[go: up one dir, main page]
More Web Proxy on the site http://driver.im/

RU2191583C1 - Method for correcting hemorrhagic shock - Google Patents

Method for correcting hemorrhagic shock Download PDF

Info

Publication number
RU2191583C1
RU2191583C1 RU2001107996A RU2001107996A RU2191583C1 RU 2191583 C1 RU2191583 C1 RU 2191583C1 RU 2001107996 A RU2001107996 A RU 2001107996A RU 2001107996 A RU2001107996 A RU 2001107996A RU 2191583 C1 RU2191583 C1 RU 2191583C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
liposomes
hemorrhagic shock
correction
membranes
correcting
Prior art date
Application number
RU2001107996A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Г.Ф. Лескова
Г.Н. Крыжановский
Ю.В. Архипенко
В.И. Швец
Ю.М. Краснопольский
А.П. Каплун
Original Assignee
Лескова Галина Федоровна
Крыжановский Георгий Николаевич
Архипенко Юрий Владимирович
Швец Виталий Иванович
Краснопольский Юрий Михайлович
Каплун Александр Петрович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Лескова Галина Федоровна, Крыжановский Георгий Николаевич, Архипенко Юрий Владимирович, Швец Виталий Иванович, Краснопольский Юрий Михайлович, Каплун Александр Петрович filed Critical Лескова Галина Федоровна
Priority to RU2001107996A priority Critical patent/RU2191583C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2191583C1 publication Critical patent/RU2191583C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: one should intravenously inject the preparation of multilayer liposomes at the dosage of 1.0 mg/kg body weight taken at the concentration of 0.5 mg/ml distilled water. The method provides the restoration of hepatic lipids peroxidation, phospholipid composition of plasmatic membranes of hepatocytes, and membranous fractions of medulla oblongata mitochondria and frontal lobes of large cerebral hemispheres. EFFECT: higher efficiency of correction. 3 dwg, 5 ex, 2 tbl

Description

Изобретение относится к области медицины и касается способа коррекции геморрагического шока с помощью липосом. The invention relates to medicine and relates to a method for the correction of hemorrhagic shock using liposomes.

Массивная потеря крови, сопровождающаяся геморрагическим шоком, является причиной летальности ряда заболеваний в результате профузных кровотечений (язвенной болезни, рака желудка, геморрагического эрозивного гастрита), при послеродовых кровотечениях, разрыве аневризмы крупных артерий и др. При травме геморрагический шок развивается в тех случаях, когда несмотря на выраженное механическое повреждение мягких тканей и костей в развитии шока преобладает фактор массивной потери крови из-за повреждения крупных магистральных артериальных сосудов (например, при остром повреждении длинных трубчатых костей; черепно-мозговой травме, сопровождающейся внечерепными повреждениями, характеризующимися обильной острой кровопотерей, что встречается главным образом при военно-полевых ранениях, и др.). В настоящее время летальность от геморрагического шока достигает 15-30%, и существенной тенденции к ее снижению не наблюдается. Особенную важность проблема массивной потери крови, сопровождающейся геморрагическим шоком, приобретает в военно-полевой хирургии, учитывая, что большинство раненых поступает в позднем периоде шока, когда общепринятые методы лечения, в том числе и массивная трансфузионно-инфузионная терапия, часто оказываются неэффективными. Massive blood loss, accompanied by hemorrhagic shock, is the cause of the mortality of a number of diseases as a result of profuse bleeding (peptic ulcer, stomach cancer, hemorrhagic erosive gastritis), postpartum hemorrhage, rupture of aneurysm of large arteries, and others. In trauma, hemorrhagic shock develops when Despite severe mechanical damage to soft tissues and bones, the factor of massive blood loss due to damage to large arterial arteries predominates in the development of shock. blood vessels (for example, with acute damage to long tubular bones; traumatic brain injury, accompanied by extracranial injuries, characterized by abundant acute blood loss, which occurs mainly in field wounds, etc.). Currently, mortality from hemorrhagic shock reaches 15-30%, and there is no significant tendency to decrease it. Of particular importance is the problem of massive loss of blood, accompanied by hemorrhagic shock, in military field surgery, given that most of the wounded come in the late period of shock, when conventional methods of treatment, including massive transfusion-infusion therapy, are often ineffective.

