JPS6012993A - 光学活性カルボン酸の製造法 - Google Patents
光学活性カルボン酸の製造法Info
- Publication number
- JPS6012993A JPS6012993A JP12028283A JP12028283A JPS6012993A JP S6012993 A JPS6012993 A JP S6012993A JP 12028283 A JP12028283 A JP 12028283A JP 12028283 A JP12028283 A JP 12028283A JP S6012993 A JPS6012993 A JP S6012993A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- carboxylic acid
- optically active
- ester
- active carboxylic
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、一般式
(2
%式%[1
(式中R1はアルキル基、アラルキル基又はアリル基、
R2及びR3はアルキル基、nは1又は2を示す)で表
わされる光学活性カルボン酸の製造法に関する。
R2及びR3はアルキル基、nは1又は2を示す)で表
わされる光学活性カルボン酸の製造法に関する。
式lのカルボン酸は光学活性を有する種々の生理活性物
質を合成するだめの原料として利用されている。従来、
式1の光学活性カルボン酸の製造法としては、あらかじ
め有機合成的にうセミ体のカルボン酸を合成したのち、
光学分割剤を用いて分割する方法、すなわち物理化学的
に一方の光学活性体とその対掌体とに分別する方法が知
られている(特開昭55−118455号、同56−8
1557号、同57−188563号、ヨーロッパ特許
公開筒79200477号各明細書参照)。しかしこれ
らの方法では、高価な分割剤が多量に必要とされること
、この分割剤が不純物として製品中に混入しやすいこと
、分割工程が複雑であることなどの欠点があり、工業的
な製法としては必ずしも満足できるものではない。
質を合成するだめの原料として利用されている。従来、
式1の光学活性カルボン酸の製造法としては、あらかじ
め有機合成的にうセミ体のカルボン酸を合成したのち、
光学分割剤を用いて分割する方法、すなわち物理化学的
に一方の光学活性体とその対掌体とに分別する方法が知
られている(特開昭55−118455号、同56−8
1557号、同57−188563号、ヨーロッパ特許
公開筒79200477号各明細書参照)。しかしこれ
らの方法では、高価な分割剤が多量に必要とされること
、この分割剤が不純物として製品中に混入しやすいこと
、分割工程が複雑であることなどの欠点があり、工業的
な製法としては必ずしも満足できるものではない。
本発明者らは、この種のカルボン酸エステルを不斉加水
分解する方法に関して鋭意研究を行つt、ニー 結果、
アスペルギルス属、バチルス属、トルロプシス属等の微
生物を用いることにより、式Iの光学活性カルボン酸を
効率よ(製造できることを見い出した。
分解する方法に関して鋭意研究を行つt、ニー 結果、
アスペルギルス属、バチルス属、トルロプシス属等の微
生物を用いることにより、式Iの光学活性カルボン酸を
効率よ(製造できることを見い出した。
本発明は、一般式
(式中R3はアルキル基を示し、R1、R2及びn&ま
前記の意味を有する)で表わされるエステルに、エステ
ル結合を不斉加水分解する能力を有する微生物の培養液
、菌体又は菌体処理物を作用させることを特徴とする、
一般式 (式中R,、R2及びnは前記の意味を有する)で表わ
される光学活性カルボン酸の製造法である。
前記の意味を有する)で表わされるエステルに、エステ
ル結合を不斉加水分解する能力を有する微生物の培養液
、菌体又は菌体処理物を作用させることを特徴とする、
一般式 (式中R,、R2及びnは前記の意味を有する)で表わ
される光学活性カルボン酸の製造法である。
式I及び式■の化合物の置換基R1のためのアルキル基
としては例えばメチル基、エチル基など、アラルキル基
としては例えばベンジル基、アリル基としては例えばフ
ェニル基が挙げられる。
としては例えばメチル基、エチル基など、アラルキル基
としては例えばベンジル基、アリル基としては例えばフ
ェニル基が挙げられる。
本発明に用いられるエステル(II)としては、例えば
S−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチル、S−ア
セチル−γ−メルカプトーα−メチルーn−酪酸メチル
、S−ペンソイル−β−メルカプトイソ酪酸メチル、S
−フェニルアセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチルな
どが挙げられる。
S−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチル、S−ア
セチル−γ−メルカプトーα−メチルーn−酪酸メチル
、S−ペンソイル−β−メルカプトイソ酪酸メチル、S
−フェニルアセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチルな
どが挙げられる。
本発明に用いられる微生物は、前記の化合物のエステル
結合を不斉加水分解する能力を有する微生物であって、
