RU2458117C1 - MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA - Google Patents
MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA Download PDFInfo
- Publication number
- RU2458117C1 RU2458117C1 RU2011106729/10A RU2011106729A RU2458117C1 RU 2458117 C1 RU2458117 C1 RU 2458117C1 RU 2011106729/10 A RU2011106729/10 A RU 2011106729/10A RU 2011106729 A RU2011106729 A RU 2011106729A RU 2458117 C1 RU2458117 C1 RU 2458117C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- cepacia
- opcpl
- porine
- mutant
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии и генетике и касается получения штамма, обладающего повышенной чувствительностью к антибиотикам различных классов, несущего индуцированную N-метил-N'-нитро-N-нитрозогуанидином (НГ) мутацию в последовательности гена opcP1, ответственного за экспрессию перового белка с молекулярной массой 36 kDa. Штамм предназначен для изучения молекулярно-генетических основ множественной лекарственной резистентности у B.cepacia и филогенетически родственных видов буркхольдерий. Мутант депонирован в Государственной коллекции патогенных бактерий «Микроб» (ГКПБ «М») под номером КМ196. Особенностями штамма является опосредованный действием химического мутагена (НГ) дефект в продукции порина OpcPl, сочетающийся с фенотипом множественной чувствительности к антибиотикам (пефлоксацину, офлоксацину, цефтазидиму, канамицину, тетрациклину, хлорамфениколу).The invention relates to microbiology and genetics, and relates to the production of a strain having increased sensitivity to antibiotics of various classes carrying an N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine (NG) induced mutation in the sequence of the opcP1 gene responsible for the expression of a feather protein with a
B.cepacia, как и другие патогенные представители рода Burkholderia, характеризуется высокой природной резистентностью к антибиотикам, в формировании которой участвуют различные молекулярные механизмы [6, 10, 11, 15]. Принципиальное значение для развития множественной резистентности у B.cepacia имеют изменения в проницаемости клеточной оболочки, связанные с функцией ЛПС [9] и белков наружных мембран [5]. Отмечена роль порообразующих белков наружной мембраны в резистентности B.cepacia к бета-лактамам [5], аминогликозидам и полимиксину [14], салицилатам [6]. Клонированы и секвенированы последовательности гена, ответственного за липопротеин наружной мембраны мутанта B.cepacia с множественной резистентностью к хлорамфениколу, триметориму и цефтазидиму [7]. Показано функционирование этого порина в составе выявленной у B.cepacia системы лекарственного эффлюкса.B.cepacia, like other pathogenic representatives of the genus Burkholderia, is characterized by high natural resistance to antibiotics, the formation of which involves various molecular mechanisms [6, 10, 11, 15]. Of fundamental importance for the development of multiple resistance in B.cepacia are changes in the permeability of the cell membrane associated with the function of LPS [9] and outer membrane proteins [5]. The role of pore-forming proteins of the outer membrane in the resistance of B. cepacia to beta-lactams [5], aminoglycosides and polymyxin [14], salicylates [6] was noted. The sequences of the gene responsible for the lipoprotein of the outer membrane of the B.cepacia mutant with multiple resistance to chloramphenicol, trimethorim, and ceftazidime were cloned and sequenced [7]. The functioning of this porin in the composition of the drug efflux system revealed in B.cepacia is shown.
