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WO2009113743A1 - Peg化ラクトフェリン複合体及びその製造方法 - Google Patents

Peg化ラクトフェリン複合体及びその製造方法 Download PDF

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WO2009113743A1
WO2009113743A1 PCT/JP2009/055557 JP2009055557W WO2009113743A1 WO 2009113743 A1 WO2009113743 A1 WO 2009113743A1 JP 2009055557 W JP2009055557 W JP 2009055557W WO 2009113743 A1 WO2009113743 A1 WO 2009113743A1
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WO
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peg
complex
lactoferrin
ratatopherin
reaction
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Application number
PCT/JP2009/055557
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English (en)
French (fr)
Inventor
佐藤淳
Original Assignee
よこはまティーエルオー株式会社
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Filing date
Publication date
Application filed by よこはまティーエルオー株式会社 filed Critical よこはまティーエルオー株式会社
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Definitions

  • the present invention relates to a biologically active complex of ratatopherin and a non-peptide hydrophilic polymer such as polyethylene glycol (PEG), a production method thereof, use thereof, and the like.
  • PEG polyethylene glycol
  • biopolymers and non-peptidic hydrophilic polymers such as PEGG are conjugated for the purpose of adjusting the properties of biopolymers (hereinafter referred to as “complexation”).
  • PEG PEG or similar compounds
  • complexation is generally performed by attaching an active group to the end of a non-peptidic hydrophilic polymer and reacting with a functional group present on the surface of a molecule such as a protein.
  • Non-peptidic hydrophilic polymer chain partially covers the molecular surface of the protein, and the antigenicity and immunogenicity by synored the epitope.
  • the complexed substance has a delayed clearance in vivo and the life span in the body is extended.
  • the complexed protein and the like it is frequently observed that the active site is affected by the presence of the non-peptide hydrophilic polymer and the biological activity is reduced.
  • Non-Patent Document 1 Monfardini et al., Bioconjug Chem. 1995 6 (1): 62-9.
  • As for interferons it has been observed that a complex with a branched PEG has a higher antiproliferative activity than a complex with another PEG and the interferon itself (Patent Document 1: Japanese Patent Laid-Open No. Hei 1). 0— 6 7 8 0 0).
  • Ratatopherin (hereinafter abbreviated as “LF”) is mainly present in mammalian milk, and is also found in neutrophils, tears, saliva, nasal discharge, bile, semen, etc. It is a glycoprotein with a mass of about 80,000. Ratatopherin belongs to the transferrin family because of its ability to bind iron.
  • the physiological activities of ratatopherin include antibacterial action, iron metabolism regulation action, cell proliferation activation action, hematopoiesis action, anti-inflammatory action Antioxidant action, phagocytosis action, antiviral action, bifidobacteria growth promotion action, anticancer action, cancer metastasis prevention action, translocation prevention action, etc. are known.
  • lactoferrin has an effect of improving lipid metabolism, analgesic'anti-stress action, and anti-aging action.
  • lactoferrin is a multifunctional physiologically active protein that exhibits various functions, and is expected to be used in applications such as pharmaceuticals and foods to recover or enhance health. Foods containing are already on the market.
  • Ratatopherin when taken orally, is hydrolyzed by pepsin, an acidic protease present in gastric juice, and is broken down into peptides, so ratatopherin molecules can hardly reach the intestinal tract.
  • lactoferrin receptors are known to exist in the small intestinal mucosa in the digestive tract, and recently it has been revealed that lactoferrin is taken into the body from the intestinal tract and expresses biological activity. Yes. Therefore, in order to exert the biological activity of ratatopherin, it is important that ratatoferrin reaches the intestine without being hydrolyzed by pepsin in the gastric juice.
  • Non-patent Document 2 C. 0. Beauchamp et al. Anal. Biochem. 131: 25-33 (1983)
  • the PEG used in the PEGation reaction was one in which the OH group of monomethoxypolyethyleneglycolanol (mPEG) was activated with 1,1, -carbonylimidazole.
  • mPEG monomethoxypolyethyleneglycolanol
  • this document only describes that the complex of linear PEG and LF had a life span extended by 5 to 20 times, and that PEGylated LF There is no mention of biological activity, degree of PEGylation, homogeneity, etc.
  • the inventors of the present invention as a result of using a branched non-peptide hydrophilic polymer, bound such a molecule to a limited site on the surface of the rato-ferrin molecule, thereby producing a natural rata.
  • the present inventors succeeded in obtaining a biologically active ratatopherin complex having 30% or more of iron chelating ability of topherin (Patent Document 2).
  • the linear type was not successful.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Laid-Open No. 10-6780
  • Patent Document 2 Japanese Patent Application Laid-Open No. 2 0 07-7 0 2 7 7
  • Non-patent literature 1 Monfardini et al., Bioconjug Chera. 1995 6 (1): 62-9
  • Non-patent literature 2 C. 0. Beauchamp et al., Anal. Biochem. 131: 25-33 (1983) Disclosure
  • the present invention relates to a complex of a linear non-peptidic hydrophilic polymer having high clinical usefulness and ratatoferrin, which has reduced antigenicity, imparted pepsin resistance, and prolonged life in the body, and a method for producing the same
  • the purpose is to provide.
  • it is intended to provide a ratatofurin complex that maintains a certain percentage of the biological activity of natural lactoferrin, has a significantly prolonged life span, and has a clinical utility superior to natural lactoferrin, and a method for producing the same.
  • the present inventor has studied the reaction conditions for complexing ratatopherin with a non-peptide hydrophilic polymer such as linear PEG most uniformly in a state in which biological activity is maintained. It made it possible to bind such a polymer of a specific structure to a limited part of the surface. In addition, the inventors have found conditions and methods suitable for mass production or industrial production of such composites. Furthermore, the ratoferrin complex produced in this way is resistant to proteases such as pepsin, iron chelating ability, which is the most important biological activity, and also the ability to regulate (suppress) inflammatory site force in production. As a result, the present invention was completed.
  • a method for producing a PEGylated ratatoferrin complex in which linear polyethylene glycol (PEG) or a modified product thereof and lactoferrin are covalently bonded by an amide bond, comprising ratatoferrin and paranitrophenol group A step of reacting a reaction solution containing a linear PEG derivative having the above-mentioned conditions under a condition in which an amide group is formed between the para-trope group and ratatopherin; [2] The method according to [1] above, wherein the reaction step is performed under a condition of pH 4 to 5.5;
  • reaction step is based on a molar ratio of ratatofurin: direct PEG derivative of 1: 1 to 1: 5, final concentration of ratatofurin of 5 rag / ml to 1 O mg / ml, reaction time of 24 to 4
  • a pharmaceutical composition comprising the PEGylated lactoferrin complex as described in [4] above and a therapeutically inert base and Z or an additive;
  • the method for producing a PEGylated lactoferrin complex of the present invention is to produce a desired lactofelin complex that is PEGylated easily and efficiently in a short time, using a linear PEG derivative. Enable. According to the production method of the present invention, it is presumed that only limited highly reactive sites are uniformly reacting, and as a result, a very uniform complex is obtained.
  • the complex of the present invention retains the iron binding ability of ratatophorin, and therefore retains at least the important biological activity of ratatopherin based on the iron binding ability.
  • it since it has resistance to proteases such as pepsin through the binding of linear PEG derivatives, it has a long life in the body and can exhibit biological activity for a long time in the body.
  • the complexation makes it difficult to undergo digestive degradation by pepsin in the stomach, it can reach the intestines sufficiently without the need for a pharmaceutical treatment for further enterolysis.
  • the complex of the present invention also sufficiently retains the activity of regulating the production of inflammatory cytokines.
  • the composite of the present invention has a uniform quality because a certain number of PEGs are bonded to a specific position, which is advantageous in terms of production control and quality control. Because of these advantages Therefore, the complex of the present invention is particularly suitable for use as a pharmaceutical ingredient, particularly a pharmaceutical ingredient for oral administration. That is, with the complex and complex production method according to the present invention, ratatopherin can be made into a more useful form as a pharmaceutical ingredient. Since lactofrin is extremely safe and has various biological activities, the present invention can be applied more advantageously as a therapeutic or prophylactic agent for diseases or symptoms for which there is no effective therapeutic agent.
  • lifestyle-related diseases arteriosclerosis, hypercholesterolemia, hyperlipidemia, hypertension, diabetes, fatty liver, etc.
  • cancer prevention of carcinogenesis, secondary prevention of cancer, suppression of metastasis, enhanced action of anticancer agents, etc.
  • Autoimmune diseases dry eye and dry mice due to Siedalen syndrome, rheumatoid arthritis, malignant rheumatoid arthritis, collagen disease, multiple sclerosis, systemic lupus erythematosus, etc.), neuropsychiatric disorders (dementia, Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Tenkan, depression, hikikomori, schizophrenia, various stress diseases, etc., pain relief (morphoid enhancement effect such as morphine, cancer pain, neuropathic pain, postherpetic pain, fibromyalgia, Postoperative pain, glossodynia, physical pain, toothache, joint pain, etc.), hepatitis (various viral hepatitis, non-alcoholic hepatitis, non
  • the complex of the present invention or a pharmaceutical composition comprising the same is used for various infectious diseases and inflammation based thereon, For example, gastric mucosal infection of Helicopactor pylori, periodontal disease, alveolar pyorrhea, halitosis, oral candidiasis, stomatitis, stomatitis, rhinitis, esophagitis, cholecystitis, urinary tract infection, vaginal infection, It can be applied to infectious diseases such as athlete's foot, fertilizer, herpes virus infection, senile pneumonia, postoperative infection, etc., and has the effect of enhancing the action of antibiotics.
