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JPH08508014A - Oligodendroglia growth factor and its use - Google Patents

Oligodendroglia growth factor and its use

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Publication number
JPH08508014A
JPH08508014A JP6520338A JP52033894A JPH08508014A JP H08508014 A JPH08508014 A JP H08508014A JP 6520338 A JP6520338 A JP 6520338A JP 52033894 A JP52033894 A JP 52033894A JP H08508014 A JPH08508014 A JP H08508014A
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JP
Japan
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growth factor
oligodendroglial
oligodendroglia
kda
protein
Prior art date
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Pending
Application number
JP6520338A
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Japanese (ja)
Inventor
クレイダー,バーバラ・キュー
プレジャー,デービッド
リー,ヴァージニア・エム−ワイ
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Childrens Hospital of Philadelphia CHOP
Original Assignee
Childrens Hospital of Philadelphia CHOP
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Publication date
Application filed by Childrens Hospital of Philadelphia CHOP filed Critical Childrens Hospital of Philadelphia CHOP
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Abstract

(57)【要約】 60キロダルトンのタンパク質(”オリゴデンドログリア増殖因子”、OTF)は、脳白質培養中のオリゴデンドログリアの蓄積を誘導する。オリゴデンドログリア増加の半最大値は、オリゴデンドログリア増殖因子2ng/mLにて得られる。オリゴデンドログリア増殖因子は、オリゴデンドログリアの子孫およびオリゴデンドログリアに対して細胞分裂誘導効果を持つが、星状細胞、シュワン細胞、または神経繊維内鞘繊維に対しては増殖刺激を行わない。モノクローナルなオリゴデンドログリア増殖因子抗体での免疫学的研究は、オリゴデンドログリア増殖因子はCNSおよび背側神経根中の神経によって発現されることを示している。   (57) [Summary] The 60 kilodalton protein ("oligodendroglial growth factor", OTF) induces oligodendroglial accumulation in brain white matter cultures. The half-maximal increase in oligodendroglial is obtained with 2 ng / ml oligodendroglial growth factor. The oligodendroglial growth factor has a cell division-inducing effect on oligodendroglial progeny and oligodendroglia, but does not stimulate growth on astrocytes, Schwann cells, or nerve fiber inner sheath fibers. Immunological studies with monoclonal oligodendroglial growth factor antibodies have shown that oligodendroglial growth factor is expressed by nerves in the CNS and dorsal roots.

Description

【発明の詳細な説明】 オリゴデンドログリア増殖因子およびその利用法発明の分野 この発明はオリゴデンドログリア(oligodendroglial)増殖因子およびその利 用法に関するものである。発明の背景 多面硬化症や脳炎のような脱ミエリン症は患者を衰弱させる病気である。多面 硬化症の終期では、広範囲の大脳および脊髄の脱ミエリンによる歩行の不安定化 、失禁、および麻痺が一般的である。たいていの場合その後、死に至る。多面硬 化症の患者はしばしば、長年にわたり再発と緩解を繰り返す。脳炎は、しばしば 死に至る単相で急性の過程で特徴づけられる。脱ミエリン症には、一般に主な病 理学的過程として、アクソンを覆い絶縁しているミエリン鞘の欠損がみられる。 多面硬化症は徹底的な、しかし完結していない研究の題材であった。未だにこれ らの疾患に対する効果的な処置法は知られていない。 オリゴデンドログリア細胞は、中枢神経系のアクソンを覆うミエリンを産する 。オリゴデンドログリアはCNS胚基質の神経外胚葉幹細胞由来である。ゴールド マン(Goldman J.E)ら,J.Neuorolsci 1986,6,52-60;レヴァイン(LeVine S.M. )およびゴールドマン,J Comp Neurol 1988 277,441-455これらの幹細胞は、オ リゴデンドログリア生成過程において、小さく、過程中生き残り、運動能力があ り、急速に増殖する中間体となる。ラフ(Raff M.C.)ら,Nature 1983,303,390- 396;スモール(Small R.K.)ら,Nature 1987,328,155-157;レヴァインおよびゴ ールドマン,J Comp Neurol 1988,277,441-455:ノーブル(Noble M.D.)ら,Natur e1988,333,560-562;グリンスパン(Grinspan J.B.)ら,J Neurosci 1990,10,186 61-18873;ハーディ(Hardy R.)およびレイノルズ(Reynolds R.),Development 1991,111,1061-1070ラットでは、この中間段階の細胞を、ガングリオシドおよ びその他の細胞膜エピトープを認識するモノクローン抗体(mAbs)を用いること によって、またアストログ リアに特徴的な抗原(例えばグリア繊維性酸性タンパク質(GFAP))、またはオ リゴデンドログリアに特徴的な抗原(例えばガラクトセレブロシド(galC)、ミ エリン塩基性タンパク質(MBP)、および脂質タンパク質(PLP))の発現の欠失 によって免疫組織学的に同定できる。総説はゴールドマン(1992)による。これ らの運動性オリゴデンドログリア始源細胞の増殖、移動、分化、および分化した オリゴデンドログリアの生存は、塩基性繊維芽細胞増殖因子(塩基性FGF)(マ ッキノン(McKinnon R.D.)ら,Neuron 1990,5,603-614;ボグラー(Bogler O.) ら,Proc Natl Acad Sci USA 1990,87,6368-6372)、血小板由来増殖因子(PDGF )(リチャードソン(Richardson W.D.)ら,Cell 1988,53,309-319;ノーブルら, Nature 1988,333,560-562;プリングル(Pringle N.)ら,EMBO J 1989,8,1049-10 56;グリンスパンら,J Neurosci 1990,10,18661-18873;バレス(Barres B.A.)ら ,Cell 1992,70,31-46)およびインシュリン様増殖因子-1(IGF-1)(マクモリス (McMorris F.A.)およびデュボイーダルク(Dubois-Dalcq M.),J Neurosci Re s 1988,21,199-209)を含むパラクライン増殖因子によって制御されている。 分子量が16-18kDa、さまざまな神経芽腫細胞系列から培地に放出されるオリゴ デンドログリア増殖因子が知られている。ボッテンシュタイン(Bottenstein J. E.)ら,J Neurosci Res,1988,20,291-303;ハンター(Hunter S.F.)およびボッ トシュタイン,J Neurosci Res 1991,28:574-582;ギウリアン(Giulin D.)ら,J Neurosci1991,11,327-336 CNSニューロンの一次培養から培地に放出されるオリ ゴデンドログリア系列の細胞に対する増殖促進因子(レヴァイン,Neuron 1989,3 ,103-113;ガード(Gard A.L.)およびフェイファー(Pfeiffer S.E.),Neuron 1 990,5,615-625)の分子レベルの特徴はまだ報告されていない。 組織培養研究によると、オリゴデンドログリアの分化はニューロンがない場合 に起きる。ラフ(Raff M.C.)ら,Nature 1978,274,813-816;バーバレズ(Barbar ese E.)およびフィーファー(Pfeiffer S.E.),Proc Natl Acad Sci USA 1981, 78,1953-1957;ゼラー(Zeller N.K.)ら,J Neurosci 1985,5,2955-2962;サネト (Saneto R.P.)およびデヴェリス(De Vellis J.),Proc Natl Acad Sci USA 1 985,82,3509-3513;ナップ(Knapp P.E.)ら,Dev Biol 1987,120,356-365;グリン スパンら,J Neurosci 1990,10,18661-18873;ハーディおよびレイノルズ,Develop ment 1991,111,10 61-1070しかし、オリゴデンドログリアは、適当な太さのアクソンと接触してい る場合のみミエリンを集合させ、密な状態で維持できる。ウッド(Wood P.M.) およびウイリアムズ(Williams A.K.),Dev Brain Res 1984,12,225-241;キッド (Kidd G.J.)ら,J.Neurosci Res 1990,26,409-418この接触は、オリゴデンドロ グリアMAGとまだ特徴付けられていないニューロン原形質膜の成分の接着性相互 作用によって安定化される。ジョンソン(Johnson P.W.)ら,Neuron 1989,3,377 -385,オウエンズ(Owens G.C.)ら,J Cell Biol 1990,111,1171-1182;クアーレ ス(Quarles R.H.)ら,In:Myelin:Biology and Chemistry(マーテンソン(Mart enson RE)編),pp413-448 Boca-Raton:CRC Press(1992)第二の接触によるオ リゴデンドログリア-ニューロン相互作用は、オリゴデンドログリア膜結合表面 タンパク質によって誘導されるアクソンの伸長の阻害である。カロニ(Caroni P .)およびシュワッブ(Schwab M.E.),Dev Biol 1989,136,287-295:ファウセッ ト(Fawcett J.W.)ら,J Cell Sci1989,92,93-100 幾つかの観察によると、オリゴデンドログリア系列の細胞とニューロンの間の 第三の接触依存性増殖相互作用、オリゴデンドログリアの有糸分裂の誘導の存在 が示唆されている。背根神経節ニューロン(dorsal root ganglion neuron)と 共に培養されたオリゴデンドログリアは、アクソレマに富む膜画分と共に培養さ れたオリゴデンドログリアの場合;チェン(Chen S.J.)およびデヴリエス(DeVr ies G.H.),J Neurochem 1989,52,325-327;ヴィック(Vick R.S.)およびデヴリ エス,J Neurosci Res 1992,33,68-74;と同様に増殖する;ウッドおよびバング(B unge R.P.),Nature 1986,320,756-758;ウッドおよびバング,Glia 1991,4,225-2 32。アクソレマ関連オリゴデンドログリア増殖促進因子の性質は、ある研究によ ると酸性繊維芽細胞増殖因子(酸性FGF)またはその関連タンパク質でると示唆 されており;ヴィックおよびデヴリエス,J Neurosci Res 1992,33,68-74、別の研 究によると、200ng/MLの半最大活性を有する新規の50kDalの外来性膜タンパク質 であることが示唆されているがノードランド(Nordlund M.)ら,Glia 1992,5,18 2-192、まだ確立はしていない。この50kDaのタンパク質はまた、シュワン細胞の 増殖源でもある。多面硬化症の過程で失われるミエリンに取って交われる、この オリゴデンドログリアの有糸分裂の誘導が非常に望まれている。発明の概要 出願人は新規のオリゴデンドログリア増殖因子を同定し単離した。このタンパ ク質はオリゴデンドログリアの有糸分裂を誘導し、そして多面硬化症や脳炎のよ うな脱ミエリン症の進行中に失われるミエリンの交換を促進することが出願人に よって示された。 本発明の好ましい一つの態様で、哺乳類脳全体の0.5M塩抽出物を調製し、0.15 MNaCl中でpH7.4でイオン交換マトリックスと抽出物を保温し、5kDaから600kDaの 画分領域をもつサイズ排除カラム上で結合しない上清を流し、画分を溶出し、オ リゴデンドログリア増殖活性をもつ画分を集め、変成ゲル上で活性画分を溶解す る、ことからなるオリゴデンドログリア増殖因子の単離法が提供される。 本発明の好ましい一つの態様で、哺乳類脳全体の0.5M塩抽出物を調製し、0.15 M NaCl中でpH7.4でイオン交換マトリックスと抽出物を保温し、5kDaから600kDa の画分領域をもつサイズ排除カラム上で結合しない上清を流し、画分を溶出し、 オリゴデンドログリア増殖活性をもつ画分を集め、変成ゲル上で活性画分を溶解 し、ゲルから分子量約60kDaのタンパク質を回収し、接触するオリゴデンドログ リアの有糸分裂の誘導に有効な量の回収したタンパク質とオリゴデンドログリア とを接触させる、ことからなるオリゴデンドログリアの有糸分裂を誘導させる方 法が提供される。 本発明の好ましいさらなる態様で、哺乳類脳全体の0.5M塩抽出物を調製し、0. 15M NaCl中でpH7.4でイオン交換マトリックスと抽出物を保温し、5kDaから600kD aの画分領域をもつサイズ排除カラム上で結合しない上清を流し、画分を溶出し 、オリゴデンドログリア増殖活性をもつ画分を集め、変成ゲル上で活性画分を溶 解し、ゲルから分子量約60kDaのタンパク質を回収し、脱ミエリン症患者のオリ ゴデンドログリアの有糸分裂を誘導するのに有効な量の回収したタンパク質を患 者に投与することからなる脱ミエリン症患者の脱ミエリン症を処置する方法が提 供される。 本発明のさらなる好ましい態様で、約400units/ugのオリゴデンドログリア増 殖活性をもつ分子量約60kDのタンパク質からなる実質的に純粋なオリゴデンドロ グリア増殖因子が提供される。 さらに本発明の好ましい態様で、薬学的に受容できる担体にはいったオリゴデ ンドログリア増殖因子からなる薬剤が提供される。 さらに本発明の好ましい態様で、組換え宿主細胞でのオリゴデンドログリア増 殖因子の発現に十分な、オリゴデンドログリア増殖因子をコードするDNAの一部 で形質転換した組換え宿主細胞が提供される。 別の本発明の好ましい態様で、宿主細胞で形質転換された組換えDNAが、オリ ゴデンドログリア増殖因子をコードし、かつその宿主細胞でそのコーディング配 列の発現に影響を与えられるような適当な制御配列に利用できる形で結び付けら れたDNA配列をもつような組換え宿主細胞を培養する、ことからなるオリゴデン ドログリア増殖因子の産生法が提供される。 ここで述べる発現系と適合できる制御配列と利用できる形で結び付いた、オリ ゴデンドログリア増殖因子をコードするDNA配列を含む適切な発現系で発現でき る組換えベクターも本発明の好ましい態様で提供される。 さらに、本発明の好ましい態様で、オリゴデンドログリア増殖因子を特異的に 認識するモノクローン抗体を発現するハイブリッドオーマ細胞系列が提供される 。 本発明の抗体を態様でまた、オリゴデンドログリアの有糸分裂の誘導に有効な 量のオリゴデンドログリア増殖因子とオリゴデンドログリアとを接触させること からなるオリゴデンドログリアの有糸分裂を誘導する方法が提供される。 さらなる本発明の好ましい態様で、中枢神経系のオリゴデンドログリアの有糸 分裂の誘導に有効な量のオリゴデンドログリア増殖因子を脱ミエリン症患者に投 与することからなる脱ミエリン症を治療する方法が提供される。 出願人は、オリゴデンドログリアの有糸分裂を誘導するオリゴデンドログリア 増殖因子を同定した。オリゴデンドログリア増殖因子は、ここではオリゴデンド ログリア増殖活性に基づいて哺乳類脳全体から単離された。図面の簡単な説明 図1は、新生児ラットCWM培養物を脳の膜のNaCl抽出物で処理した結果の写真 である。新生児ラットCWM培養物中のA2B5'細胞(パネルAおよびC)、またはR-mA b'細胞(パネルBおよびD)を同定するのに間接免疫蛍光顕微鏡法を用いた。パネ ルCおよ びDは、脳の膜のNaCl抽出物(20μg/mL)を顕微鏡観察の3日前に加えた培地に保 持した培養物の様子を示しており、パネルAおよびBは抽出物を加えていない同様 の培養物の様子を示している。サイズ棒=36μm 図2は、CWM培養物のDNA合成に対する脳の膜のNaCl抽出物の影響を示す写真で ある。CWM培養物を20μg/mLの脳の膜のNaCl抽出物で2日間処理し、このうち2日 目にはBrdU(10μM)と保温した。パネルAは、R-mAbがその原形質膜に結合して いる2つのオリゴデンドログリアを示しており、パネルBは、固定の後、それらの 2つのオリゴデンドログリアの核に抗BrdU mAbが結合していることを示している 。同様の結果が、そのような研究でR-mAbの代わりに01 mAbを用いた場合にも得 られた(示していない)。 図3は、脳の膜のNaCl抽出物を加えた後のオリゴデンドログリアおよび0-2A細 胞のDNA合成率を比較する図である。脳の膜のNaCl抽出物(20μgタンパク質/mL )を日にち0(CWM細胞を単離して4日目)で加え、日にち3および7に新鮮な培地 を再び加えた。2重波長間接免疫蛍光顕微鏡法で観察する24時間前(オリゴデン ドログリアの観察、パネルA)または6時間前(0-2A細胞の観察、パネルB)にBrd Uを培地に加えた。オリゴデンドログリアは、表面にR-mAbが結合することで同定 された。0-2A細胞は、表面にA2b5 mAbが結合することで同定された。データは4 回の独立の実験の平均であり、垂線でSEMsを表している。白棒=非処理培養物;黒 棒=NaCl抽出物で処理した培養物 図4は、銀染SDS-PAGEゲルの複写である。銀染ゲルのレーン1は2μgのS200セフ ァクリル後のオリゴデンドログリア増殖因子を流したものであり、レーン2は10 μgのDEAE後のオリゴデンドログリア増殖因子を流したものである。S200セファ クリル後のオリゴデンドログリア増殖因子の平行な非染色レーンからのタンパク 質の溶出は、すべてのgalC+細胞集合活性が60kDal(MWapp)の顕著なバンドの領 域で回復されることを示した。 図5は、オリゴデンドログリア増殖因子で処理したCWM培養物のMAG免疫蛍光顕 微鏡観察の画像である。このCWM培養物は、S200セファクリル後のオリゴデンド ログリア増殖因子(100ng/mL)で10日間処理し、R-mAb(パネルA)および抗MAG 免疫グロブリン(パネルB)の結合を2重波長間接免疫蛍光顕微鏡法で観察した。 サイズ棒=33マ イクロメーター 図6は、オリゴデンドログリア増殖因子またはPDGFで処理したCWM培養物のMBP 免疫蛍光顕微鏡法の画像である。パネルAおよびCは、ヒトPDGF(2ng/mL)で10日 間処理したCWM培養物の領域の位相差像とMBP間接免疫蛍光像を示す;この領域の 約半分のオリゴデンドログリアはMBP+である。パネルBおよびDは、S200セファク リル後のオリゴデンドログリア増殖因子(100ng/mL)で10日間処理したCWM培養 物の領域の位相差像とMBP間接免疫蛍光像を示す。MBP+細胞がほんの少しだけ存 在している。サイズ棒=26マイクロメーター 図7は、オリゴデンドログリア増殖因子、PDGF、または塩基性FGFで処理したCW M培養物中のMBP mRNAのノーザンブロット解析の放射能写真である。CWM培養物を 、PDGF(2ng/mL)、塩基性FGF(10ng/mL)、またはS200セファクリル後のオリゴ デンドログリア増殖因子(100ng/mL)で7日間処理した。全RNA(塩基性FGFおよ びオリゴデンドログリア増殖因子処理培養物は10μg/レーン、PDGF処理培養物は 5μg/レーン)を、MBP cDNAプローブを用いたノーザンブロッティングで調べた 。上のパネルは、[32P]-ラベルMBP cDNAプローブで得られた放射能写真を示して いる。MBP mRNAのシグナル強度は,PDGFのレーンより塩基性FGFとオリゴデンドロ グリア増殖因子のレーンのほうがずっと弱い。[32P]-ラベルPLP cDNAプローブを 用いたブロットのリハイブリダイゼイションによって、PDGFのレーンのシグナル 強度が塩基性FGFおよびオリゴデンドログリア増殖因子のレーンよりずっと強い ことが示された(結果はしめしていない)。下のパネルは、同じ3つのレーンの メチレンブルー染色の28Sのバンドを示しており、bFGFおよびオリゴデンドログ リアのレーンにのせたRNAの量がほぼ同じであり、PDGFのレーンにのせた量はそ れより少ないことを示している。 図8は、オリゴデンドログリア増殖因子の免疫組織学的局在を示す2つのパネル の画像である。 パネルAは、オリゴデンドログリア増殖因子mAb,Duと保温した後、ペルオキシ ダーゼでラベルしたヒト小脳のパラフィン切片を示す;切片はヘマトキリンで対 比染色した。 パネルBは、Du mAbと保温した後、ペルオキシダーゼでラベルしたP6背根神経 節細胞を示す;切片はザイス微分干渉差光学器で見た。発明の詳細な説明 本発明のいくつかの具体例に従って、実質的に純粋なオリゴデンドログリア増 殖因子(OTF)が提供される。 ”オリゴデンドログリア増殖因子”という用語は、オリゴデンドログリア増殖 活性をもつタンパク質をさして言う。オリゴデンドログリア増殖活性とはオリゴ デンドログリア細胞の体細胞分裂をバックグラウンドレベル以上に誘導すること を意味している。体細胞分裂が、細胞の染色体が複製し、分離し、そして細胞が 同一の染色体のセットを含む二つの娘細胞に分裂する過程を意味することである ことは、もちろん当業者によってよく理解されている。オリゴデンドログリア増 殖活性とは、オリゴデンドログリア増殖因子の添加後に生ずる、バックグラウン ド以上の付加的なオリゴデンドログリア数/mm2という表現で言及されるのが好 ましい。活性の1ユニットは、バックグラウンドにオリゴデンドログリア細胞1 0個/mm2を追加したものと同等であるものと定義される。 オリゴデンドログリア増殖因子はオリゴデンドログリアの体細胞分裂を活性化 する一方、オリゴデンドログリアによる、MPBまたはPLPのような、ミエリンがぎ っしり詰まった脂質二重膜間の相互作用を安定化し、それによって、これらのオ リゴデンドログリアによるアクソンの最初の被覆を促進するのを大部分担ってい る、ミエリン構築タンパク質の産生は活性化しない。 オリゴデンドログリア増殖因子はニューロンと関連している。オリゴデンドロ グリア増殖因子は、イオンおよびサイズによる分離の組み合わせと、それに続く SDSポリアクリルアミドゲル分解によって脳の全抽出物から単離することができ る。ラットの大脳白質の培養組織におけるオリゴデンドログリアの蓄積は、0.5M NaClの膜抽出物からオリゴデンドログリア増殖因子の精製の過程をモニターす る分析法として利用することができる。その後、抽出物をDEAEセファデックス( 0.15M NaCl中、pH7.4)のようなイオン交換樹脂でインキュベートする。結合し ない上清物は5kDaからおよそ600kDaまでの分画幅をもつサイズ分画カラムに流す ことができる。画分を溶出し、オリゴデンドログリア増殖活性をもつ画分を集め る。活性のある画分に含まれるタンパク質は非変性ゲルを用いて分解できる。 生理活性のあるオリゴデンドログリア増殖因子は0.15M NaCl中、pH7.4ではDE AEセファデックスに結合せず、S-200セファクリルカラムから球状タンパクでは5 0-70kDaの分子量に相当する画分に溶出される。SDSポリアクリルアミドゲルによ る分解では、S-200セファクリルを通した調製物は、還元下において見かけの分 子量が約60kDaの主要なバンドを含むことが分かった。オリゴデンドログリア増 殖活性はその60kDaのバンドの溶出によって回収された。大脳白質の培養組織に おけるR-mAb+およびOl+オリゴデンドログリアの半最大値の蓄積は、2ngのSDS-PA GE後のオリゴデンドログリア増殖因子タンパク質/mLの濃度で得られる。このよ うに、全般にオリゴデンドログリア増殖因子は最初のNaCl抽出物から4,000倍に 精製され、実質的に純粋になった。 本発明のいくつかの具体例において、”実質的に純粋”とは85%以上純粋であ ることを意味している。本発明の他の具体例の中には90%以上純粋であるものが 好まれる。最も好ましいのは95%以上の純粋さである。 本発明のいくつかの具体例において、オリゴデンドログリア増殖因子は約50kD aから約70kDaの幅の分子量をもっている。本発明の最も好ましい具体例において 、オリゴデンドログリア増殖因子は60kDaの分子量をもっている。オリゴデンド ログリア増殖因子の前駆体もまた、オリゴデンドログリア増殖因子の生物学的活 性のある断片としてこの中に含まれる。 本発明のオリゴデンドログリア増殖因子は、懸濁状または溶液中の場合はその 環境のpHに依存して、あるいは、固体の状態ならば結晶化または沈澱したとき の環境のpHに依存しており、薬学的に受容できる塩、または中性の状態にある と思われる。もちろん、そのタンパク質の遊離のアミノ基は、例えば塩酸、リン 酸、または硫酸のような有機酸、または例えば酢酸、グリコール酸、コハク酸、 またはマンデル酸のような有機酸とともに酸性塩を形成することができる。遊離 のカルボキシル基は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、または水酸化カルシ ウムのような無機塩基、およびピペリジン、グルコサミン、トリメチルアミン、 コリンまたはカフェインのような有機塩基を含む塩基とともに塩を形成すること ができる。さらに、そのタンパク質は、脂質および糖質のような他の生物学的物 質との組み合わせ、または、アミノ基のアセチル化、水酸基を有する側鎖のリン 酸化またはスルフオキシル基の酸化のような側鎖の修飾によって修飾することが できる。 オリゴデンドログリア増殖因子の修飾は、ここに記載されたオリゴデンドログ リア増殖活性が保持されている限り、その定義の範囲に含まれる。最終的に、オ リゴデンドログリア増殖因子を僅かに修飾しても、実質的に同等、または昂進し た増殖活性をもつタンパク質を生じることが分かっている。これらの修飾は、部 位特異的変異導入による作意物であったり、またはオリゴデンドログリア増殖因 子を産生する宿主の突然変異のような偶発的派生物であったりする。増殖活性が 保持されている限り、これらの修飾はすべて含まれている。 本発明のオリゴデンドログリア増殖因子は自然に生ずるか、または組換え体と して産生される。 オリゴデンドログリア増殖因子は記載通り、哺乳類の脳全体から直接調製でき る。オリゴデンドログリア増殖因子は、例えば自動加水分解可能なアミノ酸分析 器(Applied Biosystems model 420,ABS,Foster City,CA)を用いたアミノ酸 分析のような技術として知られている標準的な技法によるアミノ酸配列の決定お よび組成分析によって、さらに性格付けられる。配列分析は、例えばパルス液相 シークエンサー(Applied Biosystems model 477A,ABS)を用いたエドマン分解 法で行うことができる。システイン残基は、配列分析に先立って、M.E.