[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

SU1730144A1 - Method of viruses reproduction suppression - Google Patents

Method of viruses reproduction suppression Download PDF

Info

Publication number
SU1730144A1
SU1730144A1 SU894651517A SU4651517A SU1730144A1 SU 1730144 A1 SU1730144 A1 SU 1730144A1 SU 894651517 A SU894651517 A SU 894651517A SU 4651517 A SU4651517 A SU 4651517A SU 1730144 A1 SU1730144 A1 SU 1730144A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
antibodies
virus
modified
rabbit igg
specific
Prior art date
Application number
SU894651517A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Александр Валентинович Овчаренко
Александр Викторович Кабанов
Николай Сергеевич Мелик-Нубаров
Валерий Юльевич Алахов
Анатолий Ильич Банников
Тамара Павловна Лисок
Всеволод Иванович Киселев
Андрей Вадимович Левашов
Николай Георгиевич Чергенко
Елена Николаевна Клюшненкова
Петр Георгиевич Свешников
Олег Иванович Киселев
Евгений Сергеевич Северин
Рэм Викторович Петров
Виктор Александрович Кабанов
Сергей Алексеевич Аржаков
Елена Валерьевна Батракова
Original Assignee
Научный Центр По Разработке И Внедрению Современных Методов Молекулярной Диагностики
Мгу@ Им.М.В.Ломоносова
Всесоюзный научно-исследовательский институт гриппа
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научный Центр По Разработке И Внедрению Современных Методов Молекулярной Диагностики, Мгу@ Им.М.В.Ломоносова, Всесоюзный научно-исследовательский институт гриппа filed Critical Научный Центр По Разработке И Внедрению Современных Методов Молекулярной Диагностики
Priority to SU894651517A priority Critical patent/SU1730144A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1730144A1 publication Critical patent/SU1730144A1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Использование: медицинска  биохими . Сущность изобретени : в способе подавлени  репродукции вирусов в качестве противовирусных агентов используют антитела с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот. При этом эффективность подавлени  репродукции вирусов составл ет 1,5-2 пор дка. Выход противовирусных агентов составл ет 90-100% от исходных антител, препараты стабильны в течение года. 3 табл. сл сUse: medical biochemistry. Summary of the Invention: In the method for suppressing the reproduction of viruses, antibodies with covalently fatty acid residues attached to them are used as antiviral agents. At the same time, the effectiveness of suppressing the reproduction of viruses is 1.5-2 times. The yield of antiviral agents is 90-100% of the original antibodies, the preparations are stable for a year. 3 tab. cl

Description

Изобретение относитс  к медицинской биохимии и касаетс  способа подавлени  репродукции вируса антителами, специфическими к антигенным детерминантам этого вируса. Способ открывает новые перспективы в медицине, в частности в области создани  противовирусной терапии а также в фундаментальных исследовани х: изучени  механизмов вирусной репликации, действи  компонентов иммунной системы и т.д.This invention relates to medical biochemistry and concerns a method for suppressing viral reproduction with antibodies specific to antigenic determinants of this virus. The method opens new perspectives in medicine, in particular in the field of antiviral therapy as well as in basic research: the study of the mechanisms of viral replication, the action of components of the immune system, etc.

Известен способ дл  подавлени  вирусной активности с помощью антител, специфических к антигенным детерминантам вируса.A known method for suppressing viral activity with antibodies specific to antigenic determinants of a virus.

Однако вследствие непроницаемости клеточных мембран дл  антител последние не могут взаимодействовать с внутриклеточными вирусными частицами и, следовательно , не способны оказывать вли ние на репродукцию вируса, генактивиру  только внеклеточные вирусные частицы.However, due to the impermeability of cell membranes for antibodies, the latter cannot interact with intracellular viral particles and, therefore, are not capable of influencing the reproduction of the virus, only activating extracellular viral particles.