  • lactoferrin also has an effect of bringing about immune tolerance
  • the complex of the present invention or the pharmaceutical composition containing the same is also applied to allergic diseases such as hay fever, atopic dermatitis, seborrhea, and measles. Is possible.
  • ratatopherin has a strong antioxidative stress action based on iron chelating action
  • the complex of the present invention or a pharmaceutical composition containing the same may be used for Wilson's disease, fulminant hepatitis, etc.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of the reaction between a linear PEG derivative having a paranitrophenyl group as a functional group and bLF.
  • Panel A represents the linear PEG derivative and L F before the reaction
  • Panel B represents the complex and by-product after the reaction.
  • FIG. 2 is a diagram showing a photograph of a gel in which the formation of a complex of a straight chain type PEG derivative having an NHS ester as a functional group and b LF is analyzed.
  • the band indicated by the arrow indicates unmodified usilatapherin.
  • Figure 3 shows a complex of a linear P EG derivative ("SUNBRIGHT MENP-50HJ (5 kDa)) with b LF (5 K-PEG -L f) having a paranitrophenyl group under different pH conditions. It is a figure which shows the photograph of the gel which analyzed formation of.
  • Figure 4 shows a complex of a linear P EG derivative ("SUNBRIGHT MENP-30TJ (30 kDa)) with para etheophenyl group and b LF (30 K-P EG—L) under different pH conditions. It is a figure which shows the photograph of the gel which analyzed formation of f).
  • Fig. 5 shows photographs of gels analyzed for the formation of 5 K_PEG—Lf under different reaction time conditions at 25 ° C.
  • FIG. 6 shows photographs of gels analyzed for the formation of 3 OK-P EG-L f under different reaction time conditions at 25 ° C.
  • FIG. 7 is a diagram showing a photograph of a gel analyzed by 7.5% SDS-PAGE after purifying 5 K-PEG-Lf with a cation exchanger.
  • FIG. 8 is a diagram showing a photograph of a gel obtained by purifying 30 K-PEG-L ⁇ with a cation exchanger and then analyzing it with 7.5% SDS-PAGE.
  • Fig. 9 shows a photograph of a gel analyzed by 10% SDS-PAGE after digestion of unmodified ratatopherin (b L f) and purified 3 O k— P EG_L f with pepsin.
  • Figure 10 shows the degradation of 30 k_PEG-L f over time by pepsin compared to the degradation of unmodified b LF.
  • indicates b LF
  • indicates 3 ⁇ k—P EG—L f BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION
  • the complex of the present invention is a biologically active complex of linear PEG and ratatopherin.
  • the linear PEG derivative bonded to ratatopherin in the complex of the present invention generally has a paraetrophenyl group that can react with a functional group of ratatopherin at one end to form a covalent bond, It may be compatible with a living body or pharmacologically inactive.
  • [PEG] represents polyethylene glycol (HO— (CH 2 -CH 2 ⁇ 0) n —) or a modified group thereof, CONH represents an amide bond, and [LF] represents 5 ratoferrins)
  • the [PEG] moiety is PEG or a modified product thereof (for example, methoxide), and may have a short branch or pendant group, but in particular linear PEG or methoxy P EG is preferred.
  • “Latatoferrin” (LF) used in the complex of the present invention is a natural or natural lactoferrin molecule itself, or a recombinant type (including a modified type in which some amino acids are substituted). It may be a functional equivalent of lactoferrin, such as an activity fragment of ratatoferrin, regardless of the presence or content of iron ions, the species of origin.
  • the ⁇ -amino group on the N-terminal side of ratatofurin and the ⁇ - amino group of the lysine residue are targets that can be modified by PEG, but in the complex, 1 to 10 sites, preferably Non-peptide hydrophilic polymer with good reproducibility in 1 to 5 locations Are covalently bonded.
  • PEG poly(ethylene glycol)
  • 1 to 10 sites preferably Non-peptide hydrophilic polymer with good reproducibility in 1 to 5 locations Are covalently bonded.
  • Bioly active in relation to the complex of the present invention means that the physiological and pharmacological activity of ratatopherin is retained.
  • the complex of the present invention has an iron chelate (binding) ability and / or an ability to regulate inflammatory cytokine production that are almost the same as natural lactoferrin.
  • the complex of the present invention has at least 50% or more (for example, about 50% or more) when the iron binding capacity of natural ratatofurin is 100% as measured by the method of Examples described later. % To about 1550% or about 50% /. To about 120%), and in a preferred embodiment, the complex of the present invention comprises about 1% of natural ratatoferrin. Iron binding capacity corresponding to 60% to about 100% or more (for example, about 60% to about 150% or about 60% to about 120%). Note that the iron binding ability may have an error of about ⁇ 20% when measured by the method described in the examples or an equivalent method.
  • the complex of the present invention is at least 50% (for example, about 50% or more). % To about 1550% or about 50% to about 120%), and in a preferred embodiment, the complex of the present invention comprises natural ratatopherin. It has the ability to regulate inflammatory cytokines corresponding to about 70% to about 100% or more (for example, about 70% to about 150% or about 70% to about 120%). It should be noted that the ability to regulate cytokine production can have an error of about 20% when measured by the method described in the examples or a method equivalent thereto.
  • the complex of the present invention has protease resistance. That is, the complexes of the present invention are significantly more resistant to digestion with at least pepsin and / or trypsin, chymotrypsin compared to natural lactoferrin.
  • the complex of the present invention is about 1.5 times to about 2 times or more (eg, about 2 times to more than natural ratatopherin) after 20 minutes of digestion with pepsin under the conditions described in the Examples. (About 5 times) has the resistance to pepsin that remains unerased.
  • the complex of the present invention can be produced by covalently binding a paratrophenyl group of a linear PEG derivative with a functional group of ratatopherin. You can.
  • a linear PEG derivative As a linear PEG derivative,
  • FIG. 1 A schematic diagram of the reaction in which a linear PEG reagent having a paranitrophenyl group as a functional group reacts with ushi LF (b L f) to produce the PEGylated ratatofurin complex of the present invention is shown in FIG. Before reaction: Panel A; After reaction: Panel B).
  • the molecular weight (number average molecular weight) of the linear PEG derivative used in the reaction is generally about 500 to about 200,000, preferably about 2,000 to about 100,000, particularly preferably about 10,000. ⁇ About 60,00 0 (Da).
  • ratatopherin and a linear PEG derivative are added to the reaction solution in a molar ratio of 1: 0.1 to 1: 100.
  • the mixing molar ratio of ratatopherin: linear PEG derivative is more preferably in the range of 1: 0.1 to 1:60, and most preferably in the range of 1: 1 to L: 5.
  • the reaction step is generally carried out under conditions of pH 4 to 5.5, temperature 0 to 40 ° C, time 1 minute to 72 hours.
  • the pH of the reaction solution is particularly preferably pH 5 ⁇ 0.5, and most preferably around pH 5 (that is, pH 4.7 5 to 5.25).
  • reaction time and reaction temperature can be varied in close relation to each other, it is generally preferable to shorten the time when the reaction temperature is high, and lengthen the time when the temperature is low.
  • the reaction temperature under conditions where the molar ratio of ratatopherin: linear PEG derivative is 1: 1 to 1: 5, a particularly good result is obtained by reacting at 25 ° C. for about 1 to 48 hours (homogeneous complexation). Etc.) is obtained.
  • the complex of the present invention contained in a sample produced as described above is first adsorbed on a cation exchange carrier (resin) and concentrated, and then the obtained concentrate is molecular sieve chromatography carrier ( Resin) and can be easily purified wear.
  • a sample containing the complex is first applied to a cation exchange column to adsorb the complex to a force ram, and contains the complex concentrated by elution with a high salt concentration buffer. Collect the eluate. This eluate can then be applied to a molecular sieve chromatography column for desalting and replacement with the desired buffer. If necessary, the eluate can be further concentrated as appropriate by a known method such as dialysis or ultrafiltration.
  • the complex purification method of the present invention may be a one-step purification using only a cation exchanger force ram, instead of the above-described two-step column chromatography.
  • a sample containing the complex of the present invention is applied to a cation exchange column and the complex is adsorbed on the column and then eluted with a buffer solution with a high salt concentration, it can be sufficiently mixed with unreacted lactoferrin. Separation is possible.
  • elution may be performed using a linear concentration gradient or stepwise elution, and the eluent may contain a concentration gradient or salt concentration of 0.3 M to 0.45 M.
  • the stepwise salt concentration elution method is simpler than the linear salt concentration gradient elution method, and is considered extremely useful for mass purification. Therefore, in the case of industrial production or mass preparation, it is advantageous to use the stepwise salt concentration elution method.
  • Examples of the cation exchanger support that can be used in the purification method of the present invention include silica gel.
  • Silica gel is suitable for industrial production or mass production because of its high physical strength.
  • Lactofrin has antibacterial action, iron metabolism regulation action, cell proliferation activation action, hematopoiesis action, anti-inflammatory action, antioxidant action, phagocytosis action, antiviral action, bifidobacteria growth promotion action, pile cancer action It has a wide range of physiological activities including cancer metastasis inhibitory action, translocation inhibitory action, lipid metabolism improving action, analgesic action, and anti-stress action.
  • a pharmaceutical composition can be obtained by blending inert bases and additives or additives.
  • lactoferrin is taken up from the intestinal mucosa, and the complex of the present invention is resistant to pepsin, so that it is particularly advantageous to make a pharmaceutical composition for oral administration.
