут) ростом и низким накоплением био- массы. It should be noted that the causative agent of syphilis is extremely whimsical. microorganism. Cultural treponemas, in comparison with other heterotrophic microorganisms, are characterized by high nutritional requirements, do not grow on ordinary nutrient media, develop in a narrow temperature and acid-alkaline range, require careful observance of anaerobic conditions, are characterized by a very slow (up to 7-10 days) growth and low biomass accumulation.
Бледные трепонемы хорошо развиваются на хорионаллантойсной ткани кури- ного зародыша, в кроличьей сыворотке с добавлением кусочков мозговой ткани под слоем вазелинового масла. Наиболее распространенными питательными средами для выращивания культуральных трепонем являются среды, питательной основой кото- рых является бульон из бычьих сердец с кусочками печени или бычьего сердца с до- бавлением пептона и ростовых факторов (Ю.А. Козлов, Питательные среды в меди- цинской микробиологии, М.: Медгиз, 1950, с. 203-206.; Справочник по микробиоло- гическим и вирусологическим методам исследования под редакцией М.О. Биргера, М.: Медицина, 1973, с. 47-92). Были разработаны среды на основе смеси асцитиче- ской жидкости с печеночным бульоном (рН 7,4-7,6), в которых кусочки печени заме- нены кусочками агара или мелко нарезанного круто сваренного куриного желтка. Описано использование жидких питательных сред на основе белковых гидролизатов пищевого и непищевого сырья (RU 2198920 С1 , 20.02.2003). На рынке предлагается сухая коммерческая среда для получения биомассы трепонем штамма Рейтера - «Бу- льон Омата для трепонем и фузобактерий» (HiMedia Laboratories Pvt. Limited, Индия).  Pale treponemas develop well on the chorionallant tissue of a chicken fetus, in rabbit serum with the addition of pieces of brain tissue under a layer of paraffin oil. The most common culture media for cultivating treponemes are culture media, the nutritional basis of which is bovine heart broth with pieces of liver or bovine heart with the addition of peptone and growth factors (Yu.A. Kozlov, Culture media in medical microbiology, M.: Medgiz, 1950, pp. 203-206 .; Handbook of Microbiological and Virological Research Methods, edited by MO Birger, Moscow: Medicine, 1973, pp. 47-92). Media based on a mixture of ascitic fluid with hepatic broth (pH 7.4–7.6) were developed, in which slices of the liver were replaced by slices of agar or finely chopped, boiled chicken yolk. The use of liquid nutrient media based on protein hydrolysates of food and non-food raw materials is described (RU 2198920 C1, 02.20.2003). A dry commercial environment for obtaining biomass of treponems of Reuters strain Tremoneum Omata Bouillon for Treponemas and Fusobacteria (HiMedia Laboratories Pvt. Limited, India) is offered on the market.
Наиболее близким по существу и назначению к заявляемому способу поддер- жания культуральных штаммов трепонем является традиционный метод субкульти- вирования (Овчинников, Н.М. Экспериментальный сифилис / Н.М.Овчинников. - М.: Медгиз, 1955. - 387 с), основанный на регулярных и частых (1 раз в 2-4 недели) пере- севах в жидких питательных средах. Для поддержания чистых культур наиболее ча- сто применяют жидкие питательные среды на основе мясопептонного бульона с до- бавлением кусочков телячьей печени в количестве 0,25% от объема питательной сре- ды с рН 8,0-8,4. Культивирование осуществляют при температуре 37±1 °С в течение 5-7 сут. в статических анаэробных условиях.  The closest to the essence and purpose of the claimed method of maintaining cultural treponemal strains is the traditional method of subculturing (Ovchinnikov, N.M. Experimental syphilis / N.M. Ovchinnikov. - M.: Medgiz, 1955. - 387 s), based on regular and frequent (1 time in 2-4 weeks) transfers in liquid nutrient media. To maintain pure cultures, liquid nutrient media based on meat and peptone broth with the addition of calf liver pieces in the amount of 0.25% of the volume of the nutrient medium with a pH of 8.0-8.4 are most often used. Cultivation is carried out at a temperature of 37 ± 1 ° C for 5-7 days. in static anaerobic conditions.