Необходимыми элементами модельных систем, позволяющих идентифицировать и осуществлять анализ последовательностей генома, детерминирующих устойчивость к тем или иным антимикробным соединениям, являются маркированные штаммы с измененной чувствительностью к антибиотикам [1, 2, 8, 12]. Для изучения молекулярных механизмов устойчивости к антибиотикам фторхинолонового (пефлоксацин, офлоксацин) и цефалоспоринового (цефтазидим) ряда у различных видов буркхольдерий (B.pseudomallei, В.mallei, B.cepacia) проведено получение штаммов с повышенной резистентностью к препаратам, характеризующихся дополнительной множественной резистентностью широкого спектра, включающего аминогликозиды, тетрациклины, хлорамфениколы [3, 4]. При анализе белковых спектров этих штаммов [4, 17] установлено варьирование продукции белков наружных мембран с различной молекулярной массой, в том числе полифункциональных поринов мембранной транспортной системы клеток с Mr 36 кДа (B.cepacia) и Mr 39 кДа (B.pseudomallei). Роль этих поринов, имеющих сходные структурно-функциональные характеристики [16], в формировании резистентности множественного типа у патогенных буркхольдерий не изучена.Marked strains with altered sensitivity to antibiotics are necessary elements of model systems that allow identification and analysis of genome sequences that determine resistance to particular antimicrobial compounds [1, 2, 8, 12]. To study the molecular mechanisms of antibiotic resistance of fluoroquinolone (pefloxacin, ofloxacin) and cephalosporin (ceftazidime) series in various types of burkholderias (B. pseudomallei, B. mallei, B. cepacia), strains with increased resistance to drugs characterized by an additional multiple resistance were obtained spectrum, including aminoglycosides, tetracyclines, chloramphenicol [3, 4]. An analysis of the protein spectra of these strains [4, 17] revealed a variation in the production of proteins of the outer membranes with different molecular weights, including polyfunctional porins of the membrane transport system of cells with
Прототипом сконструированного штамма B.cepacia KM196 являлся полученный методом направленной селекции мутант B.cepacia SMR2 с повышенным уровнем резистентности к антибиотикам фторхинолонового (МПК пефлоксацина более >200 мкг/мл) и цефалоспоринового (МПК цефтазидима >250 мкг/мл) ряда, характеризующийся измененной экспрессией ряда мембранных протеинов.The prototype of the constructed B.cepacia KM196 strain was the B.cepacia SMR2 mutant obtained by directional selection with an increased level of antibiotic resistance of fluoroquinolone (pefloxacin MPC>> 200 μg / ml) and cephalosporin (Ceftazidime BMP> 250 μg / ml) characterized by a change a number of membrane proteins.
Целью изобретения является получение мутанта с повышенной чувствительностью к антибиотикам множественного типа, позволяющего оценивать роль поринов, входящих в состав мажорных белков наружной мембраны B.cepacia, являющихся частью многофункциональной системы транспорта через мембрану различных соединений, стабильно сохраняющего свои свойства при хранении, культивировании на питательных средах, пассировании через организм лабораторных животных.The aim of the invention is to obtain a mutant with increased sensitivity to multiple antibiotics, which allows us to evaluate the role of porins, which are part of the major proteins of the outer membrane of B.cepacia, which are part of a multifunctional transport system through the membrane of various compounds that stably retain their properties during storage and cultivation on nutrient media passaging laboratory animals through the body.
Заявляемый штамм B.cepacia KM196 получен в результате двух циклов НГ мутагенеза штамма B.cepacia 25416 и последующего направленного выделения мутантных клонов на понижающихся от МПК для исходного штамма концентрациях пефлоксацина (офлоксацина) и цефтазидима. Среди мутантов с измененной чувствительностью к антибиотикам классов цефалоспоринов и фторхинолонов далее осуществляли отбор клонов, чувствительных к канамицину, тетрациклину, хлорамфениколу, недостаточных по продукции мажорных белков наружной мембраны. Предлагаемый штамм является вариантом с селектированными маркерами чувствительности PfxSOfxSfCzSKanSTetSChlS, дефектным по белку-порину ОрсР1 с Mr 36 кДа и обозначен в рабочей коллекции как B.cepacia 25416 NSP.The inventive strain B.cepacia KM196 was obtained as a result of two cycles of NG mutagenesis of the strain B.cepacia 25416 and subsequent directed isolation of mutant clones at concentrations of pefloxacin (ofloxacin) and ceftazidime lowering from the MPC for the initial strain. Among the mutants with altered sensitivity to antibiotics of the cephalosporin and fluoroquinolone classes, clones sensitive to kanamycin, tetracycline, chloramphenicol, insufficient for the production of major proteins of the outer membrane were further selected. The proposed strain is an option with selectable sensitivity markers Pfx S Ofx S fCz S Kan S Tet S Chl S defective for porcine protein OrcP1 with
Основные свойства штамма.The main properties of the strain.
Культурально-морфологические свойства: грамотрицательные палочки; культуры штамма растут в факультативных аэробных условиях на полноценных питательных средах (МПА, МПБ, L-arap, Nutrient agar, Nutrient broth «Difco» (США), Tryptic soy agar (broth) «Difco» (США) при оптимальной температуре 37°С, рН 6.8-7.2. На плотных питательных средах через 24 ч формируют гладкие полупрозрачные колонии, которые через 48 ч приобретают пигментацию бежевого цвета; в бульоне через 24 ч дают помутнение и образование тонкой пленки, через 48 ч - образование плотной пленки кремового цвета и рыхлого осадка на дне.Cultural and morphological properties: gram-negative rods; strain cultures grow under optional aerobic conditions on complete nutrient media (MPA, MPB, L-arap, Nutrient agar, Nutrient broth "Difco" (USA), Tryptic soy agar (broth) "Difco" (USA) at an optimal temperature of 37 ° C , pH 6.8–7.2 Smooth translucent colonies are formed on solid nutrient media after 24 hours, which become beige in 48 hours, in the broth 24 hours give a cloud and a thin film, and after 48 hours a dense cream-colored film is formed sediment at the bottom.
