RU2495930C1 - Method of production of glycosidase inhibitor - Google Patents
Method of production of glycosidase inhibitor Download PDFInfo
- Publication number
- RU2495930C1 RU2495930C1 RU2012127024/10A RU2012127024A RU2495930C1 RU 2495930 C1 RU2495930 C1 RU 2495930C1 RU 2012127024/10 A RU2012127024/10 A RU 2012127024/10A RU 2012127024 A RU2012127024 A RU 2012127024A RU 2495930 C1 RU2495930 C1 RU 2495930C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- ultrafiltration
- culture fluid
- ultrafiltrate
- temperature
- kda
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к пищевой промышленности, а именно пищевой биотехнологии, и касается способа получения ингибитора гликозидаз, предназначенного для использования в качестве биологически активной и пищевой добавки специального назначения в функциональных продуктах диетического направленияThe invention relates to the food industry, namely food biotechnology, and relates to a method for producing a glycosidase inhibitor intended for use as a biologically active and special-purpose food additive in functional products of the dietary direction
Известен способ получения ингибитора гликозидаз углеводной природы из культуральной жидкости с активностью 3000±200 ИЕ/см3 или 6500±500 ИЕ/см3, полученной при использовании актиномицетов (Streptomyces BKM Ac 1328-D и Streptomyces 839/64), включающий подкисление культуральной жидкости до рН 3,6±0,1 ед., центрифугирование, ультрафильтрацию через ацетилцеллюлозную мембрану УАМ-300 (полые волокна) при давлении 2,5-3,0 атм, депигментацию на анионите, лиофилизацию, позволяющий получать препарат ингибитора с активностью 130±100 и 250±200 ИЕ/мг (Акулова Н.Ю. Ингибиторы α-глюкозидаз из Streptomyces. Выделение и свойства: автореф. дисс. … канд. биол. наук: 03.00.04; АООТ «НИИТИАФ». - СПб., 1993. - 20 с.).A known method of producing a carbohydrate glycosidase inhibitor from a culture fluid with an activity of 3000 ± 200 IE / cm 3 or 6500 ± 500 IE / cm 3 obtained using actinomycetes (Streptomyces BKM Ac 1328-D and Streptomyces 839/64), including acidification of the culture fluid up to pH 3.6 ± 0.1 units, centrifugation, ultrafiltration through a UAM-300 cellulose acetate membrane (hollow fibers) at a pressure of 2.5-3.0 atm, depigmentation on anion exchange resin, lyophilization, which allows obtaining an inhibitor preparation with an activity of 130 ± 100 and 250 ± 200 IE / mg (Akulova N.Yu. Inhibitors of α-glucosidases from S treptomyces. Isolation and properties: abstract of dissertation ... Ph.D. in Biology: 03.00.04; AOOT NIITIAF. - St. Petersburg, 1993. - 20 p.).
Однако процессы подготовки ионитов и их регенерации, основанные на использовании, в частности, кислот и щелочей, являются трудоемкими и сопровождаются большим количеством отходов.However, the processes of preparation of ion exchangers and their regeneration, based on the use of, in particular, acids and alkalis, are laborious and are accompanied by a large amount of waste.
Наиболее близким предлагаемому изобретению является способ получения ингибитора гликозидаз из фильтрата культуральной жидкости, полученной при ферментации гидролизатов кукурузного крахмала актиномицетом (Streptomyces lucensis ВКПМ Ac-1734) и имеющей ингибиторную активность 3700±180 ИЕ/см3, включающий очистку фильтрата культуральной жидкости с содержанием белка 5,0±0,2 г/дм3, редуцирующих сахаров 6,0±0,3 г/дм3, цветностью 8,2±0,4 е.о.п. посредством ультрафильтрации на фильтрационном аппарате ВПУ-15ПА, оснащенном мембраной с отсечением 15 кДа (полые волокна), при температуре 20°С, концентрирование фильтрата при температуре 90°С, осветление при температуре 25°С, сушку при температуре 55±2°С и измельчение (Ходкевич О.А. Разработка технологии биосинтеза ингибитора α-гликозидаз актиномицетами рода Streptomyces и применение комплексной пищевой добавки на его основе в хлебопечении: автореф. дисс. … канд. техн. наук: 05.18.07; ГУ ВНИИПАКК, ГОУ ВПО «СПб ГУ НиПТ». - СПб., 2009. - 16 с.).The closest to the invention is a method for producing a glycosidase inhibitor from a culture fluid filtrate obtained by fermentation of corn starch hydrolysates with actinomycetes (Streptomyces lucensis VKPM Ac-1734) and having an inhibitory activity of 3700 ± 180 IE / cm 3 , including purification of the culture fluid filtrate with a protein content of 5 , 0 ± 0.2 g / dm 3 , reducing sugars 6.0 ± 0.3 g / dm 3 , chroma 8.2 ± 0.4 e.p. by ultrafiltration on a VPU-15PA filtering apparatus equipped with a membrane with a cut-off of 15 kDa (hollow fibers) at a temperature of 20 ° C, concentrating the filtrate at a temperature of 90 ° C, clarification at a temperature of 25 ° C, drying at 55 ± 2 ° C and grinding (Khodkevich OA Development of technology for the biosynthesis of an α-glycosidase inhibitor by actinomycetes of the genus Streptomyces and the use of complex food additives based on it in bakery: abstract of dissertation ... candidate of technical sciences: 05.18.07; GU VNIIPAKK, GOU VPO SPb GU NiPT. ”- SPb., 2009. - 16 p.).
