SU454736A3 - The method of producing peptides - Google Patents
The method of producing peptidesInfo
- Publication number
- SU454736A3 SU454736A3 SU1700240A SU1700240A SU454736A3 SU 454736 A3 SU454736 A3 SU 454736A3 SU 1700240 A SU1700240 A SU 1700240A SU 1700240 A SU1700240 A SU 1700240A SU 454736 A3 SU454736 A3 SU 454736A3
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- valyl
- peg
- glycyl
- residue
- amino acid
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
- C07K1/04—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers
- C07K1/042—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers characterised by the nature of the carrier
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K5/00—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
- C07K5/04—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
- C07K5/10—Tetrapeptides
- C07K5/1002—Tetrapeptides with the first amino acid being neutral
- C07K5/1005—Tetrapeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
Description
1one
Изобретение относитс к получению пептидов на иолимерных носител х в гомогенной фазе.The invention relates to the preparation of peptides on iolimer carriers in a homogeneous phase.
Известный способ получени пептидов на полимерном носителе в органическом растворителе состоит в том, что N-защищенную аминокислоту в виде соли конденсируют при нагревании в органическом растворителе с хлорметилированным полистиролом. N-защиту удал ют известными методами и необходимую аминокислотную последовательность создают конденсацией полимер - аминокислоты с соответствуюш ,ими М-запдищенными аминокислотами в растворе. Иосле каждой стадии полимер - пептид отдел ют от низкомолекул рных веществ осаждением. После постройки аминокислотной последовательности пептид отдел ют от полимера. Применение известного способа св зано с некоторыми трудност ми. Вопервых , присоединение первой аминокислоты к полимеру требует относительно жестких условий реакции (нагревание в присутствии триэтиламина ). Во-вторых, осаждение полимерпептида после каждой стадии происходит не полностью, вызывает его фракционирование иA known method of producing peptides on a polymeric carrier in an organic solvent is that the N-protected amino acid as a salt is condensed by heating in an organic solvent with chloromethylated polystyrene. N-protection is removed by known methods and the necessary amino acid sequence is created by condensation of a polymer — amino acids with the corresponding, M-zodischennyh amino acids in solution. At each stage, the polymer - peptide is separated from the low molecular weight substances by precipitation. After the amino acid sequence has been built, the peptide is separated from the polymer. The application of the known method is associated with some difficulties. First, the attachment of the first amino acid to the polymer requires relatively harsh reaction conditions (heated in the presence of triethylamine). Secondly, the polymerpeptide is not completely precipitated after each stage, it is fractionated and
увлечение в осадок низкомолекул рных примесей . Это ириводит к потер м целевого пептида и его загр знению.sediment entrainment of low molecular weight impurities. This leads to losses of the target peptide and its contamination.
Предлагаемый способ получени позвол етThe proposed method of obtaining allows
избежать указанных трудностей. N-защищенпую С-концевую аминокислоту создаваемого пептида св зывают в м гких услови х в растворе сложноэфирной св зью с гидроксилсодержащим полимером - носителем с мол. в.avoid these difficulties. The N-protected C-terminal amino acid of the created peptide is bound under mild conditions in solution by an ester bond to a hydroxyl-containing carrier polymer with a mol. at.
10000-100000. В качестве полимера - носител могут быть исиользованы полиэтиленгликоли , их сложные эфиры с лимонной кислотой, сополимеры полиэтиленгликол с нтарной кислотой и т. д. Образование сложной10,000-100,000. Polyethylene glycols, their esters with citric acid, copolymers of polyethylene glycol with succinic acid, etc. can be used as a carrier polymer.
эфирной св зи можно проводить, например , с помощью дициклогексилкарбодиимида . Можно также предварительно вводить С-концевую аминокислоту в мономер, а затем получать полимер-носитель с присоединеннойthe ether bond can be carried out, for example, with dicyclohexylcarbodiimide. You can also pre-enter the C-terminal amino acid in the monomer, and then to obtain a polymer carrier with attached
аминокислотой. N-защиту с полимер - аминокислоты удал ют, например, ацидолизом или гидрированием. Полимер отдел ют от низкомолекул рных веществ диализом, ультрафильтрацией , колоночной хроматографией или противоточным распреде пением, а не осаждением , как в известном способе. Дальнейшее ступенчатое наращивание пептидной цепи ведут как обычно, примен дл образовани амидной св зи дициклогексилкарбодиимид, алкилхлорформиат , азиды пли активированные эфиры N-защищенных аминокислот. Реакцию провод т в растворе в органических растворител х . Дл водорастворимых полимеров-носителей возможно образование амидной св зи в водной среде. В этом случае как конденсирующее средство иримен ют водорастворимый карбодиимид . После каледой стадии конденсации N-защиту отщепл ют подход щим способом и полимер отдел ют от иизкомолекул рных веществ . Разрушение св зи готового пептида с полимером-носителем провод т известными методами, наиример щелочным гидролизом или аммонолизом. Пептид отдел ют от полимера одним из указанных методов.amino acid. N-protection with polymer-amino acids is removed, for example, by acidolysis or hydrogenation. The polymer is separated from the low molecular weight substances by dialysis, ultrafiltration, column chromatography or countercurrent distribution, rather than precipitation, as in the known process. Further stepwise extension of the peptide chain is carried out as usual, using dicyclohexylcarbodiimide, alkyl chloroformate, azides or activated esters of N-protected amino acids to form the amide bond. The reaction is carried out in solution in organic solvents. For water-soluble carrier polymers, the formation of an amide bond in an aqueous medium is possible. In this case, water-soluble carbodiimide is used as a condensing agent. After the capping step of condensation, the N-protection is cleaved in a suitable way and the polymer is separated from the isomolecular substances. Destruction of the bond between the prepared peptide and the carrier polymer is carried out using known methods, such as alkaline hydrolysis or ammonolysis. The peptide is separated from the polymer by one of the methods indicated.
Пример 1. Этерификаци БОК -валил-ОН с ПЭТ (мол. в. 20000).Example 1. Esterification of BOC -valyl-OH with PET (mol. Century 20,000).
20 г ПЭГ 4,34 г БОК-валил-ОН и 4,12 г ДЦК раствор ют в 200 мл CH2CI2 и перемешивают при комнатной температуре без доступа влаги в течение 5,5 суток. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавл ют 100 мл 4 н. НС1/диоксана, перемешивают при комнатной температуре в течение 30 мин и выпаривают досуха в вакууме. Остаток раствор ют иримерно в 1 л воды. Образующийс при этом осадок выдел ют при помощи фильтровального вспомогательного вещества . Фильтрат довод т до рН 6 при помощи NaOn или триэтиламина и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 пока в фильтрате можно обнаружить свободный валин . Фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток высушивают смесью бензола с абсолютным этанолом (80/20)до посто нного веса. Выход Н-валил-ПЭГ 19,35г. Содержание аминокислоты 80%, или 0,08 ммоль/г (аминокислотный анализ).20 g of PEG, 4.34 g of BOC-valyl-OH and 4.12 g of DCC are dissolved in 200 ml of CH2CI2 and stirred at room temperature without moisture for 5.5 days. The reaction mixture is evaporated in vacuo to dryness, 100 ml 4 n is added. HCl / dioxane, stirred at room temperature for 30 minutes and evaporated to dryness in vacuo. The residue is dissolved irimerically in 1 liter of water. The precipitate which forms therewith is separated by filter aid. The filtrate is adjusted to pH 6 with NaOn or triethylamine and ultrafiltered through a Diaflo UM 10 ultrafilter while free valine can be detected in the filtrate. The filtrate is evaporated in vacuo to dryness, the residue is dried with a mixture of benzene and absolute ethanol (80/20) to constant weight. Exit H-valyl-PEG 19.35g. The amino acid content is 80%, or 0.08 mmol / g (amino acid analysis).
