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KR20200080748A - 음이온 교환 크로마토그래피를 이용한 인슐린 전구체의 정제방법 - Google Patents

음이온 교환 크로마토그래피를 이용한 인슐린 전구체의 정제방법 Download PDF

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KR20200080748A
KR20200080748A KR1020180170530A KR20180170530A KR20200080748A KR 20200080748 A KR20200080748 A KR 20200080748A KR 1020180170530 A KR1020180170530 A KR 1020180170530A KR 20180170530 A KR20180170530 A KR 20180170530A KR 20200080748 A KR20200080748 A KR 20200080748A
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KR
South Korea
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insulin
buffer solution
precursor
exchange resin
tris
Prior art date
Application number
KR1020180170530A
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English (en)
Inventor
김진환
변승민
송제연
김현욱
윤정필
Original Assignee
주식회사 폴루스
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Publication date
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Abstract

본 발명은 이온교환수지를 평형화시키기 위한 제1완충용액과 이온교환수지에 결합된 인슐린 전구체를 용출시키기 위한 제2완충용액의 pH를 조절하여 인슐린 전구체의 생산수율을 향상시키기 위한 인슐린 전구체의 정제방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 인슐린 전구체 정제방법은 완충용액들의 적절한 pH 조합으로 인슐린 전구체의 이온교환수지에 대한 결합력을 강화시키고 이후 인슐린 전구체가 효과적으로 용출될 수 있도록 한 고순도 고수율의 인슐린 전구체 정제방법으로, 이는 정제과정 후 효소 전환에 의한 고수율의 인슐린 생산에 매우 유용하다.

Description

음이온 교환 크로마토그래피를 이용한 인슐린 전구체의 정제방법{A Method for Purifying Proinsulin Using Anion Exchange Chromatography}
본 발명은 음이온 교환 크로마토그래피를 이용한 인슐린 전구체의 정제방법에 관한 것으로, 더 상세하게는 이온교환수지를 평형화시키기 위한 제1완충용액과 이온교환수지에 결합된 인슐린 전구체를 용출시키기 위한 제2완충용액의 pH를 조절하여 인슐린 전구체의 생산수율을 향상시키기 위한 인슐린 전구체의 정제방법에 관한 것이다.
당뇨는 고혈당을 특징으로 하는 대사질환으로 유전적 요인과 환경적 요인의 복합적인 작용에 의해 발생한다. 당뇨는 1형 당뇨, 2형 당뇨, 임신성 당뇨 및 고혈당증 등의 상태를 유발하고, 췌장이 불충분한 양의 인슐린을 생성하거나 인체의 세포가 인슐린에 적절하게 반응하지 못해 포도당을 흡수하는 능력이 저하된 대사장애를 의미하며, 그 결과 포도당이 혈액 중에 축적되어 나타난다.
당뇨를 치료하기 위한 가장 대표적인 방법으로는 인슐린을 투여하여 환자의 혈당을 정상 수준으로 조절하는 방법이 있다. 인슐린은 인체의 췌장에서 분비되는 혈당 조절 호르몬으로, 혈액 내의 잉여 포도당을 세포로 옮겨 세포에 에너지원을 공급하는 한편 혈당을 정상 수준으로 유지시켜 주는 역할을 한다.
재조합 단백질 제조 기술이 발달하면서 다양한 종류의 인슐린 제품이 출시되었으며, 그 반응성에 따라 크게 5가지 종류로 구분할 수 있다. 이 중 가장 신속한 반응성을 나타내는 초속효성 인슐린은 약효가 빠르게 나타나 1분에서 20분 사이에 작용하기 시작하여, 1시간 후 즈음 최고의 약효를 보이고 3시간 내지 5시간 효과가 지속되는 특징이 있으며, 대표적인 제품으로는 인슐린 아스파트(NovoRapid®), 인슐린 리스프로(Humalog®), 인슐린 글루리신(Apidra®)이 있다. 다음으로 빠른 반응성을 나타내는 인슐린은 속효성 인슐린으로, 속효성 인슐린은 투여 후 약 30분 후에 혈당을 낮추기 시작하여 2시간에서 4시간 사이에 최고의 약효를 보이고 6시간 내지 8시간 효과가 지속된다. 대표적인 속효성 인슐린으로는 Actrapid®, Humilin® R, Hypurin Neutral 등이 있다. 중시간형 인슐린은 약효를 늦추기 위하여 프로타민이나 아연을 더한 물질로, 주사 후 약 1시간 30분부터 작용하기 시작하여 4시간에서 12시간 사이에 약효가 최대에 달하며, 16시간에서 24시간 지속되고, 대표적인 제품으로는 Protaphane®, Humulin® NPH, Hypurin Isophane®가 있다. 혼합형 인슐린은 초속효성 인슐린이나 속효성 인슐린을 중시간형 인슐린과 미리 섞어 두 종류의 인슐린을 한 번의 주사로 쉽게 투여할 수 있도록 한 것으로, NovoMix® 30 (30% 인슐린 아스파트, 70% 프로타민 결정 인슐린 아스파트), Humalog®Mix 25 (25% 인슐린 리스프로, 75% 인슐린 리스프로 프로타민 현탁), Humalog®Mix 50 (50% 인슐린 리스프로, 50% 인슐린 리스프로 프로타민 현탁)가 시중에 판매되고 있다. 마지막으로 지속형 인슐린은 하루에 한 번 혹은 두 번 주사하며 약효가 24시간까지 지속되는 인슐린으로 이는 보통 기저 인슐린으로 사용되는데, Lantus® (인슐린 글라진 insulin glargine, EP 0368187), Levemir® (인슐린 디터미어 insulin detemir, US 5,750,497), Tresiba® (인슐린 디글루덱 insulin degludec, US 7,615,532)가 판매되고 있다.
