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TWI838990B - 腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑 - Google Patents

腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑 Download PDF

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TWI838990B
TWI838990B TW111145803A TW111145803A TWI838990B TW I838990 B TWI838990 B TW I838990B TW 111145803 A TW111145803 A TW 111145803A TW 111145803 A TW111145803 A TW 111145803A TW I838990 B TWI838990 B TW I838990B
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lactobacillus
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日商安露莎慧央集團股份有限公司
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Abstract

本發明之課題在於明確源自蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus)屬乳酸菌之脂壁酸所具有之新穎性質，並基於此提供新用途。 本發明之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑包含源自蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus)屬乳酸菌之脂壁酸作為有效成分。

Description

腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑
本發明係關於一種包含源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸作為有效成分之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑。
自先前以來，已知乳酸菌或其醱酵生產物具有各種生理功能。例如，於專利文獻1中，記載有屬於昆氏乳桿菌之乳酸菌具有較高之IgA産生促進作用。
又，本案申請人發現：作為自蔬菜黑糖醱酵液單離之乳酸菌的酵素乳桿菌10H株為具有與其他乳酸菌不同之新穎基因組結構之嗜果糖乳酸菌，並且具有優異之IgA産生促進作用(以及免疫賦活作用)(參照專利文獻2；再者，專利文獻2中之「Lactobacillus kosoi」與本說明書中之「酵素乳桿菌」所指相同)。 [先前技術文獻] [專利文獻]
[專利文獻1]日本專利特開2014-73130號公報 [專利文獻2]日本專利特開2020-92704號公報
然而，乳桿菌屬這一分類雖然早已被使用，但先前便指出系統之多樣性或菌種間生理特徵及生物化學特徵大不相同。因此，近年來，對乳桿菌屬實施了基因組水準之分類之再評價。例如，上述昆氏乳桿菌及酵素乳桿菌於再評價後被再分類至蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus)屬，學名分別變成了昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)及酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)。
已知如上所述，蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之特定之菌種具有IgA産生促進作用(以及免疫賦活作用)，但不知其由何引起。
本發明係鑒於上述情況而完成者，其課題在於明確源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之物質所具有之新穎性質，並基於此提供新用途。
[解決問題之技術手段]
為了解決上述課題，本發明者等人著眼於蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌所含有之物質中之脂壁酸，發現：蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌中之脂壁酸之結構與舊乳桿菌屬乳酸菌中之脂壁酸之典型結構不同，且具有優異之IgA産生促進作用及免疫賦活作用，從而完成了本發明。即，本發明包含以下實施方式。
(1)一種腸管免疫賦活劑，其包含源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸作為有效成分。 (2)如(1)所記載之腸管免疫賦活劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌。 (3)如(2)所記載之腸管免疫賦活劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。 (4)如(1)至(3)中任一項所記載之腸管免疫賦活劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。 (5)一種IgA産生促進劑，其包含源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸作為有效成分。 (6)如(5)所記載之IgA産生促進劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌。 (7)如(6)所記載之IgA産生促進劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。 (8)如(5)至(7)中任一項所記載之IgA産生促進劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。 (9)一種基因表現促進劑，其包含源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸作為有效成分，於樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)中之至少一個因子之表現。 (10)如(9)所記載之基因表現促進劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)之乳酸菌。 (11)如(10)所記載之基因表現促進劑，其中上述蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株。 (12)如請求項9至11中任一項所記載之基因表現促進劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。 (13)一種源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸之用途，其係用於製造人類或非人類動物之腸管免疫賦活用或IgA産生促進用之醫藥品、飲食品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物。 (14)一種源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸之用途，其係用於製造在人類或非人類動物中之樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)中之至少一個因子之表現的基因表現促進用之醫藥品、飲食品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物。 [發明之效果]
根據本發明，作為源自蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus)屬乳酸菌之脂壁酸所具有之新穎用途，能夠提供一種包含該脂壁酸之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑。
以下，參照附圖對本發明之各實施方式進行說明。再者，以下所說明之各實施方式並不限定申請專利範圍之發明，又，各實施方式中所說明之各要素及其組合未必全部對於本發明之解決方法而言為必須。
(I)有效成分之脂壁酸 本發明之一實施方式中之有效成分係源自蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus)屬乳酸菌之脂壁酸。較佳為蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌。又，進一步較佳為蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。
作為蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌，除了酵素蜜蜂乳桿菌、昆氏蜜蜂乳桿菌及蜂群蜜蜂乳桿菌以外，已知有米切納蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus micheneri)、尾瀨蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus ozensis)、奎努蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus quenuiae)及汀布萊克蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus timberlakei)。
蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌係舊乳桿菌屬乳酸菌之中稱作昆氏乳桿菌群之一組乳酸菌。蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌具有革蘭氏陽性、桿狀、異型醱酵性之性質，通常於15～37℃之範圍生長，大多於pH值未達3.0之酸性條件下亦生長。蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之基因組大小為1.42～1.58 Mbp左右，相對較小。DNA中之G＋C含量為30.5～36.4之範圍內。蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌將果糖轉換為甘露醇。又，通常，雖然能夠代謝果糖、葡萄糖及蔗糖，但無法代謝麥芽糖及戊糖(Zheng et al. A taxonomic note on the genus Lactobacillus: Description of 23 novel genera, emended description of the genus Lactobacillus Beijerinck 1901, and union of Lactobacillaceae and Leuconostocaceae. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 2020; 70: 2782 - 2858)。
