[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

SU1693056A1 - Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine - Google Patents

Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine Download PDF

Info

Publication number
SU1693056A1
SU1693056A1 SU894716354A SU4716354A SU1693056A1 SU 1693056 A1 SU1693056 A1 SU 1693056A1 SU 894716354 A SU894716354 A SU 894716354A SU 4716354 A SU4716354 A SU 4716354A SU 1693056 A1 SU1693056 A1 SU 1693056A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
strain
phenylalanine
producer
medium
bacillus subtilis
Prior art date
Application number
SU894716354A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Абрамовна Ямпольская
Галина Александровна Великжанина
Нелли Исааковна Жданова
Татьяна Александровна БАЧИНА
Наталья Алексеевна Васильева
Александр Константинович Соколов
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов
Priority to SU894716354A priority Critical patent/SU1693056A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1693056A1 publication Critical patent/SU1693056A1/en

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

1one

(21)4716354/13 (22)06.07.89 (46)23.11.91. Бюл. №43 (71)Всесоюзный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов (72) Т. А. Ямпольска , Г. А. Великжанина. Н. И. Жданова, Т. А. Бачина, Н. А. Васильева и А. К. Соколов (53)663.15(088.8)(21) 4716354/13 (22) 07.06.89 (46) 11/23/91. Bul №43 (71) All-Union Scientific Research Institute of Genetics and Breeding of Industrial Microorganisms (72) T. A. Yampolska, G. A. Velikzhanina. N. I. Zhdanova, T. A. Bachina, N. A. Vasilyeva and A. K. Sokolov (53) 663.15 (088.8)

(56)Патент США(56) US Patent

№4591562. кл. С 12 Р 13/22, 1986. Авторское свидетельство СССР № 1380212/кл. С 12 Р 13/22, 1986. (54) ШТАММ Б-АКТЕРИЙ BACILLUS SUBTILIS - ПРОДУЦЁНТГ-ФЕНИЛАЛАНИ- НАNo. 4591562. cl. C 12 R 13/22, 1986. USSR Copyright Certificate No. 1380212 / class. C 12 R 13/22, 1986. (54) STRAINS B-ACTERIA BACILLUS SUBTILIS - PRODUCTED-FENILALANINE

(57)Изобретение относитс  к биотехнологии и касаетс  нового штамма - незаменимой аминокислоты L-фенилаланина, котора  примен етс  в медицине, а также может служить исходным веществом при синтезе аспартама - пептида, используемого в качестве интенсивного подсластител  пищевых продуктов. Целью изобретени   вл етс  получение штамма бактерий Bacillus subtills ВКПМ-4761 (264-Т), способного синтезировать до 17 г/л L-фенилаланина при росте на простых по составу средах. При выращивании на среде с кукурузным экстрактом , аммонийным азотом, минеральными сол ми и при поддержании в среде концентрации сахара на уровне, близком к лимитирующему, после80 ч в культуральной жидкости накапливаетс  17 г/л L-фенилаланина . Коэффициент конверсии сахара в фе- нилаланин 12,2%.(57) The invention relates to biotechnology and concerns a new strain, the essential amino acid L-phenylalanine, which is used in medicine, and can also serve as a starting material in the synthesis of aspartame, a peptide, used as an intensive sweetener for food. The aim of the invention is to obtain a bacterial strain Bacillus subtills VKPM-4761 (264-T), capable of synthesizing up to 17 g / l of L-phenylalanine with growth on simple compositional media. When grown on a medium with corn extract, ammonium nitrogen, mineral salts and while maintaining the sugar concentration in the medium at a level close to the limiting one, after 80 hours, 17 g / l of L-phenylalanine accumulates in the culture fluid. The conversion rate of sugar to phenylalanine is 12.2%.

соwith

сwith

Изобретение относитс  к биотехнологии и касаетс  нового штамма - продуцента незаменимой аминокислоты L-фенилаланина , котора  примен етс  в медицине, а также может служить исходным веществом при синтезе аспартама - пептида, используемого в качестве интенсивного подсластител  пищевых продуктов.The invention relates to biotechnology and relates to a new strain - the producer of the essential amino acid L-phenylalanine, which is used in medicine, and can also serve as the initial substance in the synthesis of aspartame - a peptide used as an intensive sweetener for food products.

