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WO2010027022A1 - Ｌ－アミノ酸生産菌及びｌ－アミノ酸の製造法 - Google Patents

Ｌ－アミノ酸生産菌及びｌ－アミノ酸の製造法 Download PDF

Info

Publication number
WO2010027022A1
WO2010027022A1 PCT/JP2009/065426 JP2009065426W WO2010027022A1 WO 2010027022 A1 WO2010027022 A1 WO 2010027022A1 JP 2009065426 W JP2009065426 W JP 2009065426W WO 2010027022 A1 WO2010027022 A1 WO 2010027022A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
gene
amino acid
strain
seq
ydci
Prior art date
Application number
PCT/JP2009/065426
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
西尾　陽介
臼田　佳弘
Original Assignee
味の素株式会社
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 味の素株式会社 filed Critical 味の素株式会社
Priority to JP2010527817A priority Critical patent/JP5488467B2/ja
Priority to EP09811547.0A priority patent/EP2343371B1/en
Publication of WO2010027022A1 publication Critical patent/WO2010027022A1/ja
Priority to US13/037,772 priority patent/US8192963B2/en

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/08—Lysine; Diaminopimelic acid; Threonine; Valine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/10—Citrulline; Arginine; Ornithine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/14—Glutamic acid; Glutamine

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine using a microorganism.
  • L-glutamic acid and L-arginine are industrially useful L-amino acids as seasonings.
  • L-threonine is useful as a feed amino acid.
  • L-amino acids are industrially produced by fermentation methods using various microorganisms.
  • L-glutamic acid is mainly produced by fermentation using a so-called coryneform bacterium belonging to the genus Brevibacterium, Corynebacterium, and Microbacterium, or L-glutamic acid-producing bacteria or mutants thereof (for example, refer nonpatent literature 1).
  • Examples of the method for producing L-glutamic acid by fermentation using other microorganisms include microorganisms such as Bacillus, Streptomyces, and Penicillium (see, for example, Patent Document 1), Pseudomonas, Arthrobacter, Serratia, Microorganisms such as Candida (see, for example, Patent Document 2), microorganisms such as Bacillus, Pseudomonas, Serratia, Aerobacter Aerogenes (currently Enterobacter Aerogenes) (see, for example, Patent Document 3), Escherichia coli A method using a mutant strain (for example, see Patent Document 1) or the like is known.
  • a method for producing L-glutamic acid using a microorganism belonging to the genus Klebsiella, Erwinia, Pantoea, or Enterobacter is also disclosed (see, for example, Patent Documents 2 to 4).
  • a method using a wild-type microorganism wild strain
  • a method using an auxotrophic strain derived from a wild strain a wild strain
  • a method using metabolic control mutants derived from various drug-resistant mutants There are a method using strains having properties of both auxotrophic strains and metabolic control mutants.
  • Patent Documents 5 and 6 enhancing the expression of a gene encoding an L-amino acid biosynthesis system enzyme
  • Patent Document 7 enhancing the inflow of a carbon source into the L-amino acid biosynthesis system
  • Non-patent Documents 5 and 6 The protein YdcI found in enteric bacteria such as Escherichia coli is predicted to be a LysR-type transcription factor from sequence analysis and the like.
  • YdcI is encoded by the ydcI gene (Non-patent Document 7).
  • Patent Document 8 There have been reports on the production of L-lysine, L-threonine and L-tryptophan using bacteria with enhanced ydcI gene.
  • Patent Document 8 the effect of the ydcI gene-amplified strain on L-threonine is reported. Has not been demonstrated.
  • the present invention provides a bacterium belonging to the family Enterobacteriaceae that can efficiently produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine, and using the bacterium, the L- It is an object to provide a method for efficiently producing amino acids.
  • the present inventors have modified bacteria so that the expression of the ydcI gene encoding a protein that is predicted to be a LysR type transcription factor is reduced.
  • the productivity of L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine was improved, and the present invention was completed.
  • the present invention is as follows. (1) Enterobacteria having an ability to produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine and modified so that the activity of the protein encoded by the ydcI gene is weakened Bacteria belonging to the family. (2) The bacterium, wherein the activity of the protein encoded by the ydcI gene is attenuated by decreasing the expression level of the ydcI gene or destroying the ydcI gene.
  • the protein encoded by the ydcI gene has the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, 12, or 14, or one or several amino acids in SEQ ID NO: 2, 12 or 14 are substituted, deleted, inserted or The bacterium as described above, which is a protein having an added amino acid sequence and having DNA binding activity.
  • ydcI gene is the DNA described in (a) or (b) below: (A) DNA comprising the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 301-1221, SEQ ID NO: 11 301-1230 or SEQ ID NO: 13 301-1218, (B) hybridizing under stringent conditions with a nucleotide sequence shown in 301-1221 of SEQ ID NO: 1, 301-1230 of SEQ ID NO: 11 or 301-1218 of SEQ ID NO: 13 or a probe that can be prepared from the nucleotide sequence; And a DNA encoding a protein having DNA binding activity.
  • the bacterium as described above which is an Escherichia bacterium, an Enterobacter bacterium, or a Pantoea bacterium.
  • Any one of the above bacteria is cultured in a medium, and an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine is produced and accumulated in the medium or in the cell body, and the medium or cell body
  • the bacterium of the present invention has the ability to produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine, and has the activity of a protein encoded by the ydcI gene. It is a bacterium belonging to the family Enterobacteriaceae that has been modified to weaken.
  • the ability to produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine means that when the bacterium of the present invention is cultured in a medium, the L -Ability to produce and accumulate amino acids to the extent that they can be recovered in the medium or from the cells.
  • the bacterium of the present invention may have the ability to produce one of L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine, or may have the ability to produce two or more.
  • the bacterium having the L-amino acid-producing ability may be originally a bacterium having the L-amino acid-producing ability, but the following bacteria can be obtained by using a mutation method or recombinant DNA technology. It may be modified so that it has the ability to produce the L-amino acid.
  • L-amino acid-producing ability a method for imparting L-amino acid producing ability selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine to bacteria and the present invention can be used.
  • Examples of the bacterium imparted with the ability to produce the L-amino acid are not limited thereto.
  • NCBI National Center for Biotechnology Information
  • the parent strain of the genus Escherichia used for obtaining the genus Escherichia of the present invention is not particularly limited, but specifically, Neidhardt et al. (Backmann, B. J. 1996. Derivations and Genotypes of some mutant derivatives of Escherichia coli K-12, p. 2460-2488. Table 1.
  • Neidhardt ed.
  • Escherichia coli and Salmonella Cellular and Molecular Biology / Second Edition American Society for Microbiology Press, Washington, DC Things are available.
  • Escherichia coli is mentioned.
  • Specific examples of Escherichia coli include Escherichia coli W3110 (ATCC 27325) and Escherichia coli MG1655 (ATCC 47076) derived from the prototype wild type K12 strain.
  • Enterobacter bacteria examples include Enterobacter agglomerans, Enterobacter aerogenes, and the like.
  • Enterobacter agglomerans has been reclassified as Pantoea agglomerans, Pantoea ananatis, or Pantoea astewartii by 16S rRNA sequencing. There is.
  • any substance belonging to the genus Enterobacter or Pantoea may be used as long as it is classified into the family Enterobacteriaceae.
  • Pantoea bacteria, Erbinia bacteria, Enterobacter bacteria are bacteria classified as ⁇ -proteobacteria, and are taxonomically closely related (J Gen Appl Microbiol 1997 Dec; 43 (6) 355-361, International Journal of Systematic Bacteriology, Oct. 1997, p1061-1067).
  • some bacteria belonging to the genus Enterobacter have been reclassified as Pantoea agglomerans or Pantoea dispersa by international DNA-DNA hybridization experiments (International ⁇ ⁇ Journal of Systematic) Bacteriology, July 1989; 39 (3) .p.337-345).
  • Some bacteria belonging to the genus Erbinia have been reclassified as Pantoea ananas and Pantoea Stuarti (International Journal of Systematic Bacteriology, Jan 1993; 43 (1), p.162-173 reference).
  • Enterobacter bacterium specifically, a strain exemplified in European Patent Application Publication No. 952221 can be used.
  • a representative strain of the genus Enterobacter is Enterobacter agglomerans ATCC12287.
  • Pantoea citrea As representative strains of the genus Pantoea, Pantoea ananatis, Pantoea stewartii, Pantoea agglomerans, Pantoea citrea are listed. Specifically, the following strains are mentioned.
  • Pantoea Ananatis AJ13355 (FERM BP-6614) (European Patent Application Publication No. 0952221) Pantoea Ananatis AJ13356 (FERM BP-6615) (European Patent Application Publication No. 0952221) Pantoea Ananatis AJ13601 (FERM BP-7207) (European Patent Application Publication No. 0952221)
  • These strains were identified as Enterobacter agglomerans when they were isolated, and deposited as Enterobacter agglomerans, but as described above, they have been reclassified as Pantoea Ananatis by 16S rRNA sequence analysis, etc. .
  • Examples of the genus Erwinia include Erbinia amylobola and Erwinia carotobola, and examples of the Klebsiella bacterium include Klebsiella planticola. Specifically, the following strains are mentioned.
  • auxotrophic mutants acquisition of auxotrophic mutants, analog resistant strains or metabolic control mutants, creation of recombinant strains with enhanced expression of L-amino acid biosynthetic enzymes, etc.
  • methods that have been adopted for breeding coryneform bacteria or bacteria belonging to the genus Escherichia can be applied (see Amino Acid Fermentation, Society Publishing Center, Inc., May 30, 1986, first edition, pages 77-100) ).
  • the auxotrophy, analog resistance, metabolic control mutation and other properties imparted may be singly or may be two or more.
  • L-amino acid biosynthetic enzymes whose expression is enhanced may be used alone or in combination of two or more. Furthermore, imparting properties such as auxotrophy, analog resistance, and metabolic regulation mutation may be combined with enhancement of biosynthetic enzymes.
  • an auxotrophic mutant having L-amino acid-producing ability an L-amino acid analog-resistant strain, or a metabolically controlled mutant
  • the parent strain or the wild strain is subjected to normal mutation treatment, that is, irradiation with X-rays or ultraviolet rays, Or N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NTG) or treatment with mutagen such as ethyl methanesulfonate (EMS), etc. It can be obtained by selecting those exhibiting tolerance or metabolic control mutations and having the desired ability to produce L-amino acids.
  • L-glutamic acid-producing bacterium will be exemplified.
  • parent strain for inducing the L-glutamic acid-producing bacterium of the present invention include, but are not limited to, strains belonging to the genus Escherichia such as E. coli VL334thrC + (VKPM B-8961: EP 1172433).
  • E. coli VL334 (VKPM B-1641) is an L-isoleucine and L-threonine auxotroph having a mutation in the thrC gene and the ilvA gene (US Pat. No. 4,278,765).
  • the thrC gene wild type allele was introduced into this strain by a general transduction method using bacteriophage P1 grown in cells of wild type E. coli K12 strain (VKPM B-7). L-glutamic acid producing bacterium VL334thrC + was obtained.
  • Examples of a modification method for imparting L-glutamic acid-producing ability to bacteria or enhancing the L-glutamic acid-producing ability of bacteria include, for example, enhancing expression of a gene encoding an enzyme involved in L-glutamic acid biosynthesis.
  • a method for modifying bacteria can be mentioned.
  • Examples of enzymes involved in L-glutamate biosynthesis include glutamate dehydrogenase (hereinafter also referred to as “GDH”) (gdhA), glutamine synthetase (glnA), glutamate synthase (gltAB), isocitrate dehydrogenase (icdA), and aconitic acid.
  • CS citrate synthase
  • PRPC methyl citrate synthase
  • PEPC phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc phosphoenolpyruvate carboxylase
  • ppc pyruvate carboxylase
  • aceEF pyruvate dehydrogenase
  • pykA pyruvate kinase
  • ppsA phosphoenolpyruvate synthase
  • enolase eno
  • pgmA, pgmI phosphoglycerate kinase
  • gk glyceraldehyde-3 Phosphate dehydrogenase
  • the parentheses after the enzyme name are the names of the genes encoding each enzyme (the same applies to the following description). Among these enzymes, one or more of CS or PRPC, PEPC and GDH are preferable, and all three are more preferable. (See WO2006 / 051660 pamphlet).
  • the first method is to increase the copy number of the target gene.
  • the copy number of the gene can be increased by cloning the target gene onto an appropriate plasmid and transforming the host bacterium with the obtained plasmid.
  • a gene encoding CS gltA gene
  • prpC gene a gene encoding PRPC
  • ppc gene a gene encoding PEPC
  • GDH GDH
  • primers were synthesized based on the respective base sequences, and PCR was performed using chromosomal DNA as a template from bacteria belonging to the family Enterobacteriaceae. Possible to get A.
  • Plasmids used for transformation include plasmids that can replicate autonomously in bacteria belonging to the intestinal bacteria group, such as pUC19, pUC18, pBR322, RSF1010, pHSG299, pHSG298, pHSG399, pHSG398, pSTV28, and pSTV29 (pHSG and pSTV are Takara). PMW119, pMW118, pMW219, pMW218 (pMW is available from Nippon Gene), and the like.
  • phage DNA may be used as a vector instead of a plasmid.
  • RSFCPG see European Patent Application No. 0952221) incorporating gltA gene, ppc gene and gdhA gene, and gltA gene of RSFCPG RSFPPG (see WO2008 / 020654) in which is replaced with prpC.
  • DNA-receptive cells such as those known for Bacillus subtilis, actinomycetes, and yeast, are introduced into the DNA-receptor cells in a protoplast or spheroplast state that readily incorporates recombinant DNA.
  • bacteria can also be transformed by the electric pulse method (Japanese Patent Laid-Open No. 2-207791).
  • Increasing the gene copy number can also be achieved by introducing multiple copies of the target gene onto the bacterial chromosomal DNA.
  • homologous recombination methods (Experimentsin Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. (1972)) Can be performed.
  • sequence present in multiple copies on chromosomal DNA repetitive DNA and inverted repeats present at the end of a transposable element can be used.
  • a target gene can be mounted on a transposon, transferred, and introduced in multiple copies on chromosomal DNA.
  • the target gene can also be incorporated into the host chromosome by a method using Mu phage (Japanese Patent Laid-Open No. 2-109985).
  • the second method is a method for enhancing expression of a target gene by replacing expression control sequences such as a promoter of the target gene with a stronger one on chromosomal DNA or plasmid.
  • expression control sequences such as a promoter of the target gene
  • a promoter of the target gene For example, lac promoter, trp promoter, trc promoter, PR promoter, lacUV promoter and the like are known as strong promoters.
  • the replacement of the expression regulatory sequence can be performed, for example, in the same manner as the gene replacement using a temperature sensitive plasmid.
  • a temperature sensitive plasmid examples include plasmid pMAN997 described in WO 99/03988 International Publication Pamphlet.
  • the modification of the expression regulatory sequence may be combined with the method for increasing the gene copy number as described above.
  • Red-driven integration As a method for performing gene replacement as described above, for example, a method called “Red-driven integration” (Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97: 6640-6645 (2000)), Red-driven integration method and excision system derived from ⁇ phage (Cho, E. H., Gumport, R. I., Gardner, J. F. J. Bacteriol.
  • a method using linear DNA such as a method (see WO2005 / 010175), a method including a plasmid containing a temperature-sensitive replication origin, a method using a plasmid capable of conjugation,
  • a method using a suicide vector that does not have an origin of replication in the host US Pat. No. 6,303,383 or Japanese Patent Laid-Open No. 05-007491.
  • a strain resistant to the ⁇ Red gene product for example, Pantoea ananatis SC17 (0) strain can be suitably used for Red driven integration.
  • VKPM Russian National Collection of Industrial Microorganism
  • GNII Genetika Russian National Collection of Industrial Microorganisms
  • JP-A-2001-333769 examples include bacteria described in Japanese Patent Publication Nos. 2000-106869, 2000-189169, 2000-333769, 2006-129840, and WO 2006/051660.
  • the ability to produce L-glutamic acid can also be imparted by enhancing the activity of 6-phosphogluconate dehydratase activity, 2-keto-3-deoxy-6-phosphogluconate aldolase activity, or both of these activities.