한편, 인슐린은 생산 경로에 따라 다양한 번역 후 변형 과정을 거치게 된다. 생산과 분비는 독립적이며, 제조된 인슐린은 분비를 위해 저장된다. C-펩타이드와 성숙 인슐린은 생물학적으로 활성을 나타내게 된다.
포유류에서 인슐린은 췌장의 베타 세포에서 합성되며, 인슐린은 두 개의 폴리펩타이드 사슬, 즉 A 쇄와 B 쇄로 구성되어 있고, 이들은 이황화 결합으로 연결되어 있다. 초기 인슐린은 베타 세포에서 프리프로인슐린이라 불리는 단일한 폴리펩타이드로 합성된다. 프리프로인슐린은 신생 폴리펩타이드 사슬을 조면소포체(rough endoplasmic reticulum)로 이동시키는 24개 아미노산 잔기의 신호 펩타이드를 포함하고 있다. 신호 펩타이드는 조면소포체의 내강으로 이동을 유도한 후 절단되어 프로인슐린이 형성된다. 조면소포체에서 프로인슐린은 정확한 형태로 접힘(folding)이 일어나고 3개의 이황화 결합을 형성한다. 소포체에서 조립된 후 5~10분 후, 프로인슐린은 미성숙 과립이 형성되는 트랜스-골지 네트워크로 수송된다.
프로인슐린은 엑소프로테아제 카르복시펩티다아제 E와 프로호르몬 컨버타아제(PC1, PC2)로 알려진 세포 엔도펩티다아제의 활성에 의해 활성형 인슐린으로 성숙된다. 엔도펩티다아제는 2개의 위치에서 절단을 유도하여 C-펩타이드라 불리는 단편을 방출하고, 2개의 펩타이드 쇄인 B 쇄 및 A 쇄는 2개의 이황화 결합으로 연결되게 된다. 절단 부위는 각각 한 쌍의 염기성 잔기(라이신(Lys)-64와 아르지닌(Arg)-65, 아르지닌(Arg)-31과 아르지닌(Arg)-32) 뒤에 위치한다. C-펩타이드가 절단된 후에, 이들 2 쌍의 염기성 잔기는 카르복시펩티다아제에 의해 제거된다. C-펩타이드는 프로 인슐린의 중앙 부에 위치하며, 프로인슐린의 일차 구조는 순서에 따라 "B-C-A"에 해당한다(B 쇄와 A 쇄는 질량을 바탕으로 동정되었고, C-펩타이드는 추후에 발견되었다.).
만들어진 성숙 인슐린(활성형 인슐린)은 성숙 과립 내에 포장되어 있다가 대사신호(예: 류신(Leu), 아르지닌(Arg), 포도당, 만노오즈)와 미주 신경 자극에 의해 세포에서 순환계로 분비되게 된다.
당뇨를 치료하기 위해서는 활성형 인슐린을 투여하게 되는데, 활성형 인슐린을 제조하기 위한 유전자 재조합 인슐린 제조 기술로, 우선, 일라이 릴리(Eli Lilly)사는 대장균을 이용하여 A 쇄와 B 쇄를 각각 발현시키고, in vitro에서 혼합시켜 이황화 결합을 만들고 A 쇄와 B 쇄를 연결시키는 방법을 사용하였으나, 생산효율이 좋지 않다는 문제점이 있었다. 이 후, 일라이 릴리(Eli Lilly)사는 프로인슐린을 발현시키고 in vitro 조건으로 이황화 결합을 만들고 나서, 트립신과 카르복시펩티다제 B로 C-펩타이드를 잘라내어 인슐린을 만드는 방법으로 전환하였다.
노보 노디스크(Novo Nordisk)사는 B 쇄와 A 쇄를 염기성의 아미노산 2개로 연결한 미니프로인슐린을 효모에서 발현시키고, 실험실적 조건으로 트립신 처리하여 인슐린을 수득하는 방법을 개발하였는데, 이 방법은 미니프로인슐린이 발현, 분비되는 과정에서 이황화 결합을 형성시키는 장점을 가지고 있고, 배지 중에 분비되기 때문에 분리 및 정제가 용이하다는 장점이 있으나, 대장균만큼 대규모의 생산에는 어려움이 있었다.
