JPS6344946A - カチオン交換性材料 - Google Patents
カチオン交換性材料Info
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- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
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- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J39/00—Cation exchange; Use of material as cation exchangers; Treatment of material for improving the cation exchange properties
- B01J39/08—Use of material as cation exchangers; Treatment of material for improving the cation exchange properties
- B01J39/16—Organic material
- B01J39/17—Organic material containing also inorganic materials, e.g. inert material coated with an ion-exchange resin
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
- Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はカチオン交換材料及びその製造法に関し、更に
特に液体クロマトグラフィーの充填材料と(7て特に十
分適しているカチオン交換担体材料に関する。
特に液体クロマトグラフィーの充填材料と(7て特に十
分適しているカチオン交換担体材料に関する。
高速アニオン及びカチオン交換クロマトグラフィーは生
物学的分子の分析及び分離に利して強力な手段となって
きた。高速液体クロマトグラフィーの媒体に対するカチ
オン交換コーティングはいくつかの経路で合成されてき
た。最も簡単な経路はシリカ表面のア二オ“ン性有桟シ
ランでのシリル化である。しかしながら、そのような反
応は可逆的であり、蛋白質を不可逆的に結合することの
できる残存シラ7−ルを残してしまう。この問題は親水
性有機重合体層をシリカ表面上に結合させることによっ
て回避しうるけれど、この方法は必要とされる再現性を
Jj、えない。カチオン交換コーティングの他の合成経
路は、シリカ表面−にに反応性官能基を配置するために
有機シラン反応がら始めるものである。次いで官能基化
されたシリカを、共有結合した重合体静止相(S t、
ationary pl+use)を与える予じめ製
造した重合体と反応させる。この最後の」二程は更lこ
係留された重合体をそれがアニオン性であるように改変
させる。製造されるカチオン交換コーティングは安定で
高結合力を有するけれど、このカチオン交換コーティン
グの製造法は全く艮々としている。
物学的分子の分析及び分離に利して強力な手段となって
きた。高速液体クロマトグラフィーの媒体に対するカチ
オン交換コーティングはいくつかの経路で合成されてき
た。最も簡単な経路はシリカ表面のア二オ“ン性有桟シ
ランでのシリル化である。しかしながら、そのような反
応は可逆的であり、蛋白質を不可逆的に結合することの
できる残存シラ7−ルを残してしまう。この問題は親水
性有機重合体層をシリカ表面上に結合させることによっ
て回避しうるけれど、この方法は必要とされる再現性を
Jj、えない。カチオン交換コーティングの他の合成経
路は、シリカ表面−にに反応性官能基を配置するために
有機シラン反応がら始めるものである。次いで官能基化
されたシリカを、共有結合した重合体静止相(S t、
ationary pl+use)を与える予じめ製
造した重合体と反応させる。この最後の」二程は更lこ
係留された重合体をそれがアニオン性であるように改変
させる。製造されるカチオン交換コーティングは安定で
高結合力を有するけれど、このカチオン交換コーティン
グの製造法は全く艮々としている。
本明細書においで参考文献として引用される米国特11
″第4.,245 、(l 05号に議論されているよ
うに、吸13れなポリエチレンイミン化学を用いるアル
バー) (A 1per1.)及び′リグニア(R,4
nier)による過去の研究は、それがアニオン交換静
止相の合成に対して非常にJj能であることを示した。
″第4.,245 、(l 05号に議論されているよ
うに、吸13れなポリエチレンイミン化学を用いるアル
バー) (A 1per1.)及び′リグニア(R,4
nier)による過去の研究は、それがアニオン交換静
止相の合成に対して非常にJj能であることを示した。
吸3′1された重合体アニオン交換媒体の合成に則する
アルバート及びリグニアの先駆的現存する吸着技術を用
いれば、本発明のカチオン交換材料は製造される。
アルバート及びリグニアの先駆的現存する吸着技術を用
いれば、本発明のカチオン交換材料は製造される。
ヨーロッパ特許′M第0.143,423号はポリエチ
レンイミンから製造されるカチオン交換材料を教示して
いる。しかしながらヨーロッパ特許願第(,1,143
,4,23号は、架橋してないポリエチレンイミンプロ
ビルシランが吸着よりむしろ共有結合している多孔性シ
リカを提供する。ヨーロッパ特許願ttrJo、143
.423号では、粒状シリカゲルをポリエチレンイミ7
ブロビルトリメトキシシランと反応させ、架橋してない
共有結合したポリエチレンイミ/プロピルシリlレージ
リカを、例えば不活性な有機溶媒中の適当な三塩基性酸
無水物での通常の処理(こより弱酸性のカルボキシル形
に転化する。
レンイミンから製造されるカチオン交換材料を教示して
いる。しかしながらヨーロッパ特許願第(,1,143
,4,23号は、架橋してないポリエチレンイミンプロ
ビルシランが吸着よりむしろ共有結合している多孔性シ
リカを提供する。ヨーロッパ特許願ttrJo、143
.423号では、粒状シリカゲルをポリエチレンイミ7
ブロビルトリメトキシシランと反応させ、架橋してない
共有結合したポリエチレンイミ/プロピルシリlレージ
リカを、例えば不活性な有機溶媒中の適当な三塩基性酸
無水物での通常の処理(こより弱酸性のカルボキシル形
に転化する。
本発明はカチオン交換材料及びそのような材料の製造法
を提供する。本発明のカチオン交換材料は高速液体クロ
マトグラフィーにおける蛋白質及び生物学的重合体の分
離のための充填材料として十分適当である。
を提供する。本発明のカチオン交換材料は高速液体クロ
マトグラフィーにおける蛋白質及び生物学的重合体の分
離のための充填材料として十分適当である。
本カチオン交換材料の製造においては、最初にアミン基
を含んでなる吸着物、好ましくはポリエチレンイミンの
薄層を無機担体材料、例えばシリカ、アルミナ又はチタ
ニアに吸着させる。次いでこの吸着したコーティングを
架橋剤例えばエポキシ樹脂又は臭化アルキルによって随
時架橋させる。
を含んでなる吸着物、好ましくはポリエチレンイミンの