  • Examples of the bacterium with increased 6-phosphogluconate dehydratase activity and 2-keto-3-deoxy-6-phosphogluconate aldolase activity include those disclosed in JP-A-2003-274988.
  • Modification for imparting or enhancing L-glutamic acid-producing ability may be performed by reducing or eliminating the activity of an enzyme that catalyzes a reaction that branches off from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce other compounds. .
  • Examples of the enzyme that catalyzes a reaction branched from the biosynthetic pathway of L-glutamic acid to produce a compound other than L-glutamic acid include 2-oxoglutarate dehydrogenase ( ⁇ -ketoglutarate dehydrogenase) (sucA), isocitrate lyase (aceA) ), Phosphate acetyltransferase (pta), acetate kinase (ack), acetohydroxy acid synthase (ilvG), acetolactate synthase (ilvI), formate acetyltransferase (pfl), lactate dehydrogenase (ldh), glutamate decarboxylase (gadAB) 1-pyrroline 5-carboxylate dehydrogenase (putA) and the like.
  • it is particularly preferable to reduce or eliminate 2-oxoglutarate dehydrogenase activity is particularly preferable to reduce or eliminate 2-o
  • a mutation that reduces or eliminates the activity of the enzyme in the cell is performed by a usual mutation treatment method or genetic engineering technique.
  • the mutation treatment method include irradiation with X-rays and ultraviolet rays, and treatment with a mutation agent such as N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine.
  • the site where the mutation is introduced into the gene may be a coding region encoding an enzyme protein or an expression control region such as a promoter.
  • genetic engineering techniques include methods using genetic recombination methods, transduction methods, cell fusion methods, and the like.
  • bacteria belonging to the genus Escherichia that lack 2-oxoglutarate dehydrogenase activity or have reduced 2-oxoglutarate dehydrogenase activity include the following strains (US Pat. Nos. 5,378,616 and 5,573,945).
  • Escherichia coli W3110sucA Kmr Escherichia coli AJ12624 (FERM BP-3853) Escherichia coli AJ12628 (FERM BP-3854) Escherichia coli AJ12949 (FERM BP-4881) Escherichia coli W3110sucA :: Kmr is a strain obtained by disrupting the 2-oxoglutarate dehydrogenase gene (sucA gene) of Escherichia coli W3110. This strain is completely deficient in 2-oxoglutarate dehydrogenase.
  • Examples of the 2-oxoglutarate dehydrogenase gene include the sucA gene of Escherichia coli having the base sequence of SEQ ID NO: 9, and 70% or more, preferably 80% or more, more preferably 90% or more, of SEQ ID NO: 9, More preferably, it may be a homologous gene having a homology of 95% or more.
  • bacteria with deficient or reduced 2-oxoglutarate dehydrogenase activity include the following strains.
  • Pantoea Ananatis AJ13601 (FERM BP-7207 European Patent Publication No. 1078989) Pantoea Ananatis AJ13356 (FERM BP-6615 US Patent 6.331,419) Pantoea Ananatis SC17sucA (FERM BP-8646 International Publication Pamphlet WO2005 / 085419) Klebsiella Planticola AJ13410 (FERM BP-6617 US Pat. No. 6,197,559)
  • the SC17sucA strain was obtained from the AJ13355 strain isolated from nature as a strain capable of growing in a medium containing L-glutamic acid and a carbon source at a low pH.
  • AJ13601 is a strain SC17sucA obtained by introducing a plasmid RSFCPG containing gltA, ppc and gdhA genes derived from Escherichia coli and a plasmid pSTVCB containing a gltA gene derived from Brevibacterium lactofermentum into this SC17sucA strain.
  • AJ13356 is a strain in which the ⁇ KGDH-E1 subunit gene (sucA) of the AJ13355 strain is deleted. On February 19, 1998, AJ13355 and AJ13356 shares were registered with the National Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (now the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, Patent Biological Deposit Center, postal code 305-8566 East 1 Tsukuba City, Ibaraki Prefecture.
  • the deposit numbers FERM P-16644 and FERM P-16645 have been deposited at Chome No. 1 Central 1), respectively, and transferred to the international deposit under the Budapest Treaty on January 11, 1999. 6614 and FERM BP-6615 are granted.
  • the SC17sucA stock has been assigned the private number AJ417, and on February 26, 2004, it was entrusted to the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Patent Biological Depositary Center (Zip 6-1, Higashi 1-chome, Tsukuba-shi, Ibaraki). Deposited as FERM BP-08646.
  • AJ13601 was established on August 18, 1999 at the Institute of Biotechnology, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology (current name: Patent Biodeposit Center, National Institute of Advanced Industrial Science and Technology, postal code 305-8566, 1-1 1-1 Higashi, Tsukuba, Ibaraki Deposited at the center No. 6) under the deposit number FERM P-17516, transferred to an international deposit under the Budapest Treaty on July 6, 2000 and given the deposit number FERM BP-7207.
  • Pantoea ananatis AJ13355 strain, AJ13356 strain, AJ13601 strain, and the aforementioned Klebsiella plantacola AJ13399 strain are L-glutamic acid in an amount exceeding the saturation concentration of L-glutamic acid in a liquid medium when cultured under acidic conditions. Has the ability to accumulate
  • L-Arginine Producing Bacteria examples include E. coli 237 strain (VKPM B-7925) (US Patent Application Publication 2002/058315 A1) and mutant N -Derivatives carrying acetylglutamate synthase ( Russian patent application No. 2001112869), E. coli 382 strain (VKPM B-7926) (EP1170358A1), arginine production introduced with argA gene encoding N-acetylglutamate synthetase Examples include, but are not limited to, a strain belonging to the genus Escherichia such as a strain (EP1170361A1).
  • Examples of parent strains for inducing the L-arginine-producing bacterium of the present invention include strains in which expression of one or more genes encoding L-arginine biosynthetic enzymes are increased.
  • Examples of such genes include N-acetylglutamylphosphate reductase gene (argC), ornithine acetyltransferase gene (argJ), N-acetylglutamate kinase gene (argB), acetylornithine transaminase gene (argD), ornithine carbamoyltransferase A gene (argF), an arginosuccinate synthetase gene (argG), an arginosuccinate lyase gene (argH), and a carbamoyl phosphate synthetase gene (carAB).
  • argC N-acetylglutamylphosphate reductase gene
  • argJ ornithine ace
  • E. coli TDH-6 / pVIC40 VKPM B-3996
  • E. coli 472T23 / pYN7 ATCC 98081
  • E. coli NRRL-21593 U.S. Pat.No. 5,939,307
  • E. coli FERM BP-3756 U.S. Pat.No.
  • E. coli VL643 examples include, but are not limited to, strains belonging to the genus Escherichia such as VL2055 (EP 1149911 A).
  • the TDH-6 strain lacks the thrC gene, is sucrose-utilizing, and the ilvA gene has a leaky mutation. This strain also has a mutation in the rhtA gene that confers resistance to high concentrations of threonine or homoserine.
  • the VKPM B-3996 strain carries the plasmid pVIC40 in which the thrA * BC operon containing the mutant thrA gene is inserted into the RSF1010-derived vector. This mutant thrA gene encodes aspartokinase homoserine dehydrogenase I which is substantially desensitized to feedback inhibition by threonine.
  • VKPM B-3996 was deposited on November 19, 1987 at the All Union Scientific Center of Antibiotics (Nagatinskaya Street 3-A, 117105 Moscow, Russia) under the accession number RIA 1867. Yes. This stock was also transferred to Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) (1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia) on April 7, 1987 under the accession number VKPM B-3996. It has been deposited.
  • E. coli VKPM B-5318 (EP 0593792B) can also be used as a parent strain for inducing the L-threonine-producing bacterium of the present invention.
  • the B-5318 strain is isoleucine non-required, and the control region of the threonine operon in the plasmid pVIC40 is replaced by a temperature sensitive lambda phage C1 repressor and a PR promoter.
  • VKPM ⁇ B-5318 was assigned to Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) (Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. ⁇ 1) with accession number VKPM B- Deposited at 5318.
  • the L-threonine-producing bacterium of the present invention is further modified so that expression of one or more of the following genes is increased.
  • the thrA gene encoding aspartokinase homoserine dehydrogenase I of E. coli has been revealed (nucleotide numbers 337-2799, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990).
  • the thrA gene is located between the thrL gene and the thrB gene in the chromosome of E. coli K-12.
  • the thrB gene encoding E. ⁇ ⁇ ⁇ coli homoserine kinase has been elucidated (nucleotide numbers 2801 to 3733, GenBank accession NC_000913.2, gi: 99049175990).
  • the thrB gene is located between the thrA gene and the thrC gene in the chromosome of E. coli K-12.
  • the thrC gene encoding threonine synthase from E.coli has been elucidated (nucleotide numbers 3734 to 5020, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990).
  • the thrC gene is located between the thrB gene and the yaaX open reading frame in the chromosome of E. coli K-12. All three of these genes function as a single threonine operon.
  • the attenuator region that affects transcription is preferably removed from the operon (WO2005 / 049808, WO2003 / 097839).
  • mutant thrA gene encoding aspartokinase homoserine dehydrogenase I resistant to feedback inhibition by threonine, and the thrB and thrC genes are one operon from the well-known plasmid pVIC40 present in the threonine producing strain E. coli VKPM B-3996. Can be obtained as Details of plasmid pVIC40 are described in US Pat. No. 5,705,371.
  • the rhtA gene is present on the 18th minute of the E. ⁇ coli chromosome close to the glnHPQ operon, which encodes an element of the glutamine transport system.
  • the rhtA gene is identical to ORF1 (ybiF gene, nucleotide numbers 764 to 1651, GenBank accession number AAA218541, gi: 440181), and is located between the pexB gene and the ompX gene.
  • the unit that expresses the protein encoded by ORF1 is called rhtA gene (rht: resistant to homoserine and threonine).
  • the E. coli asd gene has already been clarified (nucleotide numbers 3572511 to 3571408, GenBank accession NC_000913.1, gi: 16131307), and can be obtained by PCR using primers prepared based on the nucleotide sequence of the gene. (See White, TJ et al., Trends Genet., 5, 185 (1989)). The asd gene of other microorganisms can be obtained similarly.
  • the aspC gene of E.coli has already been clarified (nucleotide numbers 983742 to 984932, GenBank accession NC_000913.1, gi: 16128895) and can be obtained by PCR.
  • the aspC gene of other microorganisms can be obtained similarly.
  • the bacterium of the present invention is a protein encoded by the ydcI gene in a bacterium having the ability to produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine as described above. It is a bacterium modified so that its activity is weakened. It should be noted that the ability to produce an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine may be imparted after modification so that the activity of the protein encoded by the ydcI gene is weakened.
  • the protein encoded by the ydcI gene is predicted to be a LysR type transcription factor, and the activity of the protein is presumed to be DNA binding activity.
  • the DNA binding activity means the activity of the YdcI protein binding to a specific DNA sequence.
  • DNA binding activity can be measured, for example, by the method described in Linda Jen-Jacobson, Structural-perturbation approaches to thermodynamics of site-specific protein-DNA interactions, Methods in Enzymology, Volume 259, 1995, Pages 305-344. it can.
  • “Modified so that the activity of the protein encoded by the ydcI gene is weakened” means that the expression level of the ydcI gene per cell is decreased with respect to the wild strain or an unmodified strain such as the parent strain, etc. Is included.
  • the case where the expression level of the ydcI gene decreases includes the case where the translation level of the YdcI protein decreases.
  • control non-modified strains for example, bacteria belonging to the wild strain Enterobacteriaceae, Escherichia coli MG1655 strain (ATCC No. 47076), W3110 strain (ATCC No. 27325), Pantoea ananatis AJ13335 strain ( FERM BP-6615).
  • Confirmation that the expression of the ydcI gene is lower than that of an unmodified strain, such as a parent strain or a wild strain, can be confirmed by comparing the amount of mRNA with that of a wild type or non-modified strain.
  • Examples of the method for confirming the expression level include Northern hybridization and RT-PCR (Molecular cloning (Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001)).
  • the expression level may be lower than that of the non-modified strain, but for example, it is 1/2 times or less, more preferably 1/3 or less, more preferably 1/5 times that of the non-modified strain. It is desirable that it is reduced to the following.
  • the decrease in the expression level of the ydcI gene can also be confirmed by a decrease in the amount of the protein encoded by the ydcI gene compared to the unmodified strain, for example, detected by Western blotting using an antibody. I can do it. (Molecular cloning (Cold spring Harbor Laboratory Press, Cold spring Harbor (USA), 2001)).
  • the ydcI gene present on each bacterial chromosome can be used.
  • Escherichia coli ydcI gene encoding a protein having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 (SEQ ID NO: 1: GenBank Accession) No. A64894 [GI: 7466846])] or its homologous gene can be exemplified.
  • the ydcI gene of Pantoea ananatis which codes the protein which has the amino acid sequence of sequence number 12 or 14, or each homologous gene can be illustrated.
  • the ydcI homologue gene is derived from other microorganisms, shows a high similarity in structure to the ydcI gene of Escherichia bacteria and Pantoea bacteria, and has the ability to produce L-glutamic acid or L-arginine when its expression is reduced in the host And a gene encoding a protein exhibiting DNA binding activity.
  • homologs of ydcI include genes registered in GenBank such as Shigella genus and Enterobacter genus.
  • the ydcI gene is cloned from Streptomyces bacteria such as Streptomyces sericolor and lactic acid bacteria such as Lactococcus and Lactobacillus based on homology with the genes exemplified above. May be.
  • a gene having a different gene name may be used as long as it has high homology with ydcI of Escherichia bacteria or Pantoea bacteria.
  • the ydcI gene homologue can obtain a highly homologous gene from a known database based on the above sequence information.
  • the homology between the amino acid sequence and the base sequence is determined by, for example, the algorithm BLAST (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 5873 1993 (1993)) or FASTA (Methods Enzymol., 183, 63 (1990)) by Karlin and Altschul. Can be determined. Based on this algorithm BLAST, programs called BLASTN and BLASTX have been developed (see http://www.ncbi.nlm.nih.gov).
  • the ydcI gene used in the present invention is not limited to the wild-type gene, and one or more amino acid sequences of SEQ ID NOs: 2, 12, and 14 are used as long as the function of the encoded protein, ie, the DNA binding activity is not impaired. It may be a gene encoding a protein having a sequence including substitution, deletion, insertion or addition of one or several amino acids at the position. Here, “one or several” differs depending on the position and type of the amino acid residue in the three-dimensional structure of the protein, but specifically 1 to 20, preferably 1 to 10, more preferably 1 to Mean 5. One or several amino acid substitutions, deletions, insertions or additions described above are conservative mutations that maintain DNA binding activity.
  • a conservative mutation is a polar amino acid between Phe, Trp, and Tyr when the substitution site is an aromatic amino acid, and between Leu, Ile, and Val when the substitution site is a hydrophobic amino acid.
  • Gln and Asn when it is a basic amino acid
  • Lys, Arg, and His when it is an acidic amino acid
  • Asp and Glu when it is an amino acid having a hydroxyl group Is a mutation that substitutes between Ser and Thr.
  • Typical conservative mutations are conservative substitutions.
  • substitutions considered as conservative substitutions include substitution from Ala to Ser or Thr, substitution from Arg to Gln, His or Lys.
  • amino acid substitutions, deletions, insertions, additions, or inversions as described above include naturally occurring mutations (mutant or variant) such as those based on individual differences or species differences of microorganisms that retain the ydcI gene. ) Is also included.
  • the ydcI gene has a homology of 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, and particularly preferably 97% or more with respect to the entire amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, 12, or 14.
  • a sequence encoding a protein having DNA binding activity can also be used.
  • the ydcI gene has a stringent condition with a probe that can be prepared from a complementary sequence of the nucleotide sequence of 301-1221 of SEQ ID NO: 1, 301-1230 of SEQ ID NO: 11 or 301-1218 of SEQ ID NO: 13, or a complementary sequence thereof. It may be DNA encoding a protein that hybridizes underneath and has DNA binding activity.
  • stringent conditions refers to conditions under which so-called specific hybrids are formed and non-specific hybrids are not formed. Although it is difficult to clearly quantify this condition, for example, highly homologous DNAs, for example, 80% or more, preferably 90% or more, more preferably 95% or more, particularly preferably 97%.