Целью изобретени   вл етс  получение штамма бактерий Bacillus subtills ВКПМ В- 4761 (264-Т), способного синтезировать до 17 г/л L-фенилаланина при росте на простых по составу средах.The aim of the invention is to obtain a bacterial strain Bacillus subtills of VKPM B-4761 (264-T), capable of synthesizing up to 17 g / l of L-phenylalanine with growth on simple compositional media.

Штамм получен как мутант штамма В. subtills ВНИИгенетика-19п путем мутаге- низации клеток нитрозогуанидином и отбора мутантов, ауксотрофных по тирозину.The strain was obtained as a mutant of the B. subtills strain of VNIIgenetika-19p by mutagenizing cells with nitrosoguanidine and selecting mutants that are auxotrophic for tyrosine.

Штамм хран т в столбиках полужидкого агара Хоттингера (0,7%) с 2-5% мальтозы под слоем вазелинового масла при 2-4°С или в лиофильно-высушенном состо нии в стекл нных запа нных ампулах при комнатной температуре.The strain is stored in the columns of Hottinger semi-liquid agar (0.7%) with 2-5% maltose under a layer of vaseline oil at 2-4 ° C or in a lyophilized state in sealed glass ampoules at room temperature.

Штамм имеет следующую характеристику .The strain has the following characteristic.

Культу рал ьно-морфологические признаки . Грамположительные спорообразую- щие палочки размером (2,5-4,5)хО,7 мкм. Размер спор (1,0-1,2) х (0,6-0,7) мкм.Cult ral morphological signs. Gram-positive spore-forming sticks (2.5–4.5) xO, 7 µm in size. The size of the dispute (1.0-1.2) x (0.6-0.7) microns.

М солептонный агар и агар Хоттингера: колонии после 24 ч инкубации при 37°С достигают 4-6 мм в диаметре, сплошные, круг- лые, с изрезанным краем, поверхность гладка , цвет кремовый.M saltpton agar and Hottinger agar: colonies after 24 hours of incubation at 37 ° C reach 4-6 mm in diameter, solid, round, with a rugged edge, the surface is smooth, cream-colored.

СWITH

юYu

CJCJ

о ел оabout eaten about

Агаризованна  среда Спицайзена с 40 мкг/мл тирозина и 10 мкг/мл аденина: колонии после 48 ч инкубации при 37°С имеют 1 мм в диаметре, поверхность гладка , блест ща , цвет серовато-белый,Spicizen agar medium with 40 µg / ml of tyrosine and 10 µg / ml of adenine: after 48 hours incubation at 37 ° C, colonies are 1 mm in diameter, the surface is smooth, shiny, grayish-white,

Физиолого-биохимические признаки. Отношение к источникам углерода: использует сахарозу, глюкозу, мальтозу, маннит, глицерин, ацетат.Physiological and biochemical signs. Relation to carbon sources: uses sucrose, glucose, maltose, mannitol, glycerin, acetate.

Отношение к источникам азота: использует мочевину, соли аммони .Relation to nitrogen sources: uses urea, ammonium salts.

Не растет на молоке, желатину разжижает слабо, хорошо растет на крахмале.Does not grow on milk, dilutes gelatin weakly, grows well on starch.

Отношение к аналогам аминокислот: устойчив к р-фторфенилаланину (9 мг/мл) и D-тирозину (0,075 мг/мл).Relation to amino acid analogs: resistant to p-fluorophenylalanine (9 mg / ml) and D-tyrosine (0.075 mg / ml).

Потребность в факторах роста: требует дл  роста 40 мкг/мл тирозина, рост стимулируетс  аденином.Growth factor requirement: requires 40 µg / ml tyrosine for growth, growth is stimulated by adenine.