  • drug or “pharmaceutical composition” in the context of the present invention includes not only humans but also animals (ie, veterinary drugs, etc.). Various components and dosage forms that can be contained in such a pharmaceutical composition are known to those skilled in the art.
  • the effective dose of the pharmaceutical composition containing the complex of the present invention varies depending on the type or degree of the disease or symptom to be treated or prevented, the condition of the administration target, the dosage form, etc., and is appropriately selected based on the known effective ratatopherin amount. can do.
  • the dose can be significantly lower than the known effective ratatopherin dose (eg 1Z 2 to 1/20 dose in terms of ratatopherin dose), and if used at an equivalent dose, the number of doses should be reduced. Is possible.
  • Ushirata tohuelin (b LF) was manufactured by MG Nutritionals (Australia).
  • the target for PEGylation was the ⁇ -amino group of lysine of b LF (54 existed per molecule of b LF) and the monoamino group at the N-terminus.
  • PE G—PNP derivative linear PEG derivatives having a para-tropenyl group in the functional
  • Coupling reaction using Sigma “Methoxy polyethyleneglycol Succinimidyl succinate” (Panel A) and NOF Corporation “SUNBRIGHT MEGC-30TS” (Panel B) is modified with several to innumerable P EG].
  • Ratatoferrin is generated.
  • “SUNBRIGHT ME-200TR” manufactured by NOF Corporation the reactivity was poor, and PEG lactoferrin was not confirmed by Kumasi-staining (Panel C).
  • the reaction between PEG-PNP derivatives and bLF was studied under various conditions.
  • the coupling reaction was carried out by changing in the range of ⁇ 9.
  • the buffer used was sodium acetate buffer for pH 4-5, phosphate buffer for pH 6-8, and borate buffer for pH 9 (the final concentration of each buffer was 5 OmM).
  • the reaction product was analyzed by 7.5% SDS-PAGE and CBB staining.
  • ratatophorin PEGylated with “SUNBRIGHT MENP_50H” (5 kDa) is converted to “5 k—P EG—L f” and ratatopherin ⁇ ⁇ G with “SUNBRIGHT MENP-30T” (30 kDa) is “ 30 k—PEG—L f ”.
  • reaction time is considered to be 24 to 48 hours.
  • b LF 200 mg and PE G reagent (SUNBRIGHT MENP-30T) 37 5.2 mg were reacted in 40 ml of 50 mM sodium acetate buffer (pH 5.0) at 25 ° C for 48 hours (protein The concentration is 5 mg / ml, and the molar ratio of protein to PEGylation reagent is 1: 5).
  • the reaction using 3 ml and purified by adsorption to "MacroCap SPJ of. 1 0 mM sodium phosphate buffer as buffer (P H7. 6), elution of the adsorbed substances to the column carrier, The stepwise salt concentration gradient elution method using the above buffer containing 0.4 M, 0.45 M, and 1.0 M Na C 1 was performed. After DS-PAGE, it was confirmed by CBB staining.
  • bLF has been reported to suppress the amount of IL-6 produced by lipopolysaccharide (LPS) endotoxin shock in human monocyte (TH P-1) culture systems (Mattsby- Baltzer I et al., Pediatr Res, 40, 257-262 (1996), Haversen L et al., Cell Immunol, 220, 83-95 (2002)). Therefore, the anti-inflammatory activity of 5 K-PEG-L f and 30 k-PEG-L f prepared and purified in 3. and 4. above was examined.
  • LPS lipopolysaccharide
  • THP-1 cells that have been continuously subcultured in R PM I 1 640 medium (supplemented with 10% FBS, 2 mM glutamax (trade name; manufactured by Invitrogen); hereinafter referred to as “medium”) After subcultured at a cell concentration of 5 ⁇ 10 4 cells / ml and cultured for 24 hours, human IFN— ⁇ (4 Ong / ml) and calcitriol (20 ng / ml) were added, Thereafter, the cells were further cultured at 37 ° C. and 5 ° / 0 CO 2 for 48 hours.
  • the cultured cells were collected by centrifugation, washed with a medium, and the cells were suspended in a fresh medium to prepare a cell suspension of 1 ⁇ 10 6 cells / ml.
  • the cell suspension were seeded at 400 1 / well in 24 ⁇ El plate, 3 7 ° C, 5% C_ ⁇ 1 hour after standing at 2 under each Ueru LPS alone (1 00 ng / ml), LPS ( 1 00 ng / ml) + b LF (l 0 0 g / ml), LPS (1 00 ng / ml) + 5 K-PEG-L f (l 0 0 ug / ml), LP S (100 ng / ml) ) + 30 kP EG-L f (100 ug / ml) was added, and the culture supernatant was collected 24 hours later.
  • the amount of IL-6 in the culture supernatant was measured using a human IL-6 ELI SA measurement kit (Sakura Technoscience Co., Ltd.) according to the kit instructions.
  • IL-16 production-suppressing activity was compared between the amount of IL-16 produced when LPS alone was added and the amount of IL-16 produced in the presence of LPS and bLF or PEGated LF. And it was calculated from the amount of IL_6 whose production was suppressed.
  • b LF inhibitory activity 100% The relative activities of 5 K-PEG-L f and 3 O k-PEG-L f were calculated.
  • Ratatopherin is a non-heme iron-binding glycoprotein with a molecular weight of 80,000. It consists of two regions called N-lobe and C-lobe. In the presence of carbonate ions (co 3 2 ), 2 proteins per protein It has the ability to reversibly chelate iron ions (F e 3 + ) [Anderson, et al., Nature, 344, 784-78 (1990)]. The iron binding ability of lactoferrin was measured as follows.
  • Iron ions (F e 3+ ) were released from ho 1 o-type ratatoferrin to prepare apo-type ratoferrin.
  • iron recombined ratatopherin was prepared by adding iron ions (F e 3+ ) in the presence of carbonate ions (C0 3 2 ).
  • the iron content and protein concentration of apo-type and iron-recombined ratatopherin were measured, and the amount of iron binding was measured.
  • apo-type lactoferrin is b L f, 5 ⁇ ⁇ —? £ 0_ and 3 O k- PEG-L f were prepared by dialysis with 0.1 M citrate buffer (pH 2.1) for 24 hours and further with distilled water for 24 hours.
  • Preparation of iron recombined ratatopherin was carried out with apo-type ratatopherin in a phosphate buffer (pH 7.5) containing 0.001% iron ammonium citrate, 50 mM sodium carbonate and 50 mM sodium chloride for 24 hours. After dialysis, in order to remove excess iron ions, it was prepared by dialysis for 24 hours against distilled water and then phosphate buffer (pH 7.5) containing 50 mM sodium chloride.
  • iron binding capacity is calculated as the amount of iron bound per lmg of protein quantified by the Bradford method, and is expressed as relative activity (%) when the iron binding activity of unmodified bLF is 100%. It was.
  • the purified 30 k-PEG-L ⁇ obtained in the experiment in 4 above was digested with pepsin under the following conditions and compared with the digestion of unmodified bLF.
  • Pepsin digestion is carried out using 50 pg of unmodified b LF and 30 k-PEG-L f each of pepsin (from porcine stomach, code No.165-18713, sum to a final concentration of 20 ng / ml. Was added, and the reaction was carried out in 10 mM HC 1 at 37 ° C. 5 from the start of the reaction, 1 0, 1 5, 20, 40, 60, after 100 minutes, each protein 5 mu beta fraction was sampled with a pipette, 2 X sample buffer (100 mM T with cold equal volume of ice-ris- The enzyme reaction was stopped by mixing with HCl (pH 6.8), 4% SDS, 20% glycerol, and dye (B PB).
  • FIG. 9 is a photograph of a gel stained with CBB after electrophoresis of each sample by 10% SDS-PAGE (non-reducing).
  • unmodified bLF was rapidly reduced in molecular weight, whereas digestion with 30 k-PEG-Lf was limited. This indicates that PEGylated LF is less susceptible to pepsin than unmodified bLF.
  • Figure 10 shows a semi-quantitative analysis of the 30 k-PEG-L f degradation over time, and the electrophoretic image shown in Figure 9 was captured with a scanner.
  • the vertical axis shows the intensity of the band at each time, and the relative value with the density at time 0 minutes being 100%.
  • the degradation time of 30 k— PEG— L f by pepsin showed a gradual trend compared to the degradation of unmodified b LF. From the above results, 3 0 k— P £ 0— £ It can be seen that pepsin is less susceptible to action than unmodified bLF.