Известен способ профилактики тяжелых местных и общих постишемических расстройств и связанных с ними осложнений при возобновлении кровотока в длительно ишемизированных тканях после длительной компрессии с помощью озвученных липосом, содержащих в качестве липидных компонентов фосфатидилхолин (ФХ) и холестерин, которые применяют в дозе 25 мг/кг массы тела пострадавшего (Рудаев В. И. и соавт. Способ профилактики местных и общих постишемических осложнений при длительной компрессионной травме конечности. - Патент Российской Федерации N 2142271, кл. А 61 К 9/127, опублик. 10.12.99). Указанный способ мы принимаем за прототип. A known method for the prevention of severe local and general post-ischemic disorders and related complications during the resumption of blood flow in long-term ischemic tissues after prolonged compression using voiced liposomes containing phosphatidylcholine (FC) and cholesterol as a lipid component, which is used at a dose of 25 mg / kg the body of the victim (Rudaev V.I. et al. A method for the prevention of local and general postischemic complications with prolonged compression trauma to the limb. - Patent of the Russian Federation N 2142271, l. A 61 K 9/127, published. 10.12.99). We take this method as a prototype.

В отличие от указанного способа заявляемый способ коррекции геморрагического шока осуществляется с помощью многослойных липосом, скорость выведения которых из кровяного русла значительно превышает таковую озвученных липосом, что обеспечивает срочность воздействия на организм. Отсутствие холестерина в липосомах вносит вклад в увеличение скорости выведения липосом из кровотока. Таким образом, заявляемый способ позволяет осуществить коррекцию последствий нарушений кровообращения в более короткий срок. Отличием заявляемого способа является также использование низких доз ФХ (0,5 мг/кг массы тела), что допускает использование липосом при оказании первой медицинской помощи. In contrast to the specified method, the claimed method for the correction of hemorrhagic shock is carried out using multilayer liposomes, the rate of excretion of which from the bloodstream significantly exceeds that of voiced liposomes, which provides an urgent effect on the body. The absence of cholesterol in liposomes contributes to an increase in the rate of removal of liposomes from the bloodstream. Thus, the claimed method allows for the correction of the consequences of circulatory disorders in a shorter time. The difference of the proposed method is also the use of low doses of PF (0.5 mg / kg body weight), which allows the use of liposomes in first aid.

Выбор ФХ в качестве материала для приготовления липосом обусловлено тем, что ФХ клеточных мембран, составляющий основную массу их фосфолипидного бислоя, истощается в процессе развития геморрагического шока в таких жизненно важных органах как головной мозг и печень. Встраивание ФХ-липосом в клеточные мембраны органов-мишеней позволяет защитить их от повреждения при геморрагическом шоке. The choice of PF as a material for the preparation of liposomes is due to the fact that the PF of cell membranes, which makes up the bulk of their phospholipid bilayer, is depleted during the development of hemorrhagic shock in such vital organs as the brain and liver. The incorporation of PF liposomes into the cell membranes of target organs helps protect them from damage in hemorrhagic shock.

Установлено:
1. Липосомы являются эффективным средством коррекции геморрагического шока, действующим на субклеточном, органном и системном уровнях.
Installed:
1. Liposomes are an effective means of correcting hemorrhagic shock, acting at the subcellular, organ and systemic levels.

2. Применение липосом в позднем периоде геморрагического шока облегчает его течение и значительно увеличивает продолжительность жизни животных. 2. The use of liposomes in the late period of hemorrhagic shock facilitates its course and significantly increases the life expectancy of animals.

3. В отличие от незащищенных липосом стабилизированные липосомы в течение длительного времени хранения не теряют выраженного противошокового эффекта. 3. In contrast to unprotected liposomes, stable liposomes do not lose a pronounced anti-shock effect for a long storage time.

Способ подтверждается следующими примерами. The method is confirmed by the following examples.