Необходимо учитывать, что метод субкультивирования характеризуется рядом существенных недостатков: трудоемкостью, высокой стоимостью питательных сред, приготовленных на основе высококачественного пищевого сырья, опасностью конта- минации культур посторонней микрофлорой в процессе пересевов, угрозой измене- ния основных биологических свойств возбудителя. Указанные трудности сохранения штаммов приводят к необходимости систематического дублирования пересевов и поддержания связей с учреждениями, сохраняющими культуральные штаммы блед- ных трепонем. It must be borne in mind that the subculturing method is characterized by a number of significant drawbacks: the complexity, the high cost of nutrient media prepared on the basis of high-quality food raw materials, the danger of contamination the ministry of crops by extraneous microflora in the process of reseeding, the threat of changes in the basic biological properties of the pathogen. The indicated difficulties in preserving the strains lead to the need for systematic duplication of reseeding and maintaining ties with institutions that preserve the cultured strains of pale treponemes.
Известно, что низкотемпературная консервация отличается небольшим повре- ждающим действием и расценивается многими авторами (Никитин, Е.Е., Звягин И.В. Замораживание и высушивание биологических препаратов / Е.Е. Никитин, И.В. Звя- гин. - Москва, 1979. - 337 с; Пушкарь Н.С., Белоус A.M. Введение в криобиологию. - Киев: Наукова думка, 1975. - 175 с.) как один из перспективных методов хранения микробных культур, который на сегодняшний день широко используется в лабора- торной практике. Эффективность данного метода определяется неукоснительным со- блюдением режима хранения и диапазоном используемых температур (Эшвуд-Смит, М. Консервирование микроорганизмов замораживанием, сушкой из замороженного состояния и обезвоживанием в эксикаторе / М. Эшвуд-Смит / пер. с англ. - Москва, 1982. - 36 с). Для повышения устойчивости микробов в процессе низкотемператур- ной консервации и последующего хранения необходимым является применение крио- защитных сред (криопротекторов).  It is known that low-temperature preservation is characterized by a small damaging effect and is regarded by many authors (Nikitin, E.E., Zvyagin I.V. Freezing and drying of biological preparations / E.E. Nikitin, I.V. Zvyagin. - Moscow , 1979. - 337 p .; Pushkar N.S., Belous AM Introduction to cryobiology. - Kiev: Naukova Dumka, 1975. - 175 p.) As one of the promising methods for storing microbial cultures, which today is widely used in laboratory practice. The effectiveness of this method is determined by strict observance of the storage regime and the range of temperatures used (Ashwood-Smith, M. Preservation of microorganisms by freezing, drying from a frozen state and dehydration in a desiccator / M. Ashwood-Smith / translated from English - Moscow, 1982. - 36 s). To increase the stability of microbes during low-temperature preservation and subsequent storage, it is necessary to use cryoprotective media (cryoprotectants).
Следует отметить, что аналогичный подход используется для сохранения жиз- неспособности патогенного штамма бледных трепонем {Treponema pallidum pallidum штамм Никольса), который не поддается выращиванию на искусственных питатель- ных средах и поддерживается исключительно в организме восприимчивого лабора- торного животного (кролика). Он включает в себя: тестикулярное заражение кролика культурой патогенной бледной трепонемы; получение из яичка взвеси микробов, со- держащей экстракт нативных тканей; стабилизацию суспензии криопротектором (глицерином); разделение на небольшие аликвоты объемом 0,75-1,5 мл; заморажива- ние и хранение при температуре минус 70-80 °С (RU 2292388 О, 27.01.2007).  It should be noted that a similar approach is used to preserve the viability of the pathogenic strain of pale treponema (Treponema pallidum pallidum Nichols strain), which is not susceptible to cultivation on artificial nutrient media and is maintained exclusively in the body of a susceptible laboratory animal (rabbit). It includes: testicular infection of the rabbit with a culture of pathogenic pale treponema; obtaining from the testis suspension of microbes containing an extract of native tissues; suspension stabilization with a cryoprotectant (glycerin); separation into small aliquots of 0.75-1.5 ml; freezing and storage at a temperature of minus 70-80 ° С (RU 2292388 О, January 27, 2007).
Раскрытие изобретения  Disclosure of invention
Задачей изобретения является разработка способа, обеспечивающего сохране- ние жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем в течение про- должительного периода времени, при упрощении способа и снижении затрат, связан- ных с приобретением и/или приготовлением дорогостоящего пищевого сырья надле- жащего качества (питательных сред), и устранении опасности контаминации культур посторонней микрофлорой в процессе осуществления регулярных пересевов. Технический результат заключается в увеличении сроков сохранения жизнеспо- собности культуральных штаммов бледных трепонем. The objective of the invention is to develop a method that preserves the viability of the cultured strains of pale treponema for a long period of time, while simplifying the method and reducing costs associated with the acquisition and / or preparation of expensive food raw materials of proper quality (nutrient media) , and eliminating the danger of contamination of crops by extraneous microflora in the process of regular reseeding. The technical result is to increase the life span of the culture strains of pale treponemas.