Биохимическая активность: в тесте Хью-Лейфсона - окисление глюкозы (+), мальтозы (+); оксидаза (+), аргининдигидролаза (-), лизиндекарбокси-лаза (+), орнитиндекарбоксилаза (-), желатиназа (-), L-арабиноза (+), Аrа (+).Biochemical activity: in the Hugh-Leifson test - oxidation of glucose (+), maltose (+); oxidase (+), arginine dihydrolase (-), lysine decarboxylase (+), ornithine decarboxylase (-), gelatinase (-), L-arabinose (+), Ara (+).
Устойчивость к антибиотикам: штамм чувствителен к пефлоксацину (МПК<3 мкг/мл), офлоксацину (МПК<5 мкг/мл), цефтазидиму (МПК<3 мкг/мл); канамицину (МПК<20 мкг/мл), тетрациклину (МПК<30 мкг/мл); левомицетину (МПК<5 мкг/мл).Antibiotic resistance: the strain is sensitive to pefloxacin (MIC <3 μg / ml), ofloxacin (MIC <5 μg / ml), ceftazidime (MIC <3 μg / ml); kanamycin (BMD <20 μg / ml), tetracycline (BMD <30 μg / ml); chloramphenicol (MIC <5 μg / ml).
Отношение к видовым диагностическим сывороткам: диагностируется в РДД с преципитирующей сывороткой к штамму B.cepacia 25416.Relation to species diagnostic sera: diagnosed in excipient with precipitating serum to B.cepacia 25416 strain.
Белковый спектр: дефектен по продукции белков наружной мембраны Mr 21, 27, 36, kDa;Protein spectrum: defective in the production of proteins of the
Вирулентность: не вирулентен для белых мышей (LD50>5×108 м.к.).Virulence: not virulent for white mice (LD 50 > 5 × 10 8 mk).
Питательные потребности: прототроф.Nutritional needs: prototroph.
Генетические особенности: PfxSOfxSCfzSKanSTetSChlSОрсР-.Genetic features: Pfx S Ofx S Cfz S Kan S Tet S Chl S OrsR - .
Полученный с помощью описанных приемов штамм B.cepacia 25416 NSP депонирован в Государственной коллекции патогенных бактерий «Микроб» (ГКПБ «М») под номером КМ196.Obtained using the described techniques, the strain B.cepacia 25416 NSP was deposited in the State collection of pathogenic bacteria "Microbe" (GKPB "M") under the number KM196.
Примеры конкретного выполненияCase Studies
Пример 1. Определение основных культурально-биохимических свойств мутанта B.cepacia KM196.Example 1. Determination of the main cultural and biochemical properties of the mutant B.cepacia KM196.
При посеве в Nutrient broth через 48 ч при 37°С культура штамма B.cepacia KM196 давала равномерное помутнение среды с образованием на поверхности пигментированной пленки и придонного осадка; на Nutrient agar через 24-48 ч вырастала в виде полупрозрачных колоний в S-форме бежевого оттенка.When inoculated in Nutrient broth after 48 h at 37 ° C, the culture of B.cepacia KM196 strain gave uniform turbidity to form a pigmented film and a bottom sediment on the surface; on Nutrient agar, after 24-48 h, it grew in the form of translucent colonies in an S-shape of beige.
Определение биохимических свойств показало наличие признаков, характерных для типового штамма B.cepacia 25416 (окисляет, но не ферментирует глюкозу на среде Хью-Лейфсона, обладает оксидазной, лизиндекарбоксилазной активностью, не имеет аргининдигидролазной, орнитиндекорбоксилазной и желатиназной активности; утилизирует из минимальной среды арабинозу, Ara+). На среде Skin milk («Difco», США) не гидролизует козеин молока, не проявляет лецитиназной и липазной активности.Determination of biochemical properties showed the presence of signs characteristic of a typical strain of B.cepacia 25416 (oxidizes, but does not ferment glucose in a Hugh-Leifson medium, has oxidase, lysine decarboxylase activity, does not have arginine dihydrolase, ornithine decorboxylase, and gelatinase from arabic utilization; ) On the medium Skin milk (Difco, USA) does not hydrolyze milk casein, does not show lecithinase and lipase activity.