酵素蜜蜂乳桿菌作為最近發現之嗜果糖乳酸菌(FLAB：Fructophilic lactic acid bacteria)，認為係從以往之乳酸菌進化之細菌(Filannino et al. "Fructose-rich niches traced the evolution of lactic acid bacteria toward fructophilic species" Critical Reviews in Microbiology, Vol.45, No.1, 2019, pp.65 - 81)。FLAB生存在花或果物、醱酵食品、及以果糖為主食之昆蟲之消化道等果糖豐富之環境中。認為FLAB係喜好果糖而非葡萄糖作為碳源的異型醱酵性乳酸菌，但藉由追加氧等電子受體受質，從而促進葡萄糖存在下之生長。酵素蜜蜂乳桿菌10H株相對於其他FLAB及乳酸菌，具有相對較小之基因組大小與較低之GC含量(參照Filannino et al.之Figure3)。
昆氏蜜蜂乳桿菌係自醱酵緩慢之葡萄酒(wine)單離之乳酸菌，典型而言為與蜜蜂或花有關者。昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株為昆氏蜜蜂乳桿菌之模式株，與YH-15株、ATCC700308株、DSM12361株為相同者。該乳酸菌係自先前起便廣為人知，因此省略對詳細性質之說明。
蜂群蜜蜂乳桿菌係從蜜蜂之蜜胃單離之乳酸菌。蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株為蜂群蜜蜂乳桿菌之模式株，與Fhon13N株、DSM26257株及CCUG63287株為相同者。該乳酸菌亦自先前起便廣為人知，因此省略對詳細性質之說明。
脂壁酸(Lipoteichoic acid、LTA)係革蘭氏陽性菌之細胞膜之構成物質。一般之脂壁酸包含以甘油磷酸作為重複單元之主鏈(甘油磷酸鏈)與含有數個糖及數殘基之脂肪酸之錨定糖脂質結合而成的結構。脂壁酸之結構視成為其來源之菌而不同。脂壁酸與革蘭氏陰性菌之脂多糖(LPS)相比，研究未取得進展，其詳細之結構或生理活性尚未得到多少判明。
(II)IgA産生促進劑及腸管免疫賦活劑 於本說明書中，「IgA産生促進劑」係指在添加至包含大量IgA産生細胞之派亞氏淋巴結細胞之培養液中培養特定時間，培養後之培養液中分泌之分泌型IgA量較未添加之情形增加的具有IgA産生誘導能力者。本發明之IgA産生促進劑如以下所詳細敍述，包括飲食品、醫藥品、飼料或者有效成分組合物之形態等。IgA産生促進劑例如藉由與疫苗一起投予，從而能夠增強與疫苗中所含有之抗原對應之抗體之産生，增強疫苗之效果，且抑制疫苗之副作用之可能性較高。即，增強針對疫苗所包含之抗原的抗體之産生，使防禦免疫之誘導變良好，增強疫苗之效果。
於將本實施方式之IgA産生促進劑與疫苗一起使用之情形時，可將IgA産生促進劑用作在疫苗投予之前後投予而提高效果的疫苗之效果增強劑。IgA産生促進劑之使用量根據使用之疫苗之種類及品質、或者接種者之年齡、症狀等而不同，例如，於用於預防時，可例舉成人每次以固形物成分換算為0.01～1 g左右，理想的是於餐前30分鐘左右1天服用3次。
又，於本說明書中，「腸管免疫賦活劑」意指對促進腸管之黏膜上皮中之IgA之分泌，賦活宿主之免疫機制有效者。本發明之腸管免疫賦活劑如以下詳細敍述，包括飲食品、醫藥品、飼料或者有效成分組合物之形態等。又，該等之中，較佳為健康食品，尤其是較佳為用於維持增進免疫力降低之對象之健康的食品組合物。於用作健康食品時，適宜為使用不對食品之味道或外觀産生不良影響之量。
(III)基因表現促進劑 於本說明書中，「基因表現促進劑」係指從特定之細胞促進特定之因子(基因)之表現者。本發明之基因表現促進劑如以下所詳細敍述，包括飲食品、醫藥品、飼料或者有效成分組合物之形態等。本發明之基因表現促進劑係於樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)中之至少一個因子之表現的基因表現促進劑。IL(介白素)-6及IL-10為細胞激素。又，視網醛脫氫酶2為使視網醛代謝變成視黃酸之酵素。腸內之樹狀細胞中之IL-6、視黃酸及IL-10之合成作用於Foxp3 +T細胞，使其分化成與B細胞相互作用之濾泡性輔助T細胞(Tfh cells)。又，腸內之樹狀細胞中之視黃酸及IL-10之合成促進派亞氏淋巴結生發中心(germinal center)內之B細胞中之IgA類型轉換重組及IgA産生。又，表現IL-6之樹狀細胞藉由IL-6R訊息傳遞而增強IgA自B細胞之産生。進而，視黃酸對IgA産生B細胞向腸之歸巢為必須。如上所述，樹狀細胞中之IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2之表現與IgA産生促進密切相關。
(IV)飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物 (有效成分組合物) 本實施方式之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑可以飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態使用。於以有效成分組合物之形態使用之情形時，不僅可直接使用自乳酸菌分離之純粹之作為有效成分的源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸，而且亦可使用含有脂壁酸之粗純化物或純化物、該等之冷凍乾燥物、或者使用酵素或物理方法對菌體進行處理所得之細胞壁區分部分。
本實施方式之有效成分組合物較佳為經過適當調配適宜之可食性載體(食品素材)、製藥上容許之載體等，製備成如下文所述之飲食品、醫藥品等形態。
(醫藥品) 於將本實施方式之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑設為醫藥品之形態之情形時，係與源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸一起使用製劑學上容許之適當之製劑載體，製備成醫藥組合物之形態實際使用。作為該製劑載體，可例示通常於該領域中使用之填充劑、增量劑、結合劑、保濕劑、崩解劑、表面活性劑、潤滑劑等稀釋劑或者賦形劑。
