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KR101805034B1 - A method for triploid fertilized egg of Onchorhynchus mykiss - Google Patents

A method for triploid fertilized egg of Onchorhynchus mykiss

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Publication number
KR101805034B1
KR101805034B1 KR1020160139799A KR20160139799A KR101805034B1 KR 101805034 B1 KR101805034 B1 KR 101805034B1 KR 1020160139799 A KR1020160139799 A KR 1020160139799A KR 20160139799 A KR20160139799 A KR 20160139799A KR 101805034 B1 KR101805034 B1 KR 101805034B1
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KR
South Korea
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diploid
rainbow trout
embryo
female
induction
Prior art date
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Active
Application number
KR1020160139799A
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Korean (ko)
Inventor
권오남
김경용
Original Assignee
권오남
김경용
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Publication date
Application filed by 권오남, 김경용 filed Critical 권오남
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Abstract

본 발명은 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법에 관한 것이다. 본 발명의 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법을 이용 시, 국내에서 효율적인 방법으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 수득할 수 있어, 외국에서 도입되는 삼배체 무지개송어 수정란의 이송에 따른 낮은 부화율을 해결할 수 있고, 외국란 도입에 따라 함께 유입될 수 있는 무지개 송어 관련 난치병 질환 도입을 근본적으로 해결할 수 있다. 또한, 국내 생산되는 양식산업에서 비효율적인 이배체 동란(冬卵)의 문제점을 해결할 수 있어, 관련 사업에 유용하게 이용될 수 있다. The present invention relates to a method for producing triplicate rainbow trout embryos. In the case of using the method of preparing the triplet rainbow trout embryo of the present invention, it is possible to obtain a triploid rainbow trout embryo in an efficient manner in Korea, thereby solving the low hatching rate due to the transfer of the triplet rainbow trout embryo introduced in foreign countries, The introduction of intrinsic disease related to rainbow trout, which can be introduced together according to the present invention, can be fundamentally solved. In addition, it can solve the problems of ineffective diapause (winter egg) in the domestic aquaculture industry and can be usefully used in related business.

Description

삼배체 무지개 송어 수정란의 제조 방법{A method for triploid fertilized egg of Onchorhynchus mykiss}Technical Field [0001] The present invention relates to a method for preparing triploid fertilized eggs of Onchorhynchus mykiss,

본 발명은 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법에 관한 것이다. The present invention relates to a method for producing triplicate rainbow trout embryos.

무지개송어는 1960년대 미국에서 들여온 외래종이지만 국내외적으로 이식 후 자국내에 매우 적응이 잘된 담수 대표 양식어종이다. 상기 무지개송어는 주로 12월 전후에 산란기를 갖고, 산란기에 있는 무지개송어 어미들로부터 얻은 성숙한 암수배우체(알과 정자)를 이용하여 정상적인 수정란을 얻게 된다. 이 때 얻은 수정란의 염색체상은 2n으로 이배체로 불린다. 상기 이배체 수정란은 1년 째 500 g 전후까지 성장해서 2년 째 1300-1500 g 이상으로 산란기를 맞게 되어 산란에 참여하게 된다. 하지만 무지개송어의 가식부는 1 kg 이하에서 약 40% 정도 밖에 나오지 않기 때문에 1.5 kg까지 성장시키면 약 60%가량의 가식부가 나타나므로 산란기를 넘어서 이듬해까지 성장시켜야 가능하다. 하지만 산란기를 넘기는 동안 수컷은 폐사율이 높고, 암컷의 경우 산란에 따른 체중감소로 사육 효율이 매우 낮아져서 정상적인 이배체를 이용한 2-3년 동안 사육하는 것은 매우 비효율적인 방법으로 인식되고 있다. Rainbow trout is an exotic species imported from the United States in the 1960s, but it is a well-adapted freshwater fish species domestically and internationally. The rainbow trout has a spawning season mainly around December, and a normal embryo is obtained using mature male gametophytes (eggs and sperm) obtained from the rainbow trout mother in the spawning season. The chromosome image of the embryo obtained at this time is called the diploid with 2n. The diploid embryo grows up to around 500 g in the first year and spawning in the second year at more than 1300-1500 g. However, since the edible portion of rainbow trout is only about 40% less than 1 kg, it grows up to 1.5 kg, and about 60% of the edible portion appears, so it can grow beyond the spawning season until the following year. However, during the spawning season, the mortality rate of males is high, and in females, the efficiency of breeding is very low due to weight loss due to spawning, so breeding for 2-3 years using normal diploids is recognized as a very inefficient method.

국내외에서 여러 방법을 이용하여 삼배체를 만드는 기술이 존재하고, 이를 미꾸라지 등 여러 어종에 적용하여 삼배체를 유도한다. 그러나, 무지개송어 삼배체 수정란 제조에 있어서 40% 이하 혹은 70% 이하의 매우 낮은 삼배체 생산율이 나타나고, 삼배체로 유통된 알이 성장하여 정상적으로 알과 정자를 갖게 되는 것이 실패하는 사례가 보고되었다. 따라서, 효율적인 삼배체 수정란의 생산 방법이 필요한 실정이다.There are techniques to make a triple body using various methods at home and abroad, and apply it to various fish species such as loach and induce triple body. However, in the production of rainbow trout triploid embryos, very low triploid production rates of less than 40% or 70% are observed, and it has been reported that triploid eggs grow and have normal eggs and sperm. Therefore, it is necessary to produce an efficient method of producing the triploid embryo.

