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WO2016043003A1 - 血液成分分離装置 - Google Patents

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WO2016043003A1
WO2016043003A1 PCT/JP2015/074099 JP2015074099W WO2016043003A1 WO 2016043003 A1 WO2016043003 A1 WO 2016043003A1 JP 2015074099 W JP2015074099 W JP 2015074099W WO 2016043003 A1 WO2016043003 A1 WO 2016043003A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
blood
donor
platelet
tube
valve
Prior art date
Application number
PCT/JP2015/074099
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
重幸 木村
Original Assignee
テルモ株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by テルモ株式会社 filed Critical テルモ株式会社
Priority to JP2016548803A priority Critical patent/JP6542781B2/ja
Priority to US15/510,592 priority patent/US10518007B2/en
Priority to EP15842039.8A priority patent/EP3195886B1/en
Publication of WO2016043003A1 publication Critical patent/WO2016043003A1/ja
Priority to US16/680,819 priority patent/US11623033B2/en

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    • A61M2230/207Blood composition characteristics hematocrit

Definitions

  • the present invention relates to a blood component separation device for collecting platelets from blood.
  • blood is collected mainly by collecting only platelets and the other components are returned to the blood donor (donor).
  • a blood component separation apparatus equipped with a centrifuge is used. Yes.
  • Patent Document 1 collects a target number of platelets by performing a plurality of cycles of platelet collection operation for separating blood collected from a donor and collecting platelets. is doing.
  • the recommended number of cycles or recommended treatment blood volume (hereinafter recommended treatment volume) of the above-mentioned platelet collection operation is the hematocrit value of the donor's blood and the blood of the donor's blood. It is determined based on the predicted platelet recovery rate calculated from the platelet concentration. However, the recovery rate of platelets actually collected as a preparation varies depending on the sex of the donor due to the difference in circulating blood volume between men and women and the difference in blood flow status.
  • Patent Document 1 does not disclose anything to change the recommended cycle number or recommended processing amount of the platelet collection operation according to the sex of the blood donor.
  • an object of the present invention is to provide a blood component separation device that can reliably collect a target number of platelets regardless of the donor's gender. .
  • One aspect of the present invention made to solve the above-described problems is a blood component separation apparatus that collects platelets by separating a plurality of blood components from blood collected from a blood donor, and the hematocrit value of the blood and the blood Calculating a predicted platelet recovery rate from the platelet concentration, and calculating a recommended processing amount of the blood recommended for collecting a target number of platelets based on the calculated predicted platelet recovery rate;
  • the calculation unit has the predicted platelet recovery rate calculated from an arbitrary hematocrit value and an arbitrary platelet concentration when the blood donor is a female than the case where the blood donor is a male. It is characterized by reducing the value ⁇ .
  • the predicted platelet recovery rate can be accurately calculated according to the sex of the blood donor. Therefore, the target number of platelets can be reliably collected regardless of the sex of the donor.
  • the predetermined value ⁇ increases as the recommended amount of blood treatment increases.
  • a centrifuge step for introducing the blood into a centrifuge and separating the blood into a plurality of blood components; b) plasma of the separated blood components together with the blood in the centrifuge A circulating flow step to be introduced; and c) after the circulating flow step, the supply of the blood to the centrifuge is stopped, only the plasma is introduced into the centrifuge, and the plasma is further circulated for a predetermined time. Thereafter, the circulation speed is accelerated to separate and collect platelets by the centrifuge, and d) a circulation / acceleration step for collecting, and d) returning blood components not collected after the circulation / acceleration step to the donor. It is preferable that the steps a) to d) are performed as one cycle, and the calculation unit calculates a recommended cycle number as the recommended blood processing amount.
  • platelets can be separated from other blood components with high accuracy. Since the timing for collecting high-concentration platelets is optimized, more platelets can be collected efficiently. Furthermore, since the recommended number of cycles is calculated based on the predicted platelet recovery rate according to the sex of the donor, the target number of platelets can be reliably collected regardless of the donor's gender.
  • the blood in the separation container is separated into a plurality of blood components by rotating the separation container around the axis while supplying the blood into the annular separation container, and the blood is separated. It is preferable to collect platelets from a plurality of blood components.
  • platelets can be accurately separated from other blood components with a simple apparatus configuration.
  • a target number of platelets can be reliably collected regardless of the sex of the donor.
  • FIG. 2 is a block diagram illustrating a control system of the blood component separation device according to Embodiment 1.
  • FIG. It is a figure which shows the structure of a centrifuge bowl.
  • 3 is a flowchart illustrating the operation of the blood component separation device according to the first embodiment. It is a flowchart which shows the effect
  • the blood component separation device of this embodiment has a blood component separation circuit 1.
  • the blood component separation circuit 1 has a primary blood collection circuit 5 including a blood collection needle 2, a primary blood collection bag Y7 for collecting primary blood, a sampling port 3, and a primary blood collection line 4.
  • the blood component separation circuit 1 has a centrifuge bowl E1.
  • the centrifuge bowl E1 includes a rotor (not shown) having a blood storage space therein, a centrifuge bowl driving device 14 that is a rotation driving means for rotating the rotor, an inlet (first port) E1a, and an outlet (second port). ) E1b, and separates blood into a plurality of blood components by rotation of the rotor.
  • the blood component separation circuit 1 stores a blood component separated by the centrifuge bowl E1, a plasma bag (first container) Y1, a temporary storage bag (second container) Y2, and an intermediate platelet bag (third container). Y3.
  • the blood component separation circuit 1 has a first line, a second line, a third line, a fourth line, a fifth line, a sixth line, and a seventh line.
  • the first line is for connecting the blood collection needle 2 and the centrifuge bowl E1, and from the donor tube T1, the first blood pump P1, the tube T2, the tube T3a, the first on-off valve V1, the tube T3b, and the tube T4. Composed.
  • the second line is for connecting the centrifuge bowl E1 and the plasma bag Y1, and includes a tube T5, a tube T6a, a second on-off valve V2, and a tube T6b.
  • the third line is for connecting the plasma bag Y1 and the first line.
  • the fourth line is for connecting the centrifuge bowl E1 and the temporary storage bag Y2, and includes a tube T5, a tube T15, a tube T11a, a fifth on-off valve V5, and a tube T11b.
  • the fifth line is for connecting the temporary storage bag Y2 and the first line, and includes a tube T12, a tube T13b, a sixth on-off valve V6, and a tube T13a.
  • the sixth line is for connecting the temporary storage bag Y2 and the first line.
  • the seventh line is for connecting the centrifuge bowl E1 and the platelet intermediate bag Y3 and includes a tube T5, a tube T15, a tube T16, a tube T17a, an eighth on-off valve V8, and a tube T17b.
  • a blood collection needle 2 which is a collection means for collecting whole blood (blood) from a donor (donor), is connected to the first port of the first blood pump P1 by a donor tube T1.
  • the first blood collection bag Y7 is connected to a blood collection needle through a first blood collection line 4 from a branch portion provided on the donor tube T1.
  • the initial blood collection bag Y7 further includes a sampling port 3 for transferring the collected initial blood to a test container (not shown).
  • the sampling port 3 includes a main body portion, a needle portion 6, and a cover portion 7 that covers the needle portion. Consists of. Further, a clamp 8 for opening and closing the line is provided on the initial blood collection line 4.
  • the tube T2 connected to the second port of the first blood pump P1 is branched into two tubes T3a and T13a.
  • the tube T3a is connected to the first port of the first on-off valve V1, and the first on-off valve V1 is connected to the first port.
  • the 2 ports are connected to the tube T3b.
  • the tube T3b is branched into two tubes T4 and T10a, and the tube T4 is connected to an inlet E1a of a centrifuge bowl E1 that is a centrifuge for separating the collected blood into a plurality of blood components.
  • the centrifuge bowl E1 is disposed on the centrifuge bowl driving device 14 and is driven to rotate.
  • the blood collection needle 2 and the inlet E1a which is the inlet side of the centrifugal bowl E1 are connected to the first line (donor tube T1, first blood pump P1, tube T2, tube T3a, first on-off valve V1, tube T3b). Are connected by a tube T4).
  • the pressure sensor C1 is connected to the donor tube T1.
  • the tube T5 connected to the outlet E1b of the centrifugal bowl E1 is branched into a tube T15 and a tube T6a.
  • the tube T6a is connected to the first port of the second on-off valve V2, and the second port of the second on-off valve V2 is connected to the tube T6b.
  • the tube T6b is connected to the second port Y1b of the plasma bag Y1.
  • the outlet E1b of the centrifugal bowl E1 and the plasma bag Y1 are connected by a second line (tube T5, tube T6a, second on-off valve V2, tube T6b).
  • a second line tube T5, tube T6a, second on-off valve V2, tube T6b.
  • the first port Y1a on the output side of the plasma bag Y1 is connected to the tube T8a.
  • the tube T8a is connected to the first port of the third on-off valve V3.
  • the second port of the third on-off valve V3 is connected to the tube T8b, and the tube T8b is connected to the tube T9.
  • the tube T9 is connected to the second port of the second blood pump P2.
  • the first port of the second blood pump P2 is connected to the tube T10b, and the tube T10b is connected to the second port of the fourth on-off valve V4.
  • the first port of the fourth on-off valve V4 is connected to the tube T10a.
  • the tube T10a is connected to an intermediate position between the tube T3b and the tube T4 constituting the first line. That is, the plasma bag Y1 and the first line are connected by a third line (tube T8a, third on-off valve V3, tube T8b, tube T9, second blood pump P2, tube T10b, fourth on-off valve V4, tube T10a). It is connected. Thereby, the plasma bag Y1 is connected so as to selectively communicate with the inlet side or the outlet side of the centrifuge bowl E1.
  • the tube T15 branched from the tube T5 is further branched into a tube T11a and a tube T16.
  • the tube T11a is connected to the first port of the fifth on-off valve V5, and the second port of the fifth on-off valve V5 is connected to the tube T11b.
  • the tube T11b is connected to the second port Y2b of the temporary storage bag Y2. That is, the outlet E1b of the centrifugal bowl E1 and the temporary storage bag Y2 are connected by the fourth line (tube T5, tube T15, tube T11a, fifth open / close valve V5, tube T11b).
  • the first port Y2a of the temporary storage bag Y2 is connected to the tube T12 and branches into the tube T13b and the tube T14a.
  • the tube T13b is connected to the first port of the sixth on-off valve V6, and the second port of the sixth on-off valve V6 is connected to the tube T13a.
  • the tube T13a is connected to an intermediate position between the tube T2 and the tube T3a constituting the first line.
  • the first port of the second blood pump P2 is connected to the tube T10b, and the tube T10b is connected to the first port of the fourth on-off valve V4.
  • the second port of the fourth on-off valve V4 is connected to the tube T10a.
