TWI406870B - A method of making a protein using hamster IGF-1 - Google Patents
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Description
本發明係關於新穎的倉鼠IGF－1多肽。本發明進一步使用上述新穎的倉鼠IGF－1多肽，有效且價廉地製造所需基因重組蛋白質之方法。
使用基因重組技術，生產有效地使用於醫藥之蛋白質時，若使用動物細胞時，將可進行細菌細胞所不能進行之複雜的複製後修飾或摺疊，所以逐漸使用動物細胞作為用以生產基因重組蛋白質之宿主細胞。
傳統上，培養動物細胞以得到該動物細胞所產生之天然蛋白質，或培養導入編碼所需蛋白質之基因之動物細胞，製造所需蛋白質等時，除了鹽類、糖類、胺基酸類、及維生素類等之基礎營養物以外，為增殖該動物細胞，通常必須於培養基添加來自哺乳動物之萃取物，具體上如5至20%範圍之牛胎兒血清等之血清。然而，1)相關之來自哺乳動物的血清價昂，2)因批次間品質有所差異，所以不能得到安定的增殖，3)有病毒或黴漿菌污染之可能性，及4)自培養基單離、精製細胞產物之所需蛋白質變得複雜等之缺點。因此，追求以未含血清之培養基培養動物細胞，而可廉價地生產基因重組蛋白質之技術。
為了於無血清培養基，進行蛋白質製造，必須加入血清所含之增殖因子，例如於培養CHO(Chinese Hamster Ovary，中國倉鼠卵巢)細胞時，通常由添加人類IGF－1(類胰島素成長因子1：insulin－like growth factor 1)，改善細胞增殖及生存率，可長期培養或大量培養。
IGF－1係發現具有類似胰島素活性之多肽，為70個胺基酸之單鏈多肽，具有類似前胰島素(proinsulin)之結構。IGF－1具有細胞增殖作用以及類胰島素之代謝活性，為個體成長最重量的成長因子之一。認為IGF－1係受到由腦下垂體所分泌之生長激素(Growth Hormone；GH)的作用，於肝臟產生，促進長遠目標之骨組織成長，以及於肌肉或脂肪細胞中，顯示代謝活性者。
近年來，除了如上述之內分泌作用，揭示於各種細胞培養系統，產生IGF－1，以及IGF－1對於此等細胞不僅增殖作用，亦具有各種生理活性。另外，著眼於IGF－1所具有之促進細胞增殖作用，提出於生產基因重組蛋白質之動物細胞培養系，導入編碼人類IGF－1等之具有促進增殖作用之多肽之DNA之製造基因重組蛋白質之方法(US 2002/0102650 A1)。
如IGF－1之各種增殖因子雖使用來自人類之基因重組體，但價格非常昂貴，就製造成本之觀點，以減少IGF－1的添加量為宜。
本發明係以得到製造成本低，而且具有強力促進細胞增殖作用之新穎IGF－1多肽為目的。本發明進一步係以利用編碼上述新穎IGF－1多肽之DNA，有效率地且廉價地製作可生產基因重組蛋白質之宿主動物細胞為目的。本發明再以提供使用相關宿主動物細胞，製造基因重組蛋白質之方法為目的。
為達成上述目的，努力研究的結果，本發明者發現使用來自倉鼠之新穎的類胰島素成長因子1(IGF－1)多肽，發現該新穎的類胰島素成長因子1於培養動物細胞時，具有明顯的促進細胞增殖作用而完成本發明。
亦即，本發明係提供下述者。
1、選自(1)具有序列號碼1所記載之胺基酸序列之多肽，及(2)具有於序列號碼1所記載之胺基酸序列中，第3個胺基酸為其他胺基酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF－1)活性之多肽所成群之多肽。
2、如第1項記載之多肽，其中第3個胺基酸為絲胺酸所取代。
3、如第1項記載之多肽，其中第3個胺基酸為賴胺酸所取代。
4、編碼如第1項記載之多肽之DNA。
5、含有如第4項記載之DNA之載體。
6、含有如第5項記載之載體之宿主細胞。
7、第6項記載之宿主細胞為CHO(Chinese Hamster Ovary，中國倉鼠卵巢)細胞。
8、使用如第6項或第7項記載之宿主細胞，製造如第1項記載之多肽之方法。
9、與如第1項記載之多肽鍵結之抗體。
10、導入編碼如第1項記載之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA，用以生產所需蛋白質之細胞。
11、如第10項記載之細胞，由單一之載體，同時導入編碼如第1項記載之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA。
12、如第10項記載之細胞，由多數之載體，分別導入編碼如第1項記載之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA。
13、如第10項至第12項中任一項記載之細胞，其為CHO細胞。
14、包含培養如第10項至第13項中任一項記載之細胞之所需蛋白質之製造方法。
15、含有如第1項記載之多肽之培養基。
16、如第15項記載之培養基，其中由添加如第1項記載之多肽於培養基而含於培養基。
17、如第15項記載之培養基，其中如第1項記載之多肽係由宿主細胞分泌而含於培養基。
18、如第15項至第17項中任一項記載之培養基，其中培養基係無血清培養基，或除了如第1項記載之多肽以外，未含來自哺乳動物成份之培養基。
19、包含使用如第15項至第18項中任一項記載之培養基，培養CHO細胞之所需蛋白質之製造方法。
20、包含下述步驟，用以製造所需蛋白質之細胞之製造方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼IGF－1之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
21、包含下述步驟，用以製造所需蛋白質之細胞之製造方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼IGF－1之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟。
22、包含下述步驟，用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法：(a)同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
23、如第22項記載之方法，使用含有編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA之單一載體，同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA於CHO細胞。
24、包含下述步驟，用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法：(a)導入編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
25、包含下述步驟，用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法：(a)導入編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟，(c)自(b)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
26、包含下述步驟，用於製造所需蛋白質之細胞之篩選方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼IGF－1之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟，(d)自(c)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質及如申請專利範圍第1項之多肽之細胞之步驟。
本發明之多肽係以具有圖1及序列號碼1所示之胺基酸序列之分泌型之成熟倉鼠IGF－1為宜，但亦可為先驅型倉鼠IGF－1。
另外，本發明之多肽亦包含於具有序列號碼1所示之倉鼠IGF－1之胺基酸序列，第3個胺基酸為其他胺基酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF－1)活性之多肽。所取代之胺基酸並無特別的限制，雖然任何胺基酸皆可取代，但以絲胺酸、賴胺酸或天冬胺酸所取代為宜，以絲胺酸或賴胺酸所取代尤佳。