  • the conditions include washing once, more preferably 2 to 3 times at a salt concentration and temperature corresponding to 0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS, more preferably 68 ° C., 0.1 ⁇ SSC, 0.1% SDS. .
  • a part of the complementary sequence of 301-1221 of SEQ ID NO: 1, 301-1230 of SEQ ID NO: 11 or 301-1218 of SEQ ID NO: 13 can also be used.
  • Such a probe uses as a primer an oligonucleotide prepared based on the complementary sequence of 301-1221 of SEQ ID NO: 1, 301-1230 of SEQ ID NO: 11 or 301-1218 of SEQ ID NO: 13, and a DNA comprising these base sequences It can be prepared by PCR using a fragment as a template. For example, when a DNA fragment having a length of about 300 bp is used as a probe, hybridization washing conditions include 50 ° C., 2 ⁇ SSC, and 0.1% SDS.
  • Bacteria in which the activity of the protein encoded by the ydcI gene has been weakened include, for example, homologous recombination methods using genetic recombination methods (Experiments in Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1972); Matsushima Shima, Japan. S., J. Bacteriol., 162, 1196 (1985)), replacing the ydcI gene on the chromosome with a ydcI gene that does not function normally (hereinafter sometimes referred to as a “disrupted ydcI gene”). be able to.
  • the mechanism of homologous recombination is as follows. When a plasmid or the like having a sequence homologous to the sequence on the chromosome is introduced into the microbial cell, recombination occurs at a certain frequency at the sequence having the homology, and the entire introduced plasmid is incorporated into the chromosome. . After this, when recombination occurs at the position of the homologous sequence on the chromosome, the plasmid falls off from the chromosome again, but at this time the gene destroyed by the position where recombination occurs is fixed on the chromosome, The original normal gene may fall off the chromosome along with the plasmid. By selecting such a strain, a strain in which the disrupted ydcI gene is replaced with a normal ydcI gene on the chromosome can be obtained.
  • the ydcI gene can be disrupted by using a plasmid containing a ydcI gene into which a marker gene such as drug resistance is inserted and which cannot be replicated in the target bacterial cell. That is, a transformant that has been transformed with the plasmid and has acquired drug resistance has a marker gene incorporated in the chromosomal DNA. Since this marker gene is likely to be incorporated by homologous recombination between the ydcI gene sequence at both ends thereof and these genes on the chromosome, a gene-disrupted strain can be efficiently selected.
  • temperature-sensitive plasmids that function in bacteria belonging to the genus Escherichia include pMAN997 (WO 99/03988 International Publication Pamphlet), pHSG415, pHSG422 (Hashimoto-Gotoh, T. et al, Gene, 16, 227-235 (1981)). Can be mentioned.
  • the disrupted ydcI gene used for gene disruption specifically includes deletion of certain regions of these genes by restriction enzyme digestion and recombination, insertion of other DNA fragments (such as marker genes) into these genes, or Site-specific mutagenesis (Kramer, W. and Frits, H. J., Methods in Enzymology, 154, 350 (1987)) and treatment with chemical agents such as sodium hyposulfite and hydroxylamine (Shortle, D. and Nathans, D., Proc. Natl. Acad. Sci.
  • the nucleotide sequence of one or more bases in the coding region or promoter region of the ydcI gene by causing an addition or inversion of either reduced or abolish the activity of the protein encoded, or by reducing or eliminating the transfer of ydcI gene, can be obtained.
  • a method of deleting a certain region of the ydcI gene by restriction enzyme digestion and recombination, or a method of inserting another DNA fragment into these genes is preferable from the viewpoint of certainty and stability.
  • the destruction of the ydcI gene can be confirmed by analyzing the gene on the chromosome by Southern blotting or PCR. Methods for obtaining various genes, hybridization, PCR, plasmid DNA preparation, DNA cleavage and ligation, transformation, and the like are described in Sambrook, J. et al. Fritsch, E .; F. Maniatis, T .; , Molecular Cloning, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1.21 (1989).
  • mutant strains in which a functional YdcI protein is no longer produced are those that are usually used for mutation treatment of ⁇ -proteobacteria such as ultraviolet irradiation or N-methyl-N′-nitrosoguanidine (NTG) or nitrous acid. It can also be obtained by treating with an agent.
  • ⁇ -proteobacteria such as ultraviolet irradiation or N-methyl-N′-nitrosoguanidine (NTG) or nitrous acid. It can also be obtained by treating with an agent.
  • L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine of the present invention Selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine obtained as described above
  • Bacteria that have L-amino acid-producing ability and are modified so that the activity of YdcI protein in cells is weakened are cultured in a medium, and a target substance is produced and accumulated in the medium or cells
  • an L-amino acid selected from L-glutamic acid, L-arginine and L-threonine can be produced by collecting the L-amino acid from the cells.
  • a normal medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic salts, and other organic micronutrients such as amino acids and vitamins as necessary can be used.
  • Either synthetic or natural media can be used. Any type of carbon source and nitrogen source may be used as long as the strain to be cultured is available.
  • the carbon source saccharides such as glucose, glycerol, fructose, sucrose, maltose, mannose, galactose, starch hydrolysate and molasses can be used.
  • organic acids such as acetic acid and citric acid, and alcohols such as ethanol alone Or it can use together with another carbon source.
  • ammonia, ammonium salts such as ammonium sulfate, ammonium carbonate, ammonium chloride, ammonium phosphate, and ammonium acetate, nitrates, and the like can be used.
  • Organic micronutrients include amino acids, vitamins, fatty acids, nucleic acids, and peptone, casamino acids, yeast extracts, soybean protein breakdown products, etc. containing these, and auxotrophic mutations that require amino acids for growth. When using a strain, it is preferable to supplement the required nutrients.
  • crystallization can be performed more efficiently by adding pantothenic acid to the medium (WO 2004/111258 pamphlet).
  • inorganic salts phosphates, magnesium salts, calcium salts, iron salts, manganese salts and the like can be used.
  • Cultivation is preferably performed with aeration while controlling the fermentation temperature at 20 to 45 ° C. and the pH at 3 to 9.
  • the pH is lowered during the culture, for example, calcium carbonate is added or neutralized with an alkali such as ammonia gas.
  • an alkali such as ammonia gas.
  • the culture can be performed while L-glutamic acid is precipitated in the medium.
  • the conditions under which L-glutamic acid precipitates include pH 5.0 to 4.0, preferably pH 4.5 to 4.0, more preferably pH 4.3 to 4.0, and particularly preferably pH 4.0. Can do.
  • L-glutamic acid when L-glutamic acid is precipitated in the medium, it can be crystallized more efficiently by adding crystals of L-glutamic acid and L-lysine as seed crystals in advance (European Patent No. 1233069, European Patent Application Published) 1624069).
  • the method for collecting L-amino acid from the culture solution after completion of the culture may be performed according to a known recovery method. For example, it is collected by removing microbial cells from the culture solution and then concentrating crystallization or ion exchange chromatography.
  • L-glutamic acid precipitated in the culture solution can be collected by centrifugation or filtration. In this case, L-glutamic acid dissolved in the medium may be crystallized and then isolated together.
  • the pH during the cultivation is controlled to 6.5 to 9.0, and the pH of the medium at the end of the cultivation is 7.2 to 9.0.
  • the fermenter pressure is controlled to be positive, or carbon dioxide or a mixed gas containing carbon dioxide is supplied to the culture medium, so that bicarbonate ions and / or carbonate ions in the culture medium are at least 2 g / L or more.
  • Production may be carried out by a method in which L-arginine is recovered by fermentation using a method in which bicarbonate ions and / or carbonate ions are used as counter ions of a cation mainly composed of basic amino acids. (See Japanese Patent Laid-Open No. 2002-065287, US Patent Application Publication No. 2002025564).
  • a target gene is designed on the 5 ′ side of a synthetic oligonucleotide, and a PCR product obtained using a synthetic oligonucleotide designed on the 3 ′ side of an antibiotic resistance gene is used in one step.
  • a gene-disrupted strain can be constructed.
  • pMW118-attL-Cm-attR The plasmid pMW118-attL-Cm-attR was used as a PCR template.
  • pMW118-attL-Cm-attR is a plasmid in which attL and attR genes, which are attachment sites of ⁇ phage, and a cat gene, which is an antibiotic resistance gene, are inserted into pMW118 (Takara Bio Inc.). Inserted in order.
  • the attL sequence is shown in SEQ ID NO: 3
  • the attR sequence is shown in SEQ ID NO: 4.
  • Complementary primers were designed in regions adjacent to the ydcI gene and the gene conferring antibiotic resistance to the template plasmid, respectively.
  • Two synthetic DNA primers as shown in SEQ ID NOs: 5 and 6 were synthesized by a usual method. Using this primer, PCR was performed using pMW118-attL-Cm-attR as a template.
  • the amplified PCR product was purified by QIAGEN PCR Purification Kit (Cat.No. 28104) and used to electroporate MG1655 ⁇ sucA (hereinafter referred to as MV1655 ⁇ sucA / pKD46) containing plasmid pKD46 having temperature-sensitive replication ability. . Plasmid pKD46 [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, vol. 97, No.
  • p6640-6645 is a gene of ⁇ Red system ( ⁇ , ⁇ , exo gene) controlled by arabinose-inducible ParaB promoter A DNA fragment (GenBank / EMBL ⁇ accession number J02459, 31031088-33241) of a total of 2154 bases of ⁇ phage containing. Plasmid pKD46 is required for the incorporation of the PCR product into MG1655 ⁇ sucA.
  • a competent cell for electroporation was prepared as follows. MG1655 ⁇ sucA / pKD46 cultured overnight at 30 ° C. in LB medium containing 100 mg / L ampicillin was diluted 100-fold with 5 mL of LB medium containing ampicillin and L-arabinose (1 mM). The obtained dilution was grown until the OD600 was about 0.6 while aerated at 30 ° C., and then washed three times with ice-cold 1 mM HEPES (pH 7.0) so that it could be used for electroporation. . Electroporation was performed using 50 ⁇ L of competent cells and approximately 100 ng of PCR product.
  • the cell after electroporation was added with 1 mL of SOC medium [Molecular Cloning: Laboratory Manual Second Edition, Sambrook, J. et al., Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989)] and cultured at 37 ° C. for 1 hour. Plated on LB agar at 37 ° C. to select chloramphenicol resistant recombinants. Next, in order to remove the pKD46 plasmid, it was subcultured at 37 ° C on an LB agar medium containing chloramphenicol, and the resulting colony was tested for ampicillin resistance. I got it.
  • a mutant containing a deletion of the ydcI gene that can be identified by the chloramphenicol resistance gene was confirmed by PCR using the synthetic DNAs shown in SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8.
  • the length of the PCR product obtained by using the DNA of the ydcI gene-deficient strain MG1655 ⁇ sucA, ydcI :: cat as a template was longer than that of the wild type, and it was confirmed that the chloramphenicol resistance gene was inserted into the ydcI gene. It was confirmed that the ydcI gene was deleted.
  • the ydcI-disrupted strain into which the chloramphenicol resistance gene was inserted was named MG1655 ⁇ sucA ⁇ ydcI strain.
  • MG1655 ⁇ sucA ⁇ ydcI and control strain MG1655 ⁇ sucA were inoculated into LB medium and pre-cultured at 37 ° C. overnight.
  • Cells of 1/6 plates were cultured in 50 ml of a 500 ml Erlenmeyer flask in a glucose medium having the following composition and cultured at 37 ° C. for 48 hours. After the culture, L-glutamic acid accumulated in the medium was measured with a Biotech Analyzer (Sakura Seiki).
  • Glucose medium composition Glucose 40g / L MgSO 4 ⁇ 7H 2 O 1.0 g / L (NH 4 ) 2 SO 4 20 g / L KH 2 PO 4 1.0g / L Yeast extract 2.0g / L FeSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.01g / L MnSO 4 ⁇ 5H 2 O 0.01g / L Thiamine HCl 0.01g / L Chloramphenicol 25mg / L Calcium carbonate 30g / L pH7.0 (adjusted with KOH) Sterilization condition: 120 °C, 20 minutes
  • the 237 strain is a mutant strain resistant to 6-azauracil, a pyrimidine analog, derived from Escherichia coli K12 ilvA :: Tn5 by 1-methyl-3-nitro-1-nitrosoguanidine.
  • the stock is named Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika (address: Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. 1 ) On April 10, 2000. Deletion of the ydcI gene in strain 237 was performed according to the method shown in Example 1, and as a result, strain 237 ⁇ ydcI was obtained.
  • the obtained 237 ⁇ ydcI strain was subjected to culture evaluation to confirm the yield of L-arginine.
  • culture evaluation a test tube was used and shaking culture was performed at 37 ° C. for 50 hours.
  • the composition of the medium used was glucose 60 g / L, (NH 4 ) 2 SO 4 25 g / L, yeast extract 5 g / L, KH 2 PO 4 2 g / L, MgSO 4 .7H 2 O 1 g / L, CaCO 3 25 g. / L, Thiamine / HCl 0.1 mg / L, L-Threonine 0.5 g / L.
  • the amount of L-arginine accumulated in the medium was measured by HPLC.
  • VKPM National Collection of Industrial Microorganisms
  • GNII Genetika Additional Collection of Industrial Microorganisms
  • pMW118- ( ⁇ attL-Km r - ⁇ attR) plasmid As shown in WO 2008/090770, plasmid pMW118- ( ⁇ attL-Km r - ⁇ attR) is inserted the attL and attR genes and a kanamycin resistance gene is attachment site ⁇ phage, into pMW118 (Takara Bio) a plasmid, are inserted in the order of attL-Km r -attR.
  • the amplified PCR product was purified and used for ⁇ -dependent integration into the Pantoea ananatis chromosome.
  • the helper plasmid RSF-Red-TER was used as a carrier for the ⁇ phage Red gene.
  • the cells were transformed with the RSF-Red-Ter plasmid and the SC17 (0) strain was cultured overnight at 34 ° C. in LB medium containing 50 ⁇ g / ml chloramphenicol. Subsequently, the culture was diluted 100-fold with fresh LB medium containing 50 ⁇ g / ml chloramphenicol and grown under aeration at 34 ° C.
  • Mutants containing deletions of the c1129 and c1705 genes that can be distinguished by the kanamycin resistance gene were confirmed by PCR using the synthetic DNAs shown in SEQ ID NOs: 19 and 20 and SEQ ID NOs: 21 and 22.
  • the length of the PCR product obtained using the DNA of the cells of the SC1129 and c1705 gene-deficient strains SC17 (0) ⁇ c1129 and SC17 (0) ⁇ c1705 as a template is longer than that of the SC17 (0) strain. It was confirmed that the kanamycin resistance gene was inserted, and it was confirmed that the c1129 and c1705 genes were deleted.
  • the c1129 and c1705 disrupted strains into which the kanamycin resistance gene was inserted were named SC17 (0) ⁇ c1129 strain and SC17 (0) ⁇ c1705 strain, respectively.
  • the NA1 strain was obtained by removing the two plasmids RSFCPG and pSTVCB from the AJ13601 strain (see JP-A-2001-333769) and introducing the plasmid RSFPPG for L-glutamic acid production (WO 2008/090770).
  • the AJ13601 stock was registered on August 18, 1999 at the Institute of Biotechnology, Ministry of Economy, Trade and Industry (Postal Code: 305-8566, 1-3-1 Higashi 1-chome, Tsukuba City, Ibaraki Prefecture) under the accession number FERM P-17516.
  • RSFCPG and pSTVCB plasmids are the plasmids described in JP-A-2001-333769.
  • RSFCPG is a plasmid containing gltA, ppc, and gdhA genes derived from Escherichia coli.
  • pSTVCB is a plasmid in which the gltA gene derived from Brevibacterium lactofermentum is inserted into pSTV29 (Takara Shuzo Co., Ltd.).
  • the NA1 strain into which genomic DNA of SC17 (0) ⁇ c1129 and SC17 (0) ⁇ c1705 has been introduced is a medium containing L medium (bactotryptone 10 g, yeast extract 5 g, NaCl 5 g, agar 15 g in pure water 1 L.