薄層を無機担体材料、例えばシリカ、アルミナ又はチタ
ニアに吸着させる。次いでこの吸着したコーティングを
架橋剤例えばエポキシ樹脂又は臭化アルキルによって随
時架橋させる。
次いで吸着した架橋コーティングの少くとも1つのアミ
ン基を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在下に、少くと
も1つのカルボキシル基を生じせしめるのに十分な量の
試剤と反応させる。好ましくは吸着した架橋コーティン
グの多くのアミン基を、アミンの誘導によってカルボキ
シル基を生じさせるのに1−分な量の試剤と反応させる
。用いる試剤が多官能ヤ1゛の場合、試削は好ましくは
親水性重合体、更に好ましくは親水性重合体無水物、最
も好ましくはポリアクリル酸無水物を含んでなる。用い
る試剤がQt官能性ならば、試剤は好ましくは親水性単
lit体、更に好ましくは親水性単量体無水物を含んで
なる。。
ン基を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在下に、少くと
も1つのカルボキシル基を生じせしめるのに十分な量の
試剤と反応させる。好ましくは吸着した架橋コーティン
グの多くのアミン基を、アミンの誘導によってカルボキ
シル基を生じさせるのに1−分な量の試剤と反応させる
。用いる試剤が多官能ヤ1゛の場合、試削は好ましくは
親水性重合体、更に好ましくは親水性重合体無水物、最
も好ましくはポリアクリル酸無水物を含んでなる。用い
る試剤がQt官能性ならば、試剤は好ましくは親水性単
lit体、更に好ましくは親水性単量体無水物を含んで
なる。。
池に、架橋してない吸着されたコーティングのアミン基
を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在下に、該コーティ
ングを架橋させ且つ同時に少くとも1つのカルボキシル
基を生じせしめるのに十分な寸の多官能性試剤と反応さ
せる。この多官能性試剤は好ましくは親水性重合体、更
に好ましくは親水性重合体無水物、最も好ましくはポリ
アクリル酸無水物を含んでなる。
を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在下に、該コーティ
ングを架橋させ且つ同時に少くとも1つのカルボキシル
基を生じせしめるのに十分な寸の多官能性試剤と反応さ
せる。この多官能性試剤は好ましくは親水性重合体、更
に好ましくは親水性重合体無水物、最も好ましくはポリ
アクリル酸無水物を含んでなる。
従って、本発明の主な目的は安定で再現性のあるカチオ
ン交換材料を提供することである。
ン交換材料を提供することである。
本発明の更なる目的は高負荷容量と優秀なりロー12=
マドグラフィー特性を有するようなカチオン交換材料を
提供することである。
提供することである。
本発明の他の目的は簡Q1且つ安価に製造できるカチオ
ン交換材料を提供することである。
ン交換材料を提供することである。
第1 A、B、C及びD図はチトクロームC−リゾザイ
ム蛋白質混合物の分離に基づく4種の選択したカチオン
交換カラムのクロマトグラフィーによる評価を示すグラ
フである。
ム蛋白質混合物の分離に基づく4種の選択したカチオン
交換カラムのクロマトグラフィーによる評価を示すグラ
フである。
第2図は4種の選択したカチオン交換カラムにおけるリ
ゾザイムの保持を、 I−Iの関数として示すグラフで
ある。
ゾザイムの保持を、 I−Iの関数として示すグラフで
ある。
第3(A、B)及び(C,D)図はチトクロームC65
゜を含有するA、70スーアクアエ(flos−aqu
ae)[アルが工(algae)]抽出物の2種の選択
したカチオン交換カラムのクロマトグラフィーによる評
価を示すグラフである。
゜を含有するA、70スーアクアエ(flos−aqu
ae)[アルが工(algae)]抽出物の2種の選択
したカチオン交換カラムのクロマトグラフィーによる評
価を示すグラフである。
本発明は特に、液体クロマトグラフィーにおける蛋白質
及び生物学的重合体の分離のための充填材料として特に
十分適しているカチオン交換材料の製造法に関する。
及び生物学的重合体の分離のための充填材料として特に
十分適しているカチオン交換材料の製造法に関する。
米国特許fiS4.,24.5,005号における如く
、カチオン交換材料の製造では、吸着物に対して親和性
をイ5する担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸
着剤と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電
力によって該表面に吸着させる。
、カチオン交換材料の製造では、吸着物に対して親和性
をイ5する担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸
着剤と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電
力によって該表面に吸着させる。
吸着物は好ましくは溶媒中に含まれ、吸着を部分的に該
溶媒の極性の調節1こ↓って嬉立することがでとる。溶
媒の極性が小さければ小さい程、吸着は強い。この目的
1こ月して適当な溶媒はメタノールである。吸着物は少
くとも2つの官能基を含み、ぞの1−〕は担体材判の表
面と州庁作用してその吸オ゛1を誘導しI↓つ他は架橋
のために使用される。ポリエチレンイミンは好適な吸着
物であるけれど、他の適当な吸着物は1.3−ノアミツ
−2−ヒドロキシプロパン、テトラエチレンペンタミン
、及びエチレンノアミンである。
溶媒の極性の調節1こ↓って嬉立することがでとる。溶
媒の極性が小さければ小さい程、吸着は強い。この目的
1こ月して適当な溶媒はメタノールである。吸着物は少
くとも2つの官能基を含み、ぞの1−〕は担体材判の表
面と州庁作用してその吸オ゛1を誘導しI↓つ他は架橋
のために使用される。ポリエチレンイミンは好適な吸着
物であるけれど、他の適当な吸着物は1.3−ノアミツ
−2−ヒドロキシプロパン、テトラエチレンペンタミン
、及びエチレンノアミンである。
111体月料は好ましくは無機担体材料例えばシリカ、
アルミナ及びチタニアであり、好適な担体材料はシリカ
である。無機担体材料の特別な例1ユ、リクロス7ア(
1、icl+rospl+cr)S i 500 (′
#!径10μ)、リクロソーブ(L 1Chrosor
b)S i 100(粒径10μ)、リクロス7ア5i
lOO(粒径1()μ)、クロモソーブ(Chromo
sorb)1. C−6、バーチシル(Partiei
l)10、バイグク(V yduc ) 1’ PB、
調節された多孔質ガラス(粒径5〜10μ;細孔径10
0人)、スフエリソーブ(S phcri8orb)ア
ルミナ(粒径10μ、細孔径150人)、ビオ−ラッド
(Bio−Rad)塩基性アルミナ、活性■(粒径40
μ)、ビオ−ラッド酸性アルミナ、活性I(粒PF、4
.0μ)、フーニング(CorninH)チタニア(4
0/60メツシュ;細孔径400人)、アミコン・マ■ ドレックス(Amicon Matrex )シリ
カゲル、ノルコニル被覆シリカ(バイグクTPBシリカ
−ににジルコニウムのコーティング)、及び酸化マグネ