Б. Синтез пептида. 5 г Н-валпл-ПЭГ раствор ют в 50 мл СН2С12 и прибавл ют 0,1 мл триэтиламина. После прибавлени 0,44 г БОКглицил-ОН (2,5 ммол ) и 0,515 г ДЦК (2,5 ммол ) перемешивают 2 часа при комнатной температуре, выпаривают досуха в вакууме , в течение 30 мин обрабатывают при комнатной температуре 40 мл 4 н. ПС1/диоксана и снова выпаривают досуха в вакууме. Масл нистый остаток раствор ют в 500-700 мл воды , осадок отдел ют, фильтрат довод т до рН 6 при помощи NaOH или триэтиламина п подвергают ультрафильтрацпп через Диафло ультрафильтр УМ 2. Фильтрат обрабатывают. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 4,85 г.B. Synthesis of peptide. 5 g of H-valpl-PEG is dissolved in 50 ml of CH2Cl2 and 0.1 ml of triethylamine is added. After adding 0.44 g of BOCglycyl-OH (2.5 mmol) and 0.515 g of DCC (2.5 mmol), the mixture is stirred at room temperature for 2 hours, evaporated to dryness in vacuum, and 40 ml of 4N is treated at room temperature for 30 minutes. PS1 / dioxane and again evaporated to dryness in vacuo. The oily residue is dissolved in 500-700 ml of water, the precipitate is separated, the filtrate is adjusted to pH 6 with NaOH or triethylamine and ultrafiltrant is applied through a Diaflo ultrafilter UM 2. The filtrate is treated. The output of N-glycyl-valyl-PEG 4.85 g
Указанным образом к Н-глицил-валпл-ПЭГ прибавл ют триэтилампн и привод т в реакцию с 2,5 мм БОК-аланил-ОН и 2,5 ммольIn this way, triethylampn is added to H-glycyl-Valpl-PEG and reacted with 2.5 mm BOC-alanyl-OH and 2.5 mmol
БОК - трет-бутоксикарбонил BOC - tert-butoxycarbonyl
ПЭГ - полиэтргленгликольPEG - polyether glycol glycol
ДЦК - дициклогексилкарбодиимидDCC - dicyclohexylcarbodiimide
464736464736
ДЦК. После отщеплени защитной группы и ультрафильтрации получают 4,75 г П-аланилглицил-валил-ПЭГ . Соответствующим взаимодействием П-аланил-глицил-валил-ПЭГ с БОК-лейцил-ОП и ДЦК иолучают Н-лейцилаланил-глицил-валил-ПЭГ (4,5 г). Аминокислотный анализ гидролизованной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцпл 1,08: 1,00:0,90: 1,04.DCC. After cleavage of the protecting group and ultrafiltration, 4.75 g of P-alanylglycyl-valyl-PEG are obtained. The corresponding interaction of P-alanyl-glycyl-valyl-PEG with BOC-leucyl-OP and DCC gives H-leucylalanyl-glycyl-valyl-PEG (4.5 g). Amino acid analysis of the hydrolyzed sample of this substance shows the following ratio of amino acids: valyl: glycyl: alanyl: leucpl 1.08: 1.00: 0.90: 1.04.
В. Отщепление тетрапеитида от носител . Раствор 4,0 г Ц-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ в 75 м воды и 1,5 мл 1 н. КОН перемешивают в течение 2 час при комнатной температуре , точно нейтрализуют 1,5 мл 1 н. ЦС1 и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ iO до тех пор, пока не будет собрано 3,5 л фильтрата. Он дает после выпаривани в вакууме 280 мг сырого продукта, который частично освобождают от NaCl дигерированием абсолютным метанолом. Метанольный раствор обеспечивают углем, фильтруют и выпаривают досуха. Остаток раствор ют в воде и лиофилизуют . Получают 191,5 мг сырого тетрапептида , аминокислотный анализ которого показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,03 : : 1,00:0,85: 1,07. Дол пептида в сыром веи;естве составл ет 35% (аминокислотный анализ ), т. е. рассчитанный на первую аминокислоту (валин) общий выход составл ет 45%. Вещество идентично заведомому образцу, полученному по методу Меррифилда. Пример 2.B. Cleavage of tetrapitide from the carrier. A solution of 4.0 g of C-leucyl-alanyl-glycyl-valylPEG in 75 m of water and 1.5 ml of 1N. KOH is stirred for 2 hours at room temperature, exactly neutralized with 1.5 ml of 1N. ЦС1 and ultrafiltered through Diaflo UO iO ultrafilter until 3.5 liters of filtrate have been collected. After evaporation in vacuo, it gives 280 mg of the crude product, which is partially freed from NaCl by digestion with absolute methanol. The methanol solution is provided with charcoal, filtered and evaporated to dryness. The residue is dissolved in water and lyophilized. 191.5 mg of crude tetrapeptide are obtained, the amino acid analysis of which shows the following ratio of amino acids: valyl: glycyl: alanyl: leucyl 1.03:: 1.00: 0.85: 1.07. The share of peptide in crude form is 35% (amino acid analysis), i.e., calculated for the first amino acid (valine), the total yield is 45%. The substance is identical to the known pattern obtained by the method of Merrifield. Example 2
А. К 4,34 г БОК-валил-ОП и 2,8 мл триэтиламина в 80 мл СН2С12 прикапывают при перемешивании при -5°С 1,91 мл этилового эфира хлоругольной кислоты в 20 мл СНзС, через 30 мин при -5°С прибавл ют охлажденный (-5°С) раствор 20 г ПЭГ (мол. в. 20 000) и 2,4 г (20 ммоль) диметиламинопиридина в 100 мл СН2С12. Реакционную смесь перемешивают в течение часа при -5°С и 65 час при комнатной температуре. Дл блокировкиA. To 4.34 g of BOC-valyl-OP and 2.8 ml of triethylamine in 80 ml of CH2Cl2 are added dropwise with stirring at -5 ° C 1.91 ml of ethyl chlorogolic acid ester in 20 ml of CH3C, after 30 min at -5 ° A cooled (-5 ° C) solution of 20 g of PEG (mol. C. 20,000) and 2.4 g (20 mmol) of dimethylaminopyridine in 100 ml of CH2Cl2 are added. The reaction mixture is stirred at -5 ° C for one hour and at room temperature for 65 hours. To lock
не прореагировавших гидроксильных групп перемешивают реакционную смесь 4 часа с 10 ммол ми уксусного ангидрида и 10 ммоль триэтиламина при комнатной температуре и выпаривают в вакууме досуха. Остаток обрабатывают 30 мин при комнатной температуре 100 мл 4 н. HCl в диоксане, выпаривают досуха в вакууме и раствор ют примерно в 1 л воды. После фильтрации и установки рП ультрафильтруют и обрабатывают как описаноunreacted hydroxyl groups, stir the reaction mixture for 4 hours with 10 mmol of acetic anhydride and 10 mmol of triethylamine at room temperature and evaporate it in vacuo to dryness. The residue is treated for 30 min at room temperature with 100 ml 4 n. HCl in dioxane, evaporated to dryness in vacuo and dissolved in about 1 liter of water. After filtration and installation, RP will be filtered and processed as described.
