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WO2016166484A1 - Composition de plasminogénase immobilisée, procédé de préparation, utilisation et dispositif comprenant une telle composition - Google Patents

Composition de plasminogénase immobilisée, procédé de préparation, utilisation et dispositif comprenant une telle composition Download PDF

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Publication number
WO2016166484A1
WO2016166484A1 PCT/FR2016/050869 FR2016050869W WO2016166484A1 WO 2016166484 A1 WO2016166484 A1 WO 2016166484A1 FR 2016050869 W FR2016050869 W FR 2016050869W WO 2016166484 A1 WO2016166484 A1 WO 2016166484A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
medium
plasmin
plasminogenase
rich
plasma
Prior art date
Application number
PCT/FR2016/050869
Other languages
English (en)
Inventor
Gérard Reboul
Original Assignee
Arcadophta
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Arcadophta filed Critical Arcadophta
Priority to CN201680034582.2A priority Critical patent/CN107787366A/zh
Priority to US15/566,642 priority patent/US20180135038A1/en
Priority to EP16729958.5A priority patent/EP3283626A1/fr
Priority to JP2018505541A priority patent/JP2018515131A/ja
Publication of WO2016166484A1 publication Critical patent/WO2016166484A1/fr

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    • C12Y304/00—Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21—Serine endopeptidases (3.4.21)

Definitions

  • the invention relates to an enzymatic composition comprising a plasminogenase immobilized on a solid support, a process for preparing such an enzymatic composition, the use of such an enzymatic composition for the preparation of an autologous plasmatic medium ex vivo and rich in plasmin and a device comprising such an enzymatic composition.
  • the invention particularly relates to an enzyme composition and a device comprising such an enzyme composition which are suitable for use in the treatment of a pathology in a patient in which an autologous composition enriched with autologous plasmin is required.
  • an enzyme composition enriched with autologous plasmin is required.
  • a device comprising such an enzyme composition which are suitable for use in the treatment of a pathology in a patient in which an autologous composition enriched with autologous plasmin is required.
  • Certain pathological indications in ophthalmology such as vitreo-macular tractions (TVM) generate macular holes created by differential tangential tensile stresses occurring between the vitreous body and the retina.
  • the treatment of these pathologies requires releasing the retina from these constraints.
  • the known treatments are mainly of a surgical nature aimed at mechanically separating the retina and the vitreous body.
  • WO2010 / 125148 discloses a treatment of a detachment of the retina in traction (in English "tractional retinal detachment") in which a sterile composition obtained by addition of heterologous urokinase is administered into the vitreous humor of a patient. to the patient's plasma.
  • This sterile composition comprises heterologous urokinase and is likely to pose a problem of immunological and inflammatory reaction in the patient.
  • an injectable composition comprising a recombinant protein formed from the catalytic domain of plasmin and the effect of the injection of such an injectable composition at the vitreo-retinal interface of ex vivo human eyes or eyes of in vivo cat.
  • Such a recombinant protein is however complex in its manufacture.
  • the presence of heterologous recombinant protein in such an injectable composition leads to a problem of immune reaction in the patient receiving this injectable composition.
  • the cost of this injectable composition is high, so that alternative solutions to the use of recombinant proteins are sought, with which the risks of immune reaction would also be minimized.
  • JP2007 / 068497 a plasminogen plasmin conversion process previously extracted from plasma. JP2007 / 068497 does not teach a method for converting plasma plasminogen directly into a plasma into plasmin and preparing an autologous plasma enriched with plasmin.
  • the invention therefore aims to solve all of these problems.
  • the invention aims at providing an enzymatic composition, a method of preparation and the use of such an enzymatic composition, and a device comprising such an enzymatic composition which makes it possible to convert plasminogen ex vivo from a plasma blood medium. in plasmin under the effect of the enzymatic composition.
  • the invention makes it possible to prepare an ex vivo plasmatic medium rich in plasmin free of heterologous enzyme or having only a residual amount of minimal free heterologous enzyme and in particular insufficient to provoke an immune reaction during the bringing into contact-in particular injection- of said ex vivo plasmin-rich plasma medium into contact with tissue (s) of a patient.
  • the aim of the invention is to propose an enzymatic composition, a method of preparation and the use of such an enzymatic composition, and a device comprising such an enzymatic composition adapted to allow rapid conversion - especially in a period of between 15 min and 60 min at 37 ° C - of plasminogen from a plasmatic blood plasma medium.
  • the invention relates to an enzymatic composition
  • an enzymatic composition comprising:
  • plasminogenase at least one enzyme, referred to as plasminogenase, for conversion to plasmin of plasminogen of a plasmatic blood medium comprising plasminogen;
  • the solid support having dimensions adapted to be retained on a filter having a cutoff threshold less than or equal to 0.22 ⁇ ;
  • said plasminogenase is bound to the solid support and remains bound to this support in contact with a blood plasma medium and in that the composition is in a dry state.
  • blood plasma medium means any liquid medium free of viable blood cells and resulting directly from a fractionation treatment of blood-in particular human blood-liquid not coagulated, under conditions adapted to allow separation of blood cells (red blood cells, leukocytes, platelets) and blood plasma medium free of viable blood cells. Such separation can be achieved for example by centrifugation or cell sorting in a microfluidic process;
  • ex vivo plasma medium denotes any plasma plasmatic medium extracted from the human or animal body
  • plasminogenase denotes any enzyme exhibiting plasminogen conversion activity to plasmin by cleavage of a peptide bond of plasminogen
  • stable bond refers to all the forces ensuring, under predetermined conditions, the cohesion between groups of atoms, in particular between the solid support and at least one plasminogenase when the enzymatic composition is contacted by immersion at a temperature of the order of 37 ° C in a blood plasma medium;
  • the invention relates to an enzymatic composition
  • an enzymatic composition comprising at least one immobilized plasminogenase on a solid support in the divided state, said enzymatic composition being adapted to be able to:
  • the plasminogenase, the solid support and the bond formed between the plasminogenase and the solid support are selected so that the plasminogenase remains bound to the solid support when the enzyme composition is brought into contact with a blood plasma medium.
  • the enzymatic composition according to the invention is in the dry state.
  • dry state translates, in particular, the fact that the enzymatic composition according to the invention does not bring to the blood plasma medium with which it is brought into contact any liquid, in particular any aqueous liquid, capable of modifying the ionic composition and / or the ionic concentrations of the blood plasma medium in which the enzyme composition is contacted. It does not therefore substantially modify the osmotic properties of the plasma blood medium with which it is put in contact. It also does not modify, by its only addition in the blood plasma medium, the concentration of the plasminogen present in the blood plasma medium in which it is added.
  • the enzymatic composition according to the invention does not release into the blood plasma medium brought into contact with the enzymatic composition of plasminogenase in the free state or releases into the blood plasma medium brought into contact with the enzyme composition a small amount of plasminogenase in the free state.
  • the enzymatic composition according to the invention is therefore likely to be used in a process for the preparation of a plasmin-rich ex vivo plasma medium substantially free of heterologous plasminogenase, from a blood plasma medium formed from blood taken from a patient.
  • Such an autologous ex vivo plasma plasmin-rich medium substantially free of heterologous plasminogenase is intended for use in the same patient.
  • the inventor has observed that it is possible to immobilize at least one plasminogenase on a solid support in the dissolved state which is insoluble in aqueous solution while retaining a plasminogenase activity.
  • Such an enzymatic composition makes it possible, on the one hand, to effectively convert plasminogen from a plasma blood medium to plasmin and, on the other hand, facilitates the separation of the enzyme composition from an ex vivo plasmatic medium rich in plasmin obtained by placing in contact with a blood plasma medium and the enzymatic composition, by limiting - in particular by completely avoiding - a significant untimely release of plasminogenase in this ex vivo plasma rich plasmin medium.
  • the plasmin rich ex vivo plasma medium is therefore substantially free of exogenous and heterologous plasminogenase.
  • the solid support is in the divided state and formed of particles having three dimensions extending in three orthogonal directions to each other, at least two of the three dimensions being greater than 0.22 ⁇ .
  • each particle size is greater than 0.22 ⁇ .
  • At least two of the dimensions of the solid support particles in the divided state are between 1 ⁇ and 500 ⁇ , in particular between 10 ⁇ and 500 ⁇ , preferably between 100 ⁇ and 500 ⁇ .
  • each particle size of the solid support in the divided state is between 1 ⁇ and 500 ⁇ , especially between 10 ⁇ and 500 ⁇ , preferably between 100 ⁇ and 500 ⁇ .
  • the dimensions of the particles of the solid support in the divided state are chosen so that the enzymatic composition is retained on a sterilization filter, that is to say on a filter having a cut-off threshold less than or equal to 0.22. ⁇ .
  • the solid support is formed of a porous material.
  • the porous material has pores with an average diameter of between 5 nm and 50 nm, preferably between 10 nm and 20 nm.
  • the porous material is chosen from the group formed of rigid materials.
  • the solid support is formed of a material chosen from the group formed of high specific surface materials.
  • the solid support of the enzymatic composition is a solid support excluding the solid supports cited in JP2007 / 068497.
  • the solid support of the enzymatic composition according to the invention is a solid support excluding the Sepharose 4FF / BB-CNBr support, the Sepharose 4FF-NHS support, the Sepharose 4B-ECH support and the Affi-Prep 10 support.
  • the solid support in particular the solid support in the divided state, is formed of a material chosen from the group consisting of polyglucoside polymers and poly-methacrylic polymers.
  • the solid support is selected from the group consisting of SEPABEADS ® EC-HFA / S and GE Healthcare Epoxy-activated Sepharose TM supports.
  • the solid support in the divided state is formed of spherical particles of average diameter between 100 ⁇ and 300 ⁇ .
  • the solid support-in particular the solid support in the divided state- is formed of a material chosen from the group formed of poly-methacrylic polymers.
  • the solid support is formed of a material selected from the group formed in particular poly-methacrylic copolymers, for example poly (glycidyl methacrylic (GMA) / ethylene dimethacrylic copolymers (EDMA).
  • each plasminogenase - is a serine endopeptidase - in particular an antithrombotic activity endopeptidase - of class EC 3.4.21 of the classification of enzymes.
  • At least one plasminogenase - in particular each plasminogenase - is selected from the group consisting of a urokinase, a streptokinase, a nattokinase and a tissue plasminogen activator (t-PA).
  • at least one plasminogenase is urokinase U0633 (Sigma-Aldrich, Lyon, France).
  • the enzymatic composition comprises a single plasminogenase.
  • the enzyme composition may comprise a plurality of different plasminogenases in admixture.
  • At least one plasminogenase is bound to the solid support by at least one stable bond selected from the group consisting of a covalent bond, an ionic bond, a covalent bond coordination (or dative linkage) and a van der Waals-type hydrophobic interaction.
  • At least one stable bond is chosen to resist contacting with an aqueous solution of NaCl at a concentration of 0.5 M.
  • At least one plasminogenase - in particular each plasminogenase - is bound to the solid support by at least one covalent bond.
  • at least one such covalent bond is formed by chemical reaction between a free amine group of said plasminogenase and an epoxy group of the solid support.
  • the enzymatic composition comprises a single plasminogenase or a mixture of a plurality of plasminogenases.
  • the enzymatic composition is adapted to form, by placing in contact with an enzymatic composition according to the invention and with a plasma blood medium, an ex vivo plasmin-rich plasma medium which is substantially pyrogen-free.
  • An enzymatic composition according to the invention is suitable for not releasing a heterologous compound-in particular heterologous plasminogenase-in a plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained by bringing the enzymatic composition into contact with a plasma blood medium-in particular with a temperature of the order of 37 ° C-, said heterologous compound being capable of inducing an immune reaction in a subject treated with an amount of plasmin-rich ex vivo plasma medium.
  • the pyrogenic / pyrogen-free character of the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium obtained by contacting a blood plasma medium and an enzymatic composition according to the invention by measuring the body temperature of rabbits injected with Autologous ex vivo plasma medium rich in plasmin.
  • the lack of temperature increase rabbit body following injection reflects the pyrogen-free character of plasmin-rich plasma ex vivo medium.
  • the enzymatic composition is free of any microbial germ, in particular of any pathogenic microbial germ.
  • the enzymatic composition is sterile.
  • the enzymatic composition is in the dry state. It may be in the form of a dry powder adapted to be put directly in contact with a plasma blood medium, in particular without the addition of water or aqueous solution (such as water for solution for injection or saline) and to allow a plasmin conversion of at least a portion of the plasminogen of the blood plasma medium under the action of said plasminogenase in contact with the blood plasma medium.
  • aqueous solution such as water for solution for injection or saline
  • the enzymatic composition is in the dry state and dehydrated; it can therefore be kept in a dry and dehydrated state; it is adapted to be put directly in contact with a plasma blood medium, in particular without any addition of water or aqueous solution (such as water for solution for injection or saline) and to allow conversion to plasmin at least a part of the plasminogen of the plasma blood medium under the action of said plasminogenase in contact with the blood plasma medium.
  • aqueous solution such as water for solution for injection or saline
  • the enzymatic composition is in the form of dehydrated powder.
  • each plasminogenase is bound to the solid support so as to introduce, into a plasma blood medium in contact with which the enzyme composition is placed, a free plasminogenase mass of less than 400 ⁇ g, said contact being carried out according to the method below:
  • a mass of between 0.01 g and 0.5 g, in particular of the order of 0.1 g of enzyme composition in the state, is mixed at a temperature of about 37.degree. dehydrated with a volume of between 0.5 mL and 1.0 mL - in particular of the order of 0.7 mL of blood plasma medium, then;
  • the contact is maintained for a period greater than 5 minutes, in particular between 5 minutes and 60 minutes, then;
  • the enzymatic composition and the blood plasma medium are separated by filtration on a filter having a cutoff threshold less than or equal to 0.22 ⁇ , and;
  • the mass of plasminogenase released in the plasma blood medium is measured.
  • the mass of free plasminogenase in the blood plasma medium in contact with which the enzyme composition is placed is less than 200 ⁇ g, especially less than 100 ⁇ g, preferably less than 50 ⁇ g.
  • the mass of free plasminogenase in the blood plasma medium in contact with which the enzyme composition is placed is less than 40 ⁇ g, especially less than 30 ⁇ g, in particular less than 25 ⁇ g, preferably less than 20 ⁇ g. more preferably less than 10 ⁇ g.
  • the mass of free plasminogenase in the blood plasma medium in contact with which the enzyme composition is placed is less than 20 ⁇ g, especially less than 15.0 ⁇ g, in particular less than 8.0 ⁇ g, preferably less than 3.0 ⁇ g, more preferably less than 1.5 ⁇ g.
