JPH01250341A - 新規生理活性物質KS−506m及びKS−506h及びその製造法 - Google Patents
新規生理活性物質KS−506m及びKS−506h及びその製造法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
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Description
産業上の利用分野
本発明はモルティエレーラ(Mortierel la
)・属に属する微生物が生産するヒスタミン遊離抑制作
用を有する新規な生理活性物質及びその製造法に関する
。 従来の技術 微生物が生産するヒスタミン遊離抑制作用を有する化合
物としては、ノカルディオプシス(Nocardiop
sis)属に属する微生物が生産するに−252(特開
昭60−41489)およびKT5556 (特開昭6
l−176531)が知られている。 発明が解決しようとする課題 本発明は、抗アレルギー剤、抗炎症剤などの有用な医薬
品となる新規ヒスタミン遊離抑制剤を提供することにあ
る。 課題を解決するだめの手段 本発明台は、医薬品またはその中間体となりうる有用な
新規生理活性物質を提供するという目的のもとに、天然
界より人手した数多くの微生物の生産物について研究を
行った。その結果、新たに分離した微生物の培養物中に
ヒスタミン遊離抑制作用を示す生理活性物質が生産され
る事実を見い出した。該培養物から該物質を単離、精製
し、その理化学的性質を調べたところ新規物質であるこ
とが判明した。以下、該物質をKS−506m及びKS
−506hと称する。 以下に本発明の詳細な説明する。 本発明は、新規生理活性物質KS−506m及びKS−
5061及びその!3!lii法に関する。 KS−506m及びKS−506hの理化学的性質は以
下に示す通りである。 KS−506m ■ 性 状ニガラス状固体 ■ 光外部吸収スペクトル(溶液法、C11fJ、中)
cts−’ :3630.3400.1715.166
5.1615.1585゜1460、1313.117
0.1104■’H−NMR7,ヘク) ル(400R
IHz、CDC13中)δ(ppm) : 11.4
j(IH,s)、 5.44(1t1.br s)、
5.17(Ill、br s)、 3.06(2ft、
br t)、 2.52(2ft、br t)。 2、55 (3H,s)、 2.21(3ft、s)、
2.19(3H,s)、 2.154(311,s)
、 2.146(3fl、s)、 2.04(3tl、
s)、 1.93(3H,s)■”C−NMRスペクト
ル(100RIHz、 CDC1,中)δ(ppm)
: 206.2.194.7.170.4.161.1
゜157.9.153.9.143.4.138.4.
132J、 126.4゜121.0.115.5.
114.9.107.7.104.9.43.0゜29
.4.23.6.19.2.16.6. +2.1.1
1.9.9.9゜8.1 ■ マススペクトル(HRMS) 実測値:460.1540 計算値: C,、H,,0,Sとして460.1553
■ 分子式: C24H2@OtS ■ 溶解性:メタノール、アセトン、酢酸エチル。 アセトニトリル、ジメチルスルホキシドに可溶。 ヘキサン、水に不溶。 ■ 呈色反応:ヨウ素、50%硫酸、アニスアルデヒド
、ニトロプルシドの各反応に陽性、アニリン・フタル酸
、ニンヒドリン、ライダン・スミスの各反応に陰性。 KS−506h (O性 状:無色扮末 ■ 光外部吸収スペクトル(溶液法、CHCl1.中)
cm−’ : 3630.3400.1723.165
4.1,618.1588゜1460、1433.13
1’4.127B、 1168.1113.1094■
’H−NMRスペクトル(400RIHz、 CDCj
! 、中)δ (ppm) : 1lJ6(IH
,s)、 5.28(ltl、br s)、 5
.01(LH,br s)、 3.69(3H,s>、
2.55(3t−1,s)、 2.28(3H。 s)、 2.19(6H,s)、 2.16(3tl、
s)、 2.06(3H,s)■”C−NMRスペクト
ル(100!JHz、 CDCl 、中)δ(ppm)
: 170.5. 168.0. 160.8.
157.7゜153.9. 145,0. 138J
、 134.4. 120.8. 120.0゜11
5.4. 114.7. 107,7. 105.1.
52.2. 18.9゜17.3. 12.0(2)
、 9.8. 8,1゜■ マススペクトル(HRM
S) 実測値:388.1518 計算値: C11Ha40tとして388.1520■
分子式: C*1Hz−Oi ■ 溶解性:メタノール、アセトン、酢酸エチル。 アセトニトリル、ジメチルスルホキシドに可溶、ヘキサ
ン、水に不溶。 ■ 呈色反応:ヨウ素、50%硫酸、アニスアルデヒド
の各反応に陽性、アニリン・フタル酸。 ニア t: )’ IJン、ライダン・スミス、ニトロ
プルシドの各反応に陰性。 以上の結果よりKS−506m及びKS−506hは下
記の式で表わされる新規物質であることが判明した。 O KS−506m : R= −5co2co2’ecn
aKS−506h : R= −0CH3次に各種
展開剤によるKS−506m及びKS−506hの薄層
クロマトグラフィーのRr値を第1表に示す。 検出は50%硫酸を噴霧した後、ホットプレート玉で加
熱するか、または254nmの紫外線を照射することに
よって行った。 第 1 表 薄層:■、■ニジリカゲル6叶27.プレート (メル
ク社、Nα5628) ■、■: r< P−8F、、、、プレート (メルク
社、Nロ13725) 展開:室温、」二昇法、10〜3()分KS−506m
及びKS−506hは、ヒスタミンItt離抑制作用を
有する。 次にKS−506m及びKS−506hの製造法につい
て説明する。 KS−506m及びKS−506hは、モルディエレー
ラ(Mortierel la)属に属し、KS−50
[im及び/又はKS−50fih生産能を有する微生
物を培地に培養し、培養物中、主に菌体にKS−506
m及び/又はKS−506hを生成蓄積させ、該培養物