выше. Выход 19 г П-валил-ПЭГ. Содержание аминокислоты 607о, или 0,06 ммоль/г (аминокислотный анализ).above. Yield 19 g P-valyl-PEG. The amino acid content is 607о, or 0.06 mmol / g (amino acid analysis).
Б. Псход из 12,7 г П-валил-ПЭГ, синтезируют описанный в примере 1Б тетрапептидB. Purification of 12.7 g of P-valyl-PEG, synthesize the tetrapeptide described in Example 1B.
тем же образом. Реагенты: 1 ммоль триэтиламина , 4,0 ммол БОК-аминокислоты, 4,0 ммол ДЦК. Получают 11,5 г П-лейцил-аланилглицил-валил-ПЭГ со следующим соотношением аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцпл 0,88: 0,86: 1,11 : 1,00.in the same way. Reagents: 1 mmol of triethylamine, 4.0 mmol of BOC-amino acids, 4.0 mmol of DCC. 11.5 g of P-leucyl-alanylglycyl-valyl-PEG are obtained with the following ratio of amino acids: valyl: glycyl: alanyl: leucpl 0.88: 0.86: 1.11: 1.00.
В. Как описано в примере 1В, гидролизуют 10 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ в 100 мл воды и 3 мл 1 н. КОН. После нейтрализации , ультрафильтрации и обработки получают 300 мг сырого тетрапептида, который имеет следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцил 0,96 : 0,91 : : 1,24: 1,00. Дл пептида в сыром продукте составл ет 41% (аминокислотный анализ), т. е., счита на первую аминокислоту (валил), общий выход составл ет 57% от теопетического.B. As described in Example 1B, 10 g of N-leucyl-alanyl-glycyl-valyl-PEG is hydrolyzed in 100 ml of water and 3 ml of 1N. KON. After neutralization, ultrafiltration and processing, 300 mg of crude tetrapeptide is obtained, which has the following ratio of amino acids: valyl: glycyl: alanyl: leucyl 0.96: 0.91:: 1.24: 1.00. For the peptide in the crude product is 41% (amino acid analysis), i.e., counting on the first amino acid (valyl), the total yield is 57% of the theoretical.
Примерз. К 6г Н-валил-ПЭГ (80%, 0,5 ммол валина и 0,09 мл триэтиламина (0,6 ммол ), растворенным в 600 мл СПоС. прибавл ют 1,05 г БОК-глицил-ОПФ (3.5 ммол ) и перемещивают 24 часа при комнатной температуре. После выпаривани в вакууме остаток перемешивают 30 мин при комнатной температуре с 60 мл трифторуксусной кислоТЫ/СН9С12 (1:1) и вновь выпаривают досуха в вакууме. Остаток раствор ют примерно в 700 мл воды, фильтруют и фильтрат довод т до рН 6 при ПОМОШ.И NaOH.Froze To 5g of H-valyl-PEG (80%, 0.5 mmol of valine and 0.09 ml of triethylamine (0.6 mmol), dissolved in 600 ml of SPOC., 1.05 g of BOC-glycyl-OPF (3.5 mmol) are added and evaporated for 24 hours at room temperature. After evaporation in vacuum, the residue is stirred for 30 minutes at room temperature with 60 ml of trifluoroacetic acid / CH9Cl2 (1: 1) and evaporated to dryness in vacuum again. The residue is dissolved in approximately 700 ml of water, filtered and the filtrate adjusted to pH 6 with POMOSH.A and NaOH.
После ультрафильтрации (диафло ультрафильтр УМ 10) обрабатывают как описано в примере 1Б. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 5,88 г.After ultrafiltration (diaflo ultrafilter UM 10) is treated as described in Example 1B. Output H-glycyl-valyl-PEG 5.88 g
Аналогично примеру 1Б Н-глицил-валилПЭГ обрабатывают БОК-лейцил-ОНП. Получают 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ со следующим соотношением аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,00: :0,70 : 0,78 : 0,71. 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ гидролизуют по принтеру 1В и отщепленный тетрапептид обрабатывают соответственно . Получают 250 мг сырого тетрапептида со следующим соотноптением аминокислот: валил : глииил : аланил : лейцил 1.00: : 0,83 : 0,93 : 0,88. Дол пептида в сыпом тетрапептиде составл ет 32%, т. е., счита на первую аминокислоту (валин), общий выход составл ет 50% от теоретического.Analogously to example 1B, N-glycyl-valylPEG is treated with BOC-leucyl-SNP. 5.6 g of N-leucyl-alanyl-glycyl-valylPEG are obtained with the following ratio of amino acids: valyl: glycyl: alanyl: leucyl 1.00: 0.70: 0.78: 0.71. 5.6 g of N-leucyl-alanyl-glycyl-valyl-PEG is hydrolyzed by printer 1B and the split tetrapeptide is treated, respectively. 250 mg of crude tetrapeptide is obtained with the following ratio of amino acids: valyl: gliyl: alanyl: leucyl 1.00:: 0.83: 0.93: 0.88. The share of the peptide in the bulk tetrapeptide is 32%, i.e., counting on the first amino acid (valine), the total yield is 50% of the theoretical.
Пример 4.Example 4
А. 10 г ПЭГ (мол. в. 20000), 1,75 г БОКглицил-ОН и 2,06 г ДЦК раствор ют в 100 мл СНдСЬ и перемешивают в течение 6 суток при комнатной температуре. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавл ют 100 мл 1,2 н. НС1 в лед ной укс сной кислоте и перемешивают 20 мин при комнатной температуре .A. 10 g of PEG (mol. Cent. 20,000), 1.75 g of BOCglycyl-OH and 2.06 g of DCC are dissolved in 100 ml of CHdCl2 and stirred for 6 days at room temperature. The reaction mixture is evaporated in vacuo to dryness, 100 ml of 1.2 n are added. HCl in glacial acetic acid and stirred for 20 min at room temperature.