  • the mass of free plasminogenase in the blood plasma medium in contact with which the enzyme composition is placed is less than 10 ⁇ g, especially less than 8.0 ⁇ g, in particular less than 6.0 ⁇ g, preferably less than 5.0 ⁇ g, more preferably less than 2 ⁇ g.
  • the mass of free plasminogenase in the blood plasma medium in contact with which the enzyme composition is placed is less than 0.5 ⁇ g.
  • the assay of the plasminogenase released by any suitable method for example by quantitative enzyme immunoenzymatic assay of "ELISA" type using a primary antibody specific for plasminogenase and a quantifiable secondary antibody and carrying out a calibration curve to from solutions containing known amounts of plasminogenase in blood plasma medium.
  • plasminogenase activity released in plasmin-rich ex vivo plasma medium by an indirect method by analyzing the temporal variation of the plasmin activity of the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium obtained after removal by filtration of the enzyme composition. .
  • the quasi-stability of the plasmin activity reflects the absence of free plasminogenase in the ex vivo plasmin-rich plasma medium, whereas a significant increase in plasmin activity can reflect the presence of free plasminogenase in plasmin-rich ex vivo plasma medium.
  • the enzymatic composition according to the invention makes it possible to form an ex vivo plasmin-rich plasma medium which is weakly immunogenic.
  • At least one plasminogenase - in particular each plasminogenase - is bound to the solid support by a group of atoms comprising a main chain of atoms linearly linked to each other by covalent bonds (ie say the chain of greater number of atoms), the main chain having a number of atoms at least equal to 4, in particular between 10 and 15 atoms.
  • the enzymatic composition has an activity, called plasminogenase activity, of plasminogen plasmin conversion of a blood plasma medium in contact with which it is placed under the following conditions:
  • a mass of between 0.01 g and 0.5 g, in particular of the order of 0.1 g, of said enzymatic composition in the dehydrated state in contact with temperature is placed of the order of 37 ° C. for a period of greater than 5 minutes, in particular between 5 minutes and 60 minutes, with a volume of between 0.5 ml and 1.0 ml, in particular of the order of 0.7 ml. blood plasma medium, and
  • plasmin activity an initial enzymatic activity, called plasmin activity, as measured by a test for the release of ara.
  • plasmin activity an initial enzymatic activity, as measured by a test for the release of ara.
  • -nitro-aniline greater than 0.1 ⁇ -notably between 0.1 and 0.3 ⁇ , preferably of the order of 0.2 ⁇ - ara-nitro-aniline released per minute and per milliliter (mL) plasmin rich plasma medium ex vivo
  • said release test consisting of:
  • Plasmin activity is measured in a plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained by contacting a blood plasma medium and an enzymatic composition according to the invention by an indirect method in which an amount of enzyme composition is placed in in contact with an amount of blood plasma medium comprising plasminogen at 37 ° C for a period of time between 5 min and 60 min and under conditions adapted to allow a plasminogen conversion of the plasma plasmatic medium to plasmin and the formation of a plasmin-rich ex vivo plasma medium.
  • a separation step is then carried out, in particular by sterile filtration, of the enzymatic composition and plasmin-rich ex vivo plasma medium formed by conversion of plasminogen from the blood plasma medium to plasmin.
  • this sterilizing filtration step in a single filtration stage on a filter having a cut-off threshold of less than or equal to 0.22 ⁇ .
  • this sterilizing filtration step in several stages comprising a first filtration of separation of the enzyme composition and plasmin-rich ex vivo plasma medium, the first filtration being non-sterilizing, and then a second filtration of the medium.
  • ex vivo plasmatic rich in plasmin free of enzymatic composition said second filtration being a filter sterilizing filtration having a cut-off threshold less than or equal to 0.22 ⁇ .
  • the plasmin activity of the ex vivo plasmatic medium rich in plasmin is determined.
  • a measuring medium of the plasmin activity is prepared in a spectrophotometric measuring tank by mixing, at 37 ° C., a volume of plasma-rich ex vivo plasma medium and the same volume of an aqueous solution of plasmin.
  • a chromogenic substrate S-2251 HD-Val-Leu-Lys-pNA "2HC £, Chromogenix, Le Pre Saint Gervais, FRANCE
  • Vm is the total volume (in mL) of the measuring medium
  • ⁇ is the molecular extinction coefficient (in M -1 cm -1 ) of para-xixaniline at 405 nm;
  • L is the length (in cm) of the optical path of the spectrophotometric measurement vessel, and;
  • Vp is the volume (in mL) of plasmin-rich ex vivo plasma medium introduced into the spectrophotometric measuring cell.
  • the basal plasmin activity of a non-plasmin enriched blood plasma medium is measured as a control by replacing, in the above protocol, the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium with the same volume of plasma plasmatic medium from which the ex vivo plasmatic medium rich in plasmin is derived. From the plasmin activity value of the ex vivo plasmin-rich plasma medium is deduced the basal plasmin activity value thus calculated.
  • the invention also extends to a method for preparing an enzymatic composition according to the invention.
  • the invention also relates to a method for preparing an enzymatic composition according to the invention, in which:
  • At least one enzyme called plasminogenase, is chosen for converting plasminogen plasmin to a plasmatic blood medium comprising plasminogen;
  • an insoluble solid support is chosen in aqueous solution
  • the solid support is brought into contact with each plasminogenase so as to bind each plasminogenase to the solid support, and;
  • a lyophilization step is carried out so as to form the enzymatic composition.
  • each plasminogenase is immobilized on the solid support simply by contacting each plasminogenase in liquid solution with the solid support.
  • the solid support is immersed in a liquid solution - in particular aqueous - of each plasminogenase, which is kept under stirring for a time sufficient to allow coupling between the solid support and each plasminogenase.
  • a lyophilization step is then carried out so as to form the enzyme composition in the dehydrated state and retain the activity of the plasminogenase (s).
  • conditions are selected-in particular temperature conditions-which are adapted to form the enzyme composition.
  • At least one plasminogenase in particular each plasminogenase, is selected from the group consisting of serine endopeptidases, in particular endopeptidases with antithrombotic activity, of class EC 3.4.21 of the classification of enzymes.
  • a solid support is chosen in the divided state and formed of particles having three dimensions extending in three directions orthogonal to each other, at least two of said three dimensions being greater than 0 , 22 ⁇ .
  • each particle size is greater than 0.22 ⁇ .
  • the solid support in the group of solid supports in the divided state is chosen having particles of substantially spherical shape and of diameter greater than 0.22 ⁇ . Such a solid support is therefore likely to be able to be retained on filtration devices having a maximum permeation size of 0.22 ⁇ .
  • At least two of the three dimensions of the solid support particles in the divided state are between 1 ⁇ and 500 ⁇ , in particular between 10 ⁇ and 500 ⁇ , preferably between 100 ⁇ and 500 ⁇ .
  • each particle size of the solid support in the divided state is between 1 ⁇ and 500 ⁇ , especially between 10 ⁇ and 500 ⁇ , preferably between 100 ⁇ and 500 ⁇ .
  • a solid support is chosen in the divided state which can be retained by a filtration separation device having a cut-off point of the order of 0.22 ⁇ , for example a separation device.
  • filtration comprising a filter of polytetrafluoroethylene (PTFE) or polyvinylidene fluoride (PVDF).
  • PTFE polytetrafluoroethylene
  • PVDF polyvinylidene fluoride
  • the solid support in the divided state is formed of a material comprising at least one surface ligand capable of forming at least one stable bond-in particular at least one covalent bond-with at least one plasminogenase.
  • the surface ligand is formed of a group of atoms comprising a main chain of atoms linearly linked to each other by covalent bonds (that is to say the chain of greatest number of atoms), the main chain having a number of atoms at least equal to 4-in particular between 10 and 15-.
  • At least one surface ligand comprises an epoxy group.
  • at least one surface ligand is an amino-epoxide group bonded to the solid support and of formula (III) below:
  • the material of the solid support-in particular of the solid support in the divided state- is chosen from the group formed of functionalized poly-glycosides and functionalized methacrylate polymers.
  • the solid support material in the divided state is selected from the group consisting of poly-glycosides functionalized at the surface by at least one epoxy group and methacrylate polymers functionalized at the surface by at least one epoxy group.
  • the solid support in the divided state is chosen from the group formed by SEPABEADS ® EC-HFA / S supports, the average particle diameter of which is between 100 ⁇ and 300 ⁇ , and GE Healthcare Epoxy-activated Sepharose TM.
  • At least one sterilization stage is carried out.
  • At least one sterilization step is carried out by any known sterilization method to at least partially preserve the activity of the plasminogenase.
  • at least one sterilization step is carried out by irradiation.
  • At least one step of sterilization of the enzyme composition is carried out.
  • at least one sterilization step of the enzyme composition is carried out by irradiation.
  • at least one irradiation sterilization step is carried out at a predetermined temperature. We can perform such a sterilization step by irradiation at a temperature below 0 ° C.
  • at least one irradiation sterilization step is carried out at a temperature above 0 ° C.
  • At least one sterilization step is carried out by successive irradiations, said successive irradiations being interspersed with at least one cooling phase.
  • At least one irradiation sterilization step is carried out, releasing an amount of energy of between 5 ⁇ 10 3 J / Kg (5 kGy) and 5 ⁇ 10 4 J / Kg (50 kGy).
  • at least one sterilization step is carried out by irradiation with a radiation selected from the group formed by ⁇ -radiation and ⁇ -radiation.
  • a lyophilization step of the enzyme composition is carried out.
  • An enzymatic composition is formed in the form of dehydrated powder.
  • At least one sterilization step is carried out by irradiation of the enzyme composition after lyophilization.
  • a method according to the invention makes it possible to obtain a sterile enzymatic composition.
  • a sterile and pyrogen-free enzymatic composition is obtained.
  • the invention also extends to an enzymatic composition that can be obtained by a process according to the invention.
  • the invention also extends to any use of an enzymatic composition according to the invention for the preparation of an ex vivo plasmatic medium rich in sterile plasmin and free from enzymatic composition.
  • the invention also extends to any use of an enzymatic composition according to the invention for the preparation of a plasmin-rich ex vivo plasmatic medium, in particular for the preparation of a plasmoly-rich sterile ex vivo plasma medium.
  • an enzymatic composition according to the invention for converting at least a part of the plasminogen from a plasma plasmatic medium to plasmin, which is the active form of plasminogen, and to form a plasma ex vivo medium which is rich in plasmin without significant release of free plasminogenase into plasmin-rich ex vivo plasma medium and by limiting the risks of inducing an immune reaction in a patient who has been administered ex plasmin rich plasma medium.
  • ex vivo plasmatic medium rich in plasmin is thus obtained which can be used in the context of any preventive or curative treatment of a pathology in which a transformation of plasminogenase into autologous plasmin is required, for example in the context of the treatment. of a cardiovascular pathology or in the context of a surgical intervention, in particular during an intravitreal intervention of a treatment - in particular during a surgical intervention - of vitreo-macular disorders in ophthalmology.
  • Such plasmin-rich ex vivo plasma medium can be obtained in a sterile, solid support-free and substantially enzyme-free form by separation / filtration on a sterilization filter.
  • an amount of the enzymatic composition is placed in contact with an amount of plasma plasma medium comprising plasminogen for a period of between 15 min and 60 min, so as to form the ex vivo plasma medium.
  • the enzymatic composition is maintained in contact with the blood plasma medium at a temperature close to the optimum temperature of the plasminogenase, especially at a temperature of the order of 37.degree.
  • Such a method is simple in its implementation in that it requires only contacting the enzyme composition and the amount of blood plasma medium and maintaining the mixture at a predetermined temperature for a period of time suitable to allow a Plasminogenase conversion to plasmin under the effect of plasminogenase, followed by a plasma medium sample ex vivo rich in plasmin formed under the effect of plasminogenase, said sample comprising a filtration -partement a sterilizing filtration-.
  • the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium is adapted to be used directly, for example by intravitreal injection, during an intravitreal intervention of a treatment - especially during a surgical procedure - of vitreo-macular disorders in ophthalmology.
  • the plasmin rich ex vivo plasma medium is autologous.
  • an enzymatic composition according to the invention is used in a method implemented in a room dedicated to performing an intravitreal injection (IVT) and in which an authorized person, in particular a surgeon, an ophthalmologist , a caregiver, proceeds:
  • the plasmin rich ex vivo plasma medium is separated from the enzyme composition by filtration by means of a filter capable of retaining the enzyme composition.
  • separation of the plasma-rich ex vivo plasma medium and the enzyme composition is carried out by filtration using a filter having a cut-off point of the order of 0.22 ⁇ .
  • the separation of plasmin-rich ex vivo plasma medium and of the enzyme composition is a sterilizing separation of the ex vivo plasma rich plasmin medium.
  • An enzymatic composition according to the invention is used during a treatment in which an plasmin-rich ex vivo plasma medium is injected into the vitreous body of a patient in order to release the vitreomacular stresses by hydrolysis of protein fibers.
  • An enzymatic composition according to the invention is used for the preparation of an ex vivo plasmin-rich plasma medium which is autologous-that is to say which is obtained from a blood plasma medium derived from the blood of a patient. patient and prepared for injection into this patient alone and which lacks a heterologous protein-that is, lacking a sufficient amount of heterologous protein capable of inducing an immune response in the patient.
  • the enzymatic composition is used for the preparation of an ex vivo plasmin-rich plasma medium which is pyrogen-free.
  • the conditions for obtaining a pyrogen-free plasmin-rich ex vivo plasma medium are validated by measuring the body temperature of a rabbit which has been injected with plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained from a quantity of medium. blood plasma of said rabbit.
  • the absence of an increase in body temperature of the rabbit following the injection reflects the pyrogen-free character of the ex vivo plasmin-rich plasma medium and validates the conditions for obtaining it.
  • the enzymatic composition is used for the preparation of an ex vivo plasmin-rich plasma medium which is sterile.
  • the invention also extends to a device for the preparation of an ex vivo blood plasma medium rich in sterile plasmin and free from enzymatic composition, comprising a quantity of enzymatic composition according to the invention and a filter having a lower cutoff threshold. or equal to 0.22 ⁇ .
  • the invention also extends to a device comprising:
  • a container-in particular a hermetically sealed container-containing the amount of enzyme composition a device for introducing blood plasma medium into the container;
  • the sampling device (11) and the filter being arranged to allow the filtration of the plasma medium and obtaining a filtrate constituting a sterile plasmin-rich ex vivo plasmatic medium free of enzyme composition.
  • a device according to the invention is advantageously in the form of a kit, that is to say a kit comprising several elements in the separated state, of which at least:
  • the container containing an amount of a sterile enzymatic composition according to the invention, said container being hermetically sealed and adapted to preserve the sterility of the enzymatic composition,
  • a plasmin rich ex vivo plasma medium sampling device comprising the enzymatic composition
  • the filter is a sterilization filter of plasmin-rich ex vivo plasmatic medium and of forming an ex vivo plasmatic medium rich in sterile plasmin and free from enzymatic composition.