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Abstract

抗原性を低減し、ペプシン耐性を付与し、体内寿命を延ばした、臨床的有用性の高い直鎖型非ペプチド性親水性高分子とラクトフェリンとの複合体及びその製造方法を提供し、さらに、天然ラクトフェリンの生物活性を一定割合保持し、体内寿命が有意に延長されており、臨床的有用性が天然ラクトフェリンよりも優れたラクトフェリン複合体及びその製造方法等を提供する。 本発明の一つの態様は、直鎖型ポリエチレングリコール(PEG)又はその修飾物とラクトフェリンとがアミド結合により共有結合されているPEG化ラクトフェリン複合体の製造方法であって、ラクトフェリンとパラニトロフェニル基を有する直鎖型PEG誘導体とを含む反応液を、上記パラニトロフェニル基とラクトフェリンとの間でアミド基が形成される条件下で反応させる工程を含むことを特徴とする方法である。

Description

明 細 書
P E G化ラク トフ リン複合体及びその製造方法
技術分野
本発明は、 ラタトフエリンとポリエチレングリコール (P E G) などの非ぺプ チド性親水性高分子との生物学的に活性な複合体、 その製造方法及びその用途等 に関する。 背景技術
従来、 生体高分子の性質の調節などの目的のため、 生体高分子と P E Gなどの 非ペプチド性親水性高分子とをコンジュゲート化すること (以下 「複合体化」 、
P E G又はその類似化合物を用いる場合については 「P E G化」 ということがあ る) が行われている。 より具体的には、 複合体化は、 一般に、 非ペプチド性親水 性高分子の末端に活性基を付けてタンパク質等の分子表面に存在する官能基と反 応させることにより行われる。
特に、 タンパク質及びペプチドの複合体化は重要であり、 非ペプチド性親水性 高分子鎖でタンパク質の分子表面を部分的に覆うことにより、 ェピトープをシ一 ノレドすることによる抗原性■免疫原性の低減、 細網内皮系等による取り込みの低 減、 及びタンパク分解酵素による認識及び分解の防止などが研究されている。 ま た、 複合体化された物質について、 生体内でのクリアランスが遅延し、 体内寿命 が延びることが知られている。 その一方で、 複合体化されたタンパク質などでは 、 非ペプチド性親水性高分子の存在によって活性部位が影響を受け、 生物活性が 低減されることも頻繁に観察されている。
例えば、 インターフェロンは、 P E G化することによって、 体内寿命が約 7 0 倍に延びる一方、 抗ウィルス活性のような生物活性が約 1 1 0に低下する。 し かし、 総合的には P E G化によって治療効果が大幅に改善されることが知られて おり、 これは C型肝炎の治療に役立っている。
タンパク質の複合体化という概念自体は、 白血病治療薬としてァスパラギナー ゼの P E G化が成功して以来、 古い歴史がある。 現在までに P E Gなどの複合体 化試薬自体の構造 (活性基のタイプ、 分子の大きさと分布、 分岐型の開発など) の改良がなされ、 技術的に進歩している。
分岐型の P E Gといくつかのタンパク質との複合体については、 直鎖型 P E G を用いた場合と比較して、 プロテアーゼ耐性が高くなり、 タンパク質によっては pH 及び熱に対する安定性が増大することが知られている (非特許文献 1 : Monfardini et al. , Bioconjug Chem. 1995 6 (1) : 62-9) 。 また、 インターフエ 口ンについては、 分岐型 P E Gとの複合体が他の P E Gとの複合体及びィンター フエロン自体よりも高い抗増殖活性を有することが観察されている (特許文献 1 :特開平 1 0— 6 7 8 0 0 ) 。
しかし、 複合体化による個々のタンパク質の活性の変動は、 タンパク質ごとに 異なっている。 さらに、 例えばインターフェロンについては P E G化によってィ ンビトロの抗ウィルス活性が減少する一方、 ヒ ト腫瘍細胞における抗増殖活性が 増加するというように、 P E G化によって、 あるタンパク質が有する複数の特性 について一律ではない影響が生じうる。 したがって、 望ましい特性を備えた複合 体を得るための最適な条件等については、 各タンパク質ごとに充分に検討されな ければならなレ、。
また、 タンパク質などの複合体化に関しては、 非ペプチド性親水性高分子鎖の 構造 (直鎖型か分岐型か、 分子の大きさと分布など) 、 反応部位及び反応分子数 によって、 抗原性、 プロテアーゼ抵抗性、 体内寿命及び熱安定性などの生化学的 -薬剤学的性質、 及び薬効に関わる生物活性への影響が大きく異なることが容易 に予想される。 したがって、 このような複合体を医薬品として開発する場合、 一 定の品質を保証するため非ぺプチド性親水性高分子鎖の付加が一定の部位である ことが求められる。
ラタ トフエリン (以下、 「L F」 と略すことがある) は、 主に哺乳動物の乳汁 中に存在し、 好中球、 涙、 唾液、 鼻汁、 胆汁、 精液などにも見出されている、 分 子量約 8 0, 0 0 0の糖タンパク質である。 ラタ トフエリンは、 鉄を結合するこ と力 ら、 トランスフェリンファミリーに属する。 ラタトフエリンの生理活性とし ては、 抗菌作用、 鉄代謝調節作用、 細胞増殖活性化作用、 造血作用、 抗炎症作用 、 抗酸化作用、 食作用亢進作用、 抗ウィルス作用、 ビフィズス菌生育促進作用、 抗がん作用、 がん転移阻止作用、 トランスロケーション阻止作用などが知られて いる。 さらに、 最近、 ラクトフヱリンが脂質代謝改善作用、 鎮痛 '抗ス トレス作 用、 アンチエイジング作用を有することも明らかにされている。 このように、 ラ ク トフエリンは、 多様な機能を示す多機能生理活性タンパク質であり、 健康の回 復又は増進のため、 医薬品や食品などの用途に使用されることが期待されており 、 ラタ トフエリンを含む食品は既に市販されている。
ラタ トフエリンは、 経口的に摂取した場合、 胃液中に存在する酸性プロテア一 ゼのペプシンにより加水分解を受け、 ペプチドに分解されるため、 ラタ トフエリ ン分子としてはほとんど腸管まで到達することができない。 しかし、 ラク トフエ リン受容体は消化管では小腸粘膜に存在することが知られており、 最近、 ラク ト フェリンが腸管から体内に取り込まれて、 生物活性を発現していることが明らか にされている。 そのため、 ラタトフエリンの持つ生物活性を発揮させるには、 ラ タ トフェリンを胃液中でのペプシンによる加水分解を受けない状態で腸管まで到 達させることが重要である。
ラタ トフエリンに関しても、 P E G化された複合体についての報告がある (非 特許文献 2 : C. 0. Beauchamp et al. Anal. Biochem. 131: 25-33 (1983) ) 。 ここで P E G化反応に使用された P E Gは、 モノメ トキシポリエチレングリコー ノレ (m P E G ) の O H基が 1, 1, -カルボ二ルイミダゾールで活性化されたも のであった。 しかし、 この文献には、 直鎖型の P E Gと L Fとの複合体が 5 〜 2 0倍延長された体内寿命を有していたことが記載されているだけであり、 P E G 化された L Fの生物活性、 P E G化の程度、 均一性などについては何ら記載され ていない。
そこで、 以前、 本発明者らは、 鋭意検討した結果、 分岐型の非ペプチド性親水 性高分子を用いることにより、 このような分子をラタ トフエリン分子表面の限定 された部位に結合させ、 天然ラタ トフエリンの 3 0 %以上の鉄キレート能を保持 した生物学的に活性なラタトフエリン複合体を得ることに成功した (特許文献 2 ) 。 しかし、 直鎖型のものについては成功していなかった。
特許文献 1 :特開平 1 0— 6 7 8 0 0号公報 特許文献 2 :特開 2 0 0 7— 7 0 2 7 7号公報
非特許文献 1 : Monfardini et al. , Bioconjug Chera. 1995 6 (1) : 62 - 9 非特許文献 2 : C. 0. Beauchamp et al., Anal. Biochem. 131: 25 - 33 (1983) 発明の開示
発明が解決しようとする課題
本発明は、 抗原性を低減し、 ペプシン耐性を付与し、 体内寿命を延ばした、 臨 床的有用性の高い直鎖型非ペプチド性親水性高分子とラタ トフエリンとの複合体 及びその製造方法を提供することを目的とする。 さらに、 天然ラク トフヱリンの 0 生物活性を一定割合保持し、 体内寿命が有意に延長されており、 臨床的有用性が 天然ラクトフエリンよりも優れたラタ トフヱリン複合体及びその製造方法等を提 供することを目的とする。
特に、 短時間で効率的に上記の特性を有するラタトフエリン複合体を大量調製 するのに適した方法を提供することも目的とする。
5 課題を解決するための手段
本発明者は、 ラタ トフエリンを生物活性が保たれた状態で最も均一に直鎖型 P E Gのような非ぺプチド性親水性高分子と複合体化するための反応条件等を検討 し、 ラタトフエリン分子表面の限定された部位に特定の構造のこのような高分子 を結合させることを可能にした。 また、 このような複合体の大量調製又は工業的 ) 生産に適した条件及び方法を見出した。 さらに、 そのようにして製造されたラタ トフエリン複合体はペプシンなどのプロテアーゼに対する抵抗性を有し、 最も重 要な生物活性である鉄キレート能、 さらには炎症性サイト力イン産生調節 (抑制 ) 能も保存されているという結果を得、 本発明を完成した。