例えばトルロプシス属(Torulopsis )、バ
シルス属(Bacillus )、アスペルギルス属(
Aspergillus )、キャ/デイダ属(Can
dida )、ボツリチス属(Botrytis )、
オフイロラス属(0pbilolus )、ケトミウム
属(Chaetomium )、タラトスポリウム属(
cbaaO8porium )などに属する微生物が挙
げられる。これらの微生物はこれを含む培養液、分離し
た菌体又は菌体処理物として用いられる。
結合を不斉加水分解する能力を有する微生物であって、
例えばトルロプシス属(Torulopsis )、バ
シルス属(Bacillus )、アスペルギルス属(
Aspergillus )、キャ/デイダ属(Can
dida )、ボツリチス属(Botrytis )、
オフイロラス属(0pbilolus )、ケトミウム
属(Chaetomium )、タラトスポリウム属(
cbaaO8porium )などに属する微生物が挙
げられる。これらの微生物はこれを含む培養液、分離し
た菌体又は菌体処理物として用いられる。
これらの微生物の培養は、通常は液体培養で行われるが
、固体培養によっても行うことカーできる。培地として
は、微生物が通常資化しうる炭素源、窒素源、ビタミン
、ミネラルなどの成分を適宜配合したものが用いられる
。微生物の加水分解能を向上させるため、培地にエステ
ルを少量添加することが好ましい。培養は10〜50℃
の温度で、pH2〜11の範囲で行われる。
、固体培養によっても行うことカーできる。培地として
は、微生物が通常資化しうる炭素源、窒素源、ビタミン
、ミネラルなどの成分を適宜配合したものが用いられる
。微生物の加水分解能を向上させるため、培地にエステ
ルを少量添加することが好ましい。培養は10〜50℃
の温度で、pH2〜11の範囲で行われる。
微生物の生育を促進させるために通気攪拌を行ってもよ
い。
い。
加水分解反応を行うに際しては、培養の開始時又は途中
で培地にエステル(II)を添加してもよく、あらかじ
め微生物を培養したのち培養液にエステル(Il)を添
加してもよい。また増殖した微生物の菌体を遠心分離等
により採取し、これをエステルを含む反応媒体に加えて
もよい。この場合菌体は取り扱い上の便宜から、乾燥菌
体例えば凍結乾燥菌体、噴霧乾燥菌体又は有機溶媒例え
ばアセトン、トルエン等で処理した菌体、あるいは菌体
破壊物、菌体抽出物等の菌体処理物を用いることもでき
る。反応媒体としては例えばイオン交換水又は緩衝液が
用いられる。反応媒体又は培養液中のエステルの濃度は
0.01〜50重量%が好ましい。エステルは水に懸濁
した状態で加えることもできる。メタノール、アセトン
などの有機溶媒を反応液に加えてエステルの溶解性を向
上させることもできる。反応液のT)Hは2〜11、好
ましくは5〜8の範囲である。
で培地にエステル(II)を添加してもよく、あらかじ
め微生物を培養したのち培養液にエステル(Il)を添
加してもよい。また増殖した微生物の菌体を遠心分離等
により採取し、これをエステルを含む反応媒体に加えて
もよい。この場合菌体は取り扱い上の便宜から、乾燥菌
体例えば凍結乾燥菌体、噴霧乾燥菌体又は有機溶媒例え
ばアセトン、トルエン等で処理した菌体、あるいは菌体
破壊物、菌体抽出物等の菌体処理物を用いることもでき
る。反応媒体としては例えばイオン交換水又は緩衝液が
用いられる。反応媒体又は培養液中のエステルの濃度は
0.01〜50重量%が好ましい。エステルは水に懸濁
した状態で加えることもできる。メタノール、アセトン
などの有機溶媒を反応液に加えてエステルの溶解性を向
上させることもできる。反応液のT)Hは2〜11、好
ましくは5〜8の範囲である。
反応が進行するに伴い生成したカルボン酸により反応液
のpHが低下してくるが、この場合は適当な中和剤で最
適pHに維持することが好ましい。
のpHが低下してくるが、この場合は適当な中和剤で最
適pHに維持することが好ましい。
反応温度は5〜50 ’Cである。
反応液又は培養液からの生成物の分離精製は、通常の方
法例えば抽出、再結晶、カラムクロマトグラフィ等によ
り行うことができる。
法例えば抽出、再結晶、カラムクロマトグラフィ等によ
り行うことができる。
下記実施例中の%は重量%を意味する。
実施例1
トルロプシス・グロペンギエセ+) IFOO659(
Torulopsis gropengiesseri
)をグルコース1.0%、マルトエキス0.6%、酵
母エキス0.6%及びペプトン0.5%から成る液体培
地(pH6,0)100mgに植菌し、30 ’02日
間振盪培養を行った。培養終了後、培養液を遠心分離し
、得られた菌体(乾燥物として0.4 g)をイオン交
換水で洗浄したのち、M/10燐酸緩衝液(pH7゜0
)50m6に懸濁した。この菌体懸濁液に(:l:1−
8−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチル1゜0m
/!を加え、60℃で24時間振盪して反応させた。
Torulopsis gropengiesseri
)をグルコース1.0%、マルトエキス0.6%、酵
母エキス0.6%及びペプトン0.5%から成る液体培
地(pH6,0)100mgに植菌し、30 ’02日
間振盪培養を行った。培養終了後、培養液を遠心分離し
、得られた菌体(乾燥物として0.4 g)をイオン交
換水で洗浄したのち、M/10燐酸緩衝液(pH7゜0