本發明中，所謂具有類胰島素成長因子1(IGF－1)活性之用語，係指對於動物細胞，具有促進增殖活性及/或提昇生存率活性。
本發明中，有時「多肽」與「蛋白質」同義地使用。
本發明之多肽係由該業者已知的方法，可調製成基因重組多肽，或天然之多肽。為基因重組多肽時，組入編碼本發明之多肽於適當的表現載體，將其導入適當的宿主細胞，回收所得之轉型株，得到萃取物後，由施以離子交換、逆相、凝膠過濾之層析法，或固定對本發明多肽之抗體於管柱之親和層析法，或進一步組合多數的此等管柱精製，而可調製。
另外，本發明之多肽與谷胱甘肽硫轉移酶(glutathione S－transferases)蛋白質之融合蛋白質，或加成多數個組織胺酸之基因重組蛋白質，於宿主細胞(例如動物細胞或大腸菌等)內表現時，所表現之基因重組蛋白質係可使用谷胱甘肽管柱或鎳管柱精製。
精製融合蛋白質後，因應需要，亦可由凝血酶或凝血因子－Xa等切斷、除去融合蛋白質中目的多肽以外的範圍。
為天然之多肽時，由業者已知之方法，例如對於表現本發明之多肽之組織或細胞萃取物，使後述鍵結於倉鼠IGF－1多肽之抗體所鍵結之親和性管柱作用以精製而單離。抗體係單株抗體(monoclonal antibody)，亦可為多株抗體(polyclonal antibody)。
另外，本發明係提供編碼本發明之倉鼠IGF－1之DNA。本發明之DNA係可利用於體內(in vivo)或是體外(in vitro)生產如上述之本發明之多肽。本發明之DNA係只要可編碼本發明之多肽，所有形態皆可。亦即不論自mRNA所合成之cDNA、基因DNA、化學合成DNA等。另外，只要可編碼本發明之多肽，包含具有基於基因密碼退化之任意鹼基序列。
本發明之DNA係可由該業者已知的方法而調製。例如由表現本發明之多肽之細胞，製作互補型去氧核糖核酸基因庫(cDNA library)，以本發明之DNA序列(例如序列號碼2)的一部份作為探針，由進行雜交而調製。cDNA基因庫亦可由例如Sambrook,J.et al.,Molecular Cloning 、Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989)所記載之方法而調製，亦可使用市售之cDNA基因庫。另外，亦可由表現本發明多肽之細胞而調製RNA，基於本發明之DNA序列，合成低聚DNA，以此作為引子，進行PCR反應，增幅編碼本發明多肽之cDNA而調製。
具體上，可如後述操作。首先，自表現本發明多肽之細胞、組織、臟器等，單離mRNA。單離mRNA係可由已知方法，例如脈超離心法(Chirgwin,J.M.et al.,Biochemistry(1979)18,5294－5299)、AGPC法(Chomczynski,P.and Sacchi,N.,Anal.Biochem.(1987)162,156－159)等，調製總RNA，使用mRNA Purification Kit(Pharmacia)等，自總RNA精製mRNA。另外，由使用QuickPrep mRNA Purification Kit(Pharmacia)，亦可直接調製mRNA。
使用逆轉錄酵素，自所得之mRNA，合成cDNA。cDNA之合成亦可使用AMV Reverse Transcriptase First－strand cDNA Synthesis Kit(生化學工業)等而進行。另外，使用本說明書所記載之引子等，依據5’－Ampli FINDER RACE Kit(Clontech製)及聚合酶鏈反應(polymerase chain reaction；PCR)之5’－RACE法(Frohman,M.A.et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A(1988)85,8998－9002；Belyavsky,A.et al.,Nucleic Acids Res.(1989)17,2919－2932)，可進行cDNA的合成及增幅。
如後述之本發明之實施例中，由聚合酶鏈反應基因選殖(PCR Cloning)，得到編碼倉鼠IGF－1多肽之cDNA。PCR引子的設計係使用已知之大鼠/小鼠/人類IGF－1間，保存基因序列之範圍而進行。
自所得之PCR產物，調製目的之DNA斷片，與載體DNA連接。進一步，由此製作基因重組載體，導入於大腸菌等，選擇菌落，調製所需之基因重組載體。目的之DNA鹼基序列係可由已知的方法，例如雙去氧核醣鏈停止法(dideoxynucleotide chain termination)法而確認。
另外，可由所得之cDNA作為探針，篩選基因組DNA基因庫，單離基因組DNA。
另外，於本發明之DNA，考量表達時所使用之宿主密碼使用頻率，可設計表現效率更高之鹼基序列(Grantham,R.et al.,Nuclelic Acids Research(1981)9,r43－74)。另外，本發明之DNA係可由市售之試劑組或已知的方法而改變。作為改變，可舉例如由限制酵素消化、插入適當的合成寡核苷酸(oligonucleotide)或適當的DNA片段、加成連結區段(linker)、插入開始密碼(ATG)及/或結束密碼(TAA、TGA、或TAG)等。
另外，本發明係提供插入本發明DNA之載體。作為本發明之載體，係有效地用以保持本發明之DNA於宿主細胞，或進一步用以表現本發明之多肽。
作為載體，可舉例如以大腸菌為宿主時，為使載體於大腸菌(例如JM109、DH5 α、DH10 α、HB101、XL1Blue)等大量增幅，大量調製時，只要具有於大腸菌用以增幅之「ori」，進一步具有轉形大腸菌之選擇基因(例如可由某種藥劑(安比西林(Ampicillin)、四環黴素、卡那黴素(kanamycin)、氯黴素)判別之藥劑耐性基因)即可，並無特別的限制。作為載體，可舉例如M13系載體、pUC系載體、pBR322、pBluescript、pCR－Script等。另外，以少部份基因選殖(subcloning)、選取為目的，除了上述載體以外，可舉例如pGEM－T、pDIRECT、pT7等。於生產本發明多肽之目的，使用載體時，以表現載體最有效。作為表現載體，例如於大腸菌中之表現為目的時，除了具有載體於大腸菌增幅之上述特徵以外，以JM109、DH5 α、DH10 α、HB101、XL1Blue等大腸菌作為宿主時，於大腸菌中具有有效率表現之啟動子(promoter)，例如lacZ啟動子(Ward等，Nature(1989)341,544－546；FASEB J.(1992)6,2422－2427)、araB啟動子(Better等，Science(1988)240,1041－1043)、或T7啟動子等係不可或缺的。作為如此之載體，除了上述載體以外，可舉例如pGEX－5X－1(Pharmacia社製)、「QIAexpress system」(Quiagen社製)、pEGFP、或pET(此時宿主係以表現T7RNA聚合酶之BL21為宜)等。
另外，載體中亦可含有用以分泌多肽之訊號序列(signal sequence)。作為用以分泌多肽之訊號序列，使大腸菌細胞膜隙(periplasm)產生時，使用pelB訊號序列(Lei,S.P.et al J.Bacteriol.(1987)169,4379)。導入載體於宿主細胞，可使用氯化鈣法、電洞法(electroporation)而進行。
除了大腸菌以外，例如作為用以製造本發明之多肽所使用之載體，可舉例如來自哺乳動物之表現載體(例如pcDNA3(Invitrogen社製)、或pEF－BOS(Nucleic Acids.Res.1990,18,p5322)、pEF、pCDM8)、來自昆蟲細胞之表現載體(例如「Bac－to－Bac baculovairus expression system」(GIBCO BRL社製，pBacPAK8))、來自植物細胞之表現載體(例如pMH1、pMH2)、來自動物病毒之表現載體(例如pHSV、pMV、pAdexLcw)、來自反轉錄病毒(Retrovirus)之表現載體(例如pZIpneo)、來自酵母之表現載體(例如「Pichia Expression Kit」(Invitrogen社製)、pNV11、SP－Q01)、來自枯草菌之表現載體(例如pPL608、pKTH50)等。