  • NA1 ⁇ c1129 strain, NA1 ⁇ c1705 strain and control strain NA1 were inoculated into LBGM9 medium and pre-cultured at 34 ° C. overnight.
  • LBGM9 medium composition is Bacto Tryptone 10g / L, YE 5g / L, NaCl 10g / L, NaOH 40mg / L, Na 2 HPO 4 6g / L, KH 2 PO 4 3g / L, NaCl 0.5g / L, NH 4 Cl 1g / L, Glc5g / L, agar 15g / L. 1/8 cells of the plate were inoculated into a 5 ml culture of a test tube in a glucose medium having the following composition and cultured at 34 ° C. for 24 hours. After the culture, L-glutamic acid accumulated in the medium was measured with a Biotech Analyzer (Sakura Seiki).
  • Glucose medium composition Glucose 30g / L MgSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.5 g / L (NH 4 ) 2 SO 4 20 g / L KH 2 PO 4 2.0g / L Yeast extract 2.0g / L FeSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.02g / L MnSO 4 ⁇ 5H 2 O 0.02g / L Thiamine HCl 0.01g / L Lysine 0.2g / L Methionine 0.2g / L Diaminopimelic acid 0.2g / L Calcium carbonate 20g / L pH7.0 (adjusted with KOH) Sterilization conditions: 115 ° C, 10 minutes
  • VKPM B-5318 strain Effect of ydcI amplification in Escherichia bacterium L-threonine producing strain Escherichia coli VKPM B-5318 strain (see European Patent No. 0593792) can be used as an L-threonine producing strain of Escherichia coli.
  • This VKPM B-5318 strain (hereinafter referred to as “B-5318”) is an isoleucine non-requirement strain, and is a temperature-sensitive C1 repressor, PR promoter and Cro protein of lambda phage.
  • Downstream is the threonine operon that lacks the attenuator region, which is the original transcriptional regulatory region, that is, the gene involved in threonine biosynthesis, and the expression of the gene involved in threonine biosynthesis is governed by the lambda phage repressor and promoter. Recombinant plasmid DNA constructed as described above is retained.
  • the deletion of the ydcI gene in the B-5318 strain is performed according to the method shown in Example 1, and as a result, the B-5318 ⁇ ydcI strain is obtained.
  • [Escherichia bacterium L-threonine production medium] Glucose 40g / L (NH 4) 2 SO 4 16g / L KH 2 PO 4 1.0g / L MgSO 4 ⁇ 7H 2 O 1.0g / L FeSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.01g / L MnSO 4 ⁇ 7H 2 O 0.01g / L Yeast Extract 2.0g / L CaCO 3 (Japanese Pharmacopoeia) 30g / L Adjust to pH 7.0 with KOH and autoclave at 120 ° C for 20 minutes. However, glucose and MgSO 4 ⁇ 7H 2 O are mixed and sterilized separately. CaCO 3 is added after dry heat sterilization.
  • the ydcI-deficient strain B-5318 ⁇ ydcI has increased growth and accumulation of L-threonine compared to the control B-5318.
  • SEQ ID NO: 2 E. coli Amino acid sequence encoded by the ydcI gene of E. coli
  • SEQ ID NO: 3 nucleotide sequence of attL
  • SEQ ID NO: 4 nucleotide sequence of attR
  • SEQ ID NO: 5 nucleotide sequence of 5 ′ primer for ydcI destruction
  • SEQ ID NO: 7 base sequence of 5 ′ primer for detecting ydcI disruption
  • SEQ ID NO: 8 base sequence of 3 ′ primer for detecting ydcI disruption
  • SEQ ID NO: 9 E.
  • E. coli sucA gene base sequence SEQ ID NO: 10: E. coli. amino acid sequence encoded by the sucA gene of E. coli SEQ ID NO: 11: nucleotide sequence of the c1129 gene of Pantoea ananatis SEQ ID NO: 12: amino acid sequence encoded by the c1129 gene of Pantoea ananatis SEQ ID NO: 13: c1705 gene of Pantoea ananatis Base sequence SEQ ID NO: 14: Amino acid sequence encoded by Pantoea ananatis c1705 gene SEQ ID NO: 15: Base sequence of 5 ′ primer for c1129 disruption SEQ ID NO: 16: Base sequence of 3 ′ primer for c1129 disruption SEQ ID NO: 17: c1129 disruption 5 'primer for detection SEQ ID NO: 18: nucleotide sequence of 3' primer for detection of c1129 destruction SEQ ID NO: 19: nucleotide sequence of 5 'primer for destruction of c1705

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Abstract

Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能を有し、かつ、ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化するように改変された腸内細菌科に属する細菌を培地で培養して、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸を該培地中又は菌体内に生成蓄積させ、該培地又は菌体より前記Ｌ－アミノ酸を回収する。

Description

Ｌ－アミノ酸生産菌及びＬ－アミノ酸の製造法
　本発明は、微生物を用いたＬ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選ばれるＬ－アミノ酸の製造法に関する。Ｌ－グルタミン酸及びL－アルギニンは調味料として産業上有用なＬ－アミノ酸である。Ｌ－スレオニンは飼料用アミノ酸として有用である。
　Ｌ－アミノ酸は、種々の微生物を用いた発酵法により工業生産されている。例えば、Ｌ－グルタミン酸は、主としてブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバクテリウム属に属するいわゆるコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産菌またはそれらの変異株を用いた発酵法により製造されている（例えば、非特許文献１参照）。その他の微生物を用いた発酵法によるＬ－グルタミン酸の製造法としては、バチルス属、ストレプトミセス属、ペニシリウム属等の微生物（例えば、特許文献１参照）、シュードモナス属、アースロバクター属、セラチア属、キャンディダ属等の微生物（例えば、特許文献２参照）、バチルス属、シュードモナス属、セラチア属、アエロバクター・アエロゲネス（現エンテロバクター・アエロゲネス）等の微生物（例えば、特許文献３参照）、エシェリヒア・コリの変異株（例えば、特許文献１参照）等を用いる方法が知られている。また、クレブシエラ属、エルビニア属又はパントエア属、エンテロバクター属に属する微生物を用いたＬ－グルタミン酸の製造法も開示されている（例えば、特許文献２～４参照）。
　上記のような微生物を用いた発酵法によってＬ－アミノ酸等の目的物質を製造するには、野生型微生物（野生株）を用いる方法、野生株から誘導された栄養要求株を用いる方法、野生株から種々の薬剤耐性変異株として誘導された代謝調節変異株を用いる方法、栄養要求株と代謝調節変異株の両方の性質を持った株を用いる方法等がある。
　さらに、近年は、目的物質の発酵生産に、組換えＤＮＡ技術を用いることが行われている。例えば、Ｌ－アミノ酸生合成系酵素をコードする遺伝子の発現を増強すること（特許文献５、特許文献６）、又はＬ－アミノ酸生合成系への炭素源の流入を増強すること（特許文献７）によって、微生物のＬ－アミノ酸生産性を向上させることが行われている。
　エシェリヒア・コリなどの腸内細菌群に見出されているタンパク質ＹｄｃＩは、配列解析などからＬｙｓＲ型転写因子であると予測されている（非特許文献５、非特許文献６）。エシェリヒア・コリにおいてＹｄｃＩはｙｄｃＩ遺伝子によりコードされている（非特許文献７）。これまでにｙｄｃＩ遺伝子を増強した細菌を用いたＬ－リジン、Ｌ－スレオニン、Ｌ－トリプトファンの生産の報告があるが(特許文献８)、この文献ではＬ－スレオニンについてはｙｄｃＩ遺伝子増幅株の効果が実証されていない。一方、ｙｄｃI遺伝子を欠損した細菌を用いたL－アミノ酸の生産の報告はない。
特開平５－２４４９７０号公報 米国特許第３，５６３，８５７号明細書 特公昭３２－９３９３号公報 特開２０００－１８９１７５号公報 米国特許第5168056号明細書 米国特許第5776736号明細書 米国特許第5906925号明細書 特願２００７－１４１８０２号
明石邦彦ら著　アミノ酸発酵、学会出版センター、１９５～２１５頁、１９８６年 Laimonis A.Laimins, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1978 July; 75(7):3216-19. Laimonis A. Laimins, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1981 Jan.; 78(1):464-68. Mark O. Walderhaug, J. Bacteriol., 1992 Apr.; 174 (7):2152-59. Keseler, I. M. et al., "EcoCyc: A comprehensive database resource for Escherichia coli." Nucleic Acids Res. 2005, Vol.33, D334-337 Encyclopedia of Escherichia coli K-12 Genes and Metabolism、［online］、［平成１９年４月１２日検索］、インターネット＜URL:http://ecocyc.org/＞ Riley, M. et al., "Escherichia coli K-12: a cooperatively developed annotation snapshot-2005", Nucleic Acids Res. 2006, Vol.34, 1-9
　本発明は、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選ばれるＬ－アミノ酸を効率よく生産することのできる腸内細菌科に属する細菌を提供すること、及び該細菌を用いて前記Ｌ－アミノ酸を効率よく生産する方法を提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、ＬｙｓＲ型転写因子であると予測されているタンパク質をコードする、ｙｄｃI遺伝子の発現が低下するように細菌を改変することにより、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンの生産性が向上することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下のとおりである。
（１）Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能を有し、かつ、ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化するように改変された腸内細菌科に属する細菌。
（２）ｙｄｃI遺伝子の発現量を減少させることまたはｙｄｃＩ遺伝子を破壊することにより、ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化された、前記細菌。
（３）ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質が、配列番号２、１２または１４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質、または配列番号２、１２または１４において１または数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、DNA結合活性を有するタンパク質である、前記細菌。
（４）前記ｙｄｃI遺伝子が、下記（ａ）または（ｂ）に記載のＤＮＡである、前記細菌：
　（ａ）配列番号１の３０１－１２２１，配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８に示す塩基配列を含むＤＮＡ、
　（ｂ）配列番号１の３０１－１２２１，配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８に示す塩基配列又は同塩基配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、DNA結合活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
（５）エシェリヒア属細菌、エンテロバクター属細菌またはパントエア属細菌である前記細菌。
（６）前記いずれかの細菌を培地で培養して、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸を該培地中又は菌体内に生成蓄積させ、該培地又は菌体より前記Ｌ－アミノ酸を回収することを特徴とする、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の製造法。
以下、本発明を詳細に説明する。
＜１＞本発明の細菌
　本発明の細菌は、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能を有し、かつ、ｙｄｃＩ遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化するように改変された腸内細菌科に属する細菌である。
　ここで、「Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能」とは、本発明の細菌を培地中で培養したときに、培地中または菌体内に前記Ｌ－アミノ酸を生成し、培地中または菌体から回収できる程度に蓄積する能力をいう。本発明の細菌はＬ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンのうちの１種を生産する能力を有するものであってもよく、２種以上を生産できる能力を有するものであってもよい。前記Ｌ－アミノ酸の生産能を有する細菌としては、本来的に前記Ｌ－アミノ酸の生産能を有するものであってもよいが、下記のような細菌を、変異法や組換えDNA技術を利用して、前記Ｌ－アミノ酸の生産能を有するように改変したものであってもよい。
＜１－１＞Ｌ－アミノ酸生産能の付与
　以下に、細菌にＬ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選ばれるＬ－アミノ酸の生産能を付与する方法及び本発明で使用することのできる前記Ｌ－アミノ酸の生産能が付与された細菌を例示する。ただし、前記Ｌ－アミノ酸の生産能を有する限り、これらに制限されない。
　本発明に用いる細菌としては、エシェリヒア属、エンテロバクター属、パントエア属、クレブシエラ属、セラチア属、エルビニア属、サルモネラ属、モルガネラ属など、腸内細菌科に属する細菌であって、前記Ｌ－アミノ酸を生産する能力を有するものであれば、特に限定されない。具体的にはNCBI（National Center for Biotechnology Information）データベース（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?id=91347）に記載されている分類により腸内細菌科に属するものが利用できる。改変に用いる腸内細菌科細菌の親株としては、中でもエシェリヒア属細菌、エンテロバクター属細菌、パントエア属細菌を用いることが望ましい。
　本発明のエシェリヒア属細菌を得るために用いるエシェリヒア属細菌の親株としては、特に限定されないが、具体的にはNeidhardtらの著書（Backmann, B. J. 1996. Derivations and Genotypes of some mutant derivatives of Escherichia coli K-12, p. 2460-2488. Table 1. In F. D. Neidhardt (ed.), Escherichia coli and Salmonella Cellular and Molecular Biology/Second Edition, American Society for Microbiology Press, Washington, D.C.）に挙げられるものが利用できる。その中では、例えばエシェリヒア・コリが挙げられる。エシェリヒア・コリとしては具体的には、プロトタイプの野生株Ｋ１２株由来のエシェリヒア・コリ W3110 （ATCC 27325）、エシェリヒア・コリ MG1655 (ATCC 47076)等が挙げられる。