유전자 재조합 인슐린의 신규한 제조방법의 개발은 이후에도 적극적으로 진행되었는데, 헥스트사는 신규 인슐린 유도체 또는 프리프로인슐린을 대장균에서 발현시키고, in vitro 조건에서 이황화 결합을 형성시키고, 리실엔도펩티다제 (lysylendopeptidase) 또는 클로스트리파인(clostripain)과 카르복시펩티다제 (carboxypeptidase) B로 처리하여 인슐린을 수득하는 방법을 개발하였고, 바이오테크놀로지 제너럴 코퍼레이션(BIO-TECHNOLOGY GENERAL CORP.)사가 대장균에서 슈퍼옥시드 디스뮤타제(SOD)에 프로인슐린을 연결한 융합단백질을 발현시켜 발현효과와 in vitro 조건에서의 이황화 결합 형성 효율을 향상시켰다. 인슐린으로 변환은 트립신과 카르복시펩티다아제 B로 행하였다. 이와 같이, 유전자 재조합 인슐린의 제조방법은 많은 시도가 있고, 발현 효율, 이황화 결합의 형성 효율, 인슐린으로 변환 방법의 관점에서 개량되고 있다(KR 10-2001-7013921).
본 발명자들은 천연 인슐린에 비해 생체 내 반감기가 증가되어 지속성이 향상된 인슐린 글라진 전구체를 인슐린 글라진으로 효소 전화시키는 공정에서 인슐린 글라진의 순도와 수율을 증가시키기 위해서는 인슐린 글라진 전구체의 재접힘(refolding)을 유도한 후 이를 정제하는 과정이 요구되고, 특히 정제 과정에서 사용되는 음이온 교환 크로마토그래피의 이온교환수지의 평형화 단계 및 용출 단계에서 사용되는 완충용액의 pH와 염의 농도를 적절히 조절하면 이후 생산되는 인슐린 글라진의 순도와 수율을 현저히 증가시킬 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
EP 0368187 US 5,750,497 US 7,615,532 KR 10-2001-7013921
본 발명의 목적은 인슐린 전구체를 높은 수율과 높은 순도로 정제하는 방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 다음 단계를 포함하는 인슐린 전구체의 정제방법을 제공한다.
(a) 음이온 교환수지를 제1완충용액으로 평형화시키는 단계;
(b) 인슐린 전구체를 포함하는 용액을 상기 평형화된 음이온 교환수지에 도입시키는 단계; 및
(c) 제1완충용액보다 pH가 높은 제2완충용액을 이용하여 상기 음이온 교환수지에 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계.
본 발명에 따른 인슐린 전구체 정제방법은 완충용액들의 적절한 pH 조합으로 인슐린 전구체의 이온교환수지에 대한 결합력을 강화시키고 이후 인슐린 전구체가 효과적으로 용출될 수 있도록 한 고순도 고수율의 인슐린 전구체 정제방법으로, 이는 정제과정 후 효소 전환에 의한 고수율의 인슐린 생산에 매우 유용하다.
다른 식으로 정의되지 않는 한, 본 명세서에서 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어들은 본 발명이 속하는 기술분야에서 숙련된 전문가에 의해서 통상적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 갖는다. 일반적으로 본 명세서에서 사용된 명명법은 본 기술 분야에서 잘 알려져 있고 통상적으로 사용되는 것이다.
본 발명에서는 유전자 재조합 기술에 의해 생산된 인슐린의 재접힘을 유도하는 일련의 과정에서 발생하는 불순물을 효과적으로 제거하기 위한 정제 공정에서 종래의 음이온 교환 크로마토그래피와 상이하게 이온교환수지의 평형화에 사용되는 완충용액에 비해 용출 단계에서 사용되는 완충용액의 pH를 증가시키는 경우, 고순도/고수율의 인슐린 전구체가 정제될 수 있음을 확인하였다.
따라서, 본 발명은 일 관점에서, 다음 단계를 포함하는 인슐린 전구체의 정제방법에 관한 것이다.
(a) 음이온 교환수지를 제1완충용액으로 평형화시키는 단계;
(b) 인슐린 전구체를 포함하는 용액을 상기 평형화된 음이온 교환수지에 도입시키는 단계; 및
(c) 제1완충용액보다 pH가 높은 제2완충용액을 이용하여 상기 음이온 교환수지에 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계.
본 발명에서 용어, "인슐린 전구체"는 인슐린 A 쇄 및 B 쇄, 그리고 그 사이에 C-펩타이드를 포함하는 한 가닥 사슬의 펩타이드로, "프로인슐린 (proinsulin)"과 혼용되어 사용될 수 있다. 본 발명에서 상기 인슐린 전구체는 천연형 인슐린 전구체, 인슐린 아날로그 전구체, 이들의 유도체의 전구체 형태를 모두 포함하는 개념이다. 상기 인슐린 전구체는 당해 분야의 통상의 기술자가 EP 0,211,299, EP 0,227,938, EP 0,229,998, EP 0,286,956, 또는 KR 10-0158197 등의 문헌에서 공개된 방법을 참조하여 준비한 것일 수 있다.