  • the tube T10a is connected to an intermediate position between the tube T3b and the tube T4 constituting the first line. That is, the temporary storage bag Y2 and the first line are the fifth line (tube T12, tube T13b, sixth open / close valve V6, tube T13a), and sixth line (tube T12, tube T14a, seventh open / close valve V7, Tube T14b, tube T9, second blood pump P2, tube T10b, fourth open / close valve V4, and tube T10a).
  • Temporary storage bag Y2 is connected to selectively communicate with the inlet side or outlet side of centrifugal bowl E1.
  • the tube T16 branched from the tube T15 is further branched into two tubes T17a and T18a.
  • the tube T17a is connected to the first port of the eighth on-off valve V8, and the second port of the eighth on-off valve V8 is connected to the tube T17b.
  • the tube T17b is connected to the first port Y3a on the input side of the platelet intermediate bag Y3.
  • the tube T18a branched from the tube T16 is connected to the first port of the ninth on-off valve V9, and the second port of the ninth on-off valve V9 is connected to the tube T18b.
  • the tube T18b is connected to the airbag Y4.
  • the outlet E1b of the centrifugal bowl E1 and the platelet intermediate bag Y3 are connected by the seventh line (tube T5, tube T15, tube T16, tube T17a, eighth on-off valve V8, tube T17b).
  • the platelet intermediate bag Y3 is connected to communicate with the outlet side of the centrifuge bowl E1.
  • a turbidity sensor C2 and a pressure sensor C3 for detecting the concentration of platelets are attached to a tube T5 connected to the outlet E1b of the centrifugal bowl E1.
  • the turbidity sensor C2 detects the degree to which the plasma passing through the tube T5 becomes turbid with platelets.
  • an interface sensor C4 for detecting the interface position of the buffy coat layer BC (see FIG. 3) formed in the centrifugal bowl E1 is attached to the peripheral portion where the centrifugal bowl E1 is attached.
  • the tube T20a is connected to the first port of the tenth on-off valve V10, and the tenth on-off
  • the second port of the valve V10 is connected to the tube T20b.
  • the tube T21 is connected to the first port that is the output side of the third blood pump P3.
  • the second port on the input side of the third blood pump P3 is connected to the platelet preservation solution bottle by the bottle needle 10 via the sterilizing filter 9.
  • the tube T20b is connected to the platelet bag Y5 via the leukocyte removal filter 11.
  • an airbag Y6 is connected to the platelet bag Y5.
  • the output port of the ACD pump P4 is connected in the middle of the donor tube T1.
  • the input port of the ACD pump P4 is connected to the output port of the sterilization filter 12.
  • the input port of the sterilization filter 12 is connected to the ACD storage bottle by the bottle needle 13.
  • the control unit 15 provided in the blood component separation device of the present embodiment is configured by a microcomputer, for example, and includes a first blood pump P1, a second blood pump P2, and a third blood pump.
  • the valve V4, the fifth on-off valve V5, the sixth on-off valve V6, the seventh on-off valve V7, the eighth on-off valve V8, the ninth on-off valve V9, the tenth on-off valve V10, and the donor computation simulator 30 are electrically connected. ing.
  • the detection signals from the sensors C1, C2, C3, and C4 are input to the control unit 15 as needed.
  • the control unit 15 controls the operation / stop, rotation direction (forward / reverse rotation) and rotation speed of each pump P1, P2, P3, and P4 based on these detection signals and the like, and each on-off valve as necessary. Controls the opening / closing of V1, V2, V3, V4, V5, V6, V7, V8, V9, V10 and the operation of the centrifugal bowl drive device 14.
  • the control unit 15 inputs and outputs information with the donor calculation simulator 30.
  • the donor calculation simulator 30 predicts the platelet recovery rate based on the hematocrit value of blood collected from the donor and the platelet concentration of blood collected from the donor (the number of platelets predicted for the number of platelets in the blood to be processed). Number ratio). Based on the predicted platelet recovery rate calculated as described above, the donor computation simulator 30 recommends the number of cycles for platelet collection operation (a series of steps for separating blood collected from a donor and collecting platelets). Alternatively, the recommended processing amount is calculated.
  • the donor calculation simulator 30 is an example of the “calculation unit” in the present invention.
  • constituent material of the tube examples include various thermoplastic elastomers such as polyvinyl chloride, polyethylene, polypropylene, polyester such as PET and PBT, ethylene-vinyl acetate copolymer (EVA), polyurethane, and polyester elastomer.
  • polyvinyl chloride is particularly preferred.
  • Polyvinyl chloride provides sufficient flexibility and flexibility, is easy to handle, and is suitable for clogging with a clamp or the like.
  • a polymer obtained by polymerizing or copolymerizing olefin or diolefin such as soft polyvinyl chloride, polyolefin, ethylene, propylene, butadiene, and isoprene in which DEHP is used as a plasticizer
  • olefin or diolefin such as soft polyvinyl chloride, polyolefin, ethylene, propylene, butadiene, and isoprene in which DEHP is used as a plasticizer
  • EVA ethylene-vinyl acetate copolymer
  • PET, PBT, PCGT, etc. can be used.
  • polyvinyl chloride is particularly preferable, but a container that stores platelet PLT preferably has excellent gas permeability in order to improve the storage stability of platelet PLT, such as polyolefin and DnDP plasticized polyvinyl chloride. It is preferable to use a sheet having a reduced thickness.
  • FIG. 3 shows the structure of the centrifuge bowl E1.
  • the right side from the center line is a sectional view, and the left side is an external view.
  • An inflow port E1a and an outflow port E1b are formed in the fixed portion 20, which is a fixed portion that does not rotate.
  • a cover 17 and an inflow pipe 18 extending downward are connected to the fixed portion 20.
  • the side wall 21, the outer shell 22, the inner shell 23, and the bottom plate 16 are rotatably held integrally with these fixed portions.
  • the bottom plate 16 is adsorbed to the centrifugal bowl driving device 14 (see FIG. 1) and is given a rotational force by the centrifugal bowl driving device 14.
  • FIG. 3 shows a state in which whole blood is supplied from the inflow port E1a into the centrifuge bowl E1 and blood components are separated by centrifugal force.
  • the red blood cell layer (RBC layer), the white blood cell layer (WBC layer), the buffy coat layer (BC layer), the platelets in descending order of specific gravity due to centrifugal force.
  • a layer (PLT layer) and a plasma layer (PPP layer) are formed.
  • PPP layer a plasma layer
  • the white blood cell layer and the platelet layer are difficult to separate because of their specific gravity. Therefore, there exists a buffy coat layer including a leukocyte layer and a platelet layer.
  • the breakdown of whole blood is about 55% for plasma PPP, about 43.2% for red blood cell RBC, about 1.35% for white blood cell WBC, and about 0.45% for platelet PLT.
  • the donor calculation simulator 30 determines the recommended number of cycles for the platelet collection operation.
  • the donor calculation simulator 30 calculates a predicted platelet recovery rate according to gender from the blood count value of blood preliminarily collected from the donor, and based on the calculated platelet recovery rate calculated in this way, the platelet recovery rate is calculated. Calculate the recommended number of cycles for sampling operations.
  • the blood component separation device starts blood collection as follows. The details of the method for calculating the recommended number of cycles for platelet collection operation by the donor calculation simulator 30 will be described later.
  • FIG. 6 is a diagram showing a blood collection start process (first process).
  • a white display indicates an operating state
  • a black display indicates a stopped state.
  • a white display indicates an open state
  • a black display indicates a closed state.
  • the priming step (S1) in FIG. 4 is performed.
  • the ACD pump P4 and the first blood pump P1 are driven, and ACD liquid for preventing blood coagulation is supplied to the centrifugal bowl E1 through the opened first on-off valve V1, and the centrifugal bowl E1, 1 Priming step (S1) of blood pump P1 or the like is performed.
  • the priming is a process in which an ACD liquid is attached in advance to a portion in contact with blood such as in the donor tube T1, the first blood pump P1, and the centrifuge bowl E1 so that the blood does not coagulate when flowing. From the priming process, the centrifuge bowl drive device 14 rotates the centrifuge bowl E1 at a predetermined rotation speed.
  • the blood collection needle 2 is punctured into the blood donor and the collection of whole blood is started (S2).
  • the blood donor 2 is punctured into the blood donor, and then the primary blood is collected in the primary blood collection bag Y7 (see FIG. 1) in the primary blood collection circuit.
  • the branch portion provided on the donor tube T1 is initially configured to connect the blood collection needle 2 and the initial blood collection line 4 (see FIG. 1).
  • the initial blood collection line 4 is closed by the clamp 8 (see FIG. 1), and a flow path on the first blood pump P1 side of the donor tube T1 is secured.
  • the ACD pump P4 is driven, the ACD liquid is supplied to the donor tube T1, mixed with the whole blood, and the whole blood is supplied to the centrifuge bowl E1.
  • whole blood is supplied to the rotating centrifuge bowl E1, it is pushed by the plasma PPP from the outflow passage 19 (see FIG. 3) located at the inner periphery of the centrifuge bowl E1, and as shown in FIG. Air (indicated by a dotted line) in the centrifuge bowl E1 flows out.
  • the air that has flowed out is stored in the airbag Y4 through the opened ninth on-off valve V9.
  • the whole blood is separated into each component by applying a centrifugal force to the supplied whole blood in the bowl.
  • the ninth on-off valve V9 is closed and the second on-off valve V2 is opened as shown in FIG. Open and store the plasma PPP overflowing from the centrifuge bowl E1 in the plasma bag Y1.
  • the third on-off valve V3 is opened and the second blood pump P2 is opened.
  • the fourth on-off valve V4 is opened to collect whole blood from the blood donor, and the plasma PPP stored in the plasma bag Y1 is mixed with the whole blood and supplied to the centrifuge bowl E1.
  • This is the third step (critical flow step) (S5).
  • This is the critical flow period TE shown in FIG.
  • the critical flow process is an example of the “circulation flow process” in the present invention.
  • the interface sensor C4 detects that the interface between the buffy coat layer (BC layer) and the red blood cell layer (RBC layer) in FIG. 3 has come to a predetermined position (S6: YES), as shown in FIG.
  • the first on-off valve V1 is closed, the second on-off valve V2, the third on-off valve V3, the fourth on-off valve V4 are opened, and the second blood pump P2 is driven.
  • the plasma PPP passes through the third on-off valve V3, the second blood pump P2, the fourth on-off valve V4, the centrifugal bowl E1, and the second on-off valve V2, and then returns to the plasma bag Y1 again. (4th process) is performed. This is the circulation period TF shown in FIG.
  • the current cycle is the last cycle. If the current cycle is not the last cycle (S7: NO), the sixth open / close valve V6 is opened and the state in which the first blood pump P1 is driven is maintained.
  • the collected whole blood is stored in Y2 (S11). In other words, the collection of whole blood is continued by storing the whole blood collected in the temporary storage bag Y2.
  • the whole blood is continuously collected until the circulation / acceleration process is completed or until a predetermined amount of time is reached.
  • the final cycle S7: YES
  • the first blood pump P1 is stopped and blood collection is stopped (S8).