即ち、 本発明は、
) [ 1 ] 直鎖型ポリエチレングリ コール (P E G ) 又はその修飾物とラク トフエ リンとがアミ ド結合により共有結合されている P E G化ラタトフエリン複合体の 製造方法であって、 ラタトフエリンとパラニトロフエ二ル基を有する直鎖型 P E G誘導体とを含む反応液を、 上記パラ-トロフエエル基とラタ トフエリンとの間 でアミ ド基が形成される条件下で反応させる工程を含むことを特徴とする方法; 〔2〕 上記反応工程が、 pH 4〜5 . 5の条件下で行われる、 前記 〔1〕 記載の 方法;
〔3〕 上記反応工程が、 ラタトフヱリン :直鎮型 P E G誘導体のモル比が 1 : 1〜1 : 5、 ラタトフヱリンの最終濃度が 5 rag/ml〜 1 O mg/ml、 反応時間が 2 4 〜4 8時間の条件下で行われる、 前記 〔1〕 又は 〔2〕 記載の方法;
〔4〕 前記 〔1〕 〜 〔3〕 のいずれか 1項記載の方法により製造された、 直鎖 型ポリエチレンダリコール ( P E G ) 又はその修飾物とラタトフエリンとがアミ ド結合により共有結合されていることを特徴とする P E G化ラクトフエリン複合 体;
〔5〕 前記 〔4〕 記載の P E G化ラクトフエリン複合体及び治療上不活性な基 剤及び Z又は添加物を含む医薬品組成物;及び、
〔6〕 経口投与用である、 前記 〔5〕 記載の医薬品組成物、
を提供する。
発明の効果
本発明の P E G化ラク トフ リン複合体の製造方法は、 直鎖型の P E G誘導体 を用いて、 短時間で容易に効率よく、 均一に P E G化された目的のラク トフエリ ン複合体を製造することを可能にする。 本発明の製造方法によれば、 反応性の高 い限定的な部位のみが均一に反応しているものと推定され、 その結果、 非常に均 一な複合体が得られる。
本発明の複合体は、 ラタ トフヱリンが有する鉄の結合能を保持しており、 した がって、 少なくとも鉄結合能に基づくラタ トフエリンの重要な生物活性が保持さ れている。 また、 直鎖型 P E G誘導体の結合によって、 ペプシンなどのプロテア ーゼに対する抵抗性を有しているため、 体内寿命が長く、 体内で長時間にわたつ て生物活性を発揮することができる。 さらに、 複合体化によって胃でのペプシン による消化分解を受けにくくなつているため、 さらなる腸溶化のための製剤的な 処理を行わなくても、 充分に腸内に到達しうる。 本発明の複合体は、 炎症性サイ トカインの産生を調節する活性もまた、 充分に保持している。
さらに、 本発明の複合体は、 特定の位置に一定の数の P E Gが結合するため、 品質が均一であり、 製造管理 '品質管理の点でも有利である。 これらの利点によ つて、 本発明の複合体は、 医薬品成分、 特に経口投与用医薬品成分としての使用 に特に適している。 即ち、 本発明にしたがった複合体及び複合体製造方法により 、 ラタトフエリンを医薬品成分としてさらに有用性の高い形とすることができる 。 ラクトフ リンは、 安全性が非常に高く、 多様な生物活性を有するので、 本発 明により、 有効な治療薬がない疾患又は症状の治療薬又は予防薬として、 さらに 有利に適用が可能となる。 例えば、 生活習慣病 (動脈硬化、 高コレステロール血 症、 高脂血症、 高血圧、 糖尿病、 脂肪肝など) 、 がん (発がん予防、 がんの二次 予防、 転移抑制、 制癌剤の作用増強など) 、 自己免疫疾患 (シエーダレン症候群 によるドライアイ及びドライマウス、 リウマチ性関節炎、 悪性関節リウマチ、 膠 原病、 多発性硬化症、 全身性エリテマトーデスなど) 、 精神神経疾患 (痴呆、 ァ ルツハイマー病、 パーキンソン病、 テンカン、 うつ病、 ヒキコモリ、 統合失調症 、 各種ス トレス性疾患など) 、 疼痛緩和 (モルヒネ等のォピオイド増強作用、 が ん性疼痛、 神経因性疼痛、 ヘルぺス後疼痛、 線維筋痛症、 術後疼痛、 舌痛症、 生 理痛、 歯痛、 関節痛など) 、 肝炎 (各種ウィルス性肝炎、 非アルコール性肝炎、 肝硬変など) 、 炎症性腸疾患 (大腸性潰瘍炎、 クローン病など) 、 過敏性腸症候 群、 前立腺肥大、 頻尿、 不眠症、 便秘などへ適応を拡大できる。
さらに、 本発明の複合体に含まれるラタトフエリンは、 抗菌 '抗ウィルス作用 及ぴ免疫能賦活作用があるので、 本発明の複合体又はそれを含む医薬品組成物は 、 各種感染症及びそれに基づく炎症、 例えば、 へリコパクター ' ピロリ菌の胃粘 膜感染、 歯周病、 歯槽膿漏、 口臭、 口腔カンジダ症、 口内炎、 口角炎、 鼻炎、 食 道炎、 胆嚢炎、 尿路感染症、 膣感染症、 水虫、 二キビ、 ヘルぺス属ウィルスの感 染症、 老人性肺炎、 術後感染症などへの適用も可能であり、 また、 抗生物質の作 用を増強する作用がある。
一方、 ラクトフエリンは免疫的な寛容をもたらす作用もあり、 本発明の複合体 又はそれを含む医薬品組成物は、 花粉症、 アトピー性皮膚炎、 脂漏症、 尊麻疹等 のアレルギー性疾患にも適用可能である。 注目すべきことは、 ラタ トフエリンに は鉄キレート作用に基づく強い抗酸化ス トレス作用があり、 本発明の複合体又は それを含む医薬品組成物は、 ウィルソン病、 劇症肝炎などや、 肌や眼の抗加齢 - 若返り作用、 加齢性黄斑変性症、 糖尿病性網膜症、 粘膜上皮細胞の角化抑制 ·若 返り作用などへの適用も可能である。
図面の簡単な説明
図 1は、 官能基にパラニトロフエ二ル基を有する直鎖型 PEG誘導体と、 b L Fとの反応の模式図である。 パネル Aは反応前の直鎖型 P EG誘導体及び L F、 パネル Bは反応後の複合体及び副生成物を表す。
図 2は、 NHSエステルを官能基に有する直鎮型 P EG誘導体と b L Fとの複 合体の形成を解析したゲルの写真を示す図である。 矢印で示したバンドは未修飾 のゥシラタ トフエリンを示す。 パネル Aは、 Sigma社製 PEG試薬 ( 「Methoxy polyethyleneglycol Succinimidyl succinate] 、 MW= 5 kDa) 、 ノヽ不ノレ B fま、 曰 油株式会社製 P EG試薬 ( 「SUNBRIGHT MEGC- 30TS」 、 MW= 30 kDa) 、 パネル C は、 日油株式会社製 P EG試薬 ( 「SUNBRIGHT ME- 200TR」 、 MW= 20kDa) をそ れぞれ用いた場合の結果である。
図 3は、 異なる pH条件下でのパラニトロフエ二ル基を有する直鎖型 P EG誘 導体 ( 「SUNBRIGHT MENP - 50HJ ( 5 kDa) ) と b L Fとの複合体 (5 K— PEG -L f ) の形成を解析したゲルの写真を示す図である。
図 4は、 異なる pH条件下でのパラエトロフエ二ル基を有する直鎖型 P EG誘 導体 ( 「SUNBRIGHT MENP-30TJ ( 3 0 kDa) ) と b L Fとの複合体 (30 K- P EG—L f ) の形成を解析したゲルの写真を示す図である。
図 5は、 25 °Cで異なる反応時間条件下での 5 K_ P E G— L f の形成を解析 したゲルの写真を示す図である。
図 6は、 25 °Cで異なる反応時間条件下での 3 OK-P EG-L f の形成を解 析したゲルの写真を示す図である。
図 7は、 5 K— P EG— L f を、 陽イオン交換体で精製した後、 7. 5 % S D S一 P AG Eで解析したゲルの写真を示す図である。
図 8は、 30 K— PEG— L ίを、 陽イオン交換体で精製した後、 7. 5 %S D S— PAGEで解析したゲルの写真を示す図である。
図 9は、 未修飾ラタ トフエリン (b L f ) 、 精製 3 O k— P EG_L f を、 ぺ プシンで消化後、 1 0%SD S— PAGEで解析したゲルの写真を示す図である 図 1 0は、 ペプシンによる 30 k_PEG— L f の経時的な分解を、 未修飾 b L Fの分解と比較した図である。 ♦は b LF、 驪は 3◦ k— P EG— L f を表す 発明を実施するための最良の形態
本発明の複合体は、 直鎖型 PEGとラタトフエリンとの生物学的に活性な複合 体である。 本発明の複合体においてラタトフエリンと結合される直鎖型 P EG誘 導体は、 一般に、 一方の末端にラタ トフエリンの官能基と反応して共有結合を形 成しうるパラエトロフエ二ル基を有し、 生体に対して適合可能又は薬理学的に不 活性であればよい。
3 本発明の複合体は、
式 〔 I〕 :
[PEG] -CONH- [L F]
(式中、 〔PEG〕 はポリエチレングリコール (HO— (CH2-CH2-0) n ―) 又はその修飾物の基、 CONHはアミ ド結合、 〔LF〕 はラタ トフエリンを 5 それぞれ表す)
で示される。
式 〔 I〕 において 〔PEG〕 部分は、 PEG又はその修飾物 (例えばメ トキシ 化物) であり、 短い分岐やペンダント基を有していてもよいが、 特に直鎖状の P EG又はメ トキシ P EGであることが好ましい。
) 本発明の複合体において使用される 「ラタトフエリン」 (LF) は、 天然又は 天然型のラク トフエリン分子そのもののほか、 遺伝子組換え型 (一部のアミノ酸 が置換された改変型を含む) ラタ トフエリン、 及びラタトフエリンの活性フラグ メントなどのラク トフエリンの機能的等価物であってもよく、 鉄イオンの有無又 はその含有量、 由来する生物種などを問わない。