　これらを入手するには、例えばアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（住所　P.O. Box 1549, Manassas, VA 20108, United States of America）より分譲を受けることが出来る。すなわち各菌株に対応する登録番号が付与されており、この登録番号を利用して分譲を受けることが出来る（http://www.atcc.org/参照）。各菌株に対応する登録番号は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションのカタログに記載されている。
　エンテロバクター属細菌としては、エンテロバクター・アグロメランス（Enterobacter agglomerans）、エンテロバクター・アエロゲネス(Enterobacter aerogenes)等が挙げられる。尚、近年、エンテロバクター・アグロメランスは、16S rRNAの塩基配列解析などにより、パントエア・アグロメランス（Pantoea agglomerans）又はパントエア・アナナティス（Pantoea ananatis）、パントエア・スチューアルティ（Pantoea stewartii）に再分類されているものがある。本発明においては、腸内細菌科に分類されるものであれば、エンテロバクター属又はパントエア属のいずれに属するものであってもよい。
　また、パントエア属細菌、エルビニア属細菌、エンテロバクター属細菌は、γ－プロテオバクテリアに分類される細菌であり、分類学的に非常に近縁である（J Gen Appl Microbiol 1997 Dec;43(6) 355-361, International Journal of Systematic Bacteriology, Oct. 1997,p1061-1067）。近年、DNA-DNAハイブリダイゼーション実験等により、エンテロバクター属に属する細菌には、パントエア・アグロメランス（Pantoea agglomerans）又はパントエア・ディスパーサ（Pantoea dispersa）等に再分類されているものがある（International Journal of Systematic Bacteriology, July 1989;39(3).p.337-345）。また、エルビニア属に属する細菌にはパントエア・アナナス（Pantoea ananas）、パントエア・スチューアルティに再分類されているものがある（International Journal of Systematic Bacteriology, Jan 1993;43(1), p.162-173 参照）。
　エンテロバクター属細菌としては、具体的には、欧州特許出願公開952221号明細書に例示された菌株を使用することが出来る。
　エンテロバクター属の代表的な株として、エンテロバクター・アグロメランスATCC12287株が挙げられる。
　パントエア属細菌の代表的な菌株として、パントエア・アナナティス（Pantoea ananatis）、パントエア・スチューアルティ（Pantoea stewartii）、パントエア・アグロメランス、パントエア・シトレア（Pantoea citrea）が挙げられる。具体的には、下記の菌株が挙げられる。
　パントエア・アナナティスAJ13355株（FERM BP-6614）(欧州特許出願公開0952221号明細書)
　パントエア・アナナティスAJ13356株（FERM BP-6615）(欧州特許出願公開0952221号明細書)
　パントエア・アナナティスAJ13601株（FERM BP-7207）(欧州特許出願公開0952221号明細書)
　これらの株は、分離された当時はエンテロバクター・アグロメランスと同定され、エンテロバクター・アグロメランスとして寄託されたが、上記のとおり、16S rRNAの塩基配列解析などにより、パントエア・アナナティスに再分類されている。
　エルビニア属細菌としては、エルビニア・アミロボーラ、エルビニア・カロトボーラが挙げられ、クレブシエラ属細菌としては、クレブシエラ・プランティコーラが挙げられる。具体的には、下記の菌株が挙げられる。
　エルビニア・アミロボーラATCC15580株
　エルビニア・カロトボーラATCC15713株
　クレブシエラ・プランティコーラAJ13399株（FERM BP-6600）(欧州特許出願公開955368号明細書)
　クレブシエラ・プランティコーラAJ13410株（FERM BP-6617）(欧州特許出願公開955368号明細書)
　以下、上記のような腸内細菌科に属する細菌に前記Ｌ－アミノ酸の生産能を付与する方法、又はこれらの細菌において前記Ｌ－アミノ酸の生産能を増強する方法について述べる。
　Ｌ－アミノ酸生産能を付与するには、栄養要求性変異株、アナログ耐性株又は代謝制御変異株の取得や、Ｌ－アミノ酸の生合成系酵素の発現が増強された組換え株の創製等、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等の育種に採用されてきた方法を適用することができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年5月30日初版発行、第77-100頁参照）。ここで、Ｌ－アミノ酸生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独でもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、発現が増強されるＬ－アミノ酸生合成系酵素も、単独であっても、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の増強が組み合わされてもよい。
　Ｌ－アミノ酸生産能を有する栄養要求性変異株、Ｌ－アミノ酸のアナログ耐性株、又は代謝制御変異株を取得するには、親株又は野生株を通常の変異処理、すなわちＸ線や紫外線の照射、またはN-メチル-N’-ニトロ-N-ニトロソグアニジン(NTG)もしくはエチルメタンスルフォネート（EMS）等の変異剤処理などによって処理し、得られた変異株の中から、栄養要求性、アナログ耐性、又は代謝制御変異を示し、かつ目的のＬ－アミノ酸生産能を有するものを選択することによって得ることができる。
　以下、Ｌ－アミノ酸生産菌又はその構築方法を例として示す。
Ｌ－グルタミン酸生産菌
　まず、Ｌ－グルタミン酸生産菌について例示する。
　本発明のＬ－グルタミン酸生産菌を誘導するための親株の例としては、E. coli VL334thrC+ (VKPM B-8961：EP 1172433)などのエシェリヒア属に属する株が挙げられるが、これらに限定されない。E. coli VL334 (VKPM B-1641)は、thrC遺伝子及びilvA遺伝子に変異を有するＬ－イソロイシン及びＬ－スレオニン要求性株である(米国特許第4,278,765号)。この株にthrC遺伝子の野生型アレルが、野生型E. coli K12株 (VKPM B-7)の細胞で増殖したバクテリオファージP1を用いる一般的形質導入法により導入された結果、Ｌ－イソロイシン要求性のＬ－グルタミン酸生産菌VL334thrC+ が得られた。
　細菌にＬ－グルタミン酸生産能を付与する、又は細菌のＬ－グルタミン酸生産能を増強するための改変の方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸生合成に関与する酵素をコードする遺伝子の発現が増強するように細菌を改変する方法を挙げることができる。
　Ｌ－グルタミン酸生合成に関与する酵素としては、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（以下、「ＧＤＨ」ともいう）（gdhA）、グルタミンシンテターゼ(glnA)、グルタミン酸シンターゼ(gltAB)、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ(icdA)、アコニット酸ヒドラターゼ(acnA, acnB)、クエン酸シンターゼ（以下、「ＣＳ」ともいう）(gltA)、メチルクエン酸シンターゼ（以下「ＰＲＰＣ」ともいう）（prpC）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（以下、「ＰＥＰＣ」ともいう）(ppc)、ピルビン酸カルボキシラーゼ(pyc)、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ(aceEF, lpdA)、ピルビン酸キナーゼ(pykA, pykF)、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ(ppsA)、エノラーゼ(eno)、ホスホグリセルムターゼ(pgmA, pgmI)、ホスホグリセリン酸キナーゼ(pgk)、グリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ(gapA)、トリオースリン酸イソメラーゼ(tpiA)、フルトースビスリン酸アルドラーゼ(fbp)、ホスホフルクトキナーゼ（pfkA, pfkB）、グルコースリン酸イソメラーゼ(pgi)などが挙げられる。尚、酵素名の後のカッコ内は、各酵素をコードする遺伝子名である（以下の記載においても同様）。これらの酵素の中では、ＣＳ又はＰＲＰＣ、ＰＥＰＣおよびＧＤＨのいずれか１種以上が好ましく、３種全てがより好ましい。（WO2006/051660号パンフレット参照）。
　以下に、目的遺伝子の発現が増強するように細菌を改変する方法を例示する。
　１つ目の方法は、目的遺伝子のコピー数を高める方法である。例えば、目的遺伝子を適当なプラスミド上にクローニングし、得られたプラスミドを用いて宿主細菌を形質転換することにより、該遺伝子のコピー数を高めることができる。例えば、目的遺伝子としてＣＳをコードする遺伝子（gltA遺伝子）あるいはＰＲＰＣをコードする遺伝子（prpC遺伝子）、ＰＥＰＣをコードする遺伝子（ppc遺伝子）、およびＧＤＨをコードする遺伝子（gdhA遺伝子）を用いる場合、これらの遺伝子はエシェリヒア属細菌、及びコリネバクテリウム属細菌において、既に塩基配列が明らかにされていることから（Biochemistry、第22巻、5243～5249頁、1983年；J. Biochem.、第95巻、909～916頁、1984年；Gene、第27巻、193～199頁、1984年；Microbiology、第140巻、1817～1828頁、1994年；Mol. Gen. Genet.、第218巻、330～339頁、1989年；Molecular Microbiology、第6巻、317～326頁、1992年）、それぞれの塩基配列に基づいてプライマーを合成し、腸内細菌科に属する細菌から染色体ＤＮＡを鋳型にしてＰＣＲ法により取得することが可能である。
　形質転換に用いるプラスミドとしては、腸内細菌群に属する細菌の中で自律複製可能なプラスミド、例えばpUC19、pUC18、pBR322、RSF1010、pHSG299、pHSG298、pHSG399、pHSG398、pSTV28、pSTV29（pHSG、pSTVはタカラバイオ社より入手可）、pMW119、pMW118、pMW219、pMW218（pMWはニッポンジーン社より入手可）等が挙げられる。なお、プラスミドの代わりにファージＤＮＡをベクターとして用いてもよい。上記ＣＳ又はＰＲＰＣ、ＰＥＰＣおよびＧＤＨの活性を同時に増強するためのプラスミドとして、gltA遺伝子、ppc遺伝子及びgdhA遺伝子が組み込まれたRSFCPG（欧州特許出願公開第0952221号明細書参照）、及びRSFCPGのgltA遺伝子をprpCに置き換えたRSFPPG（WO2008/020654参照）が挙げられる。
　形質転換法としては、例えば、エシェリヒア・コリ　Ｋ－１２について報告されているような、受容菌細胞を塩化カルシウムで処理してＤＮＡの透過性を増す方法（Mandel,M.and Higa,A.,J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)）、バチルス・ズブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してＤＮＡを導入する方法（Duncan,C.H.,Wilson,G.A.and Young,F.E., Gene, 1, 153 (1977)）などが挙げられる。
あるいは、バチルス・ズブチリス、放線菌類及び酵母について知られているような、ＤＮＡ受容菌の細胞を、組換えＤＮＡを容易に取り込むプロトプラストまたはスフェロプラストの状態にして組換えＤＮＡをＤＮＡ受容菌に導入する方法（ Chang,S.and Choen, S.N.,Molec. Gen. Genet., 168, 111 (1979); Bibb, M.J., Ward, J.M. and Hopwood,O.A., Nature, 274, 398 (1978); Hinnen, A., Hicks, J.B. and Fink, G.R., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 75 1929 (1978)）も応用できる。また、電気パルス法（特開平2-207791号公報）によっても、細菌の形質転換を行うこともできる。
　遺伝子のコピー数を高めることは、目的遺伝子を細菌の染色体DNA上に多コピー導入することによっても達成できる。細菌の染色体DNA上に遺伝子を多コピーで導入するには、染色体DNA上に多コピー存在する配列を標的に利用して、相同組換え法（Experimentsin Molecular Genetics, Cold Spring Harbor Lab. (1972)）により行うことができる。染色体DNA上に多コピー存在する配列としては、レペティティブDNA、転移因子の端部に存在するインバーテッド・リピートが利用できる。あるいは、特開平2-109985号公報に開示されているように、目的遺伝子をトランスポゾンに搭載してこれを転移させて染色体DNA上に多コピー導入することも可能である。さらに、Muファージを用いる方法（特開平2-109985号）で宿主染色体に目的遺伝子を組み込むこともできる。
　２つ目の方法は、染色体DNA上またはプラスミド上において、目的遺伝子のプロモーター等の発現調節配列をより強力なものに置換することによって目的遺伝子の発現を増強させる方法である。例えば、lacプロモーター、trpプロモーター、trcプロモーター、PRプロモーター、lacUVプロモーター等が強力なプロモーターとして知られている。また、国際公開WO00/18935に開示されているように、遺伝子のプロモーター領域に数塩基の塩基置換を導入し、より強力なものに改変することも可能である。プロモーターの強度の評価法および強力なプロモーターの例は、Goldsteinらの論文（Prokaryotic promoters in biotechnology. Biotechnol. Annu. Rev., 1995, 1, 105-128）等に記載されている。
　発現調節配列の置換は、例えば、温度感受性プラスミドを用いた遺伝子置換と同様にして行うことができる。本発明の腸内細菌科に属する細菌に使用できる出来る、温度感受性複製起点を有するベクターとしては、例えばWO 99/03988号国際公開パンフレットに記載のプラスミドpMAN997等が挙げられる。
　さらに、リボソーム結合部位（ＲＢＳ）と開始コドンとの間のスペーサ、特に開始コドンのすぐ上流の配列における数個のヌクレオチドの置換がmRNAの翻訳効率に非常に影響を及ぼすことが知られており、これらを改変することによって、翻訳量を向上させることが可能である。
　なお、発現調節配列の改変は、上述したような遺伝子のコピー数を高める方法と組み合わせてもよい。
　上記のような遺伝子置換を行う方法としては、例えば「Redドリブンインテグレーション(Red-driven integration)」と呼ばれる方法（Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97:6640-6645 (2000)）や、Redドリブンインテグレーション法とλファージ由来の切り出しシステム（Cho, E. H., Gumport, R. I., Gardner, J. F. J. Bacteriol. 184: 5200-5203 (2002)）とを組合わせた方法（WO2005/010175号参照）等の直鎖状ＤＮＡを用いる方法や、温度感受性複製起点を含むプラスミド、接合伝達可能なプラスミドを用いる方法、宿主内で複製起点を持たないスイサイドベクターを利用する方法などがある（米国特許第6303383号明細書、または特開平05-007491号公報）。
　尚、Redドリブンインテグレーションには、λ Red遺伝子産物に耐性な菌株、例えばパントエア・アナナティスSC17(0)株を好適に用いることができる。同株は、2005年9月21にロシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオーガニズム（Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika）（住所：Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. 1）に受託番号VKPM B-9246のもとに寄託されている。
　以上のような方法によりクエン酸シンターゼ遺伝子、メチルクエン酸シンターゼ遺伝子、フォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ遺伝子、及び／又はグルタミン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子の発現が増強するように改変された細菌としては、特開平2001-333769号公報、特開2000-106869号公報、特開2000-189169号公報、特開2000-333769、特開2006-129840、国際公開2006/051660号パンフレット等に記載された細菌が例示できる。
　また、Ｌ－グルタミン酸生産能は、６－ホスホグルコン酸デヒドラターゼ活性もしくは２－ケト－３－デオキシ－６－ホスホグルコン酸アルドラーゼ活性、又はこれらの両方の活性を増強させることによっても付与することが出来る。６－ホスホグルコン酸デヒドラターゼ活性、２－ケト－３－デオキシ－６－ホスホグルコン酸アルドラーゼ活性を上昇させた細菌としては、特開2003-274988に開示された細菌を挙げることが出来る。
　Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための改変は、Ｌ－グルタミン酸の生合成経路から分岐して他の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性を低下または欠損させることにより行ってもよい。Ｌ－グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ－グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ（α-ケトグルタレートデヒドロゲナーゼ）(sucA)、イソクエン酸リアーゼ(aceA)、リン酸アセチルトランスフェラーゼ(pta)、酢酸キナーゼ(ack)、アセトヒドロキシ酸シンターゼ(ilvG)、アセト乳酸シンターゼ(ilvI)、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ(pfl)、乳酸デヒドロゲナーゼ(ldh)、グルタミン酸デカルボキシラーゼ(gadAB)、１－ピロリン５－カルボキシレートデヒドロゲナーゼ(putA)などが挙げられる。この中では特に、２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を低下又は欠損させることが好ましい。
　上記のような酵素の活性を低下または欠損させるには、通常の変異処理法によって、あるいは遺伝子工学的手法によって、上記酵素の遺伝子に、細胞中の当該酵素の活性が低下または欠損するような変異を導入すればよい。変異処理法としては、たとえばＸ線や紫外線を照射する方法、またはＮ－メチル－Ｎ'－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン等の変異剤で処理する方法等がある。遺伝子に変異が導入される部位は、酵素タンパク質をコードするコード領域であってもよく、プロモーター等の発現制御領域であってもよい。また、遺伝子工学的手法には、例えば遺伝子組換え法、形質導入法、細胞融合法等を用いる方法がある。