セルステ ッド、S.S.ハーウィッグら、J.Clin.Inv.,1985,76(4):1436-1439、によ って記載されたように、4-ビニルピリジンとの反応に続くスルフヒドリル基の還 元によって同定される。 マススペクトル分析は、高速原子衝突によるようなペプチドの分子量の決定に 使われる。 ポリペプチドは日常的に、例えば商業的に手に入るペプチド合成器のような当 該技術分野においてよく知られている標準的な技法によって、実質的に純粋な形 で合成することができる。 オリゴデンドログリア増殖因子はまた、組換え体として調製できる。例えば、 オリゴデンドログリア増殖因子をコードするDNA配列を単離するのにcDNA発現ラ イブラリーを使うことができる。cDNA発現ライブラリーは商業的に手に入れられ 、または、当分野で知られている方法に従って調製することができる。オリゴデ ン ドログリア増殖因子に対するモノクローナル抗体はライブラリーをスクリーニン グするのに使用することができ、抗体によって認識されるプラークは配列の決定 することができる。オリゴデンドログリア増殖因子を特異的に認識するモノクロ ーナル抗体は、そのようなモノクローナル抗体を産生するのに利用することがで きるハイブリドーマ細胞株として、本発明で提供される。特異的に認識されると は、存在する他のタンパク質を除外して抗体がオリゴデンドログリア増殖因子に 結合することを意味している。 あるいはDNAライブラリーはオリゴデンドログリア増殖因子遺伝子を特異的に 認識する核酸プローブを用いてスクリーニングすることができる。そのような核 酸プローブはオリゴデンドログリア増殖因子のアミノ酸配列に基づいて調製する ことができる。 オリゴデンドログリア増殖因子のすべてまたは一部分をコードする核酸配列は 本発明のいくつかの態様に含まれている。 決定した核酸配列に基づいて、オリゴデンドログリア増殖因子またはその断片 は、本明細書中で完全に述べられているものとして、参考文献として取り込まれ ている米国特許第4,677,063号に記載されているような、多くのよく知られた組 換え技術のいずれかの変更を用いることによって調製できると考えられている。 本明細書中で用いられている”その一部分”とは、望まれる生物学的活性、特に オリゴデンドログリア増殖活性を保持するのに十分なサイズのあらゆるペプチド または核酸の部分を意味している。 簡単には、細胞をトランスフォームしたり、ベクターを構築したり、メッセン ジャーRNAを抽出したり、cDNAライブラリーを調製したり、その他同種類のこと に利用する技法の大部分は広く当分野で行われており、大部分の実行者は特異的 条件および処置を記載した標準的な方法資料を熟知している。しかしながら、便 宜のために、以下の段落でガイドラインとして提供する。 原核生物は非常にしばしばE.coliのさまざまな株によって代表される。しかし ながら、例えばBacillus subtilisのようなBacilli、Pseudomonasのさまざまな 種、あるいは他の細菌株といった細菌のような他の微生物株も利用することがで きる。そのような原核生物のシステムでは、宿主に和合した種由来の複製点およ び制御配列を含むプラスミドベクターが利用される。例えば、そのような”発現 システム”の一つとして、ボリバーら、Gene2:95(1977)はE.coliの種由来の プラスミドであるpBR322の派生物を用いてE.coliを形質転換した。pBR322はアン ピシリンおよびテトラサイクリンに耐性の遺伝子を含み、希望のベクターの構築 の際に保持されるか、破壊されうる付加マーカーを提供する。一般に使用される 原核生物の制御配列は、リボソーム結合部位配列に沿って、随意にオペレーター をもつ転写開始のためのプロモーターを含み、ベータラクタマーゼ(ペニシリナ ーゼ)、およびラクトース(lac)プロモーターシステム(チャンら、Noture 19 8:1056(1977))、およびトリプトファン(trp)プロモーターシステム(ゴー デルら、Nucleic Acid Res8:4057(1980))、およびラムダ由来のPLプロモ ーターおよびN-遺伝子リボソーム結合部位(シマトークら、Nature 292:128( 1981))のような一般に使用されるプロモーターを含んでいる。 バクテリアに加え、酵母のような真核微生物もまた宿主として利用できる。多 くの他の株も一般に利用できるが、パン酵母であるSaccharomyces cerevisiaeの 実験用の株もよく用いられる。2ミクロンの複製起点を用いたベクターが例証さ れている一方、J.R.ブローチ、Meth Enz.101:307(1983)、酵母での発現に適 した他のプラスミドベクターも知られている(例えば、スタインヒコウムら、Na ture 282:39(1979)、チェンプら、Gene 10:157(1980)、およびL.クラーク ら、Meth Enz 101:300(1983)。酵母ベクターのための制御配列には解糖関連 酵素の合成のためのプロモーターが含まれる(ヘスら、J.Adv Enzyme Req 7:14 9(1968);ホーランドら、Biochemistry 17:4900(1978))。当分野で知られ ているさらなるプロモーターとして3-ホスホグリセリン酸キナーゼのプロモー ター(ヒッツマンら、J.Biol.Chem 255:2073(1980)、およびグリセルアルデ ヒド3-リン酸脱水素酵素、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸脱カルボキシル酵素、 ホスホグリセリン酸ムターゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸基転位酵 素、ホスホグルコース転位酵素、およびグルコキナーゼのような他の解糖関連酵 素のプロモーターが含まれる。転写が増殖環境によって制御されるという付加的 な利点をもつ他のプロモーターは、アルコール脱水素酵素2、イソチトクロムC 、酸脱リン酸化酵素、窒素代謝に関わる分解酵素、並びにマルトースおよびガラ クトー ス利用に関する酵素(ホーランド、同書)などのプロモーター領域である。また 、ターミネーター配列がコード配列の3’端にあるのが望ましいと考えられてい る。そのようなターミネーターは酵母由来遺伝子のコード配列に続く3’非翻訳 領域にみられる。例証された多くのベクターには、peno46プラスミドを含むエノ ラーゼ遺伝子(M.J.ホーランドら、J.Biol Chem 256:1385(1981))由来、ま たはYEp13から得られたLEU2遺伝子(J.ブローチら、Gene8:121(1978))由来 の制御配列が含まれる。しかしながら、酵母に適合したプロモーター、複製起点 、および他の制御配列を含むベクターはどれも適当である。 多細胞生物由来の真核宿主細胞培養組織でポリペプチドをコードする遺伝子を 発現するのももちろん可能である。例えば、Tissue Cultures,Academic Press, クルーズおよびパターソン編(1973)、を参照のこと。有用な宿主細胞株には、 VERO、Hela細胞およびチャイニーズハムスターの子宮(CHO)細胞が含まれる。 真核生物の宿主でポリペプチドをコードする遺伝子のin vivoでの発現はまた、 胃腸のディフェンシンポリペプチドの便利な調製法である。 そのような細胞の発現ベクターは通常、例えばSimianウィルス40(SV40)(フ ァイアーズら、Nature 273:113(1978))のような一般に使用される早期およ び後期プロモーター、またはポリオーマ、アデノウィルス2、ウシ乳頭腫ウィル ス、または鳥類肉腫ウィルスのようなウィルス由来の他のウィルスのプロモータ ー、等の哺乳類細胞に適合したプロモーター及び制御配列を含んでいる。哺乳類 細胞の宿主システムの形質転換の一般概念は、例えばアクセル;米国特許第4,39 9,216号によって記載されている。現在では”エンハンサー”領域が最適な発現 に重要であることが明らかになっている;エンハンサーは一般にプロモーター領 域の上流または下流の非コードDNA領域に見いだされる配列である。複製起点は 必要ならばウィルス源から得られる。しかしながら、真核生物では染色体への挿 入がDNA複製の一般的なメカニズムである。現在では宿主として植物細胞が利用 可能であり、ノパリン合成酵素プロモーターおよびポリアデニル化配列のような 、植物細胞に適合した制御配列も利用可能である(A.デピッカーら、J.Mol App l.Gen1:561(1982))。 使用した宿主細胞に依存して、形質転換はそのような細胞に適合した標準的な 技法を使用して行われる。実質的な細胞壁のバリアをもつ原核生物や他の細胞に は、N.コーエン、Proc Natl Acad Sci (USA)69:2110(1972)、によって記載 されたような塩化カルシウムを用いたカルシウム処理、またはMolecular Clonin g:A Laboratory Manual (1988)Cold Springs Harbor Pressに記載されている 方法を利用することができる。Agrobacterium tumefaciens(CH.ショウら、Gene 23:315(1983))の感染はある種の植物細胞に有用であると考えられている。 そのような細胞壁の無い哺乳類細胞にはグラハムおよびファンデルエブ、Virolo gy52:546(1978)、のリン酸カルシウム沈澱法を利用することができる。細胞 はまた、ベクターに取り込まれた遺伝子を例えば、WO 90/11734 1990年10月18日 刊行の風船状カテーテルの技術を用いて血管壁内の細胞に直接導入することによ って、生体内で形質転換することができる。 酵母への形質転換はP.ファン ソリンゲンら、J Bact 130:946(1977)およ びC.L.シャオら、Proc Natl Acad Sci(USA)76:3829(1979)の方法に従って 行うことができる。 cDNAおよびゲノムライブラリーはコロニーハイブリダイゼーション法を用いて スクリーニングすることができる。一般的にマイクロタイタープレートは、それ ぞれニトロセルロースフィルター紙(S&S BA-85型)上に複製することができ、 コロニーは50μg/ml Ampを含むL寒天上で、37℃で14-16時間増殖させることが できる。コロニーは溶菌させ、DNAは500mM NaOH,1.5M NaClで5分間の処理に続 いて、5×標準クエン酸塩(SSC)での5分間、二回の洗浄によってフィルターに 固定する。フィルターは空気乾燥し、80℃で2時間ベーキングする。複製フィル ターはフィルター当たり10mlのDNAハイブリダイゼーションバッファー[5×SSC ,pH7.0 5×デンハルト溶液(ポリビニルピロリジンにフィコールおよびウシ血 清アルブミン;1×=それぞれ0.02%ずつ、を加えたもの)、50mM、pH7.0のリン 酸ナトリウムバッファー、0.02% SDS、20μg/ml ポリU、および50μg/ml変性サ ケ精子DNA]で42℃で6-8時間プレハイブリダイゼーションする。 試料は希望の強度に依存した条件でリン酸化プローブとハイブリダイゼーショ ンすることができる。代表的な最適強度条件は、フィルター当たりプローブを含 むDNAハイブリダイゼーションバッファー1-5mlで42℃で24-36時間のものが用い られる。より激しい強度には高い温度とより短い時間が用いられる。一般的には 、フィルターは2×SSC、0.2% SDSおよび50mMリン酸ナトリウム,pH7、で37℃で 30分間ずつ4回洗浄し、それから2×SSCおよび0.2% SDSで2回洗浄して空気乾 燥した後、-70℃で2日から3日オートラジオグラムをとる。 希望のコード配列および制御配列を含む適当なベクターの構築には当分野でよ く理解されている標準的なライゲーションおよび制限化法が用いられる。単離さ れたプラスミド、DNA配列、または合成オリゴヌクレオチドは希望の形に分断さ れ、調整され(tailored)、再連結される。 部位特異的なDNAの切断は、当分野で一般的に理解されている条件で適当な制 限酵素(または酵素)によってDNAを処理することで行ない、その詳細はこれら の商業的に入手可能な制限酵素の製造業者によって特定されている。例えばNew England Biolabs,製品カタログを参照のこと。一般的には1μgのプラスミドま たはDNA配列を、およそ20μlのバッファー溶液中で1ユニットの酵素で切断する 。変法も許容されるが、約37℃で1時間から2時間のインキュベーション時間で 実行可能である。それぞれのインキュベーション後、タンパク質をフェノール/ クロロホルム抽出とそれに続くエーテル抽出によって取り除き、セファデックス G-5スピンカラムを通した後に、核酸をエタノール沈澱により水相画分から回収 する。望むならば、切断断片のサイズによる分離には、標準的な技法を用いたポ リアクリルアミドゲルまたはアガロースゲルの電気泳動が利用できる。サイズ分 離の一般的な記載はMethods in Enzymology(1980)65:499-560にされている。 制限切断した断片は、4種のデオキシヌクレオチド三リン酸(dNTPs)の存在 下、20℃から25℃で、50mMトリスpH7.6,50mM NaCl,6mM MgCl2,6mM DTT,およ び5-10μM dNTPsで約15から25分、E.coliのDNAポリメラーゼIの大断片(クレノ ウ)で処理することによって末端平滑化することができる。クレノウフラグメン トは5’粘着末端は埋めるが、4種のdNTPsが存在しても突出した3’一本鎖末 端を後進する。望むならば、粘着末端の性質で限定した、一つだけまたは選択し たdNTPsだけを加えて選択的な修復を行うことが可能である。クレノウで処理し た後、混合物はフェノール/クロロホルムと、セファデックスG-50スピンカ ラムにかけた後のエタノール沈澱によって抽出する。S1ヌクレアーゼを適当な条 件で用いて処理すると、一本鎖部分がすべて加水分解される。 合成オリゴヌクレオチドはメトイッキら、J Am Chem Soc 103:3185(1981)の トリエステル法、または商業的に入手可能な自動オリゴヌクレオチド合成器を用 いて調製できる。アニーリングに先だったまたは標識のための一本鎖のリン酸化 は、過剰量のポリヌクレオチドキナーゼ、例えば50mM トリス,pH7.6,10mM MgC l2,5mMジチオスレイトール,1-2mM ATP,1.7pmoles γ32P-ATP(2.9mCi/mmole) ,0.1mM スペルミジン,0.1mM EDTA存在下で、0.1nmoleの基質に対して約10ユニ ット、を用いて行うことができる。 ライゲーションは次のような標準的な条件および温度のもとで、15-30μlの容 量で行うことができる:20mM Tris-Cl pH7.5,10mM MgCl2,10mM DTT,33μg/m l GSA,10mM-50mM NaCl,および40μM ATP,0.01-0.02(Weiss)ユニットのT4 DN Aリガーゼ,0℃(”粘着末端”のライゲーションのため)、または1mM ATP 0.3- 0.6(Weiss)ユニットのT4 DNAリガーゼ,14℃(平滑末端のライゲーションのため )のどちらか一方。分子内の”粘着末端”のライゲーションは、通常33-100μg/ mlの全DNA濃度(5-100mM全末端濃度)で行われる。分子内の平滑末端のライゲー ションは(通常10-30倍を超えるモル数のリンカーを使う)、1μMの全末端濃度 で行われる。 ”ベクター断片”を使ったベクターの構築では、5’のリン酸基を除いてベク ターの結合を防ぐために、ベクター断片はバクテリアのアルカリ性フォスファタ ーゼ(BAP)で処理できる。BAPによる消化はpH8で、およそ150mM トリス中、Na+ およびMg2+の存在下でベクター1μg当たり約1ユニットのBAPを用いて、60℃で 約1時間反応する。核酸断片を回収するためには、調製試料をフェノール/クロ ロホルムで抽出し、エタノール沈澱し、セファデックスG-50スピンカラムにかけ て脱塩する。あるいは不必要な断片を切断する余分な制限酵素で二重に消化する ことによってベクター内の結合を防ぐことができる。 配列の修飾を必要とするcDNAまたはゲノムDNAから生じたベクターの一部分に は、部位特異的プライマーによる変異導入が利用できる。これは、望んだ変異を 示す定められたミスマッチ以外は、変異導入する一本鎖ファージDNAに相補的で あるプライマー合成オリゴヌクレオチドを用いて行う。簡潔には、合成オリゴヌ クレオチドはファージに相補的な鎖の直接の合成のためのプライマーとして用い 、生じた二本鎖DNAはファージを保持できる宿主バクテリアに形質転換する。形 質転換したバクテリアの培養液はファージをもつ一つの細胞に由来してプラーク ができるよう、トップアガーにまく。 理論上、新しいプラークの50%は一本鎖として変異型をもつファージを、残り の50%は元の配列をもつファージを含むと思われる。生じたプラークは、正確な 対合はするが、なおかつ、元の配列との不的確な対合は十分防ぐ温度で、リン酸 化された合成オリゴヌクレオチドでハイブリダイゼーションすることができる。 それからプローブにハイブリダイゼーションするプラークをひろって、培養し、 DNAを回収する。 プラスミドの構築への正しい連結は、最初にライゲーション混合物で適当な宿 主を形質転換することによって確認できる。正しく形質転換された宿主は、アン ピシリン、テトラサイクリン、または他の抗生物質への耐性、または当分野で理 解されているように、プラスミドの構築様式に依存した他のマーカーを用いて選 別する。それから形質転換体由来のプラスミドはD.B.クレウェルら、Proc Natl Acad Sci(USA)62:1159(1969)の方法、所望により行われるクロラムフェニコ ールの増幅(D.B.クレウェル、J.Bacteriol 110:6670(1972))に従って調製で きる。単離したDNAは制限化によって解析し、および/またはF.サンガーら、Proc Natl Acad Sci(USA)74:5463(1977)、さらにメッシングら、F.Supp.Nucleic Acids Res 9:309(1981)によって記載されたようなジデオキシ法、または、マ キサムら、Methods in Enzymology 65:499(1980)の方法によって配列を決定で きる。 この発明によって、オリゴデンドログリアを有効な量のオリゴデンドログリア 増殖因子に接触させるという、オリゴデンドログリアの分化の誘導法が提供され る。オリゴデンドログリアに体細胞分裂を誘導するのには、ng程度の量のオリ ゴデンドログリア増殖因子で十分であることが分かった。 本発明の他の側面において、脱ミエリン症患者に効果的な量のオリゴデンドロ グリア増殖因子を投与することを含む、脱ミエリン症患者の治療方法が提供され る。 当業者は本明細書の開示から、脱ミエリン症の治療に効果的な投薬方法につい てよくわかるであろう。例えば、投薬は血管内に、経口的に、直腸から、などと いった様々な投与形式で行われる。治療は望まれる治療結果が得られるまで続け られる。当業者は投薬方法、投与量、および間隔が、患者の年齢、体重、および 体調に強く依存するということを認識するであろう。 オリゴデンドログリア増殖因子は、効果的な量のオリゴデンドログリア増殖因 子および通常無害な運搬体を含む薬剤組成物に処方してもよく、そのような運搬 体は当業者に知られている。組成物はその形態に適した投与法で与えられる。例 えばそのような組成物は、溶液、懸濁液、乳状液、並びに、経口的に、静脈注射 で、皮下注射で若しくは筋肉注射で投与できるようなものを含む、通常は液体調 製品の形態である。 さらに、脱ミエリン症の治療では、細胞内でゲノムからのオリゴデンドログリ ア増殖因子の発現が誘導される。オリゴデンドログリア増殖因子の発現のために 選んだ例として、オリゴデンドログリア増殖因子のcDNAまたはゲノム配列の一部 を含むDNAで、in vitroまたはin vivoで形質転換される。in vitroで形質転換し た細胞は、例えば細胞移植を行うように、当業者に精通した方法で哺乳類に導入 できる。in vivoでの形質転換は以前に記載された組換え体ベクターの導入によ って成される。WO 90/117341990年10月18日公開。 次に述べる実例は例証とはなるが、本発明の限定を意図するものではない。実施例 実施例1 細胞培養 出生後6日目のスプラグ−ドーレイラットの脳梁および周囲の白質から大脳白 質(CWM)培養物を樹立し、上記に記載したように無血清培地中で維持した。 グリンスパンJ.B.,ら.,J Neurosci 1990、10、1866 1−18873。培養を開始した最初の4日間、細胞をオリゴデンドログリア増 殖因子で処理した。培地(さらにオリゴデンドログリア増殖因子を添加したもの またはしないもの)は、3日または4日の間隔で置き換えた。いくつかの実験で は(本文および図に示した)、ヒト血小板由来PDGF(大部分はABヘテロダ イマー;ボーエン−ホープD.F.,らJ Biol Chem1989,264 ,2502−2508;を週に二回(biweekly)、1%の血小板の少ないヒト血 漿とともに2ng/mL加えた;グリンスパンJ.B.,らJ Neurosci 1990,10,18661−18873。他の実験では、ヒトの組換え酸性 またはアルカリ性FGF(R&Dシステム)10ng/mLを48時間間隔で加 えた。新生ラットの座骨神経のシュワン細胞または背側神経節根(dorsal root ganglia)の単一層培養は、ウッドP.M.およびウイリアムスA.K.,De v Brain Res 1984,12,225−241;およびクレイダー B.Q.,ら.,Brain Res 1981,207,433−444中に既 に記載されたように樹立された。実施例2 間接蛍光抗体顕微鏡観察 糖脂質に対するモノクローナル抗体(mAb)[A2B5(神経の細胞質抗原 )アイゼンバース、ら.,Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A .1979,76,4913−4917;抗GD3抗体(ゴールドマンJ.E. ,ら.,J Neurosci 1986,6,52−60;01抗ガラクトセ レブロシド(オリゴデンドログリア表面);ゾマーJ.およびシャチュナーM. , Dev Biol 1980.83,311−327;並びにR−mAb(ガラ クトセルブロシド);ランシットB.,ら.,Proc Natl Acad Sci USA 1982,79,2709−2713;バンサルR.,ら., J Neurosci Res 1989,24,548−557,あるいはミ エリン関連糖タンパク質の細胞外領域に対して作成したウサギ抗血清;ペドラザ L.,ら.,J Cell Biol 1990,111,2651−2751 ;を、1:100に希釈して使用し、ジェームズサルダー博士、NYU医療セン ターの好意によりいただいた]を、4℃(A2B5,01,R−mAB)または 25℃(抗MAG)で25分間固定していない培養液に添加した。ハンクスの緩 衝塩溶液で洗浄し、適切な蛍光、ローダミンまたはテキサスレッドが結合した二 次抗血清(ノルヂック、オルガノンテクニカ、またはジャクソンLabsから得 た)とともにインキュベートした後、細胞を酸−アルコール(95%エタノール 、5%酢酸、v/v)で−20℃10分間固定した。抗MBP mAb;ヒッケ イ、ら.,J.Histochem.Cytochem.,1983,31,11 26−1135;をアセトン固定の後に加え、抗GFAB(ゲル活性化グリア繊 維タンパク質)mAb;リーVM−Y、ら.,J Neurochem1984 ,42,25−32;は酸−アルコール固定の後に加えた。様々な抗体に結合し た細胞の数は、カバーガラス表面上の1mm2に相当する63倍油侵した視野を 21個調べることによって決定した。視野はランダムに選択し、蛍光照射下で走 査する前にフェーズコントラスト下で適切な濃度であることを判断した。細胞分 裂指数は、酸−アルコール中で固定する前に少なくても4または24時間チミジ ンアナログである、ブロモデオキシウリジン(BrdU、10μM)とともに培 養液をインキュベートすることによって見積もった。抗BrdU(アマシャム) を使用した間接蛍光抗体顕微鏡観察を、核内にBrdUを取り込んだ表現型を示 す細胞の数を決定するのに使用した。グリンスピンJ.B.,ら.,J Neu rosci 1990,10,18661−18873。実施例3 ノーザンブロッティング MBP,PLP,またはMAGをコードするmRNAの定常状態の量を、ノー ザンブロッティングによりオリゴデンドログリア増殖因子、PDGF,またはア ルカリ性FGFを添加してまたはしないで維持したCWM培養液中において調べ た。サンブルークJ,フリスチEF,マニアチスT Molecular Cl oning.A Laboratory Manual。第2版コールドスプリ ングハーバー出版、1989。この目的の為に、チョムジンスキーおよびサッシ 、Anal.Biochem.,1987,162,156−159の方法によ ってCWM培養から全RNAを単離し、アガロースホルムアルデヒドゲル上での 電気泳動によって分離し、デュラロン メンブレン(ストラタジーン)にトラン スファーした。プレハイブリダイゼーションは42℃で2時間、50%ホルムア ミド、5×SSPE(1×=0.15M NaCl,0.01Mリン酸塩および 1mM EDTA)、1%SDS,5×デンハルト溶液(1×=0.02%ファ イコール、0.02%ポリビニルピロリジン、0.02%ウシ血清アルブミン、 100μg/mL変性したサケ精子DNA)中で行った。ラットMBPまたはラ ットPLPcDNA全長;デフェラF.,ら.,Cell 1985、43,7 21−727;グリンスパンJ.,ら.,J Neurocytol印刷中(1 992);カムホルズJ.,ら.,J Neurosci res 1992、 31、231−244;またはラットMAGcDNA(J.サルザー博士、NY U医学センターより贈呈)によるハイブリダイゼーションは、同様のバッファー で24時間行った。ブロットは2×SSCにて室温で1回、2×SSCにて65 ℃で1回、および0.2×SSCにて65℃で1回洗浄し、コダックXAR5フ ィルムに−70℃で感光させた。実施例4 オリゴデンドログリア増殖因子の精製 出生後3日のSprague−Dawleyラットの脳全体を、0.25Mス クロース、0.1mM MgCl2、0.63mMフェニルメチルスルフォニルフ ルオライド、および10mMトリス(pH7.0)を含む溶液(”懸濁用バッフ ァー”)中で4℃でホモジェナイズした。ホモジェネートを2000×gで1 0分、4℃にて遠心した。130,000×gの沈澱物から再懸濁によって可溶 抽出物を調製し、0.5M NaCl懸濁用バッファー中で60分4℃にてイン キュベーションし、その後130,000×gで60分間4℃にて遠心した。上 清をリン酸で緩衝化した150mM NaCl、pH7.0(PBS)にて4℃ で一晩透析し;ラトナーN.,ら.,Proc Natl Acad Sci USA 1988,85,6992−6996;それからPBSであらかじめ平 衡化した10分の1量のDEAEセファデックス(ファルマシア)とともに一晩 撹拌した。懸濁液を遠心した。上清をS−200セファクリルカラム(ファルマ シア)に載せ、画分をPBSで溶出した。オリゴデンドログリア増殖因子活性を 含む画分を得て、脱イオン水で4℃にて16時間透析し、親液性にして−80℃ にて保存した。これらの画分中のペプチドを、ドデシル硫酸ナトリウム−ポリア クリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって分離し;ラミリ、U. K.Nature1970,227,680−685;および銀染色で可視化し た。ある実験では、ポンソース染色および密度測定をペプチドバンド中のタンパ ク質量を見積もるのに使用した。オリゴデンドログリア増殖因子を含む染色して いないSDS−PAGEのレーンの部分を、移動の方向に対して垂直に切り出し 、25℃で2回各々10分ずつハムのF−12培地で洗浄し、それから0.1% (w/v)ウシ血清アルブミンを含むハムのF−12培地で4℃にて一晩振るこ とによって断片からタンパク質を抽出した。残存したSDSはエクストラチゲル (Pierce)の小さいカラムを通過させることによって上清から除去した。タンパ ク質をこれらのカラムからハムのF−12培地にて溶出し、−80℃にて保存し た。ラットCWM培養液中のオリゴデンドログリアの蓄積は、実施例5に記載し たように0.5M NaCl膜抽出物由来のオリゴデンドログリア増殖因子の精 製過程をモニターするために使用した。生物活性のあるオリゴデンドログリア増 殖因子は、pH7.4で0.15M NaClではDEAEセファデックスに結 合せず、分子量50−70kD(球状タンパク質として)に相当する画分中にS −200セファクリルカラムより溶出された。SDS−PAGEの後の銀染色は 、S−200セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因子の調製物 は、いくつかのより薄いバンドとともに、還元下で見かけの分子量がおよそ60 kD の主要なタンパク質バンドを含むことを示した(図4)。