Известный способ позволяет получать препарат ингибитора гликозидаз с активностью 700000±1000 ИЕ/г. Однако ультрафильтрация через мембрану с отсечением 15 кДа не позволяет полностью отделить балластные белковые примеси, которые при высокой температуре в процессе последующего концентрирования денатурируют и осложняют процесс осветления. Кроме того, в результате концентрирования при высокой температуре цветность концентрата увеличивается не только за счет концентрирования окрашенных примесей, но и за счет карамелизации редуцирующих сахаров, что также снижает эффективность осветления. Указанная в способе последовательность стадий «концентрирование → осветление» не позволяет снизить содержание белка, который является примесью и мешает ингибиторному действию выделенного препарата.The known method allows to obtain a preparation of a glycosidase inhibitor with an activity of 700,000 ± 1000 IE / g However, ultrafiltration through a membrane with a cut-off of 15 kDa does not completely separate the ballast protein impurities, which at high temperature during denatured concentration denature and complicate the clarification process. In addition, as a result of concentration at high temperature, the color of the concentrate increases not only due to the concentration of colored impurities, but also due to the caramelization of reducing sugars, which also reduces the efficiency of clarification. The sequence of stages “concentration → clarification” specified in the method does not allow to reduce the protein content, which is an impurity and interferes with the inhibitory effect of the isolated preparation.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является получение ингибитора гликозидаз с повышенной активностью.The technical result of the invention is to obtain a glycosidase inhibitor with increased activity.
Технический результат предлагаемого изобретения достигается способом получения ингибитора гликозидаз из фильтрата культуральной жидкости, полученной при ферментации питательной среды на основе гидролизатов кукурузного крахмала актиномицетом, включающим ультрафильтрацию фильтрата культуральной жидкости, осветление и последующую сушку и измельчение, в котором согласно изобретению фильтрат культуральной жидкости используют с активностью 4250±250 ИЕ/см3, ультрафильтрацию проводят через мембраны с отсечением 5 кДа, осветление ультрафильтрата осуществляют непосредственно после ультрафильтрации при температуре 30-40°С, затем проводят концентрирование под вакуумом 0,082 МПа при температуре 25-30°С и ультрафильтрацию через мембрану с отсечением 1 кДа.The technical result of the invention is achieved by a method of producing a glycosidase inhibitor from a culture fluid filtrate obtained by fermenting a nutrient medium based on corn starch hydrolysates with actinomycetes, including ultrafiltration of the culture fluid filtrate, clarification and subsequent drying and grinding, in which according to the invention the culture fluid filtrate is used with an activity of 4250 ± 250 IE / cm 3 , ultrafiltration is carried out through membranes with a cut-off of 5 kDa, ultraviolet clarification Litrate is carried out immediately after ultrafiltration at a temperature of 30-40 ° C, then concentration under vacuum of 0.082 MPa at a temperature of 25-30 ° C and ultrafiltration through a membrane with a cut-off of 1 kDa is carried out.
Сведения, подтверждающие возможность достижения технического результата предлагаемого изобретения, представлены в примерах.Information confirming the possibility of achieving a technical result of the invention is presented in the examples.