Наиболее близким к предлагаемому по сущности и достигаемому эффекту  вл етс  способ подавлени  репродукции вируса с помощью антител путем воздействи  на зараженные вирусом клетки антителами, специфическими к антигенным детерминантам этого вируса, включенными в липосомы, поскольку липосомы могут обеспечивать доставку антител внутрь клетки. Культуру клеток ML инкубируют с липосомами из сфингомиелина, холестерина и стеарилами- на, содержащими иммуноглобулины G(lgG) с высоким титром к вирусу Коксаки А-21, и заражают этим вирусом. Через двое суток определ ют инфекционную активность образовавшегос  вируса. Дл  клеток, инкубированных с липосомами, наблюдают 23-74%-ное снижение инфекционной активности по сравнению с клетками, зараженными вирусом, но не инкубированными с липосомами.The closest to the proposed and achieved effect is a method of suppressing viral reproduction with antibodies by exposing virus-infected cells to antibodies specific for the antigenic determinants of the virus incorporated into the liposomes, since liposomes can ensure the delivery of antibodies into the cell. ML cell culture is incubated with sphingomyelin, cholesterol, and stearylamine liposomes containing immunoglobulins G (lgG) with a high titer to Coxsackie A-21 virus and infect with this virus. After two days, the infectious activity of the resulting virus is determined. For cells incubated with liposomes, a 23-74% decrease in infectious activity is observed compared to cells infected with a virus but not incubated with liposomes.

VIVI

CJCJ

оabout

ЈJ

ьs

Недостатками известного способа  вл ютс  низка  эффективность противовирусного действи , а также сложность процедуры получени  липосом, содержащих антитела, и низка  эффективность включени  антител в липосомы, что приводит к значительным потер м антител при приготовлении противовирусного препарата , Кроме того способ характеризуетс  низкой стабильностью липосом, затрудн ющей длительное хранение противовирусного препарата.The disadvantages of this method are the low efficiency of the antiviral effect, as well as the complexity of the procedure for obtaining liposomes containing antibodies, and the low efficiency of incorporation of antibodies into liposomes, which leads to a significant loss of antibodies in the preparation of an antiviral drug. long-term storage of antiviral drug.

Цель изобретени  - повышение противовирусного действи  и упрощение способа ,The purpose of the invention is to increase the antiviral effect and simplify the method

Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу в качестве противовирусных агентов используют специфические к антигенным детерминантам вируса антитела с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот.The goal is achieved in that according to the method specific antigenic determinants of a virus with covalently attached fatty acid residues are used as antiviral agents.

Эффективность способа доказана на примерах подавлени  репродукции модельных вирусов, а именно вирусов гриппа различных серотипов и респира- торно-синтициального вируса. При действии на зараженные вирусом клетки антитела, специфичные к антигенным детерминантам этого вируса, с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот обеспечивают значительное подавление (на 1,5-2 пор дка, см. табл. 1-3) репродукции вируса.The effectiveness of the method is proved by examples of suppressing the reproduction of model viruses, namely, influenza viruses of various serotypes and respiratory syncytial virus. When exposed to virus-infected cells, antibodies specific to the antigenic determinants of this virus, with fatty acid residues covalently attached to them, provide a significant suppression (by 1.5-2 times, see Tables 1-3) of virus reproduction.

В качестве антител можно использовать иммуноглобулины различных классов и их суммарные фракции. В качестве модифицирующих антител реагентов можно использовать различные липиды - производные синтетических и природных жирных кислот.As antibodies, you can use immunoglobulins of various classes and their total fractions. As modifying antibodies reagents can use various lipids - derivatives of synthetic and natural fatty acids.

П р и м е р 1. Получение антител, моди- фицированных остатками жирных кислот.PRI me R 1. Production of antibodies modified by fatty acid residues.