オリゴデンドログリア 増殖因子活性は、60kDalバンドを含むゲル断片を溶出する事によって効率 よく回収された。CWM培養液中でR−mAb+および01+オリゴデンドログリ アの半最大蓄積は、SDS−PAGEを行った後のオリゴデンドログリア増殖因 子タンパク質2ng/mLの濃度にて得られた。オリゴデンドログリア増殖因子 の生物活性は、ゲルの他の部分からの溶出液中には検出されなかった。全精製工 程によって、最初のラット脳膜のNaCl抽出物中に対してオリゴデンドログリ ア増殖因子の比活性は4,000倍に増加し、収率は67%であった。結果を表 1にまとめた。 実施例5 オリゴデンドログリア増殖因子の生物活性 PDGFまたはFGFを添加していない定められた培地に維持されたCWM培 養液中の表面01+またはR−mAb+のオリゴデンドログリアの増加が最大値の 半分になるタンパク質濃度を決定するために、精製の各々の段階に置ける服量− 反応曲線を作成することによってオリゴデンドログリア増殖因子活性を測定した 。galCに結合する01mAb,並びにgalCおよびスルフォリピッドの両 方に結合するR−mAbに対する結果は、;バンサルR,ら.,J Neuro sci Res 1989,24,548−557;区別がつかなかった。活性 1ユニットは、オリゴデンドログリア増殖因子がmm2あたりさらに10個のオ リゴデンドログリアを生産する量として定義した。オリゴデンドログリア増殖因 子に対する最大反応は、精製の各々の段階に置ける未処理のバックグラウンドレ ベルの約8倍であった。様々な抗体を、オリゴデンドログリア増殖因子活性の効 果を決定するために培地に添加した。ウサギ抗ヒトPDGF(コラボレート リ サーチ、50μg/mL)を、オリゴデンドログリア増殖因子とともに剌激する ように添加した。ウサギ抗塩基性FGF(R&D,60μg/mL)を、オリゴ デンドログリア増殖因子を加える90分前に添加し、ウサギ抗酸性FGF(R& D,50μg/mL)を、オリゴデンドログリア増殖因子を加える30分前に添 加した。抗オリゴデンドログリア増殖因子mAb,Du(下記参照)はハイブリ ドーマ上清として使用した(1:100、v/v)。実施例6 オリゴデンドログリア増殖因子のモノクローナル抗体 S200セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因子で18日 間に渡ってマウスを免疫し;ブロードスキーF.M.,J Cell Biol 1985,101,2047−2054;アライら、Proc.Natl.Ac ad.Sci.U.S.A.,1990,87,2249−2253に記載され たようにハイブリドーマを調製した。クローンを単離し、その上清を、S200 セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因子を標的抗原として、抗 オ リゴデンドログリア増殖因子への結合をELISAによって試験した;リー V M−Yら.,Proceedings of the Natl.Acad.S ci.,USA 1988,85,1998−2002。6つのELISA陽性 クローンのうち2つ(TdおよびDu)は、オリゴデンドログリア増殖因子によ って誘導されるCWM培養液中のgalC+細胞の蓄積を阻害した.Duとのペ ルオキシダーゼ抗ペルオキシダーゼ(PAP)免疫細胞化学を、組織切片および 背側神経細胞根(DRG)培養中でのオリゴデンドログリア増殖因子の免疫反応 性を位置づけるのに使用した。ヒト脳から調製した組織院を、等張アルコールで 固定し、6μmパラフィン切片に切断した。P6ラットDRG培養は、酸アルコ ールで固定し、2%仔ウシ血清(v/v)および0.1Mトリス、pH7.0中 の0.25%(w/v)冷水魚のゼラチン(cold water fish gelatin)で30 分ブロッキングして、それからオリゴデンドログリア増殖因子mAbとともにイ ンキュベートした。それからパラフィン断片およびDRGカバーガラスについて 、ペルオキシダーゼ抗ペルオキシダーゼ免疫細胞化学分析を行った。カーデン( 1987)。実施例7 CNS膜0.5M NACL抽出物の予備的特徴付け オリゴデンドログリア増殖因子活性は、実施例5に記載したように測定した。 NaCl抽出物を、0日目および3日目に20μg/mLの濃度になるように添 加した。オリゴデンドログリアの数は、01mAbまたはR−mAbに結合する 細胞を数えることによって決定した。0−2A細胞の数は、A2B5mAbには 結合するが、01mAbまたはR−mAb細胞には結合しない細胞の数を数えて 決定した。01mAbおよびR−mAbの結果は、見分けが付かなかった。抗G FAPによる平行した実験では、未処理および処理した培養液の両方においてm m2あたり2型星状細胞が1個より少なかったことが示された。結果は、標準誤 差を含む、4回の独立した実験の平均である。粗な新生ラットCNS膜由来の0 .5M NaCl抽出物による処理によって、新生ラットCWM培養液中のオリ ゴデンドログリアから生じた細胞の数が増加し(図1および表2)、またその ような細胞のBrdU核ラベル指数が一時的に増加した(図2および3)。 ラットCWM培養液中の1型星状細胞、ミクログリア、および内皮細胞の数お よび分裂指数は、0.5M NaCl抽出物で処理することによって変化しなか った(データは示さない)。NaCl抽出物で仲介されるCWM培養液中のオリ ゴデンドログリアの増加は、塩基性FGF,酸性FGF,またはヒトPDGFの 働きを中和する抗血清によって阻害されなかった(データは示さない)。 0.5M NaCl抽出物およびヒトPDGFによって誘導されるCWM培養 液中のオリゴデンドログリアの数の増加は、相加的である(表3)。脳膜のNa Cl抽出物(20μg/mL)およびヒトPDGF(2ng/mL)を、0日お よび3日目に添加した。各々の結果は、4回の独立な実験±標準誤差の平均であ る。 0.5M NaCl抽出物のオリゴデンドログリアに対する増加活性は、透析 膜を通過せず、トリプシンまたは100℃で5分処理しても不活化されなかった (データは示さない)。A2B5および抗GFAPによる2重にラベルをした間 接的な免疫蛍光実験;グリンスパンJ.B.,ら.,J Neurosci.,1 990,10,18661−18873;は、1個より少ない数の2型星状細胞 /mm2が;ラフ M.C.,ら.,Nature 1983,303,390 −396;未処理および0.5MNaCl抽出物で処理したCWM培養液の両方 に存在したことを示した(データは示さない)。実施例9 0−2Aオリゴデンドログリアの子孫およびオリゴデンドログリアによるオリゴデンドログリア増殖因子によって刺激されたDNA合成の検出 最大の反応を引き出すのに十分な量のS200セファクリルまたはSDS−P AGEを行った後のオリゴデンドログリア増殖因子でCWM培養液を処理し、B rdUで1日パルスして1日後に観察した結果、A2B5+オリゴデンドログリ アの子孫およびR−mAb+オリゴデンドログリアの両方においてBrdUラベ ル指数が4から5倍増加した。 オリゴデンドログリア増殖因子は、BrdUパルスの間にオリゴデンドログリ アに分化する急速に増殖している0−2A細胞の数を多くすることによってオリ ゴデンドログリアのBrdUラベル指数を増加させるよりも;フレシナウドC. ,ら.,J Cell Physiol 1992、150、34−44、むし ろ少なくともR−mAb+分化段階に到達したオリゴデンドログリア系列の細胞 に対して直接分裂効果を発揮することを立証するために、2つの実験を考案した 。第一の実験は、BrdUパルスの時間を24時間から4時間に減少し、それに よってBrdUでラベルされた0−2A細胞がオリゴデンドログリアに成熟する のに利用できる時間を制限した。BrdUでラベルされたR−mAb+細胞の数 はこの実験で5分の1に減少したが、R−mAb+細胞のBrdUラベル指数は 、コントロールの培養液に比べてオリゴデンドログリア増殖因子で処理したもの では4倍増加した。第2の実験は、0−2A細胞群を増加させるためにPDGF (2ng/mL)で3日間処理した培養液を使用し;グリンスパンJ.B.,ら .J Neurosci.1990,10,18661−18873;それから PDGFなしで5日間培養し、その期間に0−2A細胞はオリゴデンドログリア へと成熟した。この時、これらの培養液は0−2A細胞/mm2は1個より少な かった。オリゴデンドログリアが豊富で0−2A細胞が少ないこれらの培養液を 、S200セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因子200ng /mlで処理すると、R−mAb+細胞のBrdUラベル指数にたいして刺激が 5倍になった(オリゴデンドログリア増殖因子を添加してから1日後に開始して 、1日パルスした、n=3)。このような2つの実験の結果は、オリゴデンドロ グリア増殖因子がR−mAb+オリゴデンドログリアに直接的な細胞分裂誘導効 果を発揮することを示唆した。 オリゴデンドログリア増殖因子がシュワン細胞または神経繊維内鞘繊維に対し ても細胞分裂誘導因子となるかを決定するために、坐骨神経培養を既に記載され たように調製し;クレイダーB.Q.,ら.,Brain Res1981,2 07,433−444;および血清を含むまたは含まない培地中で維持した。粗 0.5M NaCl抽出物(50μg/mL)またはS200セファクリルを通 した後のオリゴデンドログリア増殖因子(1μg/mL)を、培地中に添加し、 2日後にBrdUで1日間パルスした。血清のない培地中では、粗0.5M N aCl抽出物は、シュワン細胞のBrdU核ラベル指数を4倍(n=5)増加さ せた。しかし、S200セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因 子は、血清の無い培地中または血清を含む培地中に置いてBrdUでラベルされ たシュワン細胞または神経繊維内鞘繊維の割合を増加させなかった(データは示 さない)。実施例10 オリゴデンドログリア増殖因子によって増加したオリゴデンドログリアはMAG を発現するが、ミエリン基質タンパク質(MBP)またはプロテオリピド(PLP)の合成または発現は行わない オリゴデンドログリア増殖因子で3日間またはそれ以上処理したCWM培養液 中のR−mAb+オリゴデンドログリアの約3分の1は自身の細胞膜に、抗MA G免疫グロブリンを結合した(図5)。ノーザンブロット解析により、オリゴデ ンドログリア増殖因子で処理した培養物ではMAG遺伝子が発現していることが 確証された(データは示さない)。 10日間ヒトPDGF2ng/mLで処理したCWM培養液中のR−mAb+ 細胞の46%(n=3)は、MBP+であったが、10日間オリゴデンドログリ ア増殖因子で処理したCWM培養液中のR−mAb+細胞の4%(n=3)のみ がMBP+であり(図6)、この数はさらに10日間観察しても増加しなかった 。オリゴデンドログリア増殖因子で処理したCWM培養液中の定常状態のMBP およびPLPmRNAのレベルを、平行して行ったPDGFまたは塩基性FGF で処理した培養液中のものとノーザンブロット解析を用いて比較した。PDGF で処理した培養液中のオリゴデンドログリアの数が多く、塩基性FGFで処理し た培養液中には実際に見られないことから予測されるように、MBPおよびPL P mRNAの発現はPDGFで処理した培養物中では強いが、FGFで処理し た培養物中ではほとんど検出されなかった(図7)。オリゴデンドログリア増殖 因子で処理した培養液中では、オリゴデンドログリアに特徴的なガラクト脂質を 発現する細胞は豊富にあるが、MBPおよびPLP mRNAレベルは非常に低 かっ た(図7)。これは、オリゴデンドログリア増殖因子で処理したCWM培養液中 のオリゴデンドログリアにおけるMBP発現が低いレベルにあることに、翻訳前 の機構が少なくとも部分的に関与していることを示している。 オリゴデンドログリア増殖因子がPDGFで処理した培養液中のオリゴデンド ログリアによるミエリン構造タンパク質の発現を抑圧するかを決定するために、 CWM培養液をオリゴデンドログリア増殖因子およびPDGFで10日間刺激す るように処理した。間接免疫蛍光顕微鏡観察により、PDGFのみで処理した培 養液と同様に、これらの培養液中のR−mAb+細胞の約半分(49%、n=3 )がMBP+でもあった。 前の観察から、ミエリン脂質およびミエリン構造タンパク質の合成はオリゴデ ンドログリアの分化に深く関与していることが示唆された。このように、塩基性 FGFを含む培地中で維持された培養物において、オリゴデンドログリア系列に ある細胞はミエリン ガラクトスフィンゴ脂質(galCおよびサルファチド) およびMBPおよびPLPをコードするmRNAの両方を発現できない一方、塩 基性FGFを添加しないで維持している培地中では、galCの発現と同時にM BPおよびPLPをコードするmRNAが出現し、MBPおよびPLPの免疫反 応はその後数日で行うことができるようになる。クナップP.E.、ら.,De v Biol 1987,120,356−365;ガードA.L.およびプフ ェイファーS.E.,Development 1989,119−132;コ ラリニ,ら.,Development 1992,116,193−200; グリンスパンJ.,ら.,J Neurocytol.印刷中(1992)。し かし、これらの示唆とは反対に、オリゴデンドログリア増殖因子で処理した培養 液中において、ミエリン脂質およびミエリン構造タンパク質合成の共役は見られ ないようであり;R−mAb+および01+細胞は蓄積するが、MAGを発現する ものはあるがMBPおよびPLPは発現しない。よく考えると、新たなオリゴデ ンドログリアのPLPおよびMBPの発現をオリゴデンドログリア増殖因子が誘 導しないということは、小さなミエリンの中の脂質二重膜間の相互作用の安定化 に大きく関わっているタンパク質が;キルシュナーD.A.およびブラウロック A.E.,ミエリン:生物学および化学(マルテンソンRE、編集)、pp3− 80. ボクラートン:CRC印刷(1992)にある;これらオリゴデンドログリアに よるアクソンの最初の包み込みを促進するためであろう。実施例11 オリゴデンドログリア増殖因子に対するモノクローナル抗体を用いた研究は、オリゴデンドログリア増殖因子は神経によって発現されることを示す 6つのELISA陽性のオリゴデンドログリア増殖因子mAbのうち2つ(” Du”および”Te”)は、CWM培養液中のオリゴデンドログリア増殖因子に よるA2B5+およびR−mAb+細胞の増加を阻害した。この2つの各々に関し て、S200セファクリルを通した後のオリゴデンドログリア増殖因子200n g/mLの最大生物活性の半分の阻害は、1:500に希釈した(v/v)ハイ ブリドーマ上清から得られた(データは示さない)。DuおよびTeはPDGF または塩基性FGF処理によって誘導されるオリゴデンドログリア系列細胞の増 加を阻害しない(データは示さない)。 免疫ペルオキシダーゼ実験により、Duはヒト脳のパラフィン切片中のペリカ ルヤおよびペリカルヤ細胞の軸索、並びに新生ラットの背側神経根(dorsal roo t ganglia)の酸アルコール固定培地中の多くの神経に結合することが示された (図8)。ラットDRG培養中の繊維芽細胞若しくはシュワン細胞、またはラッ トCWM培養中のいかなる細胞種に対してもDuの結合は検出されなかった(デ ータは示さない)。Detailed Description of the Invention               Oligodendroglia growth factor and its useField of the invention   The present invention is directed to oligogodendroglial growth factors and their benefits. It is about usage.Background of the Invention   Demyelinating diseases such as multiple sclerosis and encephalitis are debilitating diseases for patients. Many sides Extensive cerebral and spinal demyelination destabilizes gait at the end of sclerosis , Incontinence, and paralysis are common. In most cases, it is followed by death. Multifaceted Patients with dysplasia often have relapses and remissions over the years. Encephalitis often It is characterized by a monophasic and acute process leading to death. Demyelinosis is generally the major disease As a physical process, there is a defect in the myelin sheath that covers and insulates Axon. Multiple sclerosis has been the subject of exhaustive, but incomplete research. Still this There is no known effective treatment for these diseases.   Oligodendroglial cells produce myelin overlying central nervous system axons . Oligodendroglia are derived from neuroectodermal stem cells of the CNS embryo matrix. gold Goldman J.E et al., J. Neuorolsci 1986, 6, 52-60; LeVine S.M. ) And Goldman, J Comp Neurol 1988 277,441-455. In the process of Rigodendroglia formation, it is small, survives the process, and has a motor ability. Becomes a rapidly growing intermediate. Raff M.C. et al., Nature 1983,303,390- 396; Small R.K. et al., Nature 1987, 328,155-157; Levine and Go. Nordmann, J Comp Neurol 1988, 277, 441-455: Noble M.D. et al., Natur. e1988,333,560-562; Grinspan J.B. et al., J Neurosci 1990,10,186. 61-18873; Hardy (Hardy R.) and Reynolds R., Development  In the 1991,111,1061-1070 rat, cells in this intermediate stage were treated with gangliosides and And monoclonal antibodies (mAbs) that recognize other cell membrane epitopes Also by astrolog An antigen characteristic of the rear (eg glial fibrillary acidic protein (GFAP)), or Antigens characteristic of Rigodendroglia (eg galactocerebroside (galC), mi Erin basic protein (MBP) and lipid protein (PLP) expression loss Can be identified immunohistochemically. The review is by Goldman (1992). this , Motile oligodendroglial origin cells proliferate, migrate, differentiate, and differentiate The survival of oligodendroglia depends on the basic fibroblast growth factor (basic FGF) (macro). McKinnon R.D. et al., Neuron 1990, 5,603-614; Bogler O. Et al., Proc Natl Acad Sci USA 1990,87,6368-6372), platelet-derived growth factor (PDGF ) (Richardson W.D. et al., Cell 1988, 53, 309-319; Noble et al. Nature 1988,333,560-562; Pringle N. et al., EMBO J 1989,8,1049-10. 56; Grinspan et al., J Neurosci 1990, 10, 18661-18873; Barres B.A. et al. , Cell 1992,70,31-46) and insulin-like growth factor-1 (IGF-1) (McMorris (McMorris F.A.) and Dubois-Dalcq M., J Neurosci Re s 1988, 21, 199-209).   Oligos with a molecular weight of 16-18 kDa released into the medium from various neuroblastoma cell lines Dendroglia growth factor is known. Bottenstein J. E.) et al., J Neurosci Res, 1988, 20, 291-303; Hunter S.F. Tostein, J Neurosci Res 1991, 28: 574-582; Giulin D. et al., J. Neurosci 1991,11,327-336 CNS neurons released from the primary culture into the culture medium Growth-promoting factors for cells of the Godendroglia lineage (Levine, Neuron 1989, 3 , 103-113; Guard (Gard A.L.) and Pfeiffer S.E., Neuron 1 990,5,615-625) have not yet been reported at the molecular level.   Tissue culture studies show that oligodendroglial differentiation is in the absence of neurons Get up in Raff M.C. et al., Nature 1978, 274, 813-816; Barbarez ese E.) and Pfeiffer S.E., Proc Natl Acad Sci USA 1981, 78,1953-1957; Zeller N.K. et al., J Neurosci 1985,5,2955-2962; Sanet. (Saneto R.P.) and De Vellis J., Proc Natl Acad Sci USA 1 985,82,3509-3513; Knapp P.E. et al., Dev Biol 1987,120,356-365; Gulin Span et al., J Neurosci 1990,10,18661-18873; Hardy and Reynolds, Develop. ment 1991,111,10 61-1070 However, the oligodendroglia is in contact with an appropriately thick Axon. Can collect myelin and maintain it densely. Wood (Wood P.M.) And Williams A.K., Dev Brain Res 1984,12,225-241; Kid. (Kidd G.J.) et al., J. Neurosci Res 1990,26,409-418. Adhesive interactions between glial MAG and components of the uncharacterized neuronal plasma membrane Stabilized by action. Johnson P.W. et al., Neuron 1989, 3,377. -385, Owens G.C. et al., J Cell Biol 1990,111,1171-1182; Cuale. Quarles R.H. et al., In: Myelin: Biology and Chemistry (Martson enson RE)), pp413-448 Boca-Raton: CRC Press (1992) Second contact Rigodendroglia-Neuron Interactions on the Oligodendroglia Membrane-bound Surface Inhibition of protein-induced axon elongation. Caroni P .) And Schwab M.E., Dev Biol 1989, 136,287-295: Faucet. Fawcett J.W. et al., J Cell Sci1989,92,93-100   Some observations indicate that between oligodendroglial lineage cells and neurons. Presence of a third contact-dependent proliferative interaction, the induction of oligodendroglia mitosis. Is suggested. Dorsal root ganglion neuron The co-cultured oligodendroglial was co-cultured with the axorema-rich membrane fraction. In the case of oligodendroglials; Chen S.J. and Devries (DeVr) ies G.H.), J Neurochem 1989, 52, 325-327; Vick R.S. and Devry. S, J Neurosci Res 1992, 33, 68-74; Proliferates similar to; Wood and Bang (B unge R.P.), Nature 1986,320,756-758; Wood and Bang, Glia 1991,4,225-2. 32. The nature of the axolemma-related oligodendroglial growth-promoting factor has been demonstrated in one study. Suggest acidic fibroblast growth factor (acidic FGF) or its related proteins Vick and Devries, J Neurosci Res 1992, 33, 68-74, another institute. Research shows a novel 50kDal foreign membrane protein with a half-maximal activity of 200ng / ML Although it has been suggested that, Nordland (Mordlund M.) et al., Glia 1992,5,18 2-192, not established yet. This 50 kDa protein is also found in Schwann cells. It is also a source of proliferation. This is replaced by myelin lost in the process of multiple sclerosis Induction of oligodendroglial mitosis is highly desirable.Summary of the invention   Applicants have identified and isolated a novel oligodendroglial growth factor. This tampa The cytoplasm induces oligodendroglial mitosis, and is associated with pleural sclerosis and encephalitis. Applicants to promote the exchange of myelin that is lost during the development of eel demyelinosis Thus indicated.   