からKS−50fim及び/又はKS−506hを採取
することにより製凸される。 KS−506m及び/又はKS−’、+0[ib生産性
微生物としては、モルティエレーラ(MorLiere
llal属に属し、KS−506+++及び/又はKS
−506h生産能を有するものであればいずれの微生物
でもよい。具体的に好適な一例として、本発明者らによ
り、長野県においてブナの落枝から分離されたモルティ
エレーラ・ビナセア(Mortierella vin
acea)KAC−1436株(以下、KAC−143
6と称する。)があげられる。 KA[ニー1436の菌学的性質は次のとおりである。 麦芽エキス寒天培地を用いて25℃で培養した時、集落
の直径は培養7日目で35〜40m、mに達する。集落
は初め灰色を呈するが、培養期間の経過に伴い赤色を帯
びてくる。光学顕微鏡観察の結果、本閑の菌糸は培地上
及び培地中に良好に伸長・分岐するが、その菌糸は子の
う菌類、担子菌類及び不完全菌類に見られるような明瞭
な隔壁形成を欠く。 胞子のう柄は、主に気中菌糸から形成され、長さ100
μmにおよび、幅は2.5〜4.5μmである。 胞子のうは、球形あるいは亜球形で、平滑、直径12〜
13.5μm、柱軸を欠き、胞子のう内に非運動性の胞
子のう胞子を多数形成する。胞子のう胞子は不正多角形
を呈し、平滑で2〜4μmである。 接合胞子は観察されない。 以上の観察の結果、本菌株は、モルティエレーラ・ビナ
セア(Mortierella vinacea)と同
定された。モルティエレーラ・ビナセアについての菌学
的性質は、tl、 Zychaらの著書rMucora
les (ムコラレス) J ((:ramer社
、1969年)の163頁に詳しく記載されている。本
発明者らは、本菌株をモルテイエレーラ1ビナセア(M
ortierella vinacea)にAC−1
436と命名した。本菌株は昭和63年3月2日付で工
業技術院微生物工業技術研究所に微工研条寄第1776
号として寄託されている。 微生物の培養に際しては菌類の培養に用いられる通常の
培養方法が適用される。用いられる培地は菌の資化しつ
る炭素源、窒素源、無機物などを程よく含有する培地で
あれば天然培地、合成培地いずれでも用いられる。 炭素源としてはグルコース、フラクトース、スタビロー
ス、サッカロース、ラクトース、Il粉。 チーt−ストリン、マンノース、マルトース、糖蜜。 マツシュポテトの素などの炭水化物、クエン酸。 リンゴ酸、酢酸、フマール酸などの有機酸、グルタミン
酸などのアミノ酸あるいはグリセロール、綿実油などが
用いられる。 窒素源としては塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウムl工どのアンモ
ニウム塩、アスパラギン酸、グルタミン、シスチン、ア
ラニンなどのアミノ酸、尿素、麦芽エキス、ペプトン、
肉エキス、酵母エキス、乾燥酵母、コーン・スチーブ・
リカー、大豆粉、綿実粕、大豆カゼイン、カザミノ酸、
ファーマメディア、ソルブル・ベジタブル・プロティン
、野菜・果実のジュースなどが用いられる。 無機物としてはリン酸二水素カリウム、リン酸水累ニナ
トリウl1.硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マン
ガン、硫酸コバルト、硫酸亜鉛、パントテン酸カルシウ
ム、モリブチ゛ン酸アンモニウム、硫酸アルミニウムカ
リウム、炭酸バリウム。 炭酸カルシウム、塩化コバルト、塩化ナトリウム。 リン酸マグネシウムなどが用いられる。 その他必要に応じて培地にサイアミンなどのビタミンな
ど菌体の増殖あるいはKS−506m及び/又はKS−
506hの生産を促進する物質を加えることができる。 用いられる微生物が生育に特定の物質を要求する場合は
、生育に必要な物を加えることが必要である。 培養は振盪培養法、通気攪拌培養法などにより15〜3
0℃の温度で中性付近のρIで行われる。 5〜12日の培養によってKS−506m及び/又はK
S−506hの蓄積が最大に達し、培養は完了する。 蓄積したKS−506m及び/又はKS−506hを菌
体から単離採取するに際しては、通常の生理活性物質を
菌体から採取する方法が適用される。 即ち、ρ過、遠心分離などによる菌体の取得、メタノー
ル、アセトンなどの有機溶剤による菌体からの抽出、水
または二種以上の有機溶剤による分配、吸着樹脂、シリ
カゲル、化学修飾シリカゲル、アルミニウム、セルロー
ス、珪藻上、珪酸マグネシウム、ゲル濾過剤などを用い
るカラムクロマトグラフィーもしくは薄層クロマトグラ
フィーによる活性物質の吸脱着処理などによってKS−
5(16m及び/又はKS−506hを単離することが
できる。 菌体からKS−506m及び/又はKS−506hを単
離する1例は次の通りである。 培養液を濾過もしくは遠心分離することによって菌体を
塩1等する。得られた菌体にメタノールなどの有機溶剤
を添加し、充分攪拌した後、再度濾過もしくは遠心分離
によって菌体とp液もしくは上清液とを分離する。得ら
れた戸液もしくは上清液から溶剤を減圧下で蒸発させて
濃縮し、水溶液とする。ついで、この水溶液から酢酸エ
チルなどの水と混和しない適当な溶剤を用いて抽出する
。 抽出液を減圧a縮した後、り[10ホルム−メタノール
または水−ア七トニ) IJルなどの混合溶媒を展開溶
媒として、シリカゲルカラムクロマトクラフィーを繰り
返し行う。 次に、KS−506m及び/又は−KS−506hをそ
れぞれ車−に含む両分を減圧下で濃縮することにより、
KS−506m及び/又はKS−506hを得る。 E 記v4製工程中(D KS−506tn及U/又ハ
KS−506hの検出はシリカゲル薄層り9マドグラフ
イー、次いで50%硫酸を噴霧後、加熱するか、または
254nmの紫外線を照射することによって行った。 また、所望により、KS−506hはKS−506a
(参考例)を塩基性メタノール中で加熱することによっ
て51aすることができる。KS−506mは、所望に
よ1:) KS−506aをメチルビニルケトンの存在
下で加熱還流することによって、製造することができる
。 以下に実施例を示す。 実施例1 種菌としてモルティエレーラ・ビナセγ(Mortie
rella vinacea)KAC−1436を用