; 天然のラタ トフエリンには、 44個 (ヒ ト) 〜54個 (ゥシ) 程度のリジン残 基が存在するが、 それらの反応性はその存在位置の局所的環境により異なる。 本 発明の方法によれば、 ラタトフヱリンの N末端側の α—ァミノ基及びリジン残基 の ε —ァミノ基が PEGによって修飾されうる標的となるが、 複合体において、 1〜 1 0箇所、 好ましくは 1〜 5箇所に、 再現性よく非べプチド性親水性高分子 が共有結合される。 特に、 最適条件下で反応工程を行うことにより、 L F 1分子 あたり 1箇所程度の非常に均一性の高い選択的な P E G化が達成される。
本発明の複合体に関して 「生物学的に活性な」 とは、 ラタトフエリンの生理薬 理活性が保持されていることを意味する。 特に、 本発明の複合体は、 天然ラクト フェリンとほぼ同等の鉄キレート(結合)能及び/又は炎症性サイトカイン産生調 節能を有している。
具体的には、 後述する実施例の方法で測定して天然ラタ トフ リンの鉄結合能 を 1 0 0 %とした場合に、 本発明の複合体は、 少なくとも 5 0 %以上 (例えば約 5 0 %〜約 1 5 0 %又は約 5 0。/。〜約 1 2 0 %) の鉄結合能を保持しており、 好 ましい態様においては、 本発明の複合体は、 天然ラタ トフエリンの約 6 0 %〜約 1 0 0 %又はそれ以上 (例えば約 6 0 %〜約 1 5 0 %又は約 6 0 %〜約 1 2 0 % ) に相当する鉄結合能を有する。 なお、 鉄結合能は、 実施例に記載した方法又は それと同等の方法によって測定する場合、 ± 2 0 %程度の誤差があり うる。
また、 後述する実施例の方法で測定して天然ラタトフエリンの炎症性サイ トカ イン産生調節能を 1 0 0 %とした場合に、 本発明の複合体は、 少なくとも 5 0 % 以上 (例えば約 5 0 %〜約 1 5 0 %又は約 5 0 %〜約 1 2 0 % ) の炎症性サイト 力イン産生調節能を保持しており、 好ましい態様においては、 本発明の複合体は 、 天然ラタ トフエリンの約 7 0 %〜約 1 0 0 %又はそれ以上 (例えば約 7 0 %〜 約 1 5 0 %又は約 7 0 %〜約1 2 0 %) に相当する炎症性サイ トカイン産生調節 能を有する。 なお、 サイ トカイン産生調節能は、 実施例に記載した方法又はそれ と同等の方法によって測定する場合、 土 2 0 %程度の誤差がありうる。
本発明の複合体は、 プロテアーゼ耐性を有する。 即ち、 本発明の複合体は、 少 なくともペプシン及び 又はトリプシン、 キモトリプシンによる消化に対して天 然ラク トフヱリンと比較して有意に耐性である。 好ましくは、 本発明の複合体は 、 実施例に記載した条件でのペプシンによる 2 0分の消化後において、 天然ラタ トフエリンの約 1 . 5倍〜約 2倍又はそれ以上 (例えば約 2倍〜約 5倍) が未消 化で残存する程度のペプシン耐性を有する。
本発明の複合体は、 直鎖型 P E G誘導体のパラュトロフエニル基とラタ トフエ リンの官能基とを反応させることによって共有結合させることにより製造するこ とができる。 例えば、 直鎖型 PEG誘導体としては、
式 〔II〕 :
〔PEG〕 一 〔PNP〕
(式中、 〔PEG〕 はポリエチレングリコール又はその修飾物、 〔PNP〕 はパ ラニトロフエ二ル基をそれぞれ表す)
で示されるものを使用することができる。
官能基にパラニトロフエ二ル基を有する直鎖型 PEG試薬と、 ゥシ LF (b L f ) とが反応して本発明の PEG化ラタトフ リン複合体が生じる反応の模式図 を図 1に示す (反応前:パネル A;反応後:パネル B) 。
このような直鎖型 P EG誘導体は、 公知の方法で合成することもできるが、 既 に各種のものが市販されている。 反応に使用される直鎖型 PEG誘導体の分子量 (数平均分子量) としては、 一般に約 500〜約 200, 000、 好ましくは約 2, 000〜約 1 00, 000、 特に好ましくは約 1 0, 000〜約 60, 00 0 (Da) である。
PEG化反応の際、 好ましくは、 ラタトフエリンと直鎖型 PEG誘導体とが、 1 : 0. 1〜1 : 1 00のモル比で反応液中に添加される。 ラタ トフエリン :直 鎖型 P EG誘導体の混合モル比は、 さらに好ましくは 1 : 0. 1〜1 : 60、 最 も好ましくは 1 : 1〜: L : 5の範囲内である。
また、 反応工程は、 一般的に pH4〜5. 5、 温度 0〜40°C、 時間 1分〜 7 2時間の条件下で行われる。 反応液の pHは、 特に好ましくは pH5±0. 5、 最 も好ましくは pH 5付近 (即ち pH4. 7 5〜5. 25) である。
反応時間及び反応温度は相互に密接に関連して変化させることができるが、 一 般に反応温度が高い場合は時間を短く、 温度が低い場合は時間を長くすることが 好ましい。 例えば、 ラタ トフエリン:直鎖型 PEG誘導体のモル比が 1 : 1〜1 : 5の条件下では、 25°Cにおいて約 1〜48時間反応させることにより、 特に 良好な結果 (均一な複合体化など) が得られる。
上記のようにして製造された、 試料中に含有される本発明の複合体は、 まず陽 イオン交換担体 (樹脂) に吸着させて濃縮し、 続いて、 得られた濃縮物を分子篩 クロマトグラフィ担体 (樹脂) に適用することによって容易に精製することがで きる。 具体的には、 例えば最初に複合体を含有する試料を陽イオン交換カラムに 適用して複合体を力ラムに吸着させ、 高塩濃度の緩衝液で溶出して濃縮された複 合体を含有する溶出液を集める。 次に、 この溶出液を分子篩クロマトグラフィカ ラムに適用し、 脱塩及び所望の緩衝液への置換を行うことができる。 必要に応じ て、 透析、 限外ろ過などの公知の方法で溶出液を適宜さらに濃縮することができ る。
さらには、 本発明の複合体の精製方法は、 上記の二段階のカラムクロマトダラ フィの代わりに、 陽イオン交換体力ラムのみによる一段階の精製であってもよい 。 例えば、 本発明の複合体を含む試料を陽イオン交換カラムに適用し、 複合体を カラムに吸着させた後、 高塩濃度の緩衝液で溶出するのみでも、 充分に未反応ラ ク トフエリンとの分離が可能である。
このような陽イオン交換体からの溶出において、 P E G化されたラタ トフエリ ンは 0 . 3 M〜0 . 4 5 M) の塩濃度で選択的に溶出されることが見出された。 し たがって、 溶出は、 直線的濃度勾配を用いてもステップワイズに溶出してもよい 力 S、 溶出液としては 0 . 3 M〜0 . 4 5 M の塩濃度を含むような濃度勾配又は溶 液を用いる。 ステップワイズ塩濃度溶出法は、 直線的塩濃度勾配溶出法と比較し て簡便であり、 大量精製を行う際には極めて有用であると考えられる。 したがつ て、 工業的生産又は大量調製の場合は、 ステップワイズ塩濃度溶出法によること が有利である。
本発明の精製法に用いることのできる陽イオン交換体の担体としては、 シリカ ゲルが挙げられる。 シリカゲルは、 物理的な強度が高い点において工業的生産又 は大量調製に好適である。
ラク トフ リンは、 抗菌作用、 鉄代謝調節作用、 細胞増殖活性化作用、 造血作 用、 抗炎症作用、 抗酸化作用、 食作用亢進作用、 抗ウィルス作用、 ビフィズス菌 生育促進作用、 杭がん作用、 がん転移阻止作用、 トランスロケーション阻止作用 、 脂質代謝改善作用、 鎮痛作用、 抗ストレス作用などを含む広範な生理活性を有 しており、 これらの作用によって、 生活習慣病 (例えば、 高コレステロール血症 、 高脂血症など) 、 疼痛管理 (がん性疼痛、 神経因性疼痛など) 、 膠原病 (シェ ーグレン症候群によるドライアイ及びドライマウス、 リウマチ性関節炎など) 、 歯周病、 C型肝炎などを含む、 多くの疾患又は症状の治療 (改善を含む) 及び予 防が可能である。
本発明の複合体は、 これらの作用をもたらす鉄結合能、 炎症性サイト力イン産 生調節能などのラタ トフエリンの生物活性を充分に保持しているうえ、 細胞毒性 を示さないので、 治療上不活性な基剤及びノ又は添加物を配合することによって 医薬品組成物とすることができる。 また、 ラクトフエリンは腸管粘膜からとり込 まれ、 本発明の複合体はペプシン耐性であるので、 特に経口投与用の医薬品組成 物とすることが有利である。
便宜上、 本発明に関して医薬品又は医薬品組成物というときは、 投与対象が人 の場合のほか、 動物である場合 (即ち、 獣医薬等) も含む。 このような医薬品組 成物に含有させることができる各種成分及び剤型は当業者には公知である。
本発明の複合体を含む医薬品組成物の有効投与量は、 治療又は予防すべき疾患 又は症状の種類や程度、 投与対象の状態、 剤型などによって異なり、 公知の有効 ラタトフエリン量を目安に適宜選択することができる。 一般に、 公知の有効ラタ トフエリン量と比較して有意に少ない用量 (例えばラタ トフエリン量換算で 1Z 2〜1/20量) とすることができ、 同等の用量で用いるのであれば投与回数を 減らすことが可能である。
実施例
1. ゥシラタ トフエリン (b LF) の P EG化
1一 1. 試薬
ゥシラタ トフエリン (b LF) は、 MG Nutritionals 社製 (オーストラリア) を用いた。 PEG化のターゲットは、 b L Fのリジンの ε—アミノ基 (b L F 1 分子当たり 54個存在する) 及び N末端のひ一アミノ基とした。