In one preferred embodiment of the invention, a 0.5 M salt extract of whole mammalian brain is prepared, containing 0.15 Incubate the ion exchange matrix and extract at pH 7.4 in MNaCl at 5 kDa to 600 kDa. Run the unbound supernatant on a size exclusion column with fraction regions, elute the fractions, and Fractions with Rigodendroglial proliferative activity are collected and the active fraction is dissolved on a denaturing gel. A method for isolating oligodendroglial growth factor is provided.   In one preferred embodiment of the invention, a 0.5 M salt extract of whole mammalian brain is prepared, containing 0.15 Incubate the ion-exchange matrix and extract at pH 7.4 in M NaCl, 5 kDa to 600 kDa Run the unbound supernatant on a size exclusion column with fractional regions of, elute the fractions, Fractions with oligodendroglial proliferative activity were collected and the active fraction was dissolved on a denaturing gel. Then, a protein with a molecular weight of about 60 kDa is recovered from the gel, and the oligodendroglog that contacts Effective amounts of recovered protein and oligodendroglia for inducing Lear mitosis A method of inducing mitosis of oligodendroglia consisting of contacting with Law is provided.   In a preferred further aspect of the invention, a 0.5M salt extract of whole mammalian brain is prepared, Incubate the ion exchange matrix and extract at pH 7.4 in 15M NaCl, 5kDa to 600kD Elute the fractions by running the unbound supernatant on a size exclusion column with a fraction area of a. , Collect the fractions with oligodendroglia growth activity and dissolve the active fractions on a denaturing gel. And recovering a protein with a molecular weight of about 60 kDa from the gel, Diseased with recovered protein in an amount effective to induce mitosis in Godendroglia. A method for treating demyelinating disease in a patient with demyelinating disease is proposed. Provided.   In a further preferred embodiment of the invention, about 400 units / ug of oligodendroglial is added. Substantially pure oligodendrocyte consisting of a protein with a molecular weight of about 60 kD that has a fertile activity Glial growth factor is provided.   Furthermore, in a preferred embodiment of the present invention, the oligodeoxynucleotide in a pharmaceutically acceptable carrier is There is provided a drug comprising an androglian growth factor.   Furthermore, in a preferred embodiment of the present invention, oligodendroglial expansion in recombinant host cells is achieved. Part of the DNA encoding oligodendroglial growth factor sufficient for expression of the replication factor Recombinant host cells transformed with.   In another preferred embodiment of the invention, the recombinant DNA transformed in the host cell is It encodes godendroglial growth factor and encodes it in its host cell. Ligated in a form available to appropriate control sequences that can affect expression of the sequence. Culturing a recombinant host cell having a defined DNA sequence A method for producing dolglia growth factor is provided.   Oriented, operably linked to control sequences compatible with the expression systems described herein. It can be expressed in a suitable expression system containing a DNA sequence encoding godendroglial growth factor. Recombinant vectors are also provided in preferred embodiments of the invention.   Furthermore, in a preferred embodiment of the present invention, oligodendroglial growth factor is specifically Hybridoma cell line expressing a monoclonal antibody that recognizes is provided .   The antibody of the present invention is also effective in inducing oligodendroglial mitosis in an embodiment. Contacting a quantity of oligodendroglial growth factor with oligodendroglia A method of inducing mitosis of oligodendroglia is provided.   In a further preferred embodiment of the present invention, the oligodendroglial fibrillation of the central nervous system An amount of oligodendroglial growth factor effective to induce mitosis is administered to patients with demyelinating disease. There is provided a method of treating demyelinating which comprises administering.   Applicants have been inducing oligodendroglial mitosis Growth factors were identified. Oligodendroglial growth factor Isolated from whole mammalian brain on the basis of proliferative activity in loglia.Brief description of the drawings   Figure 1 is a photograph of the results of treating neonatal rat CWM cultures with a brain membrane NaCl extract. Is. A2B5 'cells (panels A and C) or R-mA in neonatal rat CWM cultures Indirect immunofluorescence microscopy was used to identify b'cells (panels B and D). Panel Le C and And D were stored in the medium containing the brain membrane NaCl extract (20 μg / mL) 3 days before microscopic observation. Shown is the culture that was retained, panels A and B are the same with no extract added. It shows the appearance of the culture. Size bar = 36 μm   Figure 2 is a photograph showing the effect of a brain membrane NaCl extract on DNA synthesis in CWM cultures. is there. CWM cultures were treated with 20 μg / mL brain membrane NaCl extract for 2 days, of which 2 days The eyes were kept warm with BrdU (10 μM). Panel A shows R-mAb bound to its plasma membrane Figure 2 shows two oligodendroglia that are present, and Panel B shows those after fixation. Demonstration of anti-BrdU mAb binding to the nuclei of two oligodendroglials . Similar results were obtained when 01 mAb was used in place of R-mAb in such studies. (Not shown).   Figure 3 shows oligodendroglial and 0-2A cells after addition of the brain membrane NaCl extract. It is a figure which compares the DNA synthesis rate of a cell. Brain membrane NaCl extract (20 μg protein / mL ) On day 0 (4 days after CWM cell isolation) and fresh medium on days 3 and 7. Was added again. 24 hours before observing with dual wavelength indirect immunofluorescence microscopy (oligoden Observation of drogria, panel A) or Brd 6 hours before (observation of 0-2A cells, panel B) U was added to the medium. Oligodendroglia identified by R-mAb binding to the surface Was done. 0-2A cells were identified by A2b5 mAb binding to the surface. The data is 4 Mean of independent experiments, vertical lines represent SEMs. White bar = untreated culture; black Rod = culture treated with NaCl extract   Figure 4 is a copy of a silver dye SDS-PAGE gel. Lane 1 of the silver dye gel is 2 μg of S200 Sep Lane 2 was loaded with oligodendroglial growth factor after acrylate. μg of oligodendroglial growth factor after DEAE was applied. S200 Sepha Proteins from parallel unstained lanes of oligodendroglial growth factor after krill Quality elution of all galC+Cell aggregation activity of 60kDal (MWapp) The prominent band territory It was shown to be recovered in the area.   Figure 5: MAG immunofluorescence microscopy of CWM cultures treated with oligodendroglial growth factor. It is an image of microscopic observation. This CWM culture shows the oligodendants after S200 Sephacryl. Treatment with roglia growth factor (100ng / mL) for 10 days, R-mAb (panel A) and anti-MAG Immunoglobulin (panel B) binding was observed by double wavelength indirect immunofluorescence microscopy. Size stick = 33 m Ichometer   Figure 6 MBP of CWM cultures treated with oligodendroglial growth factor or PDGF. It is an image of immunofluorescence microscopy. Panels A and C are human PDGF (2ng / mL) for 10 days Phase-contrast image and MBP indirect immunofluorescence image of a region of inter-processed CWM cultures; About half of oligodendroglia are MBP+Is. Panels B and D are S200 Cefac CWM culture treated with oligodendroglial growth factor (100ng / mL) for 10 days after rilling The phase contrast image and the MBP indirect immunofluorescence image of the object region are shown. MBP+There are only a few cells Existence Size bar = 26 micrometers   Figure 7: CW treated with oligodendroglial growth factor, PDGF, or basic FGF MBP in M culture It is a radioactivity photograph of Northern blot analysis of mRNA. CWM culture , PDGF (2ng / mL), basic FGF (10ng / mL), or oligo after S200 Sephacryl The cells were treated with dendroglia growth factor (100 ng / mL) for 7 days. Total RNA (basic FGF and And oligodendroglia growth factor-treated cultures at 10 μg / lane, PDGF-treated cultures 5 μg / lane) was examined by Northern blotting using MBP cDNA probe . The upper panel is [32P] -labeled MBP cDNA probe showing radioactivity pictures There is. The signal intensity of MBP mRNA was higher than that of the PDGF lane by the basic FGF and oligodendrocyte. The glial growth factor lane is much weaker. [32P] -labeled PLP cDNA probe The signal in the PDGF lane was determined by rehybridization of the blot used. Much stronger than basic FGF and oligodendroglial growth factor lanes Was shown (results not shown). The bottom panel shows the same three lanes The methylene blue-stained 28S band is shown showing bFGF and oligodendrogogues. The amount of RNA loaded in the rear lane is almost the same, and the amount loaded in the PDGF lane is almost the same. It is less than this.   Figure 8 shows two panels showing immunohistological localization of oligodendroglial growth factor. Is an image of.   Panel A shows peroxidation after incubation with oligodendroglial growth factor mAbs Du. Shown is a paraffin section of human cerebellum labeled with a dase; Specific staining was performed.   Panel B shows P6 dorsal root nerves labeled with peroxidase after incubation with Du mAb. Nodal cells are shown; sections viewed by Zeiss differential interference contrast optics.Detailed Description of the Invention   In accordance with some embodiments of the present invention, substantially pure oligodendroglial enrichment is provided. A breeding factor (OTF) is provided.   The term "oligodendroglia growth factor" refers to oligodendroglial growth factor. It refers to a protein that has activity. What is oligodendroglia proliferative activity? Inducing somatic division of dendroglia cells above background levels Means Somatic cell division causes the cell's chromosomes to replicate, segregate, and It means the process of division into two daughter cells containing the same set of chromosomes. This, of course, is well understood by those skilled in the art. Increase oligo dendroglia Breeding activity is the background activity that occurs after the addition of oligodendroglial growth factor. Number of additional oligodendroglia more than 100 mm / mm2Is preferable to be referred to by the expression Good. One unit of activity is oligodendroglial cell 1 in the background 0 / mm2Is defined to be equivalent to the addition of.   Oligodendroglia growth factor activates somatic division of oligodendroglia On the other hand, with oligodendroglia, myelin clogs, such as MPB or PLP Stabilizes the interactions between tightly packed lipid bilayers, thereby allowing these Mostly responsible for promoting the first covering of Axon with Rigodendroglia Production of myelin building proteins is not activated.   The oligodendroglial growth factor is associated with neurons. Oligodendro Glial growth factor is followed by a combination of separation by ion and size Can be isolated from whole brain extracts by SDS polyacrylamide gel digestion It Accumulation of oligodendroglia in rat cerebral white matter cultures was 0.5M  Monitoring the process of purification of oligodendroglial growth factor from NaCl membrane extract Can be used as an analytical method. Then extract the DEAE Sephadex ( Incubate with an ion exchange resin such as pH 7.4) in 0.15M NaCl. Combined The empty supernatant is run over a size fractionation column with a fraction width of 5 kDa to approximately 600 kDa. be able to. Elute fractions and collect fractions with oligodendroglial proliferative activity It The proteins contained in the active fraction can be resolved using a non-denaturing gel.   Biologically active oligodendroglial growth factor is DE in 0.15M NaCl at pH 7.4. No binding to AE Sephadex, 5 from globular protein from S-200 Sephacryl column It is eluted in the fraction corresponding to the molecular weight of 0-70 kDa. By SDS polyacrylamide gel For degradation, preparations that have been run through S-200 Sephacryl are It was found to contain a major band with a mass of approximately 60 kDa. Increase oligo dendroglia The reproductive activity was recovered by elution of the 60 kDa band. For cultured tissue of cerebral white matter R-mAb+And Ol+Half-maximal accumulation of oligodendroglia is 2 ng of SDS-PA Obtained at a concentration of oligodendroglial growth factor protein / mL after GE. This As a general rule, oligodendroglial growth factor is 4,000 times that of the first NaCl extract. Purified to be substantially pure.   