SU1730144A1 - Method of viruses reproduction suppression - Google Patents
Method of viruses reproduction suppression Download PDFInfo
- Publication number
- SU1730144A1 SU1730144A1 SU894651517A SU4651517A SU1730144A1 SU 1730144 A1 SU1730144 A1 SU 1730144A1 SU 894651517 A SU894651517 A SU 894651517A SU 4651517 A SU4651517 A SU 4651517A SU 1730144 A1 SU1730144 A1 SU 1730144A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- antibodies
- virus
- modified
- rabbit igg
- specific
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
Использование: медицинска биохими . Сущность изобретени : в способе подавлени репродукции вирусов в качестве противовирусных агентов используют антитела с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот. При этом эффективность подавлени репродукции вирусов составл ет 1,5-2 пор дка. Выход противовирусных агентов составл ет 90-100% от исходных антител, препараты стабильны в течение года. 3 табл. сл сUse: medical biochemistry. Summary of the Invention: In the method for suppressing the reproduction of viruses, antibodies with covalently fatty acid residues attached to them are used as antiviral agents. At the same time, the effectiveness of suppressing the reproduction of viruses is 1.5-2 times. The yield of antiviral agents is 90-100% of the original antibodies, the preparations are stable for a year. 3 tab. cl
Description
Изобретение относитс к медицинской биохимии и касаетс способа подавлени репродукции вируса антителами, специфическими к антигенным детерминантам этого вируса. Способ открывает новые перспективы в медицине, в частности в области создани противовирусной терапии а также в фундаментальных исследовани х: изучени механизмов вирусной репликации, действи компонентов иммунной системы и т.д.This invention relates to medical biochemistry and concerns a method for suppressing viral reproduction with antibodies specific to antigenic determinants of this virus. The method opens new perspectives in medicine, in particular in the field of antiviral therapy as well as in basic research: the study of the mechanisms of viral replication, the action of components of the immune system, etc.
Известен способ дл подавлени вирусной активности с помощью антител, специфических к антигенным детерминантам вируса.A known method for suppressing viral activity with antibodies specific to antigenic determinants of a virus.
Однако вследствие непроницаемости клеточных мембран дл антител последние не могут взаимодействовать с внутриклеточными вирусными частицами и, следовательно , не способны оказывать вли ние на репродукцию вируса, генактивиру только внеклеточные вирусные частицы.However, due to the impermeability of cell membranes for antibodies, the latter cannot interact with intracellular viral particles and, therefore, are not capable of influencing the reproduction of the virus, only activating extracellular viral particles.
Наиболее близким к предлагаемому по сущности и достигаемому эффекту вл етс способ подавлени репродукции вируса с помощью антител путем воздействи на зараженные вирусом клетки антителами, специфическими к антигенным детерминантам этого вируса, включенными в липосомы, поскольку липосомы могут обеспечивать доставку антител внутрь клетки. Культуру клеток ML инкубируют с липосомами из сфингомиелина, холестерина и стеарилами- на, содержащими иммуноглобулины G(lgG) с высоким титром к вирусу Коксаки А-21, и заражают этим вирусом. Через двое суток определ ют инфекционную активность образовавшегос вируса. Дл клеток, инкубированных с липосомами, наблюдают 23-74%-ное снижение инфекционной активности по сравнению с клетками, зараженными вирусом, но не инкубированными с липосомами.The closest to the proposed and achieved effect is a method of suppressing viral reproduction with antibodies by exposing virus-infected cells to antibodies specific for the antigenic determinants of the virus incorporated into the liposomes, since liposomes can ensure the delivery of antibodies into the cell. ML cell culture is incubated with sphingomyelin, cholesterol, and stearylamine liposomes containing immunoglobulins G (lgG) with a high titer to Coxsackie A-21 virus and infect with this virus. After two days, the infectious activity of the resulting virus is determined. For cells incubated with liposomes, a 23-74% decrease in infectious activity is observed compared to cells infected with a virus but not incubated with liposomes.
VIVI
CJCJ
оabout
ЈJ
ьs
Недостатками известного способа вл ютс низка эффективность противовирусного действи , а также сложность процедуры получени липосом, содержащих антитела, и низка эффективность включени антител в липосомы, что приводит к значительным потер м антител при приготовлении противовирусного препарата , Кроме того способ характеризуетс низкой стабильностью липосом, затрудн ющей длительное хранение противовирусного препарата.The disadvantages of this method are the low efficiency of the antiviral effect, as well as the complexity of the procedure for obtaining liposomes containing antibodies, and the low efficiency of incorporation of antibodies into liposomes, which leads to a significant loss of antibodies in the preparation of an antiviral drug. long-term storage of antiviral drug.