МПК антибиотиков различных классов для культур мутантного штамма (1×107 м.к./мл) определяли на плотной питательной среде, используя общепринятый метод серийных разведений. Результаты представлены в таблице 1. Показано, что мутант B.cepacia KM196 имеет сниженную в сравнении с исходным штаммом резистентность к ряду препаратов различных классов, отличающихся по механизму действия на клетку.MIC of various classes of antibiotics for cultures of the mutant strain (1 × 10 7 m.k. / ml) was determined on a solid nutrient medium using the conventional method of serial dilutions. The results are presented in table 1. It is shown that the B.cepacia KM196 mutant has a reduced resistance to a number of drugs of various classes, which differ in the mechanism of action on the cell, in comparison with the initial strain.
Определение вирулентности. Мутант B.cepacia KM196 не вирулентен для белых мышей. При внутрибрюшинном заражении культурой в дозе 5×108 м.к. гибель лабораторных животных не наблюдали в течение 21 сут. Заражение на фоне применения иммунодепрессантов (гидрокортизон, циклофосфамид) также не вызывало гибели белых мышей.Determination of virulence. The B.cepacia KM196 mutant is not virulent for white mice. With intraperitoneal infection with a culture in a dose of 5 × 10 8 mk death of laboratory animals was not observed within 21 days. Infection due to the use of immunosuppressants (hydrocortisone, cyclophosphamide) also did not cause the death of white mice.
Пример 2. Анализ экспрессии мажорных белков клеточных мембран В. cepacia KM196.Example 2. Analysis of the expression of major proteins of cell membranes of B. cepacia KM196.
Для изучение продукции белков клеточных мембран мутантного штамма использовали электрофорез в SDS-полиакриламидных гелях по Laemmli [13]. Анализ в SDS-PAGE препаратов клеточных мембран, выделенных из исследованных штаммов, показал у В. cepacia 25416 NSP наличие дефекта в продукции белков Mr 21, 27, 36 kDa (рисунок 1). В. cepacia 25416 NSP (KM196 - трек 7).To study the production of proteins of the cell membranes of the mutant strain, Laemmli SDS polyacrylamide gels used electrophoresis [13]. SDS-PAGE analysis of cell membrane preparations isolated from the studied strains showed B. cepacia 25416 NSP to have a defect in the production of
Пример 3. ПЦР-анализ последовательности гена орсР1 мутанта B.cepacia KM196.Example 3. PCR analysis of the sequence of the gene orcP1 mutant B.cepacia KM196.
Для детекции последовательности орсР1 полимеразную цепную реакцию проводили с олигонуклеотидными праймерами bpsomp39s и bpsomp39as, фланкирующими кодирующую последовательность гена omp39 В. pseudomallei, гомологичного opcP1 B.cepacia [16], таблица 2.To detect the ocp1 sequence, the polymerase chain reaction was carried out with the oligonucleotide primers bpsomp39s and bpsomp39as flanking the coding sequence of the B. pseudomallei omp39 gene homologous to B.cepacia opcP1 [16], table 2.