К 10 нм 0,1 М раствора натриевой соли ди-2-этилгексилового эфира сульфо нтар- ной кислоты в октане добавл ют 450 мкл 1 мМ раствора антител в 0,1 М боратном бу- фере, рН 9,5. Систему интенсивно перемешивают в течение 1-2 мин до по влени  оптической прозрачности, а затем добавл ют к ней 450 мкл 5 мМ раствора хлорангид- рида или N-оксисукцинимидного эфира жирной кислоты (стеариновой или пальмитиновой , или миристиновой и др.) в октане. Через 2 ч белок осаждают из реакционной системы на холоде (0°С) 30 мл ацетона. Выпавший осадок отдел ют и промывают 4-5 раз 30 мл холодного (4°С) ацетона.To 10 nm of a 0.1 M solution of sodium salt of sulfo-succinic acid di-2-ethylhexyl ester in octane, 450 µl of 1 mM antibody solution in 0.1 M borate buffer, pH 9.5, are added. The system is vigorously stirred for 1-2 minutes until the appearance of optical transparency, and then 450 µl of a 5 mM solution of the acid chloride or N-oxysuccinimide fatty acid ester (stearic or palmitic or myristic, etc.) in octane is added to it. After 2 h, the protein is precipitated from the reaction system in the cold (0 ° C) with 30 ml of acetone. The precipitation is separated and washed 4-5 times with 30 ml of cold (4 ° C) acetone.

Остаток ацетона удал ют на роторном испарителе.The acetone residue is removed on a rotary evaporator.

Модифицированные антитела фракционируют гидрофобной хроматографией наModified antibodies are fractionated by hydrophobic chromatography on

фенил-сефарозе и определ ют выход модифицированного белка. Степень модификации иммуноглобулинов определ ют, использу  дл  модификации радиоактивно меченные жирные кислоты.phenyl-sepharose and determine the yield of the modified protein. The degree of modification of immunoglobulins is determined using radioactively labeled fatty acids for modification.

Аффинность антител определ ют методом твердофазного иммуноферментного анализа и методом радиоиммуноанализа.The affinity of antibodies is determined by ELISA and radioimmunoassay.

Модифицированные антитела хран т в сухом состо нии при пониженной темпера- туре(-10--(-1ё)°С).Modified antibodies are stored in a dry state at a low temperature (-10 - (- 1 ° C) ° C).

Выход Кодифицированных антител по белку составл ет 95-100%. Модифицированные антитела содержат 1 остаток жирной кислоты на молекулу белка. Они сохран ют 80-100% специфической активности (аффинности) по сравнению с исходными (немодифицированными) антителами. При хранении в сухом состо нии в течение длительного времени (более года) активность модифицированных антител снижаетс  не более чем на 20%.The yield of codified antibodies per protein is 95-100%. Modified antibodies contain 1 fatty acid residue per protein molecule. They retain 80-100% of specific activity (affinity) compared to the original (unmodified) antibodies. When stored in a dry state for a long time (more than a year), the activity of the modified antibodies is reduced by no more than 20%.

П р м м е р 2, Репродукци  вируса гриппа (штам А//Чили, серотип H1N1) в пермйссив- ных клетках МДСК.PRI me R 2, Reproduction of the influenza virus (strain A // Chile, serotype H1N1) in the permissive cells of MDSC.

Монослой пермиссивных клеток МДСК заражают вирусом гриппа (штамм А/чили, серотип H1N1) со множественностью 1-10 бл шкообразующих единиц на 1 клетку. Через 3.5 ч после заражени  к клеткам добавл ют антитела (нормальные кроличьи IgG; нормальные кроличьи IgG, модифицированные остатками жирной кислоты; специфические кроличьи IgG против вируса гриппа серотипа H1N1; специфические кроличьи IgG против вируса гриппа серотипа H1N1, модифицированные остатками жирной кислоты ) в концентрации, равной их титру в ре акции торможени  гемагглютинации. Через 8,5 ч после заражени  клетки промывают 2 раза 2-кратным объемом среды, в течение 1 ч выдерживают с 2-кратным объемом среды, промывают 5-кратным объемом С|Ьеды и добавл ют к ним свежую среду, не содержащую антител. | Через 24 ч после заражени  отбирают культуральную среду, осаждают клетки и кле- тбчныйдебрис2-кратным центрифугированием при 8000 об/мин в течение 20 мин. В супернатанте определ ют инфекционную активность в эмбриональныхинфекционныхдо- (ЭИДзд/мл) и гемагглютинирующую активность в реакции гемагглютинации с 0,7:% куриными эритроцитами (ГАЕ/мл),A monolayer of permissive MDSK cells is infected with an influenza virus (strain A / chili, serotype H1N1) with a multiplicity of 1-10 plaque-forming units per cell. After 3.5 h after infection, antibodies (normal rabbit IgG; normal rabbit IgG modified with fatty acid residues; specific rabbit IgG against H1N1 serotype influenza virus; specific rabbit H1N1 influenza virus modified with fatty acid residues) were added to the cells, equal to their titer in the hemagglutination inhibition reaction. 8.5 hours after infection, the cells are washed 2 times with a 2-fold volume of medium, incubated for 2 hours with a 2-fold volume of medium, washed with a 5-fold volume of C | Leda, and fresh medium containing no antibodies is added to them. | After 24 h after infection, the culture medium is removed, the cells are precipitated and the cells are detrised by 2-fold by centrifugation at 8000 rpm for 20 minutes. In the supernatant, infectious activity in embryonic infectious diseases (EIDs / ml) and hemagglutinating activity in the hemagglutination reaction with 0.7:% chicken erythrocytes (GAU / ml) are determined,