В примерах используют фильтрат культуральной жидкости, который получают ферментацией среды на основе гидролизата кукурузного крахмала актиномицетом Streptomyces lucensis ВКПМ Ac-1734 или Streptomyces violaceus ВКПМ Ac-1743 и фильтрованием культуральной жидкости.In the examples, a culture fluid filtrate is used, which is obtained by fermenting a medium based on a corn starch hydrolyzate with actinomycete Streptomyces lucensis VKPM Ac-1734 or Streptomyces violaceus VKPM Ac-1743 and filtering the culture liquid.
Фильтрат культуральной жидкости представляет собой жидкость, значение ингибиторной активности в которой составляет 4100-4500 ИЕ/см3, содержание белка 2-6 г/дм3, содержание редуцирующих сахаров 5-10 г/дм3 оптическая плотность D при λmax 360 нм равна 8,1-11,3 е.о.п., характеризующая цветность раствора.The filtrate of the culture fluid is a liquid, the inhibitory activity of which is 4100-4500 IE / cm 3 , the protein content of 2-6 g / dm 3 , the content of reducing sugars 5-10 g / dm 3 the optical density D at λ max 360 nm is 8.1-11.3 e.o.p., characterizing the color of the solution.
Пример 1Example 1
Используют фильтрат культуральной жидкости с ингибиторной активностью 4100 ИЕ/см3, содержанием белка 2 г/дм3, содержанием редуцирующих сахаров 5 г/дм3, D при λmax 360 нм равно 8,1 е.о.п.A filtrate of the culture fluid with an inhibitory activity of 4100 IE / cm 3 , a protein content of 2 g / dm 3 , a content of reducing sugars of 5 g / dm 3 , D at λ max 360 nm is 8.1 e.p.
Фильтрат культуральной жидкости в количестве 1000 см3 очищают ультрафильтрацией через мембрану с отсечением 5 кДа и получают раствор объемом 0,9 дм3. Ультрафильтрат осветляют, смешивая с его с суспензией активного угля из расчета 0,5 г угля на 1 дм3 раствора, при температуре 40°С, и полученную суспензию перемешивают в течение 30 минут. Суспензию фильтруют и осветленный раствор концентрируют при вакууме 0,082 МПа (615 мм рт.ст.) и температуре 25°С до объема 0,2 дм3. Полученный концентрат очищают ультрафильтрацией через мембрану с отсечением 1 кДа и получают раствор объемом 0,15 дм3, который высушивают при температуре 40°С и измельчают. В сухом препарате ингибитора определяют ингибиторную активность.The filtrate of the culture fluid in an amount of 1000 cm 3 is purified by ultrafiltration through a membrane with a cut-off of 5 kDa and a solution of 0.9 dm 3 is obtained. The ultrafiltrate is clarified by mixing with it with a suspension of activated carbon at the rate of 0.5 g of coal per 1 dm 3 of solution at a temperature of 40 ° C, and the resulting suspension is stirred for 30 minutes. The suspension is filtered and the clarified solution is concentrated under vacuum of 0.082 MPa (615 mm Hg) and a temperature of 25 ° C to a volume of 0.2 dm 3 . The resulting concentrate is purified by ultrafiltration through a 1 kDa cut-off membrane and a solution of 0.15 dm 3 is obtained, which is dried at a temperature of 40 ° C and ground. In a dry inhibitor preparation, inhibitory activity is determined.
Результаты опыта представлены в таблице 1.The results of the experiment are presented in table 1.
Пример 2Example 2
Очистку фильтрата культуральной жидкости, концентрирование, очистку концентрата концентрата, высушивание и измельчение проводят согласно примеру 1.Purification of the filtrate of the culture fluid, concentration, purification of the concentrate of the concentrate, drying and grinding is carried out according to example 1.
Используют фильтрат культуральной жидкости с ингибиторной активностью 4300 ИЕ/см3, содержанием белка 6 г/дм3, содержанием редуцирующих сахаров 10 г/дм3, D при λmax 360 нм равно 11,3 е.о.п.A filtrate of the culture fluid with inhibitory activity of 4300 IE / cm 3 , a protein content of 6 g / dm 3 , a content of reducing sugars of 10 g / dm 3 , D at λ max 360 nm is 11.3 e.p.
Осветление ультрафильтрата проводят активным углем в количестве 1,0 г на 1 дм3 раствора при температуре 30°С в течение 60 минут.Clarification of the ultrafiltrate is carried out with activated carbon in an amount of 1.0 g per 1 DM 3 solution at a temperature of 30 ° C for 60 minutes.
Данные опыта представлены в таблице 1.The experience data are presented in table 1.