Цель изобретени - повышение противовирусного действи и упрощение способа ,The purpose of the invention is to increase the antiviral effect and simplify the method
Поставленна цель достигаетс тем, что согласно способу в качестве противовирусных агентов используют специфические к антигенным детерминантам вируса антитела с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот.The goal is achieved in that according to the method specific antigenic determinants of a virus with covalently attached fatty acid residues are used as antiviral agents.
Эффективность способа доказана на примерах подавлени репродукции модельных вирусов, а именно вирусов гриппа различных серотипов и респира- торно-синтициального вируса. При действии на зараженные вирусом клетки антитела, специфичные к антигенным детерминантам этого вируса, с ковалентно присоединенными к ним остатками жирных кислот обеспечивают значительное подавление (на 1,5-2 пор дка, см. табл. 1-3) репродукции вируса.The effectiveness of the method is proved by examples of suppressing the reproduction of model viruses, namely, influenza viruses of various serotypes and respiratory syncytial virus. When exposed to virus-infected cells, antibodies specific to the antigenic determinants of this virus, with fatty acid residues covalently attached to them, provide a significant suppression (by 1.5-2 times, see Tables 1-3) of virus reproduction.
В качестве антител можно использовать иммуноглобулины различных классов и их суммарные фракции. В качестве модифицирующих антител реагентов можно использовать различные липиды - производные синтетических и природных жирных кислот.As antibodies, you can use immunoglobulins of various classes and their total fractions. As modifying antibodies reagents can use various lipids - derivatives of synthetic and natural fatty acids.
П р и м е р 1. Получение антител, моди- фицированных остатками жирных кислот.PRI me R 1. Production of antibodies modified by fatty acid residues.
К 10 нм 0,1 М раствора натриевой соли ди-2-этилгексилового эфира сульфо нтар- ной кислоты в октане добавл ют 450 мкл 1 мМ раствора антител в 0,1 М боратном бу- фере, рН 9,5. Систему интенсивно перемешивают в течение 1-2 мин до по влени оптической прозрачности, а затем добавл ют к ней 450 мкл 5 мМ раствора хлорангид- рида или N-оксисукцинимидного эфира жирной кислоты (стеариновой или пальмитиновой , или миристиновой и др.) в октане. Через 2 ч белок осаждают из реакционной системы на холоде (0°С) 30 мл ацетона. Выпавший осадок отдел ют и промывают 4-5 раз 30 мл холодного (4°С) ацетона.To 10 nm of a 0.1 M solution of sodium salt of sulfo-succinic acid di-2-ethylhexyl ester in octane, 450 µl of 1 mM antibody solution in 0.1 M borate buffer, pH 9.5, are added. The system is vigorously stirred for 1-2 minutes until the appearance of optical transparency, and then 450 µl of a 5 mM solution of the acid chloride or N-oxysuccinimide fatty acid ester (stearic or palmitic or myristic, etc.) in octane is added to it. After 2 h, the protein is precipitated from the reaction system in the cold (0 ° C) with 30 ml of acetone. The precipitation is separated and washed 4-5 times with 30 ml of cold (4 ° C) acetone.
Остаток ацетона удал ют на роторном испарителе.The acetone residue is removed on a rotary evaporator.
Модифицированные антитела фракционируют гидрофобной хроматографией наModified antibodies are fractionated by hydrophobic chromatography on
фенил-сефарозе и определ ют выход модифицированного белка. Степень модификации иммуноглобулинов определ ют, использу дл модификации радиоактивно меченные жирные кислоты.phenyl-sepharose and determine the yield of the modified protein. The degree of modification of immunoglobulins is determined using radioactively labeled fatty acids for modification.
Аффинность антител определ ют методом твердофазного иммуноферментного анализа и методом радиоиммуноанализа.The affinity of antibodies is determined by ELISA and radioimmunoassay.
Модифицированные антитела хран т в сухом состо нии при пониженной темпера- туре(-10--(-1ё)°С).Modified antibodies are stored in a dry state at a low temperature (-10 - (- 1 ° C) ° C).