Поставленная задача решается тем, что способ сохранения жизнеспособности культуральных штаммов бледных трепонем с использованием криоконсервации включает получение стабилизированных микробных суспензий из нативных концен- трированных культур штаммов трепонем путем добавления криозащитной среды с последующим замораживанием и хранением стабилизированных микробных суспен- зйй при температуре минус 40±2 "С. В частном варианте осуществления изобретения добавление криозащитной среды может быть осуществлено в объемном соотношении 1 :2 (одна часть защитной среды и две части культуры микробов). Нативные концен- трированные культуры штаммов трепонем получают из нативных глубинных куль- тур с использованием метода естественного осаждения с последующим удалением надосадочной жидкости. Нативные глубинные культуры штаммов трепонем получа- ют из посевного материала на коммерческом «Бульоне Омата для трепонем и фузо- бактерий», выращивание которого осуществляют в мясопептонном бульоне с добав- лением кусочков печени. В заявляемом способе может быть использована криокон- сервирующая среда любого состава, обеспечивающая жизнеспособность культураль- ных трепонем при замораживании и хранении. В частном варианте осуществления изобретения использована защитная среда включающая, масс.%: сахарозу - от 7 до 8% , глицерин - от 28 до 32%, калий фосфорнокислый двузамещенный - от 0,5 до 0,7%, вода - до 100%.  The problem is solved in that the method of maintaining the viability of the cultured pale treponem strains using cryopreservation involves obtaining stabilized microbial suspensions from native concentrated cultures of treponemal strains by adding a cryoprotective medium, followed by freezing and storage of stabilized microbial suspensions at a temperature of minus 40 ± 2 " C. In a particular embodiment of the invention, the addition of a cryoprotective medium can be carried out in a volume ratio of 1: 2 (about on a part of the protective environment and two parts of the culture of microbes.) Native concentrated cultures of treponemal strains are obtained from native deep cultures using the natural precipitation method followed by removal of the supernatant. Native deep cultures of treponemal strains are obtained from seed material on a commercial Omata Bouillon for Treponemus and Fusobacteria ”, the cultivation of which is carried out in meat and peptone broth with the addition of pieces of the liver. In the inventive method, a cryopreservation medium of any composition can be used, which ensures the viability of culture treponemes during freezing and storage. In a particular embodiment of the invention, a protective medium is used comprising, wt.%: Sucrose - from 7 to 8%, glycerin - from 28 to 32%, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7%, water - up to 100%.
Технический результат достигается за счет того, что осуществляют накопление биомассы трепонем в жидкой питательной среде, концентрирование методом есте- ственной седиментации с последующим декантированием надосадочной жидкости и стабилизацию концентрированной микробной суспензии криозащитной сахарозо- глицериновой средой. Полученный препарат расфасовывают в отдельные герметич- ные укупорки, например, по 5 мл и немедленно подвергают замораживанию для по- следующего хранения при температуре минус 40±2 °С.  The technical result is achieved due to the fact that biomass of treponems is accumulated in a liquid nutrient medium, concentrated by natural sedimentation followed by decantation of the supernatant, and stabilization of the concentrated microbial suspension by cryoprotective sucrose-glycerol medium. The resulting preparation is packaged in separate airtight closures, for example, 5 ml each and immediately subjected to freezing for subsequent storage at a temperature of minus 40 ± 2 ° С.
Концентрирование биомассы трепонем обеспечивает создание необходимой посевной дозы для последующих пересевов, добавление криозащитной сахарозо- глицериновой среды обусловливает защитный эффект при замораживании и хране- нии, фасовка в отдельные герметичные укупорки позволяет достигать оптимальных темпов замораживания и размораживания полученного продукта, а последующее хранение при температуре минус 40±2 °С обеспечивает сохранение жизнеспособно- сти микроорганизмов не менее 18 мес. (по данным экспериментальных исследова- ний). The concentration of treponem biomass ensures the creation of the required seed dose for subsequent reseeding, the addition of a cryoprotective sucrose-glycerin medium determines the protective effect during freezing and storage, packing in separate airtight closures allows achieving optimal rates of freezing and thawing of the obtained product, and subsequent storage at minus 40 ± 2 ° C ensures viable microorganisms for at least 18 months. (according to experimental studies).