Пример 1. Коррекция перекисного окисления липидов в печени
В условиях экспериментального геморрагического шока оценивали эффективность применения липосом для коррекции перекисного окисления липидов в печени. Геморрагический шок моделировали на кошках массой 2,5-3,5 кг в течение 1,5 ч (артериальное давление снижали до 40 мм рт. ст. в течение 30-40 мин и поддерживали его на этом уровне в течение 1 ч, после чего прекращали кровопускание). Кровопотеря у кошек, произведенная в течение 1,5 ч, составила 3,6±0,1% к массе тела. Липосомы в дозе 1 мл/кг вводили внутривенно через 30 мин от начала кровопотери.
Example 1. Correction of lipid peroxidation in the liver
Under the conditions of experimental hemorrhagic shock, the effectiveness of using liposomes for the correction of lipid peroxidation in the liver was evaluated. Hemorrhagic shock was modeled on cats weighing 2.5-3.5 kg for 1.5 hours (blood pressure was reduced to 40 mmHg for 30-40 minutes and maintained at this level for 1 hour, after which stopped bleeding). Blood loss in cats produced over 1.5 hours was 3.6 ± 0.1% of body weight. Liposomes at a dose of 1 ml / kg were administered intravenously 30 minutes after the onset of blood loss.

Липосомы готовили следующим методом: соевый ФХ (Sigma, США) в концентрации 0,5 мг/мл встряхивали в дистиллированной воде до образования суспензии липосом. Получали свежеприготовленные "пустые" фосфатидилхолиновые липосомы (ФХ-липосомы). Liposomes were prepared by the following method: soybean PF (Sigma, USA) at a concentration of 0.5 mg / ml was shaken in distilled water until a liposome suspension formed. Received freshly prepared "empty" phosphatidylcholine liposomes (PF liposomes).

Определение содержания продуктов перекисного окисления в печени проводили спектрофотометрическим методом с помощью 2-тиобарбитуровой кислоты (ТБК). The liver peroxidation products were determined spectrophotometrically using 2-thiobarbituric acid (TBA).

Как видно из представленных на фиг.1 результатов, инъекция ФХ-липосом снижает уровень продуктов перекисного окисления липидов в печени у животных, подвергнутых геморрагическому шоку, в 1,8 раза (р<0,01), приближая его к контрольному, что свидетельствует о подавлении повреждающих свободнорадикальных процессов в ткани. As can be seen from the results shown in Fig. 1, injection of PF-liposomes reduces the level of lipid peroxidation products in the liver in animals subjected to hemorrhagic shock by 1.8 times (p <0.01), bringing it closer to the control, which indicates suppression of damaging free radical processes in the tissue.

Пример 2. Коррекция фосфолипидного состава плазматических мембран гепатоцитов. Example 2. Correction of the phospholipid composition of the plasma membranes of hepatocytes.

Моделирование геморрагического шока, приготовление и введение животным липосом проводили как описано в примере 1. После выделения плазматических мембран клеток печени методом дифференциального ультрацентрифугирования и экстрагирования из них общих липидов с помощью полярных растворителей фосфолипиды разделяли на фракции при тонкослойной хроматографии. Проявленные хроматограммы регистрировали на денситометре "Chromoscan-201" (Англия), а денситограммы анализировали на полуавтоматическом анализаторе "Leitz-ASM" (Германия). Simulation of hemorrhagic shock, preparation and administration of animal liposomes was carried out as described in Example 1. After isolation of the plasma membranes of liver cells by differential ultracentrifugation and extraction of total lipids from them using polar solvents, phospholipids were fractionated by thin-layer chromatography. The developed chromatograms were recorded on a Chromoscan-201 densitometer (England), and densitograms were analyzed on a Leitz-ASM semi-automatic analyzer (Germany).

Как видно из представленных на фиг.1 результатов, инъекция ФХ-липосом восстанавливает уровень ФХ и фосфатидилинозитола в составе плазматических мембран клеток печени до контрольных значений, что свидетельствует о коррекции содержания фосфолипидов, обмен которых наиболее уязвим к шокогенному воздействию. As can be seen from the results shown in Fig. 1, the injection of PF-liposomes restores the level of PF and phosphatidylinositol in the plasma membranes of liver cells to control values, which indicates a correction in the content of phospholipids, the metabolism of which is most vulnerable to chocogenic effects.