シウムである。
アルミナ及びチタニアであり、好適な担体材料はシリカ
である。無機担体材料の特別な例1ユ、リクロス7ア(
1、icl+rospl+cr)S i 500 (′
#!径10μ)、リクロソーブ(L 1Chrosor
b)S i 100(粒径10μ)、リクロス7ア5i
lOO(粒径1()μ)、クロモソーブ(Chromo
sorb)1. C−6、バーチシル(Partiei
l)10、バイグク(V yduc ) 1’ PB、
調節された多孔質ガラス(粒径5〜10μ;細孔径10
0人)、スフエリソーブ(S phcri8orb)ア
ルミナ(粒径10μ、細孔径150人)、ビオ−ラッド
(Bio−Rad)塩基性アルミナ、活性■(粒径40
μ)、ビオ−ラッド酸性アルミナ、活性I(粒PF、4
.0μ)、フーニング(CorninH)チタニア(4
0/60メツシュ;細孔径400人)、アミコン・マ■ ドレックス(Amicon Matrex )シリ
カゲル、ノルコニル被覆シリカ(バイグクTPBシリカ
−ににジルコニウムのコーティング)、及び酸化マグネ
シウムである。
アミン基を含んでなる吸着物の薄膜コーティングを担体
材料の表面に吸着させた後、該表面を架橋剤例えばエポ
キシ樹脂又は臭化アルキルにさらすことによって吸着し
た表面を架橋することができる。この場合好適な架橋剤
は多官能性エポキシ−15= 樹脂である。適当なエポキシ樹脂架橋剤は1,2−エタ
ンジオールノブリシジルエーテル、1.4−ブタンジオ
ールシグリシノルエーテル及びi。
材料の表面に吸着させた後、該表面を架橋剤例えばエポ
キシ樹脂又は臭化アルキルにさらすことによって吸着し
た表面を架橋することができる。この場合好適な架橋剤
は多官能性エポキシ−15= 樹脂である。適当なエポキシ樹脂架橋剤は1,2−エタ
ンジオールノブリシジルエーテル、1.4−ブタンジオ
ールシグリシノルエーテル及びi。
3−ノブリシジルグリセロールを含む。カチオン交換材
料を製造するために、続いて架橋した吸着コーティング
の少くとも1つのアミン基、好ましくは多くのアミン基
を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在Fに及び好ましく
は乾燥中性溶媒例えばツメチルホルムアミドの存在下に
、表面アミンの誘導化によって少くとも1つの、好まし
くは1つより多くのカルボキシル基を生じせしめるのに
十分な量の試剤と反応させる。プロトン捕捉剤は好まし
くは第3級アミン、更に好ましくはジイソプロピルエチ
ルアミンを含む。架橋した吸着コーティングのアミン基
と反応してカルボキシル基を生成する試剤は単官能性又
は多官能性であってよい。
料を製造するために、続いて架橋した吸着コーティング
の少くとも1つのアミン基、好ましくは多くのアミン基
を、好ましくはプロトン捕捉剤の存在Fに及び好ましく
は乾燥中性溶媒例えばツメチルホルムアミドの存在下に
、表面アミンの誘導化によって少くとも1つの、好まし
くは1つより多くのカルボキシル基を生じせしめるのに
十分な量の試剤と反応させる。プロトン捕捉剤は好まし
くは第3級アミン、更に好ましくはジイソプロピルエチ
ルアミンを含む。架橋した吸着コーティングのアミン基
と反応してカルボキシル基を生成する試剤は単官能性又
は多官能性であってよい。
用いる試剤が単官能性であるならば、試剤は好ましくは
親木性単量体、更に好ましくは親水性単量体無水物、最
も好ましくは親水性単量体環式無水物を含んでなる。適
当な単量体無水物の例は、無水グルタル酸、無水コハク
酸、ジグルフール酸無水物及びテトラヒドロ7ラン2
、3 、4. 、5−テトラカルボン酸二無水物である
。用いる試剤が多官能性である場合には、試剤は好まし
くは親水性重合体、更に好ましくは親水性重合体無水物
、最も好ましくはポリアクリル酸無水物である。
親木性単量体、更に好ましくは親水性単量体無水物、最
も好ましくは親水性単量体環式無水物を含んでなる。適
当な単量体無水物の例は、無水グルタル酸、無水コハク
酸、ジグルフール酸無水物及びテトラヒドロ7ラン2
、3 、4. 、5−テトラカルボン酸二無水物である
。用いる試剤が多官能性である場合には、試剤は好まし
くは親水性重合体、更に好ましくは親水性重合体無水物
、最も好ましくはポリアクリル酸無水物である。
他にアミン基を含んでなる吸着物の薄膜コーティングを
担体材料の表面に吸Mさせた後、架橋してない吸着コー
ティングのアミン基を、好ましくはプロトン捕捉剤の存
在下に、表面アミンの誘導体化を経て該コーティングを
架橋させ旧つ少くとも1つ、好ましくは1つよりも多い
カルボキシル基を生じさせるのに十分な量の多官能性試
剤と反応させる。ここにプロトン捕捉剤は好ましくは第
3級アミン、更に好ましくはジイソプロピルエチルアミ
ンを含む。多官能性試剤は好ましくは親水性重合体であ
り、更に好ましくは親水性重合体無水物であり、最も好
ましくはポリアクリル酸無水物である。用いる多官能性
試剤が無水物である場合には、未反応の無水物の完全な
加水分解を希酸処理で保証する。。
担体材料の表面に吸Mさせた後、架橋してない吸着コー
ティングのアミン基を、好ましくはプロトン捕捉剤の存
在下に、表面アミンの誘導体化を経て該コーティングを
架橋させ旧つ少くとも1つ、好ましくは1つよりも多い
カルボキシル基を生じさせるのに十分な量の多官能性試
剤と反応させる。ここにプロトン捕捉剤は好ましくは第
3級アミン、更に好ましくはジイソプロピルエチルアミ
ンを含む。多官能性試剤は好ましくは親水性重合体であ
り、更に好ましくは親水性重合体無水物であり、最も好
ましくはポリアクリル酸無水物である。用いる多官能性
試剤が無水物である場合には、未反応の無水物の完全な
加水分解を希酸処理で保証する。。
次の限定を意味しない実施例は本発明を更に例示する。
実施例1
ハイタフ101 ’「F’85.5/jm(球、330
人)のシリカ1gをメタノール性1%四/νポリエチレ
ンイミン−18(平均分子量=1800)の溶液1(1
+A6に@濁させた。次いで吸着したコーティングを1
3%V/ジメタツール性ノグリシノルグリセロ−ル溶Q
10 mlを用いて架橋した。このコーティングし1
1つ架橋したシリカ0.7+7を110°Cのか中に3
0分間装いた。次いで乾いたシリカを、乾燥ツメデルホ
ルムアミド4−1(乾燥及び再蒸留した)ノイソブロビ
ルエチルアミン(1)IEA)25 (l tt Q及
び無水コハク酸(S U C)200 +ogカらなる
溶液に懸濁させた1、このアシル化反応は表(f11ア
ミンの誘導体化を経てカルボン酸を生成した。
人)のシリカ1gをメタノール性1%四/νポリエチレ
ンイミン−18(平均分子量=1800)の溶液1(1
+A6に@濁させた。次いで吸着したコーティングを1
3%V/ジメタツール性ノグリシノルグリセロ−ル溶Q
10 mlを用いて架橋した。このコーティングし1
1つ架橋したシリカ0.7+7を110°Cのか中に3
0分間装いた。次いで乾いたシリカを、乾燥ツメデルホ
ルムアミド4−1(乾燥及び再蒸留した)ノイソブロビ
ルエチルアミン(1)IEA)25 (l tt Q及
び無水コハク酸(S U C)200 +ogカらなる
溶液に懸濁させた1、このアシル化反応は表(f11ア
ミンの誘導体化を経てカルボン酸を生成した。