본 발명에서 용어, "인슐린 (insulin)"은 체내의 혈당을 조절하는 역할을 수행하는 단백질로, 천연형 인슐린은 췌장에서 분비되는 호르몬으로서 일반적으로 세포 내 포도당 흡수를 촉진하고 지방의 분해를 억제하여 체내의 혈당을 조절하는 역할을 한다. 본 발명에서 상기 인슐린은 천연형 인슐린, 인슐린 아날로그 및 이들의 유도체의 형태를 모두 포함하는 개념이다.
인슐린은 혈당조절 기능이 없는 인슐린 전구체(proinsulin) 형태에서 프로세싱을 거쳐 혈당 조절 기능을 가지는 인슐린이 된다. 인슐린은 2개의 폴리펩티드 사슬, 즉 각각 21개 및 30개 아미노산 잔기를 포함하는 A-쇄 및 B-쇄로 구성되어 있고, 이들은 2개의 이황화 다리로 상호 연결되어 있다. 천연형 인슐린의 A-쇄 및 B-쇄는 각각 하기 아미노산 서열을 포함할 수 있다.
A-쇄:
Gly-Ile-Val-Glu-Gln-Cys-Cys-Thr-Ser-Ile-Cys-Ser-Leu-Tyr-Gln-Leu-Glu-Asn-Tyr-Cys-Asn
B-쇄:
Phe-Val-Asn-Gln-His-Leu-Cys-Gly-Ser-His-Leu-Val-Glu-Ala-Leu-Tyr-Leu-Val-Cys-Gly-Glu-Arg-Gly-Phe-Phe-Tyr-Thr-Pro-Lys-Thr
본 발명에서 사용하는 인슐린 전구체 및 인슐린은 사람 유래일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
본 발명에서 인슐린 아날로그 (analog)는 천연형과 비교하였을 때, B 쇄 또는 A 쇄의 아미노산이 변이된 것을 포함한다. 상기 인슐린 아날로그는 천연형 인슐린과 동일 또는 상응하는 생체 내의 혈당 조절기능을 보유할 수 있다. 구체적으로, 상기 인슐린 아날로그 전구체 또는 인슐린 아날로그는 천연형에서 적어도 하나 이상의 아미노산이 치환 (substitution), 추가 (addition), 결실 (deletion), 수식 (modification) 및 이들의 조합으로 이루어지는 군에서 선택되는 변형이 일어난 것일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
본 발명에 사용할 수 있는 인슐린 아날로그는 유전자 재조합 기술로 만든 인슐린 아날로그를 포함하며, 상기 인슐린 아날로그는 역방향 인슐린 (inverted insulin), 인슐린 변이체 (variants), 인슐린 단편 (fragments) 등의 개념을 포함한다.
상기 유도체는 체내에서 혈당을 조절하는 기능을 보유하면서, 천연형 인슐린 또는 인슐린 아날로그의 A-쇄 및 B-쇄의 아미노산 서열 각각에 대해 상동성을 보이며, 아미노산 한 잔기의 일부 그룹이 화학적으로 치환 (예: alpha-methylation, alpha-hydroxylation), 제거 (예: deamination) 또는 수식 (예: N-methylation) 된 형태의 펩타이드 형태를 포함한다. 상기 인슐린 단편은 인슐린에 하나 이상의 아미노산이 추가 또는 삭제된 형태를 의미하며 추가된 아미노산은 천연에 존재하지 않는 아미노산 (예: D형 아미노산)일 수 있고, 이러한 인슐린 단편은 체내에서 혈당을 조절하는 기능을 보유한다.
상기 인슐린 변이체는 인슐린과 아미노산 서열이 하나 이상 다른 펩타이드로서 체내에서 혈당을 조절하는 기능을 보유한다.
본 발명의 인슐린 아날로그, 유도체, 단편 및 변이체는 독립적으로 사용될 수 있고 조합도 가능하다. 예를 들어 아미노산 서열이 하나 이상 다르고 아미노 말단 아미노산 잔기에 탈아미노화 (deamination)가 도입된 것으로 체내에서 혈당을 조절하는 기능을 보유한 펩타이드 역시 본 발명의 범주에 포함된다.
구체적으로, 본 발명에서 상기 인슐린 아날로그는 인슐린 글라진일 수 있다. 인슐린 글라진은 인슐린 A-쇄의 21번째 아미노산인 아스파라진(asparagine)을 글라이신(glycine)으로 치환하여 안정성을 도모하였고, B-쇄의 카르복시 말단에 2개의 아르지닌(arginine)을 추가하여 약산성 pH에서 용해성을 갖도록 하였으며, 산성용액(pH 4.0)으로 투여하면 피하조직에서 미세침전(microprecipitation)을 형성하고 인슐린 글라진 헥사머(glargine hexamer)인 미세침전으로부터 서서히 용해되어 유리되어 작용시간이 길어져, 지속시간이 24시간에 도달하도록 개발된 인슐린 아날로그이다. 인슐린 글라진의 A-쇄 및 B-쇄는 각각 하기 아미노산 서열을 포함할 수 있다(US 5,656,722 참조).