Ауксотрофность по тирозину позвол ет штамму расходовать весь пул префено- вой кислоты (общего предшественника фенилаланина и тирозина) на синтез одного фенилаланина. Кроме того, З-дезокси-D- арабиногептулозонат-7-фосфат синтетаза (ДАГФ-с), ключевой фермент биосинтеза ароматических аминокислот, у исходного штамма репрессируетс  в присутствии тирозина и фенилаланина. Отсутствие тирозина в пуле предлагаемого штамма приводит к снижению репрессии ДАГФ-с, что обеспечивает этому штамму более высокий, чем у исходного штамма, уровень образовани  фенилаланина (до 17г/л).Tyrosine auxotrophy allows the strain to expend the entire pool of prephenic acid (a common precursor of phenylalanine and tyrosine) for the synthesis of phenylalanine alone. In addition, Z-deoxy-D-arabinoheptuloose-7-phosphate synthetase (DAGF-c), a key enzyme for the biosynthesis of aromatic amino acids, is repressed in the original strain in the presence of tyrosine and phenylalanine. The absence of tyrosine in the pool of the proposed strain leads to a decrease in the repression of DAGF-c, which ensures that the strain has a higher level of phenylalanine (up to 17 g / l) than the original strain.

Другим преимуществом предлагаемого штамма по сравнению с известным  вл етс  полное отсутствие в культуральной жидкости тирозина, что значительно облегчает процесс выделени  целевого продукта. В то же врем  потребность в тирозине обеспечиваетс  присутствием в ферментационной среде кукурузного экстракта, который добавл етс  в среду и дл  известного штамма. Штамм растет при 28-3°С: оптимальна  температура 32°С. Рост возможен при рН 5-9, оптимум рН 7,0-7,2.Another advantage of the proposed strain in comparison with the known one is the complete absence of tyrosine in the culture fluid, which greatly facilitates the process of isolation of the target product. At the same time, the need for tyrosine is provided by the presence in the fermentation medium of corn extract, which is added to the medium and to a known strain. The strain grows at 28-3 ° С: the optimum temperature is 32 ° С. Growth is possible at pH 5-9, the optimum pH is 7.0-7.2.

Получение L-фенилаланина с использованием предлагаемого штамма-продуцента осуществл ют следующим образом.The preparation of L-phenylalanine using the proposed producer strain is carried out as follows.

Клетки штамма Вас. subtills ВКПМ В- 4761 выращивают в течение 1 сут на агари- зованной среде Хоттингера, пересевают в колбы со стерильной питательной средой, содержащей источники углерода, азот, ростовых веществ и необходимые минеральные соли, и культивируют в течение 18-24 ч на качалке при 220 об/мин и 28-37°С. Полученный посевной материал внос т в колбы или ферментеры со стерильной питательной средой, содержащей источники углеродаCells strain you. The subtills of VKPM B-4761 are grown for 1 day on Hottinger's agar medium, subcultured in flasks with a sterile nutrient medium containing carbon sources, nitrogen, growth substances and necessary mineral salts, and cultured for 18-24 h on a rocking chair at 220 rpm and 28-37 ° C. The obtained seed is introduced into flasks or fermenters with a sterile nutrient medium containing carbon sources.

азота, ростовых веществ и минеральные соли . В качестве источника углерода используют сахарозу или содержащие ее субстраты, например технологический сахар, в качестве источника азота - мочевину или соли аммони , в качестве ростовых веществ - кукурузный экстракт. Ферментацию осуществл ют в течение 46-72 ч в услови х аэрации при 28-37°С, рН 6-8, в колбах на качалкеnitrogen, growth substances and mineral salts. As a carbon source, sucrose or substrates containing it are used, for example, process sugar, urea or ammonium salts as a nitrogen source, and corn extract as growth substances. Fermentation is carried out for 46-72 hours under aeration conditions at 28-37 ° C, pH 6-8, in flasks on a shaker.

0 или в ферментере. В конце ферментации в культуральной жидкости накапливаетс  до 17 г/л фенилаланина.0 or in a fermenter. At the end of the fermentation, up to 17 g / l of phenylalanine accumulates in the culture liquid.

Препарат L-фенилаланина из ферментационного раствора готов т в виде кор5 мового препарата или выдел ют в кристаллической форме известными способами .The L-phenylalanine preparation from the fermentation solution is prepared as a feed preparation or is isolated in crystalline form by known methods.