이에 본 발명자들은 효율적으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 제조하는 방법을 연구하던 중, 무지개송어의 이배체 수정란의 수정 시 일정 온도를 주고, 수정 후 일정 방치 시간을 둔 다음, 가온 온도 및 시간 조건을 주었다. 그 후, 상기 조건을 반복하여 사배체를 유도한 후, 상기 사배체에 암컷화를 유도하여 이배체 수컷과 교배한 결과, 효과적으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 생산할 수 있음을 확인하여, 본 발명을 완성하였다.Therefore, the inventors of the present invention were studying a method for producing triploid rainbow trout eggs efficiently, giving a fixed temperature at the time of fertilization of diploid embryos of rainbow trout, setting a certain period of time after fertilization, and then giving warming temperature and time conditions. Thereafter, the above conditions were repeated to induce the female to induce femaleization, and as a result of crossing with the male of the diploid body, it was confirmed that triploid rainbow trout embryos could be produced effectively, thus completing the present invention.

또한, 본 발명의 목적은 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법을 제공하는 것이다. It is also an object of the present invention to provide a method for producing triplicate rainbow trout embryos.

상기와 같은 과제를 해결하기 위해, 본 발명은 (1) 무지개송어(Onchorhynchus mykiss) 이배체 암컷과 수컷을 사용하여 이배체 수정란을 유도하는 단계; (2) 상기 (1) 단계의 이배체(diploid) 수정란을 수정 후 6.5 내지 7.5시간 조건으로 방치하여 사배체(tetraploid)로 유도하는 단계; 및 (3) 상기 사배체와 이배체의 암수를 교차 교배하는 단계;를 포함하는 삼배체(triploid) 무지개송어 수정란의 제조 방법을 제공한다.In order to solve the above-mentioned problems, the present invention provides a method for producing a diploid embryo, comprising the steps of: (1) inducing a diploid embryo using a male Onsolehynchus mykiss diploid; (2) inducing a diploid embryo of step (1) to a tetraploid state after being corrected for 6.5 to 7.5 hours; And (3) cross-crossing the male and female diploid crossbreds to produce a triploid rainbow trout embryo.

본 발명의 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법을 이용 시, 국내에서 효율적인 방법으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 수득할 수 있어, 외국에서 도입되는 삼배체 무지개송어 수정란의 이송에 따른 낮은 부화율을 해결할 수 있고, 외국란 도입에 따라 함께 유입될 수 있는 무지개 송어 관련 난치병 질환 도입을 근본적으로 해결할 수 있다. 또한, 국내 생산되는 양식산업에서 비효율적인 이배체 동란(冬卵)의 문제점을 해결할 수 있어, 관련 사업에 유용하게 이용될 수 있다. In the case of using the method of preparing the triplet rainbow trout embryo of the present invention, it is possible to obtain a triploid rainbow trout embryo in an efficient manner in Korea, thereby solving the low hatching rate due to the transfer of the triplet rainbow trout embryo introduced in foreign countries, The introduction of intrinsic disease related to rainbow trout, which can be introduced together according to the present invention, can be fundamentally solved. In addition, it can solve the problems of ineffective diapause (winter egg) in the domestic aquaculture industry and can be usefully used in related business.

도 1은 이배체 수정란의 수정 후 각 경과 시간에 따른 부화율 및 사배체 유도율을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 2는 이배체 수정란에 각 가온 온도 조건 및 가온 시간 조건을 준 후, 2일 후 폐사율, 부화율 및 사배체 유도율을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 3은 자동교반기가 장착된 항온기에 사배체를 유도하는 것을 나타낸 도이다.
도 4는 이배체, 삼배체 및 사배체의 혈액 내 적혈구의 크기를 비교한 결과를 나타낸 도이다.
도 5는 본 발명의 확립된 사배체 유도 조건에 따라, 이를 검증하기 위하여 1 내지 5회 반복 검증한 결과를 나타낸 도이다.
도 6은 각 적산 온도 조건에 따른 사배체의 성비를 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 7은 각 적산 수온 조건 및 자성호르몬(estrogen)의 농도에 따른 사배체의 성비를 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 8은 무지개송어의 암수 생식소(좌, 암컷; 우, 수컷)를 나타내는 도이다.
도 9는 본 발명의 확립된 암컷화 유도 조건에 따라, 이를 검증하기 위하여 1 내지 5회 반복 검증한 결과를 나타낸 도이다.
FIG. 1 is a graph showing the results of confirming the hatching rate and the doublet induction ratio according to each elapsed time after the modification of the diploid embryo.
FIG. 2 is a graph showing the results of confirming mortality, hatching rate, and inbreeding rate after two days from the diploid embryo after each heating temperature condition and heating time condition.
Fig. 3 is a diagram showing the induction of a doublet in a thermostat equipped with an automatic stirrer.
FIG. 4 is a graph showing the comparison of the sizes of red blood cells in the blood of diploid, triplet and chondroblast.
FIG. 5 is a diagram showing a result of repeated verification 1 to 5 times in order to verify the established doublet induction condition according to the present invention. FIG.
FIG. 6 is a graph showing the results of confirming sex ratios of the complexes according to the respective integration temperature conditions.
FIG. 7 is a graph showing the results of confirming sex ratios of the complexes according to the respective accumulated water temperature conditions and the concentrations of the magnetic hormones (estrogen).
8 is a diagram showing the male and female gonads of the rainbow trout (left, female, right, male).
FIG. 9 is a graph showing the result of repeated verification 1 to 5 times according to the established induction conditions of the present invention. FIG.

본 발명은 (1) 무지개송어(Onchorhynchus mykiss) 이배체 암컷과 수컷을 사용하여 이배체 수정란을 유도하는 단계; (2) 상기 (1) 단계의 이배체(diploid) 수정란을 수정 후 6.5 내지 7.5시간 조건으로 방치하여 사배체(tetraploid)로 유도하는 단계; 및 (3) 상기 사배체와 이배체의 암수를 교차 교배하는 단계;를 포함하는 삼배체(triploid) 무지개송어 수정란의 제조 방법을 제공한다.(1) inducing diploid embryos using Onchorhynchus mykiss diploid female and male; (2) inducing a diploid embryo of step (1) to a tetraploid state after being corrected for 6.5 to 7.5 hours; And (3) cross-crossing the male and female diploid crossbreds to produce a triploid rainbow trout embryo.