  • each of the constituent elements of the kit is packaged separately sterilely in an individual package.
  • kits are sterilely packaged together in a sterile state in a common package. They may be in the assembled state or in the disassembled state or in a partially assembled state and in a sterile state.
  • a device in a third embodiment of a device according to the invention, some of the constituent elements of the kit excluding the container
  • the enzymatic composition containing the enzyme composition is packaged together in the assembled state or in the dissociated state or in a partially assembled state in a non-sterile state in a common package and then sterilized by any known and adapted sterilization process.
  • the container containing the enzyme composition can be sterilized by any sterilization process respecting the enzymatic activity of the immobilized enzyme.
  • the device for introducing the quantity of plasma plasmatic medium into the container comprises:
  • a syringe comprising a piston sliding in a cylinder provided with a dispensing outlet end;
  • a needle adapted to be connected with the open end of the syringe
  • the syringe and the needle being adapted to cooperate and to allow:
  • the blood plasma preparation of the middle tube is a blood collection tube, such as a Vacutainer ® tube (BD Diagnostics, Le Pont de Claix, France), adapted to enable said removal and, if appropriate, to oppose the coagulation of said blood plasma medium removed.
  • a blood collection tube such as a Vacutainer ® tube (BD Diagnostics, Le Pont de Claix, France)
  • BD Diagnostics Le Pont de Claix, France
  • the needle of the introduction device has a length adapted to allow the removal of blood plasma medium in the sampling tube and blood plasma medium preparation.
  • the sampling device comprises:
  • a sterile syringe for taking a quantity of plasma-rich ex vivo plasma medium in the container; the filter adapted to be inserted between the sterile syringe and a sampling needle in the plasmin-rich ex vivo plasma medium container comprising the enzymatic composition, said filter being capable of receiving the plasma-rich ex vivo plasma medium and the composition enzymatic, to retain the enzymatic composition and to deliver into the syringe plasmatic environment ex vivo rich in plasmin and free of enzymatic composition.
  • the device may also comprise an additional sterile dispensing needle of the plasma plasmin-rich plasma medium in the body of a patient, as part of the treatment of a cardiovascular pathology or in the context of a surgical intervention, in particular during an intravitreal intervention of a treatment - especially during a surgical intervention - in ophthalmology.
  • the container is a bottle equipped with a stopper formed of polymer adapted to be pierced by a needle and to allow introduction of the plasma blood medium into the container and a sample of the plasma plasmin rich blood plasma medium. from the container.
  • the filter is a sterilizing filter having a cut-off threshold less than or equal to 0.22 ⁇ , that is to say on filter adapted to be able to retain particles whose average diameter is greater than 0 , 22 ⁇ -including bacteria, yeasts, fungi-.
  • the device comprises an outer sterile packaging envelope enclosing at least the sterile container comprising the sterile enzyme composition, at least one sterile syringe, at least one sterile needle and the sterile filtration device.
  • the assembly formed of the syringe, the needle, the filtration device and the sterile packaging outer casing can be sterilized by a sterilization treatment (irradiation, ethylene oxide, or other ... ) then associated with the sterile container comprising the enzyme composition.
  • the invention also relates to an enzymatic composition, a method of preparation, the use of such an enzymatic composition and a device or kit for treating a blood plasma medium, characterized in combination by all or some of the characteristics mentioned above. or below.
  • the enzymatic activity of a solution comprising a plasminogenase was determined by measuring the initial rate of the predetermined temperature hydrolysis reaction of substrate S-2251 (HD-Val-Leu-Lys-pNA ). 2HC £, Chromogenix, Werfen France, Pre Saint Gervais, France) introduced into the solution.
  • a measuring medium at 37 ° C. is formed in a spectrophotometric measuring tank by mixing a volume of a solution of plasminogenase in physiological saline and of the same volume of an aqueous solution of S-2251 at a concentration of the order of 2 mM (so that the concentration of S-2251 is of the order of 1 mM in the measuring medium) and likely to release para-mimaniline ( ⁇ ⁇ 10 000 M _1 .cm _1 ) under the action of plasminogenase / urokinase. From the mixture, the evolution of the absorbance (optical density, OD 40 5 nm ) at 405 nm of the measuring medium at 37 ° C.
  • Plasminogenase activity (I) in which:
  • £ is the molecular extinction coefficient (in M -1 cm -1 ) of para-mlmaniline at 405 nm;
  • L is the length (in cm) of the optical path of the spectrophotometric measurement vessel, and;
  • Vs is the volume (in mL) of plasminogenase solution introduced into the spectrophotometric measuring tank.
  • plasmin activity The enzymatic activity of plasmin (called plasmin activity) of an ex vivo plasmatic medium rich in plasmin devoid of enzymatic composition and obtained by contacting at 37 ° C. with a quantity of enzymatic composition according to the invention with an amount of plasma plasma medium comprising plasminogen for a period of time ranging from 5 min to 60 min by spectrophotometric measurement of the formation of ara-nitroaniline from S-2251.
  • plasmin activity The enzymatic activity of plasmin (called plasmin activity) of an ex vivo plasmatic medium rich in plasmin devoid of enzymatic composition and obtained by contacting at 37 ° C. with a quantity of enzymatic composition according to the invention with an amount of plasma plasma medium comprising plasminogen for a period of time ranging from 5 min to 60 min by spectrophotometric measurement of the formation of ara-nitroaniline from S-2251.
  • a measuring medium is prepared in a spectrophotometric measuring tank by mixing at 37 ° C. a volume of plasmin-rich ex vivo plasma medium and the same volume of an aqueous solution of S-2251 (HD-Val-Leu). - Lys-pNA " 2HC £, Chromogenix, Werfen France, Pre Saint Gervais, FRANCE) at a concentration of the order of 2 mM (so that the concentration of S-2251 is of the order of 1 mM in the measuring medium) and capable of releasing para-mimaniline under the action of plasmin from the plasma-rich ex vivo plasma medium.
  • the evolution of the absorbance (optical density, OD 40 5 nm ) at 405 nm of the measuring medium is measured at 37 ° C. for 5 minutes.
  • the slope at the origin of the evolution curve of the absorbance at 405 nm is evaluated, that is to say the initial speed Vi of the reaction expressed in A abs / min.
  • the plasmin activity of the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium (expressed in U / ml plasmin-rich ex vivo plasma medium) is given by the following formula (II): Vi.Vm.lO 3
  • Vm is the volume (in mL) of the measuring medium
  • L is the length (in cm) of the optical path of the spectrophotometric measurement vessel, and;
  • Vp is the volume (in mL) of plasmin-rich ex vivo plasma medium introduced into the spectrophotometric measuring cell.
  • the amount of plasminogenase of a plasmin-rich ex vivo plasma medium is determined by a fluorescence measurement according to any method known per se, for example by assaying by the enzyme-linked immunosorbent assay using a primary antibody.
  • specificity of the plasminogenase in particular an antibody directed against human urokinase-for example, ABcam rabbit antibody ab24121-
  • a quantifiable secondary antibody for example, a goat antibody directed against rabbit IgG and conjugated to the HRP ("Horse Raddish Peroxidase") in the Presence of Amplex ® UltraRed
  • HRP Hexe Raddish Peroxidase
  • a solid support is chosen in the divided state in the group of supports formed of a porous hydrophilic material, in particular in the group of supports formed of particles of hydrophilic material. porous and having surface grafting groups of epoxy nature. It is possible to choose solid carrier is Epoxy-GE Healthcare (GE Healthcare Epoxy- activated Sepharose TM). It is also possible to choose the SEPABEADS ® EC-EP / S support as a solid support (Resindion, Binasca, Italy).
  • SEPABEADS ® EC-HFA / S split solid support Resindion, Binasca, Italy
  • the particles of material SEPABEADS ® EC-HFA / S are formed of polymethacrylate and functionalized on the surface by minoepoxide groups of formula (III) below:
  • the average porosity of the support is between 10 nm and 20 nm.
  • an immobilization of a plasminogenase - for example a urokinase, or a streptokinase, or a nattokinase, or a tissue plasminogen activator (t-PA) - is carried out. on a solid material in the divided state.
  • an amount of dry solid material is hydrated in an aqueous hydration composition.
  • the aqueous hydration composition may be, for example, osmosis water, water "for injection” (so-called PPI) or sterile physiological saline.
  • 0.2 g of solid material is placed dried in -for example divided state 0.2g SEPABEADS ® EC-HFA / O status sec in 40 ml of water for injection for 1 hour at room temperature, then three successive rinses of the solid material hydrated with 0.7 ml of sterile physiological saline pH 6.8.
  • the solid was then rinsed material into contact with 0.7 ml of an aqueous solution in particular of sterile pyrogen-free saline or sterile intraocular irrigating solution (BSS Bioaqua ®, "Balanced Salt Solution”) - of human urokinase (U0633, Sigma-Aldrich, Lyon, France) comprising on the order of 2 units (2 U / mL) of plasminogenase activity per mL.
  • BSS Bioaqua ® sterile intraocular irrigating solution
  • U0633 human urokinase activity per mL
  • the contact between the solid support and the enzyme is maintained for several hours.
  • the liquid reaction supernatant is removed and the enzymatic composition thus obtained is then rinsed 3 times with 0.7 ml of a 1M NaCl solution in PPI water, or preferably sterile physiological saline.
  • the synthesis of the enzyme composition is carried out under suitable conditions to form an enzymatic composition having a content of pyrogenic compounds lower than the upper acceptable limit value for an injectable composition - in particular less than 0 , 5 units of EU endotoxin / mL-.
  • the solid support in the divided state is a SEPABEADS ® EC-HFA / S support obtained according to a Good Manufacturing Practices (GMP) process and having a reduced content of pyrogenic endotoxins.
  • the consumables used are certified sterile and apyrogenous consumables.
  • Glassware and laboratory equipment (bottle for hydration of the support, freeze-drying bottles, stoppers and spatulas) are treated before use with an alkaline detergent solution (E-toxa Clean, 1%) for 16 hours, rinsed with water and sterilized. All manipulations are performed under laminar flow hood. Starting reagents and solvents are chosen which are pyrogen-free and the steps for preparing the enzyme composition are carried out under optimum conditions of sterility.
  • the solid support is then rinsed three times with 15.6 ml of serum physiological, then is brought into contact for several hours with 15.6 ml of urokinase (urokinase solution U0633 in sterile physiological saline, sterilized by filtration on a filter having a cut-off threshold of 0.22 ⁇ or less) at a concentration of of 2 U / mL of sterile saline so as to form the enzymatic composition.
  • Three rinses of the enzyme composition are then carried out with 15.6 ml of physiological saline.
  • the rinse liquid is removed and 0.2 g aliquots of wet enzyme composition are sampled in sterile lyophilization flasks.
  • the aliquots of wet resin are lyophilized and then stored at 4 ° C.
  • 0.7 ml of blood plasma medium is placed in contact with an aliquot of enzymatic composition obtained above at 37 ° C. for a period of between 5 min and 60 min.
  • Plasmid rich ex vivo plasma medium is separated from the enzymatic composition by filtration.
  • Plasmin activity (U / mL ex plasmin rich plasma medium) is measured in the presence of S-2251 substrate, the medium being placed at a temperature of 37 ° C.
  • An enzymatic activity of the order of 0.2 ⁇ 0.1 U / ml is observed for a contact time of the blood plasma medium and of the enzymatic composition of between 5 min and 60 min, in particular of the order of 15 minutes. .
  • SEPABEADS ® EC-HFA / S "GMP” material is hydrated in PPI water, and then three successive rinses of the hydrated material are made with 0.7 ml of sterile physiological saline at pH 6.8.
  • the thus rinsed material is brought into contact with 0.7 ml of a solution of plasminogenase (urokinase U0633) in physiological saline having an enzymatic activity of 2 U / ml.
  • plasminogenase urokinase U0633
  • the liquid reaction supernatant is removed, and then three successive rinses are carried out
  • the mass of urokinase present in the ex vivo plasma medium obtained by contacting 0.2 g of the enzyme composition and 0.7 ml of blood plasma medium for 60 minutes at a temperature of 37 ° C., measured by the immunoenzymatic method "ELISA" is between 2 ⁇ g and 20 ⁇ g.
  • Urokinase is immobilized on a solid support in the SEPABEADS® EC-HFA / S "GMP" divided state by the method described in Example 1.
  • a lyophilization step of the enzymatic composition obtained is carried out or not.
  • the capacity of the lyophilized or non-lyophilized enzyme composition is studied by placing the same amount (0.2 g) of enzyme composition in 0.7 ml of blood plasma medium for a period of 15 minutes or 60 minutes. Plasmid-rich ex vivo plasma medium and enzymatic composition are separated by filtration.
  • a solution of S-2251 substrate at a final concentration of 1 mM in the measuring medium is added to the plasmin-rich ex vivo plasma medium at 37 ° C. and the plasmin activity of the plasma medium is measured ex vivo.
  • Table 1 The results are given in Table 1 below.
  • Lyophilization of the enzyme composition has no effect on its plasminogen conversion activity from a plasma plasmatic medium to plasmin.
  • An irradiation step is carried out at 25 kGy of the enzyme composition after lyophilization.
  • the activity of the irradiated enzymatic composition is indirectly analyzed by measuring the plasmin activity of a medium. plasmin rich plasma ex vivo obtained by contacting said sterilized enzymatic composition and a blood plasma medium for 15 min or 60 min.
  • the enzymatic composition is removed by filtration and the plasmin activity of ex vivo plasmin-rich plasma media thus obtained is measured in the presence of S-2251.
  • Plasmin activity of plasmin-rich ex vivo plasmatic medium obtained after 15 min of contact is between 0.116 and 0.148 U / mL and plasmin activity of plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained after 60 min of contact is between 0.200. and 0.218 U / mL.
  • the sterilizing irradiation of the enzymatic composition makes it possible to maintain plasmin activity of the plasmin-rich ex vivo plasmatic medium obtained after 15 min of contact which is greater than 0.1 U / ml and a plasmin activity of the ex vivo plasma medium rich in plasma.
  • plasmin obtained after 60 min of contact which is greater than 0.2 U / mL.
  • Lyophilization coupled with terminal sterilization by irradiation makes it possible to reduce the amount of urokinase released by the enzyme composition in the ex vivo plasma medium rich in plasmin.
  • the amount of free urokinase present in plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained by contacting a blood plasma medium and an enzymatic composition (comprising immobilized urokinase on a solid support in the divided state) subjected to Irradiation is less than the amount of urokinase present in plasmin-rich ex vivo plasma medium obtained by contacting a blood plasma medium with a non-irradiated enzyme composition.