　細胞中の目的酵素の活性が低下または欠損していること、および活性の低下の程度は、候補株の菌体抽出液または精製画分の酵素活性を測定し、野生株と比較することによって確認することができる。例えば、２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性は、Reedらの方法（L.J. Reed and B.B. Mukherjee, Methods in Enzymology 1969, 13, p.55-61）に従って測定することができる。
　２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損した、または、２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下したエシェリヒア属に属する細菌としては、以下の菌株が挙げられる（米国特許第5,378,616 号及び第5,573,945号）。
　エシェリヒア・コリW3110sucA::Kmr
　エシェリヒア・コリAJ12624 (FERM BP-3853)
　エシェリヒア・コリAJ12628 (FERM BP-3854)
　エシェリヒア・コリAJ12949 (FERM BP-4881)
　エシェリヒア・コリW3110sucA::Kmr は、エシェリヒア・コリW3110の２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（sucA遺伝子）を破壊することにより得られた株である。この株は、２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼを完全に欠損している。
　２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ遺伝子としては、配列番号９の塩基配列を有するエシェリヒア・コリのsucA遺伝子が例示されるが、配列番号９と７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、更に好ましくは９５％以上の相同性を有するホモログ遺伝子であってもよい。
　２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下した他の細菌としては、具体的には次のような株が挙げられる。
　パントエア・アナナティスAJ13601（FERM BP-7207 欧州特許公開明細書1078989）
　パントエア・アナナティスAJ13356（FERM BP-6615 米国特許6.331,419号）
　パントエア・アナナティスSC17sucA（FERM BP-8646 国際公開パンフレットWO2005/085419号）
　クレブシエラ・プランティコーラ　AJ13410（FERM BP-6617 米国特許6,197,559号）
　尚、SC17sucA株は、低ｐＨでＬ－グルタミン酸及び炭素源を含む培地で増殖できる株として自然界より単離されたAJ13355株から、粘液質低生産変異株（SC17）を取得し、同株の２－オキソグルタル酸デヒドロゲナーゼ遺伝子（sucA）を破壊することによって得られた株である。AJ13601は、このSC17sucA株に、エシェリヒア・コリ由来のgltA、ppc、gdhAの各遺伝子を含むプラスミドRSFCPG、及びブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム由来のgltA遺伝子を含むプラスミドpSTVCBを導入して得た株SC17sucA/RSFCPG+pSTVCB株から、さらに、低pHにおける高濃度Ｌ－グルタミン酸耐性株の選択、及び増殖度及びＬ－グルタミン酸生産能が高い株の選択によって、取得された菌株である（欧州特許出願公開0952221号明細書）。AJ13356は、AJ13355株のαKGDH-E1サブユニット遺伝子（sucA）を欠損させた株である。
　AJ13355株及びAJ13356株は、平成１０年２月１９日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現名称、産業技術総合研究所特許生物寄託センター、住所 郵便番号305-8566　茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に、それぞれ受託番号FERM P-16644、及びFERM P-16645として寄託され、平成１１年１月１１日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-6614、及びFERM BP-6615が付与されている。SC17sucA株は、プライベートナンバーAJ417が付与され、平成１６年２月２６日に産業技術総合研究所特許生物寄託センター（郵便番号３０５－８５６６　茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に受託番号FERM BP-08646として寄託されている。AJ13601株は、1999年8月18日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現名称、産業技術総合研究所特許生物寄託センター、住所 郵便番号305-8566　茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に受託番号FERM P-17516として寄託され、2000年7月6日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-7207が付与されている。
　上記パントエア・アナナティスAJ13355株、AJ13356株、AJ13601株、及び前述のクレブシエラ・プランティコーラAJ13399株は、酸性条件下で培養したときに液体培地中にＬ－グルタミン酸の飽和濃度を越える量のＬ－グルタミン酸を蓄積する能力を有する。
　また、腸内細菌科のＬ－グルタミン酸生産能を向上させるためには、arcA遺伝子を欠損させる方法（米国特許7,090,998号公報）、グルタミン酸排出遺伝子であるyhfK遺伝子を増幅させる方法（WO2005/085419パンフレット）も用いることが出来る。また、yggB遺伝子を用いる方法も利用できる（特開2007-097573号公報）。
　上記の酵素活性を増強又は欠損させる方法は、以下に示す他のアミノ酸の生産菌についても、同様に適用することができる。
Ｌ－アルギニン生産菌
　本発明のＬ－アルギニン生産菌を誘導するための親株の例としては、E. coli 237株 (VKPM B-7925) (米国特許出願公開2002/058315 A1)、及び、変異N-アセチルグルタメートシンターゼを保持するその誘導株(ロシア特許出願第2001112869号)、E. coli 382株 (VKPM B-7926) (EP1170358A1)、N-アセチルグルタメートシンテターゼをコードするargA遺伝子が導入されたアルギニン生産株(EP1170361A1)などのエシェリヒア属に属する株が挙げられるが、これらに限定されない。
　本発明のＬ－アルギニン生産菌を誘導するための親株の例としては、Ｌ－アルギニン生合成系酵素をコードする遺伝子の１種以上の発現が増大した株も挙げられる。このような遺伝子の例としては、N-アセチルグルタミルフォスフェートレダクターゼ遺伝子(argC)、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ遺伝子(argJ)、N-アセチルグルタメートキナーゼ遺伝子(argB)、アセチルオルニチントランスアミナーゼ遺伝子(argD)、オルニチンカルバモイルトランスフェラーゼ遺伝子(argF)、アルギノコハク酸シンテターゼ遺伝子(argG)、アルギノコハク酸リアーゼ遺伝子(argH)、カルバモイルフォスフェートシンテターゼ遺伝子(carAB)が挙げられる。
Ｌ－スレオニン生産菌
　本発明のＬ－スレオニン生産菌を誘導するための親株の例としては、E. coli TDH-6/pVIC40 (VKPM B-3996) (米国特許第5,175,107号、米国特許第5,705,371号)、E. coli 472T23/pYN7 (ATCC 98081) (米国特許第5,631,157号)、E. coli NRRL-21593 (米国特許第5,939,307号)、E. coli FERM BP-3756 (米国特許第5,474,918号)、E. coli FERM BP-3519及びFERM BP-3520 (米国特許第5,376,538号)、E. coli MG442 (Gusyatiner et al., Genetika (in Russian), 14, 947-956 (1978))、E. coli VL643及びVL2055 (EP 1149911 A)などのエシェリヒア属に属する株が挙げられるが、これらに限定されない。
　TDH-6株はthrC遺伝子を欠損し、スクロース資化性であり、また、そのilvA遺伝子がリーキー(leaky)変異を有する。この株はまた、rhtA遺伝子に、高濃度のスレオニンまたはホモセリンに対する耐性を付与する変異を有する。VKPM B-3996株は、RSF1010由来ベクターに、変異thrA遺伝子を含むthrA*BCオペロンを挿入したプラスミドpVIC40を保持する。この変異thrA遺伝子は、スレオニンによるフィードバック阻害が実質的に解除されたアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする。VKPM B-3996株は、1987年11月19日、オールユニオン・サイエンティフィック・センター・オブ・アンチビオティクス(Nagatinskaya Street 3-A, 117105 Moscow, Russia)に、受託番号RIA 1867で寄託されている。この株は、また、1987年4月7日、ロシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ(VKPM) (1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia)に、受託番号VKPM B-3996で寄託されている。
　E. coli VKPM B-5318 (EP 0593792B)も、本発明のＬ－スレオニン生産菌を誘導するための親株として使用できる。B-5318株は、イソロイシン非要求性であり、プラスミドpVIC40中のスレオニンオペロンの制御領域が、温度感受性ラムダファージC1リプレッサー及びPRプロモーターにより置換されている。VKPM B-5318は、1990年5月3日、ロシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ(VKPM) （住所：Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. 1）に、受託番号VKPM B-5318で寄託されている。
　好ましくは、本発明のＬ－スレオニン生産菌は、さらに、下記の遺伝子の１種以上の発現が増大するように改変されたものである。
スレオニンによるフィードバック阻害に耐性のアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする変異thrA遺伝子
ホモセリンキナーゼをコードするthrB遺伝子
スレオニンシンターゼをコードするthrC遺伝子
推定トランスメンブランタンパク質をコードするrhtA遺伝子
アスパルテート－β－セミアルデヒドデヒドロゲナーゼをコードするasd遺伝子
アスパルテートアミノトランスフェラーゼ（アスパルテートトランスアミナーゼ）をコードするaspC遺伝子
　E. coliのアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードするthrA遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号337～2799, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrA遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrL遺伝子とthrB遺伝子との間に位置する。E. coliのホモセリンキナーゼをコードするthrB遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号2801～3733, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrB遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrA遺伝子とthrC遺伝子との間に位置する。E. coliのスレオニンシンターゼをコードするthrC遺伝子は明らかにされている(ヌクレオチド番号3734～5020, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990)。thrC遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrB遺伝子とyaaXオープンリーディングフレームとの間に位置する。これら三つの遺伝子は、全て、単一のスレオニンオペロンとして機能する。スレオニンオペロンの発現を増大させるには、転写に影響するアテニュエーター領域を、好ましくは、オペロンから除去する(WO2005/049808, WO2003/097839)。
　スレオニンによるフィードバック阻害に耐性のアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする変異thrA遺伝子、ならびに、thrB遺伝子及びthrC遺伝子は、スレオニン生産株E. coli VKPM B-3996に存在する周知のプラスミドpVIC40から一つのオペロンとして取得できる。プラスミドpVIC40の詳細は、米国特許第5,705,371号に記載されている。
　rhtA遺伝子は、グルタミン輸送系の要素をコードするglnHPQ オペロンに近いE. coli染色体の18分に存在する。rhtA遺伝子は、ORF1 (ybiF遺伝子, ヌクレオチド番号764～1651,GenBank accession number AAA218541, gi:440181)と同一であり、pexB遺伝子とompX遺伝子との間に位置する。ORF1によりコードされるタンパク質を発現するユニットは、rhtA遺伝子と呼ばれている（rht: ホモセリン及びスレオニンに耐性）。また、rhtA23変異が、ATG開始コドンに対して-1位のG→A置換であることが判明している(ABSTRACTS of the 17th International Congress of Biochemistry and Molecular Biology in conjugation with Annual Meeting of the American Society for Biochemistry and Molecular Biology, San Francisco, California August 24-29, 1997, abstract No. 457, EP 1013765 A)。
　E. coliのasd遺伝子は既に明らかにされており(ヌクレオチド番号3572511～3571408, GenBank accession NC_000913.1, gi:16131307)、その遺伝子の塩基配列に基づいて作製されたプライマーを用いるPCRにより得ることができる(White, T.J. et al., Trends Genet., 5, 185 (1989)参照)。他の微生物のasd遺伝子も同様に得ることができる。
　また、E. coliのaspC遺伝子も既に明らかにされており(ヌクレオチド番号983742～984932, GenBank accession NC_000913.1, gi:16128895)、PCRにより得ることができる。他の微生物のaspC遺伝子も同様に得ることができる。
＜１－２＞ＹｄｃＩ活性の弱化
　本発明の細菌は、上述したようなＬ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選ばれるＬ－アミノ酸の生産能を有する細菌において、ｙｄｃＩ遺伝子がコードするタンパク質の活性が弱化するように改変された細菌である。なお、ｙｄｃＩ遺伝子がコードするタンパク質の活性が弱化するように改変したのちに、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選ばれるＬ－アミノ酸の生産能を付与してもよい。
　前記のとおり、ｙｄｃＩ遺伝子がコードするタンパク質はＬｙｓＲ型転写因子であると予想されており、同タンパク質の活性は、ＤＮＡ結合活性であると推定される。ここで、ＤＮＡ結合活性とは、YdcIタンパク質が特定のDNA配列に結合する活性を意味する。
　ＤＮＡ結合活性は、例えば、Linda Jen-Jacobson, Structural-perturbation approaches to thermodynamics of site-specific protein-DNA interactions, Methods in Enzymology, Volume 259, 1995, Pages 305-344に記載された方法によって測定することができる。
　「ｙｄｃＩ遺伝子によりコードされたタンパク質の活性が弱化するように改変された」とは、野生株、または親株のような非改変株に対して、細胞あたりのｙｄｃＩ遺伝子の発現量が低下した場合などが含まれる。ここで、ｙｄｃＩ遺伝子の発現量が低下した場合にはＹｄｃＩタンパク質の翻訳量が低下した場合も含む。
　ここで、対照となる非改変株、例えば野生株の腸内細菌科に属する細菌としては、エシェリヒア・コリMG1655株（ATCCNo.47076）、及びW3110株（ATCCNo.27325）、パントエア・アナナティスAJ13335株（FERM BP-6615）などが挙げられる。
　ｙｄｃＩ遺伝子の発現が非改変株、例えば親株、又は野生株と比べて低下していることの確認は、mRNAの量を野生型、あるいは非改変株と比較することによって確認出来る。発現量の確認方法としては、ノーザンハイブリダイゼーション、RT-PCRが挙げられる（Molecular cloning（Cold spring Harbor Laboratory Press,Cold spring Harbor(USA),2001））。発現量については、非改変株と比較して、低下していればよいが、例えば非改変株と比べて１／２倍以下、より好ましくは１／３倍以下、さらに好ましくは１／５倍以下に低下していることが望ましい。また、ｙｄｃＩ遺伝子の発現量の低下は、ｙｄｃＩ遺伝子にコードされるタンパク質の量が非改変株と比較して低下していることによっても確認することができ、例えば抗体を用いてウェスタンブロットによって検出することが出来る。（Molecular cloning（Cold spring Harbor Laboratory Press,Cold spring Harbor(USA),2001））。
　ｙｄｃＩ遺伝子としては、それぞれの細菌の染色体上に存在するｙｄｃＩ遺伝子を用いることができるが、例えば、配列番号２のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードするエシェリヒア・コリのｙｄｃＩ遺伝子 (配列番号１：GenBank Accession No. A64894 [GI: 7466846]) 又はそのホモログ遺伝子を例示することができる。また、配列番号１２または１４のアミノ酸配列を有するタンパク質をコードするパントエア・アナナティスのydcI遺伝子又はそれぞれのホモログ遺伝子を例示することができる。
　ｙｄｃＩホモログ遺伝子とは、他の微生物由来で、エシェリヒア属細菌やパントエア属細菌のｙｄｃＩ遺伝子と構造が高い類似性を示し、宿主においてその発現を低下させた時にＬ－グルタミン酸またはＬ－アルギニンの生産能を向上させ、ＤＮＡ結合活性を示すタンパク質をコードする遺伝子をいう。例えばｙｄｃＩのホモログとしては、シゲラ属、エンテロバクター属等のGenBankに登録されている遺伝子が挙げられる。さらに、ｙｄｃI遺伝子は、上記で例示された遺伝子との相同性に基づいて、ストレプトマイセス・セリカラー等のストレプトマイセス属細菌、ラクトコッカス属やラクトバチルス属等の乳酸菌からクローニングされるものであってもよい。エシェリヒア属細菌やパントエア属細菌のｙｄｃＩと相同性が高ければ、異なる遺伝子名が付与されているものでもよい。