Пример 1 Штамм Вас. subtilis ВКПМ В-4761 выращивают в течение 18ч при 37°СExample 1 Strain you. subtilis VKPM B-4761 grown for 18 hours at 37 ° C

0 на агаризованной среде Хоттингера. Затем петлей засевают колбы объемом 250 мл, содержащие 30 мл посевной среды. Состав посевной среды, г/л: сахароза 50; кукурузный экстракт 20: К2НР04 1,4; KH2PO-J 0,6;0 on Hottinger's agar medium. A loop is then seeded with 250 ml flasks containing 30 ml of inoculum. The composition of the sowing medium, g / l: sucrose 50; corn extract 20: K2HP04 1.4; KH2PO-J 0.6;

5 водопроводна  вода до 1 л. рН до стерилизации 7,2-7,5, после стерилизации 7,0-7.2. Посевную среду стерилизуют в автоклаве при 0,8 атм в течение 30 мин. После посева колбы устанавливают на круговую качалку5 tap water to 1 l. The pH before sterilization is 7.2-7.5, after sterilization 7.0-7.2. The seed medium is sterilized in an autoclave at 0.8 atm for 30 minutes. After seeding, the flasks are mounted on a circular rocking chair.

0 (220 об/мин) и инкубируют при 30°С в течение 18ч. Готовый посевной материал внос т в количестве 5 об% в колбы емкостью 750 мл с 30 мл ферментационной среды. Состав ферментационной среды, г/л: сахароза 130;0 (220 rpm) and incubated at 30 ° C for 18 hours. The finished seed was introduced in an amount of 5% by volume into 750 ml flasks with 30 ml of fermentation medium. The composition of the fermentation medium, g / l: sucrose 130;

5 кукурузный экстракт 30; КНР04 1,4; КН2Р04 0,6; NaCI 0,5; MgSO 1.0; мочевина 5,0; водопроводна  1 л. рН среды 7,2. Мочевину добавл ют пгеред засевом в готовую среду в виде 40%-ного раствора, простери0 лизованного при 0,5 атм в течение 30 мин. После засева колбы устанавливают на качалку . После 72 ч роста при 30°С в культуральной жидкости накапливаетс  12 г/л фенилаланина,5 corn extract 30; PRC 1.4; KH2P04 0.6; NaCl 0.5; MgSO 1.0; urea 5.0; water supply 1 l. pH of 7.2. Urea is added to the prepared medium in the form of a 40% solution, sterile at 0.5 atm for 30 minutes. After seeding, the flasks are placed on a rocking chair. After 72 hours of growth at 30 ° C, 12 g / l of phenylalanine accumulates in the culture fluid,

5 Помимо фенилаланина в культуральной жидкости содержатс  следующие аминокислоты , г/л: 0,56; аспарагин 0,042; треонин 0,0088; серии 0,215; глутаминова  кислота 0,119; аланин 0,098; изолейцин 0,056: лей0 цин 0,171; гистидин 0,164; лизин 0,116. Ароматические аминокислоты тирозин и триптофан в культуральной жидкости отсутствуют .5 In addition to phenylalanine, the following amino acids are contained in the culture fluid, g / l: 0.56; asparagine; 0.042; threonine 0.0088; series 0,215; glutamic acid 0.119; alanine 0.098; isoleucine 0.056: lei0 qing 0.171; histidine 0.164; lysine 0.116. Aromatic amino acids tyrosine and tryptophan in the culture fluid are absent.

Исходный штамм В. subtilis ВНИИгене5 тика-19п в аналогичных услови х образует 9,1 г/л L-фенилаланина.The original B. subtilis strain of the All-Russia Scientific Research Institute of Tene-19p under similar conditions produces 9.1 g / l of L-phenylalanine.

П ри м е р 2. Посевной материал штамма ВКПМ В-4761 выращивают, как в примере 1. Готовым посевным материалом (50 мл) засевают 650 мл ферментационной среды.For example 2. The seed of the VKPM B-4761 strain is grown as in Example 1. 650 ml of fermentation medium are inoculated with the prepared seed.