使用した PEG誘導体は、 官能基として N—ヒドロキシサクシンイミ ド (NH S) 活性化エステルを有する 3種類の直鎖型 P EG誘導体 〔以下 「PEG— NH S誘導体」 という ; Sigma 社ヽ 「Methoxy polyethvl eneglycol Succinimidy丄 succinate] (MW= 5 kDa) 、 日油株式会社、 「SUNBRIGHT ME-200TRJ (MW= 20 kDa) 、 及ぴ 3油株式会社、 「SUNBRIGHT MEGC- 30TS」 (匿 = 3 0 kDa) 〕 と、 官 能基にパラ-トロフエ二ル基を有する 2種類の直鎖型 PEG誘導体 〔以下 「PE G— P N P誘導体」 という ; 日油株式会社、 「SUNBRIGHT MENP-50H」 (MW= 5 kDa) 及び日油株式会社、 「SUNBRIGHT MENP- 30T」 (MW= 3 0kDa) 〕 とを用いた
1 - 2. P E G— NH S誘導体と b L Fとの反応
δ P B S (pH 7. 4 ) 1 ml に溶解したゥシラタ トフエリン (b L f ) 0. 5 mg ( 6. 2 5 M) に対し、 以下に示すモル比でタンパク質と P E G— NHS誘導 体とを混合し、 2 5 °Cで 1時間カップリング反応を行った。 ラタ トフエリンの最 終濃度は 0. 5mg/ml であり、 リジン残基に対する P E G— NH S誘導体のモル 比は 1 : 5 ( 1. 6 9mM) 〜: L : l ( 3 3 7. 5 μ Μ) , 及びタンパク質に対す 3 る P E G— NH S誘導体のモル比は 1 : 2 5 ( 1 5 6. 2 5 μΜ) 〜1 : 1 ( 6 . 2 5 μΜ) の範囲で変化させた。 カップリング反応の評価は、 S D S— PAG Ε後、 クマシ一ブリリアントブルー (CB Β) 染色により行った。
結果を図 2 に示す。 パネル Αは、 Sigma 社製 P E G試薬 ·( 「 Methoxy polyethyleneglycol Succinimidyl succinate 、 MW= 5 kDa) 、 ノ ネノレ Βίま、 曰 5 油株式会社製 P EG試薬 ( 「SUNBRIGHT MEGC- 30TS」 、 MW= 3 0 kDa) 、 パネル C は、 日油株式会社製 P EG試薬 ( 「SUNBRIGHT ME_200TR」 、 MW= 2 0 kDa) を用 いた場合の、 それぞれ結果である。 Sigma 社製 「Methoxy polyethyleneglycol Succinimidyl succinate] (パネル A) 及び日油株式会社製 「SUNBRIGHT MEGC- 30TS」 (パネル B) を用いてカップリング反応を行うと、 数個から無数の P EG 〕 で修飾されたラタ トフエリンが生成する。 一方、 日油株式会社製 「SUNBRIGHT ME-200TR」 を用いた場合は、 反応性が悪く、 クマシ一染色により P EG化ラク ト フェリンは確認されなかった (パネル C) 。
したがって、 P EG— NHS誘導体の反応選択性は低く、 NHS活性化エステ ルを官能基とする直鎖型 P EG試薬では、 選択的な P EG化ラタトフエリンの合 5 成は困難であった。
1一 3. P EG— PNP誘導体と b LFとの反応
P EG—PNP誘導体と b L Fとの反応を種々の条件下で検討した。 b L Fの 最終濃度を 0. 5mg/ml、 b L F: P E G誘導体との混合モル比を 1 : 5、 反応 温度を 2 5 °Cとし、 反応時間は 1時間又は 24時間、 P E G化反応液の pH を 4 〜9の範囲で変化させて、 カップリング反応を行った。 使用緩衝液は、 pH4〜5 については酢酸ナトリゥムバッファー、 pH6〜8についてはリン酸バッファー、 pH9はホウ酸バッファ一とした (各緩衝液の最終濃度は 5 OmM とした) 。 反応 後、 7. 5 % S D S— PAGE及び CBB染色により反応生成物を解析した。
P E G試薬として 「SUNBRIGHT MENP- 50H」 ( 5 kDa) を用いた結果を図 3に、 rSUNBRIGHT MENP- 30T」 ( 3 0 kDa) を用いた結果を図 4に、 それぞれ示す。 反 応時間 1時間では、 すべての pHでほとんど反応が進んでいないことがわかる。 —方、 反応時間 24時間では、 「SUNBRIGHT MENP_50H」 ( 5 kDa) 、 「SUNBRIGHT MENP-30T」 (30kDa) 共に、 pH5の反応において、 特に選択的かつ収量の高い PEG化反応が確認された。
なお、 以下、 「SUNBRIGHT MENP_50H」 ( 5 kDa) で P E G化したラタ トフエリ ンを 「5 k— P EG—L f 」 、 「SUNBRIGHT MENP- 30T」 ( 30 kDa) で Ρ Ε G化 したラタトフエリンを 「30 k— PEG— L f 」 と呼ぶ。
2. b L Fと P E G試薬との混合モル比、 反応時間の検討
5 上記 1一 3. における PEG化反応の最適 pH が 5であることが明らかとなつ たので、 次に、 反応時における b LF : P EG— PNP誘導体のモル比を 1 : 1 、 1 : 3、 1 : 5とし、 ) 1^ の最終濃度を0. 5mg/ml、 5 rag/ml, 1 0 mg/ml とし、 さらに反応時間を 24時間、 48時間、 72時間として、 PEG化の最適 化条件の検討を行った。 なお、 「SUNBRIGHT MENP- 50H」 ( 5 kDa) を用いた実験
) では 5 OmM 酢酸ナトリウムバッファ一 (pH5. 0) 、 「SUNBRIGHT MENP-30TJ ( 30 kDa) を用いた実験では 1 OmM酢酸ナトリウムバッファー (pH 5. 0) を 、 反応液としてそれぞれ使用した。
「SUNBRIGHT MENP- 50H」 ( 5 kDa) の結果を図 5、 「SUNBRIGHT MENP- 30T」 ( 30 kDa) の結果を図 6にそれぞれ示す。 b L Fの最終濃度の検討では、 0. 5
; mg/ml と比較して、 5mg/ml、 10 mg/tnlで収量の高い P E G化産物が得られた。
また、 いずれの試薬についても、 反応時間 24時間と比較して、 48時間、 7 2 時間で更なる反応の進行が確認できる。 しかし、 48時間と 7 2時間とで反応産 物を比較すると、 反応産物であるバンドの濃さはほぼ同じであることから、 PE G化反応は 48時間までに完了していることが推察された。 以上の結果から、 最適な P EG化反応の pH以外の条件は、 「SUNBRIGHT MENP - 50H」 (5kDa) 、 「SUNBRIGHT MENP-30TJ ( 30 kDa) ともに、 b LF : P EG 誘導体のモル比が 1 : 1~1 : 5、 b LFの最終濃度が 5mg/ml〜: L Omg/ml、 反 応時間は 24~48時間と考えられる。
3. 5 k— PEG—: L f の精製
陽イオン交換カラム担体 ( 「MacroCap SP」 (GEヘルスケア社製) ) を用い て、 P EG化 b LF反応液中の P EG化ラタトフエリン (5 k— PEG— L f ) を精製した。
b LF 1 5 Orag及び PEG化試薬 (SUNBRIGHT MENP-50H) 46. 9mg を、 3 Oral の 5 OmM酢酸ナトリウムバッファー (pH5. 0) 中で 25°C、 48時間 反応させた (タンパク質濃度は 5mg/ml、 タンパク質と PEG化試薬とのモル比 は 1 : 5) 。 この反応液を、 3 ml の MacroCap SP に吸着させて精製した。 緩衝 液としては 1 0 mM リン酸ナトリゥム緩衝液 (pH 7. 6) を使用し、 力ラム担体 への吸着物の溶出は、 0. 3M、 0. 4M、 0. 45M、 1. 0M N a C 1を含む 上記緩衝液を用いた段階的塩濃度勾配溶出法で行った。 分取した画分を、 7. 5 % SDS— PAGE後、 C B B染色により確認した。
結果を図 7に示す。 0. 3M、 0. 4M、 0. 4 5M N a C l溶出画分にはP EG化ラタトフエリンのみが精製されたことが確認された。
4. 30 k_P EG— L f の精製
陽イオン交換カラム担体 ( 「MacroCap SPJ (GEヘルスケア社製) ) を用い て、 P EG化 b L F反応液中の P EG化ラタ トフエリン (30 k— PEG— L f ) を精製した。
b L F 200mg 及び PE G化試薬 (SUNBRIGHT MENP-30T) 37 5. 2 mg を 、 40 ml の 50 mM 酢酸ナトリウムバッファー (pH 5. 0 ) 中で 2 5 °C、 48時 間反応させた (タンパク質濃度は 5mg/ml、 タンパク質と PEG化試薬とのモル 比は 1 : 5) 。 この反応液を、 3 ml の 「MacroCap SPJ に吸着させて精製した。 緩衝液としては 1 0 mM リン酸ナトリウム緩衝液 (PH7. 6) を使用し、 カラム 担体への吸着物の溶出は、 0. 4M、 0. 45 M、 1. 0M N a C 1を含む上記 緩衝液を用いた段階的塩濃度勾配溶出法で行った。 分取した画分を、 7. 5%S DS— PAGE後、 CB B染色により確認した。