  • the combination of irradiation and lyophilization treatments of the enzyme composition makes it possible to obtain amounts of urokinase in the ex vivo plasmin-rich plasma medium that are less than or equal to about 10 ⁇ g, in particular less than 5 ⁇ g.
  • the enzymatic composition according to the invention makes it possible to convert a plasmatic blood medium into plasmin-enriched plasma ex vivo plasma having a high plasmin activity. It makes it possible to convert plasminogen from a plasma blood medium to plasmin without introducing into the ex vivo plasma medium formed a large quantity of immunogenic plasminogenase.
  • Sterile is removed a quantity of blood of a patient to treatment in a sampling tube (BD Vacutainer ®, BD Diagnostics, Le Pont de Claix, France) comprising an anticoagulant EDTA type or sodium citrate.
  • a step of separation of the blood cells and the blood plasma medium is carried out by centrifugation at 4000 rpm for 15 min.
  • the blood plasma medium is intimately contacted with the enzyme composition at a temperature of 37 ° C for a period of at least 15 minutes necessary to allow the conversion of plasminogen to plasmin.
  • a sterilization filter (0.22 ⁇ cut-off point), for example on a Millex PVDF filter (Millipore) or on an Acrodisk Syringe Filter filter, PN4602 (Pall), is used to separate the enzymatic composition and the rich ex vivo plasma medium.
  • plasmin free of free urokinase We then proceed to an intraocular injection of a volume adapted from the plasmatic ex vivo medium rich in sterile plasmin.
  • the assay by the enzyme immunoassay method "ELISA" of the amount of free urokinase present in the plasmin-rich ex vivo plasma medium shows an average amount of free urokinase of less than 20 ⁇ g.
  • a device 20 according to a particular variant of the invention shown in the single figure comprises:
  • means 3 for introducing a quantity of blood plasma medium sterilely into the container 1 and for bringing said quantity of plasma blood medium into contact with the enzymatic composition 2 and comprising;
  • a sterile syringe 4 for dispensing the quantity of blood plasma medium from a blood collection tube and introducing said quantity of blood plasma medium taken from the container 1, said sterile dispensing syringe 4 comprising a piston 6 sliding in a cylinder 7 provided with an end, said end 8 distribution, axial opening;
  • a dispensing needle 5 adapted to be connected with the dispensing end 8 of the sterile dispensing syringe 4 and having a pointed end 9 adapted to be introduced into the container 1 through a pierceable cap 10 and allow the introduction of the blood plasma medium into the container 1 under the effect of the displacement in translation of the piston 6 sliding in the cylinder 7.
  • the dispensing needle 5 is for example preferably a needle of the order of 20 gauge (outer diameter of 0.9081 mm for a wall thickness of 0.1524 mm); means 11 for sampling and filtering a quantity of plasma-rich ex vivo plasma medium under the effect of the enzymatic composition 2, comprising;
  • a sterile syringe 12 for the preparation of a quantity of plasma-rich ex vivo plasma medium from the container 1; a filtration device 13 equipped with an input 14 of plasmin-rich ex vivo plasma medium, and an outlet 15 which can be connected to the sterile preparation syringe 12 and shaped in order to be able to deliver rich ex vivo plasma medium.
  • the filtration device 13 comprising a filter 16 capable of retaining the enzymatic composition of the plasma-rich ex vivo plasmatic medium flowing between the inlet 14 and the outlet 15 under the effect of the sterile preparation syringe 12, said inlet 14 being adapted to be assembled and hermetically connected to a plasmin-rich ex vivo plasma medium collection needle 17 of the container 1;
  • sampling needle 17 being adapted to be placed in blood plasma medium communication with the inlet 14 of the filtration device 13 and having a pointed end 18 adapted to be introduced into the container 1 and allow a sampling of the plasma medium ex vivo rich in plasmin from the container 1.
  • the sampling needle 17 is for example preferably a needle of the order of 20 gauge (Outer diameter of 0.9081 mm for a wall thickness of 0.1524 mm) .
  • the pierceable cap formed of an elastic polymer-for example, chlorobutyl- adapted to be pierced by the needle 5 and allowing the introduction of blood plasma medium into the vessel 1 and the removal of the ex vivo rich plasma medium. plasmin from the container 1.
  • the filtration device 13 is a filter filtration sterilization device 16 having a cut-off point of the order of 0.22 ⁇ , that is to say on a filter adapted to be able to retain particles whose average diameter is greater than 0.22 ⁇ .
  • the device 20 comprises an outer sterile packaging envelope 30 of the container 1 comprising the enzyme composition, the means 3 for introducing a quantity of blood plasma medium sterile into the container 1 and the means 11 for sampling and filtration ex vivo plasmatic medium rich in plasmin.
  • the sterile outer packaging envelope 30 enclosing the means 3 for introducing a sterile amount of blood plasma medium into the container 1 (including the sterile dispensing syringe 4 and dispensing needle 5) and the dispensing means 11.
  • sampling and filtration ex vivo plasmin-rich plasma medium can be sterilized after packaging by any suitable sterilization means, the container 1 hermetically closed and containing the sterile enzymatic composition 2 according to the invention being sterilized by sterilization means respecting the functionality of the enzymatic composition 2.
  • the device 20 may also comprise an additional sterile injection needle in the body of a patient of a suitable volume of plasmin-rich plasma ex vivo medium contained in the sterile syringe 12 for the preparation of the quantity ex vivo plasmatic medium rich in plasmin.
  • an injection needle is a needle of between 25 and 30 gauge (that is to say, whose outer diameter is between 0.30 mm and 0.50 mm).
  • the sterile syringe 12 for preparing the amount of plasmin-rich ex vivo plasma medium may have an open end formed of a "luer-lock” type adapter and the injection needle may have a complementary end of the adapter. "Luer-lock" of the syringe 12.
  • a device may comprise: a hermetically sealed container 1 containing an amount of sterile enzymatic composition 2 according to the invention;
  • a sterile syringe 12 for the preparation of a quantity of plasmin-rich ex vivo plasmatic medium from the container 1, said sterile syringe being a precision syringe capable of being able to contain and deliver a volume of ex vivo plasmatic medium rich in plasmin sterile and free of enzymatic composition between 100 ⁇ . and 250 ⁇ ., and;
  • the constituent elements of a device according to the invention may be in the disassembled state or in the partially mounted state in the outer envelope.

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Abstract

L'invention concerne une composition enzymatique comprenant : - au moins une enzyme, dite plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène; - un support solide insoluble en solution aqueuse, le support solide présentant des dimensions adaptées pour pouvoir être retenu sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μm; caractérisée en ce que ladite plasminogénase est liée au support solide et reste liée à ce support au contact d'un milieu plasmatique sanguin et en ce que la composition est à l'état sec. L'invention concerne également un procédé de préparation d'une telle composition enzymatique, son utilisation et un dispositif (20) pour la préparation d'un milieu plasmatique sanguin ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique.

Description

COMPOSITION DE PLASMINOGÉNASE IMMOBILISÉE,
PROCÉDÉ DE PRÉPARATION, UTILISATION ET DISPOSITIF COMPRENANT UNE TELLE COMPOSITION
L'invention concerne une composition enzymatique comprenant une plasminogénase immobilisée sur un support solide, un procédé de préparation d'une telle composition enzymatique, l'utilisation d'une telle composition enzymatique pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo autologue et riche en plasmine et un dispositif comprenant une telle composition enzymatique.
L'invention concerne en particulier une composition enzymatique et un dispositif comprenant une telle composition enzymatique qui sont adaptés pour pouvoir être utilisés dans le cadre d'un traitement d'une pathologie chez un patient dans lequel une composition autologue enrichie en plasmine autologue est requise, par exemple dans le cadre d'une pathologie cardiovasculaire ou dans le cadre d'une intervention chirurgicale, en particulier lors d'une intervention chirurgicale intravitréale en ophtalmologie.
Certaines indications pathologiques en ophtalmologie telles que les tractions vitréo-maculaires (TVM) génèrent des trous maculaires créés par des contraintes en traction tangentielle différentielle survenant entre le corps vitré et la rétine. Le traitement de ces pathologies nécessite de libérer la rétine de ces contraintes. Les traitements connus sont principalement de nature chirurgicale visant à séparer mécaniquement la rétine et le corps vitré.
On connaît de WO2010/125148 un traitement d'un détachement de la rétine en traction (en anglais « tractional retinal detachment ») dans lequel on administre dans l'humeur vitrée d'un patient, une composition stérile obtenue par addition d'urokinase hétérologue à du plasma du patient. Cette composition stérile comprend de l'urokinase hétérologue et est susceptible de poser un problème de réaction immunologique et inflammatoire chez le patient.
On connaît aussi (Gondorfer et al, (2004), Investigative Ophtalmology & Visual Science, 45 ;2, 641-647. Posterior Vitreous Detachment Induced by Microplasmin) une composition injectable comprenant une protéine recombinante formée du domaine catalytique de la plasmine et l'effet de l'injection d'une telle composition injectable à l'interface vitréo-rétinale d'yeux humains ex vivo ou d'yeux de chat in vivo.
Une telle protéine recombinante est cependant complexe dans sa fabrication. La présence de protéine recombinante hétérologue dans une telle composition injectable conduit à un problème de réaction immunitaire chez le patient recevant cette composition injectable. En outre, le coût de cette composition injectable est élevé, de sorte que des solutions alternatives à l'utilisation de protéines recombinantes sont recherchées, avec lesquelles les risques de réaction immunitaire seraient aussi minimisés.
On connaît aussi de JP2007/068497 un procédé de conversion en plasmine de plasminogène préalablement extrait à partir de plasma. JP2007/068497 n'enseigne pas un procédé permettant de convertir en plasmine, directement dans un plasma, du plasminogène du plasma et de préparer un plasma autologue enrichi en plasmine.
L'invention vise donc à résoudre l'ensemble de ces problèmes.
En particulier, l'invention vise à proposer une composition enzymatique, un procédé de préparation et l'utilisation d'une telle composition enzymatique, et un dispositif comprenant une telle composition enzymatique qui permettent de convertir ex vivo du plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine sous l'effet de la composition enzymatique. L'invention permet de préparer un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine exempt d'enzyme hétérologue ou ne présentant qu'une quantité résiduelle d'enzyme hétérologue libre minimale et en particulier insuffisante pour provoquer une réaction immunitaire lors de la mise en contact -notamment par injection- dudit milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine au contact de tissu(s) d'un patient.
L'invention vise à proposer une composition enzymatique, un procédé de préparation et l'utilisation d'une telle composition enzymatique, et un dispositif comprenant une telle composition enzymatique adaptés pour permettre une conversion rapide -notamment en une durée comprise entre 15 min et 60 min à 37°C- de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine.
Pour ce faire, l'invention concerne une composition enzymatique comprenant :
- au moins une enzyme, dite plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène ;
- un support solide insoluble en solution aqueuse,
le support solide présentant des dimensions adaptées pour pouvoir être retenu sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη ;
caractérisée en ce que ladite plasminogénase est liée au support solide et reste liée à ce support au contact d'un milieu plasmatique sanguin et en ce que la composition est à l'état sec.
Dans tout le texte, on adopte la terminologie suivante :
- l'expression « milieu plasmatique sanguin » désigne tout milieu liquide exempt de cellules sanguines viables et résultant directement d'un traitement de fractionnement de sang -notamment de sang humain- liquide non coagulé, dans des conditions adaptées pour permettre une séparation des cellules sanguines (hématies, leucocytes, plaquettes) et du milieu plasmatique sanguin exempt de cellules sanguines viables. On peut réaliser une telle séparation par exemple par centrifugation ou par tri cellulaire dans un procédé de micro-fluidique ;
- l'expression « milieu plasmatique ex vivo » désigne tout milieu plasmatique sanguin extrait du corps humain ou animal ;
- le terme « plasminogénase » désigne toute enzyme présentant une activité de conversion de plasminogène en plasmine par clivage d'une liaison peptidique du plasminogène, et ;
- l'expression « liaison stable » désigne l'ensemble des forces assurant, dans des conditions prédéterminées, la cohésion entre des groupements d'atomes, en particulier entre le support solide et au moins une plasminogénase lorsque la composition enzymatique est mise en contact par immersion à une température de l'ordre de 37°C dans un milieu plasmatique sanguin ;
- l'expression «sensiblement » indique, de façon habituelle, qu'une caractéristique structurelle -telle qu'une valeur- ou fonctionnelle, ne doit pas être prise comme marquant une discontinuité abrupte, qui n'aurait pas de sens physique, mais couvre non seulement cette structure ou cette fonction, mais également des variations légères de cette structure ou de cette fonction qui produisent, dans le contexte technique considéré, un effet de même nature, sinon de même degré.
L'invention concerne une composition enzymatique comprenant au moins une plasminogénase immobilisée sur un support solide à l'état divisé, ladite composition enzymatique étant adaptée pour pouvoir :
- être mise en contact avec un milieu plasmatique sanguin ;
- permettre une conversion en plasmine d'au moins une partie du plasminogène du milieu plasmatique sanguin sous l'action de ladite plasminogénase en contact avec le milieu plasmatique sanguin ;
- être séparée du milieu plasmatique sanguin enrichi en plasmine par filtration sur une membrane ou filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη.
La plasminogénase, le support solide et la liaison formée entre la plasminogénase et le support solide sont choisis pour que la plasminogénase reste liée au support solide lorsque la composition enzymatique est mise au contact d'un milieu plasmatique sanguin.
La composition enzymatique selon l'invention est à l'état sec. L'expression « état sec » traduit en particulier le fait que le composition enzymatique selon l'invention n'apporte au milieu plasmatique sanguin avec lequel elle est mise en contact aucun liquide, notamment aucun liquide aqueux, susceptible de modifier la composition ionique et/ou les concentrations ioniques du milieu plasmatique sanguin dans lequel la composition enzymatique est mise en contact. Elle ne modifie donc pas sensiblement les propriétés osmotiques du milieu plasmatique sanguin avec lequel elle est mise en contact. Elle ne modifie pas non plus, par son seul ajout dans le milieu plasmatique sanguin, la concentration du plasminogene présent dans le milieu plasmatique sanguin dans lequel elle est ajoutée.
La composition enzymatique selon l'invention ne libère pas dans le milieu plasmatique sanguin mis en contact avec la composition enzymatique de plasminogénase à l'état libre ou ne libère dans le milieu plasmatique sanguin mis en contact avec la composition enzymatique qu'une quantité faible de plasminogénase à l'état libre. La composition enzymatique selon l'invention est donc susceptible d'être utilisée dans un procédé de préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine sensiblement exempt de plasminogénase hétérologue, à partir d'un milieu plasmatique sanguin formé à partir de sang prélevé sur un patient. Un tel milieu plasmatique ex vivo autologue, riche en plasmine et sensiblement exempt de plasminogénase hétérologue est destiné à être utilisé chez ce même patient.