いる。該菌株をグルコース1.0g、/a、ペプトン(
極東製薬工業社製) 0.5g/d1.乾燥酵母エビオ
ス(朝日麦酒社製) 0.5 g/di、 V−8’E
M’)ユース(++:/ベル社製> 0.2 dl/d
1.炭酸カルシウム0.3g/a。 pH6,0の組成の種培地30m1を含む300m1の
三角フラスコに一白金耳植菌した。ついで25℃で菌が
充分生育するまで振盪培養した。この種培養液全量を上
記組成の種培地300m1を含む21三角フラスコに植
菌し、ついで同様に培養した。この種培養液1800m
lを、グルコース0.5g/a、、 フルドース4g/
c+j!、 3−(N−モルホリノ)プロパンスルホ
ン酸1g/di、硫酸マグネシウl、・7水塩0.05
g/a。 ソイビーンミール1.5g/a、、 ファーマメディア
1.5g/a、炭酸hル’、t’)ム0.5g/a!、
pH7,0の組成の発酵培地181を含む30fジャ
ーファーメンタ−に植菌した。 培養は25℃で、18f/分の通気下、300「ρωの
回転数で攪拌しながらlO日日間った。培養終了後、j
Δ養液301を濾過助剤を用いて濾過し、菌体とjΔ養
上清液上に分けた。菌体には20Jのメタノールを添加
し、充分撹拌し、KS−506m及びKS−506hの
抽出を行った。菌体のメタノール抽出液は、減圧下で濃
縮しメタノールを除去した。得られた水溶液は、5%(
V/V)になるようにメタノールを加えた後、あらかじ
め水で平衡化したダイヤイオンHP−20(三菱化成社
製)21を充填したカラ!、に通塔した。水ついで50
%メタノール水溶液各々61でカラムを洗浄した後、メ
タノール10IlでKS−506m及びKS−506h
を溶出した。溶出液は減圧下で濃縮した後、シリカゲル
(ワコーゲルC−200、和光紬薬工業社製)にまぶし
、あらかじめクロロホルム:メタノール−・!I :
I (v/v)で充填したシリカゲル(ワ:J−ゲル[
: 20++ 、和光純桑I−業社製)カラ!、 l
j! 0) i:、端に供給した。KS 5flfim
及びKS !101il+0)溶出は、クロτjホルト
:メタノール−・!l : l (v/v)51で行っ
た。この溶出液を減圧ドで濃縮した後、1%メタノール
を含むりτIt]ホルAl[1mlに溶解し、あらかじ
め1%メタノール−ク「ン
)・属に属する微生物が生産するヒスタミン遊離抑制作
用を有する新規な生理活性物質及びその製造法に関する
。 従来の技術 微生物が生産するヒスタミン遊離抑制作用を有する化合
物としては、ノカルディオプシス(Nocardiop
sis)属に属する微生物が生産するに−252(特開
昭60−41489)およびKT5556 (特開昭6
l−176531)が知られている。 発明が解決しようとする課題 本発明は、抗アレルギー剤、抗炎症剤などの有用な医薬
品となる新規ヒスタミン遊離抑制剤を提供することにあ
る。 課題を解決するだめの手段 本発明台は、医薬品またはその中間体となりうる有用な
新規生理活性物質を提供するという目的のもとに、天然
界より人手した数多くの微生物の生産物について研究を
行った。その結果、新たに分離した微生物の培養物中に
ヒスタミン遊離抑制作用を示す生理活性物質が生産され
る事実を見い出した。該培養物から該物質を単離、精製
し、その理化学的性質を調べたところ新規物質であるこ
とが判明した。以下、該物質をKS−506m及びKS
−506hと称する。 以下に本発明の詳細な説明する。 本発明は、新規生理活性物質KS−506m及びKS−
5061及びその!3!lii法に関する。 KS−506m及びKS−506hの理化学的性質は以
下に示す通りである。 KS−506m ■ 性 状ニガラス状固体 ■ 光外部吸収スペクトル(溶液法、C11fJ、中)
cts−’ :3630.3400.1715.166
5.1615.1585゜1460、1313.117
0.1104■’H−NMR7,ヘク) ル(400R
IHz、CDC13中)δ(ppm) : 11.4
j(IH,s)、 5.44(1t1.br s)、
5.17(Ill、br s)、 3.06(2ft、
br t)、 2.52(2ft、br t)。 2、55 (3H,s)、 2.21(3ft、s)、
2.19(3H,s)、 2.154(311,s)
、 2.146(3fl、s)、 2.04(3tl、
s)、 1.93(3H,s)■”C−NMRスペクト
ル(100RIHz、 CDC1,中)δ(ppm)
: 206.2.194.7.170.4.161.1
゜157.9.153.9.143.4.138.4.
132J、 126.4゜121.0.115.5.
114.9.107.7.104.9.43.0゜29
.4.23.6.19.2.16.6. +2.1.1
1.9.9.9゜8.1 ■ マススペクトル(HRMS) 実測値:460.1540 計算値: C,、H,,0,Sとして460.1553
■ 分子式: C24H2@OtS ■ 溶解性:メタノール、アセトン、酢酸エチル。 アセトニトリル、ジメチルスルホキシドに可溶。 ヘキサン、水に不溶。 ■ 呈色反応:ヨウ素、50%硫酸、アニスアルデヒド
、ニトロプルシドの各反応に陽性、アニリン・フタル酸
、ニンヒドリン、ライダン・スミスの各反応に陰性。 KS−506h (O性 状:無色扮末 ■ 光外部吸収スペクトル(溶液法、CHCl1.中)
cm−’ : 3630.3400.1723.165
4.1,618.1588゜1460、1433.13
1’4.127B、 1168.1113.1094■
’H−NMRスペクトル(400RIHz、 CDCj
! 、中)δ (ppm) : 1lJ6(IH
,s)、 5.28(ltl、br s)、 5
.01(LH,br s)、 3.69(3H,s>、
2.55(3t−1,s)、 2.28(3H。 s)、 2.19(6H,s)、 2.16(3tl、
s)、 2.06(3H,s)■”C−NMRスペクト
ル(100!JHz、 CDCl 、中)δ(ppm)
: 170.5. 168.0. 160.8.
157.7゜153.9. 145,0. 138J
、 134.4. 120.8. 120.0゜11
5.4. 114.7. 107,7. 105.1.