Совокупность перечисленных операций и условий их выполнения обеспечива- ет получение следующих преимуществ:  The combination of the above operations and the conditions for their implementation provides the following benefits:
5 при бесперебойной работе холодильного оборудования гарантированно сохра- няется жизнеспособность и ростовые свойства культуральных штаммов бледных трепонем не менее 18 мес;  5 during the uninterrupted operation of refrigeration equipment, the viability and growth properties of the cultured strains of pale treponemes are guaranteed to be maintained for at least 18 months;
криоконсервированные культуры штаммов трепонем после реактивации могут быть использованы для непосредственного засева жидких питательных сред из расче- 10 та содержимое одной укупорки на 0,25 - 0,5 л среды;  cryopreserved cultures of treponemal strains after reactivation can be used for direct inoculation of liquid nutrient media from the calculation of 10 contents of one closure per 0.25 - 0.5 l of medium;
осуществление контроля на всех этапах приготовления криоконсервированных культур штаммов трепонем гарантирует отсутствие посторонней микрофлоры и сни- жение связанных с этим потерь, наблюдаемых в процессе многократных пересевов; сроки культивирования штаммов трепонем в анаэробных условиях при темпе- 15 ратуре 37=1=1 °С при использовании в качестве посевного материала криоконсервиро- ванных культур практически не отличаются от аналогичных при использовании в ка- честве посевного материала глубинных культур (7-10 сут.);  monitoring at all stages of preparation of cryopreserved cultures of treponemal strains ensures the absence of extraneous microflora and a reduction in the losses associated with this observed during repeated reseeding; the periods of cultivation of treponemal strains under anaerobic conditions at a temperature of 37 = 1 = 1 ° C when using cryopreserved cultures as seed material practically do not differ from the analogous when using deep cultures as seed material (7-10 days). );
хранение криоконсервированных культур в отдельных герметичных укупор- ках позволяет дробно использовать первоначально приготовленный препарат без 20 ухудшения его свойств и многократно применять в качестве посевного материала;  storing cryopreserved cultures in separate airtight closures allows fractional use of the initially prepared preparation without 20 deterioration of its properties and is repeatedly used as a seed;
при систематическом применении данного способа снижаются прямые мате- риальные и трудовые затраты, связанные с приобретением и приготовлением пита- тельных сред, осуществлением регулярных пересевов, в том числе при временном прекращении работ с культуральными штаммами бледных трепонем.  the systematic application of this method reduces direct material and labor costs associated with the acquisition and preparation of nutrient media, the implementation of regular reseeding, including the temporary cessation of work with cultured strains of pale treponemes.
25 Лучший вариант осуществления изобретения 25 Best Mode for Carrying Out the Invention
Способ осуществляют следующим образом:  The method is as follows:
получают посевной материал штаммов трепонем путем выращивания микро- бов, например, в мясо-пептонном бульоне с добавлением от 20 до 25 % по объему ку- сочков вареной говяжьей печени в колбах в анаэробных условиях при температуре 30 37±ГС в течение от 7 до 10 сут.;  receive seed material of treponemal strains by growing microbes, for example, in meat and peptone broth with the addition of 20 to 25% by volume of boiled beef liver piles in flasks under anaerobic conditions at a temperature of 30 37 ± GS for 7 to 10 day .;
получают нативные глубинные культуры штаммов трепонем путем выращива- ния микробов, например, в коммерческой жидкой питательной среде «Бульон Омата для трепонем и фузобактерий» (HiMedia Laboratories Pvt. Ltd., Индия) с добавлением коммерческой сыворотки крупного рогатого скота в колбах в анаэробных условиях при температуре 37± С в течение от 7 до 10 сут. в шейкере-инкубаторе при частоте оборотов платформы 120±10 оборотов мин"1; get native deep cultures of treponemal strains by growing microbes, for example, in the commercial liquid nutrient medium “Omata Broth for Treponemus and Fusobacteria” (HiMedia Laboratories Pvt. Ltd., India) with the addition of commercial cattle serum in flasks under anaerobic conditions at a temperature of 37 ± C for 7 to 10 days. in a shaker-incubator at a platform speed of 120 ± 10 rpm "1 ;