Пример 3.Example 3
Очистку ультрафильтратов, осветление, высушивание и измельчение проводят согласно примеру 1.Purification of ultrafiltrates, clarification, drying and grinding is carried out according to example 1.
Используют фильтрат культуральной жидкости с ингибиторной активностью 4500 ИЕ/см3, содержанием белка 4 г/дм3, содержанием редуцирующих сахаров 8 г/дм3, D при λmax 360 нм равно 8,2 е.о.п.A filtrate of the culture fluid with an inhibitory activity of 4500 IE / cm 3 , a protein content of 4 g / dm 3 , a content of reducing sugars of 8 g / dm 3 , D at λ max 360 nm is equal to 8.2 e.p.
Концентрирование проводят при температуре 30°С.Concentration is carried out at a temperature of 30 ° C.
Данные опыта представлены в таблице 1.The experience data are presented in table 1.
Пример 4 (по прототипу)Example 4 (prototype)
Используют фильтрат культуральной жидкости с ингибиторной активностью 4100 ИЕ/см3, с содержанием белка 5 г/дм3, содержанием редуцирующих сахаров 6 г/дм3, D при λmax 360 нм равно 10,5 е.о.п.A filtrate of a culture fluid with an inhibitory activity of 4100 IE / cm 3 , with a protein content of 5 g / dm 3 , a content of reducing sugars of 6 g / dm 3 , D at λ max 360 nm is 10.5 e.p.
Очистку фильтрата культуральной жидкости и осветление ультрафильтрата осуществляют согласно примеру 1. Для ультрафильтрации используют мембрану с отсечением 15 кДа. Затем ультрафильтрат концентрируют при температуре 90°С до объема 0,1 дм3 и осветляют при температуре 25°С. Осветленный раствор высушивают при температуре 55°С и измельчают. В сухом препарате ингибитора определяют ингибиторную активность.Purification of the filtrate of the culture fluid and clarification of the ultrafiltrate is carried out according to example 1. For ultrafiltration using a membrane with a cut-off of 15 kDa. Then the ultrafiltrate is concentrated at a temperature of 90 ° C to a volume of 0.1 dm 3 and clarified at a temperature of 25 ° C. The clarified solution is dried at a temperature of 55 ° C and ground. In a dry inhibitor preparation, inhibitory activity is determined.
Данные опыта представлены в таблице 1.The experience data are presented in table 1.
Результаты, полученные в примерах 1-4 по предлагаемому способу и в примере 5 - по прототипу, показывают, что последовательность «ультрафильтрация → осветление» и использование мембран с отсечением 5 и 1 кДа в примерах 1-4 позволяют полностью удалить балластную белковую фракцию и снизить цветность растворов. Использование предлагаемого способа обеспечивает улучшение качества препарата ингибитора, а именно увеличение ингибиторной активности в 8,6-11,4 раз, по сравнению с примером по прототипу и полное удаление белка, снижающего ингибиторное действие.The results obtained in examples 1-4 by the proposed method and in example 5 by the prototype show that the sequence "ultrafiltration → clarification" and the use of membranes with a cut-off of 5 and 1 kDa in examples 1-4 can completely remove the ballast protein fraction and reduce color of solutions. Using the proposed method provides an improvement in the quality of the inhibitor preparation, namely, an increase in inhibitory activity of 8.6-11.4 times, compared with the prototype example and the complete removal of the protein that reduces the inhibitory effect.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012127024/10A RU2495930C1 (en) | 2012-06-27 | 2012-06-27 | Method of production of glycosidase inhibitor |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012127024/10A RU2495930C1 (en) | 2012-06-27 | 2012-06-27 | Method of production of glycosidase inhibitor |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2495930C1 true RU2495930C1 (en) | 2013-10-20 |
Family
ID=49357200
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012127024/10A RU2495930C1 (en) | 2012-06-27 | 2012-06-27 | Method of production of glycosidase inhibitor |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2495930C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2494222C1 (en) * | 2012-10-17 | 2013-09-27 | Открытое акционерное общество "Татнефть" им. В.Д. Шашина | Well repair method |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1496561A (en) * | 1974-03-15 | 1977-12-30 | Eisai Co Ltd | Microbial amylase-inhibitor and preparation thereof |