作為醫藥品之投予單位形態，可選擇各種形態，較佳為例舉經口投予用製劑。作為代表性之經口投予製劑，可例舉錠劑、丸劑、散劑、液劑、懸浮劑、乳劑、顆粒劑、膠囊劑等。
於成形為錠劑之形態時，作為製劑載體，例如可使用乳糖、白糖、氯化鈉、葡萄糖、脲、澱粉、碳酸鈣、高嶺土、結晶纖維素、矽酸、磷酸鉀等賦形劑；水、乙醇、丙醇、單糖漿、葡萄糖液、澱粉液、明膠溶液、羧甲基纖維素、羥丙基纖維素、甲基纖維素、聚乙烯吡咯啶酮等結合劑；羧甲基纖維素鈉、羧甲基纖維素鈣、低取代度羥丙基纖維素、乾燥澱粉、海藻酸鈉、瓊脂末、昆布糖末、碳酸氫鈉、碳酸鈣等崩解劑；聚氧乙烯山梨醇酐脂肪酸酯類、月桂基硫酸鈉、硬脂酸單甘油酯等界面活性劑；白糖、硬脂、可可脂、氫化油等崩解抑制劑；四級銨鹽、月桂基硫酸鈉等吸收促進劑；甘油、澱粉等保濕劑；澱粉、乳糖、高嶺土、膨潤土、膠體狀矽酸等吸附劑；精製滑石、硬脂酸鹽、硼酸末、聚乙二醇等潤滑劑等。錠劑可採用根據需要施以通常之劑皮之錠劑、例如糖衣錠、明膠包被錠、腸溶衣錠、膜衣錠，亦可採用雙層錠或多層錠。
在成形為丸劑之形態時，作為製劑載體，例如可使用：葡萄糖、乳糖、澱粉、可可脂、氫化植物油、高嶺土、滑石等賦形劑；阿拉伯膠末、黃耆膠末、明膠、乙醇等結合劑；昆布糖、瓊脂等崩解劑等。
進而，於醫藥品中，亦可視需要含有著色劑、保存劑、香料、風味劑、甜味劑等或其他醫藥品。
本實施方式之醫藥品之投予方法無特別限制，係根據製劑形態、患者之年齡、性別等條件、疾病之程度等而決定。又，其投予量係根據用法、患者之年齡、性別等條件、疾病之程度等而適當決定，通常，上述有效成分組合物可設為每天相對於體重1 kg為約0.5～100 mg左右。醫藥品可1天分1～4次向人類投予。
(飲食品) 本說明書中之「飲食品」包括專門為了飲食而經口地使用之所有形態(例如，亦包括飲料)，即便為錠劑等形態，只要專門用於飲食，則亦包括於本說明書中之飲食品中。例如，以防禦感染或預防下痢等為理念且視需要示出其內容之健康食品、健康輔助食品、病人用食品、營養輔助食品、或者日本厚生勞動省規定之保健功能食品(特定保健用食品、營養功能食品)亦包括於本說明書中之飲食品中。健康食品意指以較通常之食品積極之含義以保健、維持/增進健康等為目的之食品。
於將本實施方式之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑設為飲食品之情形時，例如可例舉：醱酵乳、乳酸菌飲料、醱酵蔬菜飲料、醱酵果實飲料、醱酵豆乳飲料等。「醱酵乳」係指利用乳酸菌或酵母使乳或乳製品醱酵而成之糊狀或液狀者。因此，該醱酵乳包括飲料形態以及酸乳酪形態。又，「乳酸菌飲料」係指以利用乳酸菌或酵母使乳或乳製品醱酵而成之糊狀或液狀者作為主原料，將其用水稀釋而獲得的飲料。
作為其他飲食品形態之例，可例舉：醃菜、豆醬、醱酵茶、麵包等醱酵食品、離乳食、奶粉、嬰兒食品等嬰幼兒用食品、發泡製劑、口香糖、軟糖、布丁等點心類、麵類、膠囊、顆粒、粉末、錠劑等營養輔助食品等、上述醱酵乳及乳酸菌飲料以外之乳製品等。
本實施方式之飲食品中之有效成分組合物之含量無特別限定，可適當決定。就發揮腸管免疫賦活、IgA産生促進或者基因表現促進之效果之觀點而言，相對於各飲食品之總質量，例如較佳為0.001質量%以上，更佳為0.01質量%以上，更佳為0.1質量%以上。另一方面，飲食品中之有效成分組合物之含量之上限無特別限制，通常可根據飲食品之形態適當調整。
(飼料) 於將本實施方式之腸管免疫賦活劑、IgA産生促進劑及基因表現促進劑設為飼料之形態之情形時，例如可作為雞之非抗生劑投予時期或豬、牛等之離乳期中之感染症預防用，製成經口投予用製劑形態(水溶液、乳化液、顆粒、粉末、膠囊、錠劑等)。
[實施例] 以下，例舉實施例進一步詳細地說明本發明，但本發明不受該等實施例任何制約。再者，於以下之實施例中，表示各種成分之添加量等的數值之單位%於無特別記載之情形時，意指質量%。
[實施例1]乳酸菌之獲取與培養 為了獲得源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸，準備蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株、酵素蜜蜂乳桿菌10H株及昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株。又，作為比較用，亦準備蜜蜂乳桿菌屬以外之乳酸菌、植物乳植物桿菌植物亞種(Lactiplantibacillus plantarum subsp. plantarum；以下，亦簡稱為「植物乳植物桿菌」)JCM1149株及鼠李糖乳酪桿菌(Lacticaseibacillus rhamnosus)GG株(ATCC53103)。再者，植物乳植物桿菌植物亞種JCM1149株為模式株。
上述乳酸菌之中，酵素蜜蜂乳桿菌10H株係使用石川縣立大學松崎研究室保管株，鼠李糖乳酪桿菌GG株(ATCC53103)係使用從美國典型培養物保藏中心(ATCC)獲取者，除此以外係使用從日本國立研究開發法人理化學研究所生物資源研究中心微生物材料開發室(JCM)獲取者。
蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株及酵素蜜蜂乳桿菌10H株係使用添加有10%果糖之乳桿菌用MRS培養液進行培養。昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株係使用分別添加有10%番茄汁、0.05% L-半胱胺酸鹽酸鹽之乳桿菌用MRS培養液進行培養。比較用之乳酸菌之菌株係使用乳桿菌用MRS培養液(Difco Laboratories公司)進行培養。各菌株係於30℃下進行一夜預培養，其後於30℃下進行一天正式培養。