получают нативные концентрированные суспензии штаммов трепонем с ис- пользованием метода естественной седиментации с последующим декантированием надосадочной жидкости, который включает отстаивание полученной на предьщущем этапе микробной культуры в течение суток при температуре 20±2°С до получения оформленного осадка с последующим удалением в асептических условиях надоса- дочной жидкости в объеме от 60 до 80 % от исходного объема культуральной жидко- сти;  native concentrated suspensions of treponemal strains are obtained using the natural sedimentation method, followed by decantation of the supernatant, which includes settling the microbial culture obtained at the previous stage for a day at a temperature of 20 ± 2 ° С until a formed sediment is obtained, followed by aseptic removal of the supernatant. dosing fluid in a volume of 60 to 80% of the initial volume of the culture fluid;
готовят стабилизированные микробные суспензии штаммов трепонем путем добавления криозащитной среды, включающей следующие компоненты, мас.%: саха- розу - от 7 до 8 %, глицерин - от 28 до 32 %, калий фосфорнокислый двузамещенный - от 0,5 до 0,7 %;  stabilized microbial suspensions of the treponemal strains are prepared by adding a cryoprotective medium comprising the following components, wt.%: sucrose - from 7 to 8%, glycerin - from 28 to 32%, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0.7% ;
в стабилизированных микробных суспензиях штаммов трепонем осуществля- ют контроль внешнего вида, типичности свойств микробов и отсутствия посторонней микрофлоры методом фазово-контрастной микроскопии в нативных препаратах типа «раздавленная капля»;  in stabilized microbial suspensions of treponemal strains, the appearance, typical properties of microbes and the absence of extraneous microflora are monitored by phase contrast microscopy in native preparations of the “crushed drop” type;
производят фасовку стабилизированных микробных суспензий штаммов тре- понем в отдельные герметичные укупорки;  Stabilized microbial suspensions of the treponem strains are packaged in separate sealed closures;
в течение 1 часа с момента приготовления стабилизированные микробные сус- пензии штаммов трепонем замораживают при температуре минус 40±2 "С; хранение криоконсервированных микробных суспензии штаммов трепонем осуществляют при температуре минус 40±2 "С сроком до 18 мес.  within 1 hour from the preparation, stabilized microbial suspensions of treponemal strains are frozen at a temperature of minus 40 ± 2 "C; storage of cryopreserved microbial suspensions of treponemal strains is carried out at a temperature of minus 40 ± 2" for up to 18 months.
Осуществимость заявляемого способа с достижением технического результата подтверждается примерами конкретного выполнения.  The feasibility of the proposed method with the achievement of a technical result is confirmed by examples of specific performance.
Пример Na 1. Способ криоконсервации культуральных штаммов бледной тре- понемы на примере штамма Treponema pallidum pallidum Рейтера  Example Na 1. The method of cryopreservation of culture strains of pale treponema on the example of the strain Treponema pallidum pallidum Reiter
Для получения посевного материала трепонем в колбу вместимостью 0,5 л, за- полненную на три четверти стерильным мясопептонным бульоном с кусочками пече- ни под ватно-марлевой пробкой, асептически вносили культуру штамма Рейтера в ко- личестве от 40 до 60 мл. Для создания анаэробных условий на поверхность засеянной среды осторожно наслаивали предварительно расплавленный на водяной бане сте- рильный медицинский вазелин, чтобы получилась герметичная пробка высотой 1,5- To obtain inoculum with treponem, a flask with a capacity of 0.5 l, filled in three quarters with sterile meat and peptone broth with pieces of liver under a cotton-gauze stopper, aseptically introduced a culture of Reiter strain in an amount of 40 to 60 ml. To create anaerobic conditions, a sterile medical petroleum jelly, previously melted in a water bath, was carefully layered onto the surface of the seeded medium, so that an airtight plug 1.5-
2,0 см. Содержимое засеянных колб тщательно перемешивали аккуратными враща- тельными движениями и помещали в термостат при температуре 37±ГС на срок от 7 до 10 сут. Ежедневно несколько раз в день осуществляли перемешивание растущих культур аккуратными вращательными движениями для равномерного распределения микробов по всему объему среды. 2.0 cm. The contents of the seeded flasks were thoroughly mixed with neat rotational movements and placed in a thermostat at a temperature of 37 ± GS for a period of 7 to 10 days. Every day several times a day, the growing cultures were mixed with neat rotational movements to evenly distribute microbes throughout the entire volume of the medium.