無水物とアミンのコーティング扛っ架橋されたシリカと
の反応中に、隣るアミンを滴定しうる(それを不活fi
、 IISさせる)酸が4−成するのでI)I E A
をプロトン捕捉剤として用いた。この反応を、異なる無
水物−ジグリコール酸無水物(■)GA)、無水グルタ
ル酸(G L、 U )、及びテトラヒドロフラン−2
,3,4,5−テトラカルボン酸2無水物(TETRA
)を無水コハク酸の代りに用いて3回繰返した。反応を
60”C下に終夜進行させた。次いで各生成物をグラス
フィルターで分離し、メタノール、水、トリエチルアミ
ン及びメタノールで連続的に洗浄した。真空下に乾燥し
た後、これらの物質を真空下に貯蔵した。得られたカチ
オン交換材料の各50m)(を、そのピクリン酸を結合
する能力に対して評価した。ピクリン酸イオンはアミド
とではなくて近づきうる(イオン化してない)アミンと
対を作る。それ故にアシル化の量は誘導化後のイオン対
を形成しうるアミンの消失%として決定することができ
る。
の反応中に、隣るアミンを滴定しうる(それを不活fi
、 IISさせる)酸が4−成するのでI)I E A
をプロトン捕捉剤として用いた。この反応を、異なる無
水物−ジグリコール酸無水物(■)GA)、無水グルタ
ル酸(G L、 U )、及びテトラヒドロフラン−2
,3,4,5−テトラカルボン酸2無水物(TETRA
)を無水コハク酸の代りに用いて3回繰返した。反応を
60”C下に終夜進行させた。次いで各生成物をグラス
フィルターで分離し、メタノール、水、トリエチルアミ
ン及びメタノールで連続的に洗浄した。真空下に乾燥し
た後、これらの物質を真空下に貯蔵した。得られたカチ
オン交換材料の各50m)(を、そのピクリン酸を結合
する能力に対して評価した。ピクリン酸イオンはアミド
とではなくて近づきうる(イオン化してない)アミンと
対を作る。それ故にアシル化の量は誘導化後のイオン対
を形成しうるアミンの消失%として決定することができ
る。
ピクリン酸の濃度を測定するためにパーキン−エル7−
(P erkin E 1mer) 55型分光磯
を用いた。ピクリン酸分析の結果を第1表に示す:Lt
−人 tit ti体環式無水物から合成した吸着カチオン交
換静11相の評価 (逆−g/−5□2− コハク酸 80 42 6.615,2
11.4グルタル酸 69 39 10.3
15.2 6.4ノグリコール酸 86 5]、
9.012.4 5.2%S U Bは誘導体化
前及び後の双方におけるピクリン酸イオン対を形成する
能力の分析から決定した置換パーヒントである: ・般に、表面アミンの約70%がアシル化できた(第1
表)。この数からの(無水物に依存しての)僅がなかた
よりは測定の精度(±5%)又は反応性の違いに由来し
た。ピクリン酸はすべて上述のコーティングに吸着され
るから、アミンがカルボキシル残基を有して点在した。
(P erkin E 1mer) 55型分光磯
を用いた。ピクリン酸分析の結果を第1表に示す:Lt
−人 tit ti体環式無水物から合成した吸着カチオン交
換静11相の評価 (逆−g/−5□2− コハク酸 80 42 6.615,2
11.4グルタル酸 69 39 10.3
15.2 6.4ノグリコール酸 86 5]、
9.012.4 5.2%S U Bは誘導体化
前及び後の双方におけるピクリン酸イオン対を形成する
能力の分析から決定した置換パーヒントである: ・般に、表面アミンの約70%がアシル化できた(第1
表)。この数からの(無水物に依存しての)僅がなかた
よりは測定の精度(±5%)又は反応性の違いに由来し
た。ピクリン酸はすべて上述のコーティングに吸着され
るから、アミンがカルボキシル残基を有して点在した。
しかしながら、これらのカチオン交換材料は(ヘモグロ
ビンが負に荷電されているpHである)pH8において
ヘモグロビンを結合しなかった。このことはこれらのア
ミンが蛋白質のような大きい分子に近づけなくてピクリ
ン酸のような小さい分子にだけ近づけることを示す。
ビンが負に荷電されているpHである)pH8において
ヘモグロビンを結合しなかった。このことはこれらのア
ミンが蛋白質のような大きい分子に近づけなくてピクリ
ン酸のような小さい分子にだけ近づけることを示す。
次にカチオン交換材料の各5011Igを、その大分子
(蛋白質が正に荷電しているようなpH5,5における
牛の粗ヘモグロビン■型)を結合する能力に対して分析
した。ヘモグロビンの濃度の測定はパーキン−エルマー
55型分光機を用いた。無水グルタル酸、無水コハク酸
、及びテトラヒドロフラン−2,3,4,5−テトラカ
ルボン酸2無水物を用いて合成したカチオン交換材料は
すべてがコーティングした担体材料1g当り約40+n
Hのヘモグロビンと結合した。ジグリコール酸無水物の
カチオン交換材料は多分誘導体化が増大したためがそれ
より僅かに多くのヘモグロビンと結合した(第1表)。
(蛋白質が正に荷電しているようなpH5,5における
牛の粗ヘモグロビン■型)を結合する能力に対して分析
した。ヘモグロビンの濃度の測定はパーキン−エルマー
55型分光機を用いた。無水グルタル酸、無水コハク酸
、及びテトラヒドロフラン−2,3,4,5−テトラカ
ルボン酸2無水物を用いて合成したカチオン交換材料は
すべてがコーティングした担体材料1g当り約40+n
Hのヘモグロビンと結合した。ジグリコール酸無水物の
カチオン交換材料は多分誘導体化が増大したためがそれ
より僅かに多くのヘモグロビンと結合した(第1表)。
、:れらの材料の、pH5,5におけるヘモグロビン結
合能力を、蛋白質カチオン交換結合能次に無水コハク酸
(SUC)、無水グルタル酸(G1= [J )、ノグ
リコ・−ル酸無水物(D CA )、及びテトラヒドロ
フラン−2、3、4、5−テトラカルボン酸−無水物(
1’ E T RA )のカチオン交換材料の名0.5
8を、それぞれカラムクロマトグラフィーによる評価の
ために0,41X5cm内径のカラムに充填した(第1
表及び第1 A、B、C図)。そして流出削として0
、OI M Na0ac(pl−15、5)から0.
OLM Na0uc中0 、 5 M NaC1(
pH5,5)までの20分間にわたる直線的グラジェン
トをll1l12/分の流速で用いることによってクロ
マトグラフィーを行なった[グラジェント・マスター(
G radicnt Mn5ter)を合むI−D
C:I ンスタメトリック(Constamet、ri
c) I及びIIGシステムを使用−ラボラトリ−・デ
ータ・コントロール(Laboratory Dat
a ConLrol+Riviera Beach
y r;” 1orida)製]。分析用の試験試料(
20μl)はチトクロームC(CYTc−馬の心MIX
+I] I = 9 。
合能力を、蛋白質カチオン交換結合能次に無水コハク酸
(SUC)、無水グルタル酸(G1= [J )、ノグ
リコ・−ル酸無水物(D CA )、及びテトラヒドロ
フラン−2、3、4、5−テトラカルボン酸−無水物(
1’ E T RA )のカチオン交換材料の名0.5
8を、それぞれカラムクロマトグラフィーによる評価の
ために0,41X5cm内径のカラムに充填した(第1
表及び第1 A、B、C図)。そして流出削として0
、OI M Na0ac(pl−15、5)から0.