본 발명에 있어서, 상기 "무지개송어(Onchorhynchus mykiss)"는 연어과 어류이면서 추운 지방의 맑고 깨끗한 담수에서 잘 자라는 대표적인 담수산 냉수성 어종 중의 하나이다. 상기 무지개송어는 육색이 선홍색이고, 에이코사펜타엔산(EPA), 도코사헥사엔산(DHA) 등과 같은 건강기능성 지질이 다량 함유되어 있으며, 식품학적 성분 특성은 연어와 유사하여 우리나라에서도 매우 선호하고 있는 어종이다.In the present invention, the "rainbow trout ( Onchorhynchus mykiss "is one of the representative freshwater fishes that grow well in clear and clean fresh water of salmon and fish and cold regions. The rainbow trout has a purplish color and is composed of eicosapentaenoic acid (EPA), docosahexaenoic acid (DHA ), Etc., And its food composition is very similar to salmon in Korea.

본 발명에 있어서, 상기 "이배체(diploid)"는 생활 주기 중에서 상동염색체 짝을 2개 가지는 시기의 세포 또는 개체로, 배수성(倍數性)의 수 개념이다. 이배체의 세포는 배우자체를 형성하는 과정에서 감수분열을 하는데 2번의 연속적 세포분열로 반수의 염색체를 가지는 4개의 일배체 세포가 형성된다. 일배체의 암수 배우자체 2개가 만나 수정이 되면 다시 이배체의 개체가 발생한다.In the present invention, the term "diploid" is a cell or an individual of a period having two pairs of homologous chromosomes in the life cycle, and is a concept of number-of-parentheses. The cells of diploid cells undergo meiosis during the formation of the actor itself, and four consecutive cells with half of the chromosomes are formed by two successive cell divisions. When two male and female sex actors meet and are fertilized, a diploid body develops again.

본 발명에 있어서, 상기 "삼배체(triploid)"는 기본수의 3배의 염색체수를 가진 개체이며, 보통 2배체와 4배체의 교잡에 의해서 생기는 것을 의미한다.In the present invention, the term "triploid" refers to an individual having a chromosome number three times that of the basic number, which is usually caused by hybridization of diploid and tetraploid.

본 발명에 있어서, 상기 "사배체(tetraploid)"는 배수체의 일종이고, 기본수의 4배의 염색체를 의미한다. 자연에서도 존재하나 콜히친 등으로 인위적으로 생성 가능하다.In the present invention, the term "tetraploid" means a chromosome four times as large as the basic number. It exists in nature, but it can be artificially created by colchicine.

상기 (1) 단계의 이배체 수정란의 수정은 10 내지 20℃의 온도 조건에서 수행하고, 바람직하게는 10 내지 18℃에서 수행하며, 이에 제한되지 않는다.The modification of the diploid embryo of step (1) is carried out at a temperature of 10 to 20 캜, preferably at 10 to 18 캜, but is not limited thereto.

상기 수정은 수정 후 6.5 내지 7.5시간 조건으로 방치하고, 바람직하게는 7시간이며, 6.5시간 미만 방치 또는 7.5시간 초과 방치할 경우 사배체 유도율이 현저하게 낮아진다.The quiescence is allowed to stand for 6.5 to 7.5 hours after the modification, preferably for 7 hours. When left for less than 6.5 hours or for more than 7.5 hours, the degree of chelation is significantly lowered.

상기 (2) 단계는 20 내지 40℃ 조건으로 10 내지 40분간 가온 처리하며, 바람직하게는 25 내지 35℃ 조건으로 가온 처리할 수 있으며, 25℃ 미만으로 처리할 경우 사배체 유도율이 저해되며, 35℃ 초과 처리할 경우 부화율이 감소된다. 또한, 바람직하게는 15 내지 35 분간 가온 처리할 수 있으며, 15분 미만의 경우 사배체 유도율이 낮아지고, 35분 초과하여 가온 처리할 경우 2일 폐사율 및 부화율이 저해된다.The step (2) may be performed at a temperature of 20 to 40 ° C for 10 to 40 minutes, preferably at a temperature of 25 to 35 ° C. When the temperature is less than 25 ° C, ℃, the hatching rate is reduced. Further, it is preferable to carry out the warming treatment for 15 to 35 minutes. When the heating time is less than 15 minutes, the induction ratio of the doublet is lowered, and when the warming treatment is performed for more than 35 minutes, the 2-day mortality and hatching rate are inhibited.

상기 (2) 단계 이후 사배체를 암컷화하는 단계;를 더 포함하며, 암컷화는 800 내지 1000℃의 적산수온의 조건으로 수행하고, 바람직하게는 850 내지 900℃의 적산수온이며, 800℃ 미만 및 1000℃ 초과 적산 수온 시 암컷의 비율이 낮아진다.The method according to any one of claims 1 to 3, further comprising the step of femaleizing the doublet after step (2), wherein the embryotization is carried out under the conditions of an integrated water temperature of 800 to 1000 캜, preferably an integrated water temperature of 850 to 900 캜, The rate of females is lowered when the accumulated water temperature exceeds 1000 ° C.

상기 암컷화는 상기 적산수온 조건에서 자성호르몬(estrogen) 0.1 내지 20 ppm이 처리된 먹이를 공급하여 수행될 수 있으며, 바람직하게는 1 내지 15ppm을 처리하고, 농도가 1 ppm 미만의 경우 성비 중 암컷의 비율이 현저히 감소된다.The femaleization can be carried out by feeding the treated food with 0.1 to 20 ppm of a hormone (estrogen) under the above-mentioned cumulative water temperature condition, preferably 1 to 15 ppm, and when the concentration is less than 1 ppm, Is significantly reduced.