Растворитель отгон ют в вакууме, а к остатку прибавл ют 100 мл воды. Полученный осадок отдел ют центрифугированием. Прозрачный верхний слой декантируют, довод т до рН 6 триэтиламином и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 до тех пор, пока ультра фильтрат еще содержит глицил-ОН. Остаток выпаривают в вакууме и следы воды дважды азеотропно отгон ют с бензолом. Продукт сушат в экссикаторе до посто нного веса. Выход Н-глицил-ПЭГ 9,8 г, содержание аминокислоты 0,06 ммоль/г.The solvent is distilled off in vacuo, and 100 ml of water is added to the residue. The resulting precipitate is separated by centrifugation. The clear upper layer was decanted, adjusted to pH 6 with triethylamine and ultrafiltered through UF Diaflo ultrafilter 10 until the ultra filtrate still contains glycyl-OH. The residue is evaporated in vacuo and traces of water are azeotroped twice with benzene. The product is dried in an exsiccator to constant weight. The output of H-glycyl-PEG 9.8 g, the amino acid content of 0.06 mmol / g
Б. 9,8 г Н-глицил-ПЭГ раствор ют в 60 мл СН2С12 и нейтрализуют 0,7 ммол М-мети,-;B. 9.8 g of N-glycyl-PEG is dissolved in 60 ml of CH2Cl2 and neutralized with 0.7 mmol M-meth, -;
морфолина. В отдельном сосуде раствор ют 3 ммол БОК-лейцил-ОН в 5 мл и 1 мл .-пшетилбормамида, нейтпализуют 3 ммол Х-метилмопфолина, охлаждают до -20°С, прибавл ют 2.6 ммол изобутилхлопоформиата и перемешивают 10 мин при -20°. Смешанный ангидрид прибавл ют при -20°С к раствору Н-глицил-ПЭГ и перементивают в течение часа при -20° и 2 часа при 4°С. Растворитель отгон ют, остаток обрабатывают 15 мин ПРИ комнатной тнмпературе 50 мл 1.2 н. НС1 в лел иой уксусной кислоте и оп ть выпаривают в вакууме досуха. Остаток раствор ют в 100 мл воды, довод т до рН 6 водНЫА1 паствором аиетата натри и ультпаЛпльтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10. Остаток выпаривают в вакууме досуха, дважды азеотропно высушивают с бензолом н сушат в экссикаторе. Выход Н-лейцил-глицттлПЭГ 9.5 г.morpholine. 3 mmol of BOC-leucyl-OH in 5 ml and 1 ml are dissolved in a separate vessel. 3 mmol of X-methylmopfoline is neuteralized, cooled to -20 ° C, 2.6 mmol of isobutyl chloroformate is added and stirred for 10 min at -20 °. The mixed anhydride is added at -20 ° C to the solution of H-glycyl-PEG and changed for an hour at -20 ° and 2 hours at 4 ° C. The solvent is distilled off, the residue is treated with 15 min at 50 ml of 1.2 n. HC1 is added to acetic acid and evaporated again in vacuo to dryness. The residue is dissolved in 100 ml of water, adjusted to pH 6 with water with sodium aietate solution and ultrapolated through a UF 10 Diaflo ultrafilter. The residue is evaporated to dryness in vacuum, twice azeotropically dried with benzene and dried in an exsiccator. The output of the N-leucyl-glyctlPEG 9.5 g
Аналогично сочетают другие аминокислоты в виде следуюитих пооизводных: БОК-аланилОН , БОК-Ю-бензил)-твеонил-ОН, БОК-лейцил-ОН . БОК-валил-ОН, БОКЮ-бензил)-тпеоиил-ОН , БОК-валил-ОН. После последнего сочетани получают 8,0 г,Similarly, other amino acids are combined as the following derivatives: Boc-alanyl, Boc-U-benzyl) -veonyl-OH, Boc-leucyl-OH. BOCK-valyl-ON, BOCKU-benzyl) -topeoyl-ON, BOCK-valyl-OH. After the last combination, 8.0 g are obtained.
Н-валил-тоеонил - валил - лейцил - треонилбензилN-valyl-toonyl-valyl-leucyl-threonylbenzyl
30бензил30benzyl
алант1л-лейцпл-глицил-О-ПЭГalantl-leucpl-glycyl-o-peg
Анализ аминокислот гидролизиоованной пробы этого BeniecTBa дал следующий результат:Amino acid analysis of the hydrolyzed sample of this BeniecTBa gave the following result:
глицил : лейцил : аланил : треонил j валил 1,0 : 1,89 : 1,67 : 1,0, Значени дл отдельных аминокислот получпли из результатов анализов амииокислот на промежуточных ступен х .glycyl: leucyl: alanyl: threonyl j valyl 1.0: 1.89: 1.67: 1.0. Values for individual amino acids were obtained from the results of analyzes of amio acids on intermediate steps.
Пример 5.Example 5
А. Лтпюнную КИСЛОТУ этерифицируют в сложный эфир с ПЭГ (мол. в. 6000) с помощью эквимол рного количества ДЦК (пассчитано на ПЭГ) в метпленхлориде (10%-ный раствор) в течение 3 суток. Растворитель отгон ют , остаток раствор ют в воде н полученный осадок отпеитрифугипуют. Раствор ультрафильтруют (Амикон, УМ-2-фильтр) упаривают Е вакууме и остаток сушат до иосто нного веса. Выход 80% от теоретттческого. Высушенный полимер этерифицируют БОК-валил-ОН и ДНК (оба компонента в 5-кратном избытке, счита на 0,2 ммоль/г функциональных групп на полимепе) в 10%-ном растворе в СНоСЬ в течение 3 суток при комнатной температуре. Содержание аминокислоты в полимере после прин той обработки и отщеплени БОК-группы с 4 н. НС1/диоксан:A. Lime acid esterified into ester with PEG (mol. V. 6000) with an equimolar amount of DCC (passively on PEG) in methylene chloride (10% solution) for 3 days. The solvent is distilled off, the residue is dissolved in water and the resulting precipitate is distilled off. The solution is ultrafiltered (Amikon, UM-2-filter) is evaporated at E-vacuum and the residue is dried to a steady weight. Output 80% of theoretical. The dried polymer is esterified by BOC-valyl-OH and DNA (both components in 5-fold excess, counting at 0.2 mmol / g of functional groups on the polymep) in a 10% solution in СНоСЬ for 3 days at room temperature. The amino acid content in the polymer after the accepted treatment and cleavage of the BOC-group with 4 n. HC1 / dioxane:
: 0.2 тмоль/г. : 0.2 tmol / g.