Выход Кодифицированных антител по белку составл ет 95-100%. Модифицированные антитела содержат 1 остаток жирной кислоты на молекулу белка. Они сохран ют 80-100% специфической активности (аффинности) по сравнению с исходными (немодифицированными) антителами. При хранении в сухом состо нии в течение длительного времени (более года) активность модифицированных антител снижаетс не более чем на 20%.The yield of codified antibodies per protein is 95-100%. Modified antibodies contain 1 fatty acid residue per protein molecule. They retain 80-100% of specific activity (affinity) compared to the original (unmodified) antibodies. When stored in a dry state for a long time (more than a year), the activity of the modified antibodies is reduced by no more than 20%.
П р м м е р 2, Репродукци вируса гриппа (штам А//Чили, серотип H1N1) в пермйссив- ных клетках МДСК.PRI me R 2, Reproduction of the influenza virus (strain A // Chile, serotype H1N1) in the permissive cells of MDSC.
Монослой пермиссивных клеток МДСК заражают вирусом гриппа (штамм А/чили, серотип H1N1) со множественностью 1-10 бл шкообразующих единиц на 1 клетку. Через 3.5 ч после заражени к клеткам добавл ют антитела (нормальные кроличьи IgG; нормальные кроличьи IgG, модифицированные остатками жирной кислоты; специфические кроличьи IgG против вируса гриппа серотипа H1N1; специфические кроличьи IgG против вируса гриппа серотипа H1N1, модифицированные остатками жирной кислоты ) в концентрации, равной их титру в ре акции торможени гемагглютинации. Через 8,5 ч после заражени клетки промывают 2 раза 2-кратным объемом среды, в течение 1 ч выдерживают с 2-кратным объемом среды, промывают 5-кратным объемом С|Ьеды и добавл ют к ним свежую среду, не содержащую антител. | Через 24 ч после заражени отбирают культуральную среду, осаждают клетки и кле- тбчныйдебрис2-кратным центрифугированием при 8000 об/мин в течение 20 мин. В супернатанте определ ют инфекционную активность в эмбриональныхинфекционныхдо- (ЭИДзд/мл) и гемагглютинирующую активность в реакции гемагглютинации с 0,7:% куриными эритроцитами (ГАЕ/мл),A monolayer of permissive MDSK cells is infected with an influenza virus (strain A / chili, serotype H1N1) with a multiplicity of 1-10 plaque-forming units per cell. After 3.5 h after infection, antibodies (normal rabbit IgG; normal rabbit IgG modified with fatty acid residues; specific rabbit IgG against H1N1 serotype influenza virus; specific rabbit H1N1 influenza virus modified with fatty acid residues) were added to the cells, equal to their titer in the hemagglutination inhibition reaction. 8.5 hours after infection, the cells are washed 2 times with a 2-fold volume of medium, incubated for 2 hours with a 2-fold volume of medium, washed with a 5-fold volume of C | Leda, and fresh medium containing no antibodies is added to them. | After 24 h after infection, the culture medium is removed, the cells are precipitated and the cells are detrised by 2-fold by centrifugation at 8000 rpm for 20 minutes. In the supernatant, infectious activity in embryonic infectious diseases (EIDs / ml) and hemagglutinating activity in the hemagglutination reaction with 0.7:% chicken erythrocytes (GAU / ml) are determined,
Результаты приведены в табл.1.The results are shown in table 1.
Пример 3. Репродукци вируса гриппа (штамм А/Техас, серотип H3N2) в пермиссивных клетках МДСК.Example 3: Reproduction of influenza virus (strain A / Texas, serotype H3N2) in permissive MDSC cells.
То же, что в примере 2, но используют вирусы гриппа (штамм А/Техас, серотипSame as in example 2, but using influenza viruses (strain A / Texas, serotype
H3N2) и антитела, специфические к вирусу гриппа серотипа H3N2.H3N2) and antibodies specific to the H3N2 serotype influenza virus.
Результаты приведены в табл.2.The results are shown in table 2.
П р и м е р 4. Репродукци PC-вируса (штамма Long) в пермиссивных клетках Hela.PRI me R 4. Reproduction of PC virus (Long strain) in Hela permissive cells.