L'inventeur a observé qu'il est possible d'immobiliser au moins une plasminogénase sur un support solide à l'état divisé insoluble en solution aqueuse tout en conservant une activité plasminogénase. Une telle composition enzymatique permet d'une part de convertir de façon efficace du plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine et d'autre part une séparation facilitée de la composition enzymatique et d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact d'un milieu plasmatique sanguin et de la composition enzymatique, en limitant -notamment en évitant totalement- une libération intempestive significative de plasminogénase dans ce milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. Le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine est donc sensiblement exempt de plasminogénase exogène et hétérologue.
Avantageusement et selon l'invention, le support solide est à l'état divisé et formé de particules présentant trois dimensions s'étendent selon trois directions orthogonales entre elles, au moins deux des trois dimensions étant supérieures à 0,22 μιη. Avantageusement et selon l'invention, chaque dimension des particules est supérieure à 0,22 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, au moins deux des dimensions des particules du support solide à l'état divisé sont comprises entre 1 μιη et 500 μιη, notamment comprises entre 10 μιη et 500 μιη, de préférence comprises entre 100 μιη et 500 μιη. Avantageusement et selon l'invention, chaque dimension des particules du support solide à l'état divisé est comprise entre 1 μιη et 500 μιη, notamment comprise entre 10 μιη et 500 μιη, de préférence comprise entre 100 μιη et 500 μιη. Avantageusement, les dimensions des particules du support solide à l'état divisé sont choisies de façon que la composition enzymatique soit retenue sur un filtre de stérilisation, c'est à dire sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, le support solide est formé d'un matériau poreux. Avantageusement et selon l'invention, le matériau poreux présente des pores de diamètre moyen compris entre 5 nm et 50 nm, de préférence compris entre 10 nm et 20 nm. Avantageusement, le matériau poreux est choisi dans le groupe formé des matériaux rigides. Avantageusement et selon l'invention, le support solide est formé d'un matériau choisi dans le groupe formé des matériaux de surface spécifique élevée.
Avantageusement et selon une variante particulière de l'invention, le support solide de la composition enzymatique est un support solide à l'exclusion des supports solides cités dans JP2007/068497. Le support solide de la composition enzymatique selon l'invention est un support solide à l'exclusion du support Sepharose 4FF/BB-CNBr, du support Sepharose 4FF-NHS, du support Sepharose 4B-ECH, du support d'Affi-Prep 10, du support Reacti-Gel, du support Sepharose 6B-époxy, du support Sepharose 4B EAH, du support Sepharose 6B- thiopropyl, du support Sépharose-thiol, du support Affi-Prep-Hz, du support TNB-thiol et d'un support -chloromercuribenzoate. Avantageusement et selon l'invention, le support solide -notamment le support solide à l'état divisé- est formé d'un matériau choisi dans le groupe formé des polymères poly-glucosides et des polymères poly-méthacryliques.
Avantageusement et selon une autre variante particulière de l'invention, le support solide est choisi dans le groupe formé des supports SEPABEADS® EC-HFA/S et GE Healthcare Epoxy-activated Sepharose™. Avantageusement, le support solide à l'état divisé est formé de particules sphériques de diamètre moyen compris entre 100 μιη et 300 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, le support solide -notamment le support solide à l'état divisé- est formé d'un matériau choisi dans le groupe formé des polymères poly-méthacryliques. Avantageusement et selon l'invention, le support solide est formé d'un matériau choisi dans le groupe formé notamment des copolymères poly-méthacryliques, par exemple des copolymères poly(glycidyle méthacryliques (GMA)/éthylène diméthacrylique (EDMA).
Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase -notamment chaque plasminogénase- est une endopeptidase à sérine - notamment une endopeptidase à activité antithrombotique- de la classe EC 3.4.21 de la classification des enzymes.
Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase -notamment chaque plasminogénase- est choisie dans le groupe formé d'une urokinase, d'une streptokinase, d'une nattokinase et d'un activateur tissulaire du plasminogène (t-PA). Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase est l'urokinase U0633 (Sigma-Aldrich, Lyon, France). Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique comprend une plasminogénase unique. En variante, la composition enzymatique peut comprendre une pluralité de différentes plasminogénases en mélange.
Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase est liée au support solide par au moins une liaison stable choisie dans le groupe formé d'une liaison covalente, d'une liaison ionique, d'une liaison covalente de coordination (ou liaison dative) et d'une interaction hydrophobe de type van der Waals.
Avantageusement et selon l'invention, au moins une liaison stable est choisie pour résister à une mise en contact avec une solution aqueuse de NaCt à une concentration de 0,5 M.
Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase -notamment chaque plasminogénase- est liée au support solide par au moins une liaison covalente. En particulier, au moins une telle liaison covalente est formée par réaction chimique entre un groupe amine libre de ladite plasminogénase et un groupement époxy du support solide.
Avantageusement et selon des modes alternatifs de réalisation de l'invention, la composition enzymatique comprend une plasminogénase unique ou un mélange d'une pluralité de plasminogénases.
Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique est adaptée pour pouvoir former, par mise en contact d'une composition enzymatique selon l'invention et d'un milieu plasmatique sanguin, un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est sensiblement apyrogène. Une composition enzymatique selon l'invention est adaptée pour ne pas libérer de composé hétérologue -notamment de plasminogénase hétérologue- dans un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact de la composition enzymatique et d'un milieu plasmatique sanguin -notamment à une température de l'ordre de 37°C-, ledit composé hétérologue étant susceptible d'induire une réaction immunitaire chez un sujet traité avec une quantité de ce milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine.
On analyse le caractère pyrogène/apyrogène du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mis en contact d'un milieu plasmatique sanguin et d'une composition enzymatique selon l'invention par la mesure de la température corporelle de lapins ayant reçu une injection de milieu plasmatique ex vivo autologue riche en plasmine. L'absence d'augmentation de la température corporelle des lapins suite à l'injection traduit le caractère apyrogène du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine.
Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique est exempte de tout germe microbien, en particulier de tout germe microbien pathogène. Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique est stérile.
La composition enzymatique est à l'état sec. Elle peut être sous forme d'une poudre sèche adaptée pour pouvoir être mise directement en contact avec un milieu plasmatique sanguin, notamment sans adjonction d'eau ou de solution aqueuse (telle que de l'eau pour solution injectable ou de sérum physiologique) et pour permettre une conversion en plasmine d'au moins une partie du plasminogène du milieu plasmatique sanguin sous l'action de ladite plasminogénase en contact avec le milieu plasmatique sanguin.
La composition enzymatique est à l'état sec et déshydraté ; elle peut donc être conservée à l'état sec et déshydraté ; elle est adaptée pour pouvoir être mise directement en contact avec un milieu plasmatique sanguin, notamment sans aucune adjonction d'eau ou de solution aqueuse (telle que de l'eau pour solution injectable ou de sérum physiologique) et pour permettre une conversion en plasmine d'au moins une partie du plasminogène du milieu plasmatique sanguin sous l'action de ladite plasminogénase en contact avec le milieu plasmatique sanguin.
Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique est à l'état de poudre déshydratée.
Avantageusement et selon l'invention, chaque plasminogénase est liée au support solide de façon à n'introduire, dans un milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée, qu'une masse de plasminogénase libre inférieure à 400 μg, ledit contact étant réalisé selon le procédé ci- après :
- on mélange à température de l'ordre de 37°C une masse comprise entre 0,01 g et 0,5 g -notamment de l'ordre de 0,1 g- de composition enzymatique à l'état déshydraté avec un volume compris entre 0,5 mL et 1,0 mL -notamment de l'ordre de 0,7 mL- de milieu plasmatique sanguin, puis ;
- on maintient le contact pendant une durée supérieure à 5 min -notamment comprise entre 5 min et 60 min-, puis ;
- on sépare la composition enzymatique et le milieu plasmatique sanguin par filtration sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη, et ;
- on mesure la masse de plasminogénase libérée dans le milieu plasmatique sanguin.
Avantageusement et selon l'invention, la masse de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée est inférieure à 200 μg, notamment inférieure à 100 μg, de préférence inférieure à 50 μg. Avantageusement et selon l'invention, la masse de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée est inférieure à 40 μg, notamment inférieure à 30 μg, en particulier inférieure à 25 μg, de préférence inférieure à 20 μg, plus préférentiellement inférieure à 10 μg.
Avantageusement et selon l'invention, la masse de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée est inférieure à 20 μg, notamment inférieure à 15,0 μg, en particulier inférieure à 8,0 μg, de préférence inférieure à 3,0 μg, plus préférentiellement inférieure à 1,5 μg.
Avantageusement et selon l'invention, la masse de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée est inférieure à 10 μg, notamment inférieure à 8,0 μg, en particulier inférieure à 6,0 μg, de préférence inférieure à 5,0 μg, plus préférentiellement inférieure à 2 μg. Avantageusement et selon l'invention, la masse de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée est inférieure à 0,5 μg. On réalise le dosage de la plasminogénase libérée par toute méthode adaptée, par exemple par dosage immuno -enzymatique quantitatif de type « ELISA » » en utilisant un anticorps primaire spécifique de la plasminogénase et un anticorps secondaire quantifiable et en réalisant une courbe d'étalonnage à partir de de solutions contenant des quantités connues de plasminogénase dans du milieu plasmatique sanguin.
Il est aussi possible de détecter une activité plasminogénase libérée dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine par une méthode indirecte en analysant la variation temporelle de l'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu après élimination par filtration de la composition enzymatique. Dans des conditions non limitantes de concentration en plasminogène, la quasi- stabilité de l'activité plasmine traduit l'absence de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, alors qu'une augmentation sensible de l'activité plasmine peut traduire la présence de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine.
La composition enzymatique selon l'invention permet de former un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est faiblement immunogène.
Avantageusement et selon l'invention, au moins une plasminogénase -notamment chaque plasminogénase- est liée au support solide par un groupement d'atomes comprenant une chaîne principale d'atomes liés linéairement les uns aux autres par des liaisons covalentes (c'est-à-dire la chaîne de plus grand nombre d'atomes), la chaîne principale présentant un nombre d'atomes au moins égal à 4, -notamment compris entre 10 et 15 atomes-.
Avantageusement et selon l'invention, la composition enzymatique présente une activité, dite activité plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin au contact duquel elle est placée dans les conditions suivantes :
- on met une masse comprise entre 0,01 g et 0,5 g -notamment de l'ordre de 0,1 g- de ladite composition enzymatique à l'état déshydraté en contact à température de l'ordre de 37°C pendant une durée supérieure à 5 min -notamment comprise entre 5 min et 60 min- avec un volume compris entre 0,5 mL et 1,0 mL -notamment de l'ordre de 0,7 mL- de milieu plasmatique sanguin, et
- on forme un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, présentant, après séparation par filtration de la composition enzymatique et du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine une activité enzymatique initiale, dite activité plasmine, telle que mesurée par un test de libération de ara-nitro-aniline supérieure à 0,1 μιηοΐβ -notamment comprise entre 0,1 et 0,3 μιηοΐβ, de préférence de l'ordre de 0,2 μιηοΐβ- de ara-nitro-aniline libérée par minute et par millilitre (mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine,
ledit test de libération consistant à :
o mélanger dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine maintenu à la température de 37°C un substrat chromogène S-2251 de formule (I) ci-après :
Figure imgf000013_0001
à une concentration initiale de l'ordre de 1 mM (c'est-à-dire 10"3 mole/L) dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine,
o évaluer la vitesse initiale de libération de ara-nitro-aniline (en μιηοΐβ de de ara-nitro-aniline) par minute et par millilitre (mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine suite au mélange.
On mesure l'activité plasmine d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact d'un milieu plasmatique sanguin et d'une composition enzymatique selon l'invention par une méthode indirecte dans laquelle on place une quantité de composition enzymatique en contact avec une quantité de milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène à 37°C pendant une durée comprise entre 5 min et 60 min et dans des conditions adaptées pour permettre une conversion de plasminogène du milieu plasmatique sanguin en plasmine et la formation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine.
On réalise ensuite une étape de séparation -notamment par filtration stérilisante- de la composition enzymatique et du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine formé par conversion de plasminogène du milieu plasmatique sanguin en plasmine. Avantageusement, il est possible de réaliser cette étape de filtration stérilisante en une seule étape de filtration sur filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη. Cependant, il est aussi possible de de réaliser cette étape de filtration stérilisante en plusieurs étapes comprenant une première filtration de séparation de la composition enzymatique et du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, la première filtration étant non stérilisante, puis une deuxième filtration du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine exempte de composition enzymatique, ladite deuxième filtration étant une filtration stérilisante sur filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη.
On détermine l'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. En pratique, on prépare dans une cuve de mesure spectrophotométrique un milieu de mesure de l'activité plasmine par mélange à 37°C d'un volume de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de ce même volume d'une solution aqueuse d'un substrat chromogène -par exemple du S-2251 (H-D-Val- Leu-Lys-pNA»2HC£, Chromogenix, Le Pré Saint Gervais, FRANCE) de formule (IV) ci-après :
Figure imgf000014_0001
à titre de substrat chromogène à une concentration de l'ordre de 2 mM (de sorte que la concentration du S-2251 soit de l'ordre de 1 mM dans le milieu de mesure)- susceptible de libérer de la ara-nitro-aniline sous l'action de la plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. Â compter du mélange, on mesure l'évolution de Γ absorbance (densité optique, DO405nm) à 405 nm du milieu de mesure maintenu à 37°C pendant 5 minutes. On évalue la pente à l'origine de la courbe d'évolution temporelle de absorbance à 405 nm, c'est-à-dire la vitesse initiale Vi de la réaction exprimée en Aabs / min. L'activité plasmine (exprimée en U/mL de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine) est donnée par la formule (II) ci-après :
Vi * Vm *103 /TT.
Activité plasmine = , (II)
^ £*L*Vp '
dans laquelle :
- Vi est la vitesse initiale de la réaction exprimée en Aabs / min ;
- Vm est le volume (en mL) total du milieu de mesure ;
- ε est le coefficient d'extinction moléculaire (en M"1. cm"1) de la para- ixo- aniline à 405 nm ;
- L est la longueur (en cm) du trajet optique de la cuve de mesure spectrophotométrique, et ;
- Vp est le volume (en mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine introduit dans la cuve de mesure spectrophotométrique.
Le cas échéant, on mesure à titre de contrôle l'activité plasmine basale d'un milieu plasmatique sanguin non enrichi en plasmine en remplaçant dans le protocole ci-dessus le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine par le même volume de milieu plasmatique sanguin duquel est issu le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. On déduit de la valeur d'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine la valeur d'activité plasmine basale ainsi calculée.