OLM Na0uc中0 、 5 M NaC1(
pH5,5)までの20分間にわたる直線的グラジェン
トをll1l12/分の流速で用いることによってクロ
マトグラフィーを行なった[グラジェント・マスター(
G radicnt Mn5ter)を合むI−D
C:I ンスタメトリック(Constamet、ri
c) I及びIIGシステムを使用−ラボラトリ−・デ
ータ・コントロール(Laboratory Dat
a ConLrol+Riviera Beach
y r;” 1orida)製]。分析用の試験試料(
20μl)はチトクロームC(CYTc−馬の心MIX
+I] I = 9 。
2 > 3 mg/ tag!及びリゾザイム(1,−
Y 7.−卵白、pi= 11 )5 mg/m4と酸
化を禁止するための痕跡量の7スコルビン酸からなった
。検知はアルテックス(A 1tex)U V検知器1
53型[アンスペク(Anspec、 A nn A
rhor、 M ichigan)W ]によりA25
.で行なった。CYTc及びり、 Y Zのピークの保
持時間(1)を第1表に示し、これを第1図にグラフ的
に示す。CYTc及びI−Y ニア、間の分離(第1表
及び第1図におけるRs)を方程式 %式% に従って計算した。ここに記号 R1及びR7は各t
[ ビークの保持時間であり、一方△ R1及びΔ R7は
ビーク中である。添字1及び2はカラムがら流出する第
1及び第2ピークに関するものである。
Y 7.−卵白、pi= 11 )5 mg/m4と酸
化を禁止するための痕跡量の7スコルビン酸からなった
。検知はアルテックス(A 1tex)U V検知器1
53型[アンスペク(Anspec、 A nn A
rhor、 M ichigan)W ]によりA25
.で行なった。CYTc及びり、 Y Zのピークの保
持時間(1)を第1表に示し、これを第1図にグラフ的
に示す。CYTc及びI−Y ニア、間の分離(第1表
及び第1図におけるRs)を方程式 %式% に従って計算した。ここに記号 R1及びR7は各t
[ ビークの保持時間であり、一方△ R1及びΔ R7は
ビーク中である。添字1及び2はカラムがら流出する第
1及び第2ピークに関するものである。
リゾザイムは強く保持されたが、CY T cは早く流
出した(第IC図)。無水コハク酸材料の性能は経済的
理由のためにも価値があった。即ちそれは用いた無水物
の中で最低の価格のものである。
出した(第IC図)。無水コハク酸材料の性能は経済的
理由のためにも価値があった。即ちそれは用いた無水物
の中で最低の価格のものである。
23一
実施例11
ポリアクリル酸(MW2000、鎖長28)5gを10
0m1の丸底フラスコに入れ、これを180°Cの油浴
中に置くことによってポリアクリル酸無水豐(F A
A )を合成した。次いでこのフラスコを真空ポンプに
連結し、3時間脱気した。得られた黄色の固体をフラス
コから取り出し、デシケータ中に貯蔵した。NMRによ
る分析は重合体分子当り約11個の無水物官能基に相当
して脱水されたカルボキシル基79%を示した。
0m1の丸底フラスコに入れ、これを180°Cの油浴
中に置くことによってポリアクリル酸無水豐(F A
A )を合成した。次いでこのフラスコを真空ポンプに
連結し、3時間脱気した。得られた黄色の固体をフラス
コから取り出し、デシケータ中に貯蔵した。NMRによ
る分析は重合体分子当り約11個の無水物官能基に相当
して脱水されたカルボキシル基79%を示した。
バイグクj01TPB5.5μl1l(球、330人)
のシリカ0.7gを、1%W/Vメタノール性ポリエチ
レンイミンの1%溶液JOmj中に懸濁させ、室温下に
30分間放置した。この吸着17たシリカをグラス・フ
ィルター上に再分離し、110’Cの炉中に30分間入
れた。次いでこの乾燥した媒体を、乾燥ジメチルホルム
アミド4mj!、乾燥・蒸留したノイソプロビルエチル
アミン250μe及び)―で調製したポリアクリル酸無
水物50+ng(]。
のシリカ0.7gを、1%W/Vメタノール性ポリエチ
レンイミンの1%溶液JOmj中に懸濁させ、室温下に
30分間放置した。この吸着17たシリカをグラス・フ
ィルター上に再分離し、110’Cの炉中に30分間入
れた。次いでこの乾燥した媒体を、乾燥ジメチルホルム
アミド4mj!、乾燥・蒸留したノイソプロビルエチル
アミン250μe及び)―で調製したポリアクリル酸無
水物50+ng(]。
2%E) A A )を含む50m1の丸底7ラスフー
こ移し一24= た。異なる量のポリアクリル酸無水物、即ちポリアクリ
ル酸無水物)OOmg(2,4%P AΔ)及びポリア
クリル酸無水物200m5(4,7%I” A A )
を用いて上述の反応を更に2回繰返しt″、。反応を6
0℃で終夜進行させた。次いで各生成物をグラス・フィ
ルター−にに分離し、メタ/−ル、水、l・リエチルア
ミン及びメタ/−ルで連続的に洗浄し。
こ移し一24= た。異なる量のポリアクリル酸無水物、即ちポリアクリ
ル酸無水物)OOmg(2,4%P AΔ)及びポリア
クリル酸無水物200m5(4,7%I” A A )
を用いて上述の反応を更に2回繰返しt″、。反応を6
0℃で終夜進行させた。次いで各生成物をグラス・フィ
ルター−にに分離し、メタ/−ル、水、l・リエチルア
ミン及びメタ/−ルで連続的に洗浄し。
た。真空下に乾燥後、これらの物質をデシケータ−中に
貯蔵した。種々のポリアクリル酸無水物を用いて合成し
たカチオン交換材料の各50+nBを、ピクリン酸を結
合する能力に灯して評価した。分析の結果を第11表に
示す。
貯蔵した。種々のポリアクリル酸無水物を用いて合成し
たカチオン交換材料の各50+nBを、ピクリン酸を結
合する能力に灯して評価した。分析の結果を第11表に
示す。
第−1−表−
ポリアクリル酸無水物を用いて合成した吸着カチオン交
換層11−相の評価 (準g/B1 4.7 59 59 10.6NE
(1)2.4 68 54 8,
815.48,61.2 55 36
6.6 to、64.9興味あることに、これらの
カチオン交換材料のアシル化%は実施例1における単量
体無水物を用いて得られるものより低かった。大きいポ
リアクリル酸無水物の静11・、相アミンへの接近は立
体的理由のために妨害されるかも知れない。アニオン交
換体のヘモグロビン結合は存在しないから、カチオン交
換材料は接近しうる残存の正荷電を有さずに適゛1冒こ
架橋されていると思われる。
換層11−相の評価 (準g/B1 4.7 59 59 10.6NE
(1)2.4 68 54 8,
815.48,61.2 55 36
6.6 to、64.9興味あることに、これらの
カチオン交換材料のアシル化%は実施例1における単量
体無水物を用いて得られるものより低かった。大きいポ
リアクリル酸無水物の静11・、相アミンへの接近は立
体的理由のために妨害されるかも知れない。アニオン交
換体のヘモグロビン結合は存在しないから、カチオン交
換材料は接近しうる残存の正荷電を有さずに適゛1冒こ
架橋されていると思われる。
ポリアクリル酸無水物カチオン交換材料の各50mBを
、ヘモグロビン(牛の粗■型)をpH5,5のp 衝p
tlで用いて、蛋白質カチオン交換体結合fllu力
(Hb )に対して評価した。この分析の結果を第
■表に示す。ヘモグロビンの結合はポリアクリル酸無水
物の濃度と共に増加した。最大の値は最高濃度(4,7
%I) A A )で合成した材料のときに得られた。
、ヘモグロビン(牛の粗■型)をpH5,5のp 衝p
tlで用いて、蛋白質カチオン交換体結合fllu力
(Hb )に対して評価した。この分析の結果を第
■表に示す。ヘモグロビンの結合はポリアクリル酸無水
物の濃度と共に増加した。最大の値は最高濃度(4,7
%I) A A )で合成した材料のときに得られた。
この材料と2.4%1)A Aを用いて製造した材料の
双方は、実施例Iで製造したジグリコール酸無水物のカ
チオン交換材料よりも多くのヘモグロビンを結合した。
双方は、実施例Iで製造したジグリコール酸無水物のカ
チオン交換材料よりも多くのヘモグロビンを結合した。
実施例I及びHのすべてのカチオン交換材料はすべて共
通の中間体(即ちバイダク・シリカに吸着した未架橋の
ポリエチレンイミン)を用いて製造しでいるから、増大