In some embodiments of the present invention, "substantially pure" means 85% or more pure. It means that. Among other embodiments of the invention are those that are 90% or more pure. Be preferred. Most preferred is a purity of 95% or higher.   In some embodiments of the invention, the oligodendroglial growth factor is about 50 kD. It has a molecular weight ranging from a to about 70 kDa. In the most preferred embodiment of the present invention , Oligodendroglial growth factor has a molecular weight of 60 kDa. Oligodend Precursors of logulial growth factor are also involved in the biological activity of oligodendroglial growth factor. Included in this as a viable fragment.   The oligodendroglial growth factor of the present invention, when in suspension or in solution, is When it crystallizes or precipitates depending on the pH of the environment, or in the solid state Depending on the pH of the environment of, and in a pharmaceutically acceptable salt or neutral state I think that the. Of course, the free amino groups of the protein are Acids, or organic acids such as sulfuric acid, or for example acetic acid, glycolic acid, succinic acid, Alternatively, acidic salts can be formed with organic acids such as mandelic acid. Liberation The carboxyl groups of are sodium hydroxide, potassium hydroxide, or calcium hydroxide. Inorganic bases such as um, and piperidine, glucosamine, trimethylamine, Forming salts with bases including organic bases such as choline or caffeine Can be. In addition, the protein is associated with other biological substances such as lipids and carbohydrates. Quality, or acetylation of amino groups, phosphorus of the side chain having a hydroxyl group Can be modified by side chain modifications such as oxidation or oxidation of sulfoxyl groups it can.   Modifications of oligodendroglial growth factor are described in As long as the rear growth activity is retained, it falls within the scope of the definition. Finally, A slight modification of Rigodendroglial growth factor can be substantially equivalent or even enhanced. Have been shown to produce proteins with proliferative activity. These modifications are part It is an artifact of position-directed mutagenesis or an oligodendroglial growth factor It may be an incidental derivative, such as a mutation of a host that produces offspring. Proliferative activity All these modifications are included as long as they are retained.   The oligodendroglial growth factor of the present invention may be naturally occurring or recombinant. Produced.   As described, oligodendroglial growth factor can be prepared directly from the whole mammalian brain. It Oligodendroglia growth factor can be analyzed, for example, by autohydrolyzable amino acid analysis. Amino Acids Using a Vessel (Applied Biosystems model 420, ABS, Foster City, CA) Determination of amino acid sequences by standard techniques known in the art such as analysis and And further characterized by compositional analysis. Sequence analysis, for example, pulsed liquid phase Edman degradation using a sequencer (Applied Biosystems model 477A, ABS) Can be done by law. Cysteine residues were added to the M.E. D., S.S. Harwig et al., J. Clin. Inv., 1985, 76 (4): 1436-1439. Reaction of 4-vinylpyridine, followed by reduction of the sulfhydryl group, as described in Identified by origin.   Mass spectral analysis can be used to determine the molecular weight of peptides such as by fast atom collisions. used.   Polypeptides are routinely used, for example in commercially available peptide synthesizers. In a substantially pure form by standard techniques well known in the art. Can be synthesized with.   The oligodendroglial growth factor can also be prepared recombinantly. For example, A cDNA expression library was used to isolate the DNA sequence encoding oligodendroglial growth factor. Ibrary can be used. cDNA expression libraries are commercially available Alternatively, it can be prepared according to methods known in the art. Oligode The Monoclonal antibody against drogria growth factor screens the library Plaques that can be used to can do. Monochrome that specifically recognizes oligodendroglial growth factor Internal antibodies can be used to produce such monoclonal antibodies. Hybridoma cell line is provided by the present invention. When specifically recognized Antibodies to oligodendroglial growth factor, excluding other proteins present It means to combine.   Alternatively, the DNA library specifically targets the oligodendroglial growth factor gene Screening can be performed using a nucleic acid probe that recognizes. Such a nucleus Acid probe prepared based on the amino acid sequence of oligodendroglial growth factor be able to.   The nucleic acid sequence encoding all or part of the oligodendroglial growth factor is Included in some aspects of the invention.   Based on the determined nucleic acid sequence, oligodendroglial growth factor or a fragment thereof Are incorporated by reference as if fully set forth herein. Many well-known sets, such as those described in U.S. Pat. It is believed that it can be prepared by using any modification of the replacement technique. As used herein, "a portion thereof" refers to a desired biological activity, particularly Any peptide of sufficient size to retain oligodendroglial proliferative activity Alternatively, it means a part of nucleic acid.   You can easily transform cells, construct vectors, Jar RNA extraction, cDNA library preparation, and similar Most of the techniques used to implement are widely practiced in the art, and most practitioners Familiar with standard method documentation describing conditions and treatments. However, flights For convenience, it is provided as a guideline in the following paragraphs.   Prokaryotes are most often represented by various strains of E. coli. However While, for example, Bacilli, such as Bacillus subtilis, a variety of Pseudomonas Other microbial strains such as bacteria, such as seeds or other bacterial strains, can also be used. Wear. In such prokaryotic systems, replication points and species derived from species compatible with the host are used. And plasmid vectors containing control sequences are utilized. For example, such "expression As one of the "systems", Bolivar et al., Gene 2:95 (1977) are derived from E. coli seeds. Derivatives of the plasmid pBR322 were used to transform E. coli. pBR322 is Anne Construction of desired vector containing genes resistant to picillin and tetracycline Provides additional markers that can be retained or destroyed during Commonly used Prokaryotic control sequences optionally have an operator along the ribosome binding site sequence. Containing a promoter for transcription initiation with a beta-lactamase (penicillin And the lactose (lac) promoter system (Chang et al., Noture 19 8: 1056 (1977)), and the tryptophan (trp) promoter system (Go Dell et al., Nucleic Acid Res 8: 4057 (1980)) and P from lambda.Lpromotion And N-gene ribosome binding site (Simatalk et al., Nature 292: 128 ( 1981)) and commonly used promoters.   In addition to bacteria, eukaryotic microbes such as yeast can also be used as hosts. Many Other strains of Saccharomyces cerevisiae, which is a baker's yeast, are commonly available. Laboratory strains are also often used. Vector with 2 micron origin of replication illustrated Meanwhile, J.R. Brooch, Meth Enz. 101: 307 (1983), suitable for expression in yeast Other known plasmid vectors are also known (for example, Steinhkoum et al., Na ture 282: 39 (1979), Cemp et al., Gene 10: 157 (1980), and L. Clark. Et al., Meth Enz 101: 300 (1983). Glycolysis-related regulatory sequences for yeast vectors A promoter for the synthesis of the enzyme is included (Hes et al., J. Adv Enzyme Req 7:14. 9 (1968); Holland et al., Biochemistry 17: 4900 (1978)). Known in the art Promoting 3-phosphoglycerate kinase as an additional promoter T. (Hitzmann et al., J. Biol. Chem 255: 2073 (1980), and Glycerarde. Hydr-3-phosphate dehydrogenase, hexokinase, pyruvate decarboxylase, Phosphoglycerate mutase, pyruvate kinase, triose phosphate rearrangement Other glycolysis-related enzymes such as dihydrogen, phosphoglucose transferase, and glucokinase Includes a prime promoter. Additional that transcription is controlled by the proliferative environment Other promoters with significant advantages are alcohol dehydrogenase 2, isocytochrome C , Acid dephosphorylating enzymes, degrading enzymes involved in nitrogen metabolism, and maltose and gala Koutou It is a promoter region for enzymes (Holland, ibid.) Related to the utilization of sucrose. Also , It is believed desirable to have a terminator sequence at the 3'end of the coding sequence. It Such a terminator is a 3'untranslated sequence following the coding sequence of a yeast-derived gene. Found in the area. Many of the vectors exemplified include eno containing the peno46 plasmid. From the lucase gene (M.J. Holland et al., J. Biol Chem 256: 1385 (1981)). Or LEU2 gene obtained from YEp13 (J. Brooch et al., Gene 8: 121 (1978)) The control array of is included. However, a yeast-compatible promoter, origin of replication , And other control sequences are all suitable.   Genes encoding polypeptides in eukaryotic host cell cultures derived from multicellular organisms Of course, it can be expressed. For example, Tissue Cultures, Academic Press, See Cruise and Patterson (1973). Useful host cell lines include Includes VERO, Hela cells and Chinese hamster uterine (CHO) cells. In vivo expression of a gene encoding a polypeptide in a eukaryotic host also A convenient method for preparing gastrointestinal defensin polypeptides.   The expression vector for such cells is typically, for example, Simian virus 40 (SV40) Commonly used early and early species such as Fires et al., Nature 273: 113 (1978). And late promoter, or polyoma, adenovirus 2, bovine papillomawill Or other viral promoters from viruses such as the avian sarcoma virus -, Etc., containing promoter and control sequences compatible with mammalian cells. mammalian General concepts of transformation of cellular host systems are described, for example, in Axel; US Pat. No. 4,39. It is described by No. 9,216. Now the "enhancer" region is optimally expressed Have been found to be important to promoters; enhancers are generally promoter regions. It is a sequence found in the non-coding DNA region upstream or downstream of the region. Origin of replication Obtained from virus sources if needed. However, in eukaryotes, insertion into the chromosome Entry is a common mechanism of DNA replication. Plant cells are now used as hosts Possible, such as nopaline synthase promoter and polyadenylation sequences , Regulatory sequences compatible with plant cells are also available (A. Depicker et al., J. Mol App. l. Gen 1: 561 (1982)).   Depending on the host cell used, transformation is standard for such cells. Done using techniques. For prokaryotes and other cells that have a substantial cell wall barrier Described by N. Cohen, Proc Natl Acad Sci (USA) 69: 2110 (1972), Treatment with calcium chloride as described, or Molecular Clonin g: A Laboratory Manual (1988) Cold Springs Harbor Press. Methods are available. Agrobacterium tumefaciens (CH. Shaw et al., Gene  23: 315 (1983)) is believed to be useful for certain plant cells. For mammalian cells without such cell walls, Graham and Van der Eve, Virolo gy52: 546 (1978), the calcium phosphate precipitation method can be used. cell In addition, the gene incorporated into the vector is described in WO 90/11734 October 18, 1990. By direct introduction into cells within the vessel wall using the published balloon catheter technique. Thus, it can be transformed in vivo.   Transformation into yeast was performed by P. van Solingen et al., J Bact 130: 946 (1977) and And C. L. Xiao et al., Proc Natl Acad Sci (USA) 76: 3829 (1979). It can be carried out.   cDNA and genomic libraries using colony hybridization Can be screened. Generally microtiter plates Each can be duplicated on nitrocellulose filter paper (S & S BA-85 type), Colonies can be grown for 14-16 hours at 37 ° C on L agar containing 50 μg / ml Amp. it can. The colonies were lysed and the DNA was treated with 500 mM NaOH, 1.5M NaCl for 5 minutes. And wash the filter with two washes of 5x standard citrate (SSC) for 5 minutes. Fix it. Filters are air dried and baked at 80 ° C for 2 hours. Duplicate fill Is 10 ml of DNA hybridization buffer per filter [5 x SSC , PH7.0 5 x Denhardt's solution (polyvinylpyrrolidine with Ficoll and bovine blood Clear albumin; 1 x = 0.02% each), 50 mM, pH 7.0 phosphorus Sodium phosphate buffer, 0.02% SDS, 20 μg / ml poly U, and 50 μg / ml denatured solution Pre-hybridize with Sperm DNA] at 42 ° C for 6-8 hours.   