ДНК выделяли из клеток 24 ч культур исследуемого штамма на Nutrient agar. Культуру суспендировали в 0,15 М Nad до плотности 2×109 м.к./мл, смешивали с равным объемом лизирующего буфера (20 мМ трис-НСl, 100 мМ КСl, 5 мМ MgCl2, 0,2 мг/мл желатина, 0,9% Nonidet P-40, 0,9% Твин 20, 150 мкг/мл протеиназы К) и инкубировали при 65°С 120 мин; прогревали при 95°С 30 мин для инактивации фермента. Пробы центрифугировали при 10000 об/мин 1 мин и использовали 10 мкл супернатанта, 1×реакционный буфер (Интерлабсервис, Россия), 1,5 мМ MgCl2, 0,2 мМ каждого dNTP, 15 пмоль каждого праймера, 1 ед. ДиаТак ДНК-полимеразы (Интерлабсервис, Россия). Амплификацию последовательностей пориновых генов орсР1 В.cepacia и omp39 В.pseudomallei проводили на амплификаторе «Терцик» (ДНК-технология, Россия) по программе: начальный прогрев 95°С 5 мин, 35 реакционных циклов (94°С 30 с, 57°С 30 с, 72°С 60 с), финальная элонгация 72°С 10 мин. Электрофоретический анализ ПЦР-ампликонов проводили в 1,5-2% агарозных гелях, окрашивая ДНК этидиум бромидом. Продукты ПЦР анализировали в 1,5% агарозном геле (рис.2).DNA was isolated from cells of 24 h of cultures of the studied strain on Nutrient agar. The culture was suspended in 0.15 M Nad to a density of 2 × 10 9 MK./ml, mixed with an equal volume of lysis buffer (20 mm Tris-Hcl, 100 mm KCl, 5 mm MgCl 2 , 0.2 mg / ml gelatin , 0.9% Nonidet P-40, 0.9% Tween 20, 150 μg / ml proteinase K) and incubated at 65 ° C for 120 minutes; heated at 95 ° C for 30 minutes to inactivate the enzyme. Samples were centrifuged at 10,000 rpm for 1 min and 10 μl of supernatant, 1 × reaction buffer (Interlabservice, Russia), 1.5 mM MgCl 2 , 0.2 mM of each dNTP, 15 pmol of each primer, 1 unit were used. DiaTak DNA polymerase (Interlabservis, Russia). Amplification of the sequences of the porin orcP1 genes of B.cepacia and omp39 of B.pseudomallei was carried out on a Tercik amplifier (DNA technology, Russia) according to the program: initial heating of 95 ° C for 5 min, 35 reaction cycles (94 ° C for 30 s, 57 ° C 30 s, 72 ° С 60 s), final elongation 72 ° С 10 min. Electrophoretic analysis of PCR amplicons was performed in 1.5-2% agarose gels, staining DNA with ethidium bromide. PCR products were analyzed on a 1.5% agarose gel (Fig. 2).
Установлено, что у мутантного штамма В.cepacia KM196 (трек 3) не обнаружены продукты амплификации, по размеру соответствующие фрагментам ДНК, выявляемым у исходного штамма В.cepacia 25416.It was found that in the mutant strain B.cepacia KM196 (track 3) no amplification products were found that correspond in size to the DNA fragments detected in the original strain B.cepacia 25416.
Таким образом, мутант В.cepacia KM196 с фенотипом множественной чувствительности к антибиотикам (PfxSOfxSCfzSKanSTetSChlS) дефектен по гену орсР1 и не продуцирует детерминируемый им порообразующий белок ОрсР1 с Mr 36 kDa.Thus, the B.cepacia KM196 mutant with the phenotype of multiple antibiotic sensitivity (Pfx S Ofx S Cfz S Kan S Tet S Chl S ) is defective in the orcP1 gene and does not produce the pore-forming protein OrcP1 determined by it with
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011106729/10A RU2458117C1 (en) | 2011-02-22 | 2011-02-22 | MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2011106729/10A RU2458117C1 (en) | 2011-02-22 | 2011-02-22 | MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2458117C1 true RU2458117C1 (en) | 2012-08-10 |
Family
ID=46849598
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2011106729/10A RU2458117C1 (en) | 2011-02-22 | 2011-02-22 | MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2458117C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109797116A (en) * | 2019-01-25 | 2019-05-24 | 厦门大学 | It is grown nonparasitically upon another plant altogether streptomycete HNS054 mutant strain by the sponge of the strong bacteriostatic activity of superposing type ARTP mutagenesis screening |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6171789B1 (en) * | 1995-08-17 | 2001-01-09 | Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of Health | Insertion sequence from a virulent isolate of Burkholderia cepacia, and diagnostic and identification procedures based thereon |
KR100685519B1 (en) * | 2006-03-06 | 2007-03-09 | 대한민국 | Multifunctional oligotrophic bacteria Burkholderia cepacia CR2 strain isolated from ginseng field producing antibiotic enzymes and industrial enzymes containing antibiotic activation |
RU2404252C1 (en) * | 2009-04-27 | 2010-11-20 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Роспотребнадзора | Method of selection of highly active antibacterial medication for treatment of diseases caused by pathogenic burkholderia |
-
2011