以於CHO細胞、COS細胞、NIH3T3細胞等動物細胞之表現為目的時，於細胞內用以表現所需之引動子，具有例如S40引動子(Mulligan等,Nature(1979)277,108)、MMLV－LTR引動子、EF1 α引動子(Mizushima等,Nucleic Acids Res.(1990)18,5322)、RSV引動子、CMV引動子等，係不可或缺的，以具有用以選擇細胞轉形之基因(例如可由藥劑(新黴素、G418、效高黴素(Hygromycin)、嘌呤黴素(puromycin)等)判別之藥劑耐性基因)為宜。作為具有如此特性之載體，可舉例如pMAM、pDR2、pBK－RSV、pBK－CMV、pOPRSV、pOP13等。
進一步，以安定地表現基因，而且增幅細胞內之基因複製數為目的時，可舉例如導入具有與其互補之DHFR基因之載體(例如pCHOI等)於欠缺核酸合成路徑之CHO細胞，由甲氨喋呤(methotrexate)增幅的方法，另外，以基因的整體性表現為目的時，可舉例如使用於染色體上具有表現SV40T抗原之基因之COS細胞，具有SV40之複製起點之載體(pCD)等轉形之方法。作為複製開始點，另外亦可使用來自多瘤病毒(Polyomavirus)、腺病毒(adenovirus)、乳頭瘤病毒(papillomavirus,BPV)等之序列。進一步，為增幅於宿主細胞系基因複製數，表現載體係可含有作為選擇標誌之胺基糖甘磷酸轉移酶(APH)基因、胸腺嘧啶激酶(thymidine kinase；TK)基因、大腸菌茶鹼鳥糞嘌呤磷酸核糖基轉基醯(Ecogpt，xanthine－guanine phosphoribosyltransferase)基因、二氫葉酸還原酵素(dhfr)基因等。
另一方面，作為動物活體內表現本發明DNA之方法，可舉例如組入本發明之DNA於適當的載體，由反轉錄病毒法、微脂粒(liposome)法、陽離子型微脂粒(cationic liposome)法、腺病毒(adenovirus)法等導入活體內之方法等。作為所使用之載體，可舉例如腺病毒載體(例如pAdexlcw)、反轉錄病毒載體(例如pZIPneo)等，但不侷限於此等。插入本發明之DNA於載體等之一般基因操作係可依據常法進行(Molecular Cloning,5.61－5.63)。活體內的投予係可為體外(ex vivo)法，亦可為體內(in vivo)法。
另外，本發明係提供導入本發明載體之宿主細胞。作為導入本發明載體之宿主細胞，並無特別的限制，例如可使用大腸菌或CHO細胞等之各種動物細胞等。本發明之宿主細胞係可作為用以製造或表現本發明多肽之產生系統使用。用以製造多肽之產生系統有體外(in vitro)及體內(in vivo)之產生系統。作為體外之產生系統，可舉例如使用真核細胞之產生系統或使用原核細胞之產生系統。
使用真核細胞時，可使用例如動物細胞、植物細胞、真菌細胞於宿主。作為動物細胞，已知例如CHO(J.Exp.Med.(1995)108,945)、COS、3T3、骨髓瘤(myeloma)、BHK(baby hamster kidney)、Hela、Vero、兩生類細胞，例如南非有爪蟾蜍(Xenopus laevis)卵母細胞(Valle,et al.,Nature(1981)291,358－340)、或昆蟲細胞，例如Sf9、Sf21、Tn5。作為CHO細胞，尤其適合使用欠缺DHFR基因之CHO細胞之CHO dhfr－(Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1980)77,4216－4220)或CHOK－1(Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1968)60,1275)。於動物細胞，以大量表現為目的時，尤其以CHO細胞為宜。導入載體於宿主細胞係可以例如磷酸鈣法、DEAE糊精法、使用陽離子型微脂粒DOTAP(1,2－Dioleoyl－3－Trimethylammonium－Propane)(Boehringer Mannheim社製)之方法、電洞法(electroporation)、粒遞送法(lipofection)等之方法進行。
作為植物細胞，已知來自菸草(Nicotiana tabacum)之細胞作為多肽生產系統，將其作癒合組織培養(Callusculture)即可。另外，亦適用由水草之培養(Biolex社)。作為真菌細胞，已知酵母，例如酵母菌(Saccharomyces)屬，如釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、絲狀菌，例如麴菌(Aspergillus)屬，如黑麴黴(Aspergillusniger)。
使用原核細胞時，有使用細菌細胞之產生系。作為細菌細胞，可舉例如大腸菌(E.coli)，例如JM109、DH5 α、DH10 α、HB101等，其他如枯草菌。
由目的之DNA，轉形此等細菌，由體外培養所轉型之細胞而得多肽。培養係可由已知的方法進行。例如作為動物細胞之培養液，可使用例如DMEM(Dulbecco's Modified Eagle Media)、MEM(Modified Eagle Media)、RPMI(Rosewell Park Memorial Institute)1640、IMDM(Iscove's Modified Dulbecco's Medium)。此時，亦可併用牛胎兒血清(FES)等之血清輔助液，亦可無血清培養。培養時之pH以約6至8為宜。培養通常係於約30至40℃，進行約15至200小時，因應需要，而加入培養基的交換、通氣、攪拌。
另一方面，作為於體內產生多肽之系統，可舉例如使用動物之產生系統或使用植物之產生系統。由導入目的DNA於此等動物或植物，於動物或植物的體內產生多肽而回收。本發明中之(宿主)包含此等動物、植物。
使用動物時，有使用哺乳類動物、昆蟲之產生系統。作為哺乳類動物，可使用山羊、豬、綿羊、小鼠、牛(Vicli Glaser,SPECTRUM Biotechnology Applications,1993)。另外，使用哺乳動物時，可使用基因轉殖動物。
例如將目的DNA與編碼如山羊β酪蛋白之乳汁中原有產生之多肽之基因，調製成融合基因。接著，注入含有此融合基因之DNA斷片於山羊的胚胎，移植此胚胎於雌山羊。自接受胚胎之山羊所產生之基因轉殖山羊或其子孫所產生之乳汁，可得到目的之多肽。為增加自基因轉殖山羊所產生之含有多肽之乳汁量，可使用適當的激素於基因轉殖山羊(Ebert,K.M.et al.,Bio/Technology(1994)12,699－702)。
另外，作為昆蟲，例如可使用蠶。使用蠶時，由使蠶感染插入編碼目的多肽之DNA之桿狀病毒(baculovirus)，可自蠶的體液，得到目的的多肽(Susumu,M.et al.,Nature(1985)315,592－594)。
進一步，使用植物時，例如可使用菸草。使用菸草時，編碼目的多肽之DNA，插入植物表現用載體，例如pMON530，將此載體導入如冠纓農桿菌(Agrobacterium tumefaciens)之細菌。使菸草，例如(Nicotiana tabacum)感染此細菌，由本菸草葉得到所需之多肽(Julian K.－C.Maetal.,Eur.J.Immunol.(1994)24,131－138)。
由此所得之本發明之多肽係自宿主細胞或細胞外(培養基等)分離，可實質地精製純粹及均勻的多肽。多肽的分離、精製係可使用通常精製多肽所使用之分離、精製方法，並非受任何侷限者。例如適當選擇、組合層析管柱、過濾器、超濾、鹽析、溶媒沈澱、溶媒萃取、蒸餾、免疫沈澱、SDS－聚丙烯醯胺凝膠電泳、等電點電泳法、透析、再結晶等，而可分離、精製多肽。
作為層析法，可舉例如親和層析法、離子交換層析法、疏水性層析法、凝膠過濾、逆相層析法、吸附層析法等(Strategies for Protein Purification and Characterization：A Laboratory Course Manual.Ed Daniel R.Marshak et al.,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1996)。此等層析法係可使用液相層析法，例如HPLC(高效能液相層析法)、FPLC(快速蛋白質液相層析)等之液相層析法而進行。本發明係使用此等之精製方法，亦包含高度精製之多肽。。