したヘモグロビン結合能力は共有結合したl) AAの
カルボキシル基に対するアミドの比に直接関係するよう
に見える。
通の中間体(即ちバイダク・シリカに吸着した未架橋の
ポリエチレンイミン)を用いて製造しでいるから、増大
したヘモグロビン結合能力は共有結合したl) AAの
カルボキシル基に対するアミドの比に直接関係するよう
に見える。
ポリアクリル酸無水物は線状重合体である。カルボキシ
ル基が面の5つの原子内に存在するに違いない実施例I
の単量体無水物と違って、ポリアクリル酸の伸びたもの
(幹及び環)はシリカの細孔容量内に達し得ない。その
ような構造の存在は表面に鋸歯状の形態を力え、効果的
に表面積を増大させる。結合能力は直接後者に関連する
から、増加に帰結する。1.2%PAAで架橋したカチ
オン交換材料は実施例1の単量体無水物のカチオン交換
材料に匹敵してコーティングした担体18当り−・モグ
ロビン36mgを結合した。ポリアクリル酸の低濃度t
こおいて、幹と環構造は、表面アミンに則する競合が小
さく且つポリアクリル酸無水物が広範に反応するから、
主たるものでないかも知れない。
ル基が面の5つの原子内に存在するに違いない実施例I
の単量体無水物と違って、ポリアクリル酸の伸びたもの
(幹及び環)はシリカの細孔容量内に達し得ない。その
ような構造の存在は表面に鋸歯状の形態を力え、効果的
に表面積を増大させる。結合能力は直接後者に関連する
から、増加に帰結する。1.2%PAAで架橋したカチ
オン交換材料は実施例1の単量体無水物のカチオン交換
材料に匹敵してコーティングした担体18当り−・モグ
ロビン36mgを結合した。ポリアクリル酸の低濃度t
こおいて、幹と環構造は、表面アミンに則する競合が小
さく且つポリアクリル酸無水物が広範に反応するから、
主たるものでないかも知れない。
ポリアクリル酸無水物のカチオン交換材料の各約0.5
Bをクロマトグラフィーによる評価のために0.41X
5cmのカラムに充填した。そして実施例1のクロマト
グラフィー装置及び検知装置を用い且つ流出剤として0
. OI M Na0ac(pH5,5)からQ 、
(11M Na0ac中IMNaCl(lull 5
、 5 )までの20分間にわたる直線的グラジェン
トを1 m27分の流速で用いてクロマトグラフィーを
行なった。分析試験試料(20μρ)は実施例Iにおけ
る如(CY T c及びり、 Y 7.と痕跡用のアス
コルビン酸からなった。CY T c及びLYZのピー
クの保持時間(R)及びCYTc及びLYZ間の分離 (実施例Iにおける如く計ti1.)を第11表に示す
。1゜2%I) A A材料に対するCYTc及びL
Y Zのピークの保持時間を第1図1こグラフ的に示1
゜CY1’cとリゾザイムの保持時間はI” A Aの
濃度と共に増加した。事実リゾザイムはIMNaClを
用いて4.7%PAAから流出ぜず、また264%のF
’ A Aカラムからの脱着には0.77 M NaC
lが必要であった。これらの値は実施例■のカラムから
得たものよりも実質的に高い。強力に保持する4、7%
のカラムはそれがあまりにも保持しすぎるからクロマト
グラフィーで実用的でないかも知れないけれど、蛋白質
の固定化には使用することかでトよう。カチオン性ポリ
ペプチド例えば抗体は、免疫親和性クロマトグラフィー
に対するそのマトリックスにしっかり吸着することがで
きた。
Bをクロマトグラフィーによる評価のために0.41X
5cmのカラムに充填した。そして実施例1のクロマト
グラフィー装置及び検知装置を用い且つ流出剤として0
. OI M Na0ac(pH5,5)からQ 、
(11M Na0ac中IMNaCl(lull 5
、 5 )までの20分間にわたる直線的グラジェン
トを1 m27分の流速で用いてクロマトグラフィーを
行なった。分析試験試料(20μρ)は実施例Iにおけ
る如(CY T c及びり、 Y 7.と痕跡用のアス
コルビン酸からなった。CY T c及びLYZのピー
クの保持時間(R)及びCYTc及びLYZ間の分離 (実施例Iにおける如く計ti1.)を第11表に示す
。1゜2%I) A A材料に対するCYTc及びL
Y Zのピークの保持時間を第1図1こグラフ的に示1
゜CY1’cとリゾザイムの保持時間はI” A Aの
濃度と共に増加した。事実リゾザイムはIMNaClを
用いて4.7%PAAから流出ぜず、また264%のF
’ A Aカラムからの脱着には0.77 M NaC
lが必要であった。これらの値は実施例■のカラムから
得たものよりも実質的に高い。強力に保持する4、7%
のカラムはそれがあまりにも保持しすぎるからクロマト
グラフィーで実用的でないかも知れないけれど、蛋白質
の固定化には使用することかでトよう。カチオン性ポリ
ペプチド例えば抗体は、免疫親和性クロマトグラフィー
に対するそのマトリックスにしっかり吸着することがで
きた。
0〜IMNaClの20分間にわたる直線的グラジェン
トを用いる場合、CYTc及び1. Y 2間の分離は
4.7%のFAAカラムにおける「無限Jから1.2%
のP A Aカラムにおける4、9の値まで変化した。
トを用いる場合、CYTc及び1. Y 2間の分離は
4.7%のFAAカラムにおける「無限Jから1.2%
のP A Aカラムにおける4、9の値まで変化した。
4.7%11) A AカラムはL Y Zの無限の保
持のため、Rsが定義できなかった。1゜2%r’ A
Aカラムは上述の条件下に最低のRsを与えた。しか
しながら、二の値はグラジエン1の勾配を゛に分だけ減
少させると6.1に増加した(参照第11)図)。
持のため、Rsが定義できなかった。1゜2%r’ A
Aカラムは上述の条件下に最低のRsを与えた。しか
しながら、二の値はグラジエン1の勾配を゛に分だけ減
少させると6.1に増加した(参照第11)図)。
実施例Il+
CYTc及びI−、Y Z、と痕跡量のアスコルビン酸
を含む実施例Iと同様の試験試料約20μPを、いくつ
かの流出pl−I値(他の条件は一定)において実施例
1の無水グルタル酸、無水コハク酸及びジグリコール酸
無水物のカラム及び実施例Hの1゜2%ポリアクリル酸
無水物のカラムでのクロマトグラフィーに供した。すべ
ての場合、保持はpHに対して逆の関係にあった(第2
図は正にリゾザイムの保持を示す)。この挙動は流出p
Hが等電点以下に低下するにつれて蛋白質の真の正荷電
が増加することに由来する。更に詳しく検討すると、無
水グルタル酸のカラムが最もpHに敏感である。
を含む実施例Iと同様の試験試料約20μPを、いくつ
かの流出pl−I値(他の条件は一定)において実施例
1の無水グルタル酸、無水コハク酸及びジグリコール酸
無水物のカラム及び実施例Hの1゜2%ポリアクリル酸
無水物のカラムでのクロマトグラフィーに供した。すべ
ての場合、保持はpHに対して逆の関係にあった(第2
図は正にリゾザイムの保持を示す)。この挙動は流出p
Hが等電点以下に低下するにつれて蛋白質の真の正荷電
が増加することに由来する。更に詳しく検討すると、無
水グルタル酸のカラムが最もpHに敏感である。
無水グルタル酸は更なるメチレン基を含有するから、共
働的な疎水性−イオン性の相互作用が確かなものとなる
。この実験はこれらのカチオン交換材料の一般的な操作
1〕11範囲を規定するのに役立つ。CYTc及びI−
、Y 2間で4またはそれ以トの分離がpH5,5−7
,5において得られた。
働的な疎水性−イオン性の相互作用が確かなものとなる
。この実験はこれらのカチオン交換材料の一般的な操作
1〕11範囲を規定するのに役立つ。CYTc及びI−
、Y 2間で4またはそれ以トの分離がpH5,5−7
,5において得られた。
実施例■
実施例Iの無水フハク酸のカラムと実施例■の1.2%
ポリアクリル酸無水物のカラムを、粗蛋白質混合物の分
画のための代表的媒体として選択した。試料はチトクロ
ームC,53(CY T css3)を含むシア/バク
テリヤ[ア7アニゾメ7ン・70ス−アクアエ(Aph
anizomenon flos−aquac)lか
らの抽出物からなった。この蛋白質は9.3の等電点、
i、1,000の分子−推及び独特なスペクトル的性質
を有した。還元状態において可視1数取スペクトルは2
80.41.0及び553 nmに最大値を示した。