Б, По ДНК-методу получают следующтге активированные сложные эфиры:B, According to the DNA method, the following activated esters are obtained:
) 3-кратный избыток ПЗГ, счита на функциональ65 iii.ie группы лимонной кислоты БОК-лейцил-ПХФ БОК-глицил-ОНФ, БОК-глутаминил-ОНФ. Сочетани провод т следующим образом. 1 ммоль (5 г) Н-валил-полимера раствор ют в 50 мл СН2С12/диметилформамид (1:1), нейтрализуют 1,2 ммол N-метил-морфолина и прибавл ют 3 ммол активированного эфира БОК-аминокислоты. Через 5 мин к раствору прибавл ют еще 1,2 ммол N-метил-морфолина и перемещивают 2 часа при комнатной температуре . Растворитель отгон ют в вакууме, к остатку прибавл ют 50 мл 4 и. НС1/диоксана и оставл ют сто ть на 30 мин при комнатной температуре. После повторной отгонки растворител раствор ют остаток в смеси воды/этанола (3:1) и ультрафильтруют при помощи Диафло ультрафильтра УМ-2. Остаток суилат. Выход Н-глицил-лейцил-валил-полимера 4 г. Результат аминокислотного анализа гидролизованной пробы: валил : лейпил : глицил : глутаминил: 1,0 : 0,9 : 1,0 : 0,98. 2,0 г Н-глутаминил-глицил-лейцил-валил-полимера перемещивают 4 час в 0,2 н. КОН (50 мл) при комнатной температуре, нейтрализуют 2 н. НС1 и пропускают через колонну (2,5X100 см) с Сефадексом G-25. Сырой иептид н-глутаминил - глицил - лейцпл-валилОН получают с выходом примерно 50%Аминокислотный анализ дает следующие значени : валил : лейцил : глицил : глутамиНИЛ 1,0 : 0,88 : 1,05 : 0,98. Пример 6. А. ПЭГ (мол. в. 4000) этерифпцируют 10кратным избытком БОК-глипил-ОН и ДЦК в 10%-ном растворе СН2С12 в течение 5 суток при .домнатной температуре. После этого отщепл ют защитную группу, растворитель отгон ют , остаток раствор ют в воде и полученный осадок отдел ют центрифугированием. Раствор ультрафильтруют с Диафло ультрафильтром УМ-2, растворитель отгон ют и остаток сушат. Содержание аминокислоты найдено аминокислотным анализом как 100%-ное. Малеиновую кислоту подвергают взаимодействию с «-нитрофенолом и ДЦК, получа диОНФ-эфир малеиновой кислоты. Выход примерно 80% от теоретического, температура плавлени 185-190°С. На двойную св зь полученного таким образом сложного эфира малеиновой кислоты присоедин ют йодоводород. Полученный ди-п-нитрофениловый эфир монойод нтарной кислоты подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-валил-ОН, получа ди-ОНФ-эфир БОК-валил-О- нтарной кислоты . Эквимол рные количества ПЭГ-глицил-Н (нейтрализованный N-метил-морфолином) и ди-ОНФ-эфира БОК-валил-О- нтарной кислоты раствор ют в СНаСЬ диметилформампдс (I : 1; 10-ный раствор) и перемешивают при комнатной температуре 24 часа. После этого отгон ют растворитель, остаток раствор ют в воде и ультрафильтруют (Диафло ультра ) , -. |11:ит :лорфени,1) 3-fold excess of PZG, counting on the functional iii.ie of the citric acid group BOC-leucyl-PCP BOC-glycyl-ONF, BOC-glutaminyl-ONF. Combinations are carried out as follows. 1 mmol (5 g) of the H-valyl polymer is dissolved in 50 ml of CH2Cl2 / dimethylformamide (1: 1), neutralized with 1.2 mmol of N-methyl morpholine and 3 mmol of the activated BOC-amino acid ester is added. After 5 minutes, a further 1.2 mmol of N-methyl morpholine was added to the solution and transferred 2 hours at room temperature. The solvent is distilled off in vacuo, 50 ml of 4 and are added to the residue. HC1 / dioxane and allowed to stand for 30 minutes at room temperature. After the second distillation of the solvent, the residue is dissolved in a water / ethanol mixture (3: 1) and ultrafiltered using a Diaflo UF-2 ultrafilter. Balance of silat. The output of the N-glycyl-leucyl-valyl polymer 4 g. The result of amino acid analysis of the hydrolyzed sample: valyl: leupyl: glycyl: glutaminyl: 1.0: 0.9: 1.0: 0.98. 2.0 g of N-glutaminyl-glycyl-leucyl-valyl-polymer is transferred for 4 hours in 0.2N. KOH (50 ml) at room temperature, neutralized with 2N. HC1 and passed through a column (2.5 x 100 cm) with Sephadex G-25. Crude ipeptide n-glutaminyl - glycyl - leucpl-valylON is obtained in a yield of about 50%. The amino acid analysis gives the following values: valyl: leucyl: glycyl: glutaminyl 1.0: 0.88: 1.05: 0.98. Example 6. A. PEG (mol. C. 4000) is esterified with a 10-fold excess of BOC-glypyl-OH and DCC in a 10% solution of CH2Cl2 for 5 days at room temperature. The protective group is then cleaved, the solvent is distilled off, the residue is dissolved in water and the resulting precipitate is separated by centrifugation. The solution is ultrafiltered with a Diaflo UM-2 ultrafilter, the solvent is distilled off and the residue is dried. The amino acid content is found by amino acid analysis as 100%. Maleic acid is reacted with n-NITROPHENOL and DCC to give maleic acid DIONPH ester. Yield about 80% of theoretical, melting point 185-190 ° C. Hydrogen iodide is added to the double bond of the maleic ester thus obtained. The resulting monoiodide succinic acid di-p-nitrophenyl ester is reacted with BOC-valyl-OH Ag salt, to obtain BOC-valyl-O-succinic acid di-UNP ester. Equimolar amounts of PEG-glycyl-N (neutralized with N-methyl-morpholine) and BOC-valyl-O-succinic acid di-ONT ester are dissolved in CHaCl2 dimethylformampds (I: 1; 10% solution) and stirred at room temperature 24 hours. After that, the solvent is distilled off, the residue is dissolved in water and ultrafiltered (Diaflo ultra), -. | 11: it: lorpheni, 1
ОНФ - -нитрофенил фильтр УМ-10), пока толпдинова проба в ультрафильтрате не станет отрицательной. Фильтрат упаривают в вакууме и остаток сущат . Аминогруппы Н-глицил-ПЭГ после этого подвергают взаимодействию с ангидридом 3сульфопропионовой кислоты. Из полученного продукта отщепл ют БОК-группу при помощи 4 н. НС1/диоксана. Полученный полимер 1гмсет мол. в. выще 20000 (согласно удержан1по). Б. 2 г полученного полимера и 6 ммолей БОК-лейцил-ПХФ перемещивают в 20 мл СН2С12/диметилформамида (1 : 1) 3 час при комнатной температуре (через 5 мин прибавл ют к реакционной смеси 2 ммол N-метилморфолина ). После этого отгон ют растворитель в вакууме, остаток обрабатывают 20 мин 40 мл 4 н. НС1/диоксана и растворитель оп ть отгон ют. Остаток раствор ют в 100 мл воды п ультрафильтруют (УМ-10). Воду выпаривают и остаток сущат. Выход 1,9 г. Анализ: валил : лейцил 1,0: : 0,95. В. 1,9 г дипептид-полимера перемешивают в течение 3 час при комнатной температуре в 0,2 н. водного КОН, нейтрализуют 2 н. НС1 и ультрафильтруют через УМ-10-фильтр. Фильтрат выпаривают в вакууме. Выход сырого продукта 350 мг. Содержание пептида составл ет 70%. Аминокислотный анализ: валил: : лейцил 1,0 : 0,97. Пример 