  • the circulation rate is made faster than the critical flow step, and the plasma PPP is allowed to pass through the centrifuge bowl E1 at a rate of about 100 ml / min for about 30 to 40 seconds. Circulate.
  • the particulate matter concentration in the buffy coat layer BC of FIG. 3 is reduced, and the white blood cells WBC having a higher specific gravity than the platelet PLT are deposited outside the buffy coat layer (BC layer). That is, the platelet layer (PLT layer) and the white blood cell layer (WBC layer) can be more clearly separated.
  • the process enters the acceleration process (fifth process) in the circulation / acceleration process shown in FIG.
  • the acceleration process by controlling the rotation speed of the second blood pump P2, the rotation speed is gradually increased to gradually increase the flow rate of the plasma PPP.
  • the flow rate is increased starting from 100 ml / min, and the flow rate of plasma PPP is accelerated until platelet PLT flows out.
  • This is the acceleration period TG shown in FIG.
  • the circulation process and the acceleration process are combined and expressed as a circulation / acceleration process (S9, S12).
  • the platelet PLT gains a force in the ascending direction and is released from the outflow passage 19 to the outside of the centrifugal bowl E1.
  • the white blood cell layer (WBC layer) and the red blood cell layer (RBC layer) having a large specific gravity do not leave the outflow passage 19 because the centrifugal force is stronger.
  • FIG. 20 shows changes in the concentration of platelet PLT, leukocyte WBC, and red blood cell RBC.
  • the horizontal axis represents the time course at the time of collection of platelet PLT, and the vertical axis represents the concentration of the blood cell component that flows out.
  • outflow period TA there is an outflow of platelet PLT (outflow period TA)
  • the outflow amount of platelet PLT gradually increases, and gradually decreases when the maximum flow rate is exceeded.
  • leukocytes gradually increase in outflow and decrease gradually after the maximum flow rate.
  • step S9 and step S12 are shown in FIG. 5 as a flowchart showing the operation of the blood component separation device.
  • the platelet outflow period TA includes a low concentration period TB in which low-concentration platelet liquid PC flows out first, followed by a high concentration period TC in which high-concentration platelet liquid PC flows out, and then again low-concentration platelets.
  • the liquid PC can be divided into low concentration periods TD.
  • low-concentration platelet liquid PC is not necessary.
  • the turbidity sensor C2 detects the platelet PLT, that is, when it is determined that it is the low concentration period TB (S21: YES)
  • the second on-off valve V2 Is closed
  • the fifth on-off valve V5 is opened
  • the platelet liquid PC in the low concentration period TB of FIG. 20 is stored in the temporary storage bag Y2 (S22).
  • the low-concentration platelet liquid PC is stored in the temporary storage bag Y2 in a state of being mixed with the whole blood.
  • the first blood pump P1 is kept in a driving state, and the whole blood collected from the blood donor continues to be stored in the temporary storage bag Y2.
  • the temporary storage bag Y2 is used as a buffy coat bag simultaneously with the whole blood bag.
  • the turbidity sensor C2 detects that the platelet liquid PC has a high concentration, it is determined that it is the high concentration period TC (S23: YES), and as shown in FIG. 11, the fifth on-off valve V5 Is closed and the eighth on-off valve V8 is opened. Thereby, the high concentration platelet liquid PC flowing out during the high concentration period TC can be stored in the platelet intermediate bag Y3 (S24).
  • the amount of the high-concentration platelet liquid PC stored in the platelet intermediate bag Y3 is easily adjusted by controlling the valve opening time of the eighth on-off valve V8 based on the flow rate of the platelet liquid PC flowing out from the centrifugal bowl E1. can do.
  • the rotation of the centrifugal bowl E1 is stopped, the sixth on-off valve V6 and the fifth on-off valve V5 are closed, the first on-off valve V1 and the ninth on-off valve V9 are opened, and the first blood pump P1 is reversely rotated.
  • the blood return to return the blood remaining in the centrifuge bowl E1 to the donor is started.
  • the reverse rotation speed of the first blood pump P1 is driven at a double speed of the normal rotation speed to shorten the blood return time.
  • the second blood pump P2 is driven to return the plasma PPP that has been excessively collected and stored in the plasma bag Y1.
  • the blood stored in the temporary storage bag Y2 also opens the seventh on-off valve V7, drives the second blood pump P2, and simultaneously flows into the centrifuge bowl E1 through the fourth on-off valve V4 (S14). ).
  • the third on-off valve V3 is closed so that the fluid does not flow into the plasma bag Y1.
  • the ninth on-off valve V9 is closed and the second on-off valve V2 is turned on. Open and store the plasma PPP overflowing from the centrifuge bowl E1 in the plasma bag Y1.
  • This cycle is normally performed for 3 or 4 cycles until a predetermined amount of platelet PLT is secured based on the recommended number of platelet collection operations calculated by the donor computation simulator 30. For example, since the recommended number of platelet collection operations for the platelet collection operation is calculated as 3 cycles by the donor computation simulator 30, when the cycle ends in 3 cycles, the circulation cycle TF2 and the acceleration period TG2 of the second cycle are executed in parallel. Blood is collected and whole blood is stored in the temporary storage bag Y2. At the time of blood collection in the third cycle, the blood in the temporary storage bag Y2 is mixed with whole blood and supplied to the centrifuge bowl E1. In the third cycle, blood is not collected during the circulation period TF3 and the acceleration period TG3. This is because there is no fourth cycle.
  • the tenth on-off valve V10 is opened, and the platelet bag PC and the platelet preservation solution stored in the platelet intermediate bag Y3 are passed through the leukocyte removal filter 11 to the platelet bag. Inject into Y5. At this time, the air present in the platelet bag Y5 moves to the airbag Y6.
  • the third blood pump P3 is driven and connected to the platelet storage liquid bottle.
  • the platelet preservation solution remaining in the platelet preservation solution bottle is injected into the platelet bag Y 5 through the sterilization filter 9 and the leukocyte removal filter 11.
  • the high-concentration platelet liquid PC that has been filtered and remains in the leukocyte removal filter 11 is collected.
  • the two tubes of the platelet bag Y5 are sealed. Thereby, the platelet bag Y5 in which the high-concentration platelet liquid PC is stored is completed.
  • the preparation platelet recovery rate (the ratio of the number of platelets actually collected in the platelet bag Y5 as a preparation to the number of platelets in the blood to be treated) varies depending on the sex. That is, the preparation platelet recovery rate tends to be smaller when the donor is a woman than when the donor is a male, even if the donors are the same cycle donors (donors with the same number of platelet collection operations). .
  • the gender difference (predetermined value ⁇ ) in the preparation platelet recovery rate tends to increase.
  • the 2-cycle donor is 2%
  • the 3-cycle donor is 4%
  • the 4-cycle donor is 5%
  • the predetermined value ⁇ is increased as the number of platelet collection operations increases. Will grow.
  • the donor calculation simulator 30 changes the value of the predicted platelet recovery rate according to gender. That is, the donor calculation simulator 30 calculates the predicted platelet recovery rate calculated from an arbitrary blood count value (hematocrit value and platelet concentration of pre-collected blood) when the blood donor is a female than when the blood donor is a male. Is also reduced by a predetermined value ⁇ . For example, the donor calculation simulator 30 calculates the predicted platelet recovery rate for an arbitrary blood count value as X% when the blood donor is male, while (X ⁇ )% when the blood donor is female. And calculate. X and ⁇ are arbitrary numbers of 0 or more.
  • the donor calculation simulator 30 calculates the recommended number of cycles for the platelet collection operation based on the predicted platelet recovery rate calculated according to gender in this way. Thereby, in men and women with the same blood count, the recommended number of cycles or recommended throughput of the platelet collection operation can change.
  • the HCT value hematocrit value
  • the PLT value platelet concentration
  • the predicted platelet recovery rate is conventionally 78% regardless of gender, and the recommended number of cycles for platelet collection operation is determined based on the predicted platelet recovery rate, and the predicted PLT number ( The estimated number of platelets collected) was calculated.
  • the recommended number of cycles for platelet collection operation is determined to be 3 times regardless of whether the blood donor is male or the blood donor is female.
  • the number of PLTs was calculated as 2.04 ⁇ 10 11 pieces (indicated as “2.04 ⁇ 10e11 pieces” in the figure), which is close to the lower limit of the target number of units (10 units).
  • the expected number of PLT products (the number of platelets actually collected in the platelet bag Y5) Is 2.04 ⁇ 10 11 when the male is a male, but 1.93 ⁇ 10 11 when the blood donor is a female (indicated as “1.93 ⁇ 10e11” in the figure). I have. That is, although blood was processed according to the recommended number of cycles for collecting platelets, 10 units of platelets could be collected when the donor was male, while 10 units of blood when the donor was female. Platelets could not be collected.
  • the unit is used when the blood donor is a woman due to the influence of the difference in the circulating blood volume between men and women and the difference in the blood flow situation. There was a risk of cracking.
  • the donor calculation simulator 30 calculates, for example, 78% when the blood donor is a male, based on the blood count value, while the blood donor For example, 74% is calculated for a female. Then, the donor computation simulator 30 calculates the recommended number of cycles for the platelet collection operation and the predicted number of PLTs based on the predicted platelet recovery rate.
  • the donor calculation simulator 30 calculates the recommended cycle number three times and the predicted PLT number 2.04 ⁇ 10 11 .
  • the donor computation simulator 30 predicts that the predicted PLT number is 1.93 ⁇ 10 11 and a unit break occurs when the recommended cycle number is 3 times. Therefore, the recommended cycle number is calculated as 4 times and the predicted PLT number is calculated as 2.50 ⁇ 10 11 .
  • the range of the predetermined value ⁇ can be set as shown in FIG. 24, for example.
  • the range of the predetermined value ⁇ is set for one to five cycle donors.
  • the upper limit value of the predetermined value ⁇ increases.
  • “3-cycle donor” is a case where the recommended number of platelet collection operations is calculated as 3 if the blood donor is a male.
  • a value obtained by subtracting 0 to 6.0% from the predicted platelet recovery rate when the blood donor is a male is set as the predicted platelet recovery rate.
  • the blood component separation apparatus of the present embodiment calculates a predicted platelet recovery rate from the hematocrit value and platelet concentration of blood collected from a blood donor, and based on the calculated predicted platelet recovery rate. And a donor calculation simulator 30 for calculating a recommended cycle number (recommended blood treatment amount) recommended for collecting a target number of platelets. Then, the donor calculation simulator 30 calculates a predicted platelet recovery rate calculated from an arbitrary hematocrit value and an arbitrary platelet concentration when the blood donor is a female, by a predetermined value ⁇ smaller than when the blood donor is a male. .
  • the predetermined value ⁇ increases as the predicted platelet recovery rate decreases and the recommended number of cycles increases. Therefore, regardless of the number of cycles and the sex of the donor, the target number of platelets can be reliably collected.