52.2. 18.9゜17.3. 12.0(2)
、 9.8. 8,1゜■ マススペクトル(HRM
S) 実測値:388.1518 計算値: C11Ha40tとして388.1520■
分子式: C*1Hz−Oi ■ 溶解性:メタノール、アセトン、酢酸エチル。 アセトニトリル、ジメチルスルホキシドに可溶、ヘキサ
ン、水に不溶。 ■ 呈色反応:ヨウ素、50%硫酸、アニスアルデヒド
の各反応に陽性、アニリン・フタル酸。 ニア t: )’ IJン、ライダン・スミス、ニトロ
プルシドの各反応に陰性。 以上の結果よりKS−506m及びKS−506hは下
記の式で表わされる新規物質であることが判明した。 O KS−506m : R= −5co2co2’ecn
aKS−506h : R= −0CH3次に各種
展開剤によるKS−506m及びKS−506hの薄層
クロマトグラフィーのRr値を第1表に示す。 検出は50%硫酸を噴霧した後、ホットプレート玉で加
熱するか、または254nmの紫外線を照射することに
よって行った。 第 1 表 薄層:■、■ニジリカゲル6叶27.プレート (メル
ク社、Nα5628) ■、■: r< P−8F、、、、プレート (メルク
社、Nロ13725) 展開:室温、」二昇法、10〜3()分KS−506m
及びKS−506hは、ヒスタミンItt離抑制作用を
有する。 次にKS−506m及びKS−506hの製造法につい
て説明する。 KS−506m及びKS−506hは、モルディエレー
ラ(Mortierel la)属に属し、KS−50
[im及び/又はKS−50fih生産能を有する微生
物を培地に培養し、培養物中、主に菌体にKS−506
m及び/又はKS−506hを生成蓄積させ、該培養物
からKS−50fim及び/又はKS−506hを採取
することにより製凸される。 KS−506m及び/又はKS−’、+0[ib生産性
微生物としては、モルティエレーラ(MorLiere
llal属に属し、KS−506+++及び/又はKS
−506h生産能を有するものであればいずれの微生物
でもよい。具体的に好適な一例として、本発明者らによ
り、長野県においてブナの落枝から分離されたモルティ
エレーラ・ビナセア(Mortierella vin
acea)KAC−1436株(以下、KAC−143
6と称する。)があげられる。 KA[ニー1436の菌学的性質は次のとおりである。 麦芽エキス寒天培地を用いて25℃で培養した時、集落
の直径は培養7日目で35〜40m、mに達する。集落
は初め灰色を呈するが、培養期間の経過に伴い赤色を帯
びてくる。光学顕微鏡観察の結果、本閑の菌糸は培地上
及び培地中に良好に伸長・分岐するが、その菌糸は子の
う菌類、担子菌類及び不完全菌類に見られるような明瞭
な隔壁形成を欠く。 胞子のう柄は、主に気中菌糸から形成され、長さ100
μmにおよび、幅は2.5〜4.5μmである。 胞子のうは、球形あるいは亜球形で、平滑、直径12〜
13.5μm、柱軸を欠き、胞子のう内に非運動性の胞
子のう胞子を多数形成する。胞子のう胞子は不正多角形
を呈し、平滑で2〜4μmである。 接合胞子は観察されない。 以上の観察の結果、本菌株は、モルティエレーラ・ビナ
セア(Mortierella vinacea)と同
定された。モルティエレーラ・ビナセアについての菌学
的性質は、tl、 Zychaらの著書rMucora
les (ムコラレス) J ((:ramer社
、1969年)の163頁に詳しく記載されている。本
発明者らは、本菌株をモルテイエレーラ1ビナセア(M
ortierella vinacea)にAC−1
436と命名した。本菌株は昭和63年3月2日付で工
業技術院微生物工業技術研究所に微工研条寄第1776
号として寄託されている。 微生物の培養に際しては菌類の培養に用いられる通常の
培養方法が適用される。用いられる培地は菌の資化しつ
る炭素源、窒素源、無機物などを程よく含有する培地で
あれば天然培地、合成培地いずれでも用いられる。 炭素源としてはグルコース、フラクトース、スタビロー
ス、サッカロース、ラクトース、Il粉。 チーt−ストリン、マンノース、マルトース、糖蜜。 マツシュポテトの素などの炭水化物、クエン酸。 リンゴ酸、酢酸、フマール酸などの有機酸、グルタミン
酸などのアミノ酸あるいはグリセロール、綿実油などが
用いられる。 窒素源としては塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
硝酸アンモニウム、リン酸アンモニウムl工どのアンモ
ニウム塩、アスパラギン酸、グルタミン、シスチン、ア
ラニンなどのアミノ酸、尿素、麦芽エキス、ペプトン、
肉エキス、酵母エキス、乾燥酵母、コーン・スチーブ・
リカー、大豆粉、綿実粕、大豆カゼイン、カザミノ酸、
ファーマメディア、ソルブル・ベジタブル・プロティン
、野菜・果実のジュースなどが用いられる。 無機物としてはリン酸二水素カリウム、リン酸水累ニナ
トリウl1.硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マン
ガン、硫酸コバルト、硫酸亜鉛、パントテン酸カルシウ
ム、モリブチ゛ン酸アンモニウム、硫酸アルミニウムカ
リウム、炭酸バリウム。 炭酸カルシウム、塩化コバルト、塩化ナトリウム。 リン酸マグネシウムなどが用いられる。 その他必要に応じて培地にサイアミンなどのビタミンな
ど菌体の増殖あるいはKS−506m及び/又はKS−
506hの生産を促進する物質を加えることができる。 用いられる微生物が生育に特定の物質を要求する場合は
、生育に必要な物を加えることが必要である。 培養は振盪培養法、通気攪拌培養法などにより15〜3
0℃の温度で中性付近のρIで行われる。 5〜12日の培養によってKS−506m及び/又はK
S−506hの蓄積が最大に達し、培養は完了する。 蓄積したKS−506m及び/又はKS−506hを菌
体から単離採取するに際しては、通常の生理活性物質を
菌体から採取する方法が適用される。 即ち、ρ過、遠心分離などによる菌体の取得、メタノー
ル、アセトンなどの有機溶剤による菌体からの抽出、水
または二種以上の有機溶剤による分配、吸着樹脂、シリ