Монослой пермиссивных клеток Hela заражают респираторно-синтициальным вирусом (PC-вирусом) (штамм Long) со множественностью 1-10 цитопатических еди- ниц (ЦПДбо) на 1 клетку. Через 6 ч после заражени к клеткам добавл ют антитела (нормальные кроличьи IgG; нормальные кроличьи IgG, модифицированные остатками жирной кислоты; специфические кроличьи IgG против PC-вируса; специфические кроличьи IgG против PC-вируса, модифицированные остатками жирной кислоты ) в концентрации, равной их титру в реакции св зывани комплемента с очи- щенным вирусом. Через 13 ч после заражени клетки промывают (как описано в примере 2) и добавл ют к ним свежую среду, не содержащую антител.A monolayer of permissive Hela cells infect with a respiratory syncytial virus (PC virus) (Long strain) with a multiplicity of 1-10 cytopathic units (CPUs) per cell. 6 h after infection, antibodies (normal rabbit IgG; normal rabbit IgG modified with fatty acid residues; specific rabbit IgG against PC virus; specific rabbit IgG against PC virus modified with residues of fatty acid) are added to the cells at a concentration equal to the titer in the reaction of complement fixation with the purified virus. Thirteen hours after infection, the cells are washed (as described in Example 2) and fresh medium containing no antibodies is added to them.
Через 28 ч после заражени отбирают культуральную среду, осаждают клетки и клеточный дербис 2-кратным центрифугированием при 2000 об/мин в течение 25 мин. В супернатанте определ ют инфекционную активность по циопатическому дей- ствию на культуре клеток Hela (ЦПДбо/мл).After 28 h after infection, the culture medium is removed, the cells and cell derbies are precipitated by 2-fold centrifugation at 2000 rpm for 25 minutes. In the supernatant, infectious activity is determined by the cytopathic effect on the culture of Hela cells (CpdbO / ml).
Результаты приведены в табл.3.The results are shown in table 3.
Как показано в примерах (табл.1-3), подавление репродукции вируса путем воздействи на зараженные вирусом клетки антителами, специфическими к антигеннымAs shown in the examples (Tables 1-3), the reproduction of the virus is suppressed by exposing virus-infected cells to antibodies specific for antigenic
детерминантам этого вируса, составл ет 1,5-2 пор дка, в то врем , как в известном способе подавление не превышает 1 пор дка . Сопоставление данных, приведенных в примерах и известном способе, свидетельствует о том, что подавление репродукции вируса требует по данному способу по крайней мере на 2 пор дка меньших концентраций антител.the determinants of this virus are 1.5–2 orders of magnitude, while in the known method the suppression does not exceed 1 order. Comparison of the data given in the examples and the known method suggests that the suppression of the reproduction of the virus requires in this method at least 2 orders of lower concentrations of antibodies.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894651517A SU1730144A1 (en) | 1989-02-24 | 1989-02-24 | Method of viruses reproduction suppression |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU894651517A SU1730144A1 (en) | 1989-02-24 | 1989-02-24 | Method of viruses reproduction suppression |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1730144A1 true SU1730144A1 (en) | 1992-04-30 |
Family
ID=21429221
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU894651517A SU1730144A1 (en) | 1989-02-24 | 1989-02-24 | Method of viruses reproduction suppression |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1730144A1 (en) |
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7572441B2 (en) | 2002-08-02 | 2009-08-11 | Oleg Iliich Epshtein | Media and method for treating pathological syndrome |
US7582294B2 (en) | 2002-08-02 | 2009-09-01 | Oleg Oliich Epshtein | Medicament for treating prostate diseases |
US7700096B2 (en) | 2002-08-02 | 2010-04-20 | Oleg Iliich Epshtein | Medicinal agent for treating erectile dysfunction |
US7815904B2 (en) | 2000-06-20 | 2010-10-19 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
RU2443431C1 (en) * | 2010-11-17 | 2012-02-27 | Николай Александрович Контаров | Method for preventing and treating influenza in pre-epidemic and epidemic environment and related drug preparation for implementation thereof |
US8637030B2 (en) | 2010-07-15 | 2014-01-28 | Oleg I. Epshtein | Combination pharmaceutical composition and methods of treating functional diseases or conditions of gastrointestinal tract |
US9308275B2 (en) | 2010-07-15 | 2016-04-12 | Oleg Iliich Epshtein | Method of increasing the effect of an activated-potentiated form of an antibody |
-
1989