ポリアクリル酸無水物のカラムを、粗蛋白質混合物の分
画のための代表的媒体として選択した。試料はチトクロ
ームC,53(CY T css3)を含むシア/バク
テリヤ[ア7アニゾメ7ン・70ス−アクアエ(Aph
anizomenon flos−aquac)lか
らの抽出物からなった。この蛋白質は9.3の等電点、
i、1,000の分子−推及び独特なスペクトル的性質
を有した。還元状態において可視1数取スペクトルは2
80.41.0及び553 nmに最大値を示した。
粗細胞抽出物を限外濾過(分子fd30,000のもの
を透過しない膜)により部分的に処理した。
を透過しない膜)により部分的に処理した。
蛋白質を(1、5Ing/ mρ以?’t″含有する得
られたか液を集め、pT−(7にiM節した。次いでこ
の混合物の80μpの両分を各カチオン交換カラム(0
゜41X 5cm)にかけた。実施例1におけろように
、流出剤として0 、 OI M Na0ac(pII
7 )から0゜01 M Na0ac中0.5 M
NaC1(pH7)までの2()分間にわたる直線的
グラジェントを1+aj!/分の流速で用いることによ
り、クロマトグラフィーを行なった。ト11)1040
A型検知器[ヒユーレットI ハラカード社(I(eu
+1ett Packard、 C0rval l
is、 OreHon)]を用い、2つの波長(260
及び410τ+m)で監視した。260肋のシグナルは
rべての蛋白質を検知し、−力410旧nのシグナルは
ポリポルフィリン環(例えばCYT(!、53)を含む
ものを監視した。
られたか液を集め、pT−(7にiM節した。次いでこ
の混合物の80μpの両分を各カチオン交換カラム(0
゜41X 5cm)にかけた。実施例1におけろように
、流出剤として0 、 OI M Na0ac(pII
7 )から0゜01 M Na0ac中0.5 M
NaC1(pH7)までの2()分間にわたる直線的
グラジェントを1+aj!/分の流速で用いることによ
り、クロマトグラフィーを行なった。ト11)1040
A型検知器[ヒユーレットI ハラカード社(I(eu
+1ett Packard、 C0rval l
is、 OreHon)]を用い、2つの波長(260
及び410τ+m)で監視した。260肋のシグナルは
rべての蛋白質を検知し、−力410旧nのシグナルは
ポリポルフィリン環(例えばCYT(!、53)を含む
ものを監視した。
無水コハク酸から得られたクロマトグラム(260nu
n)は実質的な数の紫外線吸収材料を示す(第3 A図
)。しかしながら8.5分で流出する小さいピークはそ
のスペクトル的性質に基づいてCYTc、!%Iとして
同定できた(第3B図)。ピーク頂点における5 53
/280の吸光度の比は0.4であった。1の値は純度
90%と考えられるから、不純物が依然存在する。それ
にもかかわらず、残りのピーク面1+二対するCYTC
sq*のピーク面積から判断して実質的な精製が達成で
きた。同一・の条件下における1、2%ポリアクリル酸
無水物のカラムでのクロマトグラフィーも同様の結果を
与えた(第3C図)。一般にこの担体は無水コハク酸の
カラムより僅かに保持的であり往っ僅かに選択的であり
、混合物を10に対し12の明確なピークに分離した。
n)は実質的な数の紫外線吸収材料を示す(第3 A図
)。しかしながら8.5分で流出する小さいピークはそ
のスペクトル的性質に基づいてCYTc、!%Iとして
同定できた(第3B図)。ピーク頂点における5 53
/280の吸光度の比は0.4であった。1の値は純度
90%と考えられるから、不純物が依然存在する。それ
にもかかわらず、残りのピーク面1+二対するCYTC
sq*のピーク面積から判断して実質的な精製が達成で
きた。同一・の条件下における1、2%ポリアクリル酸
無水物のカラムでのクロマトグラフィーも同様の結果を
与えた(第3C図)。一般にこの担体は無水コハク酸の
カラムより僅かに保持的であり往っ僅かに選択的であり
、混合物を10に対し12の明確なピークに分離した。
この場合にもCYTcs、を保持時間5)、4分におけ
る可視吸収によって同定した。
る可視吸収によって同定した。
ピーク最大値におけるスペクトル分析は約0.45の5
53/280の吸光度比を示した。
53/280の吸光度比を示した。
以1一本発明をその好適な具体例を参照しで記述してき
たけれど、他の具体例も同一の結果を達成することがで
きる。本発明の変化及び改変は同業者には明白であり、
本発明の精神及び範囲に入る如きすべてのそのような改
変及び同等物は特許請求の範囲に包含されろものとする
。。
たけれど、他の具体例も同一の結果を達成することがで
きる。本発明の変化及び改変は同業者には明白であり、
本発明の精神及び範囲に入る如きすべてのそのような改
変及び同等物は特許請求の範囲に包含されろものとする
。。
第1A、B、C及びD図はチ1クロームC−リゾザイム
蛋白質混合物の分離に基づく4種の選択したカチオン交
換カラムのクロマトグラフィーによる評価を示すグラフ
であり、 第2図は4種の選択したカチオン交換カラムにおけるリ
ゾザイムの保持をp■1の関数として示すグラフであり
、そして 第:((A、B)及び(C,D)図はチトクロームC5
53を含有するA、7Clスーアクアエ(f los
−aquae)[アル〃工(atピae)、抽出物の2
種の選択したカチオン交換カラムのクロマトグラフィー
による評価を示すグラフである。 14間(々) 手 続 事由 jE 書く方式) 昭和62年8 J]27 E+ 特許庁長官 小 川 邦 夫 殿 1、事件の表示 昭和62年特許願第]、13699号 2、発明の名称 カチオン交換性材料 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 名 称 パーデユー・リサーチ・ファウンデーション4
、代理人 〒107 5 補(F命令の日付 昭和62年7月28目(発送
日)6、補IFの対象 明細書の図面の簡単な説明の欄 7 補正の内容 1 明細書の図面の簡単な説明の欄の記載をト記(7)
通り訂正する; (1)明細群第35や2行に[第1A、R,C及びI)
図1とあるを l「第1国、η に、;1止する。 〈2〉同35 Y′f9 ’IIに[第3 (A、 l
−1)及び(c。 1”))1夕11とあるを 「第31ツ1.Il に訂IFする。。
蛋白質混合物の分離に基づく4種の選択したカチオン交
換カラムのクロマトグラフィーによる評価を示すグラフ
であり、 第2図は4種の選択したカチオン交換カラムにおけるリ
ゾザイムの保持をp■1の関数として示すグラフであり
、そして 第:((A、B)及び(C,D)図はチトクロームC5
53を含有するA、7Clスーアクアエ(f los
−aquae)[アル〃工(atピae)、抽出物の2
種の選択したカチオン交換カラムのクロマトグラフィー
による評価を示すグラフである。 14間(々) 手 続 事由 jE 書く方式) 昭和62年8 J]27 E+ 特許庁長官 小 川 邦 夫 殿 1、事件の表示 昭和62年特許願第]、13699号 2、発明の名称 カチオン交換性材料 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 名 称 パーデユー・リサーチ・ファウンデーション4
、代理人 〒107 5 補(F命令の日付 昭和62年7月28目(発送
日)6、補IFの対象 明細書の図面の簡単な説明の欄 7 補正の内容 1 明細書の図面の簡単な説明の欄の記載をト記(7)
通り訂正する; (1)明細群第35や2行に[第1A、R,C及びI)
図1とあるを l「第1国、η に、;1止する。 〈2〉同35 Y′f9 ’IIに[第3 (A、 l
−1)及び(c。 1”))1夕11とあるを 「第31ツ1.Il に訂IFする。。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、a)吸着物に対して親和性をもつ表面を有する担体
材料を用意し; b)該担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸着物
と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電力に