A-쇄:
Gly-Ile-Val-Glu-Gln-Cys-Cys-Thr-Ser-Ile-Cys-Ser-Leu-Tyr-Gln-Leu-Glu-Asn-Tyr-Cys-Gly
B-쇄:
Phe-Val-Asn-Gln-His-Leu-Cys-Gly-Ser-His-Leu-Val-Glu-Ala-Leu-Tyr-Leu-Val-Cys-Gly-Glu-Arg-Gly-Phe-Phe-Tyr-Thr-Pro-Lys-Thr-Arg-Arg
본 발명에 있어서, 상기 음이온 교환 크로마토그래피에 사용되는 음이온 교환수지는 다이에틸아미노에틸 셀룰로스(Diethylaminoethyl cellulose) 계열인 것을 특징으로 할 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
구체적으로 상기 음이온 교환수지는 Fractogel EMD DEAE 또는 Capto DEAE인 것을 특징으로 할 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
크로마토그래피에 사용되는 이온교환수지의 평형화 조건으로는 제1완충용액의 pH 범위를 7.0~8.0, 바람직하게는 7.8~8.0, 가장 바람직하게는 7.9로 유지하면서 사용되는 것일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다. 또한, 제1완충용액으로는 10~100 mM의 Tris-HCl 또는 붕산염(borate), 바람직하게는 20~50 mM의 Tris-HCl 또는 붕산염(borate)을 사용하는 것일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
크로마토그래피의 용출 조건으로는 제2완충용액의 pH 범위를 pH 8.0~10.0, 바람직하게는 pH 9.0~9.4, 더 바람직하게는 pH 9.2로 유지하면서 사용되는 것일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다. 또한, 제2완충용액으로는 0~200mM의 염화나트륨이 함유된 10~100mM Tris-HCl 또는 붕산염(Borate)일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다. 본 발명에서 사용될 수 있는 제2완충용액은, 바람직하게는, (i) 0~100 mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50 mM Tris-HCl; (ii) 10mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.2의 50mM 붕산염(borate); (iii) 30 mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.4의 50mM 붕산염(borate); 및 (iv) 150~200 mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50 mM Tris-HCl로 구성된 군에서 선택되는 것일 수 있으나, 이에 한정되지는 않는다.
본 발명의 일 양태로서, (a) Fractogel EMD DEAE를 pH 7.8~7.9의 20mM Tris-HCl로 평형화시키는 단계; (b) 인슐린 전구체를 포함하는 재접힘(refolding) 용액을 상기 평형화된 Fractogel EMD DEAE에 도입시키는 단계; 및 (c) 50~100mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50mM Tris-HCl로 상기 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계;를 포함하는 방법으로 인슐린 전구체를 정제할 수 있다.
본 발명의 또 다른 양태로서, (a) Fractogel EMD DEAE를 pH 7.8~7.9의 20mM Tris-HCl로 평형화시키는 단계; (b) 인슐린 전구체를 포함하는 재접힘(refolding) 용액을 상기 평형화된 Fractogel EMD DEAE에 도입시키는 단계; 및 (c) 10mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.2의 50mM 붕산염(borate)로 상기 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계;를 포함하는 방법으로 인슐린 전구체를 정제할 수 있다.
본 발명의 또 다른 양태로서, (a) Fractogel EMD DEAE를 pH 7.8~7.9의 20mM Tris-HCl로 평형화시키는 단계; (b) 인슐린 전구체를 포함하는 재접힘(refolding) 용액을 상기 평형화된 Fractogel EMD DEAE에 도입시키는 단계; 및 (c) 30mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.4의 50mM 붕산염(borate)로 상기 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계;를 포함하는 방법으로 인슐린 전구체를 정제할 수 있다.
본 발명의 또 다른 양태로서, (a) Fractogel EMD DEAE를 pH 8.0의 50mM Tris-HCl로 평형화시키는 단계; (b) 인슐린 전구체를 포함하는 재접힘(refolding) 용액을 상기 평형화된 Fractogel EMD DEAE에 도입시키는 단계; 및 (c) pH 9.2의 50mM Tris-HCl로 상기 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계;를 포함하는 방법으로 인슐린 전구체를 정제할 수 있다.
본 발명의 또 다른 양태로서, (a) Capto DEAE를 pH 7.8~7.9의 20mM Tris-HCl로 평형화시키는 단계; (b) 인슐린 전구체를 포함하는 재접힘(refolding) 용액을 상기 평형화된 Capto DEAE에 도입시키는 단계; 및 (c)150~200mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50mM Tris-HCl로 상기 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계;를 포함하는 방법으로 인슐린 전구체를 정제할 수 있다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 예시하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지 않는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.
실시예 1. 인슐린 글라진 (Insulin Glargine ) 전구체의 재접힘 (refolding) 유도
본 사에서 제작한 인슐린 글라진 전구체를 가용화 하기 위하여 3.75 g의 인슐린 글라진 전구체에 0.2 M Tris-HCl 완충용액을 넣어 250 mL이 되도록 하고, 이후 상온에서 1시간 동안 교반하였다. 가용화가 완료된 용액은 재접힘을 위하여 산화제 0.4 mM 시스테인(cysteine)이 포함된 0.2M Tris-HCl 완충용액으로 10배 희석하여 저온에서 10시간 동안 교반하였다. 교반이 끝난 용액은 염산을 사용하여 pH 9.0으로 낮추었다.