另外，將多肽於精製前或精製後，使適當的多肽修飾酵素作用，亦可任意地施以修飾，除去部份的多肽。作為多肽修飾酵素，可使用例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶(Chymotrypsin)、賴胺醯肽鏈內切酶(lysylendopeptidase)、蛋白激酶(proteinkinase)、葡萄糖苷酶(glucosidase)等
另外，本發明係提供與本發明之多肽鍵結之抗體。本發明之抗體型態，並無特別的限制，除了多株抗體之外，亦包含單株抗體。另外，亦包含使兔子等之免疫動物，對本發明之多肽發生免疫所得之免疫血清，所有種類之多株抗體及單株抗體，進而人類抗體或基因重組之人化抗體。
作為取得抗體之敏化抗原使用之本發明之多肽，係可使用本說明書所揭示之基因序列或胺基酸序列而得之。
於本發明中，作為敏化抗原使用之多肽，可為完全之多肽，另外，亦可為多肽之部份胜肽。
插入編碼本發明之多肽或其斷片之基因於已知之表現載體系統，由該載體使本說明書所述之宿主細胞轉形，以已知方法，自該宿主細胞得到目的之多肽或其斷片，亦可使用此等作為敏化抗原。另外，亦可使用表現多肽之細胞或其溶解物或化學合成之本發明之多肽作為敏化抗原。
作為以敏化抗原而免疫之哺乳動物，雖無特別的限制，但以考慮與細胞融合所使用之親代細胞之適合性而選擇為宜，一般係使用囓齒目、兔目、靈長目之動物。
作為囓齒目之動物，可使用例如小鼠、大鼠、倉鼠等。可使用兔目動物，例如兔子。可使用靈長目動物，例如猴子。作為猴子，可使用狹鼻下目之猴子(舊世界的猴子)，例如食蟹獼猴(Macaca fascicularis)、恒河猴(Macaca Mulatta)、阿拉伯狒狒(Papio hamadryas)、黑猩猩(chimpanzee)等。
使動物對敏化抗原發生免疫係依據已知方法而進行。作為一般方法，係注入敏化抗原於哺乳動物之腹腔內或皮下。具體上，將敏化抗原稀釋、懸濁於適當量之PBS(磷酸緩衝溶液，Phosphate－Buffered Saline)或生理食鹽水等者，依所需而適量地混合一般的佐劑(adjuvant)，例如弗氏完全佐劑(Freund complete adjuvant)，乳化後投與哺乳動物。進一步，之後，將適量地混合弗氏不完全佐劑(Freund incomplete adjuvant)之敏化抗原，以每隔4至21天數次投與為宜。另外，於敏化抗原免疫時，可使用適當的載體。如此免疫，可由常法確認血清中所需抗體程度之上昇。
在此，得到對本發明之多肽之多株抗體，確認血清中所需之抗體程度上昇後，取出對抗原敏化之哺乳動物之血液。由已知方法自此血液分離血清。作為多株抗體，可使用含多株抗體之血清，亦可因應需要，自此血清再分離含有多株抗體之部份而使用。例如使用交聯本發明之多肽之親和管柱，得到僅認識本發明之多肽之部份，進一步由利用蛋白質A或蛋白質G管柱精製此部份，而可調製免疫球蛋白G或M。
於得到單株抗體，確認敏化上述抗原之哺乳動物血清中所需之抗體程度上昇後，自哺乳動物取出免疫細胞，供予細胞融合。此時，作為適宜使用於細胞融合之免疫細胞，尤其可舉例如脾細胞。作為與上述免疫細胞融合之另一方親代細胞，舉例如以哺乳動物之骨髓瘤細胞為宜，由藥劑以獲得用以選別融合細胞之特性之骨髓瘤細胞尤佳。
上述免疫細胞與骨髓瘤細胞之細胞融合，基本上係可依據已知方法，例如Milstein等之方法(Galfre,G.and Milstein,C.,Methods Enzymol.(1981)73,3－46)等而進行。
由細胞融合所得之融合瘤(hybridoma)係由一般選擇培養液，例如HAT培養液(含次黃嘌呤(Hypoxanthine)、胺蝶砱(aminopterin)及胸腺嘧啶(thymidine)之培養液)培養而選擇。為使目的融合瘤以外的細胞(非融合細胞)死亡，該HAT培養液之培養係持續進行充份的時間，通常為數日、數週。接著，實施一般限數稀釋法(limiting dilution assay)，進行產生目的抗體之融合瘤之篩選及複製(Cloning)。
另外，使人類以外的動物對抗原發生免疫而得到上述融合瘤以外，使人類淋巴球，例如將感染EB病毒之人類淋巴球，於體外，以多肽、多肽表現細胞或其溶解物敏化，使敏化淋巴球與來自人類之具有永久分裂能力之骨髓瘤細胞，例如U226融合，亦可得到產生對多肽具有結合活性之所需人類抗體之融合瘤(特開昭63－17688號公報)。
接著，移植所得之融合瘤於小鼠腹腔內，由同一小鼠回收腹水，將所得之單株抗體，由例如硫酸銨沈澱、蛋白質A管柱、蛋白質G管柱、DEAE離子交換層析法、交聯本發明多肽之親和管柱等精製而可調製。本發明之抗體係用以精製、檢測本發明之多肽以外，亦可成為本發明之多肽之激化物(agonist)或括抗劑(antagonist)之候補。另外，亦考量應用此抗體於本發明之多肽相關疾病之抗體治療。以投與所得抗體於人體為目的(抗體治療)使用時，為降低抗原引起免疫反應之性質，以人類抗體或人類型抗體為宜。
例如具有人類抗體基因範圍之基因轉殖動物，對成為抗原之多肽、多肽表現細胞或其溶解物，發生免疫，而取得抗體產生細胞，使用將其與骨髓瘤細胞融合之融合瘤，而可取得對多肽之人類抗體(參考國際公開號碼WO92－03918、WO93－2227、WO94－02602、WO94－25585、WO96－33735及WO96－34096)。
除了使用融合瘤以產生抗體以外，亦可使用由癌基因(oncogene)，使產生抗體之敏化淋巴球等之免疫細胞成不死化之細胞。
如此所得之單株抗體，可再使用基因重組技術，得到所產生之基因重組型抗體(例如參考Borrebaeck,C.A.K.and Larrick,J.W.,THERAPEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES,Published in the United Kingdom by MACMILLAN PUBLISHERD LTD，1990)。基因重組型抗體係自編碼其之DNA之融合瘤或產生抗體之敏化淋巴球等之免疫細胞選殖，組入適當的載體，將其導入宿主而產生。本發明係包含此基因重組型抗體。
進一步，本發明之抗體係只要特異性地結合於本發明之多肽，亦可為該抗體斷片或抗體修飾物。例如，作為抗體斷片，可舉例如Fab、F(ab’)2、Fv或H鏈及L鏈之Fv，以適當的連結區段(linker)連結之單鏈Fv(scFv)(Huston,J.S.et al.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.(1988)85,5879－5883)。具體上，將抗體以酵素，例如Papain(木瓜酵素)、胃蛋白酶(pepsin)處理而生成抗體斷片，或構築編碼此等抗體斷片之基因，將此導入表現載體後，以適當的宿主細胞表現(例如參考Co,M.S.et al.,J.Immunol.(1994)152,2968－2976；Better,M.and Horwitz,A.H.,Methods Enzymol.(1989)178,476－496；Pluckthun,A.and Skerra,A.,Methods Enzymol.(1989)178,497－515；Lamoyi,E.,Methods Enzymol.(1989)121,652－663；Rousseaux,J.et al.,Methods Enzymol.(1986)121,663－669；Bird,R.E.and Walker,B.W.,Trends Biotechnol.(1991)9,132－137)。
作為抗體修飾物，亦可使用與聚乙二醇(PEG)等之各種分子鍵結之抗體。本發明之「抗體」中亦包含此等之抗體修飾物。為得到如此之抗體修飾物，係可施以化學修飾於所得之抗體而得之。此等方法已於此領域確立。
另外，本發明之抗體係使用已知技術，由非來自人類抗體之可變區及來自人類抗體之恆定區所形成之嵌合抗體(chimera antibody)或來自非人類抗體之CDR(互補性決定區，complementary determining region)及來自人類抗體之FR(抗體架構區，framework region)及恆定區所形成之人化抗體。