Пример 3. Коррекция фосфолипидного состава мембранных фракций митохондрий продолговатого мозга
Моделирование геморрагического шока, приготовление и введение животным липосом проводили как описано в примере 1. После получения мембран митохондрий методом дифференциального ультрацентрифугирования экстракцию липидов, разделение фосфолипидов на фракции и количественное определение состава фосфолипидов в мембранах осуществляли как в примере 2.
Example 3. Correction of the phospholipid composition of the membrane fractions of mitochondria of the medulla oblongata
Modeling of hemorrhagic shock, preparation and administration of animal liposomes was carried out as described in example 1. After obtaining mitochondrial membranes by differential ultracentrifugation, lipid extraction, fractionation of phospholipids and quantification of the composition of phospholipids in the membranes was carried out as in example 2.

Как видно из представленных на фиг.2 результатов, инъекция ФХ-липосом в значительной степени нормализует фосфолипидный состав мембран митохондрий продолговатого мозга. Во внешних мембранах митохондрий уровень ФХ повышается по сравнению с нелечеными животными на 43,7% (р<0,05). Во внутренних мембранах митохондрий у леченых животных наблюдали полное восстановление уровня ФХ. Кроме того, во внутренних мембранах митохондрий нормализовалось содержание фосфатидной кислоты. Контрольным показателям соответствовал также уровень лизофосфолипидов. As can be seen from the results presented in figure 2, the injection of FK-liposomes significantly normalizes the phospholipid composition of the membranes of the mitochondria of the medulla oblongata. In the outer membranes of mitochondria, the level of FC increases compared with untreated animals by 43.7% (p <0.05). In the inner mitochondrial membranes in treated animals, a complete restoration of the level of PF was observed. In addition, the content of phosphatidic acid was normalized in the inner membranes of mitochondria. The control indicators also corresponded to the level of lysophospholipids.

Пример 4. Коррекция фосфолипидного состава мембранных фракций митохондрий лобных долей больших полушарий головного мозга
Исследования проводили, как описано в примере 3. Как видно из представленных на фиг. 3 результатов, инъекция ФХ-липосом у животных, подвергнутых геморрагическому шоку, приводит к восстановлению содержания фосфатидилинозитола, фосфатидилэтаноламина, а также лизофосфолипидов в мембранах митохондрий больших полушарий головного мозга.
Example 4. Correction of the phospholipid composition of membrane fractions of mitochondria of the frontal lobes of the cerebral hemispheres
The studies were carried out as described in Example 3. As can be seen from those presented in FIG. 3 results, injection of PF-liposomes in animals subjected to hemorrhagic shock, leads to the restoration of the content of phosphatidylinositol, phosphatidylethanolamine, as well as lysophospholipids in the membranes of mitochondria of the cerebral hemispheres.

Пример 5. Воздействие на системное артериальное давление и продолжительность жизни
Геморрагический шок моделировали в течение 2 ч, после чего липосомы в дозе 1 мл/кг вводили внутривенно через 2 ч от начала кровопотери. Использовали три вида липосом: два вида свежеприготовленных липосом [из очищенного соевого лецитина (Sigma, США) (ФХ-липосомы) и из этого же лецитина, но окисленного в результате хранения в течение одного года при -18oС (ОФХ-липосомы)] и стабилизированные липосомы (СТ-липосомы).
Example 5. The impact on systemic blood pressure and life expectancy
Hemorrhagic shock was modeled for 2 hours, after which liposomes at a dose of 1 ml / kg were administered intravenously 2 hours after the onset of blood loss. Three types of liposomes were used: two types of freshly prepared liposomes [from purified soya lecithin (Sigma, USA) (PF-liposomes) and from the same lecithin, but oxidized after storage for one year at -18 o C (OFC-liposomes)] and stabilized liposomes (CT liposomes).

ФХ- и ОФХ-липосомы готовили, как описано в примере 1. PF and OFC liposomes were prepared as described in Example 1.

Метод приготовления СТ-липосом отличается от такового для свежеприготовленных липосом тем, что лецитин встряхивают в дистиллированой воде, содержащей лактозу в концентрации 0,5 мг/мл. Полученный раствор подвергают стерилизации, разливу во флаконы и лиофильному высушиванию, после чего осуществляют закупорку и герметизацию флаконов. Флаконы с лиофилизованными липосомами хранят до использования в течение одного года при -18oС. Затем липосомы растворяют в концентрации 0,5 мг лецитина на 1 мл дистиллированной воды, оставляют при комнатной температуре на 1 ч до готовности.The method of preparation of ST-liposomes differs from that for freshly prepared liposomes in that the lecithin is shaken in distilled water containing lactose at a concentration of 0.5 mg / ml. The resulting solution is subjected to sterilization, bottling and freeze-drying, after which the bottles are sealed and sealed. Vials with lyophilized liposomes are stored for use for one year at -18 o C. Then the liposomes are dissolved in a concentration of 0.5 mg of lecithin per 1 ml of distilled water, left at room temperature for 1 h until ready.