カゲル、化学修飾シリカゲル、アルミニウム、セルロー
ス、珪藻上、珪酸マグネシウム、ゲル濾過剤などを用い
るカラムクロマトグラフィーもしくは薄層クロマトグラ
フィーによる活性物質の吸脱着処理などによってKS−
5(16m及び/又はKS−506hを単離することが
できる。 菌体からKS−506m及び/又はKS−506hを単
離する1例は次の通りである。 培養液を濾過もしくは遠心分離することによって菌体を
塩1等する。得られた菌体にメタノールなどの有機溶剤
を添加し、充分攪拌した後、再度濾過もしくは遠心分離
によって菌体とp液もしくは上清液とを分離する。得ら
れた戸液もしくは上清液から溶剤を減圧下で蒸発させて
濃縮し、水溶液とする。ついで、この水溶液から酢酸エ
チルなどの水と混和しない適当な溶剤を用いて抽出する
。 抽出液を減圧a縮した後、り[10ホルム−メタノール
または水−ア七トニ) IJルなどの混合溶媒を展開溶
媒として、シリカゲルカラムクロマトクラフィーを繰り
返し行う。 次に、KS−506m及び/又は−KS−506hをそ
れぞれ車−に含む両分を減圧下で濃縮することにより、
KS−506m及び/又はKS−506hを得る。 E 記v4製工程中(D KS−506tn及U/又ハ
KS−506hの検出はシリカゲル薄層り9マドグラフ
イー、次いで50%硫酸を噴霧後、加熱するか、または
254nmの紫外線を照射することによって行った。 また、所望により、KS−506hはKS−506a
(参考例)を塩基性メタノール中で加熱することによっ
て51aすることができる。KS−506mは、所望に
よ1:) KS−506aをメチルビニルケトンの存在
下で加熱還流することによって、製造することができる
。 以下に実施例を示す。 実施例1 種菌としてモルティエレーラ・ビナセγ(Mortie
rella vinacea)KAC−1436を用
いる。該菌株をグルコース1.0g、/a、ペプトン(
極東製薬工業社製) 0.5g/d1.乾燥酵母エビオ
ス(朝日麦酒社製) 0.5 g/di、 V−8’E
M’)ユース(++:/ベル社製> 0.2 dl/d
1.炭酸カルシウム0.3g/a。 pH6,0の組成の種培地30m1を含む300m1の
三角フラスコに一白金耳植菌した。ついで25℃で菌が
充分生育するまで振盪培養した。この種培養液全量を上
記組成の種培地300m1を含む21三角フラスコに植
菌し、ついで同様に培養した。この種培養液1800m
lを、グルコース0.5g/a、、 フルドース4g/
c+j!、 3−(N−モルホリノ)プロパンスルホ
ン酸1g/di、硫酸マグネシウl、・7水塩0.05
g/a。 ソイビーンミール1.5g/a、、 ファーマメディア
1.5g/a、炭酸hル’、t’)ム0.5g/a!、
pH7,0の組成の発酵培地181を含む30fジャ
ーファーメンタ−に植菌した。 培養は25℃で、18f/分の通気下、300「ρωの
回転数で攪拌しながらlO日日間った。培養終了後、j
Δ養液301を濾過助剤を用いて濾過し、菌体とjΔ養
上清液上に分けた。菌体には20Jのメタノールを添加
し、充分撹拌し、KS−506m及びKS−506hの
抽出を行った。菌体のメタノール抽出液は、減圧下で濃
縮しメタノールを除去した。得られた水溶液は、5%(
V/V)になるようにメタノールを加えた後、あらかじ
め水で平衡化したダイヤイオンHP−20(三菱化成社
製)21を充填したカラ!、に通塔した。水ついで50
%メタノール水溶液各々61でカラムを洗浄した後、メ
タノール10IlでKS−506m及びKS−506h
を溶出した。溶出液は減圧下で濃縮した後、シリカゲル
(ワコーゲルC−200、和光紬薬工業社製)にまぶし
、あらかじめクロロホルム:メタノール−・!I :
I (v/v)で充填したシリカゲル(ワ:J−ゲル[
: 20++ 、和光純桑I−業社製)カラ!、 l
j! 0) i:、端に供給した。KS 5flfim
及びKS !101il+0)溶出は、クロτjホルト
:メタノール−・!l : l (v/v)51で行っ
た。この溶出液を減圧ドで濃縮した後、1%メタノール
を含むりτIt]ホルAl[1mlに溶解し、あらかじ
め1%メタノール−ク「ン
【2ホル)・で充Jハしたシ
リカゲル(ワコーゲル(: 2+111 、和光純桑1
−゛業社製)カラl−I R0)、iJiに供給した。 カラ1−tq、1%、2%、3%メタノールをそれぞれ
含むりy+τ1ホル1、2 iで順次展開し、溶出され
ろKS 5fHim及びKSF+0611を含む内分を
それぞれ集y〕て減圧ドで濃縮した。これらの両分をそ
れぞれ、あらかじめ10%酢酸エチル−[1−へ牛サン
で充填したシリカゲル(ワコーゲルc−2c+o 、和
光補薬I゛業社製)カラ!、:100m1の一ヒ端に、
同じシリカゲルにまぶして供給した。10%、20%、
:lf1%、40%酢酸エチル−[1ヘキサン溶液を
用いて順次展開すると、KS 5i16t+が先に溶出
され、次いでKS−506mが溶出される。 それぞれを屯−に含む両分を隻め、減圧下濃縮すると、
ガラス状固体のKS 5tl(imを80mg、無色粉
末Q’)KS ’、+Ohを120mg得た。 1−2精製1′、程中、KS5−501i及びKS−5
0(ibの検出はシリカゲルプレート(シリカゲル60
F2.、メルク社3A)を用いて薄層り【】マドグラフ
ィーを行った後、50%硫酸を噴霧後ホットプレート」
二加熱ずろか、または254nmの紫外線を照射するこ
とによって行−〕だ。 実施例2 参考例によって得られたKS5fl[ia 230■を
メタ−ノル2:10m1に溶解し、IN水酸化ナトリウ
ノ、水溶液2:1mlを加え、60℃、30分間加熱し
反応を行−1た。反応路−r後、IN塩酸を用いて中和
した後、減圧下に3縮乾固した。I)られた固体をシリ
カゲル(ワコーゲルC−300、和光紬薬り業社製)に
まぶし、あらかじめ10%酢酸エチル−n−ヘキサンで
充tiしたシリカゲル(ワコーゲルc aoo 、和光
紬薬工業社製)カラム500m1の1一端に供給し、1
0%。 20%、30%、40%酢酸エチル−n−ヘキサン各2
1で順次溶出した。溶出液を!5mjずつ分取し、KS