Результаты приведены в табл.1.The results are shown in table 1.

Пример 3. Репродукци  вируса гриппа (штамм А/Техас, серотип H3N2) в пермиссивных клетках МДСК.Example 3: Reproduction of influenza virus (strain A / Texas, serotype H3N2) in permissive MDSC cells.

То же, что в примере 2, но используют вирусы гриппа (штамм А/Техас, серотипSame as in example 2, but using influenza viruses (strain A / Texas, serotype

H3N2) и антитела, специфические к вирусу гриппа серотипа H3N2.H3N2) and antibodies specific to the H3N2 serotype influenza virus.

Результаты приведены в табл.2.The results are shown in table 2.

П р и м е р 4. Репродукци  PC-вируса (штамма Long) в пермиссивных клетках Hela.PRI me R 4. Reproduction of PC virus (Long strain) in Hela permissive cells.

Монослой пермиссивных клеток Hela заражают респираторно-синтициальным вирусом (PC-вирусом) (штамм Long) со множественностью 1-10 цитопатических еди- ниц (ЦПДбо) на 1 клетку. Через 6 ч после заражени  к клеткам добавл ют антитела (нормальные кроличьи IgG; нормальные кроличьи IgG, модифицированные остатками жирной кислоты; специфические кроличьи IgG против PC-вируса; специфические кроличьи IgG против PC-вируса, модифицированные остатками жирной кислоты ) в концентрации, равной их титру в реакции св зывани  комплемента с очи- щенным вирусом. Через 13 ч после заражени  клетки промывают (как описано в примере 2) и добавл ют к ним свежую среду, не содержащую антител.A monolayer of permissive Hela cells infect with a respiratory syncytial virus (PC virus) (Long strain) with a multiplicity of 1-10 cytopathic units (CPUs) per cell. 6 h after infection, antibodies (normal rabbit IgG; normal rabbit IgG modified with fatty acid residues; specific rabbit IgG against PC virus; specific rabbit IgG against PC virus modified with residues of fatty acid) are added to the cells at a concentration equal to the titer in the reaction of complement fixation with the purified virus. Thirteen hours after infection, the cells are washed (as described in Example 2) and fresh medium containing no antibodies is added to them.

Через 28 ч после заражени  отбирают культуральную среду, осаждают клетки и клеточный дербис 2-кратным центрифугированием при 2000 об/мин в течение 25 мин. В супернатанте определ ют инфекционную активность по циопатическому дей- ствию на культуре клеток Hela (ЦПДбо/мл).After 28 h after infection, the culture medium is removed, the cells and cell derbies are precipitated by 2-fold centrifugation at 2000 rpm for 25 minutes. In the supernatant, infectious activity is determined by the cytopathic effect on the culture of Hela cells (CpdbO / ml).

Результаты приведены в табл.3.The results are shown in table 3.