Результаты исследований приведены в табл.1 и 2. Как видно из представленных результатов, инъекция ФХ-липосом в позднем периоде геморрагического шока облегчает его течение и значительно увеличивает продолжительность жизни животных. При инъекции свежеприготовленных ФХ-липосом через 2 ч от начала кровопотери артериальное давление повышается в течение 20-30 мин в среднем до 70 мм рт. ст. (табл. 1). Далее имеет место стабилизация артериального давления около субнормального уровня в течение 4 ч наблюдений. Продолжительность жизни таких животных составляет в среднем 8 ч. У нелеченых животных, также перенесших 2-часовую гипотензию, наблюдали прогрессивное снижение артериального давления, и они погибали в среднем через 70 мин. The research results are shown in Tables 1 and 2. As can be seen from the presented results, the injection of FK-liposomes in the late period of hemorrhagic shock facilitates its course and significantly increases the life expectancy of animals. When freshly prepared PF liposomes are injected 2 hours after the onset of blood loss, blood pressure rises over an average of 70 mm Hg over 20-30 minutes. Art. (tab. 1). Further, stabilization of blood pressure near a subnormal level takes place over 4 hours of observation. The life expectancy of such animals is an average of 8 hours. In untreated animals that also underwent 2-hour hypotension, a progressive decrease in blood pressure was observed, and they died on average after 70 minutes.

Применение липосом, приготовленных из окисленного ФХ, не оказало воздействия на течение геморрагического шока у кошек. Динамика артериального давления у животных с геморрагическим шоком, которым вводили ОФХ-липосомы, была сходной с таковой нелеченых животных, а средняя продолжительность жизни составила 80 мин. The use of liposomes prepared from oxidized PF did not affect the course of hemorrhagic shock in cats. The dynamics of blood pressure in animals with hemorrhagic shock, which were injected with OFX liposomes, was similar to that of untreated animals, and the average life expectancy was 80 minutes.

Характер воздействия СТ-липосом на течение геморрагического шока в его поздней стадии сходен с таковым свежеприготовленных липосом (табл. 2). Динамика артериального давления у животных с геморрагическим шоком, которым вводили СТ-липосомы, была сходной с таковой нелеченых животных, а средняя продолжительность жизни составила в среднем 8,5 ч. The nature of the effect of CT liposomes on the course of hemorrhagic shock in its late stage is similar to that of freshly prepared liposomes (Table 2). The dynamics of blood pressure in animals with hemorrhagic shock injected with CT liposomes was similar to that of untreated animals, and the average life expectancy was 8.5 hours on average.

Таким образом, "пустые" ФХ-липосомы обладают значительным преимуществом по сравнению с другими известными корректорами геморрагического шока, что проявляется, в первую очередь, в их мембрано-стабилизирующем действии, сочетающемся с увеличением артериального давления до субнормального уровня и длительной его устойчивостью. Стабилизированные липосомы обладают эффективностью, равной свежеприготовленным липосомам, но в отличие от незащищенных липосом СТ-липосомы в течение длительного времени хранения оказывают лечебное действие, что позволяет решить трудности практического использования липосом. Thus, “empty” PF liposomes have a significant advantage over other known hemorrhagic shock correctors, which is manifested primarily in their membrane-stabilizing effect, combined with an increase in blood pressure to a subnormal level and its long-term stability. Stabilized liposomes have an efficiency equal to freshly prepared liposomes, but unlike unprotected liposomes, CT liposomes have a therapeutic effect over a long storage time, which helps to solve the difficulties of the practical use of liposomes.