[實施例2]脂壁酸之純化 脂壁酸之純化係參考公知之方法(Morath et al., J. Exp. Med., 193 : 393 - 397, 2001及Claes et al., Microbial Cell Factories, 11: 161 - 168, 2012)實施。首先，利用離心分離收集正式培養後之乳酸菌細胞，添加0.1 M檸檬酸緩衝液(pH值4.7)加以懸浮。其次，使用Multi-beads Shoker(註冊商標)(安井器械股份有限公司製造)，使用0.3 mm之氧化鋯珠於冰上進行破碎。將破碎時間設為1分鐘，將其重複6次。將破碎之乳酸菌細胞暫時以-80℃進行冷凍後，添加等量之丁醇攪拌2小時以去除親油性之細胞分子。將其進行離心分離，回收水層後進行冷凍乾燥。將經冷凍乾燥之樣品溶解於管柱平衡緩衝液(包含15%之正丙醇之0.1 M乙酸鈉緩衝液、pH值4.7)，藉由30分鐘之離心分離去除固形物成分，載入至辛基-瓊脂糖4快速流動管柱(GE Healthcare公司製造)，實施疏水性層析。脂壁酸係使用0.1 M乙酸鈉緩衝液(pH值4.7)中之正丙醇自15%至60%之線性梯度溶出。包含脂壁酸之區分部分係藉由測定磷酸鹽及糖之含量而鑑定。磷酸鹽之含量係藉由磷鉬試驗而測定。糖之含量係藉由以葡萄糖為標準之苯酚硫酸法而測定。又，藉由分別測定260 nm及280 nm下之UV吸收而確認所回收之區分部分中不含核酸及蛋白質。將以如上所述之方式回收之區分部分暫時冷凍乾燥，懸浮於10 ml之Milli-Q水中後利用Milli-Q水進行透析，再一次進行冷凍乾燥。脂壁酸之純度係藉由使用LAL試劑(＜0.0001%)(生化學工業股份有限公司製造)測定內毒素含量而確定。
[實施例3]IgA産生誘導能力之測定 (派亞氏淋巴結細胞之製備) 將AIN-76 diet(自Research Diets購買)作為基礎飼料而飼養6週齡雄性BALB/cA小鼠(自CREA Japan購買)。AIN-76 diet係含有20.0%之乳酪蛋白、0.3%之DL-甲硫胺酸、5.0%之玉米油、50.0%之蔗糖、15.0%之玉米澱粉、5.0%之纖維素粉、1.0%之AIN-76混合維生素、3.5%之AIN-76混合礦物質及0.2%之酒石酸氫膽鹼的混合物。
小鼠係依據日本學術會議於2006年發行之有關動物實驗之適宜之實施的準則進行操作。將小鼠飼養1週後，利用二氧化碳進行安樂死，藉由開腹手術摘除小腸之派亞氏淋巴結。
派亞氏淋巴結係置於裝滿冰溫之RPMI 1640培養基(PSMF)[於RPMI 1640培養基(Gibco BRL)中添加100 U/ml之青黴素、100 μg/ml之鏈黴素、55 μmol/l之2-巰基乙醇及10%滅活胎牛血清(FBS；GibcoBRL)]的培養皿，利用該培養基洗淨3次。其後，利用添加有25 mmol/l之HEPES、5 mmol/l之EDTA(pH值8.0)及1 mmol/l之二硫蘇糖醇的RPMI 1640培養基(PSMF)於37℃下培養45分鐘。將派亞氏淋巴結再次利用包含5 mmol/l之EDTA(pH值8.0)之RPMI 1640培養基(PSMF)洗淨後，利用添加有400 U/ml之I型膠原酶(Sigma)與30 U/ml之DNaseI(Takara Bio股份有限公司)的RPMI 1640培養基(PSMF)於37℃下處理50分鐘。將所獲得之混合物利用40 μm之尼龍篩網進行過濾，利用RPMI 1640培養基(PSMF)洗淨2次，獲取用於IgA産生誘導能力之測定的派亞氏淋巴結細胞。藉由錐蟲藍染色確認派亞氏淋巴結細胞之存活率。以派亞氏淋巴結細胞之最終濃度成為1.25×10 6cells/ml之方式進行製備，用於評價。
(IgA之測定) 將實施例2中所獲得之脂壁酸以最終濃度成為50 μg/ml之方式，添加至派亞氏淋巴結細胞之懸浮液，於96孔T細胞活化板(Becton Dickinson)中在5天、37℃、5%CO 2條件下進行共培養。其後，利用小鼠IgA ELISA套組(Bethyl Laboratories)測定所獲得之培養上清液中之IgA量。
將其結果示於圖1。再者，於圖1中，於最上部配置作為陰性對照之生理鹽水(saline)之結果。又，圖1中標示「a」、「b」及「c」表示每個標註不同字母之群存在有意義差(P＜0.05)。實驗之結果，於源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌、即酵素蜜蜂乳桿菌10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株及蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株之脂壁酸中可確認到與源自其他乳酸菌之脂壁酸相比明確高之IgA産生誘導能力。
根據上述結果，能夠期待將源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸、尤其是源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌之脂壁酸、進一步而言源自酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株之脂壁酸作為具有顯著效果之免疫賦活劑。
[實施例4]樹狀細胞中之基因表現解析 (來自小鼠骨髓細胞之骨髓源性樹狀細胞之生成) 骨髓源性樹狀細胞係使用自4週齡雌性BALBc/A小鼠(自CREA Japan購買)之大腿骨及脛骨之骨髓細胞生成者。將自小鼠採集之骨髓細胞洗淨後，將細胞數設為1×10 6cells/ml，懸浮於將粒細胞巨噬細胞集落刺激因子(PeproTech公司製造)以成為20 ng/mL之濃度之方式添加至RPMI 1640培養基(PSMF)而成者中，於37℃、5%CO 2條件下進行培養。於培養第3天及第5天，將培養基之一半更換為新的培養基。於培養第6天收集包含樹狀細胞之細胞，利用抗CD11c微珠(Miltenyi Biotec公司製造)進行磁性標記，使用AutoMACS(Miltenyi Biotec公司製造)根據慣常方法分離樹狀細胞。