如上述所得之抗體係可精製至均勻。本發明中所使用之抗體之分離、精製，可使用通常蛋白質所使用之分離、精製之方法。例如適當選擇、組合親和層析法等之層析管柱、過濾器、超濾、鹽析、透析、SDS－聚丙烯醯胺凝膠電泳、等電點電泳法等，可分離、精製抗體(Antibodies：A Laboratory Manual.Ed David Lane,Cold Spring Harbor Laboratory,1988)，但非侷限於此等者。上述所得之抗體之濃度測定，係可由吸光度測定或酵素連結免疫吸附分析法(Enzyme－linked immunosorbent assay；ELISA)等而進行。
作為親和層析法所使用之管柱，可舉例如蛋白質A管柱、蛋白質G管柱，例如作為使用蛋白質A管柱之管柱，可舉例如Hyper D,POROS,Sepharose F.F.(Pharmacia )等。
作為親和層析法以外之層析法，可舉例如離子交換層析法、疏水性層析法、凝膠過濾、逆相層析法、吸附層析法等(Strategies for Protein Purification and Characterization：A Laboratory Course Manual.Ed Daniel R.Marshak et al.,Cold Spring Harbor Laboratory Press,1996)。此等層析法係可使用HPLC、FPLC等之液相層析法而進行。
另外，作為測定本發明之抗體之抗原結合活性之方法，例如可使用吸光度測定、酵素連結免疫吸附分析法(Enzyme－linked immunosorbent assay；ELISA)、EIA(酵素免疫分析法)、RIA(放射免疫分析法)或螢光抗體法。使用ELISA時，於固體化本發明抗體之平板上，添加本發明之多肽，接著加入含目的抗體之試樣，例如產生抗體細胞之培養上澄液或精製抗體。添加辨認以酵素，例如鹼性磷酸酵素(alkaline phosphatase)等標識之抗體之二次抗體，培養平板，接著洗淨後，加入對硝基苯磷酸等之酵素基質，測定吸光度，可評估抗原結合活性。作為多肽之多肽斷片，亦可使用例如該C端所形成之斷片或N端所形成之斷片。本發明之抗體之活性評估係可使用BIAcore(Pharmacia製)。
本發明係提供導入編碼本發明之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA，用以生產所需蛋白質之細胞。此細胞係有效地製造所需蛋白質。
本發明中之所需蛋白質，並無特別的限制，抗體(天然抗體、低分子化抗體、嵌合抗體、人化抗體等)或生理活性蛋白質(顆粒性白血球菌落刺激因子(G－CSF)、顆粒球巨噬細胞群落刺激因子(GM－CSF)、紅血球生成素(Erythropoietin)、干擾素(interferon)、IL－1、IL－6等之白介素(interleukin)、t－PA(組織漿蛋白原活化劑)、尿激酵素(urokinase)、血清白蛋白、血液凝固因子等)等任何蛋白質皆可，但以抗體為宜。
可由單一之載體，同時導入編碼本發明之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA，亦可使用多數之載體，分別導入。
編碼本發明之多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA所導入之細胞，並無特別的限制，任何細胞皆可，但以CHO細胞，尤其CHO dhfr一細胞尤佳。
本發明進一步提供含有本發明多肽之培養基。培養基中之本發明多肽之含量係可由使用培養基、培養細胞及製造所需蛋白質之種類等而適當決定，通常為0.1mg/L至5mg/L，以0.2mg/L至1mg/L為宜，以0.5mg/L尤佳。
含有本發明之多肽之培養基係有效地使用動物細胞，尤其CHO細胞以製造蛋白質。
本發明之培養基係可含有本發明之多肽，亦可添加本發明之多肽，亦可自宿主細胞分泌。
作為本發明所使用培養基之其他成份，通常可適當使用培養細胞(動物細胞為宜)培養基所使用之各成份，此等通常包含胺基酸、維生素類、脂質因子、能量來源、滲透壓調節劑、鐵源、pH緩衝劑。此等成份之含量，通常胺基酸為0.05－1500mg/L，維生素類為0.001－10mg/L，脂質因子為0－200mg/L，能量來源為1－20mg/L，滲透壓調節劑為0.1－10000mg/L，鐵源為0.1－500mg/L，pH緩衝劑為1－10000mg/L，微量金屬元素為0.00001－200mg/L，界面活性劑為0－5000mg/L，增殖輔助因子為0.05－10000μg/L及核苷為0.001－50mg/L之範圍係適當的，但不侷限於此等，可依培養細胞的種類、所需蛋白質之種類等而可適當決定。
除了上述成份以外，亦可添加例如微量金屬元素、界面活性劑、增殖輔助因子、核苷等。
具體上，可舉例如含有左旋丙胺酸、左旋精胺酸、左旋天冬醯胺、左旋天冬胺酸、左旋半胱胺酸、左旋胱胺酸、左旋麩醯胺酸、左旋麩胺酸、甘胺酸、左旋組織胺酸、左旋異白胺酸、左旋白胺酸、左旋賴胺酸、左旋甲硫胺酸、左旋鳥胺酸、左旋苯丙胺酸、左旋脯胺酸、左旋絲胺酸、左旋蘇胺酸、左旋色胺酸、左旋酪胺酸、左旋纈胺酸等，以左旋丙胺酸、左旋精胺酸、左旋天冬醯胺、左旋天冬胺酸、左旋胱胺酸、左旋麩醯胺酸、左旋麩胺酸、甘胺酸、左旋組織胺酸、左旋異白胺酸、左旋白胺酸、左旋賴胺酸、左旋甲硫胺酸、左旋苯丙胺酸、左旋脯胺酸、左旋絲胺酸、左旋蘇胺酸、左旋色胺酸、左旋酪胺酸、左旋纈胺酸等為宜之胺基酸類；異肌醇、生物素、葉酸、核酸、菸鹼醯胺、菸鹼酸、對胺基苯甲酸、泛酸鈣、鹽酸吡哆醇、鹽酸吡哆辛、核黃素、鹽酸硫胺、維生素B1 2
、抗壞血酸等，以生物素、葉酸、核酸、菸鹼醯胺、泛酸鈣、鹽酸吡哆醇、核黃素、鹽酸硫胺、維生素B1 2
、抗壞血酸等為宜之維生素類；氯化膽鹼、酒石酸膽鹼、亞油酸、油酸、膽固醇等，以氯化膽鹼等為宜之脂質因子；葡萄糖、半乳糖、甘露糖、果糖等，以葡萄糖等為宜之能量來源；氯化鈉、氯化鉀、硝酸鉀等，以氯化鈉等為宜之滲透壓調節劑；EDTA(乙烯二胺四乙酸)鐵、檸檬酸鐵、氯化亞鐵、氯化鐵、硫酸亞鐵、硫酸鐵、硝酸鐵等，以氯化鐵、EDTA鐵、檸檬酸鐵等為宜之鐵源類；碳酸氫鈉、氯化鈣、磷酸二氫鈉、HEPES(羥乙基哌嗪乙磺酸)、MOPS(嗎啉丙磺酸)等，以碳酸氫鈉等為宜之pH緩衝劑之培養基。
除了上述成份以外，亦可添加例如硫酸銅、硫酸錳、硫酸鋅、硫酸鎂、氯化鎳、氯化錫、氯化鎂、亞矽酸鈉等，以硫酸銅、硫酸鋅、硫酸鎂等為宜之微量金屬元素；Tween80、Pluronic F－68等之界面活性劑；及基因重組型胰島素、基因重組型IGF－1、基因重組型EGF、基因重組型FGF、基因重組型PDGF、基因重組型TGF－α、鹽酸乙醇胺、亞硒酸鈉、視黃酸(Retinoic Acid)、鹽酸腐胺等，以亞硒酸鈉、鹽酸乙醇胺、基因重組型IGF－1、鹽酸腐胺等為宜之增殖輔助因子；去氧腺苷、去氧胞苷、去氧鳥苷、腺嘌呤核苷、胞嘧啶、鳥糞嘌呤核苷、尿嘧啶等之核苷。另外，於上述本發明之適合例，亦可含有鏈黴素、青黴素G鉀及慶大黴素等之抗生素或酚紅之pH指示劑。
另外，培養基中亦可添加魚肉萃取物或魚肉之酵素分解物。
培養基之pH因培養細胞而異，但一般為pH6.8至7.6，大多情況係以pH7.0至7.4為適當的。
培養基係可由市售動物細胞培養用培養基，例如D－MEM(Dulbecco's Modified Eagle Media)、D－MEM/F－12 1：1混合物(Dulbecco's Modified Eagle Media：Nutrient Mixture F－12)、RPMI(Rosewell Park Memorial Institute)1640、CHO－S－SFM Ⅱ(Invitrogen社)、CHO－SF(Sigma－Aldrich社)、EX－CELL301(JRH biosciences社)、CD－CHO(Invitrogen社)、IS CHO－V(Irvine Scientific社)、PF－ACF－CHO(Sigma－Aldrich社)等之培養基調製。
另外，本發明之培養基係無血清培養基，或除了本發明之多肽以外，以未含來自哺乳動物成份之培養基為宜。
本發明係提供包含使用含有本發明之多肽之培養基，培養CHO細胞之製造所需蛋白質之方法。