)50m6に懸濁した。この菌体懸濁液に(:l:1−
8−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸メチル1゜0m
/!を加え、60℃で24時間振盪して反応させた。
反応液をpH7,0に調整し、未反応のS−アセチル−
β−メルカプトイソ酪酸メチルを酢酸エチルで抽出除去
した。次いで水層のpHを硫酸で2.0に下げたのち、
水層中のS−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸を酢酸
エチルで抽出した。抽出液に無水硫酸ナトリウムを加え
て脱水処理したのち、溶媒を蒸発除去して油状物0.2
5gが得られた。この油状物をベンゼンで調整したシリ
カゲルカラムに負荷し、ベンゼン/アセトン(1’0:
1)混液で溶出した。S−アセチル−β−メルカプトイ
ソ酪酸溶出区分を分画し、減圧下で溶媒を除去すると、
精製S−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸が0.19
9得られた。この精製物の旋光度を測定したところ、〔
α)o−−45,0°(C=1.1酢酸エチル)であっ
た。
β−メルカプトイソ酪酸メチルを酢酸エチルで抽出除去
した。次いで水層のpHを硫酸で2.0に下げたのち、
水層中のS−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸を酢酸
エチルで抽出した。抽出液に無水硫酸ナトリウムを加え
て脱水処理したのち、溶媒を蒸発除去して油状物0.2
5gが得られた。この油状物をベンゼンで調整したシリ
カゲルカラムに負荷し、ベンゼン/アセトン(1’0:
1)混液で溶出した。S−アセチル−β−メルカプトイ
ソ酪酸溶出区分を分画し、減圧下で溶媒を除去すると、
精製S−アセチル−β−メルカプトイソ酪酸が0.19
9得られた。この精製物の旋光度を測定したところ、〔
α)o−−45,0°(C=1.1酢酸エチル)であっ
た。
実施例2
バチルス・ズブチリス・バール・二i −IFO310
8(Bacillus 5ubtilis var n
iger )を肉エキス1.0%、ペプトン1.0%及
びNaC1O,5%からなる液体培地(pH7,0)
100mlに植菌し、行い、酢酸エチルで抽出を行い、
最後にカラムクロマトグラフィを行ったところ、〔α請
−十42.8°(C二1.4酢酸エチル)のS−アセチ
ル−β−メルカプトイソmられた。
8(Bacillus 5ubtilis var n
iger )を肉エキス1.0%、ペプトン1.0%及
びNaC1O,5%からなる液体培地(pH7,0)
100mlに植菌し、行い、酢酸エチルで抽出を行い、
最後にカラムクロマトグラフィを行ったところ、〔α請
−十42.8°(C二1.4酢酸エチル)のS−アセチ
ル−β−メルカプトイソmられた。
実施例6〜10
下記表に示す菌株を実施例1と同一組成の液体培地10
0m1に植菌し、60℃で2〜6日間振盪培養を行った
。この培養液から菌体を分離し、イオン交換水で充分洗
浄したのち、(ト)−β−アセチルチオイソ酪酸メチル
1.0 mlを含むM/10燐酸緩衝液50 ml中に
懸濁した。反応は30℃で24時間行った。反応液のp
HをZOに調整したのち、等容量の酢酸エチルでS−ア
セチル−β−メルカプトイソ酪酸メチルを抽出除去した
(中性抽出区分)。次いで、抽出残液の水層のpHを2
.0以下にしたのち、等容量の酢酸エチルでS−アセチ
ル−β−メルカプトイソ酪酸を抽出した(酸性抽出区分
)。
0m1に植菌し、60℃で2〜6日間振盪培養を行った
。この培養液から菌体を分離し、イオン交換水で充分洗
浄したのち、(ト)−β−アセチルチオイソ酪酸メチル
1.0 mlを含むM/10燐酸緩衝液50 ml中に
懸濁した。反応は30℃で24時間行った。反応液のp
HをZOに調整したのち、等容量の酢酸エチルでS−ア
セチル−β−メルカプトイソ酪酸メチルを抽出除去した
(中性抽出区分)。次いで、抽出残液の水層のpHを2
.0以下にしたのち、等容量の酢酸エチルでS−アセチ
ル−β−メルカプトイソ酪酸を抽出した(酸性抽出区分
)。
中性及び酸性抽出区分の旋光性を旋光度針(ユニオン技
研社製デジタル自動旋光度計PM101型)で測定した
ところ下記表の結果が得られた。
研社製デジタル自動旋光度計PM101型)で測定した
ところ下記表の結果が得られた。
これから、表に示す菌株は、旋光性が咋)又は(−)の
いずれか一方の光学活性S−アセチル−β−メルカプト
イン酪酸と、その対掌体のエステルすなわちS−アセチ
ル−β−メルカプトイソ酪酸メチルを生成していると判
定された。
いずれか一方の光学活性S−アセチル−β−メルカプト
イン酪酸と、その対掌体のエステルすなわちS−アセチ
ル−β−メルカプトイソ酪酸メチルを生成していると判
定された。
第1頁の続き
0発 明 者 香川由里
大竹市御幸町20−1三菱レイヨ
ン株式会社内
0発 明 者 沼沢亮三
大竹市御幸町2o−1三菱レイヨ
ン株式会社内
0発 明 者 大西久雄
大竹市御幸町2o−1三菱レイヨ
ン株式会社内
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一般式 %式% (式中R1はアルキル基、アラルキル基又はアリル基、
R2及びR3はアルキル基、nは1又は2を示す)で表
わされるエステルに、エステル結合を不斉加水分解する