−5(l fi t+を含む画分を集めて濃縮乾固する
と、;11(色粉末のKS −506bがG fl m
g得られた。 実施例3 参考例によって得られたKS−506a :J mgに
、メチルごニルケトン0.5mlを加えた後、6(1℃
、15時間加熱し反応を行った。反応終了後、濃縮乾1
=’、I L、シリカゲルプレート (シリカゲル6叶
、□、メルク社)を用いて薄層クロマトグラフィー4、
夕++ 11ホルト:メタノール−20:l(v/ν)
を展開溶媒として行った。254nmの紫外線4照射す
ることによってKS−506mを検出し、KS−506
mが構出された部分のシリカゲルをかきとり、メタノー
ル20m1で溶出を行った。メタノール溶出液を減圧ド
で濃縮乾固・することにより、KS−506m 2t
lg−’tl!)だ。 次いで、KS5−5fl(i及びにり−50iibのヒ
ス9ミンN離抑制作用を実験例により説明する。 実験例 ラット腹腔浸出細lI包からのヒスタミン遊離に及ばず
影′!で 1)ラット腹腔細RClγ遊液の調製とヒスタミン遊離
に対する作用 体’I′j 350−450gのラットを乾エーテル麻
酔下に放血致死せしめ、5ullivanらの方法〔ジ
ャナール・オブ・イムノロジー(J、 Immunol
、) 114 *1473、 (1973)]に準じ
て作製した肥満細胞用培液く組成:150mM NaC
R,:1.7mMにCIl、 :1mM Na2111
’0.、:1.5mM K112P口1.1mM Ca
[’、i’ 2.5.6mMグルコース、(1,1%生
血lt7アルブミン、1011/mlヘパリン)15■
17匹を腹腔内に注入した。腹部を2分間マツサージし
た後、開腹し腹腔内反出液を採取した。集めた浸出液を
4℃、 1100Xで5分間遠心分離後、沈渣に適r
、)の氷冷した上記の肥満細胞用培液を加えて3回洗浄
し、最終的に、肥満網lI包数が約2 X lo’ce
lls/mlとなるように細胞i′I遊液を調製した。 なお、肥満細胞の同定はfl、05%トルイジンブルー
で細胞内組粒を染色ずろことで行った。 このようにして得た細胞浮遊液1mlを37℃。 5分間プレインキコベートした後、種々の濃度の被験薬
10,1mlを加えて5分間インキコベートシ、フォス
ファチジルーL−セリンlO■/m1及びコンカナバリ
ンA 100M、/mlそれぞれ0.1mMを加えてさ
らに15分間インキュベートした。 この時にフォスファチジルーし一セリンとコンカナバリ
ンへの代わりに生理食塩水を用いて、同様にインキユベ
ートを行い、これを自発遊離とした。 氷冷した生理食塩水3mlを加えて反応を停止後、4℃
、1l10Oxで10分間遠心分離して上lIiと沈渣
を得た。上清及び沈渣のヒスタミン量は、小松の方法〔
アレルギー27.67(1978) ]に従い蛍光法で
測定した。ヒスタミン遊離率は細胞の総ヒスタミン量に
対する上清のヒスタミン徹の百分率として表した。また
次式により被験薬液のヒスタミン遊離抑制率を算出した
。 2)実験成績 第2表 参考例 実施例1と同様に培養を行って得た培養液301を濾過
助剤を用いて一過し、菌体と培養土清液とに分けた。菌
体には201のメタノールを添加し、充分攪拌し、KS
−506aの抽出を行った。菌体のメタノール抽出液は
、減圧下で濃縮しメタノールを除去した。得られた水溶
液は、5%(V/V)になるようにメタノールを加えた
後、あらかじめ水で平衡化したダイヤイオンHP−20
(三菱化成社製) 21を充填したカラムに通塔した。 水、次いで50%メタノール水溶液各々61でカラムを
洗浄した後、メタノール101でKS−506aを溶出
した。溶出液は減圧下で濃縮した後、シリカゲル(ワコ
ーゲルC−200、和光補薬工業社製)にまぶし、あら
かじめクロロホルム:メタノール= 9 : 1 (v
/v)で充填したシリカゲル(ワコーゲルC−200、
和光補薬工業社製)カラム11の上端に供給した。KS
−506aの溶出は、クロロホルム:メタノール−9:
l (v/v)51で行った。この溶出液を減圧下で
濃縮した後、11%メタノールを含むクロロホルム10
m1に溶解シ、あらかじめ1%メタノール−クロロホル
ムで充填シたシリカゲル(ワコーゲルC−200、和光
補薬工業社製)カラム11の上端に供給した。カラムを
1%。 2%、3%メタノールをそれぞれ含むクロロホルム21
で順次展開し、溶出液を20■1ずつ分取するとフラク
ション番号101から181にKS−506aが溶出さ
れた。これらのフラクションを集めて減圧下で濃縮する
と、淡黄色あめ状物質が1.0g得られた。 このあめ状物質を80%ア七トニトリル水溶液2mlに
溶解し、その半量をあらかじめ80%アセトニトリル水
溶液で充填した逆相ローバーカラム(メルク社製、RP
−8、Bサイズ)に供給した。カラムを80%アセトニ
) IJル水溶液を用いて溶出し、溶出液を5mlずつ
分取すると、フラクション番号56から86にMS−5
068が溶出された。残りの半量も同様に80%アセト
ニトリル水溶液に溶解し、逆相ローパーカラムクロマト
グラフィーを行い、 KS−506aを含む両分を集め
た。KS〜5068を含む両分を減圧下で濃縮した後、
メタノール1mlに溶解し、あらかじめメタノールで充
填したセファデックスしl上20〈ファルマシア社製)
カラム200m1の上端に供給し、メタノール11を用
いて展開した。、溶出液を5mlずつ分取すると、フラ
クション番号51から61にKS−506aが溶出され
た。KS−506aを含む両分を集め、減圧下で濃縮し
た後、再度セファデックスLll−20カラムクロマト
グラフィーを繰り返すことにより、KS−506aを含
む固体450mgを得た。このうち42mgを60%ア
セトニトリル水溶液1mlに溶解し、あらかじめ60%
アセトニトリル水溶液で充填した逆相r1−バーカラ!
、(メルク社製、I櫂1’−18、I3サイズ)に供給
した3、カラ!・をに()%゛fセトニトリル水溶液2
1を用い一〇溶出し、溶出液を111m1ず一〕分取す
るとワラクシ9ン番号I;12から1501:KS−5
Of+ aが弔−に溶出された。KS−50fiaを?
11−に含む両分4集め、減圧下でに3縮すると、;!