Для получения нативной глубинной культуры в колбу вместимостью 0,5 или 1 л, заполненную на три четверти стерильным коммерческим бульоном Рейтера с до- бавлением 10 % нативной сыворотки крупного рогатого скота, асептически вносили приготовленный на мясопептонном бульоне посевной материал в количестве около 10-20 % по объему. Для создания анаэробных условий на поверхность засеянной сре- ды осторожно наслаивали предварительно расплавленный на водяной бане стериль- ный медицинский вазелин, чтобы получилась герметичная пробка высотой 1,5-2,0 см. Содержимое засеянных колб тщательно перемешивали и помещали в шейкер- инкубатор при температуре 37± С и частоте движения платформы 120±10 кача- ний-мин-1 на срок от 7 до 10 сут. Ежедневно несколько раз в день осуществляли ви- зуальный контроль роста.  To obtain a native deep culture, in a flask with a capacity of 0.5 or 1 L, filled in three quarters with a sterile commercial Reuters broth with the addition of 10% of the native cattle serum, aseptically added about 10-20% of the seed prepared on meat and peptone broth by volume. To create anaerobic conditions, a sterile medical petroleum jelly pre-melted in a water bath was carefully layered on the surface of the seeded medium, so that an airtight stopper 1.5-2.0 cm high was obtained. The contents of the seeded flasks were thoroughly mixed and placed in a shaker incubator at a temperature 37 ± C and a platform frequency of 120 ± 10 swing-min-1 for a period of 7 to 10 days. Several times a day, visual growth control was performed.
Для получения концентрированной нативной культуры по окончании выращи- вания колбы оставляли при комнатной температуре на 24 ч для уплотнения осадка. По истечении указанного срока из каждой колбы асептически с помощью стерильной стеклянной лопаточки удаляли вазелиновую пробку. Затем с помощью вакуума из каждой колбы очень осторожно удаляли надосадочную жидкость (от 60 до 80 %) та- ким образом, чтобы не нарушить целостность осадка. Кондиционные осадки со всех колб асептически мерно объединяли в одну стерильную емкость. Культуру подобным образом сконцентрировали в 30 раз. После этого осуществляли контроль типичности морфологии и наличия посторонней микрофлоры с помощью микроскопии.  To obtain a concentrated native culture, at the end of the cultivation, the flasks were left at room temperature for 24 hours to condense the precipitate. After this period, a vaseline plug was removed from each flask aseptically using a sterile glass spatula. Then, using a vacuum, supernatant (60 to 80%) was carefully removed from each flask in such a way as not to disturb the integrity of the precipitate. Conditioned precipitates from all flasks were aseptically uniformly combined into one sterile container. The culture was similarly concentrated 30 times. After this, the typical morphology and the presence of extraneous microflora were monitored using microscopy.
К концентрированной суспензии добавляли криозащитную среду в объемном соотношении 1 :2. Содержимое емкости тщательно перемешивали. После этого осу- ществляли контроль типичности морфологии микробов и отсутствия посторонней микрофлоры в нативных препаратах типа «раздавленная капля» с помощью фазово- контрастной микроскопии.  A cryoprotective medium was added to the concentrated suspension in a volume ratio of 1: 2. The contents of the container were thoroughly mixed. After that, the typicality of the morphology of microbes and the absence of extraneous microflora in native preparations of the “crushed drop” type were monitored using phase contrast microscopy.
Стабилизированную микробную суспензию расфасовали по 5 мл в стерильные флаконы емкостью 10 мл, укупоривали резиновыми пробками, которые фиксировали металлическими колпачками. Расфасованные и промаркированные флаконы со стаби- лизированной концентрированной культурой трепонем немедленно помещали в низ- котемпературный рефрижератор с температурой минус 40±2 "С для замораживания и хранения. The stabilized microbial suspension was packaged in 5 ml in sterile 10 ml bottles, corked with rubber stoppers, which were fixed with metal caps. Packaged and labeled vials with a stable concentrated treponem culture were immediately placed in a low-temperature refrigerator with a temperature of minus 40 ± 2 ° C for freezing and storage.
Заявляемым методом было приготовлено 3 серии криоконсервированных куль- тур. В процессе хранения регулярно проводили контроль сохранности жизнеспособ- ности и ростовых свойств микробов (таблица 1). Для этого флаконы с криоконсерви- рованной культурой штамма реактивировали в течение 30 мин. при температуре 37±ГС, а затем засевали в колбы емкостью 0,25 л, содержащие мясопептонный буль- он с кусочками печени. Выращивание осуществляли от 7 до 10 сут. при температуре 37± С при ежедневном перемешивании, макро- и микроскопическом контроле роста.  By the claimed method, 3 series of cryopreserved cultures were prepared. During storage, the safety of the viability and growth properties of microbes was regularly monitored (Table 1). For this, vials with a cryopreserved strain culture were reactivated for 30 minutes. at a temperature of 37 ± GS, and then inoculated into 0.25 L flasks containing meat and peptone broth with pieces of liver. Cultivation was carried out from 7 to 10 days. at a temperature of 37 ± C with daily stirring, macro- and microscopic control of growth.