L'invention s'étend également à un procédé de préparation d'une composition enzymatique selon l'invention. L'invention concerne aussi un procédé de préparation d'une composition enzymatique selon l'invention, dans lequel :
- on choisit au moins une enzyme, dite plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène;
- on choisit un support solide insoluble en solution aqueuse ;
o adapté pour pouvoir former avec chaque plasminogénase une liaison stable au contact d'un milieu plasmatique sanguin, et ;
o présentant des dimensions adaptées pour pouvoir être retenu sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη, et ;
- on met en contact le support solide et chaque plasminogénase de façon à lier chaque plasminogénase au support solide, et ;
- on réalise une étape de lyophilisation de façon à former la composition enzymatique.
Avantageusement et selon l'invention, on immobilise chaque plasminogénase sur le support solide par simple mise en contact de chaque plasminogénase en solution liquide avec le support solide. Pour ce faire on immerge le support solide dans une solution liquide -notamment aqueuse- de chaque plasminogénase, que l'on maintient sous agitation pendant une durée suffisante pour permettre un couplage entre le support solide et chaque plasminogénase. On réalise ensuite une étape de lyophilisation de façon à former la composition enzymatique à l'état déshydraté et conserver l'activité de la (des) plasminogénase(s).
Avantageusement et selon l'invention, on choisit des conditions -notamment des conditions de température- qui sont adaptées pour former la composition enzymatique.
Avantageusement et selon l'invention, on choisit au moins une plasminogénase -notamment chaque plasminogénase- dans le groupe formé des endopeptidases à sérine -notamment des endopeptidases à activité antithrombotique- de la classe EC 3.4.21 de la classification des enzymes. Avantageusement et selon un premier mode de réalisation de l'invention, on choisit un support solide à l'état divisé et formé de particules présentant trois dimensions s' étendant selon trois directions orthogonales entre elles, au moins deux desdites trois dimensions étant supérieures à 0,22 μιη. Avantageusement et selon l'invention, chaque dimension des particules est supérieure à 0,22 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, on choisit le support solide dans le groupe des supports solides à l'état divisé présentant des particules de forme sensiblement sphérique et de diamètre supérieur à 0,22 μιη. Un tel support solide est donc susceptible de pouvoir être retenu sur des dispositifs de filtration présentant une taille maximale de perméation de 0,22 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, au moins deux des trois dimensions des particules du support solide à l'état divisé sont comprises entre 1 μιη et 500 μιη, notamment comprises entre 10 μιη et 500 μιη, de préférence comprises entre 100 μιη et 500 μιη. Avantageusement et selon l'invention, chaque dimension des particules du support solide à l'état divisé est comprise entre 1 μιη et 500 μιη, notamment comprise entre 10 μιη et 500 μιη, de préférence comprise entre 100 μιη et 500 μιη.
Avantageusement et selon l'invention, on choisit un support solide à l'état divisé susceptible de pouvoir être retenu par un dispositif de séparation par filtration présentant un seuil de coupure de l'ordre de 0,22 μιη, par exemple un dispositif de séparation par filtration comprenant un filtre en polytétrafluoréthylène (PTFE) ou en polyfluorure de vinylidène (PVDF).
Avantageusement et selon l'invention, le support solide à l'état divisé est formé d'un matériau comprenant au moins un ligand de surface apte à former au moins une liaison stable -notamment au moins une liaison covalente- avec au moins une plasminogénase. Avantageusement, le ligand de surface est formé d'un groupement d'atomes comprenant une chaîne principale d'atomes liés linéairement les uns aux autres par des liaisons covalentes (c'est-à-dire la chaîne de plus grand nombre d'atomes), la chaîne principale présentant un nombre d'atomes au moins égal à 4 -notamment compris entre 10 et 15-.
Avantageusement et selon l'invention, au moins un ligand de surface comprend un groupement époxy. Avantageusement et selon l'invention, au moins un ligand de surface est un groupement amino-époxyde lié au support solide et de formule (III) ci-après :
Support
Figure imgf000018_0001
Avantageusement et selon l'invention, le matériau du support solide -notamment du support solide à l'état divisé- est choisi dans le groupe formé des poly-glycosides fonctionnalisés et des polymères méthacrylates fonctionnalisés. Avantageusement et selon l'invention, le matériau du support solide à l'état divisé est choisi dans le groupe formé des poly-glycosides fonctionnalisés en surface par au moins un groupement époxy et des polymères méthacrylates fonctionnalisés en surface par au moins un groupement époxy.
Avantageusement, le support solide à l'état divisé est choisi dans le groupe formé des supports SEPABEADS® EC-HFA/S -dont le diamètre moyen des particules est compris entre 100 μιη et 300 μη - et GE Healthcare Epoxy-activated Sepharose™.
Avantageusement, dans un procédé selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation. On réalise au moins une étape de stérilisation par toute méthode de stérilisation connue pour pouvoir préserver au moins partiellement l'activité de la plasminogénase. Avantageusement et selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation.
Avantageusement et selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation de la composition enzymatique. Avantageusement et selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation de la composition enzymatique par irradiation. Avantageusement et selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation à une température prédéterminée. On peut réaliser une telle étape de stérilisation par irradiation à une température inférieure à 0°C. Avantageusement et selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation à une température supérieure à 0°C.
Avantageusement, dans un procédé selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiations successives, lesdites irradiations successives étant entrecoupées d'au moins une phase de refroidissement.
Avantageusement, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation libérant une quantité d'énergie comprise entre 5.103 J/Kg (5 kGy) et 5.104 J/Kg (50 kGy). Avantageusement, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation avec un rayonnement choisi dans le groupe formé des rayonnements β et des rayonnements γ.
Avantageusement et selon l'invention, on réalise une étape de lyophilisation de la composition enzymatique. On forme une composition enzymatique sous forme de poudre déshydratée.
Avantageusement, dans un procédé selon l'invention, on réalise au moins une étape de stérilisation par irradiation de la composition enzymatique après sa lyophilisation. Un procédé selon l'invention permet d'obtenir une composition enzymatique stérile.
Dans un procédé selon l'invention, on obtient une composition enzymatique stérile et apyrogène.
L'invention s'étend également à une composition enzymatique susceptible d'être obtenue par un procédé selon l'invention.
L'invention s'étend également à toute utilisation d'une composition enzymatique selon l'invention pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique.
L'invention s'étend également à toute utilisation d'une composition enzymatique selon l'invention pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, notamment pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo stérile riche en plasmine. Avantageusement et selon l'invention, on utilise une composition enzymatique selon l'invention pour convertir au moins une partie du plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine -qui est la forme active du plasminogène- et former un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine sans libération notable de plasminogénase libre dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et en limitant les risques d'induction d'une réaction immunitaire chez un patient à qui a été administré le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. On obtient alors un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est susceptible d'être utilisé dans le cadre de tout traitement préventif ou curatif d'une pathologie dans lequel une transformation de plasminogénase en plasmine autologue est requise, par exemple dans le cadre du traitement d'une pathologie cardiovasculaire ou dans le cadre d'une intervention chirurgicale, en particulier lors d'une intervention intravitréale d'un traitement -notamment lors d'une intervention chirurgicale- de troubles vitréo-maculaires en ophtalmologie. Un tel milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine peut être obtenu sous une forme stérile, exempte de support solide et sensiblement exempte d'enzyme, par séparation/filtration sur un filtre de stérilisation.
Avantageusement et selon l'invention, on met et on maintient une quantité de la composition enzymatique en contact avec une quantité du milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène pendant une durée comprise entre 15 min et 60 min, de façon à former le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine comprenant une masse de plasminogénase libre inférieure à 25 μg par mL de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. Avantageusement, on maintient la composition enzymatique en contact avec le milieu plasmatique sanguin à une température proche de la température optimale de la plasminogénase - notamment à une température de l'ordre de 37°C-. Un tel procédé est simple dans sa mise en œuvre en cela qu'il ne nécessite que la mise en contact de la composition enzymatique et de la quantité de milieu plasmatique sanguin et le maintien du mélange à une température prédéterminée pendant une durée adaptée pour permettre une conversion de plasminogène en plasmine sous l'effet de la plasminogénase, puis un prélèvement de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine formé sous l'effet de la plasminogénase, ledit prélèvement comprenant une filtration -notamment une filtration stérilisante-. Le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine est adapté pour pouvoir être utilisé directement, par exemple en injection intravitréale, lors d'une intervention intravitréale d'un traitement - notamment lors d'une intervention chirurgicale- de troubles vitréo-maculaires en ophtalmologie. Avantageusement le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine est autologue.
Avantageusement et selon l'invention, on utilise une composition enzymatique selon l'invention dans un procédé mis en œuvre dans une salle dédiée à la réalisation d'une injection intravitréale (IVT) et dans laquelle une personne habilitée, notamment un chirurgien, un ophtalmologiste, un(e) aide-soignant(e), procède :
- à un prélèvement de sang du patient, puis ;
- à la préparation -notamment par centrifugation- du milieu plasmatique sanguin, puis ;
- à la mise en contact par mélange dudit milieu plasmatique sanguin et de la composition enzymatique selon l'invention pendant une durée prédéterminée et à une température de l'ordre de 37°C, puis ;
- à une séparation du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de la composition enzymatique en vue d'une injection du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine dans le corps d'un patient.
Avantageusement et selon l'invention, on réalise la séparation du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de la composition enzymatique par filtration au moyen d'un filtre apte à retenir la composition enzymatique.
Avantageusement et selon l'invention, on réalise la séparation du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de la composition enzymatique par filtration au moyen d'un filtre présentant un seuil de coupure de l'ordre de 0,22 μιη. Avantageusement, la séparation du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de la composition enzymatique est une séparation stérilisante du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. On utilise une composition enzymatique selon l'invention lors d'un traitement dans lequel un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine est injecté dans le corps vitré d'un patient aux fins de libérer les contraintes vitréo-maculaires par hydrolyse de fibres protéiques.
On utilise une composition enzymatique selon l'invention pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est autologue -c'est- à-dire qui est obtenu à partir d'un milieu plasmatique sanguin issu du sang d'un patient et préparé en vue de son injection à ce seul patient- et qui est dépourvu de protéine hétérologue -c'est-à-dire dépourvu d'une quantité suffisante de protéine hétérologue susceptible d'induire une réaction immunitaire chez le patient-.
Avantageusement et selon l'invention, on utilise la composition enzymatique pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est apyrogène. On valide les conditions d'obtention d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine apyrogène par la mesure de la température corporelle d'un lapin ayant reçu une injection de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu à partir d'une quantité de milieu plasmatique sanguin dudit lapin. L'absence d'augmentation de la température corporelle du lapin suite à l'injection traduit le caractère apyrogène du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et valide les conditions de son obtention.
Avantageusement et selon l'invention, on utilise la composition enzymatique pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui est stérile.
L'invention s'étend également à un dispositif pour la préparation d'un milieu plasmatique sanguin ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique, comprenant une quantité de composition enzymatique selon l'invention et un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη.
L'invention s'étend également à un dispositif comprenant :
- un récipient -notamment un récipient hermétiquement clos- contenant la quantité de composition enzymatique ; - un dispositif d'introduction de milieu plasmatique sanguin dans le récipient ;
- un dispositif de prélèvement hors du récipient d'un milieu plasmatique formé dans le récipient sous l'effet de la composition enzymatique ;
- le dispositif (11) de prélèvement et le filtre étant agencés pour permettre la filtration du milieu plasmatique et l'obtention d'un filtrat constituant un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile exempt de composition enzymatique.
Un dispositif selon l'invention se présente avantageusement sous forme d'un kit, c'est-à-dire d'un nécessaire comprenant plusieurs éléments à l'état séparé, dont au moins :
- le récipient contenant une quantité d'une composition enzymatique stérile selon l'invention, ledit récipient étant hermétiquement clos et adapté pour préserver la stérilité de la composition enzymatique,
- un dispositif d'introduction de la quantité de milieu plasmatique sanguin dans le récipient ;
- un dispositif de prélèvement du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine comprenant la composition enzymatique, et
- le filtre. Avantageusement, le filtre est un filtre de stérilisation du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de formation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique.
Dans un premier mode de réalisation d'un dispositif selon l'invention, chacun des éléments constitutifs du kit est emballé séparément stérilement dans un emballage individuel.
Dans un deuxième mode de réalisation d'un dispositif selon l'invention, certains des éléments constitutifs du kit sont emballés stérilement ensembles à l'état stérile dans un emballage commun. Ils peuvent être à l'état monté ou à l'état démonté ou dans un état partiellement monté et à l'état stérile.
Dans un troisième mode de réalisation d'un dispositif selon l'invention, certains des éléments constitutifs du kit à l'exclusion du récipient contenant la composition enzymatique sont emballés ensembles -à l'état assemblé ou à l'état dissocié ou dans un état partiellement assemblé- à l'état non stérile dans un emballage commun puis sont stérilisés par tout procédé de stérilisation connu et adapté. Le récipient contenant la composition enzymatique peut être stérilisé par tout procédé de stérilisation respectant l'activité enzymatique de l'enzyme immobilisée.
Avantageusement et selon l'invention, le dispositif d'introduction de la quantité de milieu plasmatique sanguin dans le récipient comprend :
- une seringue comprenant un piston coulissant dans un cylindre doté d'une extrémité débouchante de distribution ;
- une aiguille adaptée pour pouvoir être raccordée avec l'extrémité débouchante de la seringue ;
la seringue et l'aiguille étant adaptées pour coopérer et permettre :
o un prélèvement d'une quantité de milieu plasmatique sanguin dans un tube de préparation du milieu plasmatique sanguin, et ;
o une introduction de ladite quantité de milieu plasmatique sanguin dans le récipient.
Avantageusement, le tube de préparation du milieu plasmatique sanguin est également un tube de prélèvement de sang, par exemple sous forme d'un tube Vacutainer® (BD Diagnostics, Le Pont de Claix, France), adapté pour permettre ledit prélèvement et, le cas échéant, pour s'opposer à la coagulation dudit milieu plasmatique sanguin prélevé.
Avantageusement, l'aiguille du dispositif d'introduction présente une longueur adaptée pour permettre le prélèvement du milieu plasmatique sanguin dans le tube de prélèvement et de préparation du milieu plasmatique sanguin.
Avantageusement et selon l'invention, le dispositif de prélèvement comprend :
- une seringue stérile de prélèvement d'une quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine dans le récipient ; - le filtre adapté pour pouvoir être inséré entre la seringue stérile et une aiguille de prélèvement dans le récipient du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine comprenant la composition enzymatique, ledit filtre étant apte à recevoir le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et la composition enzymatique, à retenir la composition enzymatique et à délivrer dans la seringue du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et exempt de composition enzymatique.