7. Сначала этерифицируют БОКглицил-ОН с ПЭГ (мол. в. 200) согласно примеру 6А. Удаление избыточных компонентов провод т ультрафильтрацией с Диафло фильтром УМ-2 или хроматографией на Сефадексе . Полученный продукт конденсируют аналогично примеру 6 с ди-ОНФ -эфиром малеиновой кислоты. К продукту конденсации присоедин ют йодоводород и йодированный продукт подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-аланил-ОН. В качестве растворител примен ют вместо эфира диоксан. После этерификации растворитель отгон ют, остаток раствор ют в воде п ультрафильтруют (УМ-10-фильтр). После сущки остатка получают 95% этерифицированного полимера. После отп1еплеии защитной группы сочетают с БОК-лейнил-ПХФ. Выход Д111:ептидполимера 1,95 г (93% от теоретического). Аминокислотный анализ: аланил : лейцил 1,0: 1,01. Отщепление пептида от полимерного носител дает 300 мг сырого продукта. Выход по данным аминокислотного анализа 80% от теоретического: аланил : лейц1 л 1,0 : 1,0. Пептид однороден при тонкослойной хроматографии в системе лед на уксусна кислота (бутанол) вода (3:1:1). Пример 8. А. Ю г ПЭГ (моль. D. 20000), 1,16 г БОКизолейцил-ОН и 1,03 г ДЦК раствор ют в 9 100 мл СНгСЬ и перемешивают 6 суток при комнатной температуре без доступа влаги. Реакционную смесь выпаривают досуха в вакууме , прибавл ют 50 мл 4 и. HCl/диоксана п перемешивают 30 мин при комнатной температуре . После отгонки растворител остаток раствор ют в 100 мл воды и выпавший осадок отдел ют центрифугированием. ОтдеКантированный раствор довод т до рН 6 при помош,п 2н. NaOH и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат выпаривают досуха в вакууме и сушат. Выход Н-изолейцил-ПЭГ 9,8 г. Содержание изолейцила, согласно аминокислотному анализу, 0,07 ммоль/ /г (70% от теоретического). Б. Получеппый продукт сочетают по очереди с БОК производными аланина, валина и фенилаланина ио следуюшей схеме. 10%-ный водный раствор полимера довод т до рН 3,9 при помощи 4 н. NaOH или 5 н. H2SO4 и охлаждают до 4°С. В отдельном сосу.п,е раствор ют БОК-ампнокислоту (5-кратный избыток по сравнению с аминокомпонентной) в 2- 3мл диметилформамида и прибавл ют к водному раствору полимера, поддержива рН 3,9 посто пным. При тех же рН и температуре при перемешивании прибавл ют эквимол рное БОК-аминокислоте количество д-толуолсульфоната Ы-циклогексил-К- р-(Ы-метил-морфолино )-этил - карбодиимид-п - толуолсульфонат , поддержива рН 3,9 при помощи 5 н. H2SO4. Примерно через 15 мин, когда рН больше не измен етс , довод т рН до 7,0 при помощи 4 н. NaOH и перемешивают 30 мин при комнатной температуре. Затем рН оп ть довод т до 3,9 и сиова прибавл ют эквимол рное количество конденсирующего средства. Раствор оставл ют на 3- 4часа при рН 7,0 и комнатной температуре и ультрафильтруют. Выпариванием в вакууме получают тетрапептпд-полимер. в Тетрапеитпд-полимер (9 г) обрабатывают 24 час 2 п. КОН в смеси воды/диоксана (9 г в 50 мл) нейтрализуют и подвергают гель-фильтрации через колонну (2,5X80 см) с Сефадексом G-15 в водном растворе. Воду отгон ют (при 40° С). Остаток раствор ют в метаноле, растворитель отгон ют и пептид сушат . Выход сырого Н-алапил-валпл-фенплизолейцпл-ОН: примерно 300 мг (не совсем свободен от солей). Аминокислотный анализ дает выход примерно 0,5 ммол (75% от теоретического , счита па содержание аминокислоты в полимере). Результат анализа после хроматографии на колонне: изолейцил : фенил : валил : алаНил 1 ,0 : 0,99 : 0,90 : 0,97. Пример 9. А. 20 г ПЭГ (мол. ,в. 20000), 5,0 г Ц -валил-ОН и 4,2 г ДЦК раствор ют в 200 мл СН2С12 и перемешивают 10 суток при комнатной тем пературе без доступа влажности. К реакционной смеси прибавл ют 1,2 мл ле ) Ц - бензилоксикарбонил 454 дЯНой уксусной кислоты, перемешивают еще 20 час и выпаривают в вакууме досуха. Остаток раствор ют в 300 мл МеОН, прибавл ют 5 мл 4 н. НС1/МеОН и гидрируют .над Pd/C npjt комнатной температуре и нормальном давлении, пока поглощаетс водород. Катализатор отфильтровывают, фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток раствор ют примерио в 1 л воды и образующийс осадок отдел ют. Фильтрат yльтpaiфильтpyют через Диафло ультрафильтр УМ-40 и его обрабатьсвают дальше, как описано в примере 1А. Выход 18,8 г Н-валИл-ПЭГ-НС1. Содержание аминокислоты 88%, или 0,088 ммоль/г (амииоки-слотный анализ). Б. 10 г Н-валил-ПЭГ-НС1 раствор ют в 50 мл СН2С12, охлаждают до -20° и раствор довод т до рН 8-9 прибавлением 0,11 мл N-метилморфолина. 1,05 г Ц-глицил-ОН раствор ют в 10 мл тетрашдрофурана, охлаждают до -20°, прибавл ют 0,55 Мл N-метилморфолина и 0,65 мл изобутиловото эфира хлормуравьиной кислоты и перемешивают 5 ми.н при -20°. Эту смесь прибавл ют к охлал-сденному до -20° раствору НчвалилПЭГ и перемешивают 30 мин ниже -10°, 30 мин ниже 0° и 3 час при комнатной температуре . Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, остаток раствор ют в 200 мл МеОН, прибавл ют 1,25 мл 4 н. НС1/МеОН и Pd/C и гидрируют ,при комнатной температуре и нормальном давлении до окончани поглощенп водорода. Катализатор отфильт1ровывают , фильтрат выпаривают в вакууме досуха , остаток раствор ют примерно в 1 л воды , фильтруют и ультрафч льтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат от ультрафильтрации вьипаривают досуха в вакууме , сушат при помощи бензола/абсолютного этанола (80/20) и ночь в экссикаторе до посто нного веса. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ-НС1 8,0 г. Аналогично довод т 4,0 г Н-глицил-валилПЭГ-НС1 до рН 8-9 при помощи 0,05 мл N-метилморфолина и иодвергают взаимодействию с раствором смешанного ангидрида, изготовленным из 500 мг Ц-аланил-ОН, 0,22 мл N-метилморфолина и 0,26 мл изобутилового эфира хлормуравьиной кислоты в 5 мл тетрагидрофурана . После отщеплени защитной группы и ультрафильтрации получают 3,8 г Н-аланил-гл1ЩИЛ-валил-ПЭГ- НС1. Соответствующим взаимодействием этого продукта с Ц-лейцил-ОН. N-метилморфолином и изобутиловым эфиром хлормуравыиной кислоты получают после отщеплени защитной гру.