能力を有する微生物の培養液、菌体又は菌体処理物を作
用させることを特徴とする、一般式 %式% (式中R,、R2及びnは前記の意味を有する)で表わ
される光学活性カルボン酸の製造法。 2、微生物として、トルロプシス属、バシルス属、アス
ペルギルス属、キャンデイダ属、ボツリチス属、オフイ
ロルス属、ケトミウム属又はクラドスポリウム属に属す
る微生物を使用することを特徴とする特許請求の範囲第
1項に記載の方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12028283A JPS6012993A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | 光学活性カルボン酸の製造法 |
EP84304238A EP0130752B1 (en) | 1983-07-04 | 1984-06-22 | Process for preparing optically active carboxylic acids and antipode esters thereof |
US06/627,093 US4629701A (en) | 1983-07-04 | 1984-07-02 | Process for preparing optically active carboxylic acids and antipode esters thereof |
DE19843424440 DE3424440A1 (de) | 1983-07-04 | 1984-07-03 | Verfahren zur herstellung optisch aktiver carbonsaeuren und deren ester in form der optischen antipoden |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP12028283A JPS6012993A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | 光学活性カルボン酸の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6012993A true JPS6012993A (ja) | 1985-01-23 |
JPH0521558B2 JPH0521558B2 (ja) | 1993-03-24 |
Family
ID=14782379
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP12028283A Granted JPS6012993A (ja) | 1983-07-04 | 1983-07-04 | 光学活性カルボン酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6012993A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63245694A (ja) * | 1986-11-13 | 1988-10-12 | Showa Shell Sekiyu Kk | 光学活性含硫カルボン酸およびその対掌体エステルの製法 |
US5482847A (en) * | 1991-05-15 | 1996-01-09 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Esterase genes, esterase, recombinant plasmids and transformants containing the recombinant plasmid and methods of producing optically active carboxylic acids and their enantiomeric esters using said trasnformants |
-
1983
- 1983-07-04 JP JP12028283A patent/JPS6012993A/ja active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS63245694A (ja) * | 1986-11-13 | 1988-10-12 | Showa Shell Sekiyu Kk | 光学活性含硫カルボン酸およびその対掌体エステルの製法 |
US5482847A (en) * | 1991-05-15 | 1996-01-09 | Mitsubishi Rayon Co., Ltd. | Esterase genes, esterase, recombinant plasmids and transformants containing the recombinant plasmid and methods of producing optically active carboxylic acids and their enantiomeric esters using said trasnformants |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0521558B2 (ja) | 1993-03-24 |
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