　また、ｙｄｃＩ遺伝子ホモログは上記の配列情報に基づき、相同性が高い遺伝子を公知のデータベースから取得できる。アミノ酸配列および塩基配列の相同性は、例えばKarlin and AltschulによるアルゴリズムBLAST(Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 90, 5873 (1993))やFASTA(Methods Enzymol., 183, 63 (1990))を用いて決定することができる。このアルゴリズムBLASTに基づいて、BLASTNやBLASTXとよばれるプログラムが開発されている (http://www.ncbi.nlm.nih.gov参照)。
　また、本発明に用いるｙｄｃＩ遺伝子は、野生型遺伝子には限られず、コードされるタンパク質の機能、すなわちＤＮＡ結合活性が損なわれない限り、配列番号２、１２、１４のアミノ酸配列において、１若しくは複数の位置での１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加等を含む配列を有するタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。
　ここで、「１若しくは数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には１～２０個、好ましくは１～１０個、より好ましくは１～５個を意味する。上記の１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、または付加は、ＤＮＡ結合活性が維持される保存的変異である。保存的変異とは、置換部位が芳香族アミノ酸である場合には、Phe、Trp、Tyr間で、置換部位が疎水性アミノ酸である場合には、Leu、Ile、Val間で、極性アミノ酸である場合には、Gln、Asn間で、塩基性アミノ酸である場合には、Lys、Arg、His間で、酸性アミノ酸である場合には、Asp、Glu間で、ヒドロキシル基を持つアミノ酸である場合には、Ser、Thr間でお互いに置換する変異である。保存的変異の代表的なものは、保存的置換であり、保存的置換とみなされる置換としては、具体的には、AlaからSer又はThrへの置換、ArgからGln、His又はLysへの置換、AsnからGlu、Gln、Lys、His又はAspへの置換、AspからAsn、Glu又はGlnへの置換、CysからSer又はAlaへの置換、GlnからAsn、Glu、Lys、His、Asp又はArgへの置換、GluからGly、Asn、Gln、Lys又はAspへの置換、GlyからProへの置換、HisからAsn、Lys、Gln、Arg又はTyrへの置換、IleからLeu、Met、Val又はPheへの置換、LeuからIle、Met、Val又はPheへの置換、LysからAsn、Glu、Gln、His又はArgへの置換、MetからIle、Leu、Val又はPheへの置換、PheからTrp、Tyr、Met、Ile又はLeuへの置換、SerからThr又はAlaへの置換、ThrからSer又はAlaへの置換、TrpからPhe又はTyrへの置換、TyrからHis、Phe又はTrpへの置換、及び、ValからMet、Ile又はLeuへの置換が挙げられる。また、上記のようなアミノ酸の置換、欠失、挿入、付加、または逆位等には、ｙｄｃＩ遺伝子を保持する微生物の個体差、種の違いに基づく場合などの天然に生じる変異（mutant又はvariant）によって生じるものも含まれる。
　さらに、ｙｄｃＩ遺伝子は、配列番号２、１２、または１４のアミノ酸配列全体に対して、８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上、特に好ましくは９７％以上の相同性を有し、かつ、ＤＮＡ結合活性を有するタンパク質をコードする配列を用いることも出来る。
　また、ｙｄｃＩ遺伝子は、配列番号１の３０１－１２２１，配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８の塩基配列の相補配列又はこれらの相補配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつＤＮＡ結合活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡであってもよい。ここで、「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、一例を示せば、相同性が高いＤＮＡ同士、例えば８０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上、特に好ましくは９７％以上の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それより相同性が低いＤＮＡ同士がハイブリダイズしない条件、あるいは通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である60℃、１×ＳＳＣ，0.1％ＳＤＳ、好ましくは、0.1×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳ、さらに好ましくは、68℃、0.1×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳに相当する塩濃度、温度で、１回、より好ましくは２～３回洗浄する条件が挙げられる。
　プローブとしては、配列番号１の３０１－１２２１，配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８の相補配列の一部を用いることもできる。そのようなプローブは、配列番号１の３０１－１２２１，配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８の相補配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、これらの塩基配列を含むＤＮＡ断片を鋳型とするＰＣＲによって作製することができる。例えば、プローブとして、300 bp程度の長さのＤＮＡ断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件は、50℃、2×ＳＳＣ、0.1％ＳＤＳが挙げられる。
　ｙｄｃＩ遺伝子によってコードされるタンパク質の活性が弱化した細菌は、例えば、遺伝子組換え法を用いた相同組換え法（Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ　ｉｎ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｐｒｅｓｓ　（１９７２）；　Ｍａｔｓｕｙａｍａ，　Ｓ．　ａｎｄ　Ｍｉｚｕｓｈｉｍａ，　Ｓ．，　Ｊ．　Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．，　１６２，　１１９６（１９８５））により、染色体上のｙｄｃＩ遺伝子を、正常に機能しないｙｄｃＩ遺伝子（以下、「破壊型ｙｄｃＩ遺伝子」ということがある）で置換することによって得ることができる。
　相同組換えの機構は以下のとおりである。染色体上の配列と相同性を有する配列を持つプラスミド等が菌体内に導入されると、ある頻度で相同性を有する配列の箇所で組換えを起こし、導入されたプラスミド全体が染色体上に組み込まれる。この後さらに染色体上の相同性を有する配列の箇所で組換えを起こすと、再びプラスミドが染色体上から抜け落ちるが、この時組換えを起こす位置により破壊された遺伝子の方が染色体上に固定され、元の正常な遺伝子がプラスミドと一緒に染色体上から抜け落ちることもある。このような菌株を選択することにより、破壊型ｙｄｃＩ遺伝子が、染色体上の正常なｙｄｃＩ遺伝子と置換された菌株を取得することができる。
　このような相同組換えによる遺伝子破壊技術は既に確立しており、直鎖ＤＮＡを用いる方法、温度感受性プラスミドを用いる方法等が利用できる。また、薬剤耐性等のマーカー遺伝子が内部に挿入されたｙｄｃＩ遺伝子を含み、かつ、目的とする細菌細胞内で複製できないプラスミドを用いることによっても、ｙｄｃＩ遺伝子の破壊を行うことができる。すなわち、前記プラスミドで形質転換され、薬剤耐性を獲得した形質転換体は、染色体ＤＮＡ中にマーカー遺伝子が組み込まれている。このマーカー遺伝子は、その両端のｙｄｃＩ遺伝子配列と染色体上のこれらの遺伝子との相同組換えによって組み込まれる可能性が高いため、効率よく遺伝子破壊株を選択することができる。
　エシェリヒア属細菌で機能する温度感受性プラスミドとしては、ｐＭＡＮ９９７（ＷＯ　９９／０３９８８号国際公開パンフレット）、ｐＨＳＧ４１５、ｐＨＳＧ４２２（Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ－Ｇｏｔｏｈ，　Ｔ．　ｅｔ　ａｌ，　Ｇｅｎｅ，　１６，　２２７－２３５　（１９８１））等が挙げられる。
　遺伝子破壊に用いる破壊型ｙｄｃＩ遺伝子は、具体的には、制限酵素消化及び再結合によるこれらの遺伝子の一定領域の欠失、これらの遺伝子への他のＤＮＡ断片（マーカー遺伝子等）の挿入、または部位特異的変異法（Ｋｒａｍｅｒ，　Ｗ．　ａｎｄ　Ｆｒｉｔｓ，　Ｈ．　Ｊ．，　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，　１５４，　３５０　（１９８７））や次亜硫酸ナトリウム、ヒドロキシルアミン等の化学薬剤による処理（Ｓｈｏｒｔｌｅ，　Ｄ．　ａｎｄ　Ｎａｔｈａｎｓ，　Ｄ．，　Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　Ｕ．Ｓ．Ａ．，　７５，　２７０（１９７８））によって、ｙｄｃＩ遺伝子のコーディング領域またはプロモーター領域等の塩基配列の中に１つまたは複数個の塩基の置換、欠失、挿入、付加または逆位を起こさせることにより、コードされるタンパク質の活性を低下又は消失させるか、又はｙｄｃＩ遺伝子の転写を低下または消失させることにより、取得することができる。これらの態様の中では、制限酵素消化及び再結合によりｙｄｃＩ遺伝子の一定領域を欠失させる方法、又はこれらの遺伝子へ他のＤＮＡ断片を挿入する方法が、確実性及び安定性の点から好ましい。
　ｙｄｃＩ遺伝子が破壊されたことは、サザンブロッティングやＰＣＲ法により、染色体上の遺伝子を解析することによって、確認することができる。
　なお、各種遺伝子の取得、ハイブリダイゼーション、ＰＣＲ、プラスミドＤＮＡの調製、ＤＮＡの切断及び連結、形質転換等の方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，　Ｊ．，　Ｆｒｉｔｓｃｈ，　Ｅ．　Ｆ．，　Ｍａｎｉａｔｉｓ，　Ｔ．，　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ，　Ｃｏｌｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｐｒｅｓｓ，　１．２１　（１９８９）に記載されている。
　また、機能を有するＹｄｃＩタンパク質が産生されないようになった変異株は、γ－プロテオバクテリアを紫外線照射またはＮ－メチル－Ｎ’－ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）もしくは亜硝酸などの通常変異処理に用いられる変異剤によって処理することによって、も取得することができる。
＜２＞本発明のＬ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の製造法
　上記のようにして得られる、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能を有し、かつ、細胞内でＹｄｃＩタンパク質の活性が弱化するように改変された細菌を培地に培養し、該培地又は菌体中に目的物質を生成蓄積させ、該培地又は菌体より前記Ｌ－アミノ酸を採取することにより、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸を製造することができる。
　培養に用いる培地は、炭素源、窒素源、無機塩類、その他必要に応じてアミノ酸、ビタミン等の有機微量栄養素を含有する通常の培地を用いることができる。合成培地または天然培地のいずれも使用可能である。培地に使用される炭素源および窒素源は培養する菌株が利用可能であるものならばいずれの種類を用いてもよい。
　炭素源としては、グルコース、グリセロール、フラクトース、スクロース、マルトース、マンノース、ガラクトース、澱粉加水分解物、糖蜜等の糖類が使用でき、その他、酢酸、クエン酸等の有機酸、エタノール等のアルコール類も単独あるいは他の炭素源と併用して用いることができる。窒素源としては、アンモニア、硫酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩または硝酸塩等が使用することができる。有機微量栄養素としては、アミノ酸、ビタミン、脂肪酸、核酸、更にこれらのものを含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆たん白分解物等が使用でき、生育にアミノ酸などを要求する栄養要求性変異株を使用する場合には要求される栄養素を補添することが好ましい。
　特にＬ－グルタミン酸が析出するような条件に調整された液体培地を用いる場合、培地中にパントテン酸を添加すると、より効率よく晶析できる（WO2004/111258号パンフレット）。無機塩類としては、りん酸塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が使用できる。
　培養は、好ましくは、発酵温度２０～４５℃、ｐＨを３～９に制御し、通気培養を行う。培養中にｐＨが下がる場合には、例えば、炭酸カルシウムを加えるか、アンモニアガス等のアルカリで中和する。このような条件下で、好ましくは１０時間～１２０時間程度培養することにより、培養液中に目的アミノ酸が蓄積される。
　また、Ｌ－グルタミン酸が析出するような条件に調整された液体培地を用いて、培地中にＬ－グルタミン酸を析出させながら培養を行うことも出来る。Ｌ－グルタミン酸が析出する条件としては、例えば、ｐＨ５．０～４．０、好ましくはｐＨ４．５～４．０、さらに好ましくはｐＨ４．３～４．０、特に好ましくはｐＨ４．０を挙げることができる。
　また、Ｌ－グルタミン酸を培地中に析出させる場合には、予めＬ－グルタミン酸、Ｌ－リジンの結晶を種晶として添加しておくとより効率よく晶析できる（欧州特許1233069号、欧州特許出願公開1624069号）。
　培養終了後の培養液からＬ－アミノ酸を採取する方法は、公知の回収方法に従って行えばよい。例えば、培養液から菌体を除去した後に濃縮晶析する方法あるいはイオン交換クロマトグラフィー等によって採取される。Ｌ－グルタミン酸が析出するような条件下で培養した場合、培養液中に析出したＬ－グルタミン酸は、遠心分離又は濾過等により採取することができる。この場合、培地中に溶解しているＬ－グルタミン酸を晶析した後に、併せて単離してもよい。
　なお、Ｌ－アルギニンを製造する際には、培養中のｐＨが６．５～９．０、培養終了時の培地のｐＨが７．２～９．０となるように制御し、発酵中の発酵槽内圧力が正となるように制御するか、又は、炭酸ガスもしくは炭酸ガスを含む混合ガスを培地に供給して、培地中の重炭酸イオン及び／または炭酸イオンが少なくとも２ｇ／Ｌ以上存在する培養期があるようにし、前記重炭酸イオン及び／または炭酸イオンを塩基性アミノ酸を主とするカチオンのカウンタイオンとする方法で発酵し、Ｌ－アルギニンを回収する方法で製造を行ってもよい（特開2002-065287号参照、米国特許出願公開第2002025564号）。
［実施例］
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
＜エシェリヒア・コリのｓｕｃＡ遺伝子、ｙｄｃＩ遺伝子二重破壊株の作成＞
　エシェリヒア・コリのｓｕｃＡ遺伝子の欠失は特開２００４－８９１８８（Ｐ２００４－８９１８８Ａ）に記載のＭＧ１６５５ΔｓｕｃＡを用いた。ｙｄｃＩ遺伝子の欠失は、DatsenkoとWannerによって最初に開発された「Red-driven integration」と呼ばれる方法[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, vol. 97, No. 12, p6640-6645] によって行った。この方法によれば、目的とする遺伝子を合成オリゴヌクレオチドの5'側にデザインし、抗生物質耐性遺伝子を３’側にデザインした合成オリゴヌクレオチドを用いて得られたPCR産物を用いて、一段階で遺伝子破壊株を構築することが出来る。
　エシェリヒア・コリＫ－１２株のゲノムＤＮＡの全塩基配列は既に明らかにされている（Ｂｌａｔｔｎｅｒ　Ｆ．Ｒ．，　Ｐｌｕｎｋｅｔｔ　Ｇ．，　Ｂｌｏｃｈ　Ｃ．Ａ．　ｅｔ　ａｌ．，　Ｓｃｉｅｎｃｅ，　２２７，　１４５３－１４７４　（１９９７））。既知のｙｄｃＩ遺伝子の塩基配列に基づいて遺伝子破壊株を作製した。
　PCRの鋳型として、プラスミドpMW118-attＬ－Cm-attRを使用した。pMW118-attＬ－Cm-attRは、pMW118(宝バイオ社製)にλファージのアタッチメントサイトであるattL及びattR遺伝子と抗生物質耐性遺伝子であるcat遺伝子を挿入したプラスミドであり、attＬ－cat-attRの順で挿入されている。attL配列を配列番号３に、attR配列を配列番号４に示す。
　ｙｄｃＩ遺伝子及び鋳型プラスミドに抗生物質耐性を付与する遺伝子のそれぞれに近接する領域に、それぞれ相補的なプライマーを設計した。配列番号５および６示すような合成DNAプライマーを2本通常の方法で合成した。このプライマーを用いてpMW118-attＬ－Cm-attRをテンプレートに、PCRを行った。
　増幅したPCR産物をQIAGEN PCR Purification Kit (Cat.No. 28104)で精製し、温度感受性の複製能を有するプラスミドpKD46を含むMG1655ΔsucA(以下MV1655ΔsucA／pKD46と表記する)をエレクトロポレーションするために用いた。プラスミドpKD46[Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000, vol. 97, No. 12, p6640-6645] は、アラビノース誘導性ParaBプロモーターに制御されるλRedシステムの遺伝子（λ、β、exo遺伝子）を含むλファージの合計2154塩基のDNAフラグメント（GenBank/EMBL アクセッション番号 J02459, 第31088番目～33241番目）を含む。プラスミドpKD46はPCR産物をMG1655ΔsucAに組み込むために必要である。
　エレクトロポレーション用のコンピテントセルは次のようにして調製した。100mg／Lのアンピシリンを含んだLB培地中で30℃、一晩培養したMG1655ΔsucA /pKD46を、アンピシリンとL-アラビノース（1mM）を含んだ5mLのLB培地で100倍希釈した。得られた希釈物を30℃で通気しながらOD600が約0.6になるまで生育させた後、氷冷した1mM HEPES(pH7.0)で３回洗浄することによってエレクトロポレーションに使用できるようにした。エレクトロポレーションは50μＬのコンピテントセルと約100ngのPCR産物を用いて行った。エレクトロポレーション後のセルは１ｍＬのSOC培地[モレキュラークローニング：実験室マニュアル第２版、Sambrook, J.ら、Cold Spring Harbor Laboratory Press（1989年）]を加えて37℃で1時間培養した後、LB寒天培地上、37℃で平板培養し、クロラムフェニコール耐性組換え体を選択した。次に、pKD46プラスミドを除去するために、クロラムフェニコール入りのLB寒天培地上、37℃で継代し、得られたコロニーのアンピシリン耐性を試験し、pKD46が脱落しているアンピシリン感受性株を取得した。クロラムフェニコール耐性遺伝子によって識別できるｙｄｃＩ遺伝子の欠失を含む変異体を、配列番号７と配列番号８に示す合成DNAを用いたPCRによって確認した。ｙｄｃＩ遺伝子欠損株MG1655ΔsucA,ydcI::catの細胞のＤＮＡを鋳型にして得られたPCR産物の長さは野生株より長く、ydcI遺伝子内部にクロラムフェニコール耐性遺伝子が挿入されていることが確認され、ydcI遺伝子が欠損されていることを確認できた。クロラムフェニコール耐性遺伝子が挿入されたｙｄｃＩ破壊株をMG1655ΔsucAΔydcI株と名づけた。