- 1989-02-24 SU SU894651517A patent/SU1730144A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Magee N.E., Miller O.V. Nature, 1972, v.235, p.339-341. * |
Cited By (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8871203B2 (en) | 2000-06-20 | 2014-10-28 | Oleg I. Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
US9382332B2 (en) | 2000-06-20 | 2016-07-05 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
US9303090B2 (en) | 2000-06-20 | 2016-04-05 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
US7815904B2 (en) | 2000-06-20 | 2010-10-19 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
US9228024B2 (en) | 2000-06-20 | 2016-01-05 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating hypertension disorder and a pharmaceutical agent |
US9200081B2 (en) | 2000-06-20 | 2015-12-01 | Oleg Iliich Epshtein | Method for administering homeopathically potentiated antibodies against mediator of inflammation |
US8894995B2 (en) | 2000-06-20 | 2014-11-25 | Oleg Iliich Epshtein | Method of treating a disorder or condition of viral etiology |
US8535664B2 (en) | 2000-06-20 | 2013-09-17 | Oleg I. Epshtein | Method of treating a pathological syndrome and a pharmaceutical agent |
US7923009B2 (en) | 2002-08-02 | 2011-04-12 | Oleg Iliich Epshtein | Medicinal agent and method for curing prostate diseases |
US8815245B2 (en) | 2002-08-02 | 2014-08-26 | Oleg I. Epshtein | Method of treating viral diseases |
US8066992B2 (en) | 2002-08-02 | 2011-11-29 | Oleg Iliich Epshtein | Medicament and a method of treating a pathological syndrome |
US7572441B2 (en) | 2002-08-02 | 2009-08-11 | Oleg Iliich Epshtein | Media and method for treating pathological syndrome |
US7700096B2 (en) | 2002-08-02 | 2010-04-20 | Oleg Iliich Epshtein | Medicinal agent for treating erectile dysfunction |
US7582294B2 (en) | 2002-08-02 | 2009-09-01 | Oleg Oliich Epshtein | Medicament for treating prostate diseases |
US8637030B2 (en) | 2010-07-15 | 2014-01-28 | Oleg I. Epshtein | Combination pharmaceutical composition and methods of treating functional diseases or conditions of gastrointestinal tract |
US9308275B2 (en) | 2010-07-15 | 2016-04-12 | Oleg Iliich Epshtein | Method of increasing the effect of an activated-potentiated form of an antibody |
RU2443431C1 (en) * | 2010-11-17 | 2012-02-27 | Николай Александрович Контаров | Method for preventing and treating influenza in pre-epidemic and epidemic environment and related drug preparation for implementation thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DIRINGER et al. | Towards purification of the scrapie agent | |
Allen et al. | A simple method for the preparation of an affinity absorbent for soybean agglutinin using galactosamine and CH-Sepharose | |
Hierholzer et al. | Protein composition of coronavirus OC 43 | |
Lerner et al. | Hemagglutination with reoviruses | |
US4704274A (en) | Method for the purification of LPF-HA | |
Allan et al. | Isolation and composition of human thymocyte plasma membrane | |
JPS6147185A (en) | Method of purifying japanese b encephalitis virus | |
Philipson et al. | On the role of virus sulfhydryl groups in the attachment of enteroviruses to erythrocytes | |
SU1730144A1 (en) | Method of viruses reproduction suppression | |
AU641711B2 (en) | Process for purification of a 69 000 dalton antigenetic protein from bordetella pertussis | |
Lief et al. | Studies on the soluble antigen of influenza virus: III. The decreased incorporation of S antigen into elementary bodies of increasing incompleteness | |
US5304636A (en) | Receptor for the human rhinovirus minor group | |
JPS61145125A (en) | Preparation of hepatitis-b-virus non-infective high purity gamma globulin | |
AU619177B2 (en) | Receptor of the small rhinovirus receptor group | |
US5603932A (en) | Receptor of the minor human rhinovirus receptor group | |
IL23187A (en) | Production of vaccines | |
Barron et al. | Studies on hemagglutination by Chlamydia | |
Finkelstein et al. | pH Stability on the Virus of Equine Encephalomyelitis (Eastern Strain) under Various Conditions | |
Tyrrell et al. | DISRUPTION OF INFLUENZA VIRUS: Properties of Degradation Products of the Virus Particle | |
Mayron | Isolation of neuraminidase from influenza A virus | |
Matsumoto et al. | Effect of egg passage on the reaction between HVJ (hemagglutinating virus of Japan) and chicken erythrocytes | |
Ziyavitdinov et al. | Development of a method for the complex isolation of physiologically active components from bee venom | |
Borecky et al. | Comparative study of the interaction of polyoma and other hemagglutinating viruses with an isolated bovine mucoprotein | |
White | The position of Taylor's 1233 strain of virus in the human red cell receptor gradient | |
SU649435A1 (en) | Method of preparing erythrocyte |