The sample is hybridized with the phosphorylated probe under conditions that depend on the desired intensity. You can Typical optimal strength conditions include probe per filter. Use 1-5 ml of DNA hybridization buffer for 24-36 hours at 42 ° C. Can be Higher temperatures and shorter times are used for more intense strength. In general , Filter with 2 x SSC, 0.2% SDS and 50 mM sodium phosphate, pH 7, at 37 ° C Wash 4 times for 30 minutes each, then 2 times with 2 x SSC and 0.2% SDS and air dry. After drying, take an autoradiogram at -70 ° C for 2 to 3 days.   Construction of a suitable vector containing the desired coding and control sequences is within the skill of the art. Well understood standard ligation and restriction methods are used. Isolated Isolated plasmid, DNA sequence, or synthetic oligonucleotide They are tailored, reconnected.   Site-specific cleavage of DNA is performed under suitable conditions under conditions generally understood in the art. This is done by treating the DNA with a restriction enzyme (or enzyme). Identified by the manufacturer of commercially available restriction enzymes. For example New See England Biolabs, Product Catalog. Generally, 1 μg of plasmid or Or the DNA sequence is cleaved with 1 unit of enzyme in approximately 20 μl of buffer solution . A modified method is acceptable, but with an incubation time of 1 to 2 hours at about 37 ° C It is feasible. After each incubation, protein / phenol / Removed by chloroform extraction followed by ether extraction, Sephadex After passing through the G-5 spin column, the nucleic acid was recovered from the aqueous phase fraction by ethanol precipitation. To do. If desired, use standard techniques for size separation of the cleaved fragments. Electrophoresis on a polyacrylamide gel or an agarose gel can be used. Size A general description of separation is given in Methods in Enzymology (1980) 65: 499-560.   The restriction digested fragment contains four types of deoxynucleotide triphosphates (dNTPs). 50 mM Tris pH 7.6, 50 mM NaCl, 6 mM MgCl 2 at 20 ° C to 25 ° C2, 6mM DTT, and And 5-10 μM dNTPs for about 15 to 25 minutes, a large fragment of E. coli DNA polymerase I (Klenow The end can be blunted by treatment with c). Klenow Fragmen Fills in the 5'sticky end, but the 3'single-stranded end protruding even in the presence of four dNTPs. Go backwards at the end. If desired, only one or selected, limited by the nature of the sticky ends It is possible to perform selective repair by adding only dNTPs. Treated with Klenow After that, the mixture was mixed with phenol / chloroform and Sephadex G-50 spincap. Extract by ethanol precipitation after ramming. S1 Nuclease When used in some cases, the single-stranded portion is completely hydrolyzed.   Synthetic oligonucleotides are described by Metoikki et al., J Am Chem Soc 103: 3185 (1981). Use the triester method or a commercially available automated oligonucleotide synthesizer Can be prepared. Single-stranded phosphorylation prior to annealing or for labeling Is an excess of polynucleotide kinase, eg 50 mM Tris, pH 7.6, 10 mM MgC l2, 5mM dithiothreitol, 1-2mM ATP, 1.7pmoles γ32P-ATP (2.9mCi / mmole) , 0.1mM spermidine, 0.1mM EDTA in the presence of 0.1nmole substrate to about 10 units. Can be performed using   Ligation should be performed in a volume of 15-30 μl under standard conditions and temperatures such as: Can be done in volume: 20 mM Tris-Cl pH 7.5, 10 mM MgCl2, 10mM DTT, 33μg / m l GSA, 10 mM-50 mM NaCl, and 40 μM ATP, 0.01-0.02 (Weiss) unit of T4 DN A ligase, 0 ° C (for "sticky end" ligation), or 1 mM ATP 0.3- 0.6 (Weiss) unit of T4 DNA ligase, 14 ℃ (for ligation of blunt ends) ) Either one. Ligation of "sticky ends" in the molecule is typically 33-100 μg / Performed at a total DNA concentration of 5 ml (5-100 mM total end concentration). Intramolecular blunt end ligation (Usually using more than 10-30 times the molar number of linker), 1 μM total end concentration Done in.   When constructing a vector using a "vector fragment", the vector was removed except for the 5'phosphate group. Vector fragment to prevent bacterial binding to the alkaline phosphatase. It can be treated with a Base. Digestion with BAP at pH 8 in approximately 150 mM Tris+ And Mg2+In the presence of about 1 unit of BAP per μg of vector at 60 ° C React for about 1 hour. To recover nucleic acid fragments, prepare the sample with phenol / chromatography. Extracted with Loform, ethanol precipitated, and loaded onto Sephadex G-50 spin column. To desalt. Or double digest with an extra restriction enzyme that cuts unnecessary fragments This can prevent binding in the vector.   For a portion of a vector derived from cDNA or genomic DNA that requires sequence modification Can utilize mutagenesis with site-specific primers. This is the desired mutation Except for the defined mismatches shown, they are complementary to the single-stranded phage DNA to be mutated. This is done using certain primer synthetic oligonucleotides. Briefly, synthetic oligonuclears Cleotide used as a primer for the direct synthesis of strands complementary to phage The resulting double-stranded DNA is transformed into a host bacterium capable of retaining phage. form The transformed bacterial culture is derived from a single phage-bearing cell, which is a plaque. So that you can do it.   Theoretically, 50% of the new plaques will retain the phage with the variant as a single strand. 50% of the clones appear to contain phage with the original sequence. The resulting plaque is accurate Phosphate at a temperature that will allow pairing, but will also prevent improper pairing with the original sequence Hybridization can be carried out with synthetic oligonucleotides. Then pick out the plaques that hybridize to the probe, incubate, Collect the DNA.   Correct ligation into the construction of the plasmid is first ensured that the appropriate ligation mixture is used to It can be confirmed by transforming the lord. Correctly transformed hosts are Resistance to picillin, tetracycline, or other antibiotics, or As can be seen, selection using other markers depending on the plasmid construction Separate. The transformant-derived plasmid was then cloned by D. B. Clewell et al., Proc Natl. Acad Sci (USA) 62: 1159 (1969), optionally chloramphenico. Amplification (D.B. Clewell, J. Bacteriol 110: 6670 (1972)). Wear. Isolated DNA is analyzed by restriction and / or F. Sanger et al., Proc  Natl Acad Sci (USA) 74: 5463 (1977), and Messing et al., F. Supp. Nucleic  Acids Res 9: 309 (1981) or the dideoxy method or Kitham et al., Sequencing by the method of Methods in Enzymology 65: 499 (1980). Wear.   According to the present invention, an oligodendroglial is provided in an effective amount. A method of inducing oligodendroglial differentiation is provided by contact with growth factors. It In order to induce somatic division in oligodendroglia, an amount of oligo of about ng is required. Godend roglia growth factor was found to be sufficient.   In another aspect of the invention, an effective amount of oligodendrocytes in a patient with demyelinating disease. Provided is a method of treating a patient with demyelinization, the method comprising administering glial growth factor. It   One of ordinary skill in the art, given the disclosure herein, will find effective dosing regimens for the treatment of demyelinating disease. You will understand well. For example, the medication may be intravascular, orally, rectally, etc. There are various modes of administration. Treatment is continued until the desired therapeutic result is obtained. Can be Those of ordinary skill in the art will appreciate that the dosage regimen, dosage, and interval You will recognize that it depends strongly on your physical condition.   The oligodendroglial growth factor is an effective amount of oligodendroglial growth factor. It may be formulated into a pharmaceutical composition comprising a child and a normally harmless carrier, such carrier The body is known to those skilled in the art. The composition is given in a dosage regimen appropriate to its form. An example Such compositions include solutions, suspensions, emulsions, as well as orally, intravenously. Usually in liquid form, including those that can be administered subcutaneously or intramuscularly. It is in the form of a product.   In addition, the treatment of demyelinosis involves intracellular oligodendroglylation from the genome. Expression of growth factor is induced. For the expression of oligodendroglia growth factor As an example of your choice, a portion of the oligodendroglial growth factor cDNA or genomic sequence. Is transformed with in vitro or in vivo. transformed in vitro Cells are introduced into the mammal in a manner familiar to those of skill in the art, such as performing cell transplantation. it can. Transformation in vivo is dependent on the introduction of the recombinant vector previously described. Is made. WO 90/11734 Released October 18, 1990.   The following examples are illustrative, but not intended to limit the invention.Example Example 1 Cell culture   Six-day-old sprag-Dawley rat corpus callosum and surrounding white matter to cerebral white Quality (CWM) cultures were established and maintained in serum-free medium as described above. Greenspan JB, et al. , J Neurosci 1990, 10, 1866. 1-18873. The cells were expanded for oligodendroglia during the first 4 days of culture. Treated with growth factors. Medium (addition of oligodendroglial growth factor) Or not) was replaced at 3 or 4 day intervals. In some experiments (Shown in text and figures), human platelet-derived PDGF (mostly AB heterod Immer; Bowen-Hope DF, et al. J Biol Chem 1989,264. , 2502-2508; biweekly, 1% platelet-poor human blood 2 ng / mL was added with serum; Grinspan JB, et al. J Neurosci   1990, 10, 18661-18873. In other experiments, human recombinant acidic Or 10 ng / mL alkaline FGF (R & D system) is added at 48 hour intervals. I got it. Schwann cells or dorsal root of sciatic nerve in newborn rats monolayer culture of Wood P. M. And Williams A. K. , De v Brain Res 1984, 12, 225-241; and Crader. B. Q., et al. , Brain Res 1981, 207, 433-444. Was established as described in.Example 2 Indirect fluorescent antibody microscopy   Monoclonal antibody (mAb) against glycolipid [A2B5 (neural cytoplasmic antigen ) Eisenverse, et al. , Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A . 1979, 76, 4913-4917; anti-GD3 antibody (Goldman JE. , Et al. , J Neurosci 1986, 6, 52-60; 01 anti-galactose. Lebroside (oligodendroglia surface); Zomer J. And Schutner M.A. , Dev Biol 1980.83, 311-327; and R-mAb (Galaxy). R. Citcelbroside); , Et al. , Proc Natl Acad Sci USA 1982, 79, 2709-2713; , Et al. , J Neurosci Res 1989, 24, 548-557, or Mi Rabbit antiserum generated against extracellular region of Erin-related glycoprotein; Pedraza L. , Et al. , J Cell Biol 1990,111,2651-2751. , Diluted 1: 100 and used by Dr. James Salder, NYU Medical Sen. Given by courtesy of Ter.] At 4 ° C (A2B5,01, R-mAB) or At 25 ° C. (anti-MAG), it was added to the unfixed culture solution for 25 minutes. Hanks loose Rinse with appropriate salt solution and attach the appropriate fluorescence, rhodamine or Texas red Sub-antisera (obtained from Nordic, Organon Technica, or Jackson Labs Cells were incubated with acid-alcohol (95% ethanol). 