본 발명에 있어서, 상기 "사배체와 이배체의 암수를 교차 교배"는 본 발명의 이배체 수정란에서 유도된 사배체 중에서 암컷화가 이루어진 암컷과, 나머지 수컷을 이용하고, 이배체 암컷 또는 수컷을 교차 교배 시키는 것으로, 바람직하게는 이배체(암컷)×사배체(수컷), 사배체(암컷)×이배체(수컷), 사배체(암컷)×사배체(수컷)으로 교배할 수 있다.In the present invention, the above-mentioned "cross-breeding between the male and female diploids" means cross-breeding of diploid female or male, using the female and the remaining males out of the doublet derived from the diploid embryo of the present invention Can be crossed into a diploid (female) × trimeshed (male), a trimeshed (female) × trimeshed (male), and a trimeshed (female) × trimeshed (male).

본 발명의 일실시예에 있어서, 무지개송어 이배체 수정란의 제1난할 진행을 억제하고 효과적으로 사배체로 유도하기 위하여, 10-16℃의 수온에서 수정을 유도하고, 수정 후 경과 시간으로 6.5-7.5시간 조건을 두고, 가온처리는 24-32℃ 조건에서 20-35분 조건을 수행하는 것이 가장 효율적임을 확인하였다. 또한, 상기 사배체 유도 조건에 대한 반복 검증 실험을 수행한 결과, 본 발명의 사배체 유도 조건은 안정적이고 효과적으로 사배체를 유도함을 확인하였다. 또한, 사배체의 암컷화 유도를 위하여, 자성호르몬(estrogen)이 10 ppm 농도로 포함된 사료를 공급하고, 적정 적산수온이 약 880℃로 암컷화를 유도하였을 때, 암컷화가 활발함을 확인하였다. 또한, 상기 암컷화 유도 조건에 대한 반복 검증 실험을 수행한 결과, 본 발명의 암컷화 유도 조건은 안정적이고 효과적으로 암컷화함을 확인하였다.In one embodiment of the present invention, in order to inhibit the progression of the first disturbance of the rainbow trout-diploid embryo and induce it to effectively become a quadruple, the modification is induced at a temperature of 10-16 캜, and 6.5-7.5 hours And it was confirmed that it is most effective to perform the heating treatment at 24-32 ° C for 20-35 minutes. Also, as a result of repeating the verification test of the above-mentioned doublet induction condition, it was confirmed that the doublet inducing condition of the present invention stably and effectively induces a doublet. In order to induce female multiplication, it was confirmed that female feeding was active when a feed containing 10 ppm of estrogen was fed and the female cumulation was induced at a suitable cumulative water temperature of about 880 ° C. Also, as a result of repeating the verification test for the female induction condition, it was confirmed that the female induction condition of the present invention stably and effectively became female.

또한, 상기 암컷화된 사배체와 수컷 이배체를 교배한 결과, 효과적으로 삼배체 수정란이 생산됨을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법을 이용 시, 국내에서 효율적인 방법으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 수득할 수 있어, 외국에서 도입되는 삼배체 무지개송어 수정란의 이송에 따른 낮은 부화율을 해결할 수 있고, 외국란 도입에 따라 함께 유입될 수 있는 무지개 송어 관련 난치병 질환 도입을 근본적으로 해결할 수 있다. 또한, 국내 생산되는 양식산업에서 비효율적인 이배체 동란(冬卵)의 문제점을 해결할 수 있어, 관련 사업에 유용하게 이용될 수 있다. Further, as a result of crossing the female quadriceps and the male diploid, it was confirmed that triploid embryos were effectively produced. Therefore, when using the method for producing triplet rainbow trout embryo of the present invention, it is possible to obtain a triploid rainbow trout embryo in an efficient manner in Korea, thereby solving the low hatching rate due to the transfer of the triplet rainbow trout embryo introduced from abroad, It is possible to fundamentally solve the introduction of intestinal diseases related to rainbow trout which can be introduced together with introduction of foreign countries. In addition, it can solve the problems of ineffective diapause (winter egg) in the domestic aquaculture industry and can be usefully used in related business.

이하, 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로서, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.It will be apparent to those skilled in the art that various modifications and variations can be made in the present invention without departing from the spirit or scope of the invention as defined by the appended claims. It will be obvious to you.

실시예Example 1. 무지개송어 이배체 수정란의 사배체 유도 1. Rabbit induction of diploid embryos of rainbow trout

1-1. 이배체 수정란 생산1-1. Production of diploid embryos

충북 제천시 운학리에 소재한 운학송어양어장의 이배체 암컷과 수컷을 사용하였으며, 총 5회에 걸쳐 이배체 수정란을 생산하였다. 이배체 수정란 생산에는 암수 각각 평균 중량 830 g과 720 g의 개체들을 사용하였다. 수정 시 수온은 12-14℃이며, 복부압박법을 이용하여 채란 및 채정을 수행하였으며, 이배체 수정란을 생산하였다. We used diploid females and males of unshaped fish farms in Yuncheon - ri, Jecheon - city, Chungbuk province. Individuals weighing 830 g and 720 g, respectively, were used in the production of diploid embryos. Water temperature was 12-14 ℃ during fertilization and embryo embryos were produced by embryo pressing and embryo harvesting.

1-2. 수정 후 경과 시간에 따른 사배체 유도 확인1-2. Confirmation of the induction of a doublet by elapsed time after correction

상기 1-1의 이배체 수정란을 이용하여, 수정후 경과 시간에 의한 사배체로의 유도를 확인하였다. Using the diploid embryo of 1-1 described above, induction to a doublet by elapsed time after the modification was confirmed.

구체적으로, 상기 1-1의 이배체 수정란이 수정된 후 6, 6.5, 7, 7.5 및 8시간 조건으로 방치하고 사배체로의 유도율을 확인하였다. 그 결과를 도 1에 나타내었다.Specifically, the diploid embryos of 1-1 described above were allowed to stand for 6, 6.5, 7, 7.5 and 8 hours after the fertilized eggs were fertilized, and the induction rate to the doublet was confirmed. The results are shown in Fig.