В настоящее время нет средства для коррекции геморрагического шока столь же высоко эффективного и надежного, как предлагаемое. Липосомы в перспективе могут быть применены для профилактики геморрагического шока при массивной кровопотере, для оказания первой медицинской помощи на ранних и поздних стадиях геморрагического шока, а также в комплексной терапии геморрагического шока. Липосомы готовятся из дешевого природного сырья и их препарат может храниться минимум 12 месяцев. There is currently no remedy for the correction of hemorrhagic shock as highly effective and reliable as proposed. In the future, liposomes can be used for the prevention of hemorrhagic shock in case of massive blood loss, for first aid in the early and late stages of hemorrhagic shock, as well as in the complex treatment of hemorrhagic shock. Liposomes are prepared from cheap natural raw materials and their preparation can be stored for at least 12 months.

Claims (1)

Способ коррекции геморрагического шока, отличающийся тем, что в организм внутривенно вводят в дозе 1,0 мл/кг препарат многослойных липосом, приготовленных из фосфатидилхолина, взятого в концентрации 0,5 мг/мл дистиллированной воды. A method for correcting hemorrhagic shock, characterized in that a multilayer liposome preparation prepared from phosphatidylcholine taken at a concentration of 0.5 mg / ml distilled water is injected intravenously into the body at a dose of 1.0 ml / kg.
RU2001107996A 2001-03-28 2001-03-28 Method for correcting hemorrhagic shock RU2191583C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001107996A RU2191583C1 (en) 2001-03-28 2001-03-28 Method for correcting hemorrhagic shock

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2001107996A RU2191583C1 (en) 2001-03-28 2001-03-28 Method for correcting hemorrhagic shock

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2191583C1 true RU2191583C1 (en) 2002-10-27

Family

ID=20247604

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2001107996A RU2191583C1 (en) 2001-03-28 2001-03-28 Method for correcting hemorrhagic shock

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2191583C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МАРГОЛИС Л.Б. и др. Липосомы и их взаимодействие с клетками. - М.: Наука, 1982, с.33-87. GUARINI S. etal - in Resuscitation, 1989, v. 18, № 2-3, pp. 129-131. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5506218A (en) Methods useful in endotoxin based therapy
AU2002340825B2 (en) HDL for the treatment of stroke and other ischemic conditions
US20040071770A1 (en) Method to reduce free radical-mediated tissue damage induced by caustic gas exposure using an antioxidant composition
MXPA04011227A (en) Methods and copositions for the treatment of ischemic reperfusion.
US20090137663A1 (en) Therapeutic micro nutrient composition for drug delivery
US5674855A (en) Methods and compositions useful in prophylaxis and therapy of endotoxin related conditions
AU2002340825A1 (en) HDL for the treatment of stroke and other ischemic conditions
CA2601641A1 (en) Calcium salt of myo-inositol 1,6:2,3:4,5 tripyrophosphate as an allosteric effector of hemoglobin
EP1418922B1 (en) Use of negatively charched phospholipids for the preparation of a medicament for treatment and/or prevention of macular degeneration
Byers et al. Effect of infusions of phosphatides upon the atherosclerotic aorta in situ and as an ocular aortic implant
KR100696417B1 (en) Cerebrovascular regeneration/reconstruction-promoting agents and secondary nervous tissue degeneration-inhibiting agents comprising ginsenoside Rb1
CA2376260C (en) High density lipoprotein against organ dysfunction following haemorrhagic shock
Hofmann et al. Repeated occurrence of skin necrosis twice following coumarin intake and subsequently during decrease of vitamin K dependent coagulation factors associated with cholestasis
RU2191583C1 (en) Method for correcting hemorrhagic shock
BE881238A (en) PHARMACEUTICAL PREPARATION AND METHOD OF PREPARATION THEREOF
EP1272197B1 (en) Combination of lecithin with ascorbic acid
RU2133122C1 (en) Composition exhibiting property for biological membrane repairing
FI115826B (en) Therapeutic agent for the treatment of fat metabolism disorders
RU2180236C2 (en) Method for treating the cases of burn shock
RU2599505C1 (en) Agent with liposome containing albumin and propolis extract, exhibiting reparative activity in anaemias haemorrhagic
RU2098097C1 (en) Remedy for external use for improving blood circulation
Snell The treatment of liver disease
WO2002034270A1 (en) Treatment of respiratory distress syndrome with powder surfactant composition
CN115006377A (en) Application of metformin in preparation of medicament for preventing and/or treating pulmonary type oxygen toxicity
AU2002323880A1 (en) Compositions comprising negatively charched phospholipids for treatment and/or prevention of macular degeneration and method for its manufacture

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20200329