(基因表現解析) 以如上所述之方式獲得之骨髓源性樹狀細胞係以1.0×10 9cells/孔(3 ml)使用RPMI 1640培養基(PSMF)進行6小時培養。該培養係對以50 μg/ml之濃度含有源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸者與未添加脂壁酸者(對照)雙方實施。其後，使用QuickPrep總RNA提取套組(GE Healthcare公司製造)自骨髓源性樹狀細胞單離出總RNA，使用SuperScript(註冊商標) III反轉錄套組(Invitrogen公司製造)，由總RNA合成cDNA。即時PCR法係使用StepOne即時PCR系統(Applied Biosystems公司製造)及Power SYBR(註冊商標) Green Master Mix(Applied Biosystems公司製造)實施。用於擴增DNA之引子係使用以下者。
(IL-6擴增用引子：骨髓源性樹狀細胞IL-6 PCR引子) 正向：5'-AATAGTCCTTCCTACCCCAATTTC-3'(序列編號1) 反向：5'-ATTTCAAGATGAATTGGATGGTCT-3'(序列編號2) (IL-10擴增用引子：骨髓源性樹狀細胞IL-10 PCR引子) 正向：5'-ATGCAGGACTTTAAGGGTTACTTG-3'(序列編號3) 反向：5'-GAATTCAAATGCTCCTTGATTTCT-3'(序列編號4) (RALDH2擴增用引子：骨髓源性樹狀細胞RALDH2 PCR引子) 正向：5'-GACTTGTAGCAGCTGTCTTCACT-3'(序列編號5) 反向：5'-TCACCCATTTCTCTCCCATTTCC-3'(序列編號6)
作為內源性對照，使用甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)基因。用於對其進行擴增之引子係使用以下者。
(GAPDH擴增用引子：骨髓源性樹狀細胞GAPDH PCR引子) 正向：5'-CTACACTGAGGACCAGGTTGTCT-3'(序列編號7) 反向：5'-ATTGTCATACCAGGAAATGAGCTT-3'(序列編號8)
統計解析係使用Excel統計(SSRI股份有限公司)實施。測定結果係使用單向配置之ANOVA進行解析，並進行Dunnett之事後比較(Post-hoc)解析。***p＜0.001
將其結果示於圖2。圖2中之基因表現之程度係以對照之結果與含有脂壁酸之樣品之比率表示。實驗之結果，可確認源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸具有對骨髓源性樹狀細胞促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)之基因表現之效果。
根據上述結果，能夠期待將源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸、尤其是源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)之乳酸菌之脂壁酸、進一步而言源自酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株之脂壁酸作為於樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)之表現的基因表現促進劑。
[實施例5]脂壁酸之甘油磷酸鏈之解析 脂壁酸之甘油磷酸鏈(重複結構、聚合物部位)之解析係藉由獲取 1H-NMR圖譜而實施。首先，將實施例2中所獲得之脂壁酸溶解於0.6 ml之99.8%D 2O(自富士膠片和光純藥股份有限公司購買)。 1H-NMR圖譜係於25℃之條件下，使用500 MHz之Varian Unity Inova 500譜儀(Agilent Technologies公司製造)獲取。作為化學位移之基準物質，使用3-(三甲基矽烷基)丙酸鈉-2,2,3,3-d 4(自富士膠片和光純藥股份有限公司購買)。
將其結果示於圖3及圖4。首先，從源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌以外之乳酸菌之脂壁酸中之甘油磷酸鏈之結構開始說明。
關於源自植物乳植物桿菌JCM1149株之脂壁酸，以過去之論文(Hatano et al. Scavenger receptor for lipoteichoic acid is involved in the potent ability of Lactobacillus plantarum strain L - 137 to stimulate production of interleukin - 12p40. International Immunopharmacology, 25 : 321 - 331, 2015)為參考，使各波峰歸屬(參照圖3(b))。認為源自植物乳植物桿菌JCM1149株之脂壁酸具有由GroP單元、AlaGroP單元及GlcGroP單元構成之甘油磷酸鏈。
關於源自鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸，以過去之論文(Claes et al. Lipoteichoic acid is an important microbe-associated molecular pattern of Lactobacillus rhamnosus GG. Microbial Cell Factories, 11 : 161 - 168, 2012)為參考，使各波峰歸屬(參照圖3(c))。認為鼠李糖乳酪桿菌GG株具有由GroP單元及AlaGroP單元構成之甘油磷酸鏈。
上述源自植物乳植物桿菌JCM1149株及鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸中之甘油磷酸鏈之結構係作為舊乳桿菌屬乳酸菌中之脂壁酸通常可見之結構。