  • the blood component separation apparatus of the present embodiment includes: a) a centrifugal separation step of introducing the blood into a centrifuge and separating the blood into a plurality of blood components; and b) centrifugal separation of plasma among the separated blood components.
  • a blood return step for returning blood to the donor, and the steps a) to d) are performed as one cycle.
  • platelets can be accurately separated from other blood components. Since the timing for collecting high-concentration platelets is optimized, more platelets can be collected efficiently.
  • Example 2 The method of changing the value of the predicted platelet recovery rate according to sex as described above can also be applied to the belt-type continuous centrifuge 50, which is another aspect of the blood component separation device.
  • the continuous centrifuge 50 includes an annular rotor 52, a motor 54 coupled to the rotor 52, and an annular (annular belt shape) integrally disposed with the rotor 52 inside the rotor 52.
  • the blood collected from the blood donor is filled into the separation container 56 and the fluid chamber 58. Specifically, as shown in FIG. 26, blood flows into the separation container 56 through the inflow pipe 66 by the inflow pump 64.
  • the collection pump 68 is activated, blood flows from the inlet portion 70 toward the outlet portion 72 in the counterclockwise direction (counterclockwise direction) in the separation container 56 shown in FIG.
  • the entrance portion 70 and the exit portion 72 are blocked by a wall 73.
  • each component of the blood is stratified in the descending order of density, that is, in the order of red blood cells, white blood cells, platelets, and plasma. That is, as shown in FIG. 26, a layer of red blood cells RBC is formed along the outer wall of the separation container 56, and a layer of plasma PPP is formed along the inner wall of the separation container 56. A layer of platelet PLT and white blood cell WBC is formed between the layer of red blood cells RBC and the layer of plasma PPP.
  • the plasma PPP flows through the first passage 76 to a position downstream of the barrier 78 (right side in FIG. 26) and is removed through the collection line 80.
  • the red blood cell RBC flows through the second passage 82 to a position downstream of the barrier 78 and is removed through the collection line 84.
  • the platelet PLT and the white blood cell WBC remain at a position upstream of the barrier 78 (left side in FIG. 26).
  • the remaining platelet PLT flows into the fluid chamber 58 through the collection line 86 together with the white blood cells WBC.
  • the platelet PLT and the white blood cell WBC are deposited in the fluid chamber 58.
  • the platelet PLT is deposited at a position farther from the inlet 88 of the fluid chamber 58 than the white blood cell WBC. In this way, a deposited layer of platelet PLT is formed in the fluid chamber 58.
  • the white blood cells WBC are deposited in the fluid chamber 58 between the inlet 88 and the platelet PLT deposition layer.
  • the platelet PLT deposited in this manner is collected from the fluid chamber 58 and collected and stored in a predetermined container. In this manner, the platelet PLT is collected from the blood in the continuous centrifuge 50.
  • the donor calculation simulator 62 calculates the predicted platelet recovery rate calculated from an arbitrary blood count value in the case where the blood donor is a woman, as described above. In this case, the predetermined value ⁇ is made smaller than the case where the blood donor is male. Based on the predicted platelet recovery rate according to the gender thus calculated, the donor computation simulator 62 recommends a recommended blood processing amount (a blood processing recommended for collecting a target number of platelets). Amount).
  • the donor calculation simulator 62 increases the recommended blood processing volume for men and women with the same blood count value when the blood donor is a female, compared with when the blood donor is a male. For example, when the recommended blood processing amount when the blood donor is a male is 1500 ml, the recommended blood processing amount when the blood donor is a female is 1580 ml.
  • the predetermined value ⁇ increases as the predicted platelet recovery rate decreases and the recommended blood processing amount increases.
  • the blood component separation apparatus of the present embodiment calculates a predicted platelet recovery rate from the hematocrit value and platelet concentration of blood collected from a blood donor, and based on the calculated predicted platelet recovery rate. And a donor calculation simulator 62 for calculating a recommended blood processing amount recommended for collecting a target number of platelets. Then, the donor calculation simulator 62 calculates a predicted platelet recovery rate calculated from an arbitrary hematocrit value and an arbitrary platelet concentration when the blood donor is a female, by a predetermined value ⁇ smaller than when the blood donor is a male. .
  • the predetermined value ⁇ increases as the predicted platelet recovery rate decreases and the recommended amount of blood treatment increases. Therefore, the target number of platelets can be reliably collected regardless of the blood processing amount and the donor's gender.
  • the blood component separation apparatus of the present embodiment rotates the separation container 56 around the rotation axis AA while supplying the blood into the annular separation container 56, whereby the blood in the separation container 56 is divided into a plurality of pieces. Blood components are separated, and platelets are collected from the separated blood components. Thereby, platelets can be accurately separated from other blood components with a simple apparatus configuration.