Заявляемый способ был апробирован с использованием культуральных штам- мов Treponema pallidum pallidum «Казань» V, «Ставрополь» VII, «Ставрополь» VIII, «Ставрополь» IX (см. примеры 2 - 5 таблицы 1).  The inventive method was tested using the cultural strains Treponema pallidum pallidum “Kazan” V, “Stavropol” VII, “Stavropol” VIII, “Stavropol” IX (see examples 2 to 5 of table 1).
Результаты проведенных исследований показывают, что после замораживания и хранения криоконсервированных культур культуральных штаммов трепонем в те- чение 18 мес. при температуре минус 40±2 °С их ростовые свойства в жидкой пита- тельной среде практически не отличаются от аналогичных показателей для микробов, хранившихся в течение 1-2 мес. при комнатной температуре в мясо-пептонном буль- оне с кусочками печени. The results of the studies show that after freezing and storage of cryopreserved cultures of treponemal culture strains for 18 months. at a temperature of minus 40 ± 2 ° С, their growth properties in a liquid nutrient medium practically do not differ from similar indicators for microbes stored for 1-2 months. at room temperature in a meat-peptone broth with pieces of liver.
Таблица 1 - Результаты оценки жизнеспособности и ростовых свойств культуральных штаммов трепонем после замораживания и хране- ния в криоконсервированном состоянииTable 1 - The results of assessing the viability and growth properties of cultural treponemal strains after freezing and storage in a cryopreserved state
Figure imgf000010_0001
Figure imgf000010_0001

Claims

ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ CLAIM
1. Способ сохранения жизнеспособности культу ральных штаммов бледных трепонем с использованием криоконсервации, включающий получение стабилизи- рованных микробных суспензий из нативных концентрированных культур штаммов трепонем путем добавления криозащитной среды с последующим замораживанием и хранением стабилизированных микробных суспензий при температуре минус 40±2 °С. 1. A method for maintaining the viability of cultured pale treponemal strains using cryopreservation, comprising obtaining stabilized microbial suspensions from treponemal native concentrated cultures by adding a cryoprotective medium, followed by freezing and storage of stabilized microbial suspensions at a temperature of minus 40 ± 2 ° С.
2. Способ по п.1, характеризующийся тем, что добавление криозащитной среды осуществляют в объемном соотношении 1 :2.  2. The method according to claim 1, characterized in that the addition of cryoprotective medium is carried out in a volume ratio of 1: 2.
3. Способ по п.1, характеризующийся тем, что нативные концентрированные культуры штаммов трепонем получают из нативных глубинных культур с использо- ванием метода естественного осаждения с последующим удалением надосадочной жидкости.  3. The method according to claim 1, characterized in that the native concentrated cultures of treponemal strains are obtained from native deep cultures using the method of natural deposition followed by removal of the supernatant.
4. Способ по п.З, характеризующийся тем, что нативные глубинные культуры штаммов трепонем получают из посевного материала на коммерческом «Бульоне Омата для трепонем и фузобактерий», выращивание которого осуществляют в мясо- пептонном бульоне с добавлением кусочков печени.  4. The method according to claim 3, characterized in that native deep cultures of treponemal strains are obtained from seed on the commercial Omata Bouillon for treponemas and fusobacteria, the cultivation of which is carried out in meat and peptone broth with the addition of pieces of liver.
5. Способ по п.1, характеризующийся тем, что используют сахарозо- глицериновую криозащитную среду.  5. The method according to claim 1, characterized in that a sucrose-glycerin cryoprotective medium is used.
6. Способ по п.5, характеризующийся тем, что криозащитную среду используют с содержанием следующих компонентов, масс.%: сахароза - от 7 до 8% , глицерин - от 28 до 32%, калий фосфорнокислый двузамещенный - от 0,5 до 0,7%, вода - осталь- ное.  6. The method according to claim 5, characterized in that the cryoprotective medium is used with the following components, wt.%: Sucrose - from 7 to 8%, glycerin - from 28 to 32%, potassium disubstituted phosphate - from 0.5 to 0 , 7%, water - the rest.