另一方面，源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸之 1H-NMR圖譜與源自植物乳植物桿菌JCM1149株及鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸之 1H-NMR圖譜明顯不同(參照圖3(a))。目前正在進行各波峰之歸屬，若亦考慮到過去之報告與 13C-NMR及二維NMR之結果(未圖示)，則認為源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸可能具有GlcGroP單元。然而，由於此外亦存在許多不明之波峰，今後也將繼續藉由構成分析等加以明確。至少認為源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸中之甘油磷酸鏈具有非通常結構之獨特結構。
又，源自昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株之脂壁酸之 1H-NMR圖譜(參照圖4(b))及源自蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株之脂壁酸之 1H-NMR圖譜(參照圖4(c))亦顯示與源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸之 1H-NMR圖譜(參照圖4(a)；再者，圖4(a)與圖3(a)相同)非常相似之結果。因此，認為源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸中之甘油磷酸鏈與源自舊乳桿菌屬乳酸菌之通常之脂壁酸中之甘油磷酸鏈大為不同，且於屬內具有某種程度共通之結構。
[實施例6]脂壁酸之錨定糖脂質之解析 脂壁酸之錨定糖脂質之解析係藉由獲取MALDI-TOF MS圖譜而實施。
(錨定糖脂質之單離) 首先，採集脂壁酸100 μg至PP製之管中。其次，添加48%(w/v)氫氟酸0.1 ml，於4℃下靜置3小時。藉由在通風室內吹送氮氣而去除氫氟酸後，添加氯仿1 ml、甲醇1 ml、水0.9 ml，充分攪拌後，進行離心分離(20℃、200×g、30秒)，回收下層之有機層。藉由在通風室內吹送氮氣而去除有機溶劑，獲得脂壁酸之錨定糖脂質。
(MALDI-TOF MS圖譜之獲取) 將錨定糖脂質溶解於氯仿/甲醇(2：1、v/v)100 μl，進而於靶板上與同量之基質劑(含有0.1%三氟乙酸(TFA)之10 mg/ml之2,5-二羥基苯甲酸(DHBA)之水/甲醇(7：3、v/v)溶液)混合。混合物進行共結晶後，以陽離子模式、反射(reflectron)模式獲取MALDI-TOF質譜。作為質量分析裝置，使用TOF/TOF 5800系統(AB Sciex公司製造)。
將其結果示於圖5及圖6。首先，從源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌以外之乳酸菌之脂壁酸中之錨定糖脂質之結構開始說明。
認為源自植物乳植物桿菌JCM1149株之脂壁酸中之錨定糖脂質之主要結構係Hex 3DAG、即於三糖鍵結有二醯基甘油之結構(參照圖5(b))。又，亦存在認為由AcylHex 3DAG産生之波峰，但波峰強度較弱而藏於背景中。進而，亦存在認為由Hex 2DAG、即於二糖鍵結有二醯基甘油之結構産生之波峰(956)，但其波峰強度亦較弱，認為不可謂確實地存在。
認為源自鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸中之錨定糖脂質之主要結構係Hex 3DAG(參照圖5(c))。關於認為由AcylHex 3DAG産生之波峰，僅可見1根(1368)，波峰亦較弱，因此源自鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸中之錨定糖脂質有可能不具有AcylHex 3DAG。關於認為由Hex 2DAG産生之波峰，雖然與植物乳植物桿菌JCM1149株之情形同樣地存在(942，956)，但波峰強度仍較弱。
總之，認為上述源自植物乳植物桿菌JCM1149株及鼠李糖乳酪桿菌GG株之脂壁酸中之錨定糖脂質之結構為Hex 3DAG。三糖之錨定糖脂質係作為舊乳桿菌屬乳酸菌中之脂壁酸所常見之結構。
另一方面，認為源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸中之錨定糖脂質之主要結構為Hex 2DAG(942，956，982)(參照圖5(a))。二糖之錨定糖脂質係源自乳酸菌之中腸球菌(Enterococcus)屬乳酸菌、乳球菌(Lactococcus)屬乳酸菌及明串珠菌(Leuconostock)屬乳酸菌之脂壁酸中所常見之結構。另一方面，源自舊乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸中所常見者為三糖或四糖之錨定糖脂質。然而，蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌儘管屬於舊乳桿菌屬，但可確認到脂壁酸中之錨定糖脂質主要為二糖。又，源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸中之錨定糖脂質亦不具有在源自多種舊乳桿菌屬乳酸菌或乳球菌屬乳酸菌之脂壁酸中共通可見的鍵結有3殘基之脂肪酸之錨定糖脂質。因此，源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸中之錨定糖脂質之結構可見與此前明確之代表性之乳酸菌所共通之錨定糖脂質之結構大不相同的特徵。