本發明進一步提供由培養導入編碼本發明之多肽之DNA，編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞，製造所需蛋白質之方法。
培養CHO細胞，雖可使用該業者已知之方法進行。例如通常氣相之CO2
濃度為0至40%，以2至10%之環境下為宜，30至39℃，以37℃程度為宜，培養1至14天。
另外，作為動物細胞培養用之各種培養裝置，可使用例如發酵槽式桶培養裝置、進氣式培養裝置、培養瓶式培養裝置、攪拌瓶式培養裝置、微粒基質式培養裝置、流動層式培養裝置、全纖維(Holofiber)式培養裝置、旋轉瓶(roller bottle)式培養裝置、充填槽式培養裝置等培養。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之製作方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼IGF－1之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之製作方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼IGF－1之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之製作方法：(a)同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
上述之方法中，同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA於CHO細胞時，可由各載體，同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA，或亦可由單一之載體，同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA。以使用單一之載體同時導入為宜。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之製作方法：(a)導入編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之製作方法：(a)導入編碼IGF－1之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟，(c)自(b)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
亦即導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼IGF－1之DNA於CHO細胞時，此等可依任一種順序導入，但就容易控制所需蛋白質之表現量之觀點上，同時導入編碼IGF－1之DNA及編碼所需蛋白質之DNA，或導入編碼所需蛋白質之DNA後，再導入編碼IGF－1之DNA為宜。
本發明進一步提供包含下述步驟之用於製造所需蛋白質之細胞之篩選方法：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼IGF－1之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟，(d)自(c)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質及第1項之多肽之細胞之步驟。
於用於製造本發明所需蛋白質之細胞之製作方法或用於製造本發明所需蛋白質之細胞之篩選方法，所使用之編碼IGF－1之基因，並無特別的限制，來自人類、小鼠、大鼠、倉鼠等任一種動物之IGF－1皆可，以倉鼠IGF－1為宜。另外，倉鼠IGF－1以外之IGF－1序列係記載於Nucleic Acids Res.14(20),7873－7882(1986)及J.Biol.Chem.262(16),7894－7900(1987)。
本發明者等係確認如後述實施例所示，確立用以產生抗體之細胞，導入編碼本發明之多肽之DNA，由表現活性型IGF－1，確立於IGF－1無添加培養，具有理想的培養行為之抗體產生用細胞。導入本發明之多肽之抗體產生用細胞係增殖能力、生存率優異，而且對於抗體產生量，亦顯示極為優異的效果。本發明係可應用於所有所需蛋白質之產生細胞，尤其抗體產生細胞，產業上之利用價值極大。
由實施例更詳細地說明本發明，但本發明並不侷限於此等。該業者可作各種變更、修飾，本發明亦包含此等變更、修飾。
自導入抗白介素6受體(IL－6R)抗體基因於CHO－DXB11細胞之抗IL－6R之抗體產生細胞(特開平8－99902號公報，參考例2)，進行總RNA萃取。自所得之mRNA合成cDNA。
具體上係以下述方法進行。將經過繼代72小時之細胞增殖期之約5×106
個之CHO細胞，於4℃，以1,000rpm，離心5分鐘，得到於不含培養液的離心管底部，得到填塞狀態後，加入4ml之預先加熱成65℃之Sepasol RNA I，抽排(pipetting)以快速溶解，於室溫放置5分鐘。進一步再加入0.8ml之氯仿，以Voltex充份攪拌後，於室溫放置3分鐘。由冷卻離心機AvantiT M
J25(BECKMAN製)，於4℃，以7,000rpm，離心5分鐘後，小心地採取上層，移至新的15ml膠筒。加入4ml之2－丙醇，以Voltex充份攪拌後，於室溫放置10分鐘。於4℃，以7,000rpm，離心10分鐘後，完全地除去上澄液，得到RNA粒。以4ml之75%乙醇充份地沖洗離心管壁面，於4℃，以7,000rpm，離心5分鐘。完全除去上澄液後，再加入4ml之100%乙醇沖洗。於4℃，以7,000rpm，離心5分鐘，得到RNA粒後，於室溫放置30分鐘。空氣乾燥後之RNA粒，加入100μl之DEPC(雙乙基焦碳酸，diethylpyrocarbonate)－水，由抽排而完全溶解。進而，依據RNeasy Mini Kit之協定，精製總RNA。所得30μl之總RNA之濃度測定係使用分光光度計DU640進行，以波長為260nm之吸光度10D＝40μg/ml，算出RNA濃度。使用5μg之高純度總RNA於cDNA合成。以DEPC－水，調整5μg之高純度總RNA成10μl後，由抽排加入1μl之HPLC級100pmol/μlT7－(T)2 4
引子，完全混合後沉降(spindown)。為使引子緩冷配對(anneal)，以70℃加熱10分鐘後，快速地沉降，置於冰上。於冰上經過2分鐘以上後，由抽排加入4μl之5×First－strand buffer(第一股緩衝溶液)、2μl之0.1M之DTT(二硫蘇糖醇，dithiothreitol)、1μl之10mM之dNTP Mix(核甘酸組)，以4℃沉降，置於冰上。於42℃之加熱器(heat block)開始培養，經過2分鐘時，由抽排加入2μl之SuperScriptⅡ Reverse Transcriptase Mix(反轉錄酶組)，開始第一股(First－strand)合成反應。經過60分鐘後，快速地沉降，置於冰上。接著為進行第二股(Second－strand)合成反應，由抽排依序加入91μl之DEPC－水、30μl之5×Second－strand buffer(第二股緩衝溶液)、3μl之10mM之dNTP Mix、1μl之大腸桿菌DNA連接酶(E.coli DNA ligase)、4μl之大腸桿菌DNA聚合酶(E.coli DNA polymerase)、1μl之大腸桿菌核糖核酸酶H(E.coli RNase H)，以4℃沉降，置於冰上。於16℃培養120分間，進行第二股合成。2個小時後，加入2μl之T4 DNA聚合酶，再培養5分鐘後，快速沉降，置於冰上。加入152μl之25：24：1之苯酚：氯仿：異戊醇，30秒旋流(vortex)後沉降，再由抽排混合，加入預先離心1分鐘而充填凝膠之相固定凝膠筒(Phase Lock Gel－(PLG)Tube)。以4℃，15,000rpm離心2分鐘後，將水層移至新的1.5ml之微量離心管(eppendorf tubes)，依序加入0.5μl之pellet paint、76μl之7.5M醋酸銨溶液，充份地旋流。加入600μl之99.5%乙醇，旋流30秒後，於室溫放置5分鐘。以4℃，15,000rpm離心10分鐘後，得到除去未反應dNTP之cDNA沈澱。加入500μl之75%乙醇於cDNA，以4℃，15,000rpm離心3分鐘。重覆洗淨2次以脫鹽，再加入100μl之99.5%乙醇，以4℃，15,000rpm離心5分鐘後，完全除去乙醇。約5分鐘之空氣乾燥後，溶解於1.5μl之RNase free Water(無核糖核酸酶水)，作為cDNA，於－20℃保存。使用50分之1量作為PCR之模板。