Состав среды, г/л: кукурузный экстракт 30; NaCI 0.5; ( 5; MgSCM 1; КН2Р04 0,6; КН2Р04 1-4; водопроводна  вода до 1 л. Культивирование ведут при 32°С в лабораторном ферменте, оснащенном системой автоматического рН-статировани  и перистальтическим насосом дл  подачи в ферментер стерильного раствора сахара, при расходе продуваемого через культуральную жидкость воздуха 600 мл/мин и скорости вращени  мешалки 750 об/мин. Значение рН культуральной жидкости поддерживают на уровне 7,0-8,1, использу  6,9 н. раствор аммиачной воды. Концентрацию сахара в процессе культивировани  поддерживают на уровне, близком к лимитирующему. Дл  этого через 1 ч после засева в ферментер начинают подавать раствор сахара концентрации 700 г/л, вначале со скоростью 1 мл/ч, затем после 15 и 21 ч культивировани  скорость подачи увеличивают до 2.0 и 2.5 мл/ч соответственно и далее не мен ют. При таком режиме подачи концентраци  сахара в среде на прот жении процесса ферментации не выходит за пределы 0-5 г/л. Культивирование ведут в течение 80 ч. В результате в культуральной жидкости накапливаетс  17 г/л фенилаланина. коэффициент конверсии 12,2%. Штамм-прототип в аналогичных услови х выдел ет 9,5 г/л фе- нилаланина, коэффициент конверсии 7%.The composition of the medium, g / l: corn extract 30; NaCI 0.5; (5; MgSCM 1; KH2P04 0.6; KH2P04 1-4; tap water up to 1 l. Cultivation is carried out at 32 ° C in a laboratory enzyme equipped with an automatic pH-setting system and a peristaltic pump for feeding sterile sugar solution into the fermenter, the flow rate of air through the culture fluid is 600 ml / min and the rotation speed of the stirrer is 750 rpm. The pH value of the culture fluid is maintained at 7.0-8.1 using 6.9N ammonia water solution. at a level close to the limiter For this, after 1 h after seeding, the sugar solution of a concentration of 700 g / l is fed into the fermenter, first at a rate of 1 ml / h, then after 15 and 21 h of cultivation the feed rate is increased to 2.0 and 2.5 ml / h, respectively, and then not In this mode, the concentration of sugar in the medium during the fermentation process does not exceed 0-5 g / l. The cultivation is carried out for 80 hours. As a result, 17 g / l of phenylalanine accumulates in the culture liquid. conversion rate of 12.2%. Strain-prototype under similar conditions allocates 9.5 g / l of phenylalanine, the conversion rate is 7%.

Пример 3. Услови  выращивани  посевного материала, начальный состав ферментационной среды и услови  ферментации , как в примере 2. Отличие в том, что ферментационна  среда содержит 15 г/лExample 3. The growth conditions of the seed, the initial composition of the fermentation medium and the fermentation conditions as in Example 2. The difference is that the fermentation medium contains 15 g / l.

(NH4)2SO4 вместо сахара в ферментер подают раствор мелассы с концентрацией углеводов 450 г/л. Скорость подачи составл ет 1,7 мл/ч, после 15 культивировани  скорость подачи увеличивают до 3,5 мл/ч и далее не мен ют. Культивирование ведут при 32°С в течение 80 ч. По окончании процесса в культуральной жидкости накапливаетс  до 12 г/л L-фенилаланина. Коэффициент конверсии углеводов мелассы в фенилаланин составл ет 8,2%.(NH4) 2SO4 instead of sugar, molasses solution with carbohydrate concentration of 450 g / l is fed into the fermenter. The feed rate is 1.7 ml / h, after 15 cultivation the feed rate is increased to 3.5 ml / h and then not changed. Cultivation is carried out at 32 ° C for 80 hours. At the end of the process, up to 12 g / l of L-phenylalanine accumulates in the culture fluid. The conversion ratio of carbohydrate molasses to phenylalanine is 8.2%.

Пример 4. Ферментацию провод т в аппарате объемом 10 м3. Состав ферментационной среды, как в примере 2. Начальный объем среды 5 м3. Посевной материал, выращенный в колбах, как описано в примере 1, внос т в количестве 1 л. Ферментацию ведут при 32-33°С, перемешивании 260 об/мин и продувании воздухом 5 м /мин. рН поддерживают на уровне 7 автоматической подачи 20%-ного водного раствора аммиака . После 12 ч ферментации в аппарат начинают подавать стерильный раствор сахара с концентрацией 550 г/л. Вначале скорость подачи составл ет 8 л/ч, через 10 ч ее увеличивают до 23 л/ч и далее не мен ют. Общее количество поданной подпитки составл ет 1300 л (720 кг сахара). После 75 ч ферментации содержание фенилаланина в культуральной жидкости составл ет 13 г/л. Коэффициент конверсии сахара в фенилаланин 10,8%.Example 4. Fermentation is carried out in a 10 m3 apparatus. The composition of the fermentation medium, as in example 2. The initial volume of the medium is 5 m3. Seeds grown in flasks as described in Example 1 are added in an amount of 1 l. Fermentation is carried out at 32-33 ° C, stirring at 260 rpm and blowing air at 5 m / min. The pH is maintained at the level of 7 automatic feeding of a 20% aqueous solution of ammonia. After 12 hours of fermentation, a sterile sugar solution with a concentration of 550 g / l is started to be supplied to the apparatus. Initially, the feed rate is 8 l / h, after 10 h it is increased to 23 l / h and then not changed. The total amount of feed fed is 1,300 liters (720 kg of sugar). After 75 hours of fermentation, the content of phenylalanine in the culture fluid is 13 g / l. The conversion rate of sugar to phenylalanine is 10.8%.