又，源自昆氏蜜蜂乳桿菌JCM16173株之脂壁酸中之錨定糖脂質之MALDI-TOF MS圖譜(參照圖6(b))及源自蜂群蜜蜂乳桿菌JCM30765株之脂壁酸中之錨定糖脂質之MALDI-TOF MS圖譜(參照圖6(c))亦與源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸中之錨定糖脂質之MALDI-TOF MS圖譜(參照圖6(a)；再者，圖6(a)與圖5(a)相同)在以Hex 2DAG為主要結構之方面顯示類似之結果。因此，認為源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸中之錨定糖脂質亦與源自舊乳桿菌屬乳酸菌之通常之脂壁酸中之錨定糖脂質大為不同，且於屬內具有某種程度共通之結構。
根據上述實施例5、6，判明源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸具有與源自舊乳桿菌屬乳酸菌之通常之脂壁酸整體上不同之結構。認為源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸與源自舊乳桿菌屬乳酸菌之通常之脂壁酸之結構上之不同關係到源自蜜蜂乳桿菌屬乳酸菌之脂壁酸顯示較高之IgA産生誘導能力。
圖1係表示實施例3中之脂壁酸之IgA産生誘導能力之圖表。 圖2係表示實施例4中之源自酵素蜜蜂乳桿菌10H株之脂壁酸之基因表現解析之結果的圖表。 圖3(a)～(c)係實施例5中之脂壁酸之 1H-NMR圖譜。 圖4(a)～(c)係實施例5中之脂壁酸之 1H-NMR圖譜。 圖5(a)～(c)係實施例6中之脂壁酸之錨定糖脂質之MALDI-TOF MS圖譜。 圖6(a)～(c)係實施例6中之脂壁酸之錨定糖脂質之MALDI-TOF MS圖譜。
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Claims (15)

  1. 一種腸管免疫賦活劑，其包含源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌之脂壁酸作為有效成分。
  2. 如請求項1之腸管免疫賦活劑，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。
  3. 如請求項1或2之腸管免疫賦活劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。
  4. 一種IgA產生促進劑，其包含源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌之脂壁酸作為有效成分。
  5. 如請求項4之IgA產生促進劑，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。
  6. 如請求項4或5之IgA產生促進劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。
  7. 一種基因表現促進劑，其包含源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)之乳酸菌之脂壁酸作為有效成分，且於樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)中之至少一個因子之表現。
  8. 如請求項7之基因表現促進劑，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株。
  9. 如請求項7或8之基因表現促進劑，其為飲食品、醫藥品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物之形態。
  10. 一種源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌之脂壁酸之用途，其係用於製造人類或非人類動物之腸管免疫賦活用之醫藥品、飲食品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物。
  11. 如請求項10之脂壁酸之用途，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌 (Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。
  12. 一種源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)之乳酸菌之脂壁酸之用途，其係用於製造人類或非人類動物之IgA產生促進用之醫藥品、飲食品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物。
  13. 如請求項12之脂壁酸之用途，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株、昆氏蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kunkeei)JCM16173株或者蜂群蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus apinorum)JCM30765株。
  14. 一種源自屬於酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)之乳酸菌之脂壁酸之用途，其係用於製造在人類或非人類動物中之樹狀細胞中促進IL-6、IL-10及視網醛脫氫酶2(RALDH2)中之至少一個因子之表現的基因表現促進用之醫藥品、飲食品、飼料或者調配於該等中之有效成分組合物。
  15. 如請求項14之脂壁酸之用途，其中上述乳酸菌為酵素蜜蜂乳桿菌(Apilactobacillus kosoi)10H株。
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