倉鼠IGF－1基因係由PCR複製而得之。PCR引子之設計係使用已知大鼠/小鼠/人類IGF－1間保存基因之區域而進行。
具體上係依下述方法進行。使用編碼成熟型大鼠IGF－1之N端第13個之Ala至第19號之Gly之基因序列：5’－gctcttcagttcgtgtgtgg(序列號碼3)為前置引子(forward primer)，編碼自N端第50個之Arg至第56個之Arg之基因之互補股序列：5’－ctcctcagatcacagctccg(序列號碼4)為反置引子(reverse primer)，以上述cDNA為模板，進行PCR反應。於95℃，5分鐘之前處理後，98℃，5秒鐘之變性(denature)，53℃，30秒鐘之緩冷配對反應(annealing)，72℃，30秒鐘之延長反應(extension)，重複35次，增幅目的基因後，加上72℃，10分鐘之延長反應，而得131bp之倉鼠IGF－1PCR片段。
調查所得之PCR片段之鹼基序列，確認增幅倉鼠IGF－1之DNA，使用該序列訊息，再繼續PCR反應。使用編碼N端第29個之Thr至第35號之Ile之基因序列：5’－acaggctatggctccagcatt(序列號碼5)為前置引子(forward primer)，編碼自N端第85個之Gln至第77個之Arg之基因之互補股序列：tgagtcttgggcatgtcagtg(序列號碼6)為反置引子(reverse primer)，以上述cDNA為模板，進行PCR反應。於95℃，5分鐘之前處理後，98℃，5秒鐘之變性，53℃，40秒鐘之緩冷配對反應，72℃，90秒鐘之延長反應，重複35次，增幅目的基因後，加上72℃，10分鐘之延長反應，而得170bp之倉鼠IGF－1PCR片段。以上結果係得到成熟型倉鼠IGF－1之N端第13個Ala至C端之第70個Ala之鹼基序列。
進－步為得到N端序列，自相當於成熟型倉鼠IGF－1之N端5’之鹼基之g，再使用含5’側負端第33個鹼基之t至第14號之g之序列：5’－tgcttgctcacctttaccag(序列號碼7)為前置引子，編碼自N端第50個之Arg至第56個之Arg之基因之互補股序列：5’－ctcctcagatcacagctccg(序列號碼8)為反置引子(reverse primer)，以上述cDNA為模板，進行PCR反應。於95℃，5分鐘之前處理後，95℃，30秒鐘之變性，44℃，60秒鐘之緩冷配對反應，72℃，90秒鐘之延長反應，重複35次，增幅目的基因後，加上72℃，10分鐘之延長反應，而得含有185bp之倉鼠IGF－1之N端區域之片段。
複製基因係於DNA測序儀(DNA sequencer)決定鹼基序列，進一步由此決定胺基酸序列，確認編碼倉鼠IGF－1。所得之胺基酸序列如圖1及序列號碼1所示，DNA序列如序列號碼2所示。
成熟分泌型IGF－1係不論種類，由70個胺基酸所形成，但倉鼠IGF－1具有特異的序列，與人類IGF－1的比較，第20個之P(人：D)，第35個之I(人：S)，第67個之T(人：A)之3個胺基酸與人的序列相異(圖2)。
分泌型倉鼠IGF－1基因係具有自N端第3個之帶有負電荷之E(麩胺酸)。改變此部位之胺基酸，移位成正電荷側之胺基酸，製作改變型倉鼠IGF－1基因。導入突變於IGF－1基因係由Site－directed Mutagenesise進行。
天然型倉鼠IGF－1基因及所得之改變型倉鼠IGF－1基因，分別稱為E3E(天然型)、E3K(改變第3個麩胺酸成賴胺酸)、E3S(改變第3個麩胺酸成絲胺酸)(參考圖3)。
構築表現改變型倉鼠IGF－1基因之質體(圖4)，導入親株之抗IL－6R抗體產生CHO細胞，由效高黴素(Hygromycin)選擇藥劑耐性株，得到穩定性表現之細胞株。所得之細胞株，進一步由限數稀釋法(limiting dilution)，進行單細胞選殖，得到於IGF－1無添加之無血清培養基，增殖能力高之選殖細胞。
自具有分別相異電荷之E3E、E3K、E3S所得之選殖細胞中，選擇ME45(E3E)、MK44(E3K)、MS19(E3S)，於IGF－1無添加之無血清培養基，比較於100ml之攪拌瓶反應器(spinner flask)之細胞增殖能力及生存率。關於親株之抗IL－6R抗體產生細胞，比較自JRH社購入之人類IGF－1(LongT M
R3
IGF－1)添加培養基及無添加培養基培養。於S100攪拌瓶反應器中，加入100ml之MRA繼代用無血清培基，於37℃之CO2
培養器內，調節1個小時後，各加入3×106
個細胞離心。分取1mL之培養液，測定最初細胞數及生存率。第3天之後，至第7天之細胞數及生存率係定時地分取各1mL測定。
所得之結果係如圖5(增殖能力)及圖6(生存率)所示。判定MS19(E3S)係增殖能力、生存率最為優異。MS19(E3S)係即使於培養第7天，仍顯示80%以上之生存率。接著，MK44(E3K)顯示良好的結果。另外，親株之抗IL－6R抗體產生細胞，於IGF－1無添加培養，則不能增殖。MS19之增殖能力，自培第3天至第6天間明顯，尤其由第4天至第5天之細菌生長的加倍時間(doubling time)(MS19；26.5hr，MK44；33.0hr，ME45；47.0hr，抗IL－6R親株；86.7hr)及最高到達細胞數(MS19；25.8×105
cells/ml，MK44；20.3×105
cells/ml，ME45；7.98×105
cells/ml，抗IL－6R親株；21.7×105
cells/ml)，顯示MS19之優越性。細胞開始增殖係緩慢的，之後至培養後期，立即快速成長之MS19之培養行為，作為抗體產生用細胞係理想的。另外，於生存率比較上，培養第7天係明顯(MS19；86.2%，MK44；66.4%，ME45；58.1%，抗IL－6R親株；76.0%)，MS19至培養後期係最為安定的細胞。
為顯示倉鼠IGF－1具有人類IGF－1以上之抗體產生量潛在力，導入倉鼠IGF－1(E3S)及人類IGF－1(E3S)於親株之細胞中，比較培養行為最佳之單選殖株(single clone)之抗IL－6R抗體產生量。人類IGF－1(E3S)表現質體係以倉鼠IGF－1(E3S)為模板，依序進行突變導入，用以轉換P20D、I35S、T67A而構築。與實施例1同樣地導入親株抗IL6－R抗體產生CHO細胞，選擇效高黴素(Hygromycin)耐性細胞後，選出安定地表現IGF－1(E3S)，於IHF－1無添加培養基中獲得增殖能力之細胞株。限數稀釋細胞株而得到單選殖株，再使用增殖優異之導入IGF－1(E3S)細胞，進行Fed－Batch培養，比較抗體產生量。
所得之結果如圖7所示。導入倉鼠IGF－1(E3S)細胞之抗體產生量係於培養第8天為973mg/L，比親株(843 mg/L)、導入人類IGF－1細胞(E3S)(mg/L)更優越。即使對於親株為最適合之培養方法，仍確認導入倉鼠細胞之抗體產生量仍為最高。
因為實施例4顯示倉鼠IGF－1具有超過人類IGF－1以上之抗體產生量潛在力，所以進一步再比較包括倉鼠IGF－1之3種IGF－1之抗體產生量潛在力。倉鼠IGF－1(E3S)表現質體係以倉鼠IGF－1(E3S)為模板，導入用以轉換S69之突變而構築。因為此次除了突變體IGF－1(E3S)以外，亦合併天然型IGF－1(E3S)之3種間進行比較，倉鼠、人、小鼠係以IGF－1(E3S)為模板，導入突變於E3E，分別構築天然型IGF－1(E3S)表現質體。
所得之6種IGF－1(E3S)表現質體係以電洞法，導入同時調製之親株，選擇效高黴素(Hygromycin)耐性細胞後，選出安定地表現IGF－1(E3S)，於IHF－1無添加培養基中獲得增殖能力之細胞株中，選出增殖能力佳之細胞各3株(n＝3)。擴大過程中，因為人類IGF－1(E3S)之1株增殖不良，所以僅人類IGF－1(E3S)以n＝2繼續實驗，合計17細胞株，以100ml之攪拌瓶反應器擴大培養後，由Fed－Batch培養，而進行抗體產生量比較。