пиы и ультрафильтрацип 3,5 г Н-лейцил-аланилглидил-валил-ПЭГ НС1. Анализ аминокислот гидролизированной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : : аланил : лейцпл 1,00 : 0,89 : 0,92 : О 94. В. 3,4 г Н - лейцил - аланил - глицил - валилПЭГ-НС1 гидролизуют аналогично примеру В в 62 мл воды при помощи 1,25 мл J н,ONF - -nitrophenyl filter UM-10) until the tolpdin test in the ultrafiltrate becomes negative. The filtrate is evaporated in vacuo and the residue is substantial. The amino group H-glycyl-PEG is then reacted with 3-sulfopropionic anhydride. From the resulting product, the BOC group is split off with 4 n. HC1 / dioxane. The resulting polymer gmset mol. at. Higher than 20,000 (according to withholding). B. 2 g of the obtained polymer and 6 mmol of BOC-leucyl-PCP are transferred to 20 ml of CH2Cl2 / dimethylformamide (1: 1) for 3 hours at room temperature (after 5 min, 2 mmol of N-methylmorpholine is added to the reaction mixture). After that, the solvent is distilled off in vacuum, the residue is treated with 20 min. 40 ml of 4 n. HC1 / dioxane and the solvent is again distilled off. The residue is dissolved in 100 ml of water and ultrafiltered (YM-10). Water is evaporated and the residue is present. Output 1.9 g. Analysis: Valyl: leucyl 1.0::: 0.95. B. 1.9 g of the dipeptide polymer is stirred for 3 hours at room temperature in 0.2 n. water KOH, neutralized 2 n. HC1 and ultrafiltered through a UM-10 filter. The filtrate is evaporated in vacuo. Crude yield 350 mg. The peptide content is 70%. Amino acid analysis: valyl: leucyl 1.0: 0.97. Example 7. First, esterified with BOCglycyl-OH with PEG (mol. C. 200) according to example 6A. Removal of excess components is carried out by ultrafiltration with a Diaflo UM-2 filter or chromatography on Sephadex. The resulting product is condensed analogously to example 6 with a di-ONP-maleic ester. Hydrogen iodide is added to the condensation product and the iodinated product is reacted with a BOC-alanyl-OH Ag salt. Dioxane is used as a solvent instead of ether. After esterification, the solvent is distilled off, the residue is dissolved in water and ultrafiltered (UM-10 filter). After residue residue, 95% of the esterified polymer is obtained. After removal, the protective group is combined with BOC-lainil-PCP. Output D111: epidepolymer 1,95 g (93% of theoretical). Amino acid analysis: alanyl: leucyl 1.0: 1.01. Cleavage of the peptide from the polymeric carrier yields 300 mg of the crude product. The yield according to amino acid analysis is 80% of the theoretical: alanyl: leuc1 l 1.0: 1.0. The peptide is homogeneous in thin layer chromatography in an ice / acetic acid (butanol) water system (3: 1: 1). Example 8. A. Yu g of PEG (mol. D. 20,000), 1.16 g of BOCIS-leucyl-OH, and 1.03 g of DCC are dissolved in 9,100 ml of CH2Cl2 and stirred for 6 days at room temperature without access of moisture. The reaction mixture is evaporated to dryness in vacuo, 50 ml 4 are added and. HCl / dioxane p is stirred for 30 minutes at room temperature. After distilling off the solvent, the residue is dissolved in 100 ml of water and the precipitated precipitate is separated by centrifugation. The separated solution is adjusted to pH 6 with the aid of p 2n. NaOH and ultrafiltered through diaflo ultrafilter UM-10. The filtrate is evaporated to dryness in vacuo and dried. Output H-isoleucyl-PEG 9.8 g. The content of isoleucil, according to amino acid analysis, is 0.07 mmol / g (70% of theoretical). B. The resulting product is combined in turn with the BOC derivatives of alanine, valine and phenylalanine following the scheme. The 10% aqueous polymer solution is adjusted to pH 3.9 with 4N. NaOH or 5 n. H2SO4 and cooled to 4 ° C. In a separate pump, the solution of BOC-ampno-acid (5-fold excess compared to the amino component) is dissolved in 2 to 3 ml of dimethylformamide and added to the aqueous polymer solution, maintaining the pH 3.9 constant. At the same pH and temperature, an equimolar BOC amino acid quantity of d-toluenesulfonate N-cyclohexyl-C- p- (N-methyl-morpholino) -ethyl-carbodiimide-p-toluenesulfonate is added with stirring, maintaining pH 3.9 with 5 n. H2SO4. After about 15 minutes, when the pH no longer changes, the pH is adjusted to 7.0 with 4N. NaOH and stirred for 30 minutes at room temperature. The pH is then again adjusted to 3.9 and an equimolar amount of condensing agent is added. The solution is left for 3 to 4 hours at pH 7.0 and at room temperature and ultrafiltered. By evaporation in vacuo, a tetrapeptide polymer is obtained. in Tetrapitp-polymer (9 g) is treated 24 hours 2 p. KOH in a mixture of water / dioxane (9 g in 50 ml) is neutralized and subjected to gel filtration through a column (2.5 x 80 cm) with Sephadex G-15 in an aqueous solution. Water is distilled off (at 40 ° C). The residue is dissolved in methanol, the solvent is distilled off and the peptide is dried. The output of raw H-alapil-Valpl-fenplizoletspl-IT: about 300 mg (not quite free from salt). Amino acid analysis gives a yield of approximately 0.5 mmol (75% of the theoretical value, considering the content of amino acids in the polymer). The result of the analysis after chromatography on a column: isoleucyl: phenyl: valyl: alaNil 1, 0: 0,99: 0,90: 0,97. Example 9. A. 20 g of PEG (mol., 20,000), 5.0 g of C-wolyl-OH and 4.2 g of DCC are dissolved in 200 ml of CH 2 C 12 and stirred for 10 days at room temperature without access to moisture. 1.2 ml of le) C - benzyloxycarbonyl 454 DANO acetic acid was added to the reaction mixture, stirred for another 20 hours and evaporated to dryness in vacuo. The residue is dissolved in 300 ml of MeOH, 5 ml of 4 N are added. HC1 / MeOH and hydrogenate above Pd / C npjt at room temperature and normal pressure while hydrogen is absorbed. The catalyst is filtered off, the filtrate is evaporated to dryness in vacuo, the residue is dissolved in approximately 1 liter of water and the precipitate formed is separated. The filtrate is filtered through a Diaflo UM-40 ultrafilter and is processed further as described in Example 1A. The output of 18.8 g of N-Vall-PEG-HC1. The amino acid content is 88%, or 0.088 mmol / g (amyio-slot analysis). B. 10 g of H-valyl-PEG-HC1 is dissolved in 50 ml of CH2Cl2, cooled to -20 ° and the solution adjusted to pH 8-9 by adding 0.11 ml of N-methylmorpholine. 