Как показано в примерах (табл.1-3), подавление репродукции вируса путем воздействи  на зараженные вирусом клетки антителами, специфическими к антигеннымAs shown in the examples (Tables 1-3), the reproduction of the virus is suppressed by exposing virus-infected cells to antibodies specific for antigenic

детерминантам этого вируса, составл ет 1,5-2 пор дка, в то врем , как в известном способе подавление не превышает 1 пор дка . Сопоставление данных, приведенных в примерах и известном способе, свидетельствует о том, что подавление репродукции вируса требует по данному способу по крайней мере на 2 пор дка меньших концентраций антител.the determinants of this virus are 1.5–2 orders of magnitude, while in the known method the suppression does not exceed 1 order. Comparison of the data given in the examples and the known method suggests that the suppression of the reproduction of the virus requires in this method at least 2 orders of lower concentrations of antibodies.

Claims (1)

При получении противовирусных агентов путем модификации специфических к антигенным детерминантам вируса антител остатками жирных кислот выход модифицированных антител составл ет 95-100% в то врем  как в известном способе не более 10% вз тых антител удаетс  включить в ли- посомы. Кроме того, антитела с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот можно хранить в сухом состо нии в течение длительного времени (более 1 года) без значительной потери специфической активности , в то врем  как противовирусные агенты, используемые в известном способе (антитела, включенные в липосомы) нельз  хранить более нескольких дней. Формула изобретени  Способ подавлени  репродукции вирусов путем воздействи  на зараженные вирусом клетки иммобилизованными антителами , специфическими к антигенным детерминантам этого вируса, отличающийс  тем, что, с целью повышени  противовирусного действи  и упрощени  способа, используют антитела с ковалентно присоединенными к ним 1-2 остатками жирных кислот.When antiviral agents are obtained by modifying antibodies specific for antigenic determinants of the virus with fatty acid residues, the yield of modified antibodies is 95-100%, while in a known method no more than 10% of the antibodies taken are included in the liposomes. In addition, antibodies with fatty acid residues covalently attached to them can be stored in a dry state for a long time (more than 1 year) without significant loss of specific activity, while antiviral agents used in a known method (antibodies included in liposomes ) cannot be stored for more than a few days. DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Method of suppressing viral reproduction by exposing virus-infected cells to immobilized antibodies specific for antigenic determinants of the virus, characterized in that, in order to increase the antiviral effect and simplify the method, antibodies with 1-2 fatty acid residues are covalently attached to them. Таблица 1Table 1 Репродукци  вируса гриппа (штамм А/Чили, серотип H1N1) в пермиссивных клетках МДСКReproduction of influenza virus (strain A / Chile, serotype H1N1) in permissive MDSC cells (пример 2)(example 2) Услови  экспериментаExperimental conditions Инфекционна  активность через 24 ч. Ig (ЭИДэо/мл)Infectious activity after 24 hours. Ig (EIDaO / ml) Зараженные клетки не инкубируют с антителами Зараженные клеткиInfected cells do not incubate with antibodies. Infected cells. инкубируют с: нормальными IgG кролика нормальными IgG кролика, модифицированными остаткамиincubated with: normal rabbit IgG normal rabbit IgG modified with residues стеариновой кислоты нормальными IgG кролика, модифицированными остаткамиstearic acid normal rabbit IgG, modified residues пальмитиновой кислотыpalmitic acid специфическими IgG кроликаrabbit IgG specific против вируса гриппа ееротинаagainst eerotin flu virus H1N1H1N1 Гемагглютинирующа  актив- ность через 24 ч (ГАЕ/мл)Hemagglutinating activity after 24 h (GAU / ml) 5.35.3 8 8 8 88 8 8 8 специфическими IgG кролика против вируса гриппа сероти- на H1N1, модифицированными остатками стеариновойrabbit IgGs against the H1N1 serotin influenza virus, modified with residues of stearin кислотыacids специфическими IgG кролика против вируса гриппа сероти- на H1N1, модифицированными остатками пальмитиновой кислотыspecific rabbit IgGs against serotin H1N1 influenza virus modified by palmitic acid residues Таблица 2table 2 Репродукци  вируса гриппа (штамм А/Техас, серотип H3N2) в пермиссивных клеткахReproduction of influenza virus (strain A / Texas, serotype H3N2) in permissive cells МДСК (пример 3).MDSC (example 3). Услови  экспериментаExperimental conditions Инфекционна  активность через 24 ч. Ig (ЭИДзо/мл)Infectious activity after 24 hours. Ig (EIDzo / ml) Зараженные клетки не инкубируют с антителами Зараженные клеткиInfected cells do not incubate with antibodies. Infected cells. инкубируют с:. нормальными IgG кролика нормальными IgG кролика, модифицированными остаткамиincubated with: normal rabbit IgG normal rabbit modified IgG residues стеариновой кислоты нормальными IgG кролика, модифицированными остаткамиstearic acid normal rabbit IgG, modified residues миристиновой кислотыmyristic acid специфическими IgG кроликаrabbit IgG specific против вируса гриппа серотинаagainst serotina flu virus H3N2H3N2 специфическими IgG кролика против вируса гриппа серотина H3N2, модифицированными остатками стеариновой кислоты специфическими IgG кролика против вируса гриппа серотина H3N2, модифицированными ос- татками миристиновой кислотыspecific rabbit IgG against the H3N2 serotin influenza virus modified by stearic acid residues specific rabbit IgG against the H3N2 serotin influenza virus modified by myristic acid residues Таблица 3 Репродукци  PC-вируса (штамм Long) в пермиссивных клетках Hela (пример 4)Table 3 Reproduction of PC virus (Long strain) in permissive Hela cells (Example 4) Услови  экспериментаExperimental conditions Зараженные клетки не инкубируютInfected cells do not incubate. с антителами Зараженные клетки инкубируют с:with antibodies Infected cells are incubated with: нормальными IgG кролика нормальными IgG кролика, модифицированными остатками стеариновой кислоты специфическими IgG кролика против РС-ви- русаnormal rabbit IgG normal rabbit IgG modified with residues of stearic acid specific rabbit IgG against PC-virus Продолжение табл. 1Continued table. one 3,53.5 3,53.5 Гемагглютинирующа  активность через 24 ч (ГАЕ/мл)Hemagglutination activity after 24 h (GAU / ml) 512 512 512 512 512512 512 512 512 512 128 128128,128 Инфекционна  активность через 28 ч, Ig (ЦПДво/мл)Infectious activity after 28 h, Ig (TsDPVO / ml) 5,4 5,5 5,5 5,35.4 5.5 5.5 5.3 Продолжение табл. 3Continued table. 3
SU894651517A 1989-02-24 1989-02-24 Method of viruses reproduction suppression SU1730144A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894651517A SU1730144A1 (en) 1989-02-24 1989-02-24 Method of viruses reproduction suppression