Ф ормула изобретени  Штамм бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-4761 - продуцент L-фенилаланина.Formula of the invention The bacterial strain Bacillus subtilis VKPM B-4761 is a producer of L-phenylalanine.

Claims (1)

Формула изобретенияClaim Штамм бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-4761 - продуцент L-фенилаланина.The bacterial strain Bacillus subtilis VKPM B-4761 is a producer of L-phenylalanine. Составитель Л.Минеева Compiled by L. Mineeva Редактор О.Юрковецкая Editor O. Yurkovetskaya Техред М.Моргентал Корректор Т.Малец Tehred M. Morgenthal Corrector T. Malets
Заказ 4051 Тираж ПодписноеOrder 4051 Circulation Subscription ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТСССР 113035, Москва, Ж-35, Раушская наб.. 4/5VNIIIPI of the State Committee for Inventions and Discoveries under the State Committee for Science and Technology of the USSR 113035, Moscow, Zh-35, Raushskaya nab .. 4/5 Производственно-издательский комбинат Патент, г. Ужгород, ул.Гагарина, 101Production and Publishing Combine Patent, Uzhgorod, 101 Gagarin St.
SU894716354A 1989-07-06 1989-07-06 Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine SU1693056A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894716354A SU1693056A1 (en) 1989-07-06 1989-07-06 Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU894716354A SU1693056A1 (en) 1989-07-06 1989-07-06 Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1693056A1 true SU1693056A1 (en) 1991-11-23

Family

ID=21459590

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894716354A SU1693056A1 (en) 1989-07-06 1989-07-06 Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1693056A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4734775B2 (en) Escherichia coli arginine-producing bacteria and method for producing L-arginine using the same
EP0530803B1 (en) Process for producing L-threonine
KR890003681B1 (en) Process for preparing l-phenyl-alanine by microorganism
JPH05304969A (en) Production of amino acid by fermentation method
JPH0120871B2 (en)
JP2990735B2 (en) Fermentative production of L-lysine
JP3008565B2 (en) Method for producing L-glutamic acid by fermentation method
JP3717970B2 (en) Method for producing L-isoleucine by fermentation
EP1543142B1 (en) Production method for iturin a and its homologues
SU1693056A1 (en) Strain of bacteria bacillus subtilis - a producer of l-phenylalnine
HU205389B (en) Process for producing 1-alanine
SU974817A1 (en) Method of producing l-treonin
KR100220018B1 (en) Novel corynebacterium glutamicum ch45 which produce l-leucine
JPH0665314B2 (en) Fermentation method for producing L-valine
US3293141A (en) Fermentation process for producing l-tryptophan
KR900005771B1 (en) Process for the preparation of glutamic acid
KR100273950B1 (en) Corynebacterium glutamicum CJ31-0210 producing L-lysine and method for producing L-lysine using the same
RU2084520C1 (en) Strain of bacterium brevibacterium flavum - a producer of l-glutamine (variants)
SU908092A1 (en) Method of obtaining riboflavin
SU1694643A1 (en) Strain of bacteria escherichia coli - a producer of l-threonine
SU904325A1 (en) Method of producing l-treonin
RU2059726C1 (en) Strain of bacterium corynebacterium sp - a producer of l-leucine
JP2775948B2 (en) Escherichia coli BKIIM B-3996 strain as L-threonine producer
KR950014462B1 (en) Preparation method of l-leucine by using microorganism
SU1412288A1 (en) Strain of bacteria brevibacterium flavum producent l-serine