圖8係表示導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3S)之細胞於Fed－Batch培養中之抗體產生量。增殖能力佳之各種3株(n＝3)之平均產生量係倉鼠>小鼠>人類之優異順序。圖9係導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3S)之細胞的3株中，具有首位抗體產生量之株之比較。加上平均產生量，首位株之產生量中，倉鼠IGF－1(E3S)導入株係優異的。圖10係表示導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3E)之細胞於Fed－Batch培養中之抗體產生量。增殖佳之各種平均產生量係即使於天然型IGF－1(E3E)導入株，仍為倉鼠>小鼠>人類之優異順序。
[圖1]係表示本發明之來自CHO細胞之倉鼠IGF－1基因之鹼基序列及胺基酸序列圖。
[圖2]係本發明之來自CHO細胞之倉鼠IGF－1與人類IGF－1間之胺基酸比較圖。
[圖3]係表示將倉鼠IGF－1之70個胺基酸之自N端第3個，具有負電荷之E，改變成R、K及S，將電荷移位至正側之活性型倉鼠IGF－1圖。(＋)係表示具有正電荷之胺基酸，(－)係表示具有負電荷之胺基酸，(±)表示不具有電荷之胺基酸。
[圖4]表示用以表現導入突變之倉鼠IGF－1之質體圖。
[圖5]表示影響天然型及改變型倉鼠IGF－1之增殖能力之效果圖。
[圖6]表示影響天然型及改變型倉鼠IGF－1之生存能力之效果圖。
[圖7]表示導入倉鼠及人類之IGF－1(E3S)之抗IL6R抗體產生細胞於Fed－Batch培養中之抗體產生量比較圖。
[圖8]表示導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3S)之抗IL6R抗體產生細胞於Fed－Batch培養中之抗體產生量圖。
[圖9]表示導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3S)之抗IL6R抗體產生細胞之3株中，產生量最高之首位株之抗體產生量比較圖。
[圖10]表示導入倉鼠、小鼠及人類之IGF－1(E3E)之抗IL6R抗體產生細胞於Fed－Batch培養中之抗體產生量圖。
<110> 中外製藥株式會社
<120> 使用倉鼠IGF-1之蛋白質製造方法
<130> 050252
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<213> 倉鼠
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<400> 8
Claims (25)
- 一種多肽，其特徵為選自具有於序列號碼1所記載之胺基酸序列中，第3個胺基酸為絲胺酸或賴胺酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF-1)活性之多肽所成群。
- 如申請專利範圍第1項之多肽，其中第3個胺基酸為絲胺酸(serine)所取代。
- 如申請專利範圍第1項之多肽，其中第3個胺基酸為賴胺酸(lysine)所取代。
- 一種DNA，其特徵為編碼如申請專利範圍第1項之多肽。
- 一種載體，其特徵為含有如申請專利範圍第4項之DNA。
- 一種宿主細胞，其特徵為含有如申請專利範圍第5項之載體。
- 如申請專利範圍第6項之宿主細胞，其為CHO(Chinese Hamster Ovary，中國倉鼠卵巢)細胞。
- 一種製造如申請專利範圍第1項之多肽之方法，其特徵為，使用如申請專利範圍第6項或第7項之宿主細胞。
- 一種細胞，其特徵為用以生產所需蛋白質，導入編碼(1)具有序列號碼1所記載之胺基酸序列之多肽，及(2)具有於序列號碼1所記載之胺基酸序列中，第3 個胺基酸為絲胺酸或賴胺酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF-1)活性之多肽所成群多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA。
- 如申請專利範圍第9項之細胞，其由單一之載體，同時導入編碼(1)具有序列號碼1所記載之胺基酸序列之多肽，及(2)具有於序列號碼1所記載之胺基酸序列中，第3個胺基酸為絲胺酸或賴胺酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF-1)活性之多肽所成群多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA。
- 如申請專利範圍第9項之細胞，其由多數之載體，分別導入編碼(1)具有序列號碼1所記載之胺基酸序列之多肽，及(2)具有於序列號碼1所記載之胺基酸序列中，第3個胺基酸為絲胺酸或賴胺酸所取代之胺基酸序列，而且具有類胰島素成長因子1(IGF-1)活性之多肽所成群多肽之DNA，及編碼所需蛋白質之DNA。
- 如申請專利範圍第9項至第11項中任一項之細胞，其為CHO細胞。
- 一種所需蛋白質之製造方法，其特徵為包含培養如申請專利範圍第9項至第12項中任一項之細胞。
- 一種培養基，其特徵為含有如申請專利範圍第1項之多肽。
- 如申請專利範圍第14項之培養基，其中由添加 如申請專利範圍第1項之多肽於培養基而含於培養基。
- 如申請專利範圍第14項之培養基，其中如申請專利範圍第1項之多肽係由宿主細胞分泌而含於培養基。
- 如申請專利範圍第14項至第16項中任一項之培養基，其中培養基係無血清培養基，或除了如申請專利範圍第1項之多肽以外，未含來自哺乳動物成份之培養基。
- 一種所需蛋白質之製造方法，其特徵為包含使用如申請專利範圍第14項至第17項中任一項之培養基，培養CHO細胞。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法，其特徵為，包含下述步驟：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法，其特徵為，包含下述步驟：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法，其 特徵為，包含下述步驟：(a)同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
- 如申請專利範圍第21項之方法，其中使用含有編碼所需蛋白質之DNA及編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA之單一載體，同時導入編碼所需蛋白質之DNA及編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於CHO細胞。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法，其特徵為，包含下述步驟：(a)導入編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之製造方法，其特徵為，包含下述步驟：(a)導入編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於CHO細胞之步驟，(b)導入編碼所需蛋白質之DNA於(a)所製作之細胞之步驟，(c)自(b)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟。
- 一種用於製造所需蛋白質之細胞之篩選方法，其特徵為，包含下述步驟：(a)導入編碼所需蛋白質之DNA於CHO細胞之步驟，(b)自(a)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質之細胞之步驟，(c)導入編碼如申請專利範圍第1項之多肽之DNA於(b)所選擇之細胞之步驟，(d)自(c)所製作的細胞，選擇表現所需蛋白質及如申請專利範圍第1項之多肽之細胞之步驟。
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