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894651517A SU1730144A1 (en) 1989-02-24 1989-02-24 Method of viruses reproduction suppression

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1730144A1 true SU1730144A1 (en) 1992-04-30

Family

ID=21429221

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894651517A SU1730144A1 (en) 1989-02-24 1989-02-24 Method of viruses reproduction suppression

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1730144A1 (en)

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7572441B2 (en) 2002-08-02 2009-08-11 Oleg Iliich Epshtein Media and method for treating pathological syndrome
US7582294B2 (en) 2002-08-02 2009-09-01 Oleg Oliich Epshtein Medicament for treating prostate diseases
US7700096B2 (en) 2002-08-02 2010-04-20 Oleg Iliich Epshtein Medicinal agent for treating erectile dysfunction
US7815904B2 (en) 2000-06-20 2010-10-19 Oleg Iliich Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
RU2443431C1 (en) * 2010-11-17 2012-02-27 Николай Александрович Контаров Method for preventing and treating influenza in pre-epidemic and epidemic environment and related drug preparation for implementation thereof
US8637030B2 (en) 2010-07-15 2014-01-28 Oleg I. Epshtein Combination pharmaceutical composition and methods of treating functional diseases or conditions of gastrointestinal tract
US9308275B2 (en) 2010-07-15 2016-04-12 Oleg Iliich Epshtein Method of increasing the effect of an activated-potentiated form of an antibody

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Magee N.E., Miller O.V. Nature, 1972, v.235, p.339-341. *