  • the buffy coat bag and the whole blood bag are used as the temporary storage bag Y2, but the buffy coat bag and the whole blood bag may be provided in parallel as separate bags.

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Abstract

 供血者より採取した血液から複数の血液成分を分離して血小板を採取する血液成分分離装置において、前記血液のヘマトクリット値と前記血液の血小板濃度とから予測血小板回収率を算出し、算出した前記予測血小板回収率をもとに、目標の単位数の血小板を採取するために推奨される前記血液の推奨処理量を算出する演算部を有し、前記演算部は、任意の前記ヘマトクリット値と任意の前記血小板濃度とから算出される前記予測血小板回収率を、前記供血者が女性の場合には前記供血者が男性の場合よりも所定値α小さくする。

Description

血液成分分離装置
 本発明は、血液から血小板を採取するための血液成分分離装置に関する。
 従来、採血において、主として血小板等のみを採取し、その他の成分は供血者(ドナー)に返還する成分採血が行われており、そのときに、遠心分離器を備える血液成分分離装置が使用されている。
 近年、癌の放射線治療時等において、血小板液の輸血が広く行われ、そのとき、高濃度の血小板液が必要とされる。高濃度の血小板液を採取するために、特許文献1の技術では、供血者から採取した血液を分離して血小板を採取する血小板採取操作を複数サイクル行うことにより、目標の単位数の血小板を採取している。
特開2003-88581号公報
 ここで、目標の単位数の血小板を採取するために、前記の血小板採取操作の推奨サイクル数もしくは推奨処理血液量(以下推奨処理量)は、供血者の血液のヘマトクリット値と供血者の血液の血小板濃度から算出される予測血小板回収率をもとに決定される。しかし、実際に製剤として採取される血小板の回収率は、男女間の循環血液量の差や血流状況の差により、供血者の性別によって変化する。そのため、予測血小板回収率を供血者の性別に関わらず一律に決定してしまうと、供血者が女性の場合には、前記の血小板採取操作のサイクル数もしくは推奨処理量では足りず、単位割れ(採取される血小板が目標の単位数に達しないこと)が発生するおそれがある。したがって、確実に目標の単位数の血小板を採取するためには、前記の血小板採取操作の推奨サイクル数もしくは推奨処理量を、供血者の性別に応じて変えることが必要となる場合がある。しかしながら、特許文献1においては、供血者の性別に応じて血小板採取操作の推奨サイクル数もしくは推奨処理量を変えること、は何ら開示されていない。
 そこで、本発明は上記した問題点を解決するためになされたものであり、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる血液成分分離装置を提供することを目的とする。
 上記課題を解決するためになされた本発明の一態様は、供血者より採取した血液から複数の血液成分を分離して血小板を採取する血液成分分離装置において、前記血液のヘマトクリット値と前記血液の血小板濃度とから予測血小板回収率を算出し、算出した前記予測血小板回収率をもとに、目標の単位数の血小板を採取するために推奨される前記血液の推奨処理量を算出する演算部を有し、前記演算部は、任意の前記ヘマトクリット値と任意の前記血小板濃度とから算出される前記予測血小板回収率を、前記供血者が女性の場合には前記供血者が男性の場合よりも所定値α小さくすること、を特徴とする。
 この態様によれば、予測血小板回収率を、供血者の性別に応じて正確に算出できる。そのため、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 上記の態様においては、前記血液の推奨処理量が多くなるに従い、前記所定値αは大きくなること、が好ましい。
 この態様によれば、血液の処理量や供血者の性別に関わらず、確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 上記の態様においては、a)前記血液を遠心分離器に導入し、複数の血液成分に分離する遠心分離工程と、b)分離された血液成分のうち血漿を前記遠心分離器内に前記血液と共に導入する循環フロー工程と、c)前記循環フロー工程の後、前記血液の前記遠心分離器への供給を停止して、前記遠心分離器に血漿のみを導入し、所定時間さらに血漿を循環させた後、循環速度を加速することにより血小板を前記遠心分離器により分離し、採取する循環・加速工程と、d)前記循環・加速工程の後、採取しなかった血液成分について前記供血者へ返血する返血工程と、を行い、前記a)~d)の工程を1つのサイクルとして行うものであり、前記演算部は、前記血液の推奨処理量として推奨サイクル数を算出すること、が好ましい。
 この態様によれば、血小板を他の血液成分から精度良く分離することができる。そして、高濃度の血小板の採取タイミングの最適化が図られているため、より多くの血小板を効率良く採取することができる。さらに、供血者の性別に応じた予測血小板回収率をもとに推奨サイクル数が算出されるので、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 上記の態様においては、前記血液を環状の分離容器内に供給しながら前記分離容器を軸中心に回転させることにより、前記分離容器内の前記血液を複数の血液成分に分離させ、分離させた前記複数の血液成分から血小板を採取すること、が好ましい。
 この態様によれば、簡易な装置構成により血小板を他の血液成分から精度良く分離することができる。
 本発明の血液成分分離装置によれば、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
実施例1の血液成分分離装置の構成を示す図である。 実施例1の血液成分分離装置の制御系を示すブロック図である。 遠心ボウルの構造を示す図である。 実施例1の血液成分分離装置の作用を示すフローチャートである。 血小板液の採取工程の作用を示すフローチャートである。 第1工程(採血開始工程)を示す図である。 第2工程(遠心分離工程)を示す図である。 第3工程(クリティカルフロー工程)を示す図である。 第4工程(循環・加速工程)のうち、循環工程を示す図である。 第5工程(循環・加速工程)のうち、低濃度の血小板液の回収する工程を示す図である。 第5工程(循環・加速工程)のうち、高濃度の血小板液を貯蔵する工程を示す図である。 第5工程(循環・加速工程)のうち、低濃度の血小板液の回収する工程を示す図である。 返血工程を示す図である。 第2サイクルの第1工程を示す図である。 第2サイクルの第2工程を示す図である。 第2サイクルの第3工程を示す図である。 血小板液の処理工程を示す図である。 血小板液の最終処理を示す図である。 時系列的に血液成分分離装置の作用を示す図である。 血小板、白血球、及び赤血球の流出する濃度変化を示す図である。 性別やサイクル数別の製剤血小板回収率の一例を示す図である。 従来における推奨サイクル数と予測PLT数と期待製剤PLT数とを示す図である。 実施例1における推奨サイクル数と予測PLT数と期待製剤PLT数とを示す図である。 所定値αの数値範囲例を示す図である。 連続型遠心機の部分斜視図である。 分離容器の一部と流体チャンバの周辺の断面図である。
 以下、本発明の血液成分分離装置を具体化した実施の形態について、図面に基づき詳細に説明する。
<実施例1>
 図1に示すように、本実施例の血液成分分離装置は、血液成分分離回路1を有する。血液成分分離回路1は、採血針2と、初流血を採取するための初流血採取バッグY7、サンプリングポート3、初流血採取ライン4とからなる初流血採取回路5を有する。
 また、血液成分分離回路1は遠心ボウルE1を有する。遠心ボウルE1は、内部に貯血空間を有するローター(不図示)と、ローターを回転駆動する回転駆動手段である遠心ボウル駆動装置14と、流入口(第1ポート)E1aと流出口(第2ポート)E1bとを有し、ローターの回転により複数の血液成分に血液を分離する。血液成分分離回路1は、遠心ボウルE1により分離された血液成分を貯留する、血漿バッグ(第1の容器)Y1、一時貯留バッグ(第2の容器)Y2、血小板中間バッグ(第3の容器)Y3を有する。
 また、血液成分分離回路1は、第1ライン、第2ライン、第3ライン、第4ライン、第5ライン、第6ライン、第7ラインを有する。
 第1ラインは、採血針2と遠心ボウルE1とを接続するためのものであり、ドナーチューブT1、第1血液ポンプP1、チューブT2、チューブT3a、第1開閉弁V1、チューブT3b、チューブT4から構成される。第2ラインは、遠心ボウルE1と血漿バッグY1とを接続するためのものであり、チューブT5、チューブT6a、第2開閉弁V2、チューブT6bから構成される。第3ラインは、血漿バッグY1と第1ラインとを接続するためのものであり、チューブT8a、第3開閉弁V3、チューブT8b、チューブT9、第2血液ポンプP2、チューブT10b、第4開閉弁V4、チューブT10aから構成される。
 第4ラインは、遠心ボウルE1と一時貯留バッグY2とを接続するためのものであり、チューブT5、チューブT15、チューブT11a、第5開閉弁V5、チューブT11bから構成される。第5ラインは、一時貯留バッグY2と第1ラインとを接続するためのものであり、チューブT12、チューブT13b、第6開閉弁V6、チューブT13aから構成される。第6ラインは、第5ラインと同様に一時貯留バッグY2と第1ラインとを接続するためのものであり、チューブT12、チューブT14a、第7開閉弁V7、チューブT14b、チューブT9、第2血液ポンプP2、チューブT10b、第4開閉弁V4、チューブT10aから構成される。第7ラインは、遠心ボウルE1と血小板中間バッグY3とを接続するためのものであり、チューブT5、チューブT15、チューブT16、チューブT17a、第8開閉弁V8、チューブT17bから構成される。
 供血者(ドナー)から全血(血液)を採取するための採取手段である採血針2はドナーチューブT1により、第1血液ポンプP1の第1ポートに接続している。初流血採取バッグY7は、ドナーチューブT1上に設けられた分岐部から初流血採取ライン4により採血針と接続される。初流血採取バッグY7はさらに、採取した初流血を図示しない検査容器に移送するためのサンプリングポート3を備え、サンプリングポート3は、本体部と、針部6と、針部をカバーするカバー部7からなる。また、初流血採取ライン4上にはラインを開閉するためのクレンメ8が設けられている。
 第1血液ポンプP1の第2ポートに接続するチューブT2は、2つのチューブT3a、T13aに分岐され、チューブT3aは、第1開閉弁V1の第1ポートに接続され、第1開閉弁V1の第2ポートはチューブT3bに接続される。チューブT3bは、2つのチューブT4、T10aに分岐され、チューブT4は、採取した血液を複数の血液成分に分離するための遠心分離器である遠心ボウルE1の流入口E1aに接続している。遠心ボウルE1は、遠心ボウル駆動装置14上に配置され、回転駆動される。
 ここで、採血針2と遠心ボウルE1の入口側である流入口E1aとは、第1のライン(ドナーチューブT1、第1血液ポンプP1、チューブT2、チューブT3a、第1開閉弁V1、チューブT3b、チューブT4)により接続されている。
 ここで、ドナーチューブT1には、圧力センサC1が接続している。
 遠心ボウルE1の流出口E1bに接続するチューブT5は、チューブT15、及びチューブT6aに分岐される。チューブT6aは、第2開閉弁V2の第1ポートに接続し、第2開閉弁V2の第2ポートはチューブT6bに接続している。チューブT6bは血漿バッグY1の第2ポートY1bに接続している。
 ここで、遠心ボウルE1の流出口E1bと血漿バッグY1とは、第2ライン(チューブT5、チューブT6a、第2開閉弁V2、チューブT6b)により接続されている。なお、血漿バッグY1は二つあり、図6~図18においては一つに省略して記載している。
 また、血漿バッグY1の出力側である第1ポートY1aは、チューブT8aに接続する。チューブT8aは第3開閉弁V3の第1ポートに接続する。第3開閉弁V3の第2ポートはチューブT8bに接続し、チューブT8bはチューブT9に接続する。チューブT9は、第2血液ポンプP2の第2ポートに接続している。第2血液ポンプP2の第1ポートは、チューブT10bに接続し、チューブT10bは第4開閉弁V4の第2ポートに接続する。第4開閉弁V4の第1ポートはチューブT10aに接続している。