Avantageusement et selon un autre mode de réalisation de l'invention, le dispositif peut aussi comprendre une aiguille additionnelle stérile de distribution du milieu plasmatique sanguin riche en plasmine dans le corps d'un patient, dans le cadre du traitement d'une pathologie cardiovasculaire ou dans le cadre d'une intervention chirurgicale, en particulier lors d'une intervention intravitréale d'un traitement -notamment lors d'une intervention chirurgicale- en ophtalmologie.
Avantageusement et selon l'invention, le récipient est un flacon équipé d'un bouchon formé de polymère adapté pour pouvoir être transpercé par une aiguille et permettre une introduction du milieu plasmatique sanguin dans le récipient et un prélèvement du milieu plasmatique sanguin riche en plasmine à partir du récipient.
Avantageusement et selon l'invention, le filtre est un filtre stérilisant présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη, c'est-à-dire sur filtre adapté pour pouvoir retenir des particules dont le diamètre moyen est supérieur à 0,22 μιη -notamment des bactéries, des levures, des champignons-.
Avantageusement et selon l'invention, le dispositif comprend une enveloppe externe d'emballage stérile renfermant au moins le récipient stérile comprenant la composition d'enzyme stérile, au moins une seringue stérile, au moins une aiguille stérile et le dispositif stérile de filtration. Avantageusement, l'ensemble formé de la seringue, de l'aiguille, du dispositif de filtration et de l'enveloppe externe d'emballage stérile peut être stérilisé par un traitement de stérilisation (irradiation, oxyde d'éthylène, ou autre...) puis associé avec le récipient stérile comprenant la composition enzymatique. L'invention concerne également une composition enzymatique, un procédé de préparation, l'utilisation d'une telle composition enzymatique et un dispositif ou kit de traitement d'un milieu plasmatique sanguin, caractérisés en combinaison par tout ou partie des caractéristiques mentionnées ci-dessus ou ci-après.
D'autres buts, caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture de la description suivante se référant à la figure unique illustrant un dispositif selon l'invention et aux exemples illustratifs de l'invention donnés à titre indicatif et non limitatif.
Détermination de l'activité plasminogénase (urokinase)
On détermine l'activité enzymatique d'une solution comprenant une plasminogénase (U/mL) par la mesure de la vitesse initiale de la réaction d'hydrolyse à température prédéterminée du substrat S-2251 (H-D-Val-Leu-Lys- pNA»2HC£, Chromogenix, Werfen France, Le Pré Saint Gervais, France) introduit dans la solution.
On forme dans une cuve de mesure spectrophotométrique un milieu de mesure à 37°C par mélange d'un volume d'une solution de plasminogénase dans du sérum physiologique et d'un même volume d'une solution aqueuse de S-2251à une concentration de l'ordre de 2 mM (de sorte que la concentration du S-2251 soit de l'ordre de 1 mM dans le milieu de mesure) et susceptible de libérer de la para-mïm- aniline (ε ~ 10 000 M_1.cm_1) sous l'action de la plasminogénase/urokinase. Â compter du mélange, on mesure -par exemple en continu- l'évolution de l'absorbance (densité optique, DO405nm) à 405 nm du milieu de mesure à 37°C. On évalue la pente à l'origine de la courbe d'évolution de l'absorbance à 405 nm, c'est-à-dire la vitesse initiale Vi de la réaction exprimée en Aabs / min. L'activité enzymatique (exprimée en U/mL de milieu de mesure) est donnée par la formule (I) ci-après :
■ . Vi * Vm *103
Activité plasminogenase = , (I) dans laquelle :
- Vi est la vitesse initiale de la réaction exprimée en Aabs / min ; - Vm est le volume (en mL) du milieu de mesure ;
- £ est le coefficient d'extinction moléculaire (en M"1 cm"1) de la para-mlm- aniline à 405 nm ;
- L est la longueur (en cm) du trajet optique de la cuve de mesure spectrophotométrique, et ;
- Vs est le volume (en mL) de solution de plasminogénase introduite dans la cuve de mesure spectrophotométrique.
Détermination de l'activité plasmine d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine
On détermine l'activité enzymatique de la plasmine (dite activité plasmine) d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine dépourvu de composition enzymatique et obtenu par mise en contact à 37°C d'une quantité de composition enzymatique selon l'invention avec une quantité de milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène pendant une durée comprise entre 5 min et 60 min par une mesure spectrophotométrique de la formation de ara-nitro-aniline à partir de S- 2251.
On prépare dans une cuve de mesure spectrophotométrique un milieu de mesure par mélange à 37°C d'un volume du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et de ce même volume d'une solution aqueuse de S-2251 (H-D-Val-Leu- Lys-pNA»2HC£, Chromogenix, Werfen France, Le Pré Saint Gervais, FRANCE) à une concentration de l'ordre de 2 mM (de sorte que la concentration du S-2251 soit de l'ordre de 1 mM dans le milieu de mesure) et susceptible de libérer de la para-mïm- aniline sous l'action de la plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. Â compter du mélange, on mesure l'évolution de l'absorbance (densité optique, DO405nm) à 405 nm du milieu de mesure à 37°C pendant 5 minutes. On évalue la pente à l'origine de la courbe d'évolution de l'absorbance à 405 nm, c'est-à-dire la vitesse initiale Vi de la réaction exprimée en Aabs / min. L'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine (exprimée en U/mL de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine) est donnée par la formule (II) ci-après : Vi.Vm.lO3
Activité plasmine = (Π)
s.L.Vp
dans laquelle :
- Vi est la vitesse initiale de la réaction exprimée en Aabs / min ;
- Vm est le volume (en mL) du milieu de mesure ;
- £ est le coefficient d'extinction moléculaire (en M" cm" ) de la para-mixo- aniline à 405 nm ;
- L est la longueur (en cm) du trajet optique de la cuve de mesure spectrophotométrique, et ;
- Vp est le volume (en mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine introduit dans la cuve de mesure spectrophotométrique.
Détermination de la quantité de plasminogénase -notamment d'urokinase- d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine
On détermine la quantité de plasminogénase d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine par une mesure de fluorescence selon toute méthode connue en elle-même, par exemple par dosage par la technique immuno- enzymatique de type « ELISA » en utilisant un anticorps primaire spécifique de la plasminogénase (notamment un anticorps dirigé contre l'urokinase humaine -par exemple, l'anticorps de lapin ABcam ab24121-) et un anticorps secondaire quantifiable (par exemple, un anticorps de chèvre dirigé contre les IgG de lapin et conjugué à la HRP (« Horse Raddish Peroxydase ») en présence d' Amplex®UltraRed. On réalise une courbe d'étalonnage à partir de solutions contenant des quantités connues de plasminogénase dans du milieu plasmatique sanguin.
Préparation d'une composition enzymatique selon l'invention
Dans un procédé de fabrication d'une composition enzymatique selon l'invention, on choisit un support solide à l'état divisé dans le groupe des supports formés d'un matériau hydrophile poreux, notamment dans le groupe des supports formés de particules de matériau hydrophile poreux et présentant des groupements surfaciques de greffage de nature époxydique. Il est possible de choisir à titre de support solide le support Epoxy-GE Healthcare (GE Healthcare Epoxy- activated Sepharose™). Il est aussi possible de choisir à titre de support solide le support SEPABEADS® EC-EP/S (Resindion, Binasca, Italie).
Il est possible de choisir le support solide à l'état divisé SEPABEADS® EC-HFA/S (Resindion, Binasca, Italie), dont le diamètre moyen des particules est compris entre 100 μιη et 300 μη . Les particules du matériau SEPABEADS® EC-HFA/S sont formées de polyméthacrylate et fonctionnalisées en surface par des groupements mino-époxyde de formule (III) ci-après :
Support
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à raison d'au moins 75 μιηοΐββ de groupement amino-époxyde par gramme de support à l'état sec. La porosité moyenne du support est comprise entre 10 nm et 20 nm.
Dans un procédé selon l'invention, on réalise une immobilisation d'une plasminogénase -par exemple d'une urokinase, ou d'une streptokinase, ou d'une nattokinase, ou d'un activateur tissulaire du plasminogène (t-PA)- sur un matériau solide à l'état divisé. Pour ce faire, on hydrate une quantité de matériau solide sec dans une composition aqueuse d'hydratation. La composition aqueuse d'hydratation peut être par exemple de l'eau osmosée, de l'eau « pour préparation injectable » (dite PPI) ou du sérum physiologique stérile. Par exemple, on place 0,2 g de matériau solide déshydraté à l'état divisé -par exemple 0,2 g de SEPABEADS® EC-HFA/S à l'état sec- dans 40 mL d'eau PPI pendant 1 heure à température ambiante, puis on réalise ensuite trois rinçages successifs du matériau solide hydraté avec 0,7 mL de sérum physiologique stérile à pH 6,8.
On met ensuite le matériau solide rincé en contact avec 0,7 mL d'une solution aqueuse -notamment de sérum physiologique stérile apyrogène ou d'une solution stérile d'irrigation intraoculaire BSS (Bioaqua®, « Balanced Sait Solution »)- d'urokinase humaine (U0633, Sigma- Aldrich, Lyon, France) comprenant de l'ordre de 2 unités (2 U/mL) d'activité plasminogénase par mL. On maintient le contact entre le support solide et l'enzyme pendant plusieurs heures. On prélève le surnageant liquide de réaction, puis on rince 3 fois la composition enzymatique ainsi obtenue avec 0,7 mL d'une solution de NaCt 1M dans de l'eau PPI, ou de préférence du sérum physiologique stérile.
Composition enzymatique en conditions « BPF »
Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, on réalise la synthèse de la composition enzymatique dans des conditions adaptées pour former une composition enzymatique présentant une teneur en composés pyrogène inférieure à la valeur limite supérieure acceptable pour une composition injectable -notamment inférieure à 0,5 unités d'endotoxine UE / mL-. Selon ce mode de réalisation, le support solide à l'état divisé est un support SEPABEADS® EC-HFA/S obtenu selon un procédé respectant les bonnes pratiques de fabrication (BPF, ou en anglais GMP « Good manufactoring Practices ») et présentant une teneur réduite en endotoxines pyrogènes.
Les consommables utilisés, notamment les tubes « falcon », les seringues, les filtres 0.22 μιη, les pointes pour micropipette, les tubes sont des consommables certifiés stériles et apyro gènes. La verrerie et le matériel de laboratoire (flacon pour l'hydratation du support, flacons de lyophilisation, bouchons et spatules) sont traités avant utilisation avec une solution de détergent alcalin (E-toxa Clean, 1%) pendant 16h, rincés à l'eau et stérilisés. L'ensemble des manipulations sont réalisées sous hotte à flux laminaire. On choisit des réactifs et solvants de départ qui sont apyrogènes et on réalise les étapes de préparation de la composition enzymatique dans des conditions optimales de stérilité.
On procède à une immobilisation de l'urokinase U0633 sur le support solide à l'état divisé SEPABEADS® EC-HFA/S dans des conditions d'immobilisation « BPF » décrites ci-après. 4,46 g de matériau SEPABEADS® EC- HFA/S (Résindion, production dans des conditions BPF) sont placés pendant une heure à température ambiante dans 893 mL d'eau PPI sous agitation en vue de l'hydratation du matériau. Le support solide est ensuite rincé trois fois avec 15.6 mL de sérum physiologique, puis est mis en contact pendant plusieurs heures avec 15.6 mL d'urokinase (solution d'urokinase U0633 dans du sérum physiologique stérile, stérilisée par filtration sur filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη) à une concentration de 2 U/mL de sérum physiologique stérile de façon à former la composition enzymatique. On réalise ensuite trois rinçages de la composition enzymatique avec 15.6 mL de sérum physiologique. Le liquide de rinçage est éliminé et des fractions aliquotes de 0,2 g de composition enzymatique humide sont échantillonnées dans des flacons de lyophilisation stériles. Les fractions aliquotes de résine humide sont lyophilisées, puis conservés à 4°C.
Préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine
On place 0,7 mL de milieu plasmatique sanguin au contact d'une fraction aliquote de composition enzymatique obtenue ci-dessus à 37°C pendant une durée comprise entre 5 min et 60 min. On sépare par filtration le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine de la composition enzymatique. On mesure l'activité plasmine (U/mL de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine) en présence de substrat S-2251, le milieu étant placé à la température de 37°C. On observe une activité enzymatique de l'ordre de 0,2 ± 0,1 U/mL pour un temps de contact du milieu plasmatique sanguin et de la composition enzymatique compris entre 5 min et 60 min, notamment de l'ordre de 15 minutes.
EXEMPLE 1 - Préparation d'une composition enzymatique selon l'invention
On hydrate 0,2 g de matériau SEPABEADS® EC-HFA/S « BPF » dans de l'eau PPI, puis on réalise ensuite trois rinçages successifs du matériau hydraté avec 0,7 mL de sérum physiologique stérile à pH 6,8. On met en contact le matériau ainsi rincé avec 0,7 mL d'une solution de plasminogénase (urokinase U0633) dans du sérum physiologique présentant une activité enzymatique de 2 U/mL. On maintient le contact entre le support et l'enzyme pendant plusieurs heures. On élimine le surnageant liquide de réaction, puis on réalise trois rinçages successifs La masse d'urokinase présente dans le milieu plasmatique ex vivo obtenu par mise en contact de 0,2 g de la composition enzymatique et de 0,7 mL de milieu plasmatique sanguin pendant 60 minutes à la température de 37°C, mesurée par la méthode immuno -enzymatique « ELISA », est comprise entre 2 μg et 20 μg.
EXEMPLE 2 - Effet d'une lyophilisation sur l'activité de la composition enzymatique selon l'invention
On immobilise de l'urokinase sur un support solide à l'état divisé SEPABEADS® EC-HFA/S « BPF » par la méthode décrite à l'exemple 1. On réalise ou non une étape de lyophilisation de la composition enzymatique obtenue. On étudie la capacité de la composition enzymatique lyophilisée ou non en plaçant une même quantité (0,2 g) de composition enzymatique dans 0,7 mL de milieu plasmatique sanguin pendant une durée de 15 min ou 60 min. On sépare par filtration le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et la composition enzymatique. On ajoute au milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine à 37°C une solution de substrat S-2251 à une concentration finale de 1 mM dans le milieu de mesure et on mesure l'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo. Les résultats sont donnés au tableau 1 ci-après.
Figure imgf000032_0001
Tableau 1
La lyophilisation de la composition enzymatique est sans effet sur son activité de conversion de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine.