도 1에 나타낸 바와 같이, 부화율은 모든 처리시간에 따라 차이를 보이지않았으나, 사배체 유도율은 수정 후 6시간부터 지속적으로 증가하여, 7 시간이 경과되었을 때, 98.1±2.71%까지 유도됨을 확인하였다. 또한, 수정 후 7.5 시간이 경과하면 사배체 유도율이 43.3%이고, 8시간에서는 0%임을 확인하였다. 이에 따라, 사배체 생산에 있어서 수정후 경과 시간이 매우 중요한 요소임을 확인하였으며, 최적의 수정 후 경과시간은 7시간임을 확인하였다.As shown in FIG. 1, the hatching rate did not show any difference according to all treatment times, but the haplotype induction ratio was continuously increased from 6 hours after the modification, and was found to be 98.1 ± 2.71% when 7 hours had elapsed. In addition, it was confirmed that the induction ratio of the doublet was 43.3% when 7.5 hours passed and 0% at 8 hours. As a result, it was confirmed that the elapsed time after modification was a very important factor in the production of the chides, and the optimum elapsed time was 7 hours.

1-3. 가온 온도 조건 및 가온 처리 시간에 따른 사배체 유도 확인1-3. Judgment of induction of a doublet according to heating temperature condition and heating treatment time

상기 1-2에 나타낸 바와 같이, 수온 12℃ 조건에서 수정 후 경과 시간이 7시간 지난 100개의 이배체 수정란에 각 가온 조건(24, 28 및 32℃) 및 가온 처리 시간 조건(15, 20, 25, 30 및 35시간)을 주어 상기 가온 조건에 의한 수정란의 제1난할 억제에 따른 사배체로의 유도를 확인하였다.As shown in 1-2 above, 100 diploid embryos after 7 hours of lapse of time after conditioning at a temperature of 12 ° C were subjected to heating (24, 28 and 32 ° C) and heating treatment time conditions (15, 20, 25, 30 and 35 hours) were given to induce the induction of the embryos to the quadrants by the suppression of the first embryos by the above warming conditions.

구체적으로, 상기 12℃에서 수정 후 7시간 경과된 100개의 이배체 수정란에 24, 28 및 32℃의 가온 온도 조건을 준 후, 15, 20, 25, 30 및 35시간의 가온 처리 시간을 주어, 사배체의 유도율을 확인하였다. 그 결과를 도 2에 나타내었다.Specifically, 100 diploid embryos at 7 hours after the modification at 12 DEG C were subjected to warming temperature conditions of 24, 28, and 32 DEG C, followed by heating treatment times of 15, 20, 25, 30, and 35 hours, Were determined. The results are shown in Fig.

도 2에 나타낸 바와 같이, 2일 이내 폐사율은 24℃ 처리군에서 가장 낮음을 확인하였다. 또한, 24℃ 처리군에서 부화율은 시간에 지남에 따라 일정하게 유지되었고, 28℃ 및 32℃ 처리군에서는 30분 경과 이전에는 부화율이 높게 유지됨을 확인하여, 낮은 온도 조건 또는 낮은 처리시간에서 부화율이 높음을 확인하였다. 또한, 사배체 유도율은 24℃ 처리군에서는 30분 열처리하였을 때까지 꾸준히 증가하였고, 28℃ 처리군에서는 25분 처리 이후 유도율은 최대값이 보임을 확인하였다. 또한, 32℃ 처리군에서는 모든 처리 시간에서 90% 이상의 사배체 유도율이 나타남을 확인하였다. 따라서, 28℃에서 25분간 가온처리 조건 시 사배체 유도가 가장 효과적임을 확인하였다.As shown in Fig. 2, the mortality rate within 2 days was the lowest in the group treated at 24 캜. In addition, the hatching rate remained constant over time in the 24 ° C-treated group, and the hatching rate remained high in the treated group at 28 ° C and 32 ° C before 30 minutes, Respectively. In addition, the induction ratios were steadily increased until 30 minutes heat treatment at 24 ℃ treatment group, and the induction rate after 25 minutes treatment treatment at 28 ℃ treatment group showed the maximum value. In addition, it was confirmed that more than 90% Therefore, it was confirmed that the induction of the doublet was most effective in the condition of heating at 28 ° C for 25 minutes.

1-4. 사배체 유도 조건의 반복 검증1-4. Repeated verification of the doublet induction condition

상기 실시예와 같이 사배체 유도 조건을 확립하고, 이를 검증하기 위하여 1회 내지 5회 반복 검증하여, 사배체 유도율을 확인하였다.As in the above example, the doublet induction conditions were established and verified repeatedly once to five times to verify the doublet induction rate.