 チューブT10aは、第1ラインを構成するチューブT3b及びチューブT4の中間位置に接続している。すなわち、血漿バッグY1と第1ラインとは、第3ライン(チューブT8a、第3開閉弁V3、チューブT8b、チューブT9、第2血液ポンプP2、チューブT10b、第4開閉弁V4、チューブT10a)により接続されている。これにより、血漿バッグY1は、遠心ボウルE1の入口側または出口側と選択的に連通するように接続されている。
 前記チューブT5から分岐したチューブT15は、さらにチューブT11a、及びチューブT16に分岐される。チューブT11aは、第5開閉弁V5の第1ポートに接続し、第5開閉弁V5の第2ポートはチューブT11bに接続している。チューブT11bは、一時貯留バッグY2の第2ポートY2bに接続している。すなわち、遠心ボウルE1の流出口E1bと一時貯留バッグY2とは、第4ライン(チューブT5、チューブT15、チューブT11a、第5開閉弁V5、チューブT11b)により接続されている。
 一時貯留バッグY2の第1ポートY2aは、チューブT12に接続し、チューブT13bとチューブT14aに分岐する。チューブT13bは、第6開閉弁V6の第1ポートに接続し、第6開閉弁V6の第2ポートはチューブT13aに接続している。チューブT13aは、第1ラインを構成するチューブT2、及びチューブT3aの中間位置に接続している。
 一方、チューブT12から分岐したチューブT14aは、第7開閉弁V7の第1ポートに接続し、第7開閉弁V7の第2ポートはチューブT14bに接続している。チューブT14bはチューブT9、及びチューブT8bの中間位置に接続し、チューブT9は第2血液ポンプP2の第2ポートに接続している。
 第2血液ポンプP2の第1ポートは、チューブT10bに接続し、チューブT10bは第4開閉弁V4の第1ポートに接続している。第4開閉弁V4の第2ポートはチューブT10aに接続している。チューブT10aは第1ラインを構成するチューブT3b、及びチューブT4の中間位置に接続している。すなわち、一時貯留バッグY2と第1ラインとは、第5ライン(チューブT12、チューブT13b、第6開閉弁V6、チューブT13a)、及び第6ライン(チューブT12、チューブT14a、第7開閉弁V7、チューブT14b、チューブT9、第2血液ポンプP2、チューブT10b、第4開閉弁V4、チューブT10a)により接続されている。一時貯留バッグY2は、遠心ボウルE1の入口側または出口側と選択的に連通するように接続されている。
 一方、チューブT15から分岐したチューブT16は、さらに2つのチューブT17a、及びチューブT18aに分岐している。チューブT17aは、第8開閉弁V8の第1ポートに接続し、第8開閉弁V8の第2ポートはチューブT17bに接続している。チューブT17bは血小板中間バッグY3の入力側である第1ポートY3aに接続している。一方、チューブT16から分岐したチューブT18aは、第9開閉弁V9の第1ポートに接続し、第9開閉弁V9の第2ポートはチューブT18bに接続している。チューブT18bはエアバッグY4に接続している。すなわち、遠心ボウルE1の流出口E1bと血小板中間バッグY3とは、第7ライン(チューブT5、チューブT15、チューブT16、チューブT17a、第8開閉弁V8、チューブT17b)により接続されている。これにより、血小板中間バッグY3は、遠心ボウルE1の出口側に連通するように接続されている。
 遠心ボウルE1の流出口E1bと接続するチューブT5には、血小板の濃度を検出するための濁度センサC2、及び圧力センサC3が取り付けられている。濁度センサC2は、チューブT5内を通る血漿が血小板で濁った状態になる度合いを検出している。
 また、遠心ボウルE1が取り付けられている周辺部には、遠心ボウルE1内に形成されるバフィーコート層BC(図3参照)の界面位置を検出するための界面センサC4が取り付けられている。
 血小板中間バッグY3の出力側である第2ポートY3bから出たチューブT19は、2つのチューブT20a、T21に分岐され、チューブT20aは、第10開閉弁V10の第1ポートに接続し、第10開閉弁V10の第2ポートはチューブT20bに接続している。チューブT21は、第3血液ポンプP3の出力側である第1ポートに接続している。第3血液ポンプP3の入力側である第2ポートは、除菌フィルタ9を介して、瓶針10により血小板保存液瓶に接続している。チューブT20bは、白血球除去フィルタ11を介して、血小板バッグY5に接続している。また、血小板バッグY5には、エアバッグY6が接続している。
 一方、ドナーチューブT1の途中には、ACDポンプP4の出力ポートが接続されている。ACDポンプP4の入力ポートは、除菌フィルタ12の出力ポートに接続されている。除菌フィルタ12の入力ポートは瓶針13によりACD貯蔵瓶に接続している。
 ここで、図2に示すように、本実施例の血液成分分離装置に備わる制御部15は、例えばマイクロコンピュータで構成されており、第1血液ポンプP1、第2血液ポンプP2、第3血液ポンプP3、ACDポンプP4、遠心ボウル駆動装置14、圧力センサC1、濁度センサC2、圧力センサC3、界面センサC4、第1開閉弁V1、第2開閉弁V2、第3開閉弁V3、第4開閉弁V4、第5開閉弁V5、第6開閉弁V6、第7開閉弁V7、第8開閉弁V8、第9開閉弁V9、及び第10開閉弁V10、ドナー演算シミュレータ30が電気的に接続されている。
 そして、各センサC1、C2、C3、C4からの検出信号が、それぞれ制御部15に随時入力される。制御部15は、これらの検出信号などに基づき、各ポンプP1、P2、P3、P4の稼働/停止、回転方向(正転/逆転)及び回転数を制御するとともに、必要に応じ、各開閉弁V1、V2、V3、V4、V5、V6、V7、V8、V9、V10の開閉及び遠心ボウル駆動装置14の作動を制御する。
 また、制御部15は、ドナー演算シミュレータ30との間で情報の入出力を行う。ドナー演算シミュレータ30は、供血者より採取した血液のヘマトクリット値と、供血者より採取した血液の血小板濃度から予測血小板回収率(処理される血液中の血小板の数に対して予測される血小板の採取数の割合)を算出する。そして、ドナー演算シミュレータ30は、前記のように算出される予測血小板回収率をもとに、血小板採取操作(供血者から採取した血液を分離して血小板を採取する一連の工程)の推奨サイクル数もしくは推奨処理量を算出する。なお、ドナー演算シミュレータ30は、本発明の「演算部」の一例である。
 チューブの構成材料としては、例えば、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリプロピレン、PETやPBTなどのポリエステル、エチレン-酢酸ビニル共重合体(EVA)、ポリウレタン、ポリエステルエラストマー、などの各種熱可塑性エラストマーが挙げられるが、その中でも特にポリ塩化ビニルが好ましい。ポリ塩化ビニルであれば、十分な可撓性、柔軟性が得られるうえ、取り扱いが容易であり、クレンメ等による閉塞にも適している。
 バッグを構成する材料としては、可塑剤としてDEHPが用いられている軟質のポリ塩化ビニル、ポリオレフィン、エチレン、プロピレン、ブタジエン、イソプレンなどのオレフィンあるいはジオレフィンを重合、共重合した重合体を使用でき、エチレン-酢酸ビニル共重合体(EVA)、EVAと各種熱可塑性エラストマーとのポリマーブレンドなど、これらを各種任意に組み合わせたものが挙げられる。さらに、PET,PBT,PCGTなども用いることが可能である。これらの中でも特にポリ塩化ビニルが好適であるが、血小板PLTを保存する容器には血小板PLTの保存性を向上させるため、ガス透過性に優れたものが好ましく、ポリオレフィンやDnDP可塑化ポリ塩化ビニルなどを用いたり、シートの厚さを薄くしたものを用いるのが好ましい。
 図3に、遠心ボウルE1の構造を示す。中心線より右側が断面図であり、左側が外観図を示している。
 回転しない固定部分である固定部20には、流入口E1a、流出口E1bが形成されている。固定部20には、カバー17、及び下向きに延設された流入管18が連結している。これら固定部分に対して、側壁21、外殻22、内殻23、底板16が回転可能に一体的に保持されている。底板16は、遠心ボウル駆動装置14(図1参照)に吸着等されており、遠心ボウル駆動装置14により回転力が与えられる。図3には、遠心ボウルE1内に流入口E1aから全血が供給され、遠心力により血液成分が分離されている状態を示している。
 すなわち、外殻22と側壁21とで形成される空間では、遠心力により、外側から比重の大きい順に、赤血球層(RBC層)、白血球層(WBC層)、バフィーコート層(BC層)、血小板層(PLT層)、血漿層(PPP層)が形成される。ここで、白血球層と血小板層とは、比重が近いため、分離しにくい。そのため白血球層と血小板層とを含むバフィーコート層が存在する。一般的に、全血の内訳は、血漿PPPが約55%、赤血球RBCが約43.2%、白血球WBCが約1.35%、血小板PLTが約0.45%である。
 遠心ボウルE1では、流入管18の中間点より少し上側に形成された流出通路19が内周部に形成されているため、外殻22と側壁21とで形成される空間において、内周に形成されている血漿層(PPP層)から流出口E1bを通過して、遠心ボウルE1の外へ流出する。
 次に、上記構成を有する血液成分分離装置の作用について説明する。
 まず、採血を開始する前に、ドナー演算シミュレータ30により、血小板採取操作の推奨サイクル数を決定する。本実施例では、ドナー演算シミュレータ30は、供血者より予備採血した血液の血算値から性別に応じた予測血小板回収率を算出し、このように算出した予測血小板回収率をもとに、血小板採取操作の推奨サイクル数を算出する。そして、その後、血液成分分離装置は、以下のように、採血を開始する。なお、ドナー演算シミュレータ30により血小板採取操作の推奨サイクル数を算出する方法の詳細については、後述する。
 図6は、採血開始工程(第1工程)を示す図である。ポンプのうち、白抜きの表示は、稼働している状態を示し、黒塗りの表示は停止している状態を示している。また、開閉弁のうち、白抜きの表示は、開いている状態を示し、黒塗りの表示は閉じている状態を示している。
 始めに、図4のプライミング工程(S1)を行う。ACDポンプP4、第1血液ポンプP1が駆動され、血液の凝固を防止するためのACD液が、開かれている第1開閉弁V1を介して、遠心ボウルE1に供給され、遠心ボウルE1、第1血液ポンプP1等のプライミング工程(S1)を行う。プライミングとは、血液を流したときに凝固しないように、予め、ドナーチューブT1、第1血液ポンプP1、及び遠心ボウルE1内等の血液に接触する部分にACD液を付着させる工程である。プライミング工程から遠心ボウル駆動装置14により、遠心ボウルE1は所定の回転数で回転している。
 プライミング工程(S1)が終わると、採血針2を供血者に穿刺し、全血の採取を開始する(S2)。まず、採血針2を供血者に穿刺した後、初流血採取回路中の初流血採取バッグY7(図1参照)に初流血を採取する。このときドナーチューブT1上に設けられた分岐部では、最初は採血針2と初流血採取ライン4(図1参照)とを接続するように構成されている。初流血バッグに所定量の血液を貯留したならば、クレンメ8(図1参照)にて初流血採取ライン4を閉塞し、ドナーチューブT1の第1血液ポンプP1側の流路を確保する。
 このときも、ACDポンプP4が駆動され、ACD液がドナーチューブT1に供給され、全血と混合されて遠心ボウルE1に全血が供給される。回転している遠心ボウルE1に全血が供給されると、遠心ボウルE1の内周部に位置する流出通路19(図3参照)より、血漿PPPに押されて、図6に示すように、遠心ボウルE1内の空気(点線で示す。)が流れ出る。流れ出た空気は、開かれている第9開閉弁V9を介して、エアバッグY4に貯えられる。
 遠心ボウルE1では、図3に示すように、供給された全血にボウル内で遠心力を付与することにより、全血が各成分に分離される。
 次に、濁度センサC2が、チューブ内を流れる流体が、空気から血漿PPPに変化したことを検出すると、図7に示すように、第9開閉弁V9を閉じて、第2開閉弁V2を開いて、遠心ボウルE1からあふれ出た血漿PPPを血漿バッグY1に貯える。これが遠心分離工程(S3)である。図3に示すように、遠心ボウルE1から始めのうち出てくるのは、血漿PPPのみである。
 次に、血漿バッグY1に所定量の血漿PPP(本実施例では、30ml)が貯えられたら(S4:YES)、図8に示すように、第3開閉弁V3を開き、第2血液ポンプP2を駆動し、さらに第4開閉弁V4を開いて、供血者から全血を採取すると共に、血漿バッグY1に貯えられている血漿PPPを全血に混ぜて、遠心ボウルE1に供給する。これが第3工程(クリティカルフロー工程)(S5)である。これが、図19に示すクリティカルフロー期間TEである。なお、クリティカルフロー工程は、本発明の「循環フロー工程」の一例である。