＜エシェリヒア属細菌Ｌ－グルタミン酸生産株でのydcI欠損の効果＞
　ｙｄｃＩ遺伝子破壊のＬ－グルタミン酸発酵への効果を検討するため、ＭＧ１６５５ΔｓｕｃＡΔｙｄｃＩ株を、ｓｕｃＡ遺伝子欠損株ＭＧ１６５５ΔｓｕｃＡを対照として培養し、Ｌ－グルタミン酸生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
　MG1655ΔsucAΔydcI及び対照株MG1655ΔsucAをLB培地に植菌し、37℃で一晩前培養した。プレート1/6枚分の菌体を500ml容三角フラスコ中50mlの培養下記組成のグルコース培地に植菌し、37℃にて48時間培養した。培養後、培地中に蓄積したＬ－グルタミン酸を、バイオテックアナライザー（サクラ精機）により測定した。
〔グルコース培地組成〕
  グルコース               40g/L
  MgSO4・7H2O          1.0 g/L
  (NH4)2SO4            20 g/L
  KH2PO4               1.0g/L
  酵母エキス              2.0g/L
  FeSO4・7H2O          0.01g/L
  MnSO4・5H2O           0.01g/L
  Thiamine HCl            0.01g/L
  クロラムフェニコール     25mg/L
  炭酸カルシウム            30g/L
pH7.0 (KOHで調整)  殺菌条件：120℃、20分
　結果を表１に示す。対照のMG1655ΔsucAに比べ、ydcI遺伝子を破壊したMG1655ΔsucAΔydcIでは、Ｌ－グルタミン酸（Glu）の収率が大幅に向上した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
＜エシェリヒア・コリＡｒｇ生産菌におけるｙｄｃＩ欠損効果の確認＞
　エシェリヒア・コリのＡｒｇ生産菌は２３７株を使用した。２３７株は、エシェリヒア・コリＫ１２　ｉｌｖＡ：：Ｔｎ５から１－メチル－３－ニトロ－１－ニトロソグアニジンにより誘導された、ピリミジンアナログである６－アザウラシルに耐性な変異株である。同株は、VKPM B-7925の名でロシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオーガニズム（Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika）（住所：Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. 1）に2000年4月10日に寄託されている。２３７株におけるｙｄｃＩ遺伝子の欠失は実施例1に示す方法に従って行い、その結果２３７ΔydcI株が得られた。
　得られた２３７ΔydcI株についてＬ－アルギニン収率を確認するため培養評価を行った。培養評価は試験管を使い、３７℃で５０時間の振とう培養を行った。用いた培地の組成は、グルコース６０ｇ／Ｌ、（ＮＨ4）2ＳＯ4 ２５ｇ／Ｌ、酵母エキス　５ｇ/Ｌ、ＫＨ2ＰＯ4 ２ｇ／Ｌ、 ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ １ｇ／Ｌ、 ＣａＣＯ3　２５ｇ／Ｌ、 Ｔｈｉａｍｉｎｅ／ＨＣｌ ０．１ｍｇ／Ｌ、　Ｌ－Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ ０．５ｇ／Ｌ。培地中に蓄積したＬ－アルギニンの量をＨＰＬＣにより測定した。ＨＰＬＣの測定条件は、ジーエルサイエンス社製カラムＩＮＥＲＴＯＳＩＬ ＯＤＳ―３ （４．０×２５０ｍｍ）を用い、使用したバッファーは１Ｌ当たり８５％リン酸 ５．７６５ｇ、98%ヘプタンスルホン酸ナトリウム １．０ｇを含み、水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調整後、メタノールを７０ｍｌ添加し、１Ｌにメスアップした。
　結果を表２に示す。対照の２３７株に比べ、ydcI遺伝子を破壊した２３７ΔydcIでは、Ｌ－アルギニン（Ａｒｇ）の収率が大幅に向上した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
＜パントエア・アナナティスでのｃ１１２９、ｃ１７０５遺伝子破壊株の作成＞
　エシェリヒア・コリのｙｄｃＩ遺伝子産物とアミノ酸配列で４５%以上の一致度を持つパントエア・アナナティスのｃ１１２９遺伝子、ｃ１７０５遺伝子を、パントエア・アナナティスにおけるｙｄｃＩ遺伝子ホモログとして扱うこととした。配列番号１１、１３にパントエア・アナナティスのｃ１１２９遺伝子、ｃ１７０５遺伝子の塩基配列を、配列番号１２、１４にアミノ酸配列を示す。パントエア・アナナティスの遺伝子破壊株作成に関しては、ＳＣ１７（０）株を利用した。同株は、2005年9月21にロシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオーガニズム（Russian National Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika）（住所：Russia, 117545 Moscow, 1 Dorozhny proezd. 1）に受託番号VKPM B-9246のもとに寄託されている。
　ｃ１１２９遺伝子とｃ１７０５遺伝子の欠失は、WO 2008/090770の方法に従った。「Red-driven integration」あるいは「Red-mediated integration」と呼ばれる方法（Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 97. 6640-6645 (2000)）を利用した方法である。この方法によれば、目的とする遺伝子を合成オリゴヌクレオチドの5'側にデザインし、抗生物質耐性遺伝子を３’側にデザインした合成オリゴヌクレオチドを用いて得られたPCR産物を用いて、一段階で遺伝子破壊株を構築することが出来る。
　PCRには、配列番号１５と１６及び１７と１８のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用い、pMW118-(λattL-Kmr-λattR）プラスミドを鋳型として使用した。WO 2008/090770に示されているように、プラスミドpMW118-(λattL-Kmr-λattR）は、pMW118(宝バイオ社製)にλファージのアタッチメントサイトであるattL及びattR遺伝子とカナマイシン耐性遺伝子を挿入したプラスミドであり、attＬ－Kmr-attRの順で挿入されている。
　増幅したPCR産物を精製し、パントエア・アナナティス染色体へのλ依存インテグレーションに用いた。ヘルパープラスミドＲＳＦ－Ｒｅｄ－ＴＥＲを、λファージＲｅｄ遺伝子の担体として使用した。パントエア・アナナティスのエレクトロコンピテント細胞を得るために、ＲＳＦ－Ｒｅｄ－Ｔｅｒプラスミドで形質転換しＳＣ１７（０）株を５０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地で３４℃で一夜培養した。続いて、培養液を５０μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含む新鮮なLB培地で１００倍に希釈し、ＯＤ600が０．３になるまで３４℃で通気下で生育させた。その後、ＩＰＴGを１ｍＭ添加し、ＯＤ600が０．７になるまで培養を続けた。１０ｍＭのサンプルを等量の脱イオン水で３回洗浄し、４０μｌの冷１０％グリセロールに懸濁させた。エレクトロポレーションの直前に、５μｌの脱イオン水に溶解させたインビトロ増幅ＤＮＡ断片１００－２００ｎｇを細胞懸濁液に加えた。作業は、細菌エレクトロポレーション装置（「ＢｉｏＲａｄ」米国、カタログ番号１６５－２０８９, バージョン２－８９）を用いて行った。
　エレクトロポレーション後、直ちにグルコース（０．５%）を補填した１ｍｌのLB培地を細胞懸濁液に加えた。そして、細胞を３４℃で２時間通気下で生育させ、２５μｇ／ｍｌのクロラムフェニコールを含むＬＢ固体培地にプレートし、３４℃で一夜インキュベートした。選択されたＫｍRのインテグラントを、ＩＰＴＧ(１ｍＭ)及びスクロース(５ｇ/Ｌ)を添加したＬＢ培地プレートにストリークし、３４℃で生育させて単一コロニーを形成させた。ＲＳＦ－Ｒｅｄ－ＴＥＲヘルパープラスミドをインテグラントから除去するために、ＫｍR、ＣｍSバリアントを単離した。カナマイシン耐性遺伝子によって識別できるｃ１１２９及びｃ１７０５遺伝子の欠失を含む変異体を、配列番号１９と２０及び配列番号２１と２２に示す合成DNAを用いたＰＣＲによって確認した。ｃ１１２９及びｃ１７０５遺伝子欠損株であるＳＣ１７（０）Δｃ１１２９及び　ＳＣ１７（０）Δｃ１７０５の細胞のＤＮＡを鋳型にして得られたＰＣＲ産物の長さはＳＣ１７（０）株より長く、ｃ１１２９及びｃ１７０５遺伝子内部にカナマイシン耐性遺伝子が挿入されていることが確認され、ｃ１１２９及びｃ１７０５遺伝子が欠損されていることを確認できた。カナマイシン耐性遺伝子が挿入されたｃ１１２９及びｃ１７０５破壊株をそれぞれＳＣ１７（０）Δｃ１１２９株、ＳＣ１７（０）Δｃ１７０５株と名づけた。
　この菌株からゲノムDNAを抽出し、エレクトロポレーションによりNA1株（WO 2008/090770）を形質転換した。NA1株は、AJ13601株（特開平2001-333769号公報参照）より、RSFCPGおよびpSTVCBの２つのプラスミドを除去し、Ｌ－グルタミン酸生産用プラスミドRSFPPGプラスミド（WO 2008/090770）を導入することで取得した。なお、AJ13601株は、１９９９年８月１８日に経済産業省工業技術院生命工学工業技術研究所（郵便番号305-8566　茨城県つくば市東１丁目１番３号）に受託番号FERM　P-17516として寄託され、２０００年７月６日にブタペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-7207が付与されている。また、RSFCPGおよびpSTVCBの両プラスミドは、特開2001-333769号公報に記載されているプラスミドである。RSFCPGは、エシェリヒア・コリ由来のgltA、ppc、gdhAの各遺伝子を含むプラスミドである。pSTVCBは、pSTV29（宝酒造（株））にブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム由来のgltA遺伝子が挿入されたプラスミドである。
　SC17(0)Δc1129及び SC17(0)Δc1705のゲノムDNAを導入したNA1株を、L培地（バクトトリプトン10 g、イーストエキストラクト 5 g、NaCl 5 g、寒天15 gを純水1Lに含む培地、pH7.0）に、最少培地成分（グルコース0.5g、硫酸マグネシウム2mM、リン酸一カリウム3g、塩化ナトリウム0.5g 塩化アンモニウム1g リン酸2ナトリウム6gを純水1Lに含む培地）、および、40mg/Lのカナマイシン、12.5mg/Lのテトラサイクリン塩酸塩と25mg/Lのクロラムフェニコールを添加したプレートにて選択し、約20個のコロニーを形質転換体として取得した。これらの株はc1129遺伝子上、あるいはc1709遺伝子上にλattL-Kmr-λattR-Ptacの断片が挿入されており、そのうちのそれぞれ１クローンを選び、NA1Δc1129、NA1Δc1705と名付けた。
＜パントエア・アナナティスＬ－グルタミン酸生産株でのｃ１１２９遺伝子、及びｃ１７０５遺伝子欠損の効果＞
　ｃ１１２９及びｃ１７０５遺伝子破壊のＬ－グルタミン酸発酵への効果を検討するため、NA1Δc1129株及びNA1Δc1705株を、NA1株を対照として培養し、Ｌ－グルタミン酸生産量を測定した。以下に、そのための培地および培養方法ならびに分析方法を示す。
　NA1Δc1129株、NA1Δc1705株及び対照株NA1をLBGM9培地に植菌し、34℃で一晩前培養した。LBGM9培地組成は、Bacto Tryptone 10g/L, YE 5g/L, NaCl 10g/L, NaOH 40mg/L, Na2HPO4 6g/L, KH2PO4 3g/L, NaCl 0.5g/L, NH4Cl 1g/L, Glc5g/L, 寒天15g/L である。プレート1/8枚分の菌体を試験管5mlの培養下記組成のグルコース培地に植菌し、34℃にて24時間培養した。培養後、培地中に蓄積したＬ－グルタミン酸を、バイオテックアナライザー（サクラ精機）により測定した。
〔グルコース培地組成〕
  グルコース              30g/L
  MgSO4・7H2O                0.5 g/L
  (NH4)2SO4            　  20 g/L
  KH2PO4                    2.0g/L
  酵母エキス              2.0g/L
  FeSO4・7H2O                0.02g/L
  MnSO4・5H2O              　0.02g/L
  Thiamine HCl             0.01g/L
  リジン　　　　　        0.2g/L
　メチオニン　　　　　    0.2g/L
　ジアミノピメリン酸　　　0.2g/L
  炭酸カルシウム         20g/L
pH7.0 (KOHで調整)  殺菌条件：115℃、10分
　結果を表３に示す。対照のNA1に比べ、c1129遺伝子を破壊したNA1Δc1129及びc1705遺伝子を破壊したNA1Δc1705では、Ｌ－グルタミン酸（Glu）の収率が大幅に向上した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
エシェリヒア属細菌Ｌ－スレオニン生産株でのydcI増幅の効果
　エシェリヒア・コリのＬ－スレオニン生産株として、エシェリヒア・コリVKPM B-5318株(欧州特許第0593792号明細書参照)を用いることができる。このVKPM B-5318株（以下、「B-5318」と記載する）は、イソロイシン非要求性菌株であり、ラムダファ－ジの温度感受性C1リプレッサー、PRプロモ－ターおよびCroタンパク質のN末端部分の下流に、本来持つ転写調節領域であるアテニュエーター領域を欠失したスレオニンオペロンすなわちスレオニン生合成関与遺伝子が位置し、スレオニン生合成関与遺伝子の発現がラムダファ－ジのリプレッサーおよびプロモ－ターにより支配されるように構築された組換えプラスミドDNAを保持している。
　B-5318株におけるｙｄｃＩ遺伝子の欠失は実施例1に示す方法に従って行い、その結果B-5318ΔydcI株が得られる。
　B-5318ΔydcI株を25 mg/Lのカナマイシンを含むLB培地にてOD600が約0.6となるまで37℃にて培養した後、培養液と等量の40%グリセロール溶液を加えて攪拌した後、適当量ずつ分注、-80℃に保存し、グリセロールストックとする。
　これらの株のグリセロールストックを融解し、各100μLを、25 mg/Lのクロラムフェニコールを含むLプレートに均一に塗布し、37℃にて24時間培養する。得られたプレートのおよそ1/8量の菌体を、500 mL容坂口フラスコの、25 mg/Lのクロラムフェニコールを含む以下に記載の発酵培地20 mLに接種し、往復振とう培養装置で40℃において18時間培養する。培養後、培地中に蓄積したＬ－スレオニンの量をアミノ酸アナライザーL-8500（Hitachi社製）を用いて測定する。培養に用いる培地組成を以下に示す。
［エシェリヒア属細菌　Ｌ－スレオニン生産培地］
グルコース　　　　　　　　　　　 40g/L
(NH4)2SO4　　　　　　　　　　　   16g/L
KH2PO4　　　　　　　　　　　　　 1.0g/L
MgSO4・7H2O 　　　　　　　　　　　1.0g/L
FeSO4・7H2O 　　　　　　　　　　　0.01g/L
MnSO4・7H2O 　　　　　　　　　　　0.01g/L
Yeast Extract 　　　　　　　　　2.0g/L
CaCO3（日本薬局方）　　　　　　 30g/L
　KOHでpH7.0に調整し、120℃で20分オートクレーブを行う。但し、グルコースとMgSO4・7H2Oは混合し、別殺菌する。CaCO3は乾熱滅菌後に添加する。
　ydcI欠損株B-5318ΔydcIは、対照のB-5318と比べて、生育とＬ－スレオニンの蓄積が上昇する。
［配列表の説明］
配列番号１：Ｅ．ｃｏｌｉのｙｄｃＩ遺伝子の塩基配列
配列番号２：Ｅ．ｃｏｌｉのｙｄｃＩ遺伝子によってコードされるアミノ酸配列
配列番号３：ａｔｔＬの塩基配列
配列番号４：ａｔｔＲの塩基配列
配列番号５：ydcI破壊用５’プライマーの塩基配列
配列番号６：ydcI破壊用３’プライマーの塩基配列
配列番号７：ydcI破壊検出用５’プライマーの塩基配列
配列番号８：ydcI破壊検出用３’プライマーの塩基配列
配列番号９：Ｅ．ｃｏｌｉのｓｕｃＡ遺伝子の塩基配列
配列番号１０：Ｅ．ｃｏｌｉのｓｕｃＡ遺伝子によってコードされるアミノ酸配列
配列番号１１：パントエア・アナナティスのｃ１１２９遺伝子の塩基配列
配列番号１２：パントエア・アナナティスのｃ１１２９遺伝子によってコードされるアミノ酸配列
配列番号１３：パントエア・アナナティスのｃ１７０５遺伝子の塩基配列
配列番号１４：パントエア・アナナティスのｃ１７０５遺伝子によってコードされるアミノ酸配列
配列番号１５：ｃ１１２９破壊用５’プライマーの塩基配列
配列番号１６：ｃ１１２９破壊用３’プライマーの塩基配列
配列番号１７：ｃ１１２９破壊検出用５’プライマーの塩基配列
配列番号１８：ｃ１１２９破壊検出用３’プライマーの塩基配列
配列番号１９：ｃ１７０５破壊用５’プライマーの塩基配列
配列番号２０：ｃ１７０５破壊用３’プライマーの塩基配列
配列番号２１：ｃ１７０５破壊検出用５’プライマーの塩基配列
配列番号２２：ｃ１７０５破壊検出用３’プライマーの塩基配列

Claims (6)

  1. Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の生産能を有し、かつ、ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化するように改変された腸内細菌科に属する細菌。
  2. ｙｄｃI遺伝子の発現量を減少させることまたはｙｄｃＩ遺伝子を破壊することにより、ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質の活性が弱化された、請求項１に記載の細菌。
  3. ｙｄｃI遺伝子によりコードされるタンパク質が、配列番号２、１２または１４に示すアミノ酸配列を有するタンパク質、または配列番号２、１２または１４において１または数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列を有し、DNA結合活性を有するタンパク質である、請求項１または２に記載の細菌。
  4. 前記ｙｄｃI遺伝子が、下記（ａ）または（ｂ）に記載のＤＮＡである、請求項１～３のいずれかに記載の細菌：
    　（ａ）配列番号１の３０１－１２２１、配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８に示す塩基配列を含むＤＮＡ、
    　（ｂ）配列番号１の３０１－１２２１、配列番号１１の３０１－１２３０または配列番号１３の３０１－１２１８に示す塩基配列又は同塩基配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、かつ、DNA結合活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡ。
  5. エシェリヒア属細菌、エンテロバクター属細菌またはパントエア属細菌である請求項１～４のいずれか一項に記載の細菌。
  6. 請求項１～５のいずれか一項に記載の細菌を培地で培養して、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸を該培地中又は菌体内に生成蓄積させ、該培地又は菌体より前記Ｌ－アミノ酸を回収することを特徴とする、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アルギニン及びＬ－スレオニンから選択されるＬ－アミノ酸の製造法。
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