구체적으로, 도 3에 나타낸 바와 같은 자동교반기가 장착된 항온기에서 50 rpm의 속도로 수정란을 흔들어 주었으며, 수정란의 수송거리를 최소화하기 위하여 사육수조 옆에 항온기를 설치하였다. 최종 수정란 수송거리는 2 m 이내로 하였다. 그 후, 사배체 유도 조건을 검증하기 위하여, 이배체를 각 1, 2, 3, 4 및 5회 반복 검증하였고, 발생한 각 조건의 수정란을 모두 사배체 유도 처리하였으며, 수정란을 플라스틱 바구니에 담아서 주위 자연스럽게 수정란이 부화 때까지 흔들릴 수 있도록 하였다. 부화는 14-16℃에서 14일 전후에 이루어졌으며, 부상까지는 5-7일이 소요되었다. 부상 이후 유럽산 Aller Future Larvae Ex 사료를 이용하여 입붙임 시켰다. 입붙임 직후 각 사배체 유도 횟수에 걸쳐 채란된 수정란을 수조에 구획을 나누어 수용하였다. 또한, 부상기 이후 2.1 cm 크기의 개체들을 대상으로 꼬리절개한 후 혈액 채취(한방울)하여 광학현미경 하에서 200배율로 적혈구를 촬영하여 ImageJ 프로그램을 이용해서 장경의 평균으로 이배체, 삼배체 및 사배체의 크기를 확인하였다. 그 후, 각 사배체는 각각 20마리씩 무작위로 샘플링하여 확인하였다. 그 결과를 도 4 및 도 5에 나타내었다.Specifically, the embryo was shaken at a speed of 50 rpm in a thermostat equipped with an automatic agitator as shown in FIG. 3, and a thermostat was installed beside the breeding tank to minimize the distance of transport of the fertilized eggs. The distance of final embryo transfer was within 2 m. To verify the induction conditions of diploids, diploids were repeatedly tested 1, 2, 3, 4, and 5 times, and all of the embryos at each condition were subjected to the induction treatment of triploids. Embryos were placed in plastic baskets, It was allowed to shake until hatching. The hatching took place around 14-16 days at 14-16 ℃, and it took 5-7 days before the injury. After injury, they were grafted using Aller Future Larvae Ex. Immediately after the addition of the embryos, the embryos were placed in the aquariums divided by the number of induction of each doublet. The size of the diploid, triploid and triplet was measured as an average of the longest diameter using the ImageJ program. The size of the triplet and the size of the triplet were measured using an ImageJ program at 200x magnification under a light microscope Respectively. Thereafter, each of the squares was randomly sampled by 20 rats each. The results are shown in Fig. 4 and Fig.

도 4에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 무지개송어의 이배체의 혈액 내 적혈구의 크기를 확인한 결과, 평균 장경이 16.2 μm이고, 삼배체는 21. 3 μm이며, 사배체는 22.4 μm임을 확인하였다.As shown in FIG. 4, the size of red blood cells in the blood of the diploid of the rainbow trout of the present invention was confirmed, and it was confirmed that the average long diameter was 16.2 μm, the triplet was 21.3 μm, and the doublet was 22.4 μm.

또한, 도 5에 나타낸 바와 같이, 각 사배체의 검증 반복 1, 3 및 4회 조건에서 100%의 사배체 유도 효과가 나타남을 확인하였다. 또한, 사배체 유도 조건의 검증 반복 2 및 5회 조건에서는 각 95% 및 90%의 사배체 유도율이 나타남을 확인하여, 결과적으로 전체 97%의 사배체 유도율이 나타남을 확인하였다. 따라서, 본 발명에서 확립한 사배체 유도 조건은 효과적이고 안정적으로 사배체를 유도함을 확인하였다.Further, as shown in Fig. 5, it was confirmed that 100% of the doublet inducing effect was observed under the conditions of 1, 3, and 4 times of verification of each of the doublets. Also, it was confirmed that 95% and 90% of the doublet induction ratios were observed under the repeating verification conditions of 2 and 5 times of the doublet induction condition, and as a result, it was confirmed that a total of 97% Therefore, it was confirmed that the ligand inducing conditions established in the present invention effectively and stably induce the ligand.

따라서, 무지개송어 이배체 수정란의 제1난할 진행을 억제하고 효과적으로 사배체로 유도하기 위하여, 10-16℃의 수온에서 수정을 유도하고, 수정 후 경과 시간으로 6.5-7.5시간 조건을 두고, 가온처리는 24-32℃ 조건에서 20-35분 조건을 수행하는 것이 가장 효율적임을 확인하였다. Thus, in order to inhibit the first round progression of the diploid transplanted diploid embryo and effectively induce it to become a doublet, It was confirmed that the most efficient method is to conduct the heat treatment at 24-32 ℃ for 20-35 minutes under 6.5-7.5 hours condition.

실시예 2. 사배체 유도된 무지개송어의 암컷화Example 2: Femaleization of a doublet-derived rainbow trout

2-1. 적산 온도 조건에 따른 사배체의 암컷화2-1. Fertilization of the quadrilateral according to the cumulative temperature condition

적산 온도 조건에 따른 사배체의 암컷화를 확인하기 위하여, 상기 실시예 1에서 유도된 사배체의 부상기 이후 사료 입붙임을 수행한 후, 자성호르몬(estrogen) 10 ppm 처리된 사료를 공급하였고, 적산 수온이 각 200, 400, 600, 800 및 1000℃ 조건에서 수컷 및 암컷의 비율을 확인하였다. 그 결과를 도 6에 나타내었다.In order to confirm the femaleization of the rats according to the cumulative temperature conditions, feeds after the inoculation of the rats induced by the rats in Example 1 were performed, feeds treated with 10 ppm of magnetic hormone (estrogen) were fed, The percentages of males and females were determined at 200, 400, 600, 800 and 1000 ° C, respectively. The results are shown in Fig.

도 6에 나타낸 바와 같이, 적산수온 200℃, 400℃ 및 600℃에서는 50:50 혹은 45: 55 (수컷:암컷)의 비율로 차이를 보이지 않았지만, 800℃에서는 15%의 수컷이 나타남을 확인하였다. 또한, 1000℃에서는 암컷이 90%이고, 수컷이 10%임을 확인하여 암컷의 비율이 가장 높음을 확인하였다. 따라서, 상기 결과를 바탕으로 Broken line model을 이용하여 정확한 적산수온을 계산하면 암컷화를 위한 가장 적절한 적산수온은 880℃임을 확인하였다. As shown in FIG. 6, no difference was observed in the ratio of 50:50 or 45:55 (male: female) at the accumulated water temperature of 200 ° C, 400 ° C and 600 ° C, but it was confirmed that 15% of males appeared at 800 ° C . Also, it was confirmed that 90% of females and 10% of males were at 1000 ° C, and the highest proportion of females was confirmed. Therefore, based on the above results, it is confirmed that the most suitable integrated water temperature for female cutting is 880 ℃ when the accurate integrated water temperature is calculated using Broken line model.