 次に、図3におけるバフィーコート層(BC層)と赤血球層(RBC層)との界面が所定の位置に来たことを、界面センサC4が検出すると(S6:YES)、図9に示すように、第1開閉弁V1を閉じて、第2開閉弁V2、第3開閉弁V3、第4開閉弁V4を開いたまま、及び第2血液ポンプP2を駆動したままで、血漿バッグY1内の血漿PPPは第3開閉弁V3、第2血液ポンプP2、第4開閉弁V4、遠心ボウルE1、第2開閉弁V2を通って、再び血漿バッグY1に戻す循環・加速工程のうちの循環工程(第4工程)を行う。図19に示す循環期間TFである。
 同時に、現在のサイクルが最終サイクルか否かを判断し、最後サイクルでない場合(S7:NO)には、第6開閉弁V6を開き、第1血液ポンプP1を駆動した状態を保ち、一時貯留バッグY2に、採取した全血を貯える(S11)。換言すると、一時貯留バッグY2へ採取した全血を貯えることで全血の採取を継続する。全血の採取の継続は、循環・加速工程が終了するまで継続するか、あるいはあらかじめ規定された時間、採取量に達するまで行う。最終サイクルの場合には(S7:YES)、第1血液ポンプP1を停止して、採血を停止する(S8)。
 本実施例の循環・加速工程のうちの循環工程では、クリティカルフロー工程よりも循環速度を速くして、100ml/分程度の速度で30~40秒程度、血漿PPPを遠心ボウルE1内を通過させて循環させる。これにより、図3のバフィーコート層BCにおける粒状物濃度の低減が起き、血小板PLTと比較して、より比重の大きい白血球WBCがバフィーコート層(BC層)の外側に沈積することになる。すなわち、血小板層(PLT層)と白血球層(WBC層)とをより明確に分離できるのである。
 次に、循環工程を一定時間行った後、図10に示す循環・加速工程のうちの加速工程(第5工程)に入る。加速工程では、第2血液ポンプP2の回転数を制御することにより、徐々に回転数を高めて血漿PPPの流量を、順次増分する。本実施例では、100ml/分から始めて流量を増加させ、血小板PLTが流出してくるまで血漿PPPの流量を加速する。図19に示す加速期間TGである。図4では、循環工程と加速工程とを合わせて、循環・加速工程(S9、S12)として表現している。
 この加速工程により、図3において、血小板PLTは、上昇する方向に力を得て、流出通路19から遠心ボウルE1の外部へと放出される。この加速によっては、比重の大きい白血球層(WBC層)や赤血球層(RBC層)は、遠心力のほうが強いため、流出通路19から出てゆくことはない。
 血小板PLT、白血球WBC、及び赤血球RBCの流出する濃度変化を図20に示す。横軸は、血小板PLTの採取時の時間経過であり、縦軸は流出する血球成分の濃度である。始め血小板PLTの流出(流出期間TA)があり、血小板PLTの流出量は徐々に増加し、最大流量を過ぎると徐々に減少する。白血球も同様に、流出量は徐々に増加し、最大流量を過ぎると徐々に減少する。
 ステップS9、ステップS12の詳細を、図5に血液成分分離装置の作用を示すフローチャートとして示す。
 血小板の流出期間TAは、始めに低濃度の血小板液PCが流出する低濃度期間TBがあり、続いて高濃度の血小板液PCが流出する高濃度期間TCがあり、その後、再び低濃度の血小板液PCが流出する低濃度期間TDに分割できる。ここで、高濃度の血小板液PCを得るためには、低濃度の血小板液PCは不要である。
 本実施例では、加速工程において、図10に示すように、濁度センサC2が血小板PLTを検出した後、すなわち、低濃度期間TBであると判断すると(S21:YES)、第2開閉弁V2を閉じて、第5開閉弁V5を開いて、図20の低濃度期間TBの血小板液PCを一時貯留バッグY2に貯えている(S22)。このとき、一時貯留バッグY2には、全血も流入され貯えられているので、低濃度の血小板液PCは、全血と混ざった状態で一時貯留バッグY2に貯えられる。このときも、第1血液ポンプP1は駆動の状態が保持され、供血者から採取した全血は、一時貯留バッグY2に貯えられ続ける。
 ここで、一時貯留バッグY2は、全血バッグと同時にバフィーコートバッグとしても使用されている。
 次に、濁度センサC2が、血小板液PCが高濃度であることを検出すると、高濃度期間TCであると判断して(S23:YES)、図11に示すように、第5開閉弁V5を閉じて、第8開閉弁V8を開く。これにより、高濃度期間TCのときに流出する高濃度の血小板液PCを血小板中間バッグY3に貯えることができる(S24)。
 最後のサイクルでないときは(S7:NO)、このときも、第1血液ポンプP1は駆動した状態が保持され、供血者から採取した全血は、第6開閉弁V6を介して一時貯留バッグY2に貯えられ続ける。
 次に、血小板中間バッグY3に高濃度の血小板液PCが予め定められた所定量だけ貯えられると、低濃度期間TDであると判断して(S25:YES)、図12に示すように、血小板中間バッグY3に低濃度の血小板液PCを入れないために第8開閉弁V8を閉じて、第5開閉弁V5を開く。これにより、低濃度期間TDのときに流出する低濃度の血小板液PCを、再び一時貯留バッグY2に貯えることができる(S26)。
 最後のサイクルでないときは(S7:NO)、このときも、第1血液ポンプP1は駆動した状態が保持され、供血者から採取した全血は、第6開閉弁V6を介して一時貯留バッグY2に貯えられ続ける。
 ここで、血小板中間バッグY3に蓄える高濃度の血小板液PCの量は、遠心ボウルE1から流出する血小板液PCの流量に基づき第8開閉弁V8の開弁時間を制御することにより、簡単に調整することができる。
 次に、所定量の血小板液PCの採取が終了、言い換えると、第8開閉弁V8を開いてから所定時間が経過すると、低濃度期間TDが終了したと判断して(S27:YES)、血小板液PCの流出が終了したと判断して、図13に示す返血工程に移行する(S10、S13)。
 すなわち、遠心ボウルE1の回転を停止し、第6開閉弁V6、及び第5開閉弁V5を閉じ、第1開閉弁V1、及び第9開閉弁V9を開いて、第1血液ポンプP1を逆回転させて、遠心ボウルE1内に残されている血液を供血者に返す返血を開始する。ここで、第1血液ポンプP1の逆転スピードは、正転スピードの倍速で駆動させ、返血時間を短縮している。また、必要に応じて、第2血液ポンプP2を駆動して、採りすぎて血漿バッグY1に貯えられている血漿PPPを返血する。
 返血が終了したら、最後のサイクルの場合は(S7:YES)、全工程を終了する。最後のサイクルでない場合は(S7:NO)、図14に示すように遠心ボウルE1の回転を開始し、第1血液ポンプP1を再び正転回転させて、採血を再開する。遠心ボウルE1の内周部に位置する流出通路19より、血漿PPPに押されて、遠心ボウルE1内の空気(点線で示す。)が流れ出る。流れ出た空気は、開かれている第9開閉弁V9を介して、エアバッグY4に貯えられる。このとき、一時貯留バッグY2に貯えられている血液も、第7開閉弁V7を開き、第2血液ポンプP2を駆動して、第4開閉弁V4を通って同時に遠心ボウルE1に流入させる(S14)。このとき、血漿バッグY1に流体が流れ入れないように第3開閉弁V3を閉じる。
 次に、濁度センサC2が、チューブ内を流れる流体が、空気から血漿PPPに変化したことを検出すると、図15に示すように、第9開閉弁V9を閉じて、第2開閉弁V2を開いて、遠心ボウルE1からあふれ出た血漿PPPを血漿バッグY1に貯える。
 次に、一時貯留バッグY2の血液が全て遠心ボウルE1に戻ったことを確認し、血漿バッグY1に所定量の血漿PPPが貯えられたことを確認すると(S4:YES)、最後のサイクルでない場合は(S7:NO)、図16(図8と同じ状態)に示すように、第2血液ポンプP2を駆動した状態が保持され、第7開閉弁V7を閉じ、血漿バッグY1に貯えられている血漿PPPを全血に混ぜて、遠心ボウルE1に供給するために第3開閉弁V3を開いて、血漿PPPのクリティカルフロー工程を開始する。以下、図9の工程(循環工程)に続く。
 このサイクルは、ドナー演算シミュレータ30により算出された血小板採取操作の推奨サイクル数に基づき、所定量の血小板PLTが確保されるまで、通常3サイクルか4サイクル行われる。例えば、ドナー演算シミュレータ30により血小板採取操作の推奨サイクル数が3サイクルと算出されたので、3サイクルで終了するときは、第2サイクルの循環期間TF2、及び加速期間TG2のときに、並行して採血を行い、一時貯留バッグY2に全血を貯留する。そして、第3サイクルの採血時に、一時貯留バッグY2内の血液を全血に混ぜて、遠心ボウルE1に供給する。そして、第3サイクルのときには、循環期間TF3、及び加速期間TG3のときに、採血を行わない。第4サイクルがないからである。
 3サイクルで終了する場合には、第3サイクルの返血が終了すれば、供血者から採血針2を外して、採血は終了する。
 その後、図17に示すように、第10開閉弁V10を開いて、血小板中間バッグY3内に貯蔵されている高濃度の血小板液PC及び血小板保存液を、白血球除去フィルタ11を介して、血小板バッグY5に注入する。このとき、血小板バッグY5内に存在した空気は、エアバッグY6に移動する。
 血小板中間バッグY3内に貯蔵されていた高濃度の血小板液PCが全て出たことを確認した後、図18に示すように、第3血液ポンプP3を駆動して、血小板保存液瓶に接続している瓶針10により、血小板保存液瓶に残っている血小板保存液を、除菌フィルタ9及び白血球除去フィルタ11を介して、血小板バッグY5に注入する。これにより、白血球除去フィルタ11に残存している濾過処理済みの高濃度の血小板液PCを回収する。その後、血小板バッグY5の2本のチューブを密閉する。これにより、高濃度の血小板液PCが貯えられた血小板バッグY5が完成する。
 ここで、採血を開始する前に行うドナー演算シミュレータ30による血小板採取操作の推奨サイクル数の算出方法について説明する。
 図21に示すように、製剤血小板回収率(処理される血液中の血小板の数に対して、製剤として実際に血小板バッグY5内に採取される血小板の数の割合)は、性別によって変化する。すなわち、製剤血小板回収率は、同じサイクルドナー(血小板採取操作のサイクル数が同じ供血者)同士であっても、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも小さくなる傾向にある。
 そして、血小板採取操作のサイクル数(血液の処理量)が増えるに従い、製剤血小板回収率における男女差異(所定値α)は大きくなる傾向にある。例えば、図21に示すように、所定値αについて、2サイクルドナーは2%、3サイクルドナーは4%、4サイクルドナーは5%であり、血小板採取操作のサイクル数が増えるに従い、所定値αは大きくなる。
 そこで、本実施例では、ドナー演算シミュレータ30は、性別に応じて予測血小板回収率の値を変化させる。すなわち、ドナー演算シミュレータ30は、任意の血算値(予備採血した血液のヘマトクリット値と血小板濃度)から算出される予測血小板回収率を、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも所定値α小さくする。例えば、ドナー演算シミュレータ30は、任意の血算値に対する予測血小板回収率を、供血者が男性の場合にはX%と算出する一方で、供血者が女性の場合には(X-α)%と算出する。なお、Xとαは、0以上の任意の数である。
 そして、ドナー演算シミュレータ30は、このように性別に応じて算出された予測血小板回収率をもとに、血小板採取操作の推奨サイクル数を算出する。これにより、血算値が同一である男女において、血小板採取操作の推奨サイクル数もしくは推奨処理量は変化し得る。
 ここで、具体的な事例を挙げて説明する。例えば、供血者の血算値について、HCT値(ヘマトクリット値)は42%、PLT値(血小板濃度)は23×104個/μLであるとする。そして、目標の血小板の単位数は、10単位(1.95×1011個~2.94×1011個)であるとする。
 このとき、従来は、性別に関わらず予測血小板回収率は例えば78%とされ、そして、この予測血小板回収率をもとに、血小板採取操作の推奨サイクル数が決定され、かつ、予測PLT数(予測される血小板の採取数)が算出されていた。そして、これにより、例えば、図22に示すように、供血者が男性の場合であっても供血者が女性の場合であっても、血小板採取操作の推奨サイクル数は3回と決定され、予測PLT数は目標の単位数(10単位)の下限値近くである2.04×1011個(図中、「2.04×10e11個」と表記)と算出されていた。
 しかしながら、図22に示すように、実際に血小板採取操作のサイクル数を3回として処理を行った際に、期待製剤PLT数(血小板バッグY5に実際に採取される血小板の数)は、供血者が男性の場合には2.04×1011個となったが、供血者が女性の場合には1.93×1011個(図中、「1.93×10e11個」と表記)となってしまった。すなわち、血小板採取操作の推奨サイクル数に従って血液が処理されたにも関わらず、供血者が男性の場合には10単位の血小板を回収できた一方で、供血者が女性の場合には10単位の血小板を回収できなかった。
 このように、特に予測PLT数が目標の単位数の下限値近くである場合には、男女間の循環血液量の差や血流状況の差の影響により、供血者が女性の場合には単位割れが生じてしまうおそれがあった。