PCT/RU2016/000426 2016-07-11 2016-07-11 Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation WO2018012993A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/RU2016/000426 WO2018012993A1 (en) 2016-07-11 2016-07-11 Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PCT/RU2016/000426 WO2018012993A1 (en) 2016-07-11 2016-07-11 Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2018012993A1 true WO2018012993A1 (en) 2018-01-18

Family

ID=60953167

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/RU2016/000426 WO2018012993A1 (en) 2016-07-11 2016-07-11 Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation

Country Status (1)

Country Link
WO (1) WO2018012993A1 (en)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4226940A (en) * 1979-06-21 1980-10-07 Great Lakes Biochemical Co., Inc. Non-frozen concentrated bacterial cultures
SU1650098A1 (en) * 1987-08-17 1991-05-23 Ставропольский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток Method for serodiagnosis of syphilis
RU2344169C1 (en) * 2007-04-26 2009-01-20 Федеральное государственное учреждение "Государственный научный центр дерматовенерологии Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи "(ФГУ "ГНЦД Росмедтехнологий") Viability preserving medium for clinical isolates of pathogenic treponema palladium
WO2012098358A1 (en) * 2011-01-20 2012-07-26 Biopharma Technology Ltd Freeze drying method

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4226940A (en) * 1979-06-21 1980-10-07 Great Lakes Biochemical Co., Inc. Non-frozen concentrated bacterial cultures
SU1650098A1 (en) * 1987-08-17 1991-05-23 Ставропольский Научно-Исследовательский Институт Вакцин И Сывороток Method for serodiagnosis of syphilis
RU2344169C1 (en) * 2007-04-26 2009-01-20 Федеральное государственное учреждение "Государственный научный центр дерматовенерологии Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи "(ФГУ "ГНЦД Росмедтехнологий") Viability preserving medium for clinical isolates of pathogenic treponema palladium
WO2012098358A1 (en) * 2011-01-20 2012-07-26 Biopharma Technology Ltd Freeze drying method

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
?OX??EH?O B.?. ? ?P: "Me?o?? ????e????o xpa?e??? ?o??e???o???x ??????p ???poop?a????o? ? ?e??????? pa??????", ???E???? ??C??X ??E???X ?A?E?E???, vol. 12, no. 4, 2009, pages 99 - 121 *
HOLLANDER DAVID H. ET AL.: "Improved Preservation of Treponemna pallidum and Other Bacteria by Freezing with Glycerol", APPL MICROBIOL., vol. 2, no. 3, 1954, pages 164 - 170, XP055459832 *
SPIROLATE BROTH, HIMEDIA LABORATORIES, 2011, pages 1 - 2, XP055457301, Retrieved from the Internet <URL:http://himedialabs.com/TD/M412.pdf> *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Cleland et al. Glycine betaine as a cryoprotectant for prokaryotes
Taylor et al. Cryopreservation of eukaryotic algae–a review of methodologies
US5856172A (en) Preservation of microorganisms in a vial with a cap comprising an immobilized desiccant
RU2600883C1 (en) Method for maintaining viability of culture strains of pale treponema using cryopreservation
CN108094405B (en) Cell cryopreservation composition and application thereof
Kumar et al. Preservation and maintenance of microbial cultures
Poncet et al. Cryopreservation of the unicellular marine alga, Nannochloropsis oculata
Aizdaicher et al. The development of Porphyridium purpureum (Bory de Saint-Vincent) Drew et Ross, 1965 (Rhodophyta) from Amursky Bay, sea of Japan, in a laboratory culture
WO2018012993A1 (en) Method for maintaining viability of treponema pallidum culture strains via cryopreservation
Salas-Leiva et al. Criopreservación de las microalgas Chaetoceros calcitrans (Paulsen): análisis del efecto de la temperatura de DMSO y régimen de luz durante diferentes períodos de equilibrio
Malik Preservation of unicellular gree algae by a liquid-drying method
CN103907526A (en) Porphyra yezoensis germplasm liquid phase preservation method
Boileau et al. Lyophilization of Bdellovibrio bacteriovorus 109J for Long‐Term Storage
CN107254446A (en) A kind of method for separating and preparing of people&#39;s primary tumor cell
RU2518282C1 (en) Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe
RU2541452C1 (en) Method for long-term storage of microalgae
Day Cryopreservation of macroalgae
RU2726299C1 (en) Protective environment for cryopreservation for anaerobic, aerobic, facultative anaerobic and microaerophilic microorganisms in fecal microbiota
RU2292388C1 (en) Method for retaining pathogenic treponema pallidum strain viability
RU2822476C1 (en) Method for long-term preservation of obligate anaerobic bacteria by drying from frozen state
CN104845918A (en) Isolation culture method of intestinal endogenous sinapine degrading bacteria of laying hens
Al-Someidae et al. Alginate beads utilization for long-term storage of microalgal isolates
RU2788920C2 (en) Method for production of bacterial concentrate
CN108782466A (en) A kind of method of preservation Caenorhabditis elegans
RU2681116C2 (en) Dense nutrient medium for storage of plague microbe

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 16908959

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 16908959

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1