2-2. 자성호르몬 농도 조건에 따른 사배체의 암컷화2-2. Maternalization of the quadrants according to the magnetic hormone concentration

자성호르몬 농도 조건에 따른 사배체의 암컷화를 확인하기 위하여, 상기 2-1의 결과에 따라 600℃ 이상의 적산수온 환경에서, 자성호르몬(estrogen) 1 및 10 ppm(mg/사료 kg)의 농도로 처리된 사료를 사배체에 공급하였다. 이에 따른 사배체의 암컷화 결과를 도 7에 나타내었다.In order to confirm the femaleization of the chondroitin according to the concentration of the magnetic hormone, treatment was carried out at a concentration of 1 and 10 ppm (mg / kg of feed) of the hormone (estrogen) in an integrated water temperature environment of 600 ° C or more according to the result of the above 2-1 The fed diets were fed to the rats. Fig. 7 shows the result of the femaleization of the resulting ridges.

도 7에 나타낸 바와 같이, 600℃의 10 ppm 조건, 800℃ 및 1000℃의 1 ppm 조건에서, 사배체의 수컷에서 암컷으로 성전환됨을 확인하였다. 또한, 800℃ 이상의 적산수온에서 10 ppm의 경우 유전적으로 전환되지 않는 것으로 판단되는 10%의 수컷외에는 모두 암컷으로 성전환됨을 확인하였다. 따라서, 최적의 암컷화 유도 조건은 적산온도가 880℃이고, 자성호르몬(estrogen) 10 ppm 농도일 때 가장 효과적임을 확인하였다. As shown in Fig. 7, it was confirmed that female transplants were carried out from male to female at 10 ppm at 600 ° C and 1 ppm at 800 ° C and 1000 ° C. In addition, 10% of the males that were not genetically converted at 10 ppm in the cumulative water temperature of 800 ° C or more were all transgenic to the female. Therefore, it was confirmed that the optimum induction condition was 880 ℃ for the integration temperature and 10% for the concentration of estrogen.

2-3. 암컷화 유도 횟수 조건의 반복 검증2-3. Repeated verification of the number of female induction times

암컷화 유도 횟수 조건에 따른 사배체의 암컷화를 확인하기 위하여, 상기 2-2에서 확립한 암컷화 유도 조건에 따라, 적산온도가 880℃이고, 자성호르몬(estrogen) 10 ppm(mg/사료 kg)의 농도로 처리된 사료를 사배체에 공급하였다. 그 후, 1, 2, 3, 4 및 5회의 암컷화 유도 횟수 조건의 반복 검증하여 암컷화 유도를 확인하였다. 각 암컷화 유도 횟수군 당 임의적으로 20마리를 샘플링하여 성비를 확인하였다. 구체적으로 성비는 3개월 동안 10 g 전후까지 성장시켜 각각의 채란 회차로 구분하였으며, 각 개체를 복개하여 생식소를 슬라이드 글라스에 올려놓고 커버글라스로 덮은 다음 광학현미경 하에서 100배로 확대하여 관찰하였고, 도 8에 나타낸 바와 같이 암수 생식소를 확인하였다. 그 결과를 도 9에 나타내었다.In order to confirm the femaleization of the rats according to the number of female induction times, the cumulative temperature was 880 DEG C, 10 ppm (mg / kg of feed) of the hormone (estrogen) according to the female induction conditions established in 2-2 above, Were fed to the rats. Thereafter, repeated induction of 1, 2, 3, 4, and 5 cycles of induction of female induction was performed to confirm induction of female induction. Twenty animals were arbitrarily sampled for each female induction frequency group to confirm the sex ratio. Specifically, the sex ratio was grown up to about 10 g for 3 months, and the gonads were placed on a slide glass with covering each individual, covered with a cover glass, magnified 100 times under an optical microscope, As shown in Fig. The results are shown in Fig.

도 9에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 암컷화 유도 조건에 따른 반복 검증 결과, 실험군 모두에서 80% 이상의 암컷화가 유도됨을 확인하였다. 따라서, 본 발명의 암컷화 유도 조건은 안정적이고 효과적으로 사배체의 암컷화를 유도함을 확인하였다.As shown in FIG. 9, it was confirmed by repeated test according to the induction conditions of the present invention that more than 80% of females were induced in the experimental group. Therefore, it was confirmed that the induction condition of the present invention stably and effectively induces femaleization of the ridges.

실시예 3. 본 발명의 암컷 또는 수컷 사배체와 이배체간의 교체 교배에 따른 수정율, 부화율 및 생존율 확인Example 3. Confirmation of fertility, hatching rate and survival rate by alternate crossing between female or male rats and diploid of the present invention

상기 실시예 2의 사배체의 암컷 및 수컷과, 이배체의 암컷 및 수컷을 각각 교체 교배한 후 이의 수정율, 부화율 및 생존율을 확인하였다. The fertilization rate, hatching rate and survival rate of the female and male of each of the twigs of Example 2 and the female and male of the diploid were respectively confirmed.

상기 실시예 2의 암컷화된 사배체는 수정 후 46개월 후까지 양성하였다. 그 후, 하기 표 1에 나타낸 바와 같이, 실시예 2의 사배체 무지개 송어의 암컷 및 수컷과, 이배체의 암컷 및 수컷을 각각 교차 교배하고, 각 교차 교배에 대한 수정율, 부화율 및 부상기 생존율을 확인하였다. 그 결과를 표 1에 나타내었다.The female quadriceps of Example 2 was positive until 46 months after fertilization. Then, as shown in the following Table 1, the females and males of the diploid breeding trout of Example 2 and the females and males of the diploid females were cross-crossed, respectively, and the fertility, hatching rate and survival rate . The results are shown in Table 1.