I(色粉末のKSJ 01i nを7.amg得た。 1、配積製1−程中のKS 506aの検出は、シリカ
ゲルi’IJMりτ1マドグラフィー、次いで50%硫
酸を噴霧後、加熱することにより行−1た。なji、各
種展開剤によるKS−506aの薄層クロマトグラフィ
ーの11r値は′:P、:J表の通りである。 第 :) 表 0)りFur+ネルム:メタノール・9:1(ν/v)
f)、l
8■nヘキサン:酢酸エチル−I:l(v/v)
0.50■メタノール:水 −8:2(v/v)
0.21薄層:■、■ニジリカゲル60F2
S4プレート (メルク社、Nα5628) ■、■:RP 8F23.−プレート (メルク社、
No、13725) 展開:室温、上昇法、lO〜30分 発明の効果 KS−506m及びKS−506hはヒスタミンilt
抑制作用を有する新規物質であり、抗アレルギー剤、抗
炎症剤等の医薬品として有用である。
リカゲル(ワコーゲル(: 2+111 、和光純桑1
−゛業社製)カラl−I R0)、iJiに供給した。 カラ1−tq、1%、2%、3%メタノールをそれぞれ
含むりy+τ1ホル1、2 iで順次展開し、溶出され
ろKS 5fHim及びKSF+0611を含む内分を
それぞれ集y〕て減圧ドで濃縮した。これらの両分をそ
れぞれ、あらかじめ10%酢酸エチル−[1−へ牛サン
で充填したシリカゲル(ワコーゲルc−2c+o 、和
光補薬I゛業社製)カラ!、:100m1の一ヒ端に、
同じシリカゲルにまぶして供給した。10%、20%、
:lf1%、40%酢酸エチル−[1ヘキサン溶液を
用いて順次展開すると、KS 5i16t+が先に溶出
され、次いでKS−506mが溶出される。 それぞれを屯−に含む両分を隻め、減圧下濃縮すると、
ガラス状固体のKS 5tl(imを80mg、無色粉
末Q’)KS ’、+Ohを120mg得た。 1−2精製1′、程中、KS5−501i及びKS−5
0(ibの検出はシリカゲルプレート(シリカゲル60
F2.、メルク社3A)を用いて薄層り【】マドグラフ
ィーを行った後、50%硫酸を噴霧後ホットプレート」
二加熱ずろか、または254nmの紫外線を照射するこ
とによって行−〕だ。 実施例2 参考例によって得られたKS5fl[ia 230■を
メタ−ノル2:10m1に溶解し、IN水酸化ナトリウ
ノ、水溶液2:1mlを加え、60℃、30分間加熱し
反応を行−1た。反応路−r後、IN塩酸を用いて中和
した後、減圧下に3縮乾固した。I)られた固体をシリ
カゲル(ワコーゲルC−300、和光紬薬り業社製)に
まぶし、あらかじめ10%酢酸エチル−n−ヘキサンで
充tiしたシリカゲル(ワコーゲルc aoo 、和光
紬薬工業社製)カラム500m1の1一端に供給し、1
0%。 20%、30%、40%酢酸エチル−n−ヘキサン各2
1で順次溶出した。溶出液を!5mjずつ分取し、KS
−5(l fi t+を含む画分を集めて濃縮乾固する
と、;11(色粉末のKS −506bがG fl m
g得られた。 実施例3 参考例によって得られたKS−506a :J mgに
、メチルごニルケトン0.5mlを加えた後、6(1℃
、15時間加熱し反応を行った。反応終了後、濃縮乾1
=’、I L、シリカゲルプレート (シリカゲル6叶
、□、メルク社)を用いて薄層クロマトグラフィー4、
夕++ 11ホルト:メタノール−20:l(v/ν)
を展開溶媒として行った。254nmの紫外線4照射す
ることによってKS−506mを検出し、KS−506
mが構出された部分のシリカゲルをかきとり、メタノー
ル20m1で溶出を行った。メタノール溶出液を減圧ド
で濃縮乾固・することにより、KS−506m 2t
lg−’tl!)だ。 次いで、KS5−5fl(i及びにり−50iibのヒ
ス9ミンN離抑制作用を実験例により説明する。 実験例 ラット腹腔浸出細lI包からのヒスタミン遊離に及ばず
影′!で 1)ラット腹腔細RClγ遊液の調製とヒスタミン遊離
に対する作用 体’I′j 350−450gのラットを乾エーテル麻
酔下に放血致死せしめ、5ullivanらの方法〔ジ
ャナール・オブ・イムノロジー(J、 Immunol
、) 114 *1473、 (1973)]に準じ
て作製した肥満細胞用培液く組成:150mM NaC
R,:1.7mMにCIl、 :1mM Na2111
’0.、:1.5mM K112P口1.1mM Ca
[’、i’ 2.5.6mMグルコース、(1,1%生
血lt7アルブミン、1011/mlヘパリン)15■
17匹を腹腔内に注入した。腹部を2分間マツサージし
た後、開腹し腹腔内反出液を採取した。集めた浸出液を
4℃、 1100Xで5分間遠心分離後、沈渣に適r
、)の氷冷した上記の肥満細胞用培液を加えて3回洗浄
し、最終的に、肥満網lI包数が約2 X lo’ce
lls/mlとなるように細胞i′I遊液を調製した。 なお、肥満細胞の同定はfl、05%トルイジンブルー
で細胞内組粒を染色ずろことで行った。 このようにして得た細胞浮遊液1mlを37℃。 5分間プレインキコベートした後、種々の濃度の被験薬
10,1mlを加えて5分間インキコベートシ、フォス
ファチジルーL−セリンlO■/m1及びコンカナバリ
ンA 100M、/mlそれぞれ0.1mMを加えてさ
らに15分間インキュベートした。 この時にフォスファチジルーし一セリンとコンカナバリ
ンへの代わりに生理食塩水を用いて、同様にインキユベ
ートを行い、これを自発遊離とした。 氷冷した生理食塩水3mlを加えて反応を停止後、4℃
、1l10Oxで10分間遠心分離して上lIiと沈渣
を得た。上清及び沈渣のヒスタミン量は、小松の方法〔
アレルギー27.67(1978) ]に従い蛍光法で
測定した。ヒスタミン遊離率は細胞の総ヒスタミン量に
対する上清のヒスタミン徹の百分率として表した。また
次式により被験薬液のヒスタミン遊離抑制率を算出した
。 2)実験成績 第2表 参考例 実施例1と同様に培養を行って得た培養液301を濾過
助剤を用いて一過し、菌体と培養土清液とに分けた。菌
体には201のメタノールを添加し、充分攪拌し、KS
−506aの抽出を行った。菌体のメタノール抽出液は
、減圧下で濃縮しメタノールを除去した。得られた水溶
液は、5%(V/V)になるようにメタノールを加えた
後、あらかじめ水で平衡化したダイヤイオンHP−20
(三菱化成社製) 21を充填したカラムに通塔した。 水、次いで50%メタノール水溶液各々61でカラムを
洗浄した後、メタノール101でKS−506aを溶出
した。溶出液は減圧下で濃縮した後、シリカゲル(ワコ
ーゲルC−200、和光補薬工業社製)にまぶし、あら
かじめクロロホルム:メタノール= 9 : 1 (v
/v)で充填したシリカゲル(ワコーゲルC−200、
和光補薬工業社製)カラム11の上端に供給した。KS
−506aの溶出は、クロロホルム:メタノール−9:
l (v/v)51で行った。この溶出液を減圧下で
濃縮した後、11%メタノールを含むクロロホルム10
m1に溶解シ、あらかじめ1%メタノール−クロロホル