실시예 2. 음이온 교환 크로마토그래피 정제를 위한 이온교환수지의 선정
인슐린 전구체의 재접힘 이후 불순물이 제거되어야 인슐린 글라진 전구체를 인슐린 글라진으로 효소 전환하는 효율을 증가시킬 수 있다. 불순물을 제거하기 위하여 본 발명에서는 음이온 교환 크로마토그래피를 이용하고자 하였으며, 정제 과정에서 인슐린 전구체 손실(loss)을 줄여 그 수율을 최대화하기 위한 공정을 개발하였다.
우선, 음이온 교환 크로마토그래피에 적합한 이온교환수지를 선별하고자, Fractogel EMD DEAE(Merck)와 Poros 50D(Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 동적결합능력을 측정하였다.
직경 1 cm, 높이 20 cm의 컬럼에 상기 각각의 음이온 교환수지를 충진하였다. 재접합이 완료된 인슐린 글라진 전구체가 음이온 교환수지에 충분히 결합할 수 있도록 하기 위하여 다양한 pH의 음이온 교환수지를 평형화하기 위한 완충용액인 50mM Tris-HCl(제1완충용액)을 적용하였고, 이후 인슐린 글라진 전구체가 최대한 용출되도록 0.5M의 염화나트륨이 포함된 50mM Tris-HCl 완충액(제2완충용액)의 pH를 변화시켜 적용하였다(표 1).
이온수지 종류 제1완충용액 제2완충용액 동적결합능력(g/L)
Fractogel EMD DEAE 8.0 8.0 ≥ 52.7
8.5 8.5 ≥ 38.1
9.0 9.0 ≥ 27.7
Poros 50D 8.0 8.0 ≥ 24.1
8.5 8.5 ≥ 30.3
9.0 9.0 ≥ 34.5
그 결과, 표 1에 나타난 바와 같이, Fractogel EMD DEAE가 pH 8.0의 제1완충용액과 pH 8.0의 제2완충용액을 사용하였을 때 가장 높은 동적결합능력(g/L)을 나타내어, Fractogel EMD DEAE를 이용하여 추가 실험을 진행하였다.
실시예 3. Fractogel EMD DEAE의 제1완충용액 선정
Fractogel EMD DEAE 이온교환수지를 사용할 때, 인슐린 글라진 전구체의 수율을 최대화할 수 있도록, 제1완충용액의 pH 및 Tris-HCl의 농도 조건을 달리하며 실험을 진행하였다.
제1완충용액의 pH는 각각 7.8 또는 8.0으로 조정하고, Tris-HCl의 농도는 각각 20 mM 또는 50 mM로 맞추어 Fractogel EMD DEAE 이온교환수지를 평형화하였다. 이후, 실시예 1에서 재접힘 된 인슐린 글라진 전구체를 포함하는 용액을 넣어 이온교환수지에 인슐린 글라진 전구체를 결합시키고, 0.5M 염화나트륨이 포함된 pH 9.2의 50 mM Tris-HCl 완충용액(제2완충용액)으로 용출시켰다. 용출이 완료된 인슐린 글라진 전구체의 순도 및 수율은 RP-HPLC로 분석하였다.
제1완충용액 제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
20 mM Tris-HCl, pH 7.8 50mM Tris-HCl/
0.5 M 염화나트륨,
pH 9.2		 79.5 82.4
50 mM Tris-HCl, pH 7.8 78.5 79.7
20 mM Tris-HCl, pH 8.0 77.3 79.5
50 mM Tris-HCl, pH 8.0 76.7 72.7
그 결과, 표 2에 나타난 바와 같이, Fractogel EMD DEAE 이온교환수지에서 pH 7.8의 20 mM Tris-HCl을 제1완충용액으로 사용하였을 때의 수율이 82.4%, 순도가 79.5%로 가장 우수한 효과가 발휘되는바, 해당 조건으로 추가 실험을 진행하였다.
실시예 4. Fractogel EMD DEAE에 적합한 제2완충용액 선정
추가로, Fractogel EMD DEAE 이온교환수지를 사용할 때, 인슐린 글라진 전구체의 수율을 최대화할 수 있도록, 제2완충용액의 pH 및 첨가되는 염화나트륨의 농도 조건을 달리하며 실험을 진행하였다.
실시예 3에서 결정된 제1완충용액(20mM Tris-HCl, pH 7.9)로 이온교환수지를 평형화하고, 실시예 1에서 재접힘 된 인슐린 글라진 전구체를 포함하는 용액을 넣어 이온교환수지에 인슐린 글라진 전구체를 결합시킨 후, 제2완충용액을 이용하여 용출시켰다. 이 때, 제2완충용액은 50mM Tris-HCl의 pH를 각각 9.0 또는 9.2로 조정하고, pH 9.0의 50mM Tris-HCl에는 각각 50mM, 100mM의 염화나트륨을 첨가하여 제조하였다. 용출이 완료된 인슐린 글라진 전구체의 순도 및 수율은 RP-HPLC로 분석하였다.
