[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

SU1146605A1 - Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity - Google Patents

Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity Download PDF

Info

Publication number
SU1146605A1
SU1146605A1 SU833593276A SU3593276A SU1146605A1 SU 1146605 A1 SU1146605 A1 SU 1146605A1 SU 833593276 A SU833593276 A SU 833593276A SU 3593276 A SU3593276 A SU 3593276A SU 1146605 A1 SU1146605 A1 SU 1146605A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
activity
phosphate buffer
nmol
monoamine oxidase
per minute
Prior art date
Application number
SU833593276A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Александровна Москвитина
Ольга Николаевна Волошина
Владимир Зиновьевич Горкин
Original Assignee
Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср filed Critical Институт Биологической И Медицинской Химии Амн Ссср
Priority to SU833593276A priority Critical patent/SU1146605A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU1146605A1 publication Critical patent/SU1146605A1/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МОНОАМИНООКСВДАЗНОЙ АКТИВНОСТИ ТРОМБОЦИТОВ путем инкубации солюбийизата мембран тромбоцитов бензиламином в качестве субстрата, отличающийс  тем, что, с целью повышени  точности cifoco6a путем определени  множественных форм моноаминооксидазы, солюбилизат мембран нанос т, на колонну, заполненную иг-аминогексил сефарозой -4В, далее элюируют белковую фракцию 0,1 М фосфатным буфером при рН 7,4, в полученном элюате определ ют с помощью субстрата, форму моиоаминсоксидазы активностью 0,02±0,0t нмоль/мг белка в минуту, далее элюируют тем же фосфатным буфером с добдвлением тритона Х-100 в градиенте концентраций 0,001-0,25%, в полученном элюате определ ют форму моноаминооксидазы активностью 1,910,2 нмоль/мг белка. в минуту, далее элюируют 0,4 М фосфатным буфером при рН 7,4 с добавле (Л нием 0,25%-ного тритона Х-100, в полученном элюате определ ют форму моноаминооксидазы активностью 1j7 tOj2 нмоль/мг белка в минуту.METHOD OF MECHANICAL OPTIONS the fraction of 0.1 M phosphate buffer at pH 7.4, in the resulting eluate is determined using a substrate, the form of myoaminoxoxidase activity of 0.02 ± 0t nmol / mg protein per minute, then The same phosphate buffer is added with addition of Triton X-100 in a concentration gradient of 0.001-0.25%, and the form of monoamine oxidase with an activity of 1.910.2 nmol / mg protein is determined in the resulting eluate. per minute, then elute with 0.4 M phosphate buffer at pH 7.4 with the addition of (L of 0.25% Triton X-100), the monoamine oxidase form of 1j7 tOj2 nmol / mg protein per minute is determined in the eluate.

Description

д d

ЭдEd

ЭUh

: l

Изобретение относитс  к области биохимии , биотехнологии н медицины,а имен :К способам определени  активности фермента в организме, конкретно к способам определени  моноаминооксидаэной (МАО) активности, и может быть использовано в медицинской и лабораторной практике, а также в научных цел х.The invention relates to the field of biochemistry, biotechnology and medicine, and names: to methods for determining the activity of an enzyme in the body, specifically to methods for determining monoamine oxide (MAO) activity, and can be used in medical and laboratory practice, as well as for scientific purposes.

Целью изобретени   вл етс  повыше .ние точности способа путем определени  множественных форм моноаминооксидазы .The aim of the invention is to improve the accuracy of the method by determining the multiple forms of monoamine oxidase.