Cited By (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8871203B2 (en) 2000-06-20 2014-10-28 Oleg I. Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
US9382332B2 (en) 2000-06-20 2016-07-05 Oleg Iliich Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
US9303090B2 (en) 2000-06-20 2016-04-05 Oleg Iliich Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
US7815904B2 (en) 2000-06-20 2010-10-19 Oleg Iliich Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
US9228024B2 (en) 2000-06-20 2016-01-05 Oleg Iliich Epshtein Method of treating hypertension disorder and a pharmaceutical agent
US9200081B2 (en) 2000-06-20 2015-12-01 Oleg Iliich Epshtein Method for administering homeopathically potentiated antibodies against mediator of inflammation
US8894995B2 (en) 2000-06-20 2014-11-25 Oleg Iliich Epshtein Method of treating a disorder or condition of viral etiology
US8535664B2 (en) 2000-06-20 2013-09-17 Oleg I. Epshtein Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent
US7923009B2 (en) 2002-08-02 2011-04-12 Oleg Iliich Epshtein Medicinal agent and method for curing prostate diseases
US8815245B2 (en) 2002-08-02 2014-08-26 Oleg I. Epshtein Method of treating viral diseases
US8066992B2 (en) 2002-08-02 2011-11-29 Oleg Iliich Epshtein Medicament and a method of treating a pathological syndrome
US7572441B2 (en) 2002-08-02 2009-08-11 Oleg Iliich Epshtein Media and method for treating pathological syndrome
US7700096B2 (en) 2002-08-02 2010-04-20 Oleg Iliich Epshtein Medicinal agent for treating erectile dysfunction
US7582294B2 (en) 2002-08-02 2009-09-01 Oleg Oliich Epshtein Medicament for treating prostate diseases
US8637030B2 (en) 2010-07-15 2014-01-28 Oleg I. Epshtein Combination pharmaceutical composition and methods of treating functional diseases or conditions of gastrointestinal tract
US9308275B2 (en) 2010-07-15 2016-04-12 Oleg Iliich Epshtein Method of increasing the effect of an activated-potentiated form of an antibody
RU2443431C1 (en) * 2010-11-17 2012-02-27 Николай Александрович Контаров Method for preventing and treating influenza in pre-epidemic and epidemic environment and related drug preparation for implementation thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DIRINGER et al. Towards purification of the scrapie agent
Allen et al. A simple method for the preparation of an affinity absorbent for soybean agglutinin using galactosamine and CH-Sepharose
Hierholzer et al. Protein composition of coronavirus OC 43
Lerner et al. Hemagglutination with reoviruses
US4704274A (en) Method for the purification of LPF-HA
Allan et al. Isolation and composition of human thymocyte plasma membrane
JPS6147185A (en) Method of purifying japanese b encephalitis virus
Philipson et al. On the role of virus sulfhydryl groups in the attachment of enteroviruses to erythrocytes
SU1730144A1 (en) Method of viruses reproduction suppression
AU641711B2 (en) Process for purification of a 69 000 dalton antigenetic protein from bordetella pertussis
Lief et al. Studies on the soluble antigen of influenza virus: III. The decreased incorporation of S antigen into elementary bodies of increasing incompleteness
US5304636A (en) Receptor for the human rhinovirus minor group
JPS61145125A (en) Preparation of hepatitis-b-virus non-infective high purity gamma globulin
AU619177B2 (en) Receptor of the small rhinovirus receptor group
US5603932A (en) Receptor of the minor human rhinovirus receptor group
IL23187A (en) Production of vaccines
Barron et al. Studies on hemagglutination by Chlamydia
Finkelstein et al. pH Stability on the Virus of Equine Encephalomyelitis (Eastern Strain) under Various Conditions
Tyrrell et al. DISRUPTION OF INFLUENZA VIRUS: Properties of Degradation Products of the Virus Particle
Mayron Isolation of neuraminidase from influenza A virus
Matsumoto et al. Effect of egg passage on the reaction between HVJ (hemagglutinating virus of Japan) and chicken erythrocytes
Ziyavitdinov et al. Development of a method for the complex isolation of physiologically active components from bee venom
Borecky et al. Comparative study of the interaction of polyoma and other hemagglutinating viruses with an isolated bovine mucoprotein
White The position of Taylor's 1233 strain of virus in the human red cell receptor gradient
SU649435A1 (en) Method of preparing erythrocyte