- 2011-02-22 RU RU2011106729/10A patent/RU2458117C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6171789B1 (en) * | 1995-08-17 | 2001-01-09 | Her Majesty The Queen In Right Of Canada, As Represented By The Minister Of Health | Insertion sequence from a virulent isolate of Burkholderia cepacia, and diagnostic and identification procedures based thereon |
KR100685519B1 (en) * | 2006-03-06 | 2007-03-09 | 대한민국 | Multifunctional oligotrophic bacteria Burkholderia cepacia CR2 strain isolated from ginseng field producing antibiotic enzymes and industrial enzymes containing antibiotic activation |
RU2404252C1 (en) * | 2009-04-27 | 2010-11-20 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Роспотребнадзора | Method of selection of highly active antibacterial medication for treatment of diseases caused by pathogenic burkholderia |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Калинкина Е.В. и др. Мутанты Burkholderia cepacia с множественной резистентностью к антибиотикам. Бюлл. ВНЦ РАМН, №3, 2006, с.25-27. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN109797116A (en) * | 2019-01-25 | 2019-05-24 | 厦门大学 | It is grown nonparasitically upon another plant altogether streptomycete HNS054 mutant strain by the sponge of the strong bacteriostatic activity of superposing type ARTP mutagenesis screening |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Otoguro et al. | An integrated method for the enrichment and selective isolation of Actinokineospora spp. in soil and plant litter | |
Li et al. | Combining genome shuffling and interspecific hybridization among Streptomyces improved ε-poly-L-lysine production | |
Muhammad et al. | ANTIBIOTIC PRODUCTION BY THERMOPHILIC BACILLUS SPECIE SAT-4. | |
Sood et al. | Aggregicoccus edonensis gen. nov., sp. nov., an unusually aggregating myxobacterium isolated from a soil sample | |
Momose et al. | 16S rRNA gene sequence‐based analysis of clostridia related to conversion of germfree mice to the normal state | |
Giacomodonato et al. | A PCR-based method for the screening of bacterial strains with antifungal activity in suppressive soybean rhizosphere | |
Ibrahim et al. | Isolation and identification of alkaline protease producing alkaliphilic bacteria from an Egyptian Soda Lake | |
Zucchi et al. | Amycolatopsis bartoniae sp. nov. and Amycolatopsis bullii sp. nov., mesophilic actinomycetes isolated from arid Australian soils | |
Saker et al. | Diversity and antagonistic properties of culturable halophilic actinobacteria in soils of two arid regions of septentrional Sahara: M’zab and Zibans | |
RU2458117C1 (en) | MUTANT BURKHOLDERIA CEPSCIA KM196 STRAIN DEFECT IN OpcPL PORINE PRODUCTION FOR STUDYING OF MOLECULAR MECHANISMS OF MULTIPLE RESISTANCE TO ANTIBIOTICS IN PATHOGENIC BURCHOLDERIA | |
Poshekhontseva et al. | Streptomyces tsukubensis VKM Aс-2618D—an Effective Producer of Tacrolimus | |
Yong et al. | Development of a specific real-time PCR assay targeting the poly-γ-glutamic acid synthesis gene, pgsB, for the quantification of Bacillus amyloliquefaciens in solid-state fermentation | |
CN105829522B (en) | Microorganisms | |
Radchenko et al. | Phylogenetic analysis of the Bacillus subtilis IFBG MK-2 strain and riboflavin production by its induced clones | |
Guilhot et al. | Genome sequence and description of Anaeromassilibacillus senegalensis gen. nov., sp. nov., isolated from the gut of patient with kwashiorkor | |
Lee et al. | Phaeobacter marinintestinus sp. nov., isolated from the intestine of a sea cucumber (Apostichopus japonicus) | |
Zhang et al. | Marinithermofilum abyssi gen. nov., sp. nov. and Desmospora profundinema sp. nov., isolated from a deep-sea sediment, and emended description of the genus Desmospora | |
CN112159772B (en) | Deep-brillouin halomonas 13199, CRISPR-Cas system thereof and application | |
Nguyen et al. | Description of Streptomyces fabae sp. nov., a producer of antibiotics against microbial pathogens, isolated from soybean (Glycine max) rhizosphere soil | |
Ibrahim et al. | Optimizing arginine deiminase production from Pseudomonas aeruginosa clinical isolate | |
Hurtado-Cantillo et al. | Influence of carbon source on extracellular protease production by soil Streptomyces sp. AGS-10 | |
RU2707640C1 (en) | Bacterial strain escherichia coli as a control test strain for phenotypic and molecular studies of escherichia o144 serum group | |
KR20130025453A (en) | New antibacterial material with antagonistic effect against the food borne pathogenic microorganism such as bacillus cereus and listeria monocytogenes, and bacullus substilis by08 | |
Zhang et al. | Aquisalimonas halophila sp. nov., a moderately halophilic bacterium isolated from a hypersaline mine | |
Lee et al. | Combination of a simple differential medium and toxA-specific PCR for isolation and identification of phytopathogenic Burkholderia gladioli |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130223 |