1.05 g of C-glycyl-OH is dissolved in 10 ml of tetrastrofrofuran, cooled to -20 °, 0.55 ml of N-methylmorpholine and 0.65 ml of isobutyl ether of chloroformic acid are added and stirred 5 min at -20 ° . This mixture is added to the NchwalylPEG solution which has been cooled to -20 ° and stirred for 30 minutes below -10 °, 30 minutes below 0 ° and 3 hours at room temperature. The reaction mixture is evaporated to dryness in vacuo, the residue is dissolved in 200 ml of MeOH, 1.25 ml of 4N is added. HC1 / MeOH and Pd / C are hydrogenated at room temperature and normal pressure until the absorption of hydrogen is complete. The catalyst is filtered off, the filtrate is evaporated in vacuo to dryness, the residue is dissolved in about 1 l of water, filtered and ultrafiltered through a Diaflo UF-10 ultrafilter. The ultrafiltration filtrate is evaporated to dryness in a vacuum, dried with benzene / absolute ethanol (80/20) and overnight in an exsiccator to constant weight. Yield of H-glycyl-valyl-PEG-HC1 8.0 g. In a similar manner, 4.0 g of H-glycyl-valylPEG-HC1 is adjusted to pH 8-9 with 0.05 ml of N-methylmorpholine and iodized to react with the mixed anhydride made from 500 mg of C-alanyl-OH, 0.22 ml of N-methylmorpholine and 0.26 ml of isobutyl chloroformate in 5 ml of tetrahydrofuran. After cleavage of the protecting group and ultrafiltration, 3.8 g of H-alanyl-gl1-SCHIL-valyl-PEG-HC1 are obtained. The corresponding interaction of this product with C-leucyl-OH. N-methylmorpholine and isobutyl chloroformate ester are obtained after cleavage of the protective group and ultrafiltrate 3.5 g of N-leucyl-alanylglidyl-valyl-PEG HC1. The amino acid analysis of the hydrolyzed sample of this substance shows the following ratio of amino acids: valyl: glycyl:: alanyl: leucpl 1.00: 0.89: 0.92: O 94. B. 3.4 g H - leucyl - alanyl - glycyl - valylPEG- HC1 is hydrolyzed analogously to example B in 62 ml of water using 1.25 ml Jn,
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE2047413A DE2047413C3 (en) | 1970-09-26 | 1970-09-26 | Process for the production of peptides in a homogeneous phase |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU454736A3 true SU454736A3 (en) | 1974-12-25 |
Family
ID=5783460
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU1700240A SU454736A3 (en) | 1970-09-26 | 1971-09-24 | The method of producing peptides |
Country Status (11)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3772264A (en) |
BE (1) | BE773013A (en) |
CA (1) | CA1000271A (en) |
CH (1) | CH567458A5 (en) |
DE (1) | DE2047413C3 (en) |
FR (1) | FR2108520A5 (en) |
GB (1) | GB1310656A (en) |
IL (1) | IL37698A (en) |
NL (1) | NL7113179A (en) |
SE (1) | SE398347B (en) |
SU (1) | SU454736A3 (en) |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5183B2 (en) * | 1973-03-07 | 1976-01-05 | ||
FR2419278A1 (en) * | 1978-03-10 | 1979-10-05 | Pierce Chemical Co | PEPTIDIC STRING SYNTHESIS PROCESS |
DE2930542A1 (en) * | 1979-07-27 | 1981-02-12 | Hoechst Ag | NEW INSULINE DERIVATIVES AND METHOD FOR THEIR PRODUCTION |
DK608589D0 (en) * | 1989-12-01 | 1989-12-01 | Holm Arne | CHEMICAL PROCEDURE |
US5824784A (en) * | 1994-10-12 | 1998-10-20 | Amgen Inc. | N-terminally chemically modified protein compositions and methods |
GB0814519D0 (en) | 2008-08-08 | 2008-09-17 | Imp Innovations Ltd | Process |
GB0820865D0 (en) * | 2008-11-14 | 2008-12-24 | Membrane Extraction Tech Ltd | Degradable supports for tide synthesis |
GB201413954D0 (en) | 2014-08-06 | 2014-09-17 | Imp Innovations Ltd | Process for preparing polymers |
-
1970
- 1970-09-26 DE DE2047413A patent/DE2047413C3/en not_active Expired
-
1971
- 1971-09-07 CH CH1309971A patent/CH567458A5/xx not_active IP Right Cessation
- 1971-09-13 IL IL37698A patent/IL37698A/en unknown
- 1971-09-17 US US00181609A patent/US3772264A/en not_active Expired - Lifetime
- 1971-09-24 BE BE773013A patent/BE773013A/en unknown
- 1971-09-24 SE SE7112135A patent/SE398347B/en unknown
- 1971-09-24 NL NL7113179A patent/NL7113179A/xx not_active Application Discontinuation
- 1971-09-24 SU SU1700240A patent/SU454736A3/en active
- 1971-09-24 FR FR7134440A patent/FR2108520A5/fr not_active Expired
- 1971-09-24 CA CA123,614A patent/CA1000271A/en not_active Expired
- 1971-09-24 GB GB4470171A patent/GB1310656A/en not_active Expired
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
FR2108520A5 (en) | 1972-05-19 |
CH567458A5 (en) | 1975-10-15 |
US3772264A (en) | 1973-11-13 |
CA1000271A (en) | 1976-11-23 |
DE2047413C3 (en) | 1980-05-29 |
GB1310656A (en) | 1973-03-21 |
DE2047413B2 (en) | 1979-09-06 |
NL7113179A (en) | 1972-03-28 |
IL37698A (en) | 1975-04-25 |
DE2047413A1 (en) | 1972-03-30 |
SE398347B (en) | 1977-12-19 |
BE773013A (en) | 1972-03-24 |
IL37698A0 (en) | 1971-11-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3960830A (en) | Polyalkylene glycols used for the preparation of peptides | |
Fridkin et al. | Use of polymers as chemical reagents. I. Preparation of peptides | |
KR860000526B1 (en) | Preparation process of new amind-functionalized acrylic copolymers | |
US4420424A (en) | New peptides and a process for their preparation | |
CN113150075B (en) | Cyclic poly-arginine cell-penetrating peptide molecule and synthesis method and application thereof | |
SU454736A3 (en) | The method of producing peptides | |
RU2107691C1 (en) | Peptide and method for its preparation | |
CN113444150B (en) | Solid-phase preparation method of procatide | |
Nissen et al. | Polydepsipeptides, 4 Synthesis of the alternating Polydepsipeptides Poly (Ala‐Lac) and Poly (Val‐Lac) | |
GB2028342A (en) | Peptides derivatives of 4-methylcoumarin | |
NO165549B (en) | PROCEDURE FOR POWDERING A VINYLAROMATIC MONOMER AND AN ACRYLIC MONOMER ON POLYBUTADIA BY EMULSION POLYMERIZATION. | |
Stewart | Synthesis of polydepsipeptides with regularly repeating unit sequences | |
Arad et al. | Depsipeptide analogues of elastin repeating sequences: synthesis | |
DK172398B1 (en) | Process for preparing protected arginine-containing peptides | |
Narita et al. | Syntheses and properties of tertiary peptide bond containing‐polypeptides, 3. Syntheses of monodisperse‐sequential polypeptides having the sequence of l‐leucyl‐l‐leucyl‐l‐leucyl‐l‐prolyl‐l‐prolylglycine | |
US3247180A (en) | Nonadecapeptides and intermediates for the preparation thereof | |
D'Alagni et al. | Sequence peptide polymers: Part 1. Poly (leucyl-leucyl-aspartic acid-β-benzyl ester)—synthesis and some conformational aspects in solutions | |
Borin et al. | Synthetic and binding studies on the calcium binding site I of bovine brain calmodulin: II. Synthesis and CD studies on the cyclic 20–31 sequence | |
CN114380887A (en) | Liquid phase fragment synthesis method of snake venom-like tripeptide | |
Fukushima | Secondary structural analysis in the solid state for analogous sequential polypeptides of glycine-rich sequence of spider dragline silk | |
US3247178A (en) | Synthesis of peptides containing alpha, omega-diamino acids protected by phthalyl and t-butyloxycarbonyl groups | |
JP2620727B2 (en) | Peptide lipid | |
Takahashi | The Synthesis of Regular Copolymers of Glycine and Alanine | |
CN114933634B (en) | Synthesis method of acetyl hexadecapeptide | |
JP3418693B2 (en) | D-galactopyranosyl-gluconic acid derivatives of poly-ε-substituted-L-lysine |