Пример осуществлени  способа, 500 МП донорской крови, содержащей 0,38% цитрата натри , центрифугируют при в течение 10 мин. Осадок эритроцитов промывают 0,15 М NaCl два раза и отдел ют центрифугированием . Объединенные надосадочные жидкости центрифугируют в тех же услови х , отбрасьша  осадок, надосадочную жидкость центрифугируют 20 мин при 650 g. Тромбоциты суспензируют в 0,01 М К - На фосфатном буфере приAn embodiment of the method, 500 MP of donor blood containing 0.38% sodium citrate, is centrifuged for 10 minutes. The erythrocyte sediment is washed with 0.15 M NaCl twice and separated by centrifugation. The combined supernatants are centrifuged under the same conditions, discarded, the supernatant is centrifuged for 20 minutes at 650 g. Platelets are suspended in 0.01 M K - On phosphate buffer at

рН 7,4. Смесь тромбоцитов центрифугируют 10 мин при 30 TMC.g, надосадочную жидкость отбрасывают, а осадок гомогенизируют в стекл нном гомогенизаторе в солюбилизирующей смеси,состо щей из 1,3 М мочевины,1,3% тритона Х-100 в О,of М фосфатном буфере при рН 7,4. Через 30 мин смесь центрифугируют 30 мин при 30 TMC.g, обессоливают на колонке с Сефадексом Г-50 (23 -1,2 см) и концентрируют .на ультрафильтре Амикон РМ-30 в 7 раз. Раствор нанос т на колонку с афинным сорбентом АН-Сефарозой 4В (13-1,2 см промывают 0,01 М фосфатным буфером при рН 7,4; множественные формы МАО злюируют фосфатным буфером различной концентрации и градиентом концентрации тритона Х-100. Определ   белок и активность моноаминооксидазы (например , с бензИламином в качестве субстрата) в пробах, получают профиль элюции, характеризующий содержание (изоферментный состав) и величину активности трех множественных форм моноаминооксидазы .pH 7.4. The platelet mixture is centrifuged for 10 min at 30 TMC.g, the supernatant is discarded, and the precipitate is homogenized in a glass homogenizer in a solubilizing mixture consisting of 1.3 M urea, 1.3% Triton X-100 in O, of M phosphate buffer at pH 7.4. After 30 min, the mixture is centrifuged for 30 min at 30 TMC.g, desalted on a Sephadex G-50 column (23-1.2 cm) and concentrated on an Amicon PM-30 ultrafilter 7 times. The solution is applied to an AN-Sepharose 4B column with affinity sorbent (13-1.2 cm. Washed with 0.01 M phosphate buffer at pH 7.4; multiple forms of MAO are degraded with phosphate buffer of various concentrations and a gradient of triton X-100. Determined protein and the activity of monoamine oxidase (for example, with benzyl amine as a substrate) in samples, an elution profile is obtained that characterizes the content (isoenzyme composition) and the amount of activity of three multiple forms of monoamine oxidase.

Claims (1)

СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МОНОАМИНООКСЦЦАЗНОЙ АКТИВНОСТИ ТРОМБОЦИТОВ путем инкубации солюбиЛизата мембран тромбоцитов бензиламином в качестве субстрата, отличающийся тем, что, с целью повышения точнос ти сгГособа путем определения множественных форм моноаминооксидазы, солюбилизат мембран наносят на колонну, заполненную цг-аминогексил сефарозой -4В, далее элюируют белковую фракцию 0,1 М фосфатным буфером при pH 7,4, в полученном элюате определяют с помощью субстрата форму моноаминсоксидазы активностью 0,02±0,01 нмоль/мг белка в минуту, далее элюируют тем же фосфатным буфером с добавлением тритона Х-100 в градиенте концентраций 0,001-0,25%, в полученном элюате определяют форму моноаминооксидазы активностью 1,9±0,^ нмоль/мг белка, в минуту, далее элюируют 0,4 М фосфатным буфером при pH 7,4 с добавлением 0,25%-ного тритона Х-100, в полученном элюате определяют форму моноаминооксидазы активностью 1,7t +0,2 нмоль/мг белка в минуту.METHOD FOR DETERMINING MONOAMINE-OXZZASE ACTIVITY OF THROMBOCYTES by incubating a solubilizer of platelet membranes with benzylamine as a substrate, characterized in that, in order to increase the accuracy of the cell by determining the multiple forms of monoamine oxidase, the membrane is solubilized with an amylose 0.1 M phosphate buffer at pH 7.4, in the obtained eluate, the form of monoamine oxidase with an activity of 0.02 ± 0.01 nmol / mg protein per minute is determined using a substrate, then elute they are removed with the same phosphate buffer with the addition of Triton X-100 in a concentration gradient of 0.001-0.25%, the form of monoamine oxidase with an activity of 1.9 ± 0, ^ nmol / mg protein per minute is determined in the obtained eluate, then elute with 0.4 M phosphate buffer at pH 7.4 with the addition of 0.25% triton X-100, in the resulting eluate determine the form of monoamine oxidase activity of 1.7 t +0.2 nmol / mg protein per minute.
SU833593276A 1983-04-04 1983-04-04 Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity SU1146605A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833593276A SU1146605A1 (en) 1983-04-04 1983-04-04 Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU833593276A SU1146605A1 (en) 1983-04-04 1983-04-04 Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1146605A1 true SU1146605A1 (en) 1985-03-23