5% acetic acid, v / v) was fixed at -20 ° C for 10 minutes. Anti-MBP mAb; Hicke Lee, et al. J. Histochem. Cytochem., 1983, 31, 11 26-1135; is added after fixing with acetone, and anti-GFAB (gel activated glial fiber is added. Fiber protein) mAb; Lee VM-Y, et al. , J Neurochem 1984 , 42, 25-32; was added after acid-alcohol fixation. Binds to various antibodies The number of cells was 1 mm on the surface of the cover glass.2The field of view that is 63 times as oily as It was decided by examining 21 pieces. Randomly select the field of view and run under fluorescent illumination Before the examination, it was judged that the density was appropriate under phase contrast. Cell content Cleavage index is at least 4 or 24 hours before fixation in acid-alcohol. Incubation with bromodeoxyuridine (BrdU, 10 μM) Estimated by incubating the nutrient solution. Anti BrdU (Amersham) Indirect fluorescent antibody microscopic observations using a strain showing the phenotype of BrdU incorporation into the nucleus. It was used to determine the number of cells. Greenspin J. B. , Et al. , J Neu rosci 1990, 10, 18661-18873.Example 3 Northern blotting   The steady-state amount of mRNA encoding MBP, PLP, or MAG was Zinc blotting revealed oligodendroglial growth factor, PDGF, or Examined in CWM medium maintained with or without Lucari FGF It was Sunbrook J, Frisch EF, Maniatis T Molecular Cl oning. A Laboratory Manual. Second edition cold sprite Ng Harbor Publishing, 1989. To this end, Chomjinsky and sashes , Anal. Biochem., 1987, 162, 156-159. Isolate total RNA from CWM cultures and run on an agarose formaldehyde gel. Separate by electrophoresis and transfer to a Duralon membrane (Stratagene). I was sphered. Prehybridization was performed at 42 ° C for 2 hours with 50% formua. Amide, 5 × SSPE (1 × = 0.15M NaCl, 0.01M phosphate and 1 mM EDTA), 1% SDS, 5 × Denhardt's solution (1 × = 0.02% Equol, 0.02% polyvinylpyrrolidine, 0.02% bovine serum albumin, 100 μg / mL denatured salmon sperm DNA). Rat MBP or LA Full-length PLP cDNA; Defera F. , Et al. , Cell 1985, 43, 7 21-727; Grinspan J., et al. , J Neurocytol Printing (1 992); Camhols J., et al. , J Neurosci res 1992, 31, 231-244; or rat MAG cDNA (J. Salzer, NY Hybridization by the U Medical Center) I went there for 24 hours. Blot once in 2 x SSC at room temperature and in 2 x SSC 65 Wash once at 0 ° C and once at 0.2 ° SSC at 65 ° C to remove Kodak XAR5 The film was exposed at -70 ° C.Example 4 Purification of oligodendroglia growth factor   The whole brain of a Sprague-Dawley rat 3 days after birth was treated with 0.25 M swab. Claus, 0.1 mM MgCl2, 0.63mM Phenylmethylsulfonyl Solution containing fluoride and 10 mM Tris (pH 7.0) ) ") At 4 ° C. The homogenate is 1 at 2000 xg. It was centrifuged for 0 minutes at 4 ° C. Soluble by resuspension from 130,000 xg precipitate Prepare the extract and incubate it in 0.5M NaCl suspension buffer for 60 minutes at 4 ° C. Cuvated and then centrifuged at 130,000 xg for 60 minutes at 4 ° C. Up Clear with phosphate-buffered 150 mM NaCl, pH 7.0 (PBS) at 4 ° C Dialyzed overnight in Ratner N .; , Et al. , Proc Natl Acad Sci USA 1988, 85, 6992-6996; and then pre-coated with PBS. Overnight with a balanced 1 / 10th volume of DEAE Sephadex (Pharmacia) It was stirred. The suspension was centrifuged. The supernatant was transferred to an S-200 Sephacryl column (Pharma Shear) and the fractions were eluted with PBS. Oligodendroglia growth factor activity The containing fraction was obtained and dialyzed against deionized water at 4 ° C for 16 hours to make it lyophilic. It was saved at. The peptides in these fractions were digested with sodium dodecyl sulfate-polyamine. Separation by chloramide gel electrophoresis (SDS-PAGE); Ramili, U .; K. Nature 1970, 227, 680-685; and visualized with silver stain It was In one experiment, Ponceau staining and densitometry were performed on the tamper in the peptide band. It was used to estimate the mass. Staining with oligodendroglial growth factor Cut out the lane part of SDS-PAGE not perpendicular to the direction of movement , Washed twice with Ham's F-12 medium at 25 ° C for 10 minutes each, then 0.1% (W / v) Shake overnight in Ham's F-12 medium containing bovine serum albumin at 4 ° C. Proteins were extracted from the fragments by and. The remaining SDS is extratigel Removed from the supernatant by passing through a small column (Pierce). Tampa The proteins were eluted from these columns in Ham's F-12 medium and stored at -80 ° C. It was Accumulation of oligodendroglia in rat CWM cultures is described in Example 5. As described above, the oligodendroglial growth factor from 0.5M NaCl membrane extract was purified. Used to monitor the manufacturing process. Increased bioactive oligodendroglia The growth factor binds to DEAE Sephadex with 0.15M NaCl at pH 7.4. Not combined, S in the fraction corresponding to a molecular weight of 50-70 kD (as globular protein) It was eluted from the -200 Sephacryl column. Silver staining after SDS-PAGE Of oligodendroglial growth factor after passage through S., S-200 Sephacryl Has an apparent molecular weight of approximately 60 under reduction, along with several thinner bands. kD It was shown to contain a major protein band of (Fig. 4). Oligodendroglia The growth factor activity was increased by eluting the gel fragment containing the 60 kDal band. Well collected. R-mAb in CWM medium+And 01+Oligodendrogly The half-maximal accumulation of a is a factor of oligodendroglial proliferation after SDS-PAGE. The offspring protein was obtained at a concentration of 2 ng / mL. Oligodendroglia growth factor No bioactivity was detected in the eluate from other parts of the gel. All refiners Depending on the process, oligodendrogly was added to the first rat brain membrane NaCl extract. (A) The specific activity of the growth factor increased 4,000 times, and the yield was 67%. Table of results Summarized in 1. Example 5 Biological activity of oligodendroglial growth factor   CWM medium maintained in defined medium without the addition of PDGF or FGF Surface 01 in nutrient solution+Or R-mAb+The maximum increase in oligodendroglia The dose that can be placed at each stage of purification to determine the protein concentration that halves- Measuring oligodendroglial growth factor activity by constructing a response curve . 01 mAb binding to galC, and both galC and sulpholipid The results for R-mAb binding in one direction are: Vansal R, et al. , J Neuro sci Res 1989, 24, 548-557; indistinguishable. Activity 1 unit is mm in oligodendroglial growth factor210 more per It was defined as the amount of Rigodendroglia produced. Growth factors of oligodendroglia The maximum response to offspring is the untreated background level at each stage of purification. It was about 8 times the bell. Various antibodies were used to enhance the effect of oligodendroglial growth factor activity. It was added to the medium to determine the fruit. Rabbit anti-human PDGF (collaborate Search, 50 μg / mL) along with oligodendroglial growth factor So added. Rabbit anti-basic FGF (R & D, 60 μg / mL) 90 minutes before adding dendroglia growth factor, rabbit acid-fast FGF (R & D, 50 μg / mL) 30 minutes before adding oligodendroglial growth factor. Added Anti-oligodendroglia growth factor mAb, Du (see below) It was used as a dorma supernatant (1: 100, v / v).Example 6 Monoclonal antibody of oligodendroglial growth factor     18 days with oligodendroglial growth factor after passing S200 Sephacryl Immunize mice over time; Broadsky FM, J Cell Biol 1985, 101, 2047-2054; Arai et al., Proc. Natl. Ac ad. Sci. U. S. A., 1990, 87, 2249-2253. Hybridomas were prepared as described above. The clone was isolated, and the supernatant was used for S200 Using oligodendroglial growth factor after passing through Sephacryl as a target antigen, Oh Binding to Rigodendroglia Growth Factor was tested by ELISA; MY et al. , Proceedings of the Natl. Acad. S ci., USA 1988, 85, 1998-2002. 6 ELISA positives Two of the clones (Td and Du) were driven by oligodendroglial growth factor. Induced in the CWM medium+Inhibited cell accumulation. Pup with Du Luoxidase anti-peroxidase (PAP) immunocytochemistry, tissue sections and Immune response of oligodendroglial growth factor in dorsal nerve root (DRG) culture Used to position sex. Tissue tissue prepared from human brain with isotonic alcohol It was fixed and cut into 6 μm paraffin sections. P6 rat DRG culture is acid alcohol Fixed in 2% fetal calf serum (v / v) and 0.1 M Tris, pH 7.0. 30% with 0.25% (w / v) cold water fish gelatin Min blocking and then incubating with oligodendroglial growth factor mAb Incubated. Then about the paraffin fragments and DRG cover glass , Peroxidase antiperoxidase immunocytochemical analysis was performed. Carden ( 1987).Example 7 Preliminary characterization of CNS membrane 0.5M NACL extract   The oligodendroglial growth factor activity was measured as described in Example 5. Add NaCl extract to a concentration of 20 μg / mL on days 0 and 3. Added Number of oligodendroglia binds to 01 mAb or R-mAb Determined by counting cells. The number of 0-2A cells in A2B5 mAb is Count the number of cells that bind but not 01 mAb or R-mAb cells Decided. The 01 mAb and R-mAb results were indistinguishable. Anti-G In parallel experiments with FAP, m in both untreated and treated cultures m2It was shown that there were less than one type 2 astrocyte per cell. The result is a standard error Mean of 4 independent experiments including differences. 0 from crude newborn rat CNS membrane Treatment with newer rat CWM cultures by treatment with 0.5M NaCl extract The number of cells generated from godendroglia increased (Fig. 1 and Table 2), and The BrdU nuclear labeling index of such cells was transiently increased (FIGS. 2 and 3).   Number of type 1 astrocytes, microglia, and endothelial cells in rat CWM medium And mitotic index remained unchanged by treatment with 0.5M NaCl extract (Data not shown). Orientation in CWM media mediated by NaCl extract The increase in godendroglia is associated with the increase in basic FGF, acidic FGF, or human PDGF. It was not inhibited by the antiserum that neutralized the work (data not shown).   CWM cultures induced by 0.5M NaCl extract and human PDGF The increase in the number of oligodendroglia in the liquid is additive (Table 3). Na of brain membrane Cl extract (20 μg / mL) and human PDGF (2 ng / mL) on day 0. And added on day 3. Each result is the mean of 4 independent experiments ± standard error. It   The increased activity of 0.5 M NaCl extract against oligodendroglia was It did not pass through the membrane and was not inactivated by trypsin or treatment at 100 ° C for 5 minutes (Data not shown). While doubly labeled with A2B5 and anti-GFAP Immediate immunofluorescence experiments; Grinspan J. et al. B., et al. , J Neurosci., 1 990,10,18661-18873; is less than one type 2 astrocyte / Mm2But Rough M. C. , Et al. , Nature 1983, 303, 390 -396; both untreated and CWM broth treated with 0.5M NaCl extract Were present in the (no data shown).Example 9 Descendants of 0-2A oligodendroglia and oligos by oligodendrogliaDetection of DNA synthesis stimulated by dendroglia growth factor   S200 Sephacryl or SDS-P in sufficient quantity to elicit maximum response Treatment of the CWM broth with oligodendroglial growth factor after AGE, B As a result of observing one day after pulsing with rdU for one day, A2B5+Oligodendrogly A descendants and R-mAb+BrdU label in both oligodendroglia Le index increased four to five times.   The oligodendroglial growth factor is linked to oligodendroglial during the BrdU pulse. By increasing the number of rapidly proliferating 0-2A cells that differentiate into Rather than increasing the BrdU label index of Godend Roglia; Fresinaud C. , Et al. , J Cell Physiol 1992, 150, 34-44, Mushi At least R-mAb+Cells of the oligodendroglial lineage that have reached the differentiation stage Devised two experiments to prove that it exerts a direct division effect on . The first experiment reduced the duration of BrdU pulse from 24 hours to 4 hours, and Therefore, BrdU-labeled 0-2A cells mature into oligodendroglia Limited time available for R-mAb labeled with BrdU+Number of cells Was reduced by a factor of 5 in this experiment, but the R-mAb+BrdU label index of cells is , Treated with oligodendroglial growth factor compared to control culture Has increased 4 times. The second experiment was PDGF to increase 0-2A cell population. (2 ng / mL) for 3 days was used; B. , Et al . J Neurosci. 1990, 10, 18661-18873; and then Cultured for 5 days without PDGF, during which period 0-2A cells were oligodendroglial Matured. At this time, these culture solutions were 0-2A cells / mm2Is less than 1 won. These cultures are rich in oligodendroglia and low in 0-2A cells , 200 ng oligodendroglial growth factor after passing through S200 Sephacryl R-mAb+Stimulation of BrdU label index of cells 5 times (starting 1 day after adding oligodendroglial growth factor Pulsed for 1 day, n = 3). The results of these two experiments are Glial growth factor is R-mAb+Direct cell division inducing effect on oligodendroglia It was suggested that the results would be exerted.   Oligodendroglial growth factor against Schwann cells or inner nerve fiber Sciatic nerve culture has already been described to determine if it is still a mitogen. Clader B. Q. , Et al. , Brain Res 1981, 2 07,433-444; and in medium with or without serum. Rough Pass through 0.5 M NaCl extract (50 μg / mL) or S200 Sephacryl. And added oligodendroglial growth factor (1 μg / mL) to the medium, Two days later it was pulsed with BrdU for 1 day. Crude 0.5M N in serum-free medium The aCl extract increased the BrdU nuclear labeling index of Schwann cells 4-fold (n = 5). I let you. However, the cause of oligodendroglial proliferation after passing through S200 Sephacryl Pups were labeled with BrdU in serum-free medium or in serum-containing medium. Did not increase the proportion of Schwann cells or inner sheath fibers (data not shown). Not).Example 10 The oligodendroglia increased by the oligodendroglial growth factor is MAG Expressing myelin substrate protein (MBP) or proteolipid (PLP) is not synthesized or expressed   CWM broth treated with oligodendroglial growth factor for 3 days or longer R-mAb in+Approximately one-third of oligodendroglia has anti-MA on its own cell membrane. G immunoglobulin was coupled (Fig. 5). Northern blot analysis revealed that oligo That the MAG gene is expressed in cultures treated with Androglia growth factor Confirmed (data not shown).   