Stérilisation de la composition enzymatique par irradiation
On réalise une étape d'irradiation à 25 kGy de la composition enzymatique après lyophilisation. On analyse indirectement l'activité de la composition enzymatique irradiée par mesure de l'activité plasmine d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact de ladite composition enzymatique stérilisée et d'un milieu plasmatique sanguin pendant 15 min ou 60 min. On élimine par filtration la composition enzymatique et on mesure l'activité plasmine des milieux plasmatiques ex vivo riches en plasmine ainsi obtenus en présence de S-2251. L'activité plasmine de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenus après 15 min de contact est comprise entre 0,116 et 0,148 U/mL et l'activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenus après 60 min de contact est comprise entre 0,200 et 0,218 U/mL. .L'irradiation stérilisante de la composition enzymatique permet de conserver une activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu après 15 min de contact qui est supérieure à 0,1 U/mL et une activité plasmine du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu après 60 min de contact qui est supérieure à 0,2 U/mL.
Dosage de l'urokinase libre dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine
Le dosage par la technique immuno-enzymatique de type
« ELIS A » de la quantité d'urokinase présente dans le milieu plasmatique ex vivo enrichi en plasmine obtenu par mise en contact d'un milieu plasmatique sanguin et de la composition enzymatique pendant 60 minutes à 37°C est présenté au tableau 2 ci-après.
Figure imgf000033_0001
Tableau 2
La lyophilisation couplée à la stérilisation terminale par irradiation permet de diminuer la quantité d'urokinase libérée par la composition enzymatique dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. La quantité d' urokinase libre présente dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact d'un milieu plasmatique sanguin et d'une composition enzymatique (comprenant une urokinase immobilisée sur un support solide à l'état divisé) soumise à irradiation est inférieure à la quantité d' urokinase présente dans un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine obtenu par mise en contact d'un milieu plasmatique sanguin et d'une composition enzymatique non soumise à irradiation. La combinaison des traitements par irradiation et lyophilisation de la composition enzymatique permet d'obtenir des quantités d'urokinase dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine qui sont inférieures ou égales à environ 10 μg, en particulier inférieures à 5 μg.
La composition enzymatique selon l'invention permet de convertir un milieu plasmatique sanguin en milieu plasmatique ex vivo enrichi en plasmine présentant une activité plasmine élevée. Elle permet de convertir du plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin en plasmine sans introduire dans le milieu plasmatique ex vivo formé de quantité importante de plasminogénase immunogène.
Préparation d'un milieu plasmatique sanguin et activation
On prélève stérilement une quantité de sang d'un patient à soigner dans un tube de prélèvement (BD Vacutainer®, BD Diagnostics, Le Pont de Claix, France) comprenant un anticoagulant du type EDTA ou citrate de sodium. On réalise une étape de séparation des cellules sanguines et du milieu plasmatique sanguin par centrifugation à 4000 rpm pendant 15 min. On met stérilement le milieu plasmatique sanguin en contact avec la composition enzymatique à la température de 37°C pendant une durée d'au moins 15 min nécessaire pour permettre la conversion de plasminogène en plasmine. On sépare par filtration sur filtre de stérilisation (seuil de coupure de 0,22 μιη), par exemple sur filtre Millex PVDF (Millipore) ou sur filtre Acrodisk Syringue Filter, PN4602 (Pall), la composition enzymatique et le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine exempt d'urokinase libre. On procède ensuite à une injection intraoculaire d'un volume adapté du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile.
Dosage d'urokinase libre dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine
Le dosage par la méthode immuno-enzymatique « ELISA » de la quantité d'urokinase libre présente dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine montre une quantité moyenne d'urokinase libre inférieure à 20 μg.
Un dispositif 20 selon une variante particulière de l'invention représentée sur la figure unique comprend :
- un récipient -par exemple, un récipient 1 en verre- hermétiquement clos et contenant une quantité de composition 2 enzymatique stérile selon l'invention ;
- des moyens 3 d'introduction d'une quantité de milieu plasmatique sanguin stérilement dans le récipient 1 et de mise en contact de ladite quantité de milieu plasmatique sanguin avec la composition 2 enzymatique et comprenant ;
o une seringue 4 stérile de distribution de la quantité de milieu plasmatique sanguin à partir d'un tube de prélèvement sanguin et d'introduction de ladite quantité de milieu plasmatique sanguin prélevée dans le récipient 1, ladite seringue 4 stérile de distribution comprenant un piston 6 coulissant dans un cylindre 7 doté d'une extrémité, dite extrémité 8 de distribution, axiale débouchante ;
o une aiguille 5 de distribution adaptée pour pouvoir être raccordée avec l'extrémité 8 de distribution de la seringue 4 stérile de distribution et présentant une extrémité 9 pointue adaptée pour pouvoir être introduite dans le récipient 1 à travers un bouchon 10 transperçable et permettre l'introduction du milieu plasmatique sanguin dans le récipient 1 sous l'effet du déplacement en translation du piston 6 coulissant dans le cylindre 7. L'aiguille 5 de distribution est par exemple de préférence une aiguille de l'ordre de 20 gauge (diamètre extérieur de 0,9081 mm pour une épaisseur de paroi de 0,1524 mm) ; - des moyens 11 de prélèvement et de filtration d'une quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine sous l'effet de la composition 2 enzymatique, comprenant ;
o une seringue 12 stérile de préparation d'une quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine à partir du récipient 1 ; o un dispositif de filtration 13 doté d'une entrée 14 de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, et d'une sortie 15 susceptible d'être raccordée à la seringue 12 stérile de préparation et conformée pour pouvoir délivrer du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine et stérile dans la seringue 12 stérile de préparation, le dispositif de filtration 13 comprenant un filtre 16 apte à retenir la composition enzymatique du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine s 'écoulant entre l'entrée 14 et la sortie 15 sous l'effet de la seringue 12 stérile de préparation, ladite entrée 14 étant adaptée pour pouvoir être assemblée et raccordée hermétiquement à une aiguille 17 de prélèvement de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine du récipient 1 ;
o ladite aiguille 17 de prélèvement étant adaptée pour pouvoir être placée en communication de milieu plasmatique sanguin avec l'entrée 14 du dispositif de filtration 13 et présentant une extrémité 18 pointue adaptée pour pouvoir être introduite dans le récipient 1 et permettre un prélèvement du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine à partir du récipient 1. L'aiguille 17 de prélèvement est par exemple de préférence une aiguille de l'ordre de 20 gauge (diamètre extérieur de 0,9081 mm pour une épaisseur de paroi de 0,1524 mm).
Le bouchon 10 transperçable formé d'un polymère élastique -par exemple, de chlorobutyle- adapté pour pouvoir être transpercé par l'aiguille 5 et permettre l'introduction de milieu plasmatique sanguin dans le récipient 1 et le prélèvement du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine à partir du récipient 1. Le dispositif de filtration 13 est un dispositif de stérilisation par filtration sur filtre 16 présentant un seuil de coupure de l'ordre de 0,22 μηι, c'est-à- dire sur filtre adapté pour pouvoir retenir des particules dont le diamètre moyen est supérieur à 0,22 μιη.
Le dispositif 20 comprend une enveloppe 30 externe d'emballage stérile du récipient 1 comprenant la composition d'enzyme, les moyens 3 d'introduction d'une quantité de milieu plasmatique sanguin stérilement dans le récipient 1 et les moyens 11 de prélèvement et de filtration de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. L'enveloppe 30 externe d'emballage stérile renfermant les moyens 3 d'introduction d'une quantité de milieu plasmatique sanguin stérilement dans le récipient 1 (comprenant la seringue 4 stérile de distribution et l'aiguille 5 de distribution) et les moyens 11 de prélèvement et de filtration de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine (comprenant la seringue 12 stérile de préparation, le dispositif de filtration 13 et l'aiguille 17 de prélèvement) peuvent être stérilisés après emballage par tout moyen de stérilisation adapté, le récipient 1 hermétiquement clos et contenant la composition 2 enzymatique stérile selon l'invention étant stérilisé par des moyens de stérilisation respectant la fonctionnalité de la composition 2 enzymatique.
Dans une variante non représentée, le dispositif 20 peut aussi comprendre une aiguille additionnelle stérile d'injection dans le corps d'un patient d'un volume adapté de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine contenu dans la seringue 12 stérile de préparation de la quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine. Une telle aiguille d'injection est une aiguille comprise entre 25 et 30 gauge (c'est-à-dire dont le diamètre extérieur est compris entre 0,30 mm et 0,50 mm).
La seringue 12 stérile de préparation de la quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine peut présenter une extrémité débouchante formée d'un adaptateur de type « Luer-lock » et l'aiguille d'injection peut présenter une extrémité complémentaire de l'adaptateur « Luer-lock » de la seringue 12.
Un dispositif selon une autre variante non représentée de l'invention peut comprendre : - un récipient 1 hermétiquement clos et contenant une quantité de composition 2 enzymatique stérile selon l'invention ;
- une seringue 12 stérile de préparation d'une quantité de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine à partir du récipient 1, ladite seringue 12 stérile étant une seringue de précision apte à pouvoir contenir et délivrer un volume de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique compris entre 100 μΐ. et 250 μΐ., et ;
- un dispositif de filtration 13.
L'invention peut faire l'objet de nombreuses variantes sans sortir de la portée de protection. Par exemple les éléments constitutifs d'un dispositif selon l'invention peuvent être à l'état démonté ou à l'état partiellement monté dans l'enveloppe 30 externe.

Claims

REVENDICATIONS
1/ - Composition enzymatique comprenant :
- au moins une enzyme, dite plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène ; - un support solide insoluble en solution aqueuse,
le support solide présentant des dimensions adaptées pour pouvoir être retenu sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη ;
caractérisée en ce que ladite plasminogénase est liée au support solide et reste liée à ce support au contact d'un milieu plasmatique sanguin et en ce que la composition est à l'état sec.
21 - Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que le support solide est à l'état divisé et formé de particules présentant trois dimensions s'étendant selon trois directions orthogonales entre elles, au moins deux des trois dimensions étant supérieures à 0,22 μιη.
3/ - Composition selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que le support solide est formé d'un matériau choisi dans le groupe formé des polymères poly-méthacryliques.
4/ - Composition selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'au moins une plasminogénase est une endopeptidase à sérine de la classe EC 3.4.21 de la classification des enzymes.
5/ - Composition selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'au moins une plasminogénase est liée au support solide par au moins une liaison covalente.
6/ - Composition selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisée en ce qu'elle est stérile.
11 - Composition selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle est à l'état de poudre déshydratée.
8/ - Composition selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce qu'au moins une plasminogénase est liée au support solide par un groupement d'atomes comprenant une chaîne principale d'atomes liés linéairement les uns aux autres par des liaisons covalentes, la chaîne principale présentant un nombre d'atomes au moins égal à 4.
91 - Composition selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisée en ce que chaque plasminogénase est liée au support solide de façon à n'introduire dans un milieu plasmatique sanguin en contact duquel la composition enzymatique est placée qu'une masse de plasminogénase libre inférieure à 400 μg, ledit contact étant réalisé selon le procédé ci-après :
- on mélange à température de l'ordre de 37°C une masse comprise entre 0,01 g et 0,5 g de composition enzymatique à l'état déshydraté avec un volume compris entre 0,5 mL et 1,0 mL de milieu plasmatique sanguin, puis
- on maintient le contact pendant une durée supérieure à 5 min, puis
- on sépare la composition enzymatique et le milieu plasmatique sanguin par filtration sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη, et
- on mesure la masse de plasminogénase libérée dans le milieu plasmatique sanguin.
10/ - Composition selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisée en ce qu'elle présente une activité, dite activité plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin au contact duquel elle est placée dans les conditions suivantes :
- on met une masse comprise entre 0,01 g et 0,5 g de composition enzymatique à l'état déshydraté en contact à température de l'ordre de 37°C pendant une durée supérieure à 5 min avec un volume compris entre 0,5 mL et 1,0 mL de milieu plasmatique sanguin, et ;
- on forme un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine, présentant, après séparation par filtration de la composition enzymatique et du milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine une activité enzymatique initiale, dite activité plasmine, telle que mesurée par un test de libération de ara-nitro-aniline supérieure à 0, 1 μιηοΐβ de ara-nitro-aniline libérée par minute et par millilitre (mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine,
ledit test de libération consistant à :
o mélanger dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine maintenu à la température de 37°C un substrat chromogène S-2251 de formule (I) ci-après :
Figure imgf000041_0001
à une concentration initiale de l'ordre de 1 mM (c'est-à-dire 10"3 mole/L) dans le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine,
o évaluer la vitesse initiale de libération de ara-nitro-aniline (en μιηοΐβ de de ara-nitro-aniline) par minute et par millilitre (mL) de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine suite au mélange.
11/ - Procédé de préparation d'une composition enzymatique selon l'une des revendications 1 à 10, dans lequel :
- on choisit au moins une enzyme, dite plasminogénase, de conversion en plasmine de plasminogène d'un milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène ;
- on choisit un support solide insoluble en solution aqueuse ;
o adapté pour pouvoir former avec chaque plasminogénase une liaison stable au contact d'un milieu plasmatique sanguin, et ;
o présentant des dimensions adaptées pour pouvoir être retenu sur un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη, et ;
- on met en contact le support solide et chaque plasminogénase de façon à lier chaque plasminogénase au support solide, et ; - on réalise une étape de lyophilisation de façon à former la composition enzymatique.
12/ - Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'on choisit un support solide à l'état divisé et formé de particules présentant trois dimensions s'étendant selon trois directions orthogonales entre elles, au moins deux desdites trois dimensions étant supérieures à 0,22 μιη.
13/ - Procédé selon l'une des revendications 11 ou 12, caractérisé en ce qu'on réalise au moins une étape de stérilisation de la composition enzymatique.
14/ - Utilisation d'une composition enzymatique selon l'une des revendications 1 à 10 pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique.
15/ - Utilisation selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'on met et on maintient une quantité de la composition enzymatique en contact avec une quantité du milieu plasmatique sanguin comprenant du plasminogène pendant une durée comprise entre 15 min et 60 min à 37°C, de façon à former le milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine comprenant une masse de plasminogénase libre inférieure à 25 μg par mL de milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine.
16/ - Dispositif pour la préparation d'un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile et exempt de composition enzymatique, comprenant une quantité de composition enzymatique selon l'une des revendications 1 à 10 et un filtre présentant un seuil de coupure inférieur ou égal à 0,22 μιη.
17/ - Dispositif (20) selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'il comprend :
- un récipient (1) contenant la quantité de composition enzymatique ;
- un dispositif (3) d'introduction de milieu plasmatique sanguin dans le récipient
(i) ;
- un dispositif (11) de prélèvement hors du récipient (1) d'un milieu plasmatique formé dans le récipient sous l'effet de la composition enzymatique ; - le dispositif (11) de prélèvement et le filtre étant agencés pour permettre la filtration du milieu plasmatique et l'obtention d'un filtrat constituant un milieu plasmatique ex vivo riche en plasmine stérile exempt de composition enzymatique.
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