 これに対し、本実施例では、前記の血算値の例のもと、ドナー演算シミュレータ30は、予測血小板回収率を供血者が男性の場合には例えば78%と算出する一方で、供血者が女性の場合には例えば74%と算出する。そして、ドナー演算シミュレータ30は、前記の予測血小板回収率をもとに、血小板採取操作の推奨サイクル数と予測PLT数を算出する。
 すると、図23に示すように、ドナー演算シミュレータ30は、供血者が男性の場合には、推奨サイクル数を3回、予測PLT数を2.04×1011個と算出する。その一方、ドナー演算シミュレータ30は、供血者が女性の場合には、推奨サイクル数を3回とすると予測PLT数は1.93×1011個となって単位割れが生じてしまうと予測されるので、推奨サイクル数を4回、予測PLT数を2.50×1011個と算出する。
 そして、図23に示すように、供血者が女性の場合に、実際に血小板採取操作のサイクル数を4回として処理を行った際に、期待製剤PLT数は、2.50×1011個となった。すなわち、供血者が女性の場合にも10単位の血小板を回収できた。
 このように、本実施例では、男女間の循環血液量の差や血流状況の差の影響を受けることなく、供血者が男性の場合であっても供血者が女性の場合であっても単位割れが生じない。
 なお、所定値αの範囲は、例えば、図24のように設定することが考えられる。図24に示す例においては、1サイクルドナーから5サイクルドナーについて、所定値αの範囲が設定されている。そして、サイクル数が多くなって血液の処理量が多くなるほど、所定値αの上限値が大きくなっている。ここで、図24において、例えば「3サイクルドナー」とは、仮に供血者が男性の場合には血小板採取操作の推奨サイクル数が3サイクルと算出される場合である。そして、このとき、供血者が女性の場合には、供血者が男性の場合の予測血小板回収率から0~6.0%を減算した値を予測血小板回収率とする。
 以上が、ドナー演算シミュレータ30による推奨サイクル数の算出方法についての説明である。
 以上、詳細に説明したように本実施例の血液成分分離装置は、供血者より採取した血液のヘマトクリット値と血小板濃度とから予測血小板回収率を算出し、算出した予測血小板回収率をもとに、目標の単位数の血小板を採取するために推奨される推奨サイクル数(血液の推奨処理量)を算出するドナー演算シミュレータ30を有する。そして、ドナー演算シミュレータ30は、任意のヘマトクリット値と任意の血小板濃度とから算出される予測血小板回収率を、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも所定値α小さく算出する。
 これにより、予測血小板回収率を、供血者の性別に応じて正確に算出できる。そのため、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 また、本実施例では、予測血小板回収率が小さくなって推奨サイクル数が多くなるに従い、所定値αは大きくなる。これにより、サイクル数や供血者の性別に関わらず、確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 また、本実施例の血液成分分離装置は、a)前記血液を遠心分離器に導入し、複数の血液成分に分離する遠心分離工程と、b)分離された血液成分のうち血漿を前記遠心分離器内に前記血液と共に導入する循環フロー工程と、c)前記循環フロー工程の後、前記血液の前記遠心分離器への供給を停止して、前記遠心分離器に血漿のみを導入し、所定時間さらに血漿を循環させた後、循環速度を加速することにより血小板を前記遠心分離器により分離し、採取する循環・加速工程と、d)前記循環・加速工程の後、採取しなかった血液成分について前記供血者へ返血する返血工程と、を行い、前記a)~d)の工程を1つのサイクルとして行う。
 これにより、血小板を他の血液成分から精度良く分離することができる。そして、高濃度の血小板の採取タイミングの最適化が図られているため、より多くの血小板を効率良く採取することができる。
<実施例2>
 前記のように性別に応じて予測血小板回収率の値を変える手法は、血液成分分離装置の他の態様であるベルト方式の連続型遠心機50にも適用できる。
 図25に示すように、連続型遠心機50は、環状のローター52、ローター52に連結されるモータ54、ローター52の内側にてローター52と一体的に配置される環状(環状のベルト形状)の分離容器56、ローター52の内側にてローター52に取り付けられる流体チャンバ58、制御部60、ドナー演算シミュレータ62などを有する。
 このような構成の連続型遠心機50においては、まず、分離容器56と流体チャンバ58に、供血者より採取した血液が充填される。具体的には、図26に示すように、血液は、流入ポンプ64により流入管66を通って分離容器56内に流入される。そして、収集ポンプ68を作動させると、血液は、図26に示す分離容器56において、その反時計方向(左回り方向)に、入口部分70から出口部分72へ向かって流動する。なお、入口部分70と出口部分72の間は、壁73により遮断されている。
 さらに、モータ54を作動させてローター52を回転させることにより、分離容器56と流体チャンバ58を回転軸線A-A(図1参照)を中心に回転させる。すると、図26に示すように、トラップダム74の上流側の位置にて捕捉される血液が、遠心分離力を受けて成分分離される。これにより、血液の各成分は、密度の大きい順、即ち、赤血球、白血球、血小板、血漿の順に層化される。すなわち、図26に示すように、赤血球RBCの層が分離容器56の外壁に沿って形成され、血漿PPPの層が分離容器56の内壁に沿って形成される。そして、赤血球RBCの層と血漿PPPの層の間に、血小板PLT及び白血球WBCの層が形成される。
 そして、出口部分72において、血漿PPPは、第1通路76を通ってバリヤ78の下流側(図26の右側)の位置に流れ、収集ライン80を通って除去される。また、赤血球RBCは、第2通路82を通ってバリヤ78の下流側の位置に流れ、収集ライン84を通って除去される。
 一方、出口部分72において、血小板PLTと白血球WBCは、バリヤ78の上流側(図26の左側)の位置に留まる。そして、留まった血小板PLTは、白血球WBCと共に、収集ライン86を通って流体チャンバ58内に流入する。
 そして、血小板PLTと白血球WBCは、流体チャンバ58内に堆積する。このとき、血小板PLTと白血球WBCの沈降速度の相違から、血小板PLTは白血球WBCよりも流体チャンバ58の入口88から遠い位置に堆積する。そして、このようにして流体チャンバ58内に、血小板PLTの堆積層が形成される。なお、白血球WBCは、流体チャンバ58内にて、入口88と血小板PLTの堆積層との間に堆積する。
 このように堆積した血小板PLTは、流体チャンバ58から回収されて、所定の容器に収集されて保存される。このようにして、連続型遠心機50において、血液から血小板PLTが採取される。
 そこで、本実施例では、このような連続型遠心機50においても、前記と同様に、ドナー演算シミュレータ62は、任意の血算値から算出される予測血小板回収率を、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも所定値α小さくする。そして、ドナー演算シミュレータ62は、このように算出された性別に応じた予測血小板回収率をもとに、血液の推奨処理量(目標の単位数の血小板を採取するために推奨される血液の処理量)を算出する。
 これにより、血算値が同一である男女において、血液の推奨処理量は変化する。具体的には、ドナー演算シミュレータ62は、血算値が同一である男女において、血液の推奨処理量を、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも多くする。例えば、供血者が男性の場合の血液の推奨処理量が1500mlとされる場合には、供血者が女性の場合の血液の推奨処理量は1580mlとされる。
 これにより、男女間の循環血液量の差や血流状況の差の影響を受けることなく、供血者が男性の場合であっても供血者が女性の場合であっても単位割れが生じない。なお、実施例1と同様に、予測血小板回収率が小さくなって血液の推奨処理量が多くなるほど、所定値αは大きくなる。
 以上、詳細に説明したように本実施例の血液成分分離装置は、供血者より採取した血液のヘマトクリット値と血小板濃度とから予測血小板回収率を算出し、算出した予測血小板回収率をもとに、目標の単位数の血小板を採取するために推奨される血液の推奨処理量を算出するドナー演算シミュレータ62を有する。そして、ドナー演算シミュレータ62は、任意のヘマトクリット値と任意の血小板濃度とから算出される予測血小板回収率を、供血者が女性の場合には供血者が男性の場合よりも所定値α小さく算出する。
 これにより、予測血小板回収率を、供血者の性別に応じて正確に算出できる。そのため、供血者の性別に関わらず確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 また、本実施例では、予測血小板回収率が小さくなって血液の推奨処理量が多くなるに従い、所定値αは大きくなる。これにより、血液の処理量や供血者の性別に関わらず、確実に目標の単位数の血小板を採取できる。
 また、本実施例の血液成分分離装置は、血液を環状の分離容器56内に供給しながら分離容器56を回転軸線A-Aを中心に回転させることにより、分離容器56内の血液を複数の血液成分に分離させ、分離させた複数の血液成分から血小板を採取する。これにより、簡易な装置構成により血小板を他の血液成分から精度良く分離することができる。
 なお、上記した実施の形態は単なる例示にすぎず、本発明を何ら限定するものではなく、その要旨を逸脱しない範囲内で種々の改良、変形が可能であることはもちろんである。上記した実施の形態では、一時貯留バッグY2で、バフィーコートバッグと全血バッグとを兼用させているが、バフィーコートバッグと全血バッグとを、別々なバッグして並列に設けても良い。
1  血液成分分離回路
15 制御部
E1 遠心ボウル
Y1 血漿バッグ(第1の容器)
Y2 一時貯留バッグ(第2の容器)
Y3 血小板中間バッグ(第3の容器)
Y4 エアバッグ
Y5 血小板バッグ
Y6 エアバッグ
C2 濁度センサ
C4 界面センサ
P1 第1血液ポンプ
P2 第2血液ポンプ
P3 第3血液ポンプ
V1 第1開閉弁
V2 第2開閉弁
V3 第3開閉弁
V4 第4開閉弁
V5 第5開閉弁
V6 第6開閉弁
V7 第7開閉弁
V8 第8開閉弁
V9 第9開閉弁
V10 第10開閉弁
T1~21 チューブ
PLT 血小板
PC 血小板液
PPP 血漿
RBC 赤血球
WBC 白血球
30 ドナー演算シミュレータ
50 連続型遠心機
52 ローター
54 モータ
56 分離容器
58 流体チャンバ
62 ドナー演算シミュレータ

Claims (4)

  1.  供血者より採取した血液から複数の血液成分を分離して血小板を採取する血液成分分離装置において、
     前記血液のヘマトクリット値と前記血液の血小板濃度とから予測血小板回収率を算出し、算出した前記予測血小板回収率をもとに、目標の単位数の血小板を採取するために推奨される前記血液の推奨処理量を算出する演算部を有し、
     前記演算部は、任意の前記ヘマトクリット値と任意の前記血小板濃度とから算出される前記予測血小板回収率を、前記供血者が女性の場合には前記供血者が男性の場合よりも所定値α小さくすること、
     を特徴とする血液成分分離装置。   
  2.  請求項1の血液成分分離装置において、
     前記血液の推奨処理量が多くなるに従い、前記所定値αは大きくなること、
     を特徴とする血液成分分離装置。
  3.  請求項1または2の血液成分分離装置において、
     a)前記血液を遠心分離器に導入し、複数の血液成分に分離する遠心分離工程と、
     b)分離された血液成分のうち血漿を前記遠心分離器内に前記血液と共に導入する循環フロー工程と、
     c)前記循環フロー工程の後、前記血液の前記遠心分離器への供給を停止して、前記遠心分離器に血漿のみを導入し、所定時間さらに血漿を循環させた後、循環速度を加速することにより血小板を前記遠心分離器により分離し、採取する循環・加速工程と、
     d)前記循環・加速工程の後、採取しなかった血液成分について前記供血者へ返血する返血工程と、を行い、
     前記a)~d)の工程を1つのサイクルとして行うものであり、
     前記演算部は、前記血液の推奨処理量として推奨サイクル数を算出すること、
     を特徴とする血液成分分離装置。
  4.  請求項1または2の血液成分分離装置において、
     前記血液を環状の分離容器内に供給しながら前記分離容器を軸中心に回転させることにより、前記分離容器内の前記血液を複数の血液成分に分離させ、分離させた前記複数の血液成分から血小板を採取すること、
     を特徴とする血液成分分離装置。
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