제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
50mM Tris-HCl pH 9.0 23.9 0.0
50mM 염화나트륨, pH 9.0 76.9 91.2
100mM 염화나트륨, pH 9.0 72.7 93.4
pH 9.2 79.0 28.4
그 결과, 표 3에 나타난 바와 같이, Fractogel EMD DEAE 이온교환수지에서 제2완충용액은 100mM의 염화나트륨이 첨가된 pH 9.0의 50mM Tris-HCl에서 인슐린 전구체의 수율이 93.4%로 가장 높게 나오는 것을 확인하였다.
실시예 5. Fractogel EMD DEAE에 적합한 제2완충용액의 추가 선정
실시예 4에서 확인된 제2완충용액의 조성에 비해 더 개선된 효과를 갖는 제2완충용액을 도출해보고자, 완충용액의 종류를 Tris-HCl에서 붕산염(borate)으로 변경해 보았다.
실시예 3에서 결정된 제1완충용액(20mM Tris-HCl, pH 7.9)로 이온교환수지를 평형화하고, 실시예 1에서 재접힘 된 인슐린 글라진 전구체를 포함하는 용액을 적하하여 이온교환수지에 인슐린 글라진 전구체를 결합시킨 후, 50mM 붕산염의 pH를 각각 9.2 또는 9.4로 하고, 10mM, 30mM 또는 50mM의 염화나트륨을 첨가하여 제조된 제2완충용액을 이용하여 인슐린 글라진 전구체를 용출시켰다. 용출이 완료된 인슐린 글라진 전구체의 순도 및 수율은 RP-HPLC로 분석하였다.
제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
50mM 붕산염 50mM 염화나트륨, pH 9.2 78.8 93.3
30mM 염화나트륨, pH 9.2 80.5 93.5
10mM 염화나트륨, pH 9.2 82.8 100.0
30mM 염화나트륨, pH 9.4 77.8 100.0
10mM 염화나트륨, pH 9.4 81.5 88.8
그 결과, 표 5에 나타난 바와 같이, 30mM 염화나트륨이 첨가된 pH 9.4의 50mM 붕산염 및 10mM 염화나트륨이 첨가된 pH 9.2의 50mM 붕산염에서 가장 높은 수율의 인슐린 글라진 전구체가 정제되었다.
실시예 6. Fractogel EMD DEAE의 붕산염 제2완충용액에 적합한 제1완충용액 의 선정
실시예 5에서 선정된 제2완충용액의 효과를 추가적으로 개선하기 위하여 제1완충용액의 조성을 변경하여 실험을 진행하였다.
pH 7.9의 20mM Tris-HCl 대신 pH 8.2의 20mM 붕산염을 제1완충용액으로 사용하여, 실시예 5와 동일한 조건으로 실험을 진행하였다.
제1완충용액 제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
20mM Tris-HCl, pH 7.9 50mM붕산염/
10mM 염화나트륨, pH 9.2		 58.1 91.2
20mM 붕산염, pH 8.2 54.0 85.7
그 결과, 표 5에 나타난 바와 같이, pH 7.9의 20mM Tris-HCl을 사용하는 경우 인슐린 글라진 전구체 수율이 더 높게 나타남을 확인하였다.
실시예 7. Fractogel EMD DEAE에 완충용액 조건에 따른 수율 및 순도 비교
Fractogel EMD DEAE 이온교환수지를 사용할 때, 완충용액의 종류 및 조건에 따른 인슐린 글라진 전구체의 수율 및 순도의 비교하고자 하였다.
이를 위하여 표 6의 제1완충용액의 조건에 따라 이온교환수지를 평형화 하고 실시예 1에서 재접힘 된 인슐린 글라진 전구체를 포함하는 용액을 접합하여 이온교환수지에 인슐린 글라진 전구체를 결합시킨 후 표 6의 제2완충용액의 조건으로 용출시켰다.
제1완충용액 제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
50mM Tris-HCl, pH 8.0 50mM Tris-HCl, pH 8.0
0.5M 염화나트륨		 69.7 44.7
50mM Tris-HCl, pH 8.0 50mM Tris-HCl, pH 9.2 77.9 84.2
그 결과, 표 6에서와 같이, pH 9.2의 50mM Tris-HCl을 이용하여 용출하는 경우 pH를 8.0으로 유지하고 0.5M의 염화나트륨을 사용하여 용출한 것 보다 그 효과가 높게 나타남을 확인하였다.
실시예 8. Capto DEAE에 적합한 제2완충용액 선정
Fractogel EMD DEAE 이온교환수지 대신 사용할 수 있는 이온교환수지로 동일한 cellulose계열의 Capto DEAE 이온교환수지에 적합한 완충용액을 선정하고자 하였다.
이를 위하여 제1완충용액은 pH 7.9의 20mM Tris-HCl로 하여 이온교환수지를 평형화하고, 이후 실시예 1에서 재접힘 된 인슐린 글라진 전구체를 포함하는 용액을 도입하여 이온교환수지에 인슐린 글라진 전구체를 결합시킨 후, 100~200mM의 염화나트륨이 첨가된 pH 7.5~8.0의 50mM Tris-HCl로 용출시켰다.