교배형태Mating form 수정율(%)Fertility (%) 부화율(%)Hatching rate (%) 부상기 생존율(%)Lifetime survival rate (%) 이배체(암컷) × 이배체(수컷)Diploid (female) x diploid (male) 9595 9393 9292 이배체(암컷) × 사배체(수컷)Diploid (female) x square (male) 7272 9191 9191 사배체(암컷) × 이배체(수컷)Rectal (female) × diploid (male) 9393 9292 9292 사배체(암컷) × 사배체(수컷)Zodiac (female) × zodiac (male) 5353 9191 8989

표 1에 나타낸 바와 같이, 사배체 암컷과 이배체 수컷을 교배하였을 경우, 수정율이 93%이고, 부화율이 92%이며 부상기 생존율이 91%임을 확인하여, 종래의 이배체 암컷 및 수컷 교배 결과와 비교하여 수정율, 부화율 및 부상기 생존율이 유사하여, 본 발명의 방법으로 유도된 사배체 암컷은 이배체 수컷과 교배하였을 때 효과적으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 유도할 수 있음을 확인하였다.As shown in Table 1, it was confirmed that the mating of the cross female and the male heterozygote showed 93% fertilization rate, 92% hatching rate and 91% survival rate, and compared with the result of the conventional diploid female and male crossing, , The hatchability and the survival rate were similar to each other, it was confirmed that the trichome female females induced by the method of the present invention can effectively induce triploid rainbow trout embryos when mated with male diploids.

상기 일련의 결과에서 확인한 바와 같이, 본 발명의 온도, 처리횟수 및 처리 시간 조건으로 무지개 송어 이배체 수정란의 제1난할 진행을 억제하여 사배체 송어를 생산한 뒤, 상기 사배체 송어에 자성호르몬(estrogen) 농도 조건 및 적산온도 조건을 주어 암컷화를 유도하고, 상기 암컷화가 유도된 사배체와 이배체 수컷과 교배 시, 효과적으로 삼배체 무지개 송어 수정란을 유도할 수 있음을 확인하였다. As can be seen from the above series of results, after the first incomplete progress of the rainbow trout-embryo embryo was suppressed by the temperature, the treatment frequency and the processing time condition of the present invention to produce a trout trout, the trout had an estrogen concentration And breeding of the trichome rainbow trout embryo can be effectively carried out when the female is crossed with the diploid male and the diploid male.

Claims (7)

(1) 무지개송어(Onchorhynchus mykiss) 이배체 암컷과 수컷을 사용하여 이배체 수정란을 유도하는 단계;
(2) 상기 (1) 단계의 이배체(diploid) 수정란을 수정 후 7시간 조건으로 방치하는 단계;
(3) 상기 (2) 단계의 이배체 수정란을 24 내지 32℃ 조건으로 20 내지 35분 동안 가온 처리하여 사배체(tetraploid)로 유도하는 단계; 및
(4) 상기 사배체와 이배체의 암수를 교차 교배하는 단계;를 포함하는 삼배체(triploid) 무지개송어 수정란의 제조 방법.
(1) inducing diploid embryos using Onchorhynchus mykiss diploid female and male;
(2) leaving the diploid embryo of step (1) under conditions of 7 hours after the modification;
(3) heating the diploid embryo of step (2) to a tetraploid state by heating at 24 to 32 ° C for 20 to 35 minutes; And
(4) cross-crossing the male and female diploid crossbreds to produce triploid rainbow trout embryos.
제1항에 있어서,
상기 (1) 단계의 이배체 수정란의 수정은 10 내지 20℃의 온도 조건에서 수행하는 것을 특징으로 하는, 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법.
The method according to claim 1,
Wherein the modification of the diploid embryo of step (1) is carried out at a temperature of 10 to 20 캜.
삭제delete 삭제delete 제1항에 있어서,
상기 (3) 단계 이후 사배체를 암컷화하는 단계;를 더 포함하는 것을 특징으로 하는, 삼배체 무지개송어 수정란의 제조 방법.
The method according to claim 1,
The method of claim 1, further comprising the step of: after the step (3), femaleizing the doublet.
삭제delete 삭제delete
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109874708A (en) * 2019-04-09 2019-06-14 北京市水生野生动植物救护中心 A kind of method for culturing seedlings of land envelope type cherry salmon triploid seed
CN110547229A (en) * 2019-09-23 2019-12-10 大连海洋大学 Breeding method of tetraploid fries of brachymystax lenok
KR102319352B1 (en) 2021-02-03 2021-10-29 바이오메디팜 어업회사법인 주식회사 Nonhormonal Method for Masculinization of Chum Salmon

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
이철호, '무지개송어 양식어업인 소득증대를 위한 전 암컷 대량생산', 부경대학교 대학원 수산해양학연협동과정, 2007.8.(발표)*
정창화외 3인, '염색체 조작에 의한 전 암컷 3배체 무지개송어 조기난의 대량생산', 한국양식학회지 8(2):141~148, 1995.(발행)*
한현섭외 2인, '수산생물 선발육종 프로그램', (주)바이오사이언스출판, 2013.,293~304쪽.(발행)*

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109874708A (en) * 2019-04-09 2019-06-14 北京市水生野生动植物救护中心 A kind of method for culturing seedlings of land envelope type cherry salmon triploid seed
CN109874708B (en) * 2019-04-09 2022-03-15 北京市水生野生动植物救护中心 Seedling raising method for land-sealed triploid fry of salmon
CN110547229A (en) * 2019-09-23 2019-12-10 大连海洋大学 Breeding method of tetraploid fries of brachymystax lenok
KR102319352B1 (en) 2021-02-03 2021-10-29 바이오메디팜 어업회사법인 주식회사 Nonhormonal Method for Masculinization of Chum Salmon

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