R-mAb in CWM medium treated with human PDGF 2 ng / mL for 10 days+ 46% (n = 3) of cells are MBP+It was, but 10 days oligodendrogly R-mAb in CWM medium treated with growth factor+Only 4% (n = 3) of cells Is MBP+(Fig. 6), and this number did not increase after a further 10 days of observation . Steady-state MBP in CWM medium treated with oligodendroglial growth factor And PLP mRNA levels in parallel PDGF or basic FGF The results were compared with those in the culture solution treated with 1. by using Northern blot analysis. PDGF The number of oligodendroglia in the culture solution treated with MBP and PL, as expected from the fact that they were not actually found in Expression of P mRNA was strong in PDGF-treated cultures but not FGF-treated. Was hardly detected in the culture (Fig. 7). Proliferation of oligodendroglia In the culture medium treated with the factor, the galactolipid characteristic of oligodendroglia was formed. Abundant cells expressing but very low MBP and PLP mRNA levels It's (Fig. 7). This is in CWM broth treated with oligodendroglial growth factor. Of low levels of MBP expression in oligodendroglia of Mechanism is involved at least in part.   Oligodendroglial growth factor oligodend in culture medium treated with PDGF To determine whether to suppress the expression of myelin structural proteins by roglia, CWM medium is stimulated with oligodendroglial growth factor and PDGF for 10 days Was processed as follows. Cultures treated with PDGF only by indirect immunofluorescence microscopy R-mAb in these cultures as well as nutrient solutions+About half of the cells (49%, n = 3 ) Is MBP+It was also.   From previous observations, the synthesis of myelin lipids and myelin structural proteins has been shown to It was suggested that it is deeply involved in the differentiation of ndroglia. Thus, basic In cultures maintained in media containing FGF, oligodendroglial lines Some cells have myelin galactosphingolipids (galC and sulfatide) And the mRNA encoding both MBP and PLP cannot be expressed, while salt In the medium maintained without the addition of basic FGF, the expression of galC and M The mRNAs encoding BP and PLP appeared, and the immune response of MBP and PLP Responses can be done in the next few days. Knapup P. E. FIG. , Et al. , De v Biol 1987, 120, 356-365; Guard A. L. And puff FER S. E. FIG. , Development 1989, 119-132; Ralini, et al. , Development 1992, 116, 193-200; Greenspan J. , Et al. , J Neurocytol. Printing (1992). Shi However, contrary to these suggestions, cultures treated with oligodendroglia growth factor In solution, the coupling of myelin lipid and myelin structural protein synthesis was not found. Seems not to exist; R-mAb+And 01+Cells accumulate but express MAG Some do not express MBP and PLP. If you think carefully, a new oligode Oligodendroglial growth factor induces expression of PLP and MBP Not guiding means stabilizing the interaction between lipid bilayers in small myelin Proteins that are heavily involved in; A. And brow lock A. E. FIG. , Myelin: Biology and Chemistry (Martenson RE, editor), pp3- 80. Boklerton: CRC Printing (1992); on these oligodendroglia. It may be to promote the first envelopment of Axon by.Example 11 Studies with monoclonal antibodies against oligodendroglial growth factor haveRigodendroglia Growth Factor Shows Neuronal Expression   2 out of 6 ELISA-positive oligodendroglial growth factor mAbs (" Du "and" Te ") are the oligodendroglial growth factors in CWM medium. By A2B5+And R-mAb+Inhibited cell proliferation. For each of these two And oligodendroglial growth factor 200n after passage through S200 Sephacryl Half the inhibition of maximal bioactivity of g / mL was obtained by diluting 1: 500 (v / v) high. Obtained from bridoma supernatant (data not shown). Du and Te are PDGF Or expansion of oligodendroglial lineage cells induced by basic FGF treatment Does not inhibit addition (data not shown).   In immunoperoxidase experiments, Du was found to be a pellica in paraffin sections of human brain. Axons of Luya and Pelikarya cells, and dorsal roots of newborn rats (dorsal roo t ganglia) was shown to bind to many nerves in acid alcohol fixation medium. (FIG. 8). Fibroblast or Schwann cells in rat DRG culture, or rat No Du binding was detected to any cell type in C. Data not shown).

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI C12N 15/09 9281−4B C12N 5/00 B C12P 21/02 9455−4C A61K 37/02 AAB 21/08 9162−4B C12N 15/00 C //(C12N 5/10 C12R 1:91) (C12P 21/02 C12R 1:91) (C12P 21/08 C12R 1:91) (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AT,AU,BB,BG,BR,BY, CA,CH,CN,CZ,DE,DK,ES,FI,G B,HU,JP,KP,KR,KZ,LK,LU,LV ,MG,MN,MW,NL,NO,NZ,PL,PT, RO,RU,SD,SE,SI,SK,TT,UA,U Z,VN (71)出願人 ザ・トラスティーズ・オブ・ザ・ユニバー シティ・オブ・ペンシルバニア アメリカ合衆国ペンシルバニア州19104― 3147,フィラデルフィア,マーケット・ス トリート 3700,スウィート 300,セン ター・フォー・テクノロジー・トランスフ ァー (72)発明者 クレイダー,バーバラ・キュー アメリカ合衆国ニュージャージー州08054, マウント・ローレル,フォックス・ラン・ ドライブ 2 (72)発明者 プレジャー,デービッド アメリカ合衆国ペンシルバニア州19096, ウィニーウッド,ケント・ロード 258 (72)発明者 リー,ヴァージニア・エム−ワイ アメリカ合衆国ペンシルバニア州19147, フィラデルフィア,フィフス・ストリー ト,サウス 776─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Internal reference number FI C12N 15/09 9281-4B C12N 5/00 B C12P 21/02 9455-4C A61K 37/02 AAB 21/08 9162 −4B C12N 15/00 C // (C12N 5/10 C12R 1:91) (C12P 21/02 C12R 1:91) (C12P 21/08 C12R 1:91) (81) Designated country EP (AT, BE, CH, DE, DK, ES, FR, GB, GR, IE, IT, LU, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AT, AU, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CZ, DE, DK, ES, FI, GB, HU, JP, KP, KR, Z, LK, LU, LV, MG, MN, MW, NL, NO, NZ, PL, PT, RO, RU, SD, SE, SI, SK, TT, UA, UZ, VN (71) Applicant The Trustees of the University of Pennsylvania Pennsylvania, USA 19104-3147, Philadelphia, Market Street 3700, Sweet 300, Center for Technology Transfer (72) Inventor Crader, Barbara Kew, New Jersey 08054, Mount Laurel, Fox Run Drive 2 (72) Inventor Pleasure, David United States Pennsylvania 19096, Winnie Wood, Kent Road 258 (72) Inventor Lee, Virginia M-Wye Pennsylvania, United States 19147, Philadel Bed and breakfasts, Fifth stream door, South 776

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.哺乳類の脳全体の0.5M塩抽出物を調製し; pH7.4で0.15M NaClにおいて、抽出物をイオン交換基質とイン キュベートし; 5kDaから600kDaの画分範囲を有するサイズ排除カラム上へ結合し ていない上清を添加し; 画分を溶出し; オリゴデンドログリア増殖因子活性のある画分を集め;そして 変性ゲルで活性画分中のタンパク質を分離する ことからなる、オリゴデンドログリア増殖因子を単離するための方法。 2.請求項1に記載の方法に従って単離したオリゴデンドログリア増殖因子。 3.哺乳類の脳全体の0.5M塩抽出物を調製し; pH7.4で0.15M NaClにおいて、抽出物をイオン交換基質とイ ンキュベートし; 5kDaから600kDaの画分範囲を有するサイズ排除カラム上へ結合し ていない上清を添加し; 画分を溶出し; オリゴデンドログリア増殖因子活性のある画分を集め; 変性ゲルで活性画分中のタンパク質を分離し; ゲルから分子量約60kDaのタンパク質を回収し;そして 隣接したオリゴデンドログリアの細胞分裂を誘導するために有効な量の回収 したタンパク質をオリゴデンドログリアに接触させる ことからなる、オリゴデンドログリアの細胞分裂を誘導するための方法。 4.哺乳類の脳全体の0.5M塩抽出物を調製し; pH7.4で0.15M NaClにおいて、抽出物をイオン交換基質とイ ンキュベートし; 5kDaから600kDaの画分範囲を有するサイズ排除カラム上へ結合し ていない上清を添加し; 画分を溶出し; オリゴデンドログリア増殖因子活性のある画分を集め; 変性ゲルで活性画分中のタンパク質を分離し; ゲルから分子量のタンパク質を回収し;そして 脱ミエリン症患者のオリゴデンドログリアの細胞分裂を誘導するのに有効な 量の回収したタンパク質を脱ミエリン症に苦しむ患者に投与する ことからなる脱ミエリン症に苦しむ患者のミエリン脱落症の治療方法。 5.脱ミエリン脱落症が多発性硬化症である、請求項4に記載の方法。 6.約400ユニット/μgのオリゴデンドログリア増殖活性を示し、分子量が およそ60kDのタンパク質を含む、実質的に純粋なオリゴデンドログリア増殖 因子。 7.請求項6に記載のオリゴデンドログリア増殖因子をコードする配列を持つオ リゴヌクレオチド。 8.オリゴデンドログリア増殖因子タンパク質および薬剤的に受容可能なキャリ ヤーを含む治療用組成物。 9.宿主細胞によるオリゴデンドログリア増殖因子の発現が十分可能なオリゴデ ンドログリア増殖因子をコードするDNA部分で形質転換した組換え宿主細胞。 10.請求項9に記載した組換え発現ベクターから生産されるオリゴデンドログ リア増殖因子。 11.組換え宿主細胞を培養することを含むオリゴデンドログリア増殖因子の生 産方法であって、上述の宿主細胞に形質転換された組換えDNAが、オリゴデン ドログリア増殖因子をコードするDNA配列を有し、形質転換細胞中での当該コ ード配列の発現を促すことが可能な適切な制御コントロール配列に実施可能につ ながれているものである、上記生産方法。 12.適切な発現システム中で発現可能な組換えベクターであって、当該発現シ ステムに適合するコントロール配列に実施可能につないだオリゴデンドログリア 増殖因子をコードするDNA配列を含む、上記組換えベクター。 13.オリゴデンドログリア増殖因子を特異的に認識するモノクローナル抗体を 発現するハイブリドーマ細胞系。 14.請求項13に記載のハイブリドーマ細胞系から生産されたモノクローナル 抗体。 15.オリゴデンドログリアを有効量のオリゴデンドログリア増殖因子と接触さ せることを含む、オリゴデンドログリアの細胞分裂を誘導する方法。 16.約10μg/mLから約2ng/mLのオリゴデンドログリア増殖因子を オリゴデンドログリアに接触させる、請求項15に記載の方法。 17.中枢神経系のオリゴデンドログリアの細胞分裂を誘導するのに有効な量の オリゴデンドログリア増殖因子を脱ミエリン症に苦しむ患者に投与することを含 む、脱ミエリン症の治療方法。 18.脱ミエリン症が多発性硬化症である、請求項17に記載の方法。[Claims] 1. Preparing a 0.5M salt extract of whole mammalian brain;     The extract was combined with an ion exchange substrate at 0.14 M NaCl at pH 7.4. Incubate;     Bound onto a size exclusion column with a fraction range of 5 kDa to 600 kDa Not add supernatant;     Elute the fractions;     Collecting fractions with oligodendroglial growth factor activity; and     Separate proteins in active fractions on denaturing gels A method for isolating an oligodendroglial growth factor consisting of. 2. An oligodendroglial growth factor isolated according to the method of claim 1. 3. Preparing a 0.5M salt extract of whole mammalian brain;     The extract was washed with ion exchange substrate at 0.15M NaCl at pH 7.4. Incubate;     Bound onto a size exclusion column with a fraction range of 5 kDa to 600 kDa Not add supernatant;     Elute the fractions;     Collecting fractions with oligodendroglial growth factor activity;     Separate the proteins in the active fraction on a denaturing gel;     Recovering a protein having a molecular weight of about 60 kDa from the gel; and     Recovery of an effective amount to induce cell division of adjacent oligodendroglia Exposed protein to oligodendroglia A method for inducing oligodendroglial cell division comprising. 4. Preparing a 0.5M salt extract of whole mammalian brain;     The extract was washed with ion exchange substrate at 0.15M NaCl at pH 7.4. Incubate;     Bound onto a size exclusion column with a fraction range of 5 kDa to 600 kDa Not add supernatant;     Elute the fractions;     Collecting fractions with oligodendroglial growth factor activity;     Separate the proteins in the active fraction on a denaturing gel;     Recovering the molecular weight protein from the gel; and     Effective to induce oligodendroglial cell division in patients with demyelinating disease Administering recovered protein to patients suffering from demyelinosis What is claimed is: 1. A method of treating myelination deficiency in a patient suffering from demyelination. 5. The method according to claim 4, wherein the demyelinating syndrome is multiple sclerosis. 6. It has an oligodendroglial proliferative activity of about 400 units / μg and a molecular weight of Substantially pure oligodendroglia growth containing approximately 60 kD protein factor. 7. A sequence having a sequence encoding the oligodendroglial growth factor according to claim 6. Rigonucleotide. 8. Oligodendroglia growth factor protein and a pharmaceutically acceptable carrier A therapeutic composition comprising a layer. 9. An oligodefect capable of sufficiently expressing an oligodendroglial growth factor by a host cell. Recombinant host cells transformed with a portion of the DNA encoding Androglian Growth Factor. 10. An oligodendlog produced from the recombinant expression vector according to claim 9. Rear growth factor. 11. Production of oligodendroglial growth factor involving culturing recombinant host cells The recombinant DNA transformed into the above host cell is an oligoden It has a DNA sequence that encodes a droglia growth factor, and To the appropriate regulatory control sequences that can drive the expression of the The production method described above, which is a flow. 12. A recombinant vector that can be expressed in an appropriate expression system, Oligodendroglia operably linked to a control sequence compatible with the stem The above recombinant vector comprising a DNA sequence encoding a growth factor. 13. A monoclonal antibody that specifically recognizes oligodendroglial growth factor Expressing hybridoma cell line. 14. A monoclonal produced from the hybridoma cell line of claim 13. antibody. 15. The oligodendroglia is contacted with an effective amount of oligodendroglial growth factor. A method of inducing cell division of oligodendroglia, comprising: 16. About 10 μg / mL to about 2 ng / mL oligodendroglia growth factor The method according to claim 15, wherein the method is contacted with oligodendroglia. 17. An amount effective to induce cell division of central nervous system oligodendroglia Comprising administering oligodendroglial growth factor to a patient suffering from demyelinating disease. How to treat demyelinating disease. 18. 18. The method of claim 17, wherein the demyelinating disease is multiple sclerosis.
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