結果を図 8に示す。 0. 4M N a C 1溶出画分には P EG化ラタ トフエリン のみが精製されたことが確認された。
5. 5 k— PEG— L f 、 30 k— PEG— L f の抗炎症活性 (I L一 6産 生抑制活性)
b L Fの生理活性の一つに抗炎症作用がある。 b LFは、 ヒ ト単球細胞 (TH P— 1) 培養系においてリポポリサッカライド (LP S) のエンドトキシンショ ックにより産生される I L— 6量を抑制することが報告されている (Mattsby- Baltzer I et al. , Pediatr Res, 40, 257-262 (1996), Haversen L et al. , Cell Immunol, 220, 83-95 (2002)) 。 そこで、 上記 3. 及び 4. において作製 、 精製した 5 K— PEG— L f 及び 30 k-PEG-L f の抗炎症活性を検討し た。
R PM I 1 640培地 ( 1 0 % F B S、 2 mM グルタマックス (商品名 ;ィン ビトロジェン社製) を添加したもの;以下 「培地」 と記す) で継代培養を続けて いる THP— 1細胞を、 5 X 1 04個/ ml の細胞濃度で継代し、 24時間培養し た後、 ヒ ト I FN— γ (4 Ong/ml) 及びカルシトリオール ( 20 ng/ml) を添加 し、 その後さらに 3 7°C、 5 °/0CO2で 4 8時間培養した。 培養後の細胞を遠心 分離で集め、 培地で洗浄後、 細胞を新鮮な培地に懸濁して 1 X 106細胞 /ml の 細胞懸濁液を調製した。 細胞懸濁液を 24ゥエルプレートに 400 1/well で 播き、 3 7°C、 5 %C〇2下で 1時間静置後、 各ゥエルに L P Sのみ ( 1 00 ng/ml) 、 L P S ( 1 00 ng/ml) + b L F ( l 0 0 g/ml) 、 L P S ( 1 00 ng/ml) + 5 K-PEG-L f ( l 0 0 u g/ml) 、 LP S ( 100 ng/ml) + 30 k-P EG-L f ( 1 0 0 u g/ml) のいずれかを添加し、 24時間後に培養上清 を回収した。
培養上清中の I L— 6量を、 ヒ ト I L一 6 E L I SA測定キット (縑倉テク ノサイエンス (株) ) をキットの指示書のとおりに用いて測定した。 I L一 6の 産生抑制活性は、 L P Sのみを添加した場合に産生される I L一 6量と、 L P S 及び b L F又は P EG化された L Fの共存下で産生された I L一 6量とを比較し 、 産生が抑制された I L _ 6量から算出した。 b LFの抑制活性を 1 00 %とし て、 5 K—PEG— L f 及び 3 O k— PEG— L f の相対活性を算出した。
その結果、 5 ー?£0—1^ £は76. 8 ±6. 0% (平均士 SE、 n = 8) 、 30 k— PEG_L f は 1 1 5. 3 ± 3. 2 % (平均土 S E、 n = 6 ) の残存 活性を示した。
6. 5 k— PEG— L f 、 30 k _P EG— L f の鉄結合能の測定
ラタ トフエリンは分子量 8万の非ヘム性の鉄結合性糖タンパク質で、 Nローブ 、 Cローブと呼ばれる二つの領域からなり、 炭酸イオン (co3 2一) の存在下で タンパク質 1分子当たり 2個の鉄イオン (F e 3 + ) を可逆的にキレート結合す る能力を有する 〔Anderson, et al. , Nature, 344, 784-78 (1990)〕 。 ラク トフ ) ェリンの鉄結合能の測定は、 以下のように行った。
h o 1 o型ラタ トフエリンから鉄イオン (F e 3+) を遊離させ、 a p o型ラ タ トフェリンを調製した。 次いで炭酸イオン (C03 2一) 存在下で鉄イオン (F e 3+) を付加させた鉄再結合ラタ トフエリンを調製した。 a p o型及び鉄再結 合ラタ トフエリンの鉄含量及びタンパク質濃度を測定し、 鉄結合量の測定を行つ • た。 詳細には、 a p o型ラク トフエリンは、 b L f 、 5∑^—? £0_ 及び3 O k— PEG— L f を 0. 1M クェン酸緩衝液 (pH2. 1) で 24時間、 さらに 蒸留水で 24時間透析を行うことにより調製した。 鉄再結合型ラタ トフエリンの 調製は、 a p o型ラタ トフエリンを、 0. 001 %クェン酸鉄アンモニゥム、 5 0 mM 炭酸ナトリウム及び 50 mM 塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液 (pH 7. 5 ) で 24時間透析を行った後、 過剰の鉄イオンを除去するため、 蒸留水、 次いで 5 0 mM 塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液 (pH 7. 5) に対し 24時間透析を 行うことにより調製した。
タンパク質に結合している鉄ィォンを比色法で測定するため、 血清鉄測定キッ ト 「F e C—テス トヮコ一」 (和光純薬) を用いた。 鉄の結合能は Bradford 法で定量したタンパク質 lmg 当たりに結合している鉄の結合量として算出し、 未修飾 b L Fの鉄の結合活性を 1 00 %とした場合の相対活性 (%) で示した。 その結果、 PEG修飾を行った 5 K— PEG—L f の鉄結合活性は 78. 5土 4. 9 % (平均土 SE、 n = 5) 、 30 k— P E G— L f では 6 5. 6 ± 2. 7 % (平均土 S E、 n = 6 ) であった。 7. ペプシン消化に対する耐性の評価
上記 4. の実験で得られた精製 30 k— PEG— L ίを、 以下の条件によりぺ プシンで消化して、 未修飾 b LFの消化と比較検討した。
ペプシン消化は、 精製した 50 tg 分の未修飾 b LF、 30 k— PEG— L f の各々に、 最終濃度 2 0ng/ml になるようにペプシン (ブタ胃由来、 code No.165- 18713、 和光純薬工業 (株) 製) を加えて、 1 0 mM HC 1中、 3 7°Cで 反応させることにより行った。 反応開始から 5、 1 0、 1 5、 20、 40、 60 、 100分後に、 各タンパク質 5 μβ 分をピペットでサンプリングして、 等量の 氷冷した 2 Xサンプルバッファー (100 mM T r i s—HC l (pH 6. 8) 、 4%SDS、 20%グリセロール、 色素 (B PB) ) と混ぜて酵素反応を停止さ せた。
結果を図 9及び図 1 0に示す。 図 9は、 各サンプルを 1 0%SD S— PAGE (非還元) で泳動後、 CBB染色したゲルの写真である。 ペプシンでの消化に対 して、 未修飾 b LFは速やかに低分子化されたのに対して、 30 k— PEG— L f の消化は限定的であった。 このことより、 PEG化された LFは、 未修飾の b L Fと比較して、 ペプシンの作用を受けにくいことが分かる。
図 1 0は、 インタタ トな 30 k— PEG— L f の経時的な分解を半定量的に示 すために、 図 9で示した泳動像をスキャナーで取り込み、 バンドの濃さを 「NIH imagej ソフトウェアで解析した結果である。 縦軸は、 各時間におけるバンドの 濃さを示しており、 時間 0分時の濃さを 1 00%とする相対値である。 横軸は、 各酵素での処理時間である。 ペプシンによる 30 k— PEG— L f の分解は未修 飾 b L Fの分解と比較して緩やかな傾向を示した。 以上の結果から、 3 0 k— P £0— £は、 未修飾の b L Fと比較して、 ペプシンの作用を受けにく くなつて いることが分かる。
この出願は、 平成 20年 3月 1 4日出願の曰本特許出願、 特願 200 8— 06 662 6に基づくものであり、 特願 2008— 066 626の明細書及ぴ特許請 求の範囲に記載された内容は、 すべてこの出願明細書に包含される。

Claims

請 求 の 範 囲
1. 直鎖型ポリエチレングリコール (PEG) 又はその修飾物とラクトフエリン とがアミ ド結合により共有結合されている PEG化ラタトフエリン複合体の製造 方法であって、 ラタトフエリンとパラニトロフエ二ル基を有する直鎖型 PEG誘 導体とを含む反応液を、 上記パラ-トロフエニル基とラタ トフエリンとの間でァ ミ ド基が形成される条件下で反応させる工程を含むことを特徴とする方法。
2. 上記反応工程が、 pH4〜5. 5の条件下で行われる、 請求項 1記載の方法。
3. 上記反応工程が、 ラタトフエリン:直鎮型 P EG誘導体のモル比が 1 : 1〜 ) 1 : 5、 ラタトフエリンの最終濃度が 5mg/ml〜 1 Otng/tnl、 反応時間が 24〜 4
8時間の条件下で行われる、 請求項 1又は 2記載の方法。
4. 請求項 1〜 3のいずれか 1項記載の方法により製造された、 直鎮型ポリェチ レンダリコール (P EG) 又はその修飾物とラタ トフエリンとがアミ ド結合によ り共有結合されていることを特徴とする PEG化ラク トフエリン複合体。
5. 請求項 4記載の PEG化ラタトフエリン複合体及び治療上不活性な基剤及び
/又は添加物を含む医薬品組成物。
6. 経口投与用である、 請求項 5記載の医薬品組成物。
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