よって該表面に吸着させ;そしてc)吸着したコーティ
ングのアミン基を、該コーティングを架橋させ且つ少く
とも1つの、好ましくは多くの、カルボキシル基を生じ
させるのに十分な量の多官能性試剤と反応させる、 工程を含んでなるカチオン交換材料の製造法。 2、多官能性試剤が親水性重合体を含んでなる特許請求
の範囲第1項記載の方法。 3、工程c)におけるアミンと多官能性試剤の反応に、
第3級アミンを含んでなるプロトン捕捉剤を添加する特
許請求の範囲第1項記載の方法。 4、該担体材料がシリカ、アルミナ及びチタニアからな
る群から選択される無機担体材料である特許請求の範囲
第1項記載の方法。 5、該吸着物がポリエチレンイミン、1,3−ジアミノ
−2−ヒドロキシプロパン、テトラエチレンペンタイミ
ン、及びエチレンジアミンからなる群から選択される特
許請求の範囲第1項記載の方法。 6、該吸着物が溶媒中に含まれ且つ吸着が少くとも部分
的に該溶媒の極性を調節することによって確立される特
許請求の範囲第1項記載の方法。 7、親水性重合体が重合体無水物を含んでなる特許請求
の範囲第2項記載の方法。 8、重合体無水物がポリアクリル酸無水物を含んでなる
特許請求の範囲第7項記載の方法。 9、該カチオン交換材料を液体クロマトグラフィーにお
ける充填材料として使用する特許請求の範囲第1項記載
の方法。 10、該クロマトグラフィー充填材料を、蛋白質又は他
の生物学的重合体を分離するために用いる特許請求の範
囲第9項記載の方法。 11、a)吸着物に対して親和性をもつ表面を有するシ
リカ担体材料を用意し; b)該担体材料を、ポリエチレンイミンを含んでなる吸
着物と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電
によって表面に吸着させ;そして c)該吸着したポリエチレンイミンコーティングを、プ
ロトン捕捉剤の存在下に、該コーティングを架橋させ及
びカルボキシル基を生じせしめるのに十分な量のポリア
クリル酸無水物と反応させる、 工程を含んでなるカチオン交換材料の製造法。 12、a)吸着物に対して親和性をもつ表面を有する担
体材料を用意し; b)該担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸着物
と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電力に
よって該表面に吸着させ; c)該表面に吸着した該コーティングを架橋させ;そし
て d)該吸着した架橋コーティングの少くとも1つの、好
ましくは多くのアミン基を、少くとも1つの、好ましく
は多くのカルボキシル基を生じせしめるのに十分な量の
試剤と反応させる、 工程を含んでなるカチオン交換材料の製造法。 13、工程c)におけるアミンと多官能性試剤の反応に
、第3級アミンを含んでなるプロトン捕捉剤を添加する
特許請求の範囲第12項記載の方法。 14、該担体材料がシリカ、アルミナ及びチタニアから
なる群から選択される無機担体材料である特許請求の範
囲第12項記載の方法。 15、該吸着物がポリエチレンイミン、1,3−ジアミ
ノ−2−ヒドロキシプロパン、テトラエチレンペンタイ
ミン、及びエチレンジアミンからなる群から選択される
特許請求の範囲第12項記載の方法。 16、工程d)における試剤が多官能性である特許請求
の範囲第12項記載の方法。 17、該多官能性試剤が親水性重合体を含んでなる特許
請求の範囲第16項記載の方法。 18、該親水性重合体が重合体無水物を含んでなる特許
請求の範囲第17項記載の方法。 19、該重合体無水物がポリアクリル酸無水物である特
許請求の範囲第18項記載の方法。 20、工程d)における試剤が単官能性である特許請求
の範囲第12項記載の方法。 21、該単官能性試剤が親水性単量体である特許請求の
範囲第20項記載の方法。 22、親水性単量体が単官能性の環式無水物を含んでな
る特許請求の範囲第21項記載の方法。 23、単官能性無水物が無水グルタル酸、無水コハク酸
、無水ジグリコール酸及びテトラヒドロフラン−2,3
,4,5−テトラカルボン酸二無水物からなる群から選
択される特許請求の範囲第22項記載の方法。 24、該表面を、エポキシ樹脂及びアルキルブロマイド
からなる群から選択される架橋剤にさらす、ことによっ
て該吸着したコーティングを架橋する特許請求の範囲第
12項記載の方法。 25、該吸着物が溶媒中に含まれ且つ吸着を少くとも部
分的に該溶媒の極性を調節することによって確立する特
許請求の範囲第12項記載の方法。 26、a)吸着物に対して親和性をもつ表面を有する担
体材料を用意し; b)該担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸着物
と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電力に
よって該表面に吸着させ;そしてc)吸着したコーティ
ングのアミン基を、該コーティングを架橋させ且つ少く
とも1つの、好ましくは多くの、カルボキシル基を生じ
させるのに十分な量の多官能性試剤と反応させる、 工程を含んでなる方法によって製造されるカチオン交換
材料。 27、多官能性試剤が親水性重合体を含んでなる特許請
求の範囲第26項記載のカチオン交換材料。 28、工程c)におけるアミンと多官能性試剤の反応に
、第3級アミンを含んでなるプロトン捕捉剤を添加する
特許請求の範囲第26項記載のカチオン交換材料。 29、該担体材料がシリカ、アルミナ及びチタニアから
なる群から選択される無機担体材料である特許請求の範
囲第26項記載のカチオン交換材料。 30、該吸着物がポリエチレンイミン、1,3−ジアミ
ノ−2−ヒドロキシプロパン、テトラエチレンペンタイ
ミン、及びエチレンジアミンからなる群から選択される
特許請求の範囲第26項記載のカチオン交換材料。 31、該吸着物が溶媒中に含まれ且つ吸着が少くとも部
分的に該溶媒の極性を調節することによって確立される
特許請求の範囲第26項記載のカチオン交換材料。 32、親水性重合体が重合体無水物を含んでなる特許請
求の範囲第27項記載のカチオン交換材料。 33、重合体無水物がポリアクリル酸無水物を含んでな
る特許請求の範囲第32項記載のカチオン交換材料。 34、a)吸着物に対して親和性をもつ表面を有する担
体材料を用意し; b)該担体材料の表面を、アミン基を含んでなる吸着物
と接触させて、該吸着物の薄膜コーティングを静電力に
よって該表面に吸着させ; c)該表面に吸着した該コーティングを架橋させ;そし
て d)該吸着した架橋コーティングの少くとも1つの、好
ましくは多くのアミン基を、少くとも1つの、好ましく
は多くのカルボキシル基を生じせしめるのに十分な量の
試剤と反応させる、 工程を含んでなる方法によって製造されるカチオン交換
材料。 35、工程d)における試剤が多官能性である特許請求
の範囲第34項記載のカチオン交換材料。 36、該多官能性試剤が親水性重合体無水物を含んでな
る特許請求の範囲第35項記載のカチオン交換材料。 37、工程d)における試剤が単官能性である特許請求
の範囲第34項記載のカチオン交換材料。 38、親水性単量体が親水性の単官能性環式無水物を含
んでなる特許請求の範囲第37項記載のカチオン交換材
料。 39、該担体材料がシリカ、アルミナ及びチタニアから
なる群から選択される無機担体材料である特許請求の範
囲第34項記載のカチオン交換材料。 40、該表面を、エポキシ樹脂及びアルキルブロマイド
からなる群から選択される架橋剤にさらすことによって
該吸着したコーティングを架橋する特許請求の範囲第3
4項記載のカチオン交換材料。 41、工程d)において、吸着した架橋コーティングの
すべての反応性アミン基を、大きい分子例えば蛋白質に
近づけないものを除いて、カルボキシル基を生じせしめ
る試剤と反応させる特許請求の範囲第12項記載の方法
。
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-
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-
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