US4339436A (en) * | 1977-01-19 | 1982-07-13 | Hoechst Aktiengesellschaft | α-Amylase inhibitor from a streptomycete and process for its preparation |
-
2012
- 2012-06-27 RU RU2012127024/10A patent/RU2495930C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1496561A (en) * | 1974-03-15 | 1977-12-30 | Eisai Co Ltd | Microbial amylase-inhibitor and preparation thereof |
US4339436A (en) * | 1977-01-19 | 1982-07-13 | Hoechst Aktiengesellschaft | α-Amylase inhibitor from a streptomycete and process for its preparation |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
http://edu.znate.ru/docs/357/index-37869.html - ХОДКЕВИЧ О.А. Разработка технологии биосинтеза ингибитора alpha-гликозидаз актиномицетами рода Streptomyces и применение комплексной добавки на его основе в хлебопечении. Автореферат диссертации на соиск. уч. степ, к.т.н. - СПб., 2009, с.1-16. [Найдено в Интернет 04.04.2013]. * |
http://edu.znate.ru/docs/357/index-37869.html - ХОДКЕВИЧ О.А. Разработка технологии биосинтеза ингибитора α-гликозидаз актиномицетами рода Streptomyces и применение комплексной добавки на его основе в хлебопечении. Автореферат диссертации на соиск. уч. степ, к.т.н. - СПб., 2009, с.1-16. [Найдено в Интернет 04.04.2013]. ШАРОВА Н.Ю., НИКИФОРОВА Т.А., ХОДКЕВИЧ О.А. Биосинтез ингибиторов глюкозидаз актиномицетами рода Streptomyces. Хранение и переработка сельхозсырья, №3, 2008, с.53-56. Колодязная В.А. Продуцент ингибитора α-глюкозидаз, стабилизация его ингибиторной активности и изучение условий биосинтеза. Диссертация на соиск. уч. степ., к.б.н. - СПб., 2006, с.1-169. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2494222C1 (en) * | 2012-10-17 | 2013-09-27 | Открытое акционерное общество "Татнефть" им. В.Д. Шашина | Well repair method |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yadav et al. | Food-grade single-cell protein production, characterization and ultrafiltration recovery of residual fermented whey proteins from whey | |
RU2009135485A (en) | FAST CLEANING METHOD FOR PRODUCING STREPTOCOCCUS PNEUMONIAE CAPSULE POLYSACCHARIDES | |
RU2016128955A (en) | METHOD FOR EFFECTIVE CLEANING OF NEUTRAL HUMAN MILK OLIGOSACCHARIDES (HMO) OBTAINED BY MICROBIOLOGICAL FERMENTATION | |
MX2021014169A (en) | Purification of oligosaccharides from a fermentation broth by using filtration. | |
CN101869169B (en) | Method for preparing fish oligopeptide from gurry by combining fermentation and membrane technology | |
CN101603038A (en) | A kind of preparation method of N,O-Diacetylmuramidase | |
CN113215210A (en) | Method for preparing sialic acid by adopting polysialic acid fermentation liquor | |
RU2495930C1 (en) | Method of production of glycosidase inhibitor | |
CN101570565A (en) | Functional component prepared from earthworms for promoting growth of microorganisms and improving culture units and preparation method thereof | |
CN102838624B (en) | Method for purifying clavulanic acid from fermentation liquor | |
TW202012433A (en) | A preparation method of precursor recombinant human insulin or analog thereof | |
CN107083407B (en) | Preparation, separation, impurity removal and purification method of L-malic acid | |
CN103966290A (en) | Yeast peptone and preparation method thereof | |
CN103012506A (en) | Energy-saving process for extracting crystallized xylose and arabinose from xylose mother liquor | |
RU2294371C2 (en) | Method for preparing citric acid and acid-stable amylolytic enzymes complex | |
CN116947934A (en) | Method for separating and purifying glyceroglycosides in two steps | |
RU2521511C1 (en) | Corn-steep extract purification and concentrating method | |
CN103710417A (en) | Method for extracting polypeptide substance from D-ribose fermentation waste | |
FR2947818A1 (en) | USE OF A COPRODUCT FROM A PROCESS FOR EXTRACTING LYSOZYME FROM EGG WHITE FOR OBTAINING AT LEAST ONE EGG WHITE BASIC PROTEIN | |
RU2584601C1 (en) | Method of extracting proteolytic terrilytin enzyme | |
CN106146608A (en) | A kind of extraction preparation method of apidaecin | |
RU2233882C2 (en) | Method for preparing citric acid | |
RU2486240C1 (en) | Method of obtaining peroxidase from horseradish root | |
CN103602652A (en) | Purification method for food-grade neutral protease | |
RU2230119C1 (en) | Method for preparing disaccharide |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160628 |