Family

ID=21064141

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU833593276A SU1146605A1 (en) 1983-04-04 1983-04-04 Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1146605A1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. М.Sandier, T.A.Reveley, V.Glover. Human platelet МАО activity in health and disease, a revion.-I.Clin. Patol, 1981, 34, p. 292-302. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sigel et al. A gamma-aminobutyric acid/benzodiazepine receptor complex of bovine cerebral cortex.
Shapiro et al. The purification of human prothrombin
Jockers-Wretou et al. Quantitation of creatine kinase isoenzymes in human tissues and sera by an immunological method
Kiesselbach et al. Fibrin-stabilizing factor: a thrombin-labile platelet protein
Phillips et al. Thrombin substrates and the proteolytic site of thrombin action on human-platelet plasma membranes
Dhermy et al. Spectrin beta-chain variant associated with hereditary elliptocytosis.
GB1600305A (en) Glycoprotein and process for the production thereof
Ott et al. Acetylcholinesterase from human erythrocyte membranes: Dimers as functional units
Johansson et al. Purification and Properties of a Coupling Factor (Ca2+‐Dependent Adenosine Triphosphatase) from Rhodospirillum rubrum
Howard et al. The agglutination of human platelets by botrocetin: evidence that botrocetin and ristocetin act at different sites on the factor VIII molecule and platelet membrane
Wallace et al. Comparison of frog albumins with those of other vertebrates
Allen et al. Increased membrane binding of erythrocyte catalase in hereditary spherocytosis and in metabolically stressed normal cells
Layzer et al. Multiple isoenzymes of human phosphofructokinase
Solum et al. A quantitative evaluation of the inhibition of platelet aggregation by low molecular weight degradation products of fibrinogen
Ganguly Isolation and some properties of fibrinogen from human blood platelets
Moore et al. Isolation and purification of bovine and canine prothrombin
Andersen et al. The sedimentation properties of the skin-sensitizing antibodies of ragweed-sensitive patients
WO1990005740A1 (en) Improved extraction methods for preparing thromboplastin reagents
Porter et al. Heparin cofactor and plasma antithrombin in relation to the mechanism of inactivation of thrombin by heparin
US5504193A (en) Extraction methods for preparing thromboplastin reagents
Jefferson et al. Studies on ornithine decarboxylase activity in the isolated perfused rat liver
Stenberg et al. A rapid and specific fluorescent activity staining procedure for transamidating enzymes
SU1146605A1 (en) Method of determination of thrombocyte monoaminoeoxidase activity
Bajwa et al. A new method for purification of the thrombin-like enzyme from the venom of the eastern diamondback rattlesnake
Yeltman et al. Purification and characterization of aldolase from human erythrocytes