ムで充填シたシリカゲル(ワコーゲルC−200、和光
補薬工業社製)カラム11の上端に供給した。カラムを
1%。 2%、3%メタノールをそれぞれ含むクロロホルム21
で順次展開し、溶出液を20■1ずつ分取するとフラク
ション番号101から181にKS−506aが溶出さ
れた。これらのフラクションを集めて減圧下で濃縮する
と、淡黄色あめ状物質が1.0g得られた。 このあめ状物質を80%ア七トニトリル水溶液2mlに
溶解し、その半量をあらかじめ80%アセトニトリル水
溶液で充填した逆相ローバーカラム(メルク社製、RP
−8、Bサイズ)に供給した。カラムを80%アセトニ
) IJル水溶液を用いて溶出し、溶出液を5mlずつ
分取すると、フラクション番号56から86にMS−5
068が溶出された。残りの半量も同様に80%アセト
ニトリル水溶液に溶解し、逆相ローパーカラムクロマト
グラフィーを行い、 KS−506aを含む両分を集め
た。KS〜5068を含む両分を減圧下で濃縮した後、
メタノール1mlに溶解し、あらかじめメタノールで充
填したセファデックスしl上20〈ファルマシア社製)
カラム200m1の上端に供給し、メタノール11を用
いて展開した。、溶出液を5mlずつ分取すると、フラ
クション番号51から61にKS−506aが溶出され
た。KS−506aを含む両分を集め、減圧下で濃縮し
た後、再度セファデックスLll−20カラムクロマト
グラフィーを繰り返すことにより、KS−506aを含
む固体450mgを得た。このうち42mgを60%ア
セトニトリル水溶液1mlに溶解し、あらかじめ60%
アセトニトリル水溶液で充填した逆相r1−バーカラ!
、(メルク社製、I櫂1’−18、I3サイズ)に供給
した3、カラ!・をに()%゛fセトニトリル水溶液2
1を用い一〇溶出し、溶出液を111m1ず一〕分取す
るとワラクシ9ン番号I;12から1501:KS−5
Of+ aが弔−に溶出された。KS−50fiaを?
11−に含む両分4集め、減圧下でに3縮すると、;!
I(色粉末のKSJ 01i nを7.amg得た。 1、配積製1−程中のKS 506aの検出は、シリカ
ゲルi’IJMりτ1マドグラフィー、次いで50%硫
酸を噴霧後、加熱することにより行−1た。なji、各
種展開剤によるKS−506aの薄層クロマトグラフィ
ーの11r値は′:P、:J表の通りである。 第 :) 表 0)りFur+ネルム:メタノール・9:1(ν/v)
f)、l
8■nヘキサン:酢酸エチル−I:l(v/v)
0.50■メタノール:水 −8:2(v/v)
0.21薄層:■、■ニジリカゲル60F2
S4プレート (メルク社、Nα5628) ■、■:RP 8F23.−プレート (メルク社、
No、13725) 展開:室温、上昇法、lO〜30分 発明の効果 KS−506m及びKS−506hはヒスタミンilt
抑制作用を有する新規物質であり、抗アレルギー剤、抗
炎症剤等の医薬品として有用である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)式 ▲数式、化学式、表等があります▼ KS−506m:R=▲数式、化学式、表等があります
▼ KS−506h:R=−OCH_3 で表わされる新規生理活性物質KS−506m及びKS
−506h。 (2)モルティエレーラ(Mortierella)属
に属し、KS−506m及び/又はKS−506h生産
能を有する微生物を培地に培養し、培養物中にKS−5
06m及び/又はKS−506hを生成蓄積させ、該培
養物からKS−506m及び/又はKS−506hを採
取することを特徴とするKS−506m及び/又はKS
−506hの製造法。(3)該微生物がモルティエレー
ラ・ビナセア(Mortierellavinacea
)に属する微生物であることを特徴とする請求項(2)
記載の製造法。 (4)該微生物がモルティエレーラ・ビナセア(Mor
tierellavinacea)KAC−1436(
微工研条寄第1776号)であることを特徴とする請求
項(2)または(3)記載の製造法。
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8008588A JPH01250341A (ja) | 1988-03-31 | 1988-03-31 | 新規生理活性物質KS−506m及びKS−506h及びその製造法 |
US07/329,329 US5142096A (en) | 1988-03-31 | 1989-03-27 | 2,4-dihydroxy-3,5,6-trimethylbenzoic acid compounds |
DE8989105611T DE68902670T2 (de) | 1988-03-31 | 1989-03-30 | Ks-506 verbindungen und verfahren zu deren herstellung. |
EP89105611A EP0335386B1 (en) | 1988-03-31 | 1989-03-30 | Ks-506 compounds and process for the production thereof |
CA000595121A CA1335367C (en) | 1988-03-31 | 1989-03-30 | Ks-506 compounds and process for the production thereof |
US07/889,388 US5223637A (en) | 1988-03-31 | 1992-05-28 | KS-506 compounds |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP8008588A JPH01250341A (ja) | 1988-03-31 | 1988-03-31 | 新規生理活性物質KS−506m及びKS−506h及びその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01250341A true JPH01250341A (ja) | 1989-10-05 |
Family
ID=13708370
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP8008588A Pending JPH01250341A (ja) | 1988-03-31 | 1988-03-31 | 新規生理活性物質KS−506m及びKS−506h及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01250341A (ja) |
-
1988
- 1988-03-31 JP JP8008588A patent/JPH01250341A/ja active Pending
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