제2완충용액 순도 (%) 수율 (%)
50mM Tris-HCl 100mM 염화나트륨, pH 7.5 84.6 40.6
150mM 염화나트륨, pH 7.5 78.5 59.8
100mM 염화나트륨, pH 7.0 81.9 31.3
150mM 염화나트륨, pH 8.0 76.5 64.9
150mM 염화나트륨, pH 9.0 79.0 61.9
200mM 염화나트륨, pH 8.0 78.5 66.9
그 결과, 표 7에서와 같이, 200mM의 염화나트륨이 포함된 pH 8.0의 50mM Tris-HCl을 이용하여 용출하는 경우 그 효과가 가장 높게 나타남을 확인하였다.
이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시양태일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

Claims (7)

  1. 다음 단계를 포함하는 인슐린 전구체의 정제방법:
    (a) 음이온 교환수지를 제1완충용액으로 평형화시키는 단계;
    (b) 인슐린 전구체를 포함하는 용액을 상기 평형화된 음이온 교환수지에 도입시키는 단계; 및
    (c) 제1완충용액보다 pH가 높은 제2완충용액을 이용하여 상기 음이온 교환수지에 결합된 인슐린 전구체를 용출시키는 단계.
  2. 제1항에 있어서, 상기 음이온 교환수지는 다이에틸아미노에틸 셀룰로스(Diethylaminoethyl cellulose) 계열인 것을 특징으로 하는 방법.
  3. 제2항에 있어서, 상기 음이온 교환수지는 Fractogel EMD DEAE 또는 Capto DEAE인 것을 특징으로 하는 방법.
  4. 제1항에 있어서, 제1완충용액은 pH 7.0~8.0의 20mM Tris-HCl인 것을 특징으로 하는 방법.
  5. 제1항에 있어서, 제2완충용액은 0~200mM의 염화나트륨이 함유된 pH 8.0~10.0의 10~100mM Tris-HCl 또는 붕산염(Borate)인 것을 특징으로 하는 방법.
  6. 제5항에 있어서, 상기 제2완충용액은 다음 군에서 선택되는 것을 특징으로 하는 방법:
    (i) 0~100mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50mM Tris-HCl;
    (ii) 10mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.2의 50mM 붕산염(borate);
    (iii) 30mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 9.4의 50mM 붕산염(borate); 및
    (iv) 150~200mM 염화나트륨(NaCl)이 함유된 pH 8.0~9.0의 50mM Tris-HCl.
  7. 제1항에 있어서, 상기 인슐린 전구체는 인슐린 글라진 전구체인 것을 특징으로 하는 방법.

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Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0368187A2 (de) 1988-11-08 1990-05-16 Hoechst Aktiengesellschaft Neue Insulinderivate, ihre Verwendung und eine sie enthaltende pharmazeutische Zubereitung
US5750497A (en) 1993-09-17 1998-05-12 Novo Nordisk A/S Acylated insulin
US7615532B2 (en) 2003-08-05 2009-11-10 Novo Nordisk A/S Insulin derivatives

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2629568C3 (de) * 1976-07-01 1981-09-10 Hoechst Ag, 6000 Frankfurt Verfahren zur Reinigung von Insulin, seinen Analogen und Derivaten
DE3526995A1 (de) 1985-07-27 1987-02-05 Hoechst Ag Fusionsproteine, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
DE3636903A1 (de) 1985-12-21 1987-07-02 Hoechst Ag Fusionsproteine mit eukaryotischem ballastanteil
DE3541856A1 (de) 1985-11-27 1987-06-04 Hoechst Ag Eukaryotische fusionsproteine, ihre herstellung und verwendung sowie mittel zur durchfuehrung des verfahrens
DE3805150A1 (de) 1987-04-11 1988-10-20 Hoechst Ag Gentechnologisches verfahren zur herstellung von polypeptiden
KR100253916B1 (ko) * 1997-12-29 2000-05-01 김충환 사람 인슐린 전구체의 제조방법
JP4319979B2 (ja) * 2002-04-26 2009-08-26 ジェネンテック・インコーポレーテッド タンパク質の非アフィニティ精製
CN105051528A (zh) * 2012-11-15 2015-11-11 弗·哈夫曼-拉罗切有限公司 离子强度介导的pH梯度离子交换色谱
CN105377873B (zh) * 2013-07-12 2021-03-30 豪夫迈·罗氏有限公司 阐明离子交换层析输入优化
EP3171888B1 (en) * 2014-07-21 2022-12-28 Merck Sharp & Dohme LLC Chromatography process for purification of inlsulin and insulin analogs
US10745457B2 (en) * 2015-09-02 2020-08-18 Merck Sharp & Dohme Corp. Process for obtaining insulin with correctly formed disulfide bonds

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0368187A2 (de) 1988-11-08 1990-05-16 Hoechst Aktiengesellschaft Neue Insulinderivate, ihre Verwendung und eine sie enthaltende pharmazeutische Zubereitung
US5750497A (en) 1993-09-17 1998-05-12 Novo Nordisk A/S Acylated insulin
US7615532B2 (en) 2003-08-05 